各种临床检验标本的正确采集方法

各种临床检验标本的正确采集方法

发布日期：2007-09-10 发布人:alexendran 最后更新时间:2009-05-15 浏览次数:2711

各种临床检验标本的正确采集方法

标本送检须知

检验标本包括血液标本和其他各种体液标本。检验标本的采集是保证检验结果准确的前堤。因此，要求各临床科室医护人员、

送检单位及相关人员认真阅读本文件并严格按以下方法操作。

1 尿液标本的留取

尿常规检查标本

1.1使用清洁干燥容器，住院病人以清晨第一次尿为主，门、急诊患者可随时留取新鲜尿液

约20ml送检。

1.2尿标本应避免经血、白带、精液、粪便等混入。

1.3标本留取后及时送检，不得超过1小时，以免细菌在尿中生长繁殖，菌体蛋白与病理性

蛋白尿相互干扰；以免尿素酵解、葡萄糖降解、尿pH升高；以免有形成份破坏(细胞管型

分解、红细胞溶解)，化学成分变性、分解，尿中盐类析出结晶）。

尿培养标本

1.4需留取清洁中断尿，注意无菌操作，避免污染。

1.5病人先清洗外阴部，自行排尿，排尿过程中尿液不要中断，前段尿不要，用无菌管接中断尿，塞好瓶塞后立即送检。

1.6患者应停用抗生素三天后作尿培养检查。

1.7尿中应加防腐剂。

24小时尿标本

1.8准备清洁干燥带盖的广口容器，容量为3000—5000mL。

1.9病人于晨7时将尿全部排尽弃去，然后开始留尿，将24小时内历次所排尿液均留于容器中，包括次日晨7时所排最后一次

尿。

2.0测量尿液总量(ml数)并记录在化验单上，将全部尿液充分混均后，取出20—50m1，置于清洁干燥有盖容器总立即总检。

2.1若天气炎热，可根据检验要求放入适量的防腐剂。

甲苯：适用量20ml／1000ml尿，用于尿液生化检验(G、Pr、Ca、P、Cr等)

40％甲醛：适用量1～2ml／24h尿，用于细胞、管型等有形成分检查。

应在第一次尿液倒入后再加防腐剂。

2.2 24h尿中不能混入异物。

12h尿标本

留取12h尿标本，可以从晚上7时开始至次晨7时止(具体方法同24h尿标本采集)。

2 粪便标本的留取

粪便常规检查标本

2.1粪便检验应取新鲜标本，容器要清洁，及时送检，于1h内检查完毕。

2.2采集标本时应用干净竹签选取含有粘液、脓血等病变成分的粪便，外观无异常的粪便须

从表面、深处及粪端多处取材，其量至少为指头大小。

2.3粪便标本中不可混有尿液、消毒剂、污水、植物、泥土等。

2.4无粪便而又必须检查时可经肛门指诊获取粪便，灌肠后的粪便常因过稀及混有油滴等而

不适于作检查标本。

2.5应根据检查项目的要求进行准备和留取标本。

粪便寄生虫检查标本

2.6查痢疾阿米巴滋养体时应于排便后立即检查。寒冷季节标本传送及检查时均需保温，从脓血和稀软部分取材。

2.7检查日本血吸虫卵时应取粘液、脓血部分，孵化毛蚴时应至少留取30g粪便，且需较快处理。

2.8检查蛲虫卵须用透明薄膜拭子于晚12时或清晨排便前自肛门周围皱裂处拭取并立即镜检。

粪便培养标本

2.9粪便培养标本应无菌操作收集。

2.10患者在清洁便盆内排便，用无菌棉签取大便的脓血或粘液部分少许，或在肛门插入约6-7cm，轻轻旋动取出大便少许，放

入无菌容器中送检。

2.11 标本中不可混入尿液等异物及其它化学药品。

3 血液标本的采集

静脉血采集

静脉血标本采集前病人应注意的问题

3.1避免剧烈运动，一般主张抽血前24h内不做剧烈运动，清晨取血，住院病人可在起床前取血，匆忙赶到门诊的人应至少休

息15分钟后取血。

3.2注意合理饮食。除了急诊或其它特殊原因外，一般主张在禁食12h后空腹取血，延长空腹时间(饥饿)或餐后血液的化学成

分都会引起变化，饮酒实验亦有影响。

3.3药物的影响。很多的药物进入人体后可影响某些化验项目的结果，病人在化验前应尽可能停服对实验有干扰的药物。

静脉采血时医生应注意的问题

3.4采用一次性真空采血管，多项化验采血顺序应首先将血注入血常规管，然后是其它抗凝管，最后是非抗凝管。血常规、血

凝、血沉抽血量务必准确抽取规定的量，并轻轻颠倒混匀。

3.5采血时的体位建议以坐位5分钟后取血为宜，止血带使用应少于1分钟，以免引起血液淤滞，造成血管内溶血或血液某些

成分改变。

3.6当一侧手臂输液时应从对侧手臂取血，以免影响血糖、血钾等的浓度。

3.7血标本应防止溶血，影响溶血的因素有：用止血带时间过长；抗凝管使用不当或抗凝混合时过度振荡；容器污染；血液中

泡沫注入试管；标本放置时间长或突然冷却和受热；离心力过大等等。

3.8正确使用抗凝剂：

枸橼酸钠：用于血沉试验

肝素：用于血氨、血气试验

EDTA - K

：用于血常规试验

2

采血后实验室应注意的问题

3.9标本采集后应及时分离血清，标本应尽快检验。

3.10实验室室温应保持20℃-25℃，防止标本水分蒸发，标本浓缩。

3.11标本避免光直接照射。

毛细血管血采集

3.12从末梢采血，儿童和成人从手指内侧采血，半岁以下的婴幼儿在足跟或拇指两侧取血，用于全血细胞分析、血液涂片等。

3.13采血部位必须无水肿、炎症或冻疮等血循环障碍现象，冬季患者从户外进来，应先按摩采血部位，使局部血液循环恢复常

态后才能采血。

3.14穿刺处先用酒精消毒，再使用消毒干棉球拭净，采血器材须一人一针一管的一次性器材。

3.15采血后用消毒干棉球擦去第一滴血，轻轻加压穿刺点周围部位，尽量使血液自然流出，若血流不畅，不可用力挤压，应重

新穿刺，采血完毕，用干棉球压住伤口止血。

3.16标本使用EDTA-K

：抗凝，测定血常规的采血管须用硅化玻璃管或专用有盖塑料管，采集后立即送检。

2

动脉血标本采集：用于血气分析

3.17用一次性肝素化注射器，从患者股动脉、肱动脉或桡动脉取血，血抽出后用一块小橡皮塞针头以隔绝空气，并将注射器放

在手中双手来回搓动，充分混匀。

3.18抽血过程中出现的小气泡须在抽血后立即排出，血液不得放置过久，应立即送检，如不能及时送检，应放入冰水中保存，

但切勿用冰块。

3.19若自制肝素化注射素，应避免加入过多的肝素溶液，使测定产生偏差。

血培养标本采集

3.20一般应在病人发热初期或发热高峰时或用抗生素之前采集，以无菌方法抽取静脉血，成人10—20ml，婴儿和儿童1—2ml，

采血后立即接种于血培养瓶中混匀，送检培养。

3.21注意培养瓶的选择，培养瓶有需氧菌培养瓶、厌氧菌培养瓶、综合抗生素培养瓶等，根据病情选择。

4 其它体液标本的留取与采集

精液标本

4.1采集前避免性生活三天。

4.2采集方法有：

①手淫法：是较为常做的收集方法。

②性交中断法(体外排精)。

③精液取样器协助取样。

4.3将射出的精液收集于一洁净干燥的容器中，但不能用乳胶避孕套。

4.4标本采集后立即送检，存放时间不得超过2小时，存放和转送过程中的温度应保持在25-35℃，送检时需注明采样时间和前

次排精日期。

4.5需做细菌培养，应清洁外阴，无菌消毒处理后，再排精于无菌有盖的容器内，于30分钟内立即送检。

4.6如需复查，须间隔1—2周后重新取样。

痰液标本

4.7患者晨起刷牙或用清水漱口数次后，用力咳出气管深处痰液，盛于清洁有盖容器内立即送检。

4.8对于无痰、少痰或痰脓不易吸出者，可用45℃加温生理盐水雾化吸入，以使痰液易于咳出，对于小儿可轻压胸骨柄上方以

诱导咳痰。

4.9痰液培养杯本按以上方法采集，但须盛放于无菌容器内加盖后送检。

前列腺液标本

4.10前列腺液标本应由临床医生进行前列腺按摩术采集，液量少时可直接滴在载玻片上，量多时收集在洁净干燥的试管内，立

即送检。

4.12需做细菌培养，应先消毒尿道口，用无菌干燥容器收集标本。

4.13疑为前列腺结核、脓肿或肿瘤的患者禁忌前列腺按摩

4.14需复查者，须隔3—5天后再重复采样。

阴道分泌物标本

4.15由阴道后穹隆采集。采集后将标本置生理盐水的试管中和直接涂于玻璃片上，作各种检查。

4.16阴道滴虫检查应保温送检。

4.17性传播疾病标本，用无菌棉拭子，男性插入尿道3—4cm处，女性插入宫颈处1-2cm处，转动并停留10—30秒取分泌物。

4.18取分泌物前24—48小时避免性交，阴道灌洗或局部用药后不易取样。

脑脊液标本

4.19脑脊液标本由临床医师进行腰椎穿刺采集。

4.20需做多项检查时，准备三支试管。每个试管1～2ml，第一管应用无菌管作细菌培养和细菌学检查；第二管用于生化和免疫

检查；第三管用于常规检查。样本应保温送检。

4.21过高蛋白标本时可用EDTA盐抗凝。

浆膜腔积液标本

4.22人体的胸腔、腹腔、心包腔等统称浆膜腔，由医生穿刺取样。

4.23需作多项检测时，应分装于两个无菌容器内送检，一个加106mm01／l枸橼酸钠抗凝剂，标本与抗凝剂比例为10：1；另一

个不加抗凝剂，用以观察有无凝固现象。

4.24需做细菌培养、药敏试验，须用无菌小瓶留取标本。

附:真空采血管采集血液标本一览表

注:

1、抗凝剂与血液的比例为l：9。抗凝剂与血液的比例为1：4。

2、有多项检查时，请按兰、紫、黑、红、黄的秩序采血，抗凝血应立即颠倒轻轻混匀。

3、空腹血糖检验须早晨空腹时采集标本。

4、血脂(包括生化检验)检验最好是保持正常低脂饮食一周,早晨空腹时采集标本。

5、不可利用输液、输血通道采集血液标本。除急诊抢救外应尽量避免在输液、输血的同时采集标本；一般要求在输液、输血前

或后1小时采集血液标本。如确需抽血要在另一侧肢体抽取。

检验标本不合格原因及如何正确采集检验标本

3.2.1 血液标本采集（1）采集时间：血中不少物质有每日、每月的周期性变化，如白细胞

记数早晨较低而午后较高；血清铁和胆红素在清晨最高；血钙中午最低。因此最好在同一时

间采集标本，以减少由于不同时间采集标本所造成结果的波动。在采集血标本做细菌培养时，

菌血症患者以开始发热而未出现恶寒时，败血症患者采血无严格要求，但也不应在发热高峰

前进行采血［2］，还应尽量在使用抗生素之前进行采血。据有关资料统计，欧美地区国家

大约有30％～40％患者在最初血培养时，已开始抗生素治疗，而在许多亚洲国家，这个百分率会更高。因树脂可吸附血液标本中的抗生素，所以应使用含有树脂的血培养瓶，以提高阳性率的检出。（2）采集部位：生物化学检验的血液标本，最常从肘静脉取血，压脉带压迫时间不宜过长，不能太紧。应用压脉带的目的是增加静脉局部充血，利于穿刺。如果压脉带压迫时间超过1min，可是局部血氧含量降低，乳酸增加，pH下降，同时被结扎肢体血液浓缩，血中蛋白质等大分子浓度增加。因此应尽量缩短压脉带压迫时间。在静脉滴注时不宜在三通管或同侧取血，而应在对侧肢体取血，这样可获得真实的分析结果。（3）防止溶血：造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁；穿刺不顺利损伤组织过多；加入抗凝管后剧烈振荡混匀等，这些因素均可造成红细胞破裂，发生溶血。由于很多检验指标红细胞中比血浆中高很多，所以溶血可以使血清钾、无机磷、LDH等含量显著升高。所以在取血时，应尽量避免一些不良习惯，防止溶血的发生。（4）抗凝剂的使用：凡需用全血或血浆作检验时，要根据不同的检验项目选择不同的抗凝剂。乙二胺四乙酸（EDTA）盐适用于血细胞记数和细胞形态学检查；枸橼酸钠适用于凝血功能（抗凝剂与血液的比例应为1：9）、红细胞沉降率的测定（抗凝剂与血液的比例应为1：4）；肝素适用于血氨、血气分析等生物化学检验的测定。（5）标本送检：血液标本采集后应及时送检，标本久置可导致：全血标本在室温的情况下，血糖浓度每小时可下降5％～7％（约10mg/dl）左右；血气分析应在30min内检测，否则会因为全血中RBC的代谢，不断地耗O2产生CO2 ，致使pH、PO2

降低PCO2升高，而影响结果的准确性［3］。

3.2. 2 尿液标本采集(1)容器：收集尿液的容器必须清洁干燥，最好使用一次性容器，做培养时，应使用无菌容器。(2)标本的收集：尿液标本要防止月经血、阴道分泌物、精液、前列腺液、粪便等异物的混入。标本收集后应立即送检，以免尿液内化学物质发生变化。尿液生物化学检验多用24h尿。收集的方法是：第一天将尿排尽弃去，并记录这次排尿时间，从计时开始，以后排除的尿液均收集到结净有盖的容器内，直至第2天同一时间止。(3)标本的防腐：尿液容易生长细菌，如不能及时检验或需留取大量标本时（如24h尿），应置冰箱内保存或加入防腐剂。防腐剂应在收集了一次尿液时加入。防腐剂有多种，应根据检验项目做适当的选择。常用的防腐剂有：甲苯（或二甲苯）适用于尿液生化检测，如总氮、尿素、肌肝、尿酸、氯化物、钾、钠的测定，加入量一般为10ml；盐酸常用于肾上腺素、去甲肾上腺素、儿茶酚胺、钙等的测定，由于会产生尿酸盐沉淀，因此不适于尿酸的测定，加入量一般为10ml；麝香草酚可抑制尿内细菌生长，常用于尿液浓缩结核菌检查和尿沉渣Addis记数，因可引起蛋白假阳性，故不适合尿蛋白测定。

3.2.3 胸腹水、脑脊液（CSF）采集(1)胸腹水采集：为防止标本采集时出现凝块、细胞变性、细菌破坏自溶等，常规及细胞学检查宜用EDTA-K2 抗凝，生化标本宜用肝素抗凝。

(2)脑脊液采集：CSF分别收集于3个无菌瓶中，每瓶1～2ml，第1瓶作细菌检查，第2瓶作化学或免疫检查，第3瓶作细胞计数，采集的CSF应尽量避免凝固和混入血液。标本采集后要立即送检。久置可导致细胞计数不准确，影响分类计数，含糖量降低，影响细菌检出率。

3.2.4 粪便标本采集粪便标本采集是否正确直接影响检查结果的准确性，通常采用自然排出的粪便，无法自行排便时，可经肛门指诊或采便管拭取标本，灌肠或服油类泻剂的粪便不适于做检查。取材要求有：(1)标本要新鲜，容器要洁净，不得混有尿液。(2)选取标本时

要取含有黏液、脓血等病变成分处的粪便。(3)查痢疾阿米巴滋养体时，排便后立即从脓血和稀软部分取材，送检时应注意保温。(4)做化学法隐血试验时，应于试验前3天禁食肉类、含动物血食物，禁服铁剂及维生素C。

3.2. 5 痰液标本采集主要的采集方法有：自然咳痰、气管穿刺吸取、经支气管镜抽取。在标本采集时多留取清晨醒来的第1口痰，要求患者先用清水漱口数次，然后用力咳出气管深处的痰。采集后必须立即送检，以免细胞与细菌自溶破坏，影响细胞学检查和细菌检出率。

3.3 临床检验目的是为临床提供准确、可靠的实验诊断依据，更好地为患者服务。因此，为确保检验结果的准确性和客观性，临床医护人员应更多的了解和学习标本采集的注意事项，加强基本功和理论知识的培训，加强责任心。采集标本时应亲力亲为，以严肃认真的态度对待检验标本的采集。增加医患之间的沟通，留标本时为其讲解并要求患者予以配合和服从，减少对检验结果的影响因素，提高检验结果的质量。

怎样正确采集血液检验标本

1. 患者准备①精神因素：紧张、情绪激动可影响神经 内分泌功能，致使白细胞、血糖、乳酸、非酯化脂肪酸升高，在采集血液标本前应向患者解释采集标本的目的、方法及注意事项，克服患者的紧张情绪。②饮食：某些血液成分受饮食影响较大，护士在标本采集前要告诉患者明确的禁食时间及禁食内容，以避免饮食因素影响检验结果的准确性。如血脂检测至少两周内保持一般饮食，患者应在采血前24 h禁食高脂肪饮食，12 h禁食空腹采血，且前1 d晚禁止大量饮酒。

③运动：强烈的肌肉运动明显影响体内代谢，丙酮酸、乳酸可升高，对红细胞、白细胞、血红蛋白的测定明显影响，可造成假性升高。住院患者可在起床前抽血，匆忙起床到门诊的患者应至少休息15 min后采血。④药物：药物对血液成分的影响是一个十分复杂的问题。采集标本应尽量选择在未使用各种药物前。如患者长期服用药物，在选择与解释结果时，必须考虑药物的影响。

2.采集过程

2.1 采集时间理想的采集血标本的时间是早晨7∶00～8∶00，血培养标本应在发热初期或发热高峰期采血。一般要求选择在应用抗生素治疗前采血，对已用药而不能终止的患者，也应在下次用药之前采血。复检标本采集时间应尽量选择上次检查的同一时间进行。

2.2 采血部位和数量成人首选肘部血管：正中静脉、贵要静脉、头静脉等;婴幼儿可采用大隐静脉、颈外静脉、股静脉等。凡用血量较少的检查，一般从手指取血，成人以左手无名指为宜，婴儿可从拇指或足跟部采血，一般不主张采用耳垂血，其原因是由于耳垂部的毛细血管循环比手指差且受外界气温影响较大，采血条件不及手指恒定，白细胞、红细胞、血红蛋白含量等数值的测定均高于手指血及静脉血。禁止在静脉输液的同侧肢体采集血标本。采集血液标本时应根据检验目的及要求，准确采集标本量。

2.3 采集血液标本的真空采血管与容器注射器应干燥，针头不能过细，分装血液标本时应取下针头,将血液沿试管壁缓慢推入试管或其他相应容器内。对于抗凝的标本，要温和地使血液与抗凝剂混匀，防止剧烈摇动使细胞损伤。

2.4 采集标本的技术要求采血时止血带捆扎时间在1 min之内，禁止拍打手臂或反复握拳屈肘及反复穿刺等，否则会使血钾上升0.8 mmol/L。采血部位定位和进针准确，禁止针尖在静脉中反复穿刺，否则易造成血肿和血样溶血。注射器和针头连接不紧，采血时空气进入产生泡沫;皮肤穿刺时，为增加血流而挤压穿刺部位或从皮肤上直接吸血以及抽血速度过快都可造成溶血。

2.5 采集标本时患者的体位坐位或卧位对检验结果无大的差异;站立时，血液中成分浓缩，蛋白、酶类、钙、镁等结果偏高。

2.6 标本的送检时间血标本采集后应尽快送检，时间最好不超过2 h。血沉应于2 h内测定完毕，否则血沉减慢。心肌损伤标志物检验要求总周转时间小于1 h。血气分析、细菌培养标本等应该在30 min内测定。血糖测定应于半小时内送检，因为采血后室温放置，由于糖酵解作用，每小时可降低0.05 mmol/L,夏季采血后血糖将以每小时7%～10%的速度分解，标本留置时间过久易影响血糖的检验结果[3]。

3 .送检要求①建立标本传送系统，加强对送检人员的培训、教育及监督。②做好标本交接手续，减少标本丢失、损坏时人为地复制或补充标本，以虚假的标本影响检验标本的真实性。③确保运送过程的规范性及标本安全性。

4 对护士的要求①护士在血液标本采集过程中，应具有高度的责任心。②严格按照操作规程采集，严格执行查对制度，强化质量意识，最大限度确保血液标本的分析前质量。③采集血液标本前应认真核对床号、姓名、标本的需求量、一次性真空采血管的有效期、容器是否符合、真空采血管有否漏气，确保无误后方可采集标本。④采集的血液标本在标明床号、姓名等标记后还应注明采集的时间，在规定的时间内及时送检以确保检验标本的准确性。