贴壁细胞的免疫荧光染色方法

贴壁细胞的免疫荧光染色方法
贴壁细胞的免疫荧光染色方法

贴壁细胞的免疫荧光染色方法

Materials:

1. PBS solution

2. 4% Paraformaldehyde (PFA fixative):

Dissolve 4g paraformaldehyde in 100ml PBS solution, stir at 70℃to dissolve;

3. PBS-T solution: (0.1% Triton X-100 in PBS solution)

4. PBS-B blocking solution: (4% BSA in PBS solution)

5. Primary antibody: Dilute with PBS-B solution, dilution factors should refer to manual, or, test from 1:50~200, should be more concentrate than application in Western blot;

6. Secondary antibody: Dilute with PBS-B solution, dilution factors should refer to manual

Procedure:

1. Cultured cells, let it attach to the coverslips in 6-well plate;

2. Remove medium, rinse with PBS twice;

3. Add 2ml 4% paraformaldehyde, incubate at room temperature for 20 minutes;

4. Rinse with 2ml PBS three times, rinse for 5 minutes every time;

5. Permeabilize cells with 2ml PBS-T solution at 4?C for 10 minutes;

6. Remove PBS-T solution, rinse cells with PBS for 5 minutes at room temperature;

7. Block non-specific interaction with PBS-B solution at 37?C for 30 minutes;

8. Add primary antibody solution, incubate at 4?C overnight;

9. Remove primary antibody solution, wash with PBS for 5 minutes;

10. Add secondary antibody solution, incubate at room temperature for 1 hour;

11. Wash with PBS three times, 5 minutes each;

12. Add anti-fade DAPI solution if needed;

13. Observation.

细胞免疫荧光步骤

1.细胞爬片;

2.4%多聚甲醛固定10min(固定细胞器用预冷的70%甲醇+30%丙酮);

3.PBS漂洗5min;

4.0.5% Triton 穿孔15min(丙酮固定法不用透化处理);

5.PBS漂洗2次,每次5min;

6.1%BSA封闭30min;

7.加入1%BSA稀释的一抗,于37℃杂交2h;

8.PBS漂洗2次,每次5min;

9.加入1%BSA稀释的二抗,于37℃杂交1h;

10.PBS漂洗2次,每次5min;

11.5ug/ml DAPI染色2min;

12.抗淬灭封片剂封片。

抗淬灭封片剂:

2.5% DABCO (w/v)

50mM Tris(pH8.0)

90%甘油

作为荧光显微镜使用:

(1)先关闭荧光通道,再打开荧光激发器电源,等待15分钟。

(2)等待期间,打开显微镜光源,找到需要观察的样品,选用合适的物镜,调整焦距。(3)关闭显微镜光源,打开荧光通道。

(4)需要图片,要把镜体上的相应拉杆拉到绿线位子。按下相应附件上的照相按扭。

作为荧光显微镜使用:

(1)先关闭荧光通道,再打开荧光激发器电源,等待15分钟。

(2)等待期间,打开显微镜光源,找到需要观察的样品,选用合适的物镜,调整焦距。

(3)关闭显微镜光源,打开荧光通道。

(4)需要图片,要把镜体上的相应拉杆拉到绿线位子。按下相应附件上的照相按扭。

细胞免疫荧光

细胞爬片

4%多聚甲醛固定10min

(固定细胞器用预冷的70%甲醇+30%丙酮)

PBS漂洗5min

0.5% Triton 穿孔15min

(丙酮固定法不用透化处理)

PBS漂洗2次,每次5min

1%BSA封闭30min

加入1%BSA稀释的一抗,于37℃杂交2h

PBS漂洗2次,每次5min

加入1%BSA稀释的二抗,于37℃杂交1h

PBS漂洗2次,每次5min

5ug/ml DAPI染色2min

抗淬灭封片剂封片

2.5% DABCO (w/v)

抗淬灭封片剂50mM Tris(pH8.0)

90%甘油

0.25g DABCO

9ml甘油

0.5ml 1M Tris(Ph8.0) 70℃溶解,-20℃保存

0.5ml ddH2O

2005-07-25 20:25

免疫荧光第一步的步骤几注意事项

1.首先是玻片的处理:泡酸去污, 冲洗, 晾干, 泡纯酒精脱脂, 蒸馏水洗(此时要用镊子夹着洗), 晾干备用.

2.不知道你做的细胞是贴壁比较好的细胞比如干细胞,还是贴壁不大好的细胞比如神经元

前者的话可以不用多聚赖氨酸包被玻片,后者爬片之前要包被多聚赖氨酸以免洗片时细胞掉片3. 固定,我用的是预冷纯丙酮固定15分钟(应为丙酮有毒,操作的时候小心些),这步应该注意:丙酮很容易挥发,但又要保证固定期间不能干片,所以要多滴加丙酮,其间用盖子盖住,这一步不要在6孔板内进行,因为丙酮会将其熔化.

4. 不知道你的一抗是在胞浆表达还是在胞核表达

如果在胞浆表达,可以不用0.01%的TRITON X-100渗透(我前几次用了TRITON,结果胞核也表现出很强的荧光), 当然,如果一抗是在胞核内表达要用TRITON 渗透15分钟

5. 5%的正常山羊血清或是5%的BSA封闭,注意这一步不要洗,只是甩掉多余的封闭液.

6. 加一抗,根据你所做抗体的需求稀释,一般是先将稀释液加到EP管里,后加一抗.(一抗在吸出来之前要离心10-20秒),一抗的量要多加些,也是为了避免干片.

7. 孵育抗体:最好是4度冰箱过夜,这个过夜不是简单的过夜,一般要达14-16个小时,此时要将6孔板做成湿盒,目的是妨干片.在孵育期间不要随意搬动,以免抗体流失.

注意,PBS液的PH值要调在7.4左右

孵育一抗不能干片,孵育一抗时间要久;其四,多余的封闭液不能洗掉,只能甩干

2005-07-25 20:51

总之,首先,应该注意的是片子有没进行了脱脂处理;其二,注意洗片用PBS的PH植要在7.4左右;其三,固定,孵育一抗不能干片,孵育一抗时间要久;其四,多余的封闭液不能洗掉,只能甩干;其五,要注意避光

说了这么多,嘿嘿,最重要的一点是:你以后阐述问题的时候请具体一点,不要让回答问题的人遍地撒网,好累呀!!!

2009-01-23 10:50

首先用16孔板没有任何问题

分析没有荧光的结果

1. 固定最好用4%多聚甲醛30min

2. 一抗孵育时间太短我的经验37度2小时或者4度过夜效果更好

3. 二抗孵育时间是多少?建议37度2--3小时我也有做过5个小时的

最后你用的是那种ccd的荧光显微镜吗?有的时候染的不好镜下看不到荧光但是是可以照出来的!!

Fix cells in 2% formaldehyde in PBS/pH 7.4 for 15 min. at 20oC. 2% formaldehyde is made up fresh prior to use by dissolving the appropriate amount of EM grade paraformaldehyde (Prill form, from Electron Microscopy Sciences) in PBS and heating on a hot plate in the hood (setting of 5-6) until the aldehyde goes into solution. Keep the bottle cap loosened so that pressure does not build up. Cool down to 20oC and pH to 7.4. Alternatively, cells may be fixed in 100% methanol at -20oC for 3 minutes. If methanol fixation is used skip to step 4.

Wash in PBS 3 X 10 min.

Permeabilize in 0.2% Triton X-100 plus 1% normal goat serum (NGS) in PBS/pH 7.3 for 5 minutes on ice.

Wash in PBS + 1% NGS 3 X 10 min.

Incubate in the appropriate concentration of primary antibody for 1 hour at room temp. in a humidified chamber. If using 22mm X 22mm square coverslips, 30 ul of diluted antibody is placed on the coverslip and the coverslip is inverted onto a glass slide. The slide is then placed in the humidified chamber which is incubated at room temp.

Wash in PBS + 1% NGS 3 X 10 min.

Incubate in secondary antibody (FITC or Texas Red conjugated) at a dilution of 1:50 for 1 hour in a humidified chamber at room temp.

Wash in PBS 4 X 10 min.

Mount coverslip with a drop of mounting medium (see Fluorescence Mounting Medium Protocol) and seal coverslip with clear nail polish to prevent drying and movement under the microscope.

liguofan wrote:

多聚甲醛固定[24孔中加多少啊?],

0.5-1.0 ml;

liguofan wrote:

加1抗,[不用湿盒,如何防干燥?用个大饭盒,加上水,盖上盖,过夜?]

parafilm覆盖,或将coverslips倒扣在载玻片上后照你的方法,另外饭盒里可以放上纱布;

liguofan wrote:

封片[如何做?]

如果立即观察、拍照,可以用PBS封片,若放置一定时间则请用水溶性封固剂封片并置4度保存。

背景非特异荧光较多, 加一抗或二抗前是否有必要加用动物血清温育一遍?

我们用1%BSA封闭半个小时。

能否直接在6孔板或者12孔内操作?

可以的,选择合适的盖玻片。我们一直这么做。

是否需要封片?用什么为好?

直接观察,不用封。如果要封,可用香柏油一滴。

若在培养箱内,是否还有必要用湿盒?

不用也可以。

玻片用95%浸泡多久,泡后还用二蒸水冲净再高压?

95%的酒精泡1-2个小时,三蒸水冲净,用纱布包好装饭盒高压。

荧光素标的二抗及一抗能用PBS配吗?(0.02M)

可以。

每次试验时,需设置以下三种对照:

(1)阳性对照:阳性血清+荧光标记物

(2)阴性对照:阴性血清+荧光标记物

(3)荧光标记物对照:PBS+荧光标记物

parafilm或coverslips起的作用:可以减少抗体用量(穷啊,没办法),还可以减小撒开来的概率;

封片用PBS,还是甘油,即刻观察、拍照情况下无所谓的,至于量吗,尽量少就是了,但前提是封好片别出现气泡哦(要练的)。

1、将爬有细胞的盖玻片,PBS洗3次,每次3分钟。

2、加入4%多聚甲醛,固定10分钟,PBS洗3次。

3、用含0.2%TritonX-100 的PBS溶液透化固定后的细胞3分钟,PBS洗涤细胞3次。

4、在Parafilm膜上滴加5%BSA封闭液50μl,将盖玻片有细胞的一面向下盖在封闭液上,室温封闭20分钟。甩去多余液体,不洗。

5、在Parafilm膜上加一抗,将盖玻片有细胞的一面向下盖在抗体上,置湿盒中于37℃孵箱中孵育2小时。阴性对照用PBS代替一抗。

6、PBS洗3次, 每次5分钟。

7、在Parafilm膜上加二抗50,将盖玻片有细胞的一面向下盖在二抗上,37℃孵育30分钟。

8、PBS洗3次, 每次5分钟。

9、在Parafilm膜上加SABC试剂50μl,将盖玻片有细胞的一面向下盖在其上,37℃静置20分钟。

10、PBS洗4次, 每次5分钟。

11、将新鲜配制的DAB试剂加入样品。镜下控制反应时间,一般在5~10分钟之间。蒸馏水漂洗数次终止反应。、

呵呵,所谓的Parafilm膜就是咱们常用的封口胶,用来做这个也很好用。把盖玻片倒扣在封口胶上,再放在湿盒里孵育的话,浸润较为均匀,所用试剂也较少,较果不错。我们实验室一直这样做。

Dear Pro. John M. Koomen:

I'm a teacher in Nanjing Medical University,china. I'm very intrested in your the research paper published in JBC 2010 and titled "IKK epsilon phosphorylation of estrogen receptor alpha Ser-167 and contribution to tamoxifen resistance in breast cancer" .You have done a good job.But I can only get the abstract, would you please send me the full text by e-mail in your free time? Thank you!

Best wishes!

Ting Wang

免疫荧光操作步骤及注意事项

免疫荧光操作步骤及注意事项 免疫荧光技术是在免疫学、生物化学和显微镜技术的基础上建立起来的一项技术。它是根据抗原抗体反应的原理,先将已知的抗原或抗体标记上荧光基团,再用这种荧光抗体(或抗原)作为探针检查细胞或组织内的相应抗原(或抗体)。利用荧光显微镜可以看见荧光所在的细胞或组织,从而确定抗原或抗体的性质和定位,以及利用定量技术(比如流式细胞仪)测定含量。 紫外光激发荧光物质放射荧光示意图 免疫荧光实验的主要步骤包括细胞片制备、固定及通透(或称为透化)、封闭、抗体孵育及荧光检测等。细胞片制备(通俗的说法是细胞爬片)是免疫荧光实验的第一步,细胞片的质量对实验的成败至关重要,原因很简单,如果发生细胞掉片,一切都无从谈起。这一步关键的是玻片(Slides or Coverslips)的处理以及细胞的活力,有人根据成功经验总结出许多有益的细节或小窍门,非常值得借鉴。固定和通透步骤最重要的是根据所研究抗原的性质选择适当的固定方法,合适的固定剂和固定程序对于获得好的实验结果是非常重要的。免疫荧光中的封闭和抗体孵育与其它方法(如ELISA或Western Blot)中的相同步骤是类似的,最重要的区别在于免疫荧光实验中要用到荧光抗体,因此必须谨记避光操作,此外抗体浓度的选择可能更加关键。最后需要注意的是,标记好荧光的细胞片应尽早观察,或者用封片剂封片后在4?或-20?避光保存,以免因标记蛋白解离或荧光减弱而影响实验结果。

由于操作步骤比较多,同时在分析结果时无法像WB那样可以根据分子量的大小区分非特异性识别,所以要得到一个完美的免疫荧光实验结果,除了需要高质量的抗体,以及对实验条件进行反复优化外,还必须设立严谨的实验对照。总之,免疫荧光实验从细胞样品处理、固定、封闭、抗体孵育到最后的封片及观察拍照,每步都非常关键,需要严格控制实验流程中每个步骤的质量,才能最终达到你的实验目的。 基本实验步骤: (1) 细胞准备。对单层生长细胞,在传代培养时,将细胞接种到预先放置有处理过的盖玻片的培养皿中,待细胞接近长成单层后取出盖玻片,PBS洗两次;对悬浮生长细胞,取对数生长细胞,用PBS离心洗涤(1000rpm,5min)2次,用细胞离心甩片机制备细胞片或直接制备细胞涂片。 (2) 固定。根据需要选择适当的固定剂固定细胞。固定完毕后的细胞可置于含叠氮纳的PBS中4?保存3个月。PBS洗涤3×5 min. (3) 通透。使用交联剂(如多聚甲醛)固定后的细胞,一般需要在加入抗体孵育前,对细胞进行通透处理,以保证抗体能够到达抗原部位。选择通透剂应充分考虑抗原蛋白的性质。通透的时间一般在5-15min.通透后用PBS洗涤3×5 min. (4) 封闭。使用封闭液对细胞进行封闭,时间一般为30min. (5) 一抗结合。室温孵育1h或者4?过夜。PBST漂洗3次,每次冲洗5min. (6) 二抗结合。间接免疫荧光需要使用二抗。室温避光孵育1h.PBST漂洗3次,每次冲洗5min后,再用蒸馏水漂洗一次。 (7) 封片及检测。滴加封片剂一滴,封片,荧光显微镜检查。 (一)细胞准备 用于免疫荧光实验的细胞可以是直接生长在盖玻片上的贴壁细胞,也可以是经过离心后涂片的悬浮细胞或者是将取自体内的组织细胞悬液离心后涂片。贴壁良好

细胞免疫荧光步骤

细胞免疫荧光步骤集团文件发布号:(9816-UATWW-MWUB-WUNN-INNUL-DQQTY-

方法一: 1.首先需要把细胞养在玻璃片上(悬浮细胞需要用多聚赖氨酸包被过的玻 璃片) 2.然后在4%PFA里面室温下固定30分钟,PBS洗两次,0.1% TX-100室 温下作用1-2分钟使细胞膜通透。 3.接下来进行荧光标记,需要在一个大的容器(面积大,扁平状的,比如 大的培养皿)里面,放一张用水打湿的滤纸,以保持湿度。 4.剪一片合适大小的parafilm,在上面滴上稀释在1%BSA/TBS中的一抗 (稀释倍数依具体抗体而定),每个玻璃片30ul足够,把玻璃片盖在上面(细胞面朝下),室温下孵育30分钟,然后在PBS里洗三次。 5.接下来二抗孵育步骤同上。 6.最后,在载玻片加上mounting medium(大约每个玻璃片加10ul),把 玻璃片放上去(细胞面朝下),37度30分钟,然后就可以在荧光显微镜下观察了。 7.抗体很重要,不能有非特异性结合。你可以先做WB检测一下你的抗 体,看看有没有杂带。 8.双标的话,可以把两个一抗一起加或者分别标记两次(可以都试一下看 看那种方法合适)。如果一个抗体需要二抗,一个是直接荧光标记的,可以把荧光标记的那个和另外一个的二抗一起加。 方法二: 1.选取一抗时要来源于两种不同的动物,我用的是来源于rabbit和rat 的抗体,二抗则是不同荧光信号标记的,我用的是donkey anti- rabbit-FITC(绿)和donkey anti-rat-Tex-Red(红)。 2.我的做法是两种一抗同时孵育,然后两种二抗同时孵育。抗体浓度、孵 育时间要仔细摸索,我感觉一抗4度孵育过夜比较好,背景比较清晰。 3.我的阳性对照用的是阳性组织切片,阴性对照则分别是家兔和大鼠的 IgG,荧光标记物对照是PBS+荧光标记物。 4.封闭血清与二抗来源动物一致,我用的是10%的正常donkey血清。 5.其余步骤同一般免疫荧光单标操作。 方法三:

细胞免疫荧光步骤

方法一: 1.首先需要把细胞养在玻璃片上(悬浮细胞需要用多聚赖氨酸包被过的玻璃片) 2.然后在4%PFA里面室温下固定30分钟,PBS洗两次,0.1% TX-100室温下作用1-2分钟 使细胞膜通透。 3.接下来进行荧光标记,需要在一个大的容器(面积大,扁平状的,比如大的培养皿)里面, 放一张用水打湿的滤纸,以保持湿度。 4.剪一片合适大小的parafilm,在上面滴上稀释在1%BSA/TBS中的一抗(稀释倍数依具体 抗体而定),每个玻璃片30ul足够,把玻璃片盖在上面(细胞面朝下),室温下孵育30分钟,然后在PBS里洗三次。 5.接下来二抗孵育步骤同上。 6.最后,在载玻片加上mounting medium(大约每个玻璃片加10ul),把玻璃片放上去(细 胞面朝下),37度30分钟,然后就可以在荧光显微镜下观察了。 7.抗体很重要,不能有非特异性结合。你可以先做WB检测一下你的抗体,看看有没有杂带。 8.双标的话,可以把两个一抗一起加或者分别标记两次(可以都试一下看看那种方法合适)。 如果一个抗体需要二抗,一个是直接荧光标记的,可以把荧光标记的那个和另外一个的二抗一起加。 方法二: 1.选取一抗时要来源于两种不同的动物,我用的是来源于rabbit和rat的抗体,二抗则是不 同荧光信号标记的,我用的是donkey anti-rabbit-FITC(绿)和donkey anti-rat-Tex-Red(红)。 2.我的做法是两种一抗同时孵育,然后两种二抗同时孵育。抗体浓度、孵育时间要仔细摸索, 我感觉一抗4度孵育过夜比较好,背景比较清晰。 3.我的阳性对照用的是阳性组织切片,阴性对照则分别是家兔和大鼠的IgG,荧光标记物对 照是PBS+荧光标记物。 4.封闭血清与二抗来源动物一致,我用的是10%的正常donkey血清。 5.其余步骤同一般免疫荧光单标操作。 方法三: 1.片子的制作:可以做细胞爬片,细胞甩片,还有直接在24well/12well/96well中直接染色 2.细胞爬片的制作:直接购买公司的已经处理过的细胞爬片,要是自己制作的话,就用无菌 的盖玻片用多聚赖氨酸处理后让细胞自己爬片

细胞免疫荧光步骤

创作编号: GB8878185555334563BT9125XW 创作者:凤呜大王* 方法一: 1.首先需要把细胞养在玻璃片上(悬浮细胞需要用多聚赖氨酸包被过的玻璃片) 2.然后在4%PFA里面室温下固定30分钟,PBS洗两次,0.1% TX-100室温下作用1 -2分钟使细胞膜通透。 3.接下来进行荧光标记,需要在一个大的容器(面积大,扁平状的,比如大的培养皿) 里面,放一张用水打湿的滤纸,以保持湿度。 4.剪一片合适大小的parafilm,在上面滴上稀释在1%BSA/TBS中的一抗(稀释倍数 依具体抗体而定),每个玻璃片30ul足够,把玻璃片盖在上面(细胞面朝下),室温下孵育30分钟,然后在PBS里洗三次。 5.接下来二抗孵育步骤同上。 6.最后,在载玻片加上mounting medium(大约每个玻璃片加10ul),把玻璃片放上 去(细胞面朝下),37度30分钟,然后就可以在荧光显微镜下观察了。 7.抗体很重要,不能有非特异性结合。你可以先做WB检测一下你的抗体,看看有没 有杂带。 8.双标的话,可以把两个一抗一起加或者分别标记两次(可以都试一下看看那种方法 合适)。如果一个抗体需要二抗,一个是直接荧光标记的,可以把荧光标记的那个和另外一个的二抗一起加。 方法二: 1.选取一抗时要来源于两种不同的动物,我用的是来源于rabbit和rat的抗体,二抗则 是不同荧光信号标记的,我用的是donkey anti-rabbit-FITC(绿)和donkey anti-rat-Tex-Red(红)。 2.我的做法是两种一抗同时孵育,然后两种二抗同时孵育。抗体浓度、孵育时间要仔 细摸索,我感觉一抗4度孵育过夜比较好,背景比较清晰。

细胞免疫荧光实验步骤

细胞免疫荧光实验步骤 细胞免疫荧光实验步骤 简单实验步骤如下: 1.漂洗血清蛋白H7.2-7.4 37度 PBS 2小时. 2.-20度甲醇固定20分钟后,自然、干燥 10分钟 3.PBS洗净:3min*3 4.1%Triton:25min-30min.配成50ultriton+5mlpBS 5.PBS洗净:2*5min 6.羊血清封闭:37度,20分钟 7.一抗,4度过夜,一般要大于18小时或者37度1-2小时 8.4度PBS洗净,3min*5次 9.二抗37度小于一小时 10.37度PBS洗净,3*5min 凉干封片(封闭液PH8.5) 活细胞免疫荧光技术-流式细胞仪标本的制备 (一)制备活性高的细胞悬液(培养细胞系、外周血单个核细胞、 胸腺细胞、脾细胞等均可用于本法) ↓ 用10%FCS RPMI1640调整细胞浓度为 5×106~1×107/ml ↓ 取40μl细胞悬液加入预先有特异性McAb(5~50μl) 的小玻璃管或塑料离心管,再加50μl 1∶20(用DPBS 稀释)灭活正常兔血清 ↓4℃ 30min 用洗涤液洗涤2次,每次加洗涤液2ml左右 1000rpm×5min

↓ 弃上清,加入50μl工作浓度的羊抗鼠 (或兔抗鼠)荧光标记物,充分振摇 ↓4℃ 30min 用洗涤液洗涤2次,每次加液2ml左右 1000rpm×5min ↓ 加适量固定液(如为FCM制备标本,一般加入 1ml固定液,如制片后在荧光显微镜下观察, 视细胞浓度加入100~500μl固定液) ↓ FCM检测或制片后荧光显微镜下观察 (标本在试管中可保存5~7天) (二)试剂和器材 1. 各种特异性单克隆抗体。 2. 荧光标记的羊抗鼠或兔抗鼠第二抗体,灭活正常兔血清。 3. 10% FCS RPMI1640, DPBS、洗涤液、固定液(见附录)。 4. 玻璃管、塑料管、离心机、荧光显微镜等。 (三)注意事项 1. 整个操作在4℃下进行,洗涤液中加有比常规防腐剂量高10倍的NaN 3,上述实验条件是防止一抗结合细胞膜抗原后发生交联、脱落。 2. 洗涤要充分,以避免游离抗体封闭二抗与细胞膜上一抗相结合,出现假阴性。 3. 加适量正常兔血清可封闭某些细胞表面免疫球蛋白Fc受体,降低和防止非特异性染色。 4. 细胞活性要好,否则易发生非特异性荧光染色。 附: 1. DPBS (×10, 贮存液)

免疫荧光实验步骤大全(精华版)

免疫荧光染色大全(精华版) 组织免疫荧光法 (1)将待染组织切片置于65摄氏度恒温箱烤片1h,脱蜡 (2)1×PBS 洗涤 3 次,每次 5min。 (3)0.5%Triton X-100(PBS 配制)室温通透 10min (4)1×PBS 洗涤 3 次,每次 5min。 注意:步骤(3)和(4)用于检测细胞核抗原,细胞膜抗原直接跳过此步骤(5)抗原修复:使用柠檬酸盐缓冲液进行抗原修复,微波炉微波高火3min,后转成低火 15min。 (6)1×PBS 洗涤 3 次,每次 5min。 (7)3% H2O2,室温孵育30min,目的是灭活内源性过氧化物酶。 (8)1×PBS 洗涤 3 次,每次 5min。 (9)使用1% BSA进行室温封闭 30min,用于封闭非特异性抗原表位。 (10)按抗体推荐使用说明书孵育特异性一抗,4°C 湿盒中静置过夜。(11)次日取出切片,室温下复温 30min。 (12)1×PBS 洗涤 3 次,每次 5min。 (13)选取相应的免疫荧光二抗滴加于血管组织上,37°C避光孵育30min。(14)1×PBS洗涤 3 次,每次 5min。 (15)避光条件下,DAPI 染液染细胞核,浓度和时间根据试剂说明书使用(16)1×PBS洗涤 3 次,每次5min。 (17)在血管组织上滴加抗荧光淬灭剂进行封片。 (18)使用荧光显微镜进行观察拍照。 贴壁细胞免疫荧光法 (1)在培养板中接种的带染色的细胞爬片用PBS泡洗3次×3min (2)4%多聚甲醛固定细胞爬片15min (3)1×PBS洗涤 3 次,每次5min。 (4)0.5%Triton X-100(PBS配制)室温通透10min (5)1×PBS洗涤 3 次,每次5min。 (6)1%BSA室温封闭30min (7)弃掉封闭液,细胞爬片滴加适量稀释至适当比例的一抗,4℃孵育过夜(8)1×PBS洗涤 3 次,每次5min。 (9)细胞爬片滴加稀释至适当比例的荧光二抗 (10)1×PBS洗涤 3 次,每次5min。 (11)DAPI染细胞核,浓度和时间根据试剂说明书使用 (12)1×PBS洗涤 3 次,每次5min。 (13)用抗荧光淬灭剂封片 (14)荧光显微镜下观察采集图像 细胞免疫荧光(悬浮细胞方法一) (1)收集悬浮细胞,细胞在冰浴中冷却,然后用台式离心机于4℃以800 g 离心5 min,吸去培养液并以4℃ 1×PBS重悬细胞。

细胞免疫荧光染色

细胞免疫荧光染色 1.盖玻片处理:用前1天用纱布擦净灭菌,放入6孔板。 2.接种细胞:较低密度为适宜,约2000-10000个/孔(根据细胞生长状态决定,常用 5000个/孔),2ml(浓度为2500/ml) 3.24h后细胞贴壁,根据需要同步16-18h,干预处理,细胞融合60-70%时染色最 佳 4.37度PBS洗涤,3ml/孔,贴边加(可将6孔板倾斜,加完样在放正以防冲掉细胞, 0.5min。室温PBS也可,但4度禁止,否则细胞易皱缩。 5.固定:4%多聚甲醛(1ml),先常温稳定5min,然后4度,10min,(可放在饭盒内)。 6.吸掉多聚甲醛,迅速加PBS 5ml/孔,洗涤5min×3次,镜下观察,细胞形态如前。 7.透化:0.1%-4%triton×-100,1ml/孔,室温透化5min(triton是去污剂,目的是 将脂质成分破坏,如细胞膜、核膜等,故不影响实验结果,可不用洗涤) 8.5%BSA(滤过)室温封闭至少20min(可配制含5%BSA和0.2%triton的混合液,将 两步合成一步)风干 9.用5%BSA将一抗1:50或1:100(常用)稀释至EP管200ul/玻片 10.将纱布垫在饭盒中,去离子水润湿纱布,准备封口膜。 11.吸去BSA,迅速滴加一抗,从玻片1中央滴加,液体会自行扩散至全片。为保持细胞 湿润,将6孔板封好,放入饭盒,37度孵育1-2h(有利于抗体结合),再室温3-4h。(或室温2h后,4度过夜)注意勿晃动6孔板,防止抗体不均或从玻片洒出。 12.PBS洗涤10min*3次(可用western的摇床) 13.用5%BSA将二抗1:50稀释(得到的实际浓度为1:100,因二抗本身已经被甘油 稀释1倍),也可1:200稀释。室温1.5h后可显荧光(放在饭盒里,避光) 14.PBS洗涤10min*3次(可用western的摇床) 15.免疫荧光显微镜观察。泡在2ml的PBS中保存。 16.多聚甲醛: 4度避光保存100ML PBS加4克多聚甲醛,磁力搅拌器加热搅拌,温度控 制在60℃以下,最好用细粉末的多聚甲醛,如仍不溶,滴加NaOH,(1N或0.1N),最后调PH值,7.4左右。 triton:用PBS稀释,常温保存

石蜡切片免疫荧光染色方法

石蜡切片免疫荧光染色方 法 Prepared on 22 November 2020

对于石蜡切片: 1、烤片:60℃ 60分钟 2、脱蜡:二甲苯中Ⅰ脱蜡15分钟→二甲苯Ⅱ脱蜡15分钟→无水乙醇Ⅰ5分钟→无水乙醇Ⅱ5分钟→90%乙醇Ⅰ5分钟→90%乙醇Ⅱ5分钟→70%乙醇5分钟 →蒸馏水5分钟→蒸馏水5分钟。 3、抗原修复:高压修复,事先烧开锅中的水,修复盒中加入l柠檬酸钠,(柠檬酸三钠 3g,柠檬酸 0.4g加入1000ml蒸馏水中),上汽后加热10分钟,关火。修复盒取出,放入装有自来水的瓷缸中缓慢冷却至室温。 2. 去除内源性酶:玻片取出放入湿盒,加3%H 2O2 2 (2ml H 2 O2 2 加入18ml蒸馏 水中,现配现用,避光),室温孵育10分钟,PBS洗3次,每次5分钟。(也可不用去除内源性酶)。 3. 封闭(Blocking) 加10%正常驴血清(原液100ul+900ulPBS,1ml够用30张片子),室温孵育封闭30分钟。如果背景较高,可以4℃封闭过夜。不用洗,用滤纸吸干周边水分。从封闭开始所有的步骤,一定要注意样品的保湿,避免样品的干燥,否则极易产生较高的背景。 4. 一抗孵育(Primary antibody incubation) 参考一抗的说明书,按照适当比例用(10%山羊血清PBS或1%BSA-PBS)稀释一抗。 立即加入稀释好的一抗, 4℃过夜,第二天取出复温45分钟。PBS洗3次,每次5分钟。 5. 二抗孵育(Secondary antibody inucubation) 按照适当比例用稀释荧光标记的二抗,立即加入稀释好的二抗,室温或4℃在侧摆摇床上缓慢摇动孵育一小时。

免疫荧光通用操作规程

免疫荧光通用操作规程 冰冻切片的免疫荧光 1,动物组织直接OCT包埋,或灌流后的组织30%蔗糖溶液4℃过夜后,OCT包埋。-20℃保存3月,-80℃长期保存。请勿保存于液氮。2,冰冻切片机切片至少10um,空气干燥2分钟后,-20℃储存 3,切片从-20取出后,在通风橱放10-30分钟以去除水汽,4%PFA 固定15分钟,或-20℃丙酮固定15分钟置通风橱2小时 4, 1XPBS清洗玻片,3X5min 从此请保持玻片湿润 5,有时,抗原修复3小时会得到更好的结果。为此请:选用稳定的抗原修复方式(真空负压.微波修复.高压修复.隔水加热.电炉加热)…关注修复的温度,时间(抗原修复时在有效的温度范围内所持续的时间),抗原修复液必须遵循自然降温规律,使用足量的抗原修复液…选择不同PH值的修复液(A液枸盐酸缓冲液PH6.0,B液EDTA-Na缓冲液PH8.0,C液枸盐酸缓冲液PH4.5) 6,室温封闭1小时 封闭液:5%BSA+10%二抗种属来源的正常血清in 1xPBS 条件封闭液:1%BSA+3%二抗种属来源的正常血清in 1xPBS(细胞因子,无需封闭的蛋白

7,一抗4℃过夜 请用封闭液稀释一抗 8, 第二天Wash,1XPBS, 2x1min 9,二抗,1:1000 (alexa系列)1:300(dyelight )in封闭液,避光室温1小时 10, Wash,1XPBS, 3x5min 11, DAPI 染核5min, 12,DDW Rinse 13,抗淬灭剂封片,(避免气泡)避光置于通风橱过夜 14,干片后4℃保存 石蜡切片的免疫荧光 1,动物组织取出后经固定-脱水-包埋(见随后操作步骤),制成石蜡包块 2,组织学染色切片厚度2um,免疫荧光染色切片厚度至少6um,切片复水:58℃20min- xylene 2x10min- 100%EtoH2x10min 95%EtoH2x10min- 70%EtoH10min-,DDW5min

免疫荧光染色

荧光免疫染色和DAPI染色实验 1.实验原理 免疫染色的实验原理类似于Western Blotting,两者都是运用抗体的特异性识别作用来显示目的蛋白,但是由于免疫染色需要在原位进行,而且蛋白没有经过富集,因此其实验难度较高。 实验的基本原理是:利用固定剂(通常是甲醛或多聚甲醛)将细胞固定,使得细胞膜的通透性大大增加,并且利用Triton-X-100使得一部分膜蛋白变性,从而使通透性进一步加强。利用正常羊血清封闭,可以令许多蛋白先与血清内的非特异性抗体结合,而特异性的抗体由于动力学的关系可以通过竞争性的反应与目的蛋白结合,这一过程可以保证抗体识别的特异性。二抗可以特异性识别一抗的Fc区域,利用二抗连接不同的荧光基团,就可以在荧光显微镜下观察到不同的荧光,从而显示目的基因的表达情况。 另外,免疫荧光实验由于其较高的敏感性可以显示出基因表达的亚细胞情况(核内,核外,膜上以及一些较大的细胞器上),所以通常被用来作为基因定位的方法。 DAPI的中文名称是4,6-联脒-2-苯基吲哚,是一种常用的荧光染料,其作用机理与溴化乙锭(EB)等染色剂的机理类似:它们与DNA双螺旋的凹槽部分可以发生相互作用,从而与DNA 的双链紧密结合。结合后产生的荧光基团的吸收峰是358nm而散射峰是461nm,正好UV (紫外光)的激发波长是356nm,使得DAPI成为了一种常用的荧光检测信号。 Jagielski M. et. Al在1976年首次运用该技术检测细胞培养中的支原体感染。后来随着技术的进步,该技术被运用于各种微生物的检测、生长监测,胚胎发育过程的检测,细胞周期的检测和各种核定位的实验。 本实验就是利用DAPI染色标记细胞核的位置。 免疫染色实验方法和步骤 免疫染色(immunol staining)包括免疫荧光(immunol fluorescence)、免疫组化(immunol histochemistry)、免疫细胞化学(immunol cytochemistry)等,可以参考如下步骤进行操作。 1. 样品准备(Sample preparation) 对于贴壁细胞: 可以直接用多孔板,例如6孔板、24孔板等,培养细胞,然后到预定时间时进行固定等后续操作。 也可以用洁净的盖玻片,70%乙醇中浸泡后,用无菌的镊子放置到6孔板内,然后用无菌的生理盐水、PBS或培养液洗去残留的乙醇。这时就可以种入细胞进行培养,待细胞贴在盖玻片上生长良好后,即可进行固定等后续操作。 对于悬浮细胞: 把细胞先在固定液中固定,然后把细胞滴加在载玻片上,干燥后细胞会紧贴在载玻片上。然后就可以进行后续操作。如果细胞的粘附能力不佳,可以在载玻片上用PDL等物质进行处理,以增强载玻片的粘附能力。 对于冷冻切片: 切片放置在载玻片上后,可以直接进行固定等后续操作。 对于石蜡切片:

免疫荧光实验步骤

免疫荧光实验步骤 Modified by JACK on the afternoon of December 26, 2020

免疫荧光实验步骤 1. 直接免疫荧光法测抗原 (1)基本原理 将荧光素标记在相应的抗体上,直接与相应抗原反应。其优点是方法简便、特异性高,非特异性荧光染色少。缺点是敏感性偏低;而且每检查一种抗原就需要制备一种荧光抗体。此法常用于细菌、病毒等微生物的快速检查和肾炎活检、皮肤活检的免疫病理检查。 (2)试剂与仪器 磷酸盐缓冲盐水(PBS):L, 荧光标记的抗体溶液:以L,的PBS进行稀释 缓冲甘油:分析纯无荧光的甘油9份+ 碳酸盐缓冲液1份配制 搪瓷桶三只(内有L,的PBS 1500ml) 有盖搪瓷盒一只(内铺一层浸湿的纱布垫) 荧光显微镜 玻片架 滤纸 37℃温箱等。 (3)实验步骤 ① 滴加L,的PBS于待检标本片上,10min后弃去,使标本保持一定湿度。 ② 滴加适当稀释的荧光标记的抗体溶液,使其完全覆盖标本,置于有盖搪瓷盒内,保温一定时间(参考:30min)。

③ 取出玻片,置玻片架上,先用L,的PBS冲洗后,再按顺序过L,的PBS三缸浸泡,每缸3-5 min,不时振荡。 ④ 取出玻片,用滤纸吸去多余水分,但不使标本干燥,加一滴缓冲甘油,以盖玻片覆盖。 ⑤ 立即用荧光显微镜观察。观察标本的特异性荧光强度,一般可用“+”表示: (-)无荧光;(±)极弱的可疑荧光;(+)荧光较弱,但清楚可见;(++)荧光明亮;(+++ --++++)荧光闪亮。待检标本特异性荧光染色强度达“++”以上,而各种对照显示为(±)或(-),即可判定为阳性。 (4)注意事项 1)对荧光标记的抗体的稀释,要保证抗体的蛋白有一定的浓度,一般稀释度不应超过1:20,抗体浓度过低,会导致产生的荧光过弱,影响结果的观察。 2)染色的温度和时间需要根据各种不同的标本及抗原而变化,染色时间可以从10 min到数小时,一般30 min已足够。染色温度多采用室温(25℃左右),高于37℃可加强染色效果,但对不耐热的抗原(如流行性乙型脑炎病毒)可采用0-2℃的低温,延长染色时间。低温染色过夜较37℃30 min效果好的多。 3)为了保证荧光染色的正确性,首次试验时需设置下述对照,以排除某些非特异性荧光染色的干扰。 ① 标本自发荧光对照:标本加1-2滴L,的PBS。 ② 特异性对照(抑制试验):标本加未标记的特异性抗体,再加荧光标记的特异性抗体。

免疫荧光非特异性染色的消除方法

免疫荧光非特异性染色的消除方法 一、非特异性染色的主要因素 组织的非特异性染色的机理很复杂,其产生的原因主要可分为以下几点: (1)一部分荧光素未与蛋白质结合,形成了聚合物和衍化物,而不能被透析除去。 (2)抗体以外的血清蛋白与荧光素结合形成荧光素脲蛋白,可与组织成分结合。 (3)除去检查的抗原以外,组织中还可能存在类属抗原(如Forssman氏抗原),可与组织中特异性抗原以外之之相应抗体结合。 (4)从组织中难于提纯抗原性物质,所以制备的免疫血清中往往混杂一些抗其他组织成分的抗体,以致容易混淆。 (5)抗体分子上标记的荧光素分子太多,这种过量标记的抗体分子带过多的阴离子,可吸附于正常组织上而呈现非特异性染色。 (6)荧光素不纯,标本固定不当等。 二、消除非特异性染色的方法 消除荧光抗体非特异性染色的方法应根据产生的原因采取适当的方法,常用的方法有以下几种: (一)动物脏器粉末吸收法 常用肝粉(猪、大白鼠或小白鼠),其次是骨髓粉、鼠脑粉和鸡胚粉等。每毫升荧光抗体中加入肝粉50~100mg,在离心管中充分混匀,在室温中振动2h,4℃中过夜,再搅拌10min,高速离心(3000~15000r/min)30min,1~2次后,即可使用其上清液。吸收一般应在临用前进行,吸收后之荧光抗体保存冰箱中勿超过2周。染色应作吸收前后之比较,吸收时可先用缓冲盐水将组织干粉浸湿,离心(3000~15000r/min)30min,除去上清液,再加入荧光抗体进行吸收,以免消耗过多的抗体。 肝粉或新鲜细胞吸收是一种非特异性的消除方法,对荧光抗体的荧光色素和蛋白都有吸附作用。如检查组织中的病毒抗原时,也可用相同的组织干粉或匀浆沉淀物吸收之。 用脏器肝粉吸收对荧光抗体损失较多,如果根据Hiramotos氏等的方法将组织的20%生理盐水匀浆液,用生理盐水洗2~3次,12000r/min 10min离心沉淀,用其沉淀物吸收其荧光抗体即能完全达到目的,京极方久氏认为这样吸收对荧光抗体几乎没有损失,他们常用此法,效果甚佳,吸收后放置一周左右,用时有必要再吸收一次。

细胞免疫荧光染色的自我总结

免疫荧光实验所需试剂 1、PBS和PBST(0.05% Tween 20 in PBS:2000mlPBS+1ml吐温) 2、4%多聚甲醛/PBS(4g多聚甲醛+50-80mlPBS+加热至60℃并搅拌+滴加少量1mol/L 的NaOH溶液使其变清亮,定容至100ml) 3、0.1% triton X-100/PBS配制(999mlPBS+1ml Triton X-100/曲拉通X-100(碧云天ST795),因为Triton X-100很粘稠,需减掉枪头尖慢吸) 4、2%二抗同源血清封闭:组织切片上有剩余的位点可以与一抗非特异性结合,造成后续结果的假阳性;封闭血清一般是和二抗同一来源的,血清中动物自身的抗体,预先能和组织中有交叉反应的位点发生结合;也可以用小牛血清、BSA、羊血清等,但不能与一抗来源一致(中杉金桥封闭用正常羊血清工作液 ZLI9022) 5、二抗(中杉金桥 594标记山羊抗兔IgG ZF0616)(中杉金桥 488标记山羊抗小鼠IgG ZF0512) 细胞爬片的免疫荧光染色步骤: 1)实验前一天,将细胞接入铺有22×22mm(或24×24mm)盖玻片[悬浮细胞需要用多聚赖氨酸包被过的玻璃片]的六孔板或十二孔板中。 2)第二天,待细胞汇合度达到70%左右开始进行染色步骤。 3)用新鲜配制4%多聚甲醛[4℃]固定细胞10分钟。 4)PBS洗三遍,每次5分钟。 5)用0.1% triton X-100[PBS配制]对细胞透化处理10分钟。 6)加PBS,使液面覆盖玻片。如果细胞贴壁好,PBS洗时可轻摇孔板洗三遍,每次5分钟[不必一直摇]。如果细胞贴壁不好就不必了,可以考虑多加点PBS,或者每次浸泡时间稍延长1-2分钟。 7)2%二抗同源血清[购买的纯的羊或牛血清用PBS稀释至2%,当前用的是羊血清]封闭30分钟-60分钟,PBS简单冲洗两遍或者不洗。 8)染色前根据公司说明书建议的浓度配好1抗(1抗稀释液购自中杉金桥)[建议先测试抗体浓度,可依据公司推荐的浓度增加和减低浓度进行测试;如公司推荐1:200,可将抗体配成1:50、1:100、1:200、1:400、1:600,以不同浓度进行孵育,如果抗体有效,应当在有效染色的抗体浓度范围内都可染色,只是颜色深浅不同],加入1抗,4℃冰箱孵育,一般要大于18小时[有的抗体可能需要多达50小时]。孵育过程中注间保持容器湿度,切勿干片!。 9)PBS洗三遍,每次5分钟。 10)避光!加入PBS配制的二抗,室温孵育30-45 分钟[似乎室温高一点二抗结合得更好,实际操作过程中应考虑将室温控制在20℃-35℃]。 11)避光!PBS洗四遍,每次5分钟。 12)避光!加入0.5 ug/ml DAPI[PBS配制][当前也有已经配好的DAPI,如碧云天公司的,直接用]染色10分钟,染完后用微量进样器将玻片上附着的残余DAPI尽可能小心吸干净。 13)避光!用PBS洗一次5分钟[或简单洗三遍],去除多余的DAPI,洗完后玻片上附有少量PBS,不必吸掉,因为玻片不宜太干燥。 14)避光!加入20μL- 50μL封片剂(购自碧云天公司)封片[封闭液PH8.5],封片剂多少根据玻片大小决定,原则上要让玻片贴在载玻片上,但不应该滑动。 15)将封片好的细胞样品保存在湿盒中,盒中放置湿的滤纸,可于4度冰箱中存放2周以上。 注意: 1、玻片与载玻片的处理:泡酸去污, 冲洗, 晾干,75%酒精杀菌,泡纯酒精脱脂, 蒸馏水洗(此时用镊子夹着洗), 晾干备用。 2、封闭液若使用的是100%的纯牛或羊血清,使用前用PBS稀释至2%,不与一抗同源即可。 3、加入二抗时与加二抗后的步骤全部避光操作!尽可能减少荧光的淬灭。 4、PBS应当过滤,减少残渣。

细胞爬片、固定及免疫荧光的操作步骤

细胞爬片、固定及免疫荧光的操作步骤 1.爬片的准备 1)爬片可用一般的盖玻片,也可用专用爬片;用盖玻片时,可根据自己的需要 用小砂轮或玻璃刀剪裁成合适的大小,以备置于6孔板、12孔板或24孔板;2)将剪裁好的爬片,置于浓硫酸中浸泡过夜,第二天先用自来水冲洗20遍, 然后置于无水酒清中浸泡6小时,再用三蒸水冲洗3遍,放在饭盒或者玻璃培养皿中烘干后高压消毒。高压消毒后取出放入烘箱中烘干,烘干后可放入超净台中备用。 3)可将爬片用多聚赖氨酸处理,以使细胞与爬片结合更牢固。1mg/ml的多聚赖 氨酸用的滤器过滤除菌后分装于经过无菌处理的1ml细胞冻存管内保存在4℃里,三个月内仍然可以使用。用时将高压灭菌过的爬片放到ml的多聚赖氨酸溶液内浸泡5min,无菌晾干即可(放入培养板孔内注意爬片的正反面)。 或将爬片铺于培养皿中,将多聚赖氨酸溶液滴于爬片上,室温10分钟后,吸除玻片上的溶液,在超静台内晾干后使用。储存、稀释和吸取多聚赖氨酸要使用塑料制品。 2.细胞爬片 1)胰酶消化细胞后重悬细胞于完全培养基中,充分吹打,使之成单细胞悬液, 计数。 2)根据自己的需要选择合适的细胞密度种入培养板内。滴加细胞悬液时,根据 爬片的大小,先在每个孔里准备放爬片的位置滴少量培养基,然后将爬片置于液滴上,压紧,使爬片与培养皿靠培养基的张力粘合到一起,防止加细胞悬液时爬片漂起,造成双层细胞贴片。若细胞贴壁能力不强,爬片可经多聚赖氨酸浸片后放入。 3.细胞的固定及免疫荧光 1)在培养板中培养好细胞后,吸除培养基,一般先使用PBS轻洗细胞2×3 min, 然后再做固定(凋亡的TUNEL染色等可以不清洗)。 2)固定:加入4%多聚甲醛(PBS配制)固定20分钟。如果暂时不能立即做组化 检测,使用含%多聚甲醛的PBS 浸泡细胞(注意在免疫组化检测完成前不要让细胞变干,否则细胞收缩形态不好)。 3)除去多聚甲醛,使用PBS轻洗细胞3×3 min。 4)通透:%Triton X-100(PBS配制)室温通透20min(细胞膜上表达的抗原省略 此步骤)。 5)除去Triton X-100,使用PBS轻洗细胞3×3 min。 6)内源性过氧化物酶处理:3% H2O2孵育15 min(选作,二抗连HRP必需做, 其他的如做免疫荧光染色不用做)。

组织切片免疫荧光染色的具体步骤

组织切片免疫荧光染色的具体步骤 1 直接免疫荧光法的操作步骤 标本的处理: 石蜡切片经脱蜡、梯度酒精脱水后,进行抗原修复,然后用0.01M PBST漂洗5min × 3/次; ?2%BSA或10%BSA 37 C湿盒内封闭30min ?抗体染色: C孵育30min;–在标本片上滴加适当稀释的荧光标记抗体(1:8或1:16稀释),放在湿盒中,37 ?0.0lmol/L PBS(pH 7.4) 漂洗5min × 3/次,不时震荡(洗去多余游离的荧光素标记的抗体)。 ?缓冲甘油封片 –分析纯无荧光的甘油9份+ pH 9.2,0.2M碳酸盐缓冲液1份配制。 ?镜检:在荧光显微镜下观察。 ?优点:方法简便、特异性高,非特异性荧光染色少。 ?缺点:敏感性偏低;而且每检查一种抗原就需要制备一种荧光抗体。若检测多种抗原需制备多种相应的荧光标记抗体。 直接免疫荧光法的注意事项 ?对荧光标记的抗体的稀释:要保证抗体的蛋白有一定的浓度; ?一般稀释度不应超过1:20,抗体浓度过低,会导致产生的荧光过弱,影响结果的观察。 ?染色温度和时间需要根据各种不同的标本及抗原而变化; –染色时间:从10 min到数小时,一般30 min; C的低温,延长染色时间。C可加强染色效果,但对不耐热的抗原(如流行性乙型脑炎病毒)可采用0-2C),高于37–染色温度:多采用室温(25 C 30 min效果好的多。–低温染色过夜较37 ?试验时需设置下列对照: –自发荧光对照(空白对照):标本加0.01mol/L,pH7.4的PBS代替一抗。 –阳性对照:用已知的阳性标本加荧光标记的特异性抗体。 –特异性对照(抑制试验):标本加未标记的特异性抗体,再加荧光标记的特异性抗体。 ?若标本自发荧光对照和特异性对照呈无荧光或弱荧光,阳性对照和待检标本呈强荧光,则为特异性阳性染色。 ?一般标本在高压汞灯下照射超过3min,就有荧光减弱现象; ?经荧光染色的标本最好在当天观察,随着时间的延长,荧光强度会逐渐下降。 2 间接法又称为荧光抗-抗体法 需要两种抗体参与,即一抗和二抗(荧光素标记)。一抗对标本中的抗原来说起抗体的作用,但对荧光标记的二抗来说又起着抗原作用。 –可用来检测标本中未知抗原,也可检测血清中未知抗体。 间接免疫荧光法操作步骤 ?标本的处理及非特异染色的封闭同直接法; ?一抗染色: C过夜。C作用30min或4–加未标记的特异性抗体(通常1:100稀释,用0.01MpH7.4的PBS稀释),37 ?0.01M PBST漂洗5min×3次(震荡漂洗); C湿盒避光作用30min。?加荧光标记的二抗抗体,37 ?0.01M PBST避光漂洗5min×3次(例如包上锡纸,在摇床上漂洗); ?甘油缓冲液封片 ?镜检

石蜡切片免疫荧光染色方法

对于石蜡切片: 1、烤片:60℃ 60分钟 2、脱蜡:二甲苯中Ⅰ脱蜡15分钟→二甲苯Ⅱ脱蜡15分钟→无水乙醇Ⅰ5分钟→无水乙醇Ⅱ5分钟→90%乙醇Ⅰ5分钟→90%乙醇Ⅱ5分钟→70%乙醇5分钟 →蒸馏水5分钟→蒸馏水5分钟。 3、抗原修复:高压修复,事先烧开锅中的水,修复盒中加入0.01mol/l柠檬酸钠,pH6.0(柠檬酸三钠 3g,柠檬酸 0.4g加入1000ml蒸馏水中),上汽后加热10分钟,关火。修复盒取出,放入装有自来水的瓷缸中缓慢冷却至室温。 2. 去除内源性酶:玻片取出放入湿盒,加3%H 2O2 2 (2ml H 2 O2 2 加入18ml蒸馏水 中,现配现用,避光),室温孵育10分钟,PBS洗3次,每次5分钟。(也可不用去除内源性酶)。 3. 封闭(Blocking) 加10%正常驴血清(原液100ul+900ulPBS,1ml够用30张片子),室温孵育封闭30分钟。如果背景较高,可以4℃封闭过夜。不用洗,用滤纸吸干周边水分。从封闭开始所有的步骤,一定要注意样品的保湿,避免样品的干燥,否则极易产生较高的背景。 4. 一抗孵育(Primary antibody incubation) 参考一抗的说明书,按照适当比例用免疫染色一抗稀释液(10%山羊血清PBS或1%BSA-PBS)稀释一抗。 立即加入稀释好的一抗, 4℃过夜,第二天取出复温45分钟。PBS洗3次,每次5分钟。 5. 二抗孵育(Secondary antibody inucubation) 按照适当比例用免疫荧光染色二抗稀释液稀释荧光标记的二抗,立即加入稀释好的二抗,室温或4℃在侧摆摇床上缓慢摇动孵育一小时。 PBS洗涤3次。每次5分钟。如果结果背景较高,可以适当延长洗涤时间并增加洗涤次数。

免疫荧光染色实验步骤

免疫荧光染色的主要原理是利用抗原抗体之间的特异性结合来显示目的蛋白,主要包括蛋白和一抗结合,其次是带有荧光基团的二抗识别并结合一抗,荧光显微镜下即可观察到荧光,下文主要列举了三种细胞免疫荧光染色的实验步骤。 zo-1的免疫荧光,步骤如下: 1、细胞在盖片上生长融合到95%-100%时,从孵箱中取出。 2、用预温的1×PBS洗3次,每次10分钟 3、4%的甲醛室温固定20-30分钟 4、1×PBS洗3次,每次10分钟 5、0.2%Triton X-100透化2-5分钟 6、1×PBS洗3次,每次10分钟 7、5%BSA室温封闭30分钟 8、加一抗(用1%BSA稀释)放在湿盒里,4度过夜 9、1×PBS洗3次,每次10分钟 10、加二抗(用1%BSA稀释)30分钟,闭光!!! 11、1×PBS洗3次,每次10分钟 12、95%甘油封片 注:4%甲醛,0.2%Triton,5%BSA均用1×PBS稀释 从大鼠分离的T细胞能否直接做细胞免疫荧光 细胞爬片的免疫荧光步骤基本一致: 1.取出细胞爬片放到35mm或60mm用过的细胞培养皿里,PBS洗三遍。 注意:有的时候作的细胞爬片可能比较小,因此夹取的时候要小心,注意反正面,放在皿里洗比较方便,避免了来回夹取,另外洗的时候加PBS不要太冲,不要细胞冲下来。洗的时候我都是多加PBS,稍晃一下就倒掉,没有等5分钟或10分钟。 2. 4%冷的多聚甲醛固定20分钟,PBS洗三遍。 3. 0.2%Triton X-100通透10分钟,PBS洗三遍。

4. 与二抗相同宿主的血清封闭30分钟,PBS洗三遍。 5. 一抗4度湿盒内过夜,也可37度2小时,感觉前者效果好,PBS洗三遍。 6.二抗室温2小时(避光),或者37度1半小时,PBS洗三遍。 7.最好用DAPI染核,然后直接照荧光片。 8.蒸馏水洗掉PBS,甘油封片,指甲油封片子的四周,因为甘油不象树脂那样会干,所以不用指甲油封的话会弄的一塌糊涂。 建议:1.还是染完之后没有封片前直接照一些,因为有的时候可能封片会出现问题,再想照反而没有了,另外不要拖太长时间,荧光会崔灭的。2.荧光的片子一定要避光保存,保存的好的话,过一段时间仍然能照出很好的片子。3.二抗用之前一定离心,不然有的时候有那种沉淀,在片子上就是一个很大的非特异性荧光光点,非常难看。 细胞免疫荧光简单实验步骤如下: 1.漂洗血清蛋白H7.2-7.4 37度 PBS 2小时. 2.-20度甲醇固定20分钟后,自然、干燥 10分钟 3.PBS洗净:3min*3 4.1%Triton:25min-30min.配成50ultriton+5mlpBS 5.PBS洗净:2*5min 6.羊血清封闭:37度,20分钟 7.一抗,4度过夜,一般要大于18小时或者37度1-2小时 8.4度PBS洗净,3min*5次 9.二抗37度小于一小时 10.37度PBS洗净,3*5min 凉干封片(封闭液PH8.5) 不管采用何种方法,在使用PBS缓冲液漂洗时,都要漂洗干净并且要测下pH值,可以使用PBS多清洗几次,也可以延长PBS清洗时间,如果结果背景较高可以延长漂洗的次数和时间。

免疫荧光染色

免疫荧光一般步骤 固定液配制: 常用固定液为4%多聚甲醛,将40g多聚甲醛粉剂在三角烧瓶中溶于1000ml 0.1M PB溶液中,放入磁力转子置于加热磁力搅拌器中加热溶解,温度切忌超过70℃,温度过高会导致多聚甲醛解聚成为甲醛,遮蔽抗体影响抗原抗体结合,溶解后待其冷却,调节PH值至7.4,过滤后室温或4℃放置备用,配好后一个月内有效,最好现配现用。2.5%多聚甲醛(含苦味酸300ml/1000ml)亦是选择,由于渗透压的关系,缓中液改为NaH2PO4.2H2O 3.74g;Na2HPO4.12H2O45.11g(500ml:1.87g,22.55g) 灌注固定: 快速生理盐水冲净血液(约需要100ml即可),4%多聚甲醛灌注(快速充灌100ml 左右,再慢速滴150ml)。灌注用的针头前端要磨平,灌注小鼠可以用较粗的头皮针,仅留1cm,插入左心室即可,不必像大鼠那样插入主动脉根部。 取材 按要求不同取组织,取材部位一定要事先确定好,比如脊髓呈现节段性变化,只有取到正确的部位才能获得结果。坐骨神经对应的脊髓阶段(3,4,5)在第一腰椎下,第五腰椎下是第五神经节,对应髂前上棘(动物其实不叫这个名)前缘。 后固定及蔗糖脱水: 组织取材后切成小块放入4%多聚甲醛中,为后固定,建议4℃过夜,随后转入40%蔗糖溶液中脱水(不沉底),3天后即可用于冰冻切片。后固定时间亦不可过长。脱水不彻底表现为组织切片上空洞样组织破坏;固定不完全表现为微米染色集中在周边,组织内部不着色。蔗糖溶液亦用0.1M PB配制(见附录)。 冰冻切片: 漂染时,脊髓片厚可以25~30微米,神经节片厚要30微米 免疫荧光染色: 1.TBS溶液清洗组织片5分钟×2,有利于抗原抗体结合(可选) 2.封闭液(10%血清+1%BSA)+0.3%triton-100*室温封闭2小时,亦可4℃过夜,除个别 膜抗原外,都需要加triton-100*;个人习惯的做法是把封闭液分装成1ml/管,保存在-20度,用前添加3微升triton-100 3.一抗孵育4℃过夜,一抗浓度需要通过预实验进行确定,比较常见的是1μg/ml。(一 抗稀释液见附录,建议用) 4.TBS溶液清洗组织片5分钟×3 5.二抗孵室温两小时或4℃过夜,感觉背景深的话,建议4℃过夜。 6.TBS溶液中置于摇床上清洗组织片5分钟×3 7.暗室内将组织片贴于载玻片上,室温晾干,载玻片最好经甲醛明胶处理过,防止粘不牢 脱片。微弱的光线对贴片造成相当的困难,特别是像神经节和小鼠脊髓这样的较小的切片,切片皱折,相互覆盖都会导致无法拍照,我的经验是可以用吸管将切片全部吸到载玻片上,然后尽量吸掉水,也可用毛笔等进一步去掉水份,然后室温晾干,大约一小时左右即可。光线方面也不是特别严格,可以用台灯的反射光进行照明,目前认为只要不是光线直射就可以。 8.90%甘油封片,注意汽泡。90%提前配好,用一个20ml玻璃小瓶或者试管,加入甘油和

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