检验标本的采集转运规范

检验标本的采集、转运规范

检验标本的采集

一、血液标本的采集

血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。静脉血是最常用的标本，静脉穿刺是最常用的采血方法。毛细血管采血主要用于儿童，血气分析多使用动脉血。

（一）静脉采血法

1 ．采血步骤

采血前核对病人姓名、性别、年龄、编号及检验项目等，按试验项目要求，准备好相应的容器，如空白试管、抗凝管或促凝管等。病人应取坐位或卧位，采血部位通常是前臂肘窝的正中静脉。若用普通采血法，采血后应取下针头，将血液沿管壁缓慢注入试管内。

2 ．注意事项

（ 1 ）防止溶血：造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁；淤血时间过长；穿刺不顺利，组织损伤过多；抽血速度太快；血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫；震荡过于剧烈等。若用普通注射器采血后，未取针头直接将血注入真空管内，也易造成溶血。体内溶血属合格标本，但应在报告单上注明。

（ 2 ）避免充血和血液浓缩：采血时应动作迅速，尽可能缩短止血带使用时间。用止血带压迫时间最好不超过半分钟，否则将使生化结果升高或下降。

（ 3 ）若病人正在进行静脉输液，不宜在输液同侧手臂采血；若女性病人做了乳腺切除术，应在手术对侧手臂采血。

（ 4 ）采血的体位：体位改变可引起一系列的生理变化，使血液中的许多指标发生改变。采血时要注意保持正确的体位（坐位或卧位），以及体位的一致性。

（ 5 ）采血时只能向外抽，决不能向静脉内推，以免注入空气，形成气栓而造成严重后果。

（ 6 ）很多生化成分受膳食影响，因此，采血前要确认病人是否空腹。

（二）动脉采血法

肱动脉、股动脉、桡动脉以及其它任何部位的动脉都可以作为采血点，但多选择肱动脉和桡动脉。在摸到明显搏动处，按常规消毒，左手固定搏动处，右手持注射器，针头成60 °角刺入，血液将自动进入注射器内。采血注意事项见血气分析部分。

（三）真空采血法

双向针的一端在持针器的帮助下刺入静脉，另一端插入真空试管内，血液在负压作用下自动流入试管内。由于在完全封闭状态下采血，避免了血液外溢引起的污染，并有利于标本的转运和保存。标准真空采血管采用国际通用的头盖和标签颜色显示采血管内添加剂种类和试验用途。可根据需要选择相应的盛血试管。

1 ．普通血清管

红色头盖，采血管内不含添加剂，用于常规血清生化、血库和血清学相关检验。

2 ．快速血清管

橘红色头盖，采血管内有促凝剂，可激活纤维蛋白酶，使可溶性纤维蛋白变为不可溶的纤维蛋白多聚体，进而形成稳定的纤维蛋白凝块。快速血清管可在 5 分钟内使采集的血液凝固，适用于急诊血清生化试验。

3 ．惰性分离胶促凝管

金黄头盖，采血管内添加有惰性分离胶和促凝剂。标本离心后，惰性分离胶能够将血液中的液体成分（血清或血浆）和固体成分（红细胞、白细胞、血小板、纤维蛋白等）彻底分开并完全积聚在试管中央而形成屏障，标本在 48 小时内保持稳定。促凝剂可快速激活凝血机制，加速凝血过程，适用于急诊血清生化试验。

4 ．肝素抗凝管

绿色头盖，采血管内添加有肝素。肝素直接具有抗凝血酶的作用，可延长标本凝血时间。适用于红细胞脆性试验、血气分析、红细胞压积试验、血沉及普通生化测定，不适于

做血凝试验。过量的肝素会引起白细胞的聚集，不能用于白细胞计数。因其可使血片染色后背景呈淡蓝色，故也不适于白细胞分类。

5 ．血浆分离管

浅绿色头盖，在惰性分离胶管内加入肝素锂抗凝剂，可达到快速分离血浆的目的，是电解质检测的最佳选择，也可用于常规血浆生化测定和 IC U 等急诊血浆生化检测。血浆标本可直接上机并在冷藏状态下保持 48 小时稳定。

6 ． E DT A 抗凝管

紫色头盖，乙二胺四乙酸（ E DT A ，分子量 292 ）及其盐是一种氨基多羧基酸，可以有效地螯合血液标本中的钙离子。螯合钙或将钙从反应位点移去将阻滞和终止内源性或外源性凝血过程，从而防止血液标本凝固。适用于一般血液学检验，不适用于凝血试验及血小板功能检查，亦不适用于钙离子、钾离子、钠离子、铁离子、碱性磷酸酶、肌酸激酶和亮氨酸氨基肽酶的测定及 PCR 试验。

7 ．枸橼酸钠凝血试验管

浅蓝头盖，枸橼酸钠主要通过与血样中钙离子螯合而起抗凝作用。适用于凝血实验，抗凝剂与血液的比例是 1 ∶ 9 。

8 ．枸橼酸钠血沉试验管

黑色头盖，血沉试验要求的构橼酸钠浓度是 3 ． 2 ％（相当于 0 ． 109 mol ／ L ），抗凝剂与血液的比例为 1 ∶ 4 。

二、尿液标本的采集

（一）采集方法

尿液标本有随机新鲜尿、定时尿及 24 小时尿，根据检查项目选择标本的采集类型。定量生化分析多收集 24 小时尿液， 24 小时尿标本采集方法如下：

嘱病人在早晨 8 时排尿弃去，以后每次排尿均收集于一大容器内，至次日早晨 8 时最后一次尿亦收集于容器内。测量并记录 24 小时尿液总量，然后混匀尿液，取适量尿液

送检。

（二）注意事项

收集尿液标本的容器必须清洁干燥，最好是一次性使用的容器。若容器反复使用，则须用洗涤液和自来水清洗，再用蒸馏水冲洗。尿标本要防止混入月经血、阴道分泌物、精液、前列腺液、粪便等异物。尿标本收集后应 12 时内送检，以免细菌作用和化学成分分解。若不能及时检验（如收集 24 小时尿液），将标本置冰箱保存，若加入防腐剂，保存效果更佳。

三、粪便标本采集

标本的收集、存放与运送的得当与否，直接关系到检验结果的准确性。

应采取新鲜粪便，盛于洁净、干燥无吸水性的有盖容器内，不得混有尿液、水或其他物质，以免破坏有形成分，使病原菌死亡和污染腐生性原虫、真菌孢子、植物种子、花粉易混淆检验结果。

采集标本时应用干净竹签选取含有粘液、脓血等病变成分的粪便；外观无异常的粪便须从表面、深处及粪端多处取材，其量至少为大拇指末段大小（约 5g ）。

标本采集后一般情况应于 1h 内检查完毕，否则可因 p H 及消化酶等影响导致有形成分破坏分解。查痢疾阿米巴滋养体时应于排便后立即送检。从脓血和稀软部分取材，寒冷季节标本传送及检查时均需保温。

检查日本血吸虫卵时应取粘液、脓血部分，孵化毛蚴时至少留取 30g 粪便，且须尽快处理。

检查蛲虫卵须用透明薄膜拭子于晚 12 时或清晨排便前自肛门周围皱襞处拭取并立即镜检。

找寄生虫虫体及做虫卵计数时应采集 24h 粪便，前者应从全部粪便中仔细搜查或过筛，然后鉴别其种属；后者应混匀后检查。

对某些寄生虫及虫卵的初步筛选检验，应采取三送三检。因为许多肠道原虫和某些蠕

虫卵都有周期性排出现象。

隐血试验，应连续检查 3 天，选取外表及内层粪便，应迅速进行检查，以免因长时间放置使隐血反应的敏感度降低。

粪胆原定量检查应连续收集 3 天的粪便，每天将粪便混匀称重后取出约 20g 送检。查胆汁成分的粪便标本不应在室温中长时间放置，以免阳性率减低。

脂肪定量检查时，应先食定量脂肪食，每天进食脂肪 50 ～ 150g ，连续 6 天。从第3 天起，收集 72h 粪便，也可定时口服色素（刚果红），作为留取粪便的指示剂，将收集的粪便混合称量，从中取出 60g 左右送检。简易法为在正常膳食情况下，收集 24h 的全部粪便，混合称量，从其中取出约 60g 送检，测脂肪含量。

细菌检验用标本应全部用无菌操作收集，立即送检。无粪便排出而又必须检查时，可经肛门指诊或采便管拭取标本，灌肠或服油类泻剂的粪便常因过稀且混有油滴等而不适于做检查标本。

标本的分离、储存和转运

血液标本采集后应及时分离血清或血浆，否则可发生红细胞与血清之间成分的相互转移，或细胞中的某些酶分解待测物等，而影响检验结果。例如，血清无机磷可由于红细胞内有机磷酸酯被磷酸酯酶的水解而增加；血清中葡萄糖可因红细胞内糖酵解酶的分解作用而降低，此外，钠存在于红细胞与血清中之比为 1 ∶ 2 ；钾在血清和红细胞中之比为 1 ∶20 ；钙在红细胞中极少，几乎全部在血清中。因此，血清钠、钾、钙测定时，需注意及时分离标本，若不能立刻分离血清或血浆，应将标本放置于室温或 37 ℃水浴箱内，不能将血液标本直接放入 4 ℃冰箱，以免发生溶血。对不是因操作不当引起的溶血、脂血或胆红素血，应在检验报告上注明，供医生参考。尿液、脑脊液和胸腹水等标本常需离心，取上清液进行分析。

分离后的标本若不能及时检测或需保留以备复查时，一般应放于 4 ℃冰箱，某些检测项目的标本存放于－ 20 ℃冰箱更稳定。标本存放时需加塞，以免水分挥发而使标本浓缩。需注意的是，某些检测指标如乳酸脱氢酶的标本应存放于室温，置 4 ℃反而不稳定。

标本采集后应尽快送实验室分析，标本管道传递系统可加快标本传递速度和避免标本

的错误传递。若标本不能及时转运到实验室或欲将标本送到上级部门或检测中心进行分析时，应将标本装入试管密封，再装入乙烯塑料袋，置冰瓶或冷藏箱内运输，运送过程中应避免剧烈震荡。

要视所有标本为传染品，对“高危”标本，如乙肝病人标本、艾滋病病人标本等，要注明标识；急症或危重病人标本要特别注明。严禁标本直接用口吸取、接触皮肤或污染器皿的外部和实验台。标本用后均要做消毒处理，盛标本的器皿要消毒处理或毁型、焚烧。