整合素αvβ3抑制剂西仑吉肽在大鼠急性脑缺血中的作用机制重点

DOI:10.3760/cma.j.issn.0376-2491.2016.07.015作者单位:518036深圳,北京大学深圳医院神经内科通信作者:易黎,Email:yilitj@hotmail.com?基础研究?

整合素αvβ3抑制剂西仑吉肽在大鼠急性

脑缺血中的作用机制

陆林清方婷周达童晓欣吴军易黎

【摘要】 目的探讨整合素αvβ3抑制剂西仑吉肽在大鼠急性脑缺血中对血脑屏障通透性、脑水肿、细胞凋亡的影响及其与血管内皮生长因子VEGF变化的关系。方法采用右侧大脑中动脉线栓法制作局灶性脑缺血再灌注模型MCAO,造模成功大鼠根据随机数字表法分为(1)治疗组A,尾静脉注射西仑吉肽100μg/kg(n=30);(2)治疗组B,尾静脉注射西仑吉肽200μg/kg(n=28);(3)假手术组,不置入线栓,尾静脉注射生理盐水(n=31);(4)对照组,尾静脉注射生理盐水(n=27)。各组均在梗死后1h后治疗,2h再灌注及24h后处死。检测脑含水量、血脑屏障通透性、梗死面积、细胞凋亡、VEGF、P-Flk及Cleaved-Caspase-3等指标。结果治疗组A、治疗组B的脑含水量较对照组降低[(80.8±1.1)%比(84.8±1.4)%、(81.0±1.4)%比(84.8±1.4)%,P<0.05];治疗组A、治疗组B的EB含量较对照组降低[(9.2±1.1)μg/g比(12.2±0.8)μg/g、(8.6±0.6)μg/g比(12.2±0.8)μg/g,P<0.05];治疗组A、治疗组B的TUNEL阳性细胞数较对照组减少[(36±4)个比(69±6)个、(35±3)个比(69±6)个,P<0.05];治疗组A、治疗组B的梗死面积较对照组降低[(31.9±4.9)mm3比(43.0±2.2)mm3、(29.2±3.5)mm3比(43.0±2.2)mm3,P<0.05];与对照组比较,治疗组A、治疗组B的VEGF、P-Flk、Cleaved-Caspase-3等蛋白表达降低(P<0.05);治疗组A、治疗组B与假手术组比较,脑含水量、血脑屏障通透性、梗死面积及VEGF、P-Flk、Cleaved-Caspase-3蛋白表达及凋亡细胞数降低(P<0.05);治疗组A与治疗组B比较,脑含水量、血脑屏障通透性、梗死面积及VEGF、P-Flk、Cleaved-Caspase-3蛋白表达及凋亡细胞数差异无统计学意义(P>0.05)。结论整合素αvβ3靶向抑制剂西仑吉肽可降低MCAO模型血脑屏障通透性,减轻脑水肿及抑制细胞凋亡,其作用机制可能与抑制VEGF介导的生物效应有关,梗死后1h后给予西仑吉肽100μg/kg及200μg/kg两个浓度治疗23h的效应未见剂量依赖关系。

【关键词】 脑梗死; 整合素αvβ3; 血管内皮细胞生长因子; 脑水肿

基金项目:深圳市科技创新计划资助项目(JCYJ20140415162543033)

Efficiencyofintegrinαvβ3inhibitorCilengitideinacutecerebralischemiainratsLuLinqing,FangTing,ZhouDa,TongXiaoxin,WuJun,YiLi.DepartmentofNeurology,PekingUniversityShenzhenHospital,Shenzhen518036,China

Correspondingauthor:YiLi,Email:yilitj@hotmail.com

【Abstract】 ObjectiveToexploretheeffectoftheintegrinαvβ3inhibitorCilengitideonthebloodbrainbarrier(BBB)permeability,brainedema,neuronalcellapoptosisandtherelationwiththevascularendothelialgrowthfactor(VEGF)expressioninacutecerebralischemiarats.MethodsAratfocalcerebralischemia/reperfusionmodelwasestablishedbymiddlecerebralarteryocclusion.Ratswithmiddlecerebralarteryocclusion,inaccordancewiththerandomnumbertable,weredividedintofourgroups:(1)theratsinCilengitidegroupA(n=30)weretreatedwithCilengitideatadoseof100μg/kg;(2)theratsinCilengitidegroupB(n=28)weretreatedwithCilengitideatadoseof200μg/kg;(3)theratsinshamgroup(n=31),withoutinsertingthreadintomiddlecerebralartery,weretreatedwithnormalsaline;(4)theratsincontrolgroup(n=27)weretreatedwithnormalsaline.AllratsweretreatedwithCilengitideorsaline1hourafterinfarction,givenreperfusion2hoursafterinfarctionandweresacrificed22hoursafterreperfusion.Thebrain-watercontentwasmeasuredbydry/wetweightmethod.ThepermeabilityofBBBwasmeasuredbyquantifyingEvansBlue.Theinfarctionvolumewasmeasuredby2,3,5-tripheyltetrazoliumChloride(TTC)staining.ExpressionlevelofVEGF,P-Flk,Cleaved-Caspase-3wasmeasuredby

immunohistochemistryandWesternblot,respectively.TheneuronalcellapoptosiswasevaluatedbyterminaldeoxynucleotidyltransferasedUTPnickendlabeling(TUNEL).ResultsComparedwithControlgroup,treatmentgroupswithcilengitideatthedoseof100μg/kgand200μg/kgreducedbrain-watercontent[(80.8±1.1)%vs(84.8±1.4)%,(81.0±1.4)%vs(84.8±1.4)%,P<0.05],reducedexudationofEvansblue[(9.2±1.1)μg/gvs(12.2±0.8)μg/g,(8.6±0.6)μg/gvs(12.2±0.8)g/g,P<0.05],reducedinfarctionvolume[(31.9±4.9)mm3vs(43.0±2.2)mm3,(29.2±3.5)mm3vs(43.0±2.2)mm3,P<0.05],reducedneuronalcellapoptosis[(36±4)vs(69±6)、(35±3)vs(69±6),P<0.05].Comparedwithshamgroup,CilengitidegroupAandCilengitidegroupBhadlowerbrain-watercontent,permeabilityofBBB,infarctionvolume,expressionlevelofVEGF,P-Flk,Cleaved-Caspase-3andneuronalcellapoptosis(P<0.05).WhenCilengitidegroupAwascomparedwithCilengitidegroupB,therewerenosignificantdifferencesinbrain-watercontent,permeabilityofBBB,infarctionvolume,expressionlevelofVEGF,P-Flk,Cleaved-Caspase-3andneuronalcellapoptosis(P>0.05).ConclusionTheintegrinαvβ3inhibitorCilengitideimprovesoutcomesintheMCAOmodelbypreservingtheblood-brainbarrier,attenuatingbrainedemaandinhibitingneuronalcellapoptosis,whichmayoccurinaVEGF-andVEGF-receptor-dependentmanner,withthesameefficacybetweenCilengitide100μg/kgand200μg/kgafter23hourstreatment.

【Keywords】 Braininfarction; Integrinαvβ3; Vascularendothelialgrowthfactor; BrainedemaFundprogram:GrantsfromScientificandTechnologicalInnovationCommitteeofShenzhen(JCYJ20140415162543033)

卒中已成为危害我国中老年人身体健康和生命的主要疾病,给患者家庭乃至全社会造成了沉重的经济负担。研究发现在急性脑缺血2h内,血脑屏障的通透性增高,引起炎症细胞、细胞因子和氧自由基增多外渗,并促进血管源性水肿形成,从而加重缺血性损伤[1]。溶栓被认为是治疗急性缺血性脑卒中的最有效措施,而纤溶酶原激活物(tPA)是临床上最常用的溶栓药物,溶栓治疗只能使血栓溶解,达到血管再通的目的,使受阻的血管灌流区域的脑组织重新获得血氧供应,从而挽救缺血半暗带。但是,

tPA无法改善由于血脑屏障的破坏所导致的继发性脑损伤,而且tPA适用者有限,还会引起溶栓后出血及可能加重缺氧/缺血对高碳酸血症和低血压引起的生理性血管舒张的损害,甚至导致血管收缩等缺陷,限制了其在临床上的使用[2]。因此开发新的药物或者改善tPA的应用迫在眉睫。研究证实,血管内皮生长因子(VEGF)在脑缺血的超早期参与血脑屏障的破坏[3],而整合素αvβ3不但在缺血性脑卒中表达上调,且能够激活VEGF受体及上调VEGF表达,而整合素αvβ3抑制剂可靶向抑制VEGF受体活化[4]。本研究旨在针对整合素αvβ3靶点探讨其抑制剂西仑吉肽在急性脑缺血超早期中的神经保护作用。

材料与方法

一、材料

1.动物:无特定病原体(SPF)级SD雄性大鼠124只,体质量为230~300g,均由广东省实验动物中心提供,动物许可证号:SCXK(粤)2013-0002。实验过程中对动物的处置符合动物伦理学标准。

2.主要试剂及材料:2,3,5-三苯基氯化四氮唑(TTC)、伊文思蓝(EB)均购自上海生物工程技术服务有限公司,VEGF一抗、P-Flk一抗、Cleaved-

Caspase3一抗均购自美国Abcam公司,辣根酶标记抗兔IgG二抗购自福州迈新公司,Tunel试剂盒购自德国罗氏公司,西仑吉肽(Cilengitide,化学式:C27H40N8O7,IC50∶4.1nmol/L)购自美国Selleck公司。

二、方法

1.大鼠大脑中动脉闭塞再灌注模型的建立:将动物用10%水合氯醛0.33ml/100g体重进行腹腔注射麻醉。将头端直径为0.36mm的线栓浸泡在肝素中备用。按照Longa改良线栓法[5]建立大鼠右侧大脑中动脉闭塞(MCAO)再灌注模型,并用Longa法进行神经功能评分,将评分为1~3分的大鼠纳入MCAO实验组。

2.实验分组:将大鼠按体质量从轻到重依次编号,从随机数字表上获得随机序列,根据完全随机设计法划分假手术组及造模组,对造模成功MCAO模型用随机单位组设计分组法再分成治疗组A、治疗组B及对照组,从而对纳入实验的大鼠共分成4组:(1)治疗组A,尾静脉注射西仑吉肽100μg/kg(n=30);(2)治疗组B,尾静脉注射西仑吉肽200μg/kg(n=28);(3)假手术组,不置入线栓,其余造模步骤相同,尾静脉注射生理盐水(n=31);(4)对照组,尾静脉注射生理盐水(n=27)。根据确定好的分组方案在相应药物包装上写上实验对象编号,编制一张分配序列表,表分3列,第1列为纳入

实验动物编号,第2列为随机数字,第3列为药物名称,并将序列表一式两份分别由确定随机序列、分组及统计数据的设计者及及管理药物的人保存。右侧大脑中动脉栓塞后1h进行治疗干预,2h开始缺血再灌注,并于梗死后24h处死大鼠。

3.脑含水量测定:将大脑半球分为左右两侧称湿重,在110℃恒温烤箱中烤24h,然后测定干重,含水量百分比=(1-干重/湿重)×100%。

4.血脑屏障通透率计算:提前2h从大鼠尾静脉注射2%EB(4ml/kg),在麻醉状态下用生理盐水从左心室进行心脏灌流,直至从右心房流出的液体为无色。断头取脑,将大脑半球分为左右两侧,称重,并置入50%三氯乙酸溶液中,匀浆和离心(10000r/min,20min),取上清按1∶3的比例用乙醇稀释。用酶分光光度计(激发波长620nm,发射波长680nm)测定吸光度A值。根据EB标准溶液绘出EB与A值的线形标准曲线,计算脑组织中EB的含量,以每克湿重脑组织内所含EB的量(μg/g)表示。

5.组织学梗死面积的测量:每只大鼠断头取全脑,-20℃冰箱冰冻20min后取出。用手术刀片以视交叉为中心,沿着脑组织冠状位将脑组织以2mm的厚度切为脑片。避光盒中放入2%的TTC液中,置37℃恒温箱中孵育20min,正常组织染为红色,梗死组织呈白色。然后将脑片放入4%的多聚甲醛中固定观察。Image-proplusVersion6.0彩色图像分析系统计算梗死面积。

6.免疫印迹法测定Cleaved-Caspase-3、VEGF及P-Flk:取缺血侧大脑半球梗死灶周围皮质新鲜脑组织块称重后放入1.5ml离心管内,加入1ml细胞裂解液,置冰浴中匀浆和离心(10000r/min,30min)后取上清液,用BCA法行总蛋白定量。取等量蛋白样品进行SDS-PAGE凝胶电泳,然后转印到PVDF膜上,用含5%脱脂奶粉的TBST缓冲液封闭1h,Cleaved-Caspase-3或VEGF或P-Flk或β-

Actin4℃孵育过夜,再用TBST漂洗3次,加入辣根酶标记的二抗,室温作用2h,用显色剂ECL试剂盒显色,结果在Bio-Rad的化学发光成像仪上显影,利用ImageJ1.4u软件分析各组的灰度值,以β-actin为内参计算各蛋白的变化。

7.脑组织石蜡切片免疫组织化学染色:以前囟为中心,冠状切取4μm厚石蜡切片,68℃烤箱烤片过夜,分别做HE染色和免疫组织化学染色。免疫组织化学染色采用SP法,一抗为兔抗Cleavd-Caspase-3、VEGF、P-Flk抗体,二抗为过氧化物酶标记的抗兔IgG。在400倍光镜下随机观察每只动物梗死灶周围不重叠的10个视野,显微图像分析系统采集图像。Image-proplusVersion6.0彩色图像分析系统计数每个视野平均光密度。

8.原位细胞凋亡检测:石蜡切片常规脱蜡至水合后根据罗氏公司TUNEL试剂盒说明书操作,用1%TritonX-100促通透,3%H2O2封闭内源性过氧化氢酶,37℃恒温湿盒中与TdT反应液孵育1h,用PBS漂洗后与荧光素抗体的辣根酶孵育30min,经PBS漂洗后行DAB显色、苏木素复染、梯度乙醇脱水、二甲苯透明、中性树胶封片。在400倍光镜下随机观察每只动物梗死灶周围不重叠的10个视野,显微图像分析系统采集图像,并计算每个视野的阳性细胞数。

三、统计学处理

所有数据均利用SPSS20.0统计软件进行统计和数据分析。服从正态分布的计量资料以-x±s表示;单因素组间比较采用One-WayANOVA方差分析,方差齐时组间多重比较采用LSD分析,方差不齐时组间多重比较釆用DimnetT3分析;P<0.05为差异有统计学意义。

结果

一、缺血侧大脑半球脑组织含水量

与对照组比较,治疗组A、治疗组B、假手术组的脑组织含水量均降低(P<0.05);但治疗组A、治疗组B的脑组织含水量仍高于假手术组(P<0.05);治疗组A的脑组织含水量与治疗组B比较,差异无统计学意义(P>0.05)(表1)。

表1梗死24h后各组梗死面积、脑组织含水量

及EB含量的比较(-x±s)

组别动物数

(只)

梗死体积

(mm3)

脑组织

含水量(%)

脑组织EB

含量(μg/g)治疗组A2031.9±4.9ab80.8±1.1ab9.20±1.1ab治疗组B1929.2±3.5ab81.0±1.4ab8.58±0.6ab假手术组21078.2±0.5b2.66±0.5b对照组1843.0±2.2a84.8±1.4a12.19±0.8a

注:与假手术组比较,aP<0.05;与对照组比较,bP<0.05

二、缺血侧大脑半球脑组织EB含量

与对照组比较,治疗组A、治疗组B、假手术组的脑组织EB含量均降低(P<0.05);但治疗组A、治疗组B的脑组织EB含量仍高于与假手术组(P<0.05);治疗组A的脑组织EB含量与治疗组B比较,差异无统计学意义(P>0.05)(表1)。

三、组织学梗死面积测定结果

与对照组比较,治疗组A、治疗组B梗死面积均减少(P<0.05);治疗组A的梗死面积与治疗组B比较,差异无统计学意义(P>0.05)(表1)。

四、VEGF检测结果

免疫印迹结果显示治疗组A、治疗组B,假手术组的VEGF蛋白表达量低于对照组(P<0.05);治疗组A、治疗组B的VEGF蛋白表达量仍高于假手术组(P<0.05);而治疗组A的VEGF蛋白表达量与治疗组B比较,差异无统计学意义(P>0.05)(图1,表2)。免疫组化结果显示:假手术组脑组织内VEGF内VEGF表达量很少或不表达;而对照组脑组织内VEGF表达强阳性,而治疗组A、治疗组B阳性表达弱于MCAO+生理盐水组,但强于假手术组+生理盐水组(图2,表

3)。

注:A为治疗组A;B为治疗组B;C为假手术组;D对照组图1 VEGF的免疫印迹结果 图2 免疫组化结果箭头所指为阳性细胞(光镜,×400)。2A为治疗组A;2B为治疗组B;2C为假手术组;2D对照组

表2 免疫印迹法比较各组的Cleaved-Caspase-3、

VEGF及P-Flk的表达(-x±s)

组别动物数

(只)VEGF

P-Flk

C-Caspase-3

治疗组A50.114±0.010ab0.601±0.055ab0.063±0.009ab治疗组B40.113±0.023ab0.556±0.040ab0.053±0.006ab假手术组50.085±0.007b0.140±0.019b0.019±0.03b对照组

0.302±0.030a1.890±0.016a0.247±0.035a

注:表内数值以平均吸光度表示。与假手术组比较,aP<0.05;与对照组比较,bP<0.05

五、P-Flk检测结果

免疫印迹结果显示治疗组A、治疗组B、假手术组的P-Flk蛋白表达量高于对照组(P<0.05);治疗组A、治疗组B的P-flk蛋白表达量均高于假手术组(P<0.05);而治疗组A的P-Flk蛋白表达量与治疗组B比较,差异无统计学意义(P>0.05)(图3,表2)。免疫组化结果显示:P-Flk阳性表达主要见于血管内皮细胞及血管壁,假手术组血管内皮细胞及血管壁未见明显阳性表达,其他各组可见阳性表达,治疗组A、治疗组B、假手术组及对照组的VEGF平均光密度结果分别为对照组阳性表达强于治疗组A、治疗组B,治疗组A与治疗组B比较,阳性强度差异无统计学意义(图4,表

3)。

注:A为治疗组A;B为治疗组B;C为假手术组;D对照组图3 P-Flk的免疫印迹结果 图4 免疫组化结果箭头所指

为阳性细胞(光镜,×400)。4A为治疗组A;4B为治疗组B;4C为假手术组;4D对照组

表3 免疫组化技术比较各组的VEGF及P-Flk的

表达(-x±s)

组别动物数

(只)VEGFP-Flk治疗组A

50.0102±0.0028ab0.0014±0.0006ab治疗组B50.0100±0.0029ab0.0012±0.0007ab假手术组50.0043±0.0011b0.0002±0.0001b对照组

0.0179±0.0041a

0.0023±0.0007a

注:表内数值以平均吸光度表示。与假手术组比较,aP<0.05;与对照组比较,bP<0.05

六、Cleaved-Caspase3检测结果

免疫印迹结果显示治疗组A、治疗组B、假手术

组的Cleaved-Caspase-3表达低于对照组(P<

0.05);治疗组A、治疗组B的Cleaved-Caspase-3表达高于假手术组(P<0.05);而治疗组A的Cleaved-Caspase-3表达与治疗组B比较,差异无统计学意义(P>0.05)(图5,表

2)。

注:A为治疗组A;B为治疗组B;C为假手术组;D对照组

图5 CleavedCaspase-3

的免疫印迹结果

图6 脑组织TUNEL结果。A为治疗组 A;B为治疗组B;C为假手术组;D对照组。箭头所指为阳性细胞(光镜,×400)七、脑组织原位细胞凋亡(TUNEL)测定结果

治疗组A、治疗组B、假手术组的TUNEL阳性

细胞数分别为(36±4)个、(35±3)个和(11±3)个,

分别与对照组(69±6)个比较,差异有统计学意义(P<0.05);治疗组A、治疗组B的TUNEL阳性细胞数高于假手术组(P<0.05);治疗组A的TUNEL阳性细胞数与治疗组B比较,差异无统计学意义(P>0.05)(图6)。讨论

整合素αvβ3是细胞表面黏附分子家族的重要成员之一,是一组由α和β两组亚基以非共价键形式结合而成的异二聚体跨膜糖蛋白受体[6-7]

。整合素αvβ3受体与细胞外基质中天然配体中相应的肽序列精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸(RGD)相互作用,控制内皮细胞的排列及血脑屏障的形成[8]

,而包含RGD序列的小分子环肽(IC50=6.41nmol/L)能强烈抑制整合素αvβ3[9]。研究表明,在缺血性脑脑损伤中整合素αvβ3选择性在缺血区表达上调[10]

,提示整合素αvβ3参与缺血性脑卒中的病理生理过程。在缺血超早期,血管内皮生长因子(VEGF)及其受体Flk与整合素αvβ3选择性在缺血区表达上调,且Flk与整合素αvβ3中β3亚基可相互促进其磷酸化[11]

。血管内皮生长因子是一种具有亲肝素活性的糖

基化分泌性多肽因子,因其对内皮生长的有丝分裂

原作用而被命名为血管内皮生长因子[12]

。VEGF具有强烈的血管通透性,其效应比组织胺强5000

倍,且不被抗组织胺药物所抑制[13]

。缺氧是VEGF/

VEGFR表达的最主要的调节因子[14-15]

。本实验中对照组的血脑屏障通透性、组织含水量及VEGF、P-Flk的含量均高于其他组,提示在急性脑缺血中VEGF及其受体表达上调,且VEGF在缺血超早期参与了血脑屏障的破坏,加重了脑水肿,与前人的研

究结果一致[16]

。研究表明,VEGF可促进血小板黏附[17]

、能够诱导缺血大脑的血流动力学盗血现象:即减少梗死区域的脑血流,增加大脑中动脉周围区

域的血液灌注[18]。另外,脑缺血时,因VEGF增加

了血脑屏障(BBB)的渗漏,可导致炎症细胞、血管收

缩因子、凝血因子及纤维蛋白原的外渗,诱发脑出

血,加重脑水肿及神经细胞的损伤[1,15-16]。而研究

证实了VEGF受体抑制剂在缺血超早期可改善

VEGF介导的缺血性脑损伤[19]。西仑吉肽模拟多

肽cyclo(RGDfv)的结构,是可以抑制αvβ3整联蛋

白的小分子化合物[20]。本实验研究发现整合素

αvβ3抑制剂西仑吉肽在短暂性MCAO模型中可降低血脑屏障通透性,减少脑水肿,且一系列的研究发

现脑缺血早期VEGF及其受体磷酸化的下降可以起到保护脑组织的作用,提示整合素αvβ3抑制剂对

急性缺血性脑卒中有神经保护作用,与抑制VEGF介导的生物学效应有关。神经元死亡有两种方式,坏死和凋亡。神经元

坏死主要发生于缺血严重的核心区,而凋亡则多发

于缺血的周边区和脑中某些缺血易感部位,如海马

CA1区及皮质和纹状体尾壳核的散在神经元[21]

研究表明,细胞状态从缺血核心区到周边阴影区呈坏死向凋亡转变。神经元缺血性坏死难于逆转,然而凋亡可以通过对其上游信号的调节进行干预,因此脑缺血治疗策略正是以这些坏死边缘和凋亡细胞为目标进行的。研究表明,Caspase家族的某些成员

参与了凋亡的信号传递,具有重要的调控和效应作

用,其中Cleaved-Caspase-3异常升高则是再灌注损伤启动缺血脑区受损神经元凋亡的

关键环节[22]

。本研究中发现在缺血半暗带区中,治疗组Cleaved-Caspase-3的含量及凋亡细胞数较对照组降低,而组织学梗死面积测

定结果也显示梗死面积较对照组降低,提示整合素αvβ3可抑制神经

元凋亡,这可能与抑制VEGF介导的缺血损伤有关外,还与改善缺血区的微循环、减轻局部炎症等因素有关。研究证实,在急性脑缺血中,纤维蛋白是整合素αvβ3的配体之一[6]。Okada等[10]在MCAO模型中发现整合素αvβ3和纤维蛋白在缺血区微血管上表达上调。而纤维蛋白在微血管的沉积会阻碍血液灌注,且促进血小板活化,而阻断纤维蛋白原可抑制血小板在血管壁的黏附[23]。因此整合素αvβ3抑制剂可通过干扰纤维蛋白原与整合素之间的相互作用,改善微循环,从而抑制神经元凋亡,发挥神经保护作用。

本研究设计了两个药物浓度100μg/kg和200μg/kg,初步探索西仑吉肽治疗急性脑缺血的剂量-效应关系,但研究结果表明两个不同浓度的各项指标检测并未见统计学差异,提示在梗死后24h内给予西仑吉肽100μg/kg及200μg/kg两个浓度治疗的效应未见剂量依赖关系。

综上所述,整合素αvβ3抑制剂可降低血脑屏障的通透性,从而减少血管源性脑水肿及出血性转化的发生,其作用机制可能与西仑吉肽抑制VEGF介导的生物学效应有关。

然而由于脑缺血模型具有的一定的局限性,如大鼠是年轻健康的SD雄鼠,缺乏人脑缺血前就存在的各种复杂的危险因素和病理生理学过程,且SD大鼠的神经解剖和代谢与人类不完全相同,且缺乏大脑沟回[24],因此临床应用仍需要更多的研究进一步证实。

参考文献

[1]vanBruggenN,ThibodeauxH,PalmerJT,etal.VEGFantagonismreducesedemaformationandtissuedamageafter

ischemia/reperfusioninjuryinthemousebrain[J].JClinInvest,

1999,104(11):1613-1620.DOI:10.1172/JCI8218.

[2]ArmsteadWM,CinesDB,HigaziAA.Plasminogenactivatorscontributetoimpairmentofhypercapnicandhypotensive

cerebrovasodilationaftercerebralhypoxia/ischemiainthenewborn

pig[J].Stroke,2005,36(10):2265-2269.DOI:10.1161/01.

STR.0000181078.74698.b0.

[3]ZhangZ,ChoppM.Vascularendothelialgrowthfactorandangiopoietinsinfocalcerebralischemia[J].TrendsCardiovasc

Med,2002,12(2):62-66.DOI:10.1016/S1050-1738(01)

00149-9.

[4]AbumiyaT,LuceroJ,HeoJH,etal.Activatedmicrovesselsexpressvascularendothelialgrowthfactorandintegrinalpha(v)

beta3duringfocalcerebralischemia[J].JCerebBloodFlow

Metab,1999,19(9):1038-1050.DOI:10.1097/00004647-199909000-00012.

[5]LongaEZ,WeinsteinPR,CarlsonS,etal.Reversiblemiddlecerebralarteryocclusionwithoutcraniectomyinrats[J].Stroke,

1989,20(1):84-91.DOI:10.1161/01.STR.20.1.84.

[6]PlowEF,HaasTA,ZhangL,etal.Ligandbindingtointegrins[J].JBiolChem,2000,275(29):21785-21788.DOI:10.

1074/jbc.R000003200.

[7]纪庆,周圆,彭晖,等.整合素αvβ3小分子抑制剂的设计及活

性测定[J].中国医学科学院学报,2007,29(3):347-352.[8]delZoppoGJ,MabuchiT.Cerebralmicrovesselresponsestofocal

ischemia[J].JCerebBloodFlowMetab,2003,23(8):879-894.

DOI:10.1097/01.WCB.0000078322.96027.78.

[9]BurnettCA,XieJ,QuijanoJ,etal.Synthesis,invitro,andinvivocharacterizationofanintegrinalpha(v)beta(3)-targeted

molecularprobeforopticalimagingoftumor[J].BioorgMed

Chem,2005,13(11):3763-3771.DOI:10.1016/j.bmc.2005.03.024.

[10]OkadaY,CopelandBR,HamannGF,etal.Integrinalphavbeta3isexpressedinselectedmicrovesselsafterfocalcerebralischemia

[J].AmJPathol,1996,149(1):37-44.

[11]SoldiR,MitolaS,StraslyM,etal.Roleofalphavbeta3integrinintheactivationofvascularendothelialgrowthfactorreceptor-2

[J].EMBOJ,1999,18(4):882-892.DOI:10.1093/emboj/18.4.882.

[12]LeungDW,CachianesG,KuangWJ,etal.Vascularendothelialgrowthfactorisasecretedangiogenicmitogen[J].Science,1989,

246(4935):1306-1309.DOI:10.1126/science.2479986.

[13]周沐科,周麟,何俐.血管内皮生长因子与缺血性脑血管疾病关系的研究进展[J].生物医学工程学杂志,2005,22(2):420-423.DOI:10.3321/j.issn.1001-5515.2005.02.049.

[14]YehWL,LuDY,LinCJ,etal.Inhibitionofhypoxia-inducedincreaseofblood-brainbarrierpermeabilitybyYC-1throughthe

antagonismofHIF-1alphaaccumulationandVEGFexpression

[J].MolPharmacol,2007,72(2):440-449.DOI:10.1124/mol.107.036418.

[15]HayashiT,AbeK,SuzukiH,etal.Rapidinductionofvascularendothelialgrowthfactorgeneexpressionaftertransientmiddle

cerebralarteryocclusioninrats[J].Stroke,1997,28(10):2039-2044.DOI:10.1161/01.STR.28.10.2039.

[16]VerheulHM,JornaAS,HoekmanK,etal.Vascularendothelialgrowthfactor-stimulatedendothelialcellspromoteadhesionand

activationofplatelets[J].Blood,2000,96(13):4216-4221.

[17]ZhangZG,ZhangL,JiangQ,etal.VEGFenhancesangiogenesisandpromotesblood-brainbarrierleakageinthe

ischemicbrain[J].JClinInvest,2000,106(7):829-838.DOI:

10.1172/JCI9369.

[18]WangY,KilicE,KilicU,etal.VEGFoverexpressioninducespost-ischaemicneuroprotection,butfacilitateshaemodynamicsteal

phenomena[J].Brain,2005,128(Pt1):52-63.DOI:10.1093/brain/awh325.

[19]KimuraR,NakaseH,TamakiR,etal.Vascularendothelialgrowthfactorantagonistreducesbrainedemaformationandvenous

infarction[J].Stroke,2005,36(6):1259-1263.DOI:10.1161/01.STR.0000165925.20413.14.

[20]LogesS,ButzalM,OttenJ,etal.Cilengitideinhibitsproliferationanddifferentiationofhumanendothelialprogenitor

cellsinvitro[J].BiochemBiophysResCommun,2007,357

(4):1016-1020.DOI:10.1016/j.bbrc.2007.04.060.

[21]EguchiY,ShimizuS,TsujimotoY.IntracellularATPlevelsdeterminecelldeathfatebyapoptosisornecrosis[J].CancerRes,

1997,57(10):1835-1840.

[22]FriedlanderRM.Apoptosisandcaspasesinneurodegenerativediseases[J].NEnglJMed,2003,348(14):1365-1375.DOI:

10.1056/NEJMra022366.

[23]MassbergS,EndersG,MatosFC,etal.Fibrinogendepositionatthepostischemicvesselwallpromotesplateletadhesionduring

ischemia-reperfusioninvivo[J].Blood,1999,94(11):3829-3838.

[24]BraeuningerS,KleinschnitzC.Rodentmodelsoffocalcerebralischemia:proceduralpitfallsandtranslationalproblems[J].Exp

TranslStrokeMed,2009,1:8.DOI:10.1186/2040-7378-1-8.

(收稿日期:2015-09-14)

(本文编辑:朱瑶)

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