_淀粉样蛋白诱导大鼠海马神经元Tau蛋白异常磷酸化及雌激素的保护作用

_淀粉样蛋白诱导大鼠海马神经元Tau蛋白异常磷酸化及雌激素的保护作用
_淀粉样蛋白诱导大鼠海马神经元Tau蛋白异常磷酸化及雌激素的保护作用

 第21卷 第5期医学研究生学报

V o l .21 N o .5

 2008年5月J o u r n a l o f M e d i c a l P o s t g r a d u a t e s

M a y .2008

·论 著·

β淀粉样蛋白诱导大鼠海马神经元T a u 蛋白

异常磷酸化及雌激素的保护作用

段立晖1

, 周国庆1

, 夏树开2

, 孙 芳1

, 胡云龙2

, 林世康

2

1.南京大学医学院临床学院(南京军区南京总医院)干部神经内科,江苏南京210002;

2.南京川博生物科技有限公司,江苏南京210061

摘要: 目的:研究β淀粉样蛋白诱导大鼠海马神经元T a u 蛋白异常磷酸化及雌激素的保护作用。 方法:将24只S D 大鼠随机分为正常对照组、A D 组、A D+雌二醇组,每组8只。除正常对照组以外的16只大鼠海马内注射凝聚态A β25-35制成阿尔茨海默病(A D )模型;A D+雌二醇组大鼠于建模后2周,皮下注射雌二醇。三组大鼠M o r r i s 水迷宫检测大鼠认知功能,B i e l s c h o w s k i 染色法观察海马神经元形态,免疫组化法观察T a u 蛋白异常磷酸化变化。 结果:A D+雌二醇组大鼠M o r r i s 水迷宫测试明显优于A D 组(P<0.001);海马C A 1区T a u 蛋白磷酸化阳性细胞数(26.2±3.5、49.2±3.1、61.5±4.5、42.1±2.7、61.2±2.3、24.0±1.6)明显少于A D 组(45.4±3.1、106.7±7.6、79.3±3.2、67.7±2.9、97.5±2.9、46.7±5.8)(P<0.01);海马C A 1区神经元形态较A D 组规则。结论:β淀粉样蛋白可诱导大鼠海马神经元T a u 蛋白出现异常磷酸化,雌激素替代治疗,可改善A D 大鼠的认知功能,并抑制海马T a u 蛋白的异常磷酸化。

关键词: β淀粉样蛋白; 阿尔茨海默病; T a u 蛋白; 雌激素

中图分类号: R 459.1 文献标识码: A 文章编号: 1008-8199(2008)05-0486-05

E s t r o g e n i n h i b i t s β-a m y l o i d -i n d u c e da b n o r m a l p h o s p h o r y l a t i o n

o f t a u i n r a t h i p p o c a m p a l n e u r o n s

D U A NL i -h u i 1

,Z H O UG u o -q i n g 1

,X I AS h u -k a i 2

,S U NF a n g 1

,H UY u n -l o n g 2

,L I NS h i -k a n g 2

(1.D e p a r t m e n t o f G e r i a t r i c N e u r o l o g y ,S c h o o l o f M e d i c i n e ,N a n j i n g U n i v e r s i t y /N a n j i n g G e n e r a l H o s p i -t a l o f N a n j i n g M i l i t a r y C o m m a n d ,P L A ,N a n j i n g 210002,J i a n g s u ,C h i n a ;2.N a n j i n g C h u a n b o B i o -t e c h C o .,L t d .N a n j i n g 210061,J i a n g s u ,C h i n a )

A b s t r a c t : O b j e c t i v e :T o s t u d y t h e a b n o r m a l p h o s p h o r y l a t i o no f t a ui n d u c e d b y β-a m y l o i d p r o t e i n i n h i p p o c a m p a l n e u r o n s a n d n e u r o p r o t e c t i o n b y e s t r o g e n . M e t h o d s :T w e n t y -f o u r S Dr a t s w e r e r a n d o m l y a n d e q u a l l y d i v i d e d i n t o a n o r m a l c o n t r o l g r o u p ,a n A D(A l z h e i m e r 's d i s e a s e )g r o u p a n d a n A D +e s t r o -g e n g r o u p .A Dm o d e l s w e r e e s t a b l i s h e d b y i n j e c t i n g A β25-35i n t o t h e h i p p o c a m p u s o f 16o f t h e r a t s a n d 2w e e k s l a t e r ,h a l f t h e m o d e l r a t s r e c e i v e d e s t r o g e n i n j e c t i o n .T h e c o g n i t i o n o f t h e 3g r o u p s o f r a t s w a s t e s t e d b y M o r r i s w a t e r m a z e ,t h e p a t h o l o g i c a l c h a n g e s o f t h e h i p p o c a m p u s o b s e r v e d b y

B i e l s c h o w s k i

·

486·*

收稿日期: 2008-01-18; 修订日期: 2008-02-26基金项目: 南京军区南京总医院科研基金资助项目(批准号:2006024)

作者简介: 段立晖(1980-),男,北京人,医师,医学硕士研究生,从事神经内科专业。

DOI :10.16571/j .cn ki .1008-8199.2008.05.031

s t a i n i n g,t h e t a u h y p e r p h o s p h o r y l a t i o n d e t e c t e d b y i m m u n o h i s t o c h e m i c a l s t a i n i n g a n d t h e r e s u l t s c o m-p a r e d. R e s u l t s:C o m p a r e d w i t ht h e A Dg r o u p,t h e r e s u l t s o f t h e M o r r i s w a t e r m a z e t e s t w e r e s i g n i f i-

c a n t l y b e t t e r(P<0.001)i n t h e A D+e s t r o g e n g r o u p,P-t a u p o s i t i v e c e l l s r e m a r k a b l y f e w e r(26.2±

3.5,49.2±3.1,61.5±

4.5,42.1±2.7,61.2±2.3,24.0±1.6v s4

5.4±3.1,10

6.7±

7.6,

79.3±3.2,67.7±2.9,97.5±2.9a n d46.7±5.8)(P<0.01),a n d t h e n e u r o f i b r i l s i n t h e h i p p o-

c a m p u s m o r e r e g u l a r. C o n c l u s i o n:E s t r o g e n i m p r o v e s t h e c o g n i t i o n o f A Dr a t s a n di n h i b i t sβ-a m y-l o i d-i n

d u c

e d a b n o r m a l p h o s p h o r y l a t i o n o

f t a u i n t h e h i p p o c a m p u s.

K e y w o r d s: β-a m y l o i d p r o t e i n; A l z h e i m e r's d i s e a s e; T a u; E s t r o g e n

0 引 言

阿尔茨海默病(A l z h e i m e r d i s e a s e,A D)主要以进行性痴呆为临床特征,其主要病理改变是在海马和颞叶皮质出现老年斑、神经元纤维缠结和营养不良性轴突改变等。老年斑的形成与β淀粉样蛋白(β-a m y l o i d p r o t e i n,Aβ)在细胞外的过度沉积有关,而神经元纤维缠结则主要由T a u蛋白异常磷酸化所致。T a u蛋白在Aβ诱导神经退行性病变过程中起着重要作用[1]。与这些过程密切相关的因素包括雌激素系统以及胆碱能系统等[2-4]。有研究认为,雌激素对A D有一定的保护作用,两者之间的关系也逐渐受到重视[5-9]。

本实验选用成年S D大鼠,通过脑立体定位技术给大鼠海马背侧注射Aβ25-35多肽片段,并予以雌激素处理,从行为学、形态学和抑制T a u蛋白异常磷酸化等方面,观察雌激素对A D大鼠神经细胞的保护作用。

1 材料和方法

1.1 材料

1.1.1 动物及分组 健康雌性成年S D大鼠24只,由南京军区南京总医院比较医学科提供,体质量为300~450g,术前饲养1周,自由饮食,室温22~25℃,每天光照12h。将实验大鼠随机分为3组:正常对照组、A D组、A D+雌二醇组,每组8只。

1.1.2 试剂与仪器 Aβ25-35多肽片段购自A l e x i s 公司,17β-雌二醇购自S i g m a公司,T a u(p-T h r181)、T a u(p-T h r205)、T a u(p-T h r231)、T a u(p-S e r262)、T a u (p-S e r404)、T a u(p-S e r396)多克隆抗体均由南京川博生物科技有限公司提供,脑立体定向仪(江湾I 型)系上海第二军医大学制造。

1.2 方法

1.2.1 凝聚态Aβ25-35的制备 按G i o v a n n e l l i 等[10]的方法,将1m g Aβ25-35溶于200μl无菌等渗盐水中,制成5n m o l/μl浓度,密封后置于37℃细胞培养箱中96h,形成凝聚态。

1.2.2 动物模型制作 ①A D组:8只大鼠4%戊巴比妥钠腹腔注射麻醉,用脑立体定位仪取平颅头位固定大鼠,参照包新民等[11]的《大鼠脑立体定位图谱》,确定右侧前囟后3.8m m、中线旁2.5m m,颅骨表面下3.0m m为右侧海马背侧部,用1μl微量注射器5m i n内缓慢注入Aβ25-351μl,留针10m i n。术后给予青霉素钠盐5万单位肌内注射,1/d,连续3d。②A D+雌二醇组:8只大鼠侧脑室注射Aβ25-352周后皮内注射17β-雌二醇,200μg/k g,每周2次,共5周。③A D组和正常对照组大鼠于2周后皮下注射等渗盐水,1m l/k g,每周2次,共5周。

1.2.3 空间学习记忆力检测 采用M o r r i s[12]的水迷宫法。水迷宫参照中国科学院上海药物研究所设计,水温保持在19~20℃,周围参照物不变。于注射后14d,进行水迷宫训练,每天训练2次(上、下午各1次),连续6d。训练时,按东北、西北、东南、西南4个象限依次将大鼠面向池壁放入水中,设定最长游动时间为120s,以秒表计时,记录大鼠找到平台所需时间,记为潜伏期。然后撤除平台,选定和平台相对的象限中点为入水点,记录120s内大鼠为搜索平台而穿过平台区的次数(以注射后第20d的成绩作为测试结果)。

1.2.4 取材 大鼠断头处死,取出全脑置于10%甲醛中浸泡约1~2h后,冠状切取视交叉和乳头体之间的脑组织,继续置于甲醛中固定24h。组织块经常规脱水、透明、浸蜡、包埋成蜡块,行冠状切片,片厚4μm,分别用于B i e l s c h o w s k i染色和免疫组织化学染色。

1.2.5 B i e l s c h o w s k i染色 组织切片经脱蜡、逐级乙醇脱水及水洗后,于37℃温箱内用20%硝酸银水溶液避光浸染25~35m i n,随后蒸馏水洗3~5m i n; 10%甲醛还原数秒钟至切片呈现黄色为止,水洗3~5m i n;用氨银溶液滴染20~40s,倾去染液,直接用40%甲醛液再次还原1~2m i n;5%硫代硫酸

·

487

·

 第5期 段立晖,等 β淀粉样蛋白诱导大鼠海马神经元T a u蛋白异常磷酸化及雌激素的保护作用

钠水溶液固定3~5m i n ,水洗3~5m i n ;然后用滤纸将切片周围水分吸干,乙醇脱水,二甲苯透明,中性

树胶封固。

1.2.6 免疫组织化学染色 按标准A B C 免疫组织化学染色方法,组织切片于70℃烤片1h ,常规脱蜡,P B S 液冲洗3次,每次3m i n ;3%H 2O 2阻断内源性过氧化物酶10m i n ,P B S 液冲洗3次,每次3m i n ;枸橼酸盐缓冲液高压抗原修复,再予P B S 冲洗3次,每次3m i n ;用免疫组化笔将各切片的组织圈起,非免疫动物血清孵育15m i n ,倾去血清,予一抗[T a u (p -T h r 181)、T a u (p -T h r 205)、T a u (p -T h r 231)、T a u (p -S e r 262)、T a u (p -S e r 404)、T a u (p -S e r 396)]4℃孵育过夜;P B S 液冲洗3次,每次5m i n 后,以相应二抗孵育10m i n ;P B S 液冲洗2次,每次5m i n ,单蒸水4次,每次3m i n ,辣根过氧化物酶孵育10m i n ;P B S 液冲洗3次,每次5m i n ,D A B 显色,苏木精复染,脱水、透明、中性树胶封固。P B S 液代替一抗作阴性对照。每只大鼠取3张切片,每张切片高倍(×400)镜下计数海马C A 1区5个视野阳性细胞总数,计算每个视野平均阳性细胞数。1.2.7 统计学分析 定量结果以均数±标准差(x

±s )表示,组间均数比较用单因素方差分析,两两组间比较用t 检验。采用S P S S 11.5统计软件进行分析,以P ≤0.05为差异有显著性统计学意义。2 结 果

2.1 各组大鼠M o r r i s 水迷宫实验结果比较 与正常对照组比较,A D 组的逃避潜伏期显著延长,撤除平台后,A D 大鼠穿过原平台位置的次数明显减少(P <0.001);与A D 组比较,A D+雌二醇组逃避潜

伏期明显缩短,穿过原平台位置的次数明显增多(P <0.001);但A D+雌二醇组与正常对照组比较,

则差异无统计学意义(P>0.05)。见表1。

表1 三组大鼠M o r r i s 水迷宫实验结果比较(x ±s )

T a b l e 1 R e s u l t s o f M o r r i s w a t e r m a z e i n t h e t h r e e g r o u p s o f r a t s

(x ±s )

组 别n 逃避潜伏期(s )穿过平台次数正常对照组811.9±1.28.4±1.89A D 组842.7±2.9*4.1±1.43*A D+雌二醇组

8

15.3±1.9■

7.8±1.88■

与正常对照组比较,*P<0.001; 与A D 组比较,■P<0.001

2.2 各组大鼠海马组织形态学表现 正常对照组

大鼠海马结构和神经元形态正常,细胞体未着色,轴突呈棕褐色,神经元纤维排列规则整齐、紧密、形态完整(图1,见后插页)。A D 组大鼠海马神经元缺失,残留的海马神经元轴突即神经纤维走形紊乱、增粗、肿胀,染色加深(图2,见后插页)。A D+雌二醇组大鼠海马神经元轴突排列较A D 组明显整齐有序,密集程度减低,但较正常对照组差(图3,见后插页)。2.3 各组海马组织不同位点的T a u 蛋白磷酸化水平 正常对照组仅检测到少量特异性位点标记的阳性神经元,与之相比,A D 组T h r 181、T h r 205、T h r 231、S e r 262、S e r 404及S e r 396阳性表达数量明显增加(P <0.01)。给予雌激素干预后,A D+雌二醇组T h r 181、T h r 205、T h r 231、S e r 262、S e r 404及S e r 396阳性表达数量显著低于A D 组(P<0.01)。但A D+雌二醇组与正常对照组比较,差异无统计学意义(P >0.05)。见表2。

表2 三组阳性海马神经元数目比较(x ±

s )T a b l e 2 N u m b e r s o f p o s i t i v e h i p p o c a m p a l n e u r o n s i nt h et h r e e g r o u p s o f r a t s (x ±s )

组 别n T a u (p T h r 181)T a u (p T h r 205)T a u (p T h r 231)T a u (p S e r 262)T a u (p S e r 404)T a u (p S e r 396)正常对照组821.6±4.745.3±6.954.1±4.337.3±3.156.4±2.722.4±2.3A D 组845.4±3.1*106.7±7.6*79.3±3.2*67.7±2.9*97.5±2.9*46.7±5.8*A D+雌二醇组

8

26.2±3.5■

49.2±3.1■

61.5±4.5■

42.1±2.7■

61.2±2.3■

24.0±1.6■

与正常对照组比较,*P<0.01; 与A D 组比较,■P<0.01

3 讨 论

A D 是一种以获得性持续性记忆力减退、认知功能障碍以及行为异常为特征的中枢神经系统退行性疾病。A β的产生及其在大脑皮质的蓄积,被认为

是A D 形成和发展的关键因素[13-15]

。根据G i o v a n -

n e l l i 等[16]

提出的A β25-35是最具毒性基因片段的

假设,本实验选择了A β25-35大鼠海马内注射。实验结果证实凝聚态A β25-35海马注射具有明确的神经毒性作用,可较好地模拟A D 行为和病理表现。 有实验证明,雌激素可作为有潜力的治疗手段,

可预防或延迟A D 的发展[17]

。本研究水迷宫测验

·488·医学研究生学报2008年5月 第21卷 

结果发现,A D组较正常对照组的潜伏期明显延长,同时撤离平台后,穿越原平台位置的次数也明显增加,说明A D大鼠的学习记忆能力显著下降。而A D+雌二醇组的测验结果显著优于A D组,但与正常对照组的差异无统计学意义,说明雌二醇可改善A D大鼠的认知功能,同时对A D大鼠的记忆损害具有明显的保护作用。

已有研究表明,Aβ可通过诱导细胞凋亡[18],诱导产生活性氧,从而触发氧化应激反应[19],影响胆碱能神经系统[20],诱导T a u蛋白过度磷酸化[21]以及通过炎症或胶质等激活[22]机制引发A D。本实验通过B i e s c h o w s k i染色观察到大鼠海马神经元损伤变化。注射Aβ25-35后,局部海马神经元出现大片缺失,且神经纤维走行紊乱,并出现增粗、肿胀、断裂以及纤维深染等损害表现,说明神经细胞骨架微管系统发生改变,进一步证实了Aβ25-35对大鼠海马神经元的毒性作用。有资料表明[23-26],雌激素拮抗Aβ对神经元毒性作用的机制可能是通过其膜结合位点激活c A M P-蛋白激酶A-环腺苷酸反应元件结合蛋白途径,激活c A M P信号转导系统,导致磷脂酰肌醇-3激酶活化。通过该途径激活细胞内抗氧化物谷胱甘肽,帮助神经元拮抗Aβ的氧化毒性作用。Z h a o等[27]研究发现,17β-雌二醇可保护神经元拮抗Aβ25-35引起的细胞内A T P减少。本实验经雌激素治疗后,海马神经元损伤明显减轻,神经纤维排列较规则,且无显著增粗、肿胀、断裂等,说明予以雌激素可能通过拮抗Aβ的神经毒性作用,减轻A D病理改变。

国内外研究表明,凝聚态Aβ25-35能使神经元发生退行性改变,并导致T a u蛋白在特定位点的磷酸化增多[28,29]。T a u蛋白共有21个T a u-S e r和T a u-T h r磷酸化位点,目前多数研究仅选取S e r199/ S e r202、S e r396、T h r231等特定位点,本研究除选取具有代表性的S e r396、T h r231位点外,还选取了T h r181、T h r205、S e r262、S e r404等位点进行磷酸化水平研究。实验发现,海马注射Aβ25-35后,应用特异性位点标记的磷酸化T a u蛋白抗体对海马神经元进行免疫组化染色,观察到阳性表达的神经元数目明显增多;而应用雌激素治疗后,A D大鼠海马C A1区T a u蛋白磷酸化表达水平明显降低。进一步证实了Aβ25-35可以诱导T a u蛋白异常磷酸化增多,而雌激素可能通过抑制T a u蛋白的异常磷酸化,来减轻海马神经元损伤。

雌激素的作用是多途径和多环节的,但目前对于外源性雌激素治疗A D仍存在争论[30]。总体来说,可认为雌激素是A D的保护性因素[31],内源性雌激素水平与A D存在明确的剂量-效应关系[32],补充外源性雌激素对A D具有治疗作用[33],但其替代剂量与时间的关系、长期应用雌激素替代治疗的不良反应等问题,尚需进一步的论证。

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(责任编辑:齐 名; 英文编辑:罗永合)

·490·医学研究生学报2008年5月 第21卷 

雌激素的作用机制概述

雌激素的作用机制概述 摘要】经典的雌激素(E2)作用机制是通过雌激素受体ER结合到靶基因启动子区 的雌激素反应元件上来发挥配体依赖的转录调节作用。但许多实验已证明E2也 可以通过特异的膜受体(mER)信号通路发挥调控作用,激活膜受体后能激活许多 蛋白激酶最终影响下游转录因子的活性。另外,膜受体介导的信号通路也可以通 过磷酸化核受体(nER)和其辅因子来调节经典的雌激素受体的核效应。 【关键词】雌激素雌激素核受体雌激素膜受体基因调控 【中图分类号】R335 【文献标识码】A 【文章编号】2095-1752(2012)09-0341-02 1 引言 雌激素是生物体内许多生物学过程如生长、发育和复制的关键调节剂,在男 性和女性体内都包括许多雌激素的靶器官如生殖道、乳房组织、骨骼、心血管和 中枢神经系统。雌激素的生物学作用主要是通过雌激素受体ERα和雌激素受体 ERβ来调节的,它们分别由不同的基因编码,属于配体诱导的转录因子,是核受 体家族成员之一。ERα和ERβ的组织分布和结合配体的特征明显不同,主要是由 于雌激素的组织选择性作用。配体结合引起受体构象改变从而促进受体形成二聚 体并结合到靶基因启动子区的雌激素效应元件(ERE)上来发挥受体的核转录活性。雌激素受体也可以不需要结合DNA来调节基因的表达,可与其他启动子结合蛋白相互作用或阻止其他转录因子招募到启动子上[1-3]。 雌激素还可以与膜受体结合诱导快速的细胞内反应,现已证明了雌激素可调 节许多细胞内磷酸化级联途径来发挥非核效应,这些效应包括激活腺甘酸环化酶(AC),MAPK,磷脂酰肌醇3-激酶(PI3K)或增加胞内钙离子浓度等。快速的 信号级联通路最终能影响下游许多转录因子的磷酸化状态。此外,雌激素激活的 信号途径也能影响核受体依赖的转录活性[4,5]。近年来,已有许多实验证明了核 受体非核效应的分子机制,但仍需解决的问题还有很多,如发挥具体非核效应的 受体的性质,在调节细胞信号途径过程中整合激素作用的分子机制及甾体类激素 快速非核效应的生理学作用等。 2 雌激素的核效应 雌激素的核效应是通过核受体家族成员的雌激素受体ERα和ERβ介导的,经 典的ERs效应是作为核受体发挥其核效应:ER结合E2后使ER从抑制性复合体中 释放并形成同源二聚体转入到核中,通过结合到雌激素反应元件(ERE)上并招 募多种辅因子来调节其他转录因子的表达。 胞内信号途径也能调节nER的作用。不同的激酶像PKA、MAPK及A-CDK2可 以磷酸化ERαN端的一些残基如104位、106为的丝氨酸残基,丝氨酸残基磷酸 化后可调节许多受体功能,如通过泛素-蛋白酶体途径下调nER的表达、nER的核 定位、nER的二聚化作用及转录活性等。除了直接作用于nER,这些信号途径还 可通过调节辅因子对nER发挥调节作用[6]。 3 膜受体介导的雌激素效应 雌激素(E2)除了发挥核效应外还可引起膜介导的快速反应。E2处理细胞能 快速引起许多蛋白激酶的激活并调节通过细胞膜的离子流。由于这些瞬时反应并 不会受到蛋白合成抑制剂的抑制,因此可确定mER的参与,并且,使用膜不通透 性雌激素如E2结合牛血清白蛋白(E2-BSA)能模拟E2膜信号转导途径引起的快 速反应。

原代海马神经元细胞培养

原代海马神经元细胞培养 溶液的配制: (1) 4%多聚甲醛溶液:4g多聚甲醛溶于100ml pH=7.4的0.01mol/l PBS中,混匀过滤, 室温保存。 (2)磷酸盐缓冲液(PBS)(0.01mol?l-1):KH2PO4,0.1g;Na2HPO4?12H2O,1.7g;KCl, 0.1g;NaCl,4.0g,双蒸水加至500ml,pH=7.2~7.4。用0.2μm滤膜过滤,4℃保存。 (3) 1%蛋白酶的配制:用磷酸缓冲液(pH=7.2~7.4)配制成浓度为1%的胰蛋白酶母液 冻存。使用时,用解剖液稀释至0.25%。 (4) 培养皿涂被多聚赖氨酸:配制0.01%的多聚赖氨酸,分装冻存。将上述多聚赖氨酸 放入培养皿中涂两遍,自然晾干后备用。 (5) 解剖液:葡萄糖,3.0g;蔗糖,7.5g;NaCl,8.0g;KCl,0.4g;Na2HP04?7H20,0.18g; KH2PO4,0.03g;HEPES,2.14g;加双蒸水1000ml,调pH=7.0~7.4,过滤,4℃保存。 (6) 种植液:DMEM 79%,胎牛血清,10%;马血清,10%;谷氨酰胺培养液1%。 (7) 饲养液:Neurobasal培养基,97%;谷氨酰胺培养液,1%;B-27,2%。 (8) 阿糖胞苷:用双蒸水配制成浓度为l mg?ml-1的母液储存。用0.2μm滤膜过滤,-20℃ 储存。使用时,取6μl母液加入2ml培养液中,终浓度为3μg?ml-1。(根据实验情况调整浓度) 大鼠原代海马神经元细胞的培养 (1) 新生SD大鼠(<12h),75%酒精浸泡消毒后断头,剥离出全脑并将其放入盛有解 剖液的培养皿中。 (2) 在解剖液中解剖大脑,分离出海马,移入另一盛有解剖液的培养皿中。在分离出全 部的海马后,去除血管等组织,然后用剪刀将海马分成数小块,放入盛有0.25%胰蛋白酶的培养皿中,将培养皿放入9%CO2、37℃消化20min。 (3) 将培养皿中的海马碎片移入离心管中,去除含胰蛋白酶的液体并用种植液将海马碎 片冲洗2~3遍,终止酶的消化作用。

大鼠 海马 电生理学杂记

神经系统由大量的神经元构成。这些神经元之间在结构上并没有原生质相连,仅互相接触, 其接触的部位称为突触 细胞突起是由细胞体延伸出来的细长部分,又可分为树突和轴突。 树突棘是树突表面的棘状突起,也就是形成突触的部位 一般认为,NMDA受体主要分布在神经细胞的突触后膜。在兴奋性神经元,NMDA受体主要 分布在树突棘头的突触后膜,且主要分布在突触后致密区(postsynaptic density, PSD) 突触可塑性:突触在形态和传递效能上的改变 突触后致密区(PSD):在电镜下所见的突触后膜胞质面聚集的一层均匀而致密的物质,见 于cns中所有树突棘突触的突触后膜上。主要功能是细胞粘附性的调节,受体集聚的控制和 受体功能的调节。 旷场试验:用来观察小鼠自发性探索运动活性和焦虑行为 反应实验动物在陌生环境中的自主行为与探究行为,以尿便次数反应其紧张度。 开场实验,open field test,这个测的是5min内,动物在一个开阔环境中的行为学变化,我 们用一个强光打在开场中央,开场有方形和圆形两种。圆形是一个大缸,白色的,具体尺寸 我忘记了。需要用的指标是:跨格数、站立数、排便数和梳理数(也就是理毛次数),前两 个指标为主。这个实验可以用中央场次数作为焦虑样行为的观察指标。 运动能力(locomotion, open field test 主要是评价动物的焦虑状态,它主要以动物进入中央区的时间百分率来评价焦虑状态,它也可以度等。 物在一个开放的新的地方会很小心,rodent动物喜暗而避明的特性会让自己躲在暗处,也会 对开阔地方有探索行为(好奇心),同时又有害怕紧张担心和焦虑心理,具有一定的新奇性 同时又具有一定的害怕。如果动物焦虑少,停留在中间等位置时间长久一些,不然反之。比 较这些特性可以比较动物的焦虑程度。具有抗焦虑作用的药物会让动物有更多的对开阔地方 有探索行为,焦虑紧张的动物更喜欢停留在开场的边缘和暗处。 LTP定义:给突触前纤维一个短暂的高频刺激后,突触传递效率和强度增加几倍且能持续数 小时至几天保持这种增强的现象。按LTP的时程分①PTP,强直后增强,一般5分钟后衰减; ②STP,短时程增强,持续半小时左右;③,LTP长时程增强,持续一小时以上 CaMKII这个蛋白是个很特殊的蛋白,在脑内含量非常高,大约占总蛋白量的1-2%。在突触 部位的含量很高,并且是PSD(postsynaptic density)主要蛋白。但这个蛋白最特殊之处是 其具有自身调节能力,仿佛自己本身就是一个具有学习记忆的功能。 因为把随着神经等器官、组织的兴奋所产生的动作电位作为其活动指标是最容易记录的现 象,所以常常用记录动作电位来深入研究神经系统等的机能。 高频刺激可引发突触后细胞的持久增强反应——最初被称为“持久增强作用”(

新生鼠海马、皮层神经元原代培养

新生鼠海马、皮层神经元原代培养 实验材料 1. 实验动物 新生Wistar大鼠,当天出生(<12 h)的乳鼠,SPF级。 2. 试剂 Hibernate A Neurobasal A B27 serum-free supplements Papin (木瓜蛋白酶) DNAase I OptiPrep Density Gradient Medium Poly-L-lysine (多聚赖氨酸) L-glutamine (L-谷氨酰胺) Penicillin (青霉素) Streptomycin (链霉素) D-Hank’s solution dd H2O 3. 溶液配制 1. 多聚赖氨酸:取多聚赖氨酸25 mg,用双蒸水溶解并稀释浓度为50μg/ml,用0.2 μm的微孔滤膜过滤,4 °C保存备用。(可配成25×) 2. 解剖液:HA:含0.5mM L-谷氨酰胺的Hibernate A,0.22μm微孔滤膜过滤,4°C保存备用。 3.Papin:用HA配制含Papin 2mg/mL的消化液,37°C孵育20~30min,0.22μm 微孔滤膜过滤,冰上保存至实验。在使用前3h内配制。

4.DNAase I:取DNAase I粉末用D-Hank’s液配制成50μg/mL,0.22μm微孔滤膜过滤。可一次配好,-20°C保存,每次取用。 4.终止消化液:HABG:含2% B27的HA。现用现配,37°C保存备用。 5.Optiprep离心介质:Optiprep medium∶HABG为124∶876,每离心管1~1.5mL。 5.种植液和培养液:Neurobasal-A/B27:含2% B27,0.5mM L-谷氨酰胺的Neurobasal-A。现用现配,37°C保存备用。 4.实验方法 1. 包被培养皿 使用前2 d,在无菌条件下取6孔培养板,加多聚赖氨酸1 mL/孔,放置2 h,吸去多余多聚赖氨酸,自然干燥,灭菌水洗板2次,干燥备用。 2. 组织剥离 取出生12 h以内的Wistar大鼠,用75%乙醇擦拭全身消毒。无菌条件下断头,沿正中剪开皮肤和颅骨,向两边分开,小心取出全脑,浸于冰浴的解剖液。首先切除小脑和脑干部分,然后沿正中切为左右两半球,海马位于半球的腹内侧。分别在解剖显微镜下剥离出海马并置于冰浴的解剖液中,完整的海马(半侧)呈月牙形。用精细镊小心除去中脑、纹状体等非皮层结构,剥离出皮层。 3. 消化和分散 用精细剪将海马剪成1~2 mm3的组织块,在6 cm培养皿中用配好的木瓜蛋白酶在37 °C下消化30 min,4个半皮层或16个半海马/10mL消化液,并加入500 μL DNAase I。消化结束后小心吸去消化液,加入2~3mL HABG,200 μL DNAase I,

氟西汀对海马神经元生长的影响

氟西汀对海马神经元生长的影响 各位读友大家好,此文档由网络收集而来,欢迎您下载,谢谢 【关键词】氟西汀;细胞培养;海马神经元;大鼠 氟西汀是5-羟色胺(5-HT)再摄取抑制剂之一,是应用较广的抗抑郁药。氟西汀除有抗抑郁作用外,尚可治疗其他中枢神经系统疾病。有研究表明,氟西汀对海马的神经保护作用是其发挥抗抑郁效应的机制之一[1]。关于氟西汀对体外培养的海马神经元生长的影响未见报道,本研究初步探讨了氟西汀对原代培养的海马神经元生长的影响。 1材料与方法 新生大鼠海马神经元的分离和培养 技术方法在参考文献[2]基础上加以改进。取出生24h内的新生SD大鼠(东南大学医学院动物实验中心提供),无菌分离出双侧海马,用显微剪剪碎,

D-Hank#39;s液清洗2或3次,将剪碎的海马组织转移至离心管中,加入等量%的胰酶(美国Sigma公司),37℃消化30min,中间振摇1或2次,加入10%的DMEM/F12(美国Gibco公司)5ml,轻轻吹打15次,然后1000r·min-1离心5min,制成单细胞悬液,置于CO2培养箱(德国Heraeus公司产品)中,差速贴壁30min,去除成纤维细胞,吸取未贴壁的细胞,并用200目的不锈钢滤网过滤,收集过滤后的单细胞悬液于培养皿中,然后至离心管中,取一滴单细胞悬液进行计数,并用DMEM/F12将细胞密度调到1×106ml-1,然后接种于200μg·ml-1多聚赖氨酸(美国Sigma公司)包被的6孔培养板中,转移至培养箱内培养,4h后换为无血清培养基,即含2%B27的Neurobasl培养基(美国Gibco公司),以后每3天半量换液1次。使用培养6d的神经元进行染色鉴定。 大鼠海马神经元的鉴定 烯醇化酶(NSE)免疫细胞化学染

胎鼠海马神经元培养及其鉴定

[作者简介]李玉(1965~),男,云南昆明市人,医学硕士,副教授,主要从事癫痫外科和功能神经外科临床研究 工作. 昆明医学院学报2011,(5):17~19Journal of Kunming Medical University CN 53-1049/R 胎鼠海马神经元培养及其鉴定 李玉1),王波1),但齐琴2 ) (1)昆明医学院第一附属医院神经外科,云南昆明650031;2)昆明医学院神经科学研究所,云南昆 明650031 )[摘要]目的建立胎鼠海马神经元体外培养方法,观察细胞生长情况,免疫组织化学染色鉴定神经元特 异性.方法取胎鼠海马,分裂获得细胞悬液,接种于24孔板,经2h 差速帖壁去除成纤维细胞,将细胞液转移并继续培养,以获娶纯度较高的海马神经元.培养第5、11、15天观察细胞和突起生长情况,用NeuN 抗体以免疫组化SP 二步法染色鉴立神经细胞.结果培养头3d .细胞生长缓慢,5d 时细胞开始生长,可见突起, 11d 时突起连成网状.经Neun 染色培养细胞呈阳性反应,证明是神经元.结论 本方法获取生长良好,纯度 较高的海马神经元. [关键词]胎鼠;海马神经元;Neun ;培养 [中图分类号]Q831.1+1[文献标识码]A [文章编号]1003-4706(2011)05-0017-03 I dent ificat ion and Cult ur e of Hippocampus Neur ons in Fet al Rat s LI Yu 1),WANG Bo 1),DAN Qi -qin 2 ) (1)Deat.of Neurosurgery ;2)Institute of Neuroscience ,Kunming Medical University , Kunming Yunnan 650031,China ) [Abstract ]Objective To establish the protocol for culturing hippocampus neurons in vitro and explore the neuronal growth character istics .Methods Tissues from hippocampus of fatal rats were harvested ,then digested into cell suspension by using 0.125%trypsin .After planted into wells for 2hours ,cell suspension was transferred into next well for continuing incubation .The cell growth was observed at day 5,11and 15.Neurons specific Enolase (NSE )antibody ,recognized specifically NSE antigen in cultured cells ,was used to identify neurons by SP-two-step staining method .Results After incubated for 2hours ,transferred suspensions in wells showed some pure neurons ,which is identified by NSE staining .However ,they grew slowly during 1~3days ,then grew well from 5th day ,with gradual increasing the neuritis outgrowth .Conclusion Purified neurons with neurite outgrowth states can be acquired by this method. [Key words ]Fetal rats ;Hippocampus neurons ;NSE staining ;Culture 海马神经元细胞培养是研究神经细胞生物学特性和外源干扰因素作用(细胞因子)的有效细胞模型,其在神经生物学,发育生物学体外实验研究中已被广泛应用[1-3].然而,要获得纯度较高, 生长状态较好的海马神经元也不是一件易事.本实验长期从事海马神经细胞生物特性及其应用研究,故需建立该细胞模型.鉴于胚胎来源的细胞 生长状态较成年动物来源者好[4,5] .本实验建立大

电针对脑功能障碍大鼠海马物质影响的研究进展

电针对脑功能障碍大鼠海马物质影响的 研究进展 (作者: _________单位:____________ 邮编:___________ ) 【摘要】目前,电针对脑缺血模型大鼠海马细胞影响的研究报道很多,对海马与学习记忆关系的研究已成为国内研究的重 点。本文就电针对脑功能障碍大鼠海马物质影响的研究作简要综述。 【关键词】电针海马物质 海马的生理功能目前仍在探讨之中.大量的动物模型研究表明,海马与学习记忆有关。当脑缺血等致海马受损时,可引起学习记忆功能的严重障碍。电针刺特定穴位可影响脑功能障碍大鼠海马物质的表达。现就目前电针对脑功能障碍大鼠海马物质影响的研究作一综述。 1电针对海马细胞凋亡相关蛋白表达的影响 1.1 Bel ]2是功能最为明确的细胞凋亡拮抗基因Bcl[2蛋白基本生物学功能为延长细胞的生命期限、增加细胞对多种凋亡刺激因素的抗性。Bax与Bcl]2作用相反,能够促进凋亡,Bcl〕2表达水平较高时,形成Bcl[2/Bcl[2同源二聚体,抑制细胞凋亡;Bax表达水平较高时,形成

Bax/Bax同源二聚体,加速细胞凋亡;BcL2和Bax水平相当 时,则形成Bcl[2/Bax异源二聚体,终止细胞凋亡。近年的研究提示 Bcl[2与Bax调节细胞凋亡,不仅取决于自身表达的高低,还与 Bax/Bcl_2比率有关,当比率增大时,细胞趋于凋亡[1 ]o caspase ]3 激活是触发凋亡的关键(有“分子开关”之称是凋亡的最终执行蛋白。Bcl]2家族基因在调节线粒体通透性上发挥重要作用,Bcl]2或其他 抗凋亡Bcl_2家族成员下调,或促凋亡Bcl_2家族成员如Bax在线粒体膜上过度表达和移位,均导致线粒体通透性增加,使细胞色素C 从线粒体释放入胞浆,与Apaf”、dADP形成复合体,再与胞浆中的caspase ]9前体形成凋亡小体,导致caspase[9被裂解激活,随后再裂解caspase家族其他成员包括caspase[3,引发凋亡。赵建新等[2] 报告电针刺激脑缺血小鼠“肾俞”膈腧”百会;各观察时点均可上调小鼠海马细胞Bcl[2表达,下调Bax表达,降低凋亡率。故电针可起到抑制凋亡、保护神经元的作用电针可显著上调内源性海马Bcl[2表达,降低Bax表达,有可能进一步抑制caspase [3的激活,或影响神经生长因子、过氧化物歧化酶、CHAT等促神经细胞存活相关基因的表达而发挥抗凋亡作用,有待今后动物实验验证。Noxa为BH3only 亚家族成员]3],脑缺血研究发现,Noxa在脑缺血引起的细胞凋亡中起重要作用[4 ]。朱燕珍等]5]报告,电针刺激血管性痴呆模型大鼠“大椎百会:海马CA1区的Noxa阳性细胞数增加,Caspase ]3 阳性细胞数增加,提示Noxa调节的线粒体凋亡途径促进血管性痴呆的发展;电针治疗抑制

小鼠海马神经元细胞使用说明

小鼠海马神经元细胞 小鼠海马神经元细胞产品说明: 为使客户能尽快开展实验,派瑞金发货的原代细胞均处于对数生长期,且每次发货为汇合率达到70%的细胞,收到细胞后即可开展实验。 派瑞金提供的小鼠海马神经元细胞取自新鲜的组织,按照标准操作流程分离培养。研发的小鼠海马神经元细胞完全培养基能提供细胞最佳的生长条件,降低杂细胞污染,保证不同批次间细胞质量的稳定。 同时,派瑞金还建立了严格的细胞鉴定流程,所提供的原代细胞均需经过细胞类型特异性标记物、细胞形态学等检测,保证细胞纯度在90%以上;同时也需经过微生物检测,保证不含有HIV、HBV、HCV、支原体、真菌及其他类型的细菌。 注意事项: 1. 收到细胞后首先观察细胞瓶是否完好,培养液是否有漏液、浑浊等现象,若有上述现象发生请及时和我们联系。 2. 仔细阅读细胞说明书,了解细胞相关信息,如细胞形态、所用培养基、血清比例、所需细胞因子等。 3. 请客户用相同条件的培养基用于细胞培养。培养瓶内多余的培养基可收集备用,细胞传代时可以一定比例和客户自备的培养基混合,使细胞逐渐适应培养条件;建议使用派瑞金的完全培养基。 4. 建议客户收到细胞后前3天各拍几张细胞照片,记录细胞状态。 5. 该细胞只能用于科研,不得用于临床应用。 小鼠海马神经元细胞产品简介: 产品名称:小鼠海马神经元细胞(Mouse hippocampal neuron cells)组织来源:小鼠海马组织区 产品规格:5×105cells/25cm2 培养瓶 小鼠海马神经元细胞简介: 海马椎体神经元是海马区的主要成分,主要功能是参与近期记忆、情绪及内脏功能调节、是老年性痴呆、癫痫等疾病的主要病灶之一。海马神经元细胞培养是研究神经细胞生物学特性和外源干扰因素作用(细胞因子)的有效细胞模型,其在神经生物学,发育生物学体外实验研究中已被广泛应用。 本公司生产的小鼠海马神经元细胞采用胰酶消化制备而来,细胞总量约为 5×105 个/瓶,细胞纯度可达 80%以上,且不含有 HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。

海马神经元细胞免疫荧光检验

海马神经元细胞免疫荧光检验 神经元鉴定: 一、烯醇化酶鉴定: 培养细胞用100%乙醇固定---10min---PBS漂洗5min×3次---3%H2O2室温孵育30min,目的用于去除内源性过氧化物酶---PBS 漂洗5min×3次---5%羊血清(0.3%TritonPBS配制),室温封闭30min 以减少排特异背景颜色------加第一抗体特异烯醇化酶(chemicon,1:1000),4℃冰箱孵育18~24小时---PBS漂洗5min×3次---加入2步法:PV9000试剂Ⅰ,37℃,30min---PBS漂洗5min×3次---PV9000试剂Ⅱ,37℃,30min---PBS漂洗5min×3次---DAB显示红棕色;70%,80%,90%,100%I,100%II 梯度酒精透水;二甲苯Ⅰ,Ⅱ透明2次,每次30min---中性树胶灯片---镜下观察。 二、β-微管蛋白Ⅲ(β-tubulinⅢ)荧光显示: 培养细胞用预冷PBS液轻柔漂洗3次,4%多聚甲醛固定,1h,4℃---吸去多余甲醛---PBS漂洗5min×3次---0.25%triton,室温,15min---3%H2O2室温孵育30min,目的用于去除内源性过氧化物酶---PBS漂洗5min×3次---5%羊血清(0.3%TritonPBS配制),室温封闭30min以减少排特异背景颜色------弃血清,加入β-tubulinⅢ抗体(1:100稀释),4℃,过夜---PBS漂洗5min×3次---滴加FITC 标记的山羊抗小鼠lgG(体积比1:200稀释),37℃,1h---DAPI复染10min---抗荧光猝灭封片液封片---荧光显微镜观察---选择10个视野,统计学处理。

成年小鼠海马神经细胞培养及其鉴定

昆明医学院学报2011,(6):29~32 CN53-1049/R Journal of Kunming Medical University 成年小鼠海马神经细胞培养及其鉴定 李玉1),但齐琴2),习杨彦彬2) (1)昆明医学院第一附属医院神经外科,云南昆明650031;2)昆明医学院神经科学研究所, 云南昆明650031) [摘要]目的观察体外培养成年小鼠海马神经细胞生长情况及其形态学变化.方法获取成年海马组织,制成细胞悬液,接种于培养板,分别于1,3,7,10,13,15d观察细胞生长情况,用神经元特异烯醇化酶抗体经免疫组织化学染色技术鉴定神经元.结果成年海马神经元接种后1~3d,有较多的杂质和部分细胞漂浮,贴壁细胞较少量.每隔3d半量换液后,杂质不断减少,但第1周细胞生长缓慢,第7~10d才见细胞生长良好.培养15d后,大部分细胞出现有明显的颗粒等早期退化征象.免疫组化染色证实培养细胞呈现神经元特异烯醇化酶染色阳性染色,免疫阳性产物主要分布于细胞质;证明是神经元.结论体外培养成年海马神经元早期生长缓慢,7~10d才显示良好的生长状态,2周左右细胞则开始退变.提示10d以前的细胞是供体外研究用的理想细胞. [关键词]大鼠;神经细胞;海马;细胞培养;免疫组化 [中图分类号]Q813.1+1[文献标识码]A[文章编号]1003-4706(2011)06-0029-04 Cult ur e and Ident ificat ion of Hippocampus Neur ons in Adult Rat s LI Yu1),DAN Qi-qin1),XIYANG Yan-bin2) (1)Dept.of Neurosurgery,The1st Affiliated Hospital of Kunming Medical University,Kunming Yunnan 650032;2)Institute of Neuroscience,Kunming Medical University,Kunming Yunnan650031,China) [Abstract]Objective To observe the morphology and characteristics of hippocampus neurons in adult rats in vitro.Method The hippocampus tissues from adult rats were collected,then digested into cell suspension by using0.125%trypsin.Cell suspension was planted into wells and observed at day1,3,7,10,13,and15 after incubation.Neurons specific Enolase(NSE)antibody,recognized specifically NSE antigen in cultured cells,was used to identify neurons by SP-two-step staining method.Results During1-3days,the extensive bodies of floating cells and tissue blocks were seen,but a few cells attached to the bottom of well.The growth of attached cells was also extensively slow,specifically within1week,while it began to grow quickly after7days,and maintained till15days.Amazingly,cells exhibited aging character with more particles in cytoplasm after15 days.NSE staining showed that cultured cells were positive staining by neuronal specific enalose antibody.Conclusion Adult hippocampus neurons grow slowly during the first week,but they are better from7day to15,then begin to degenerate after15days in vitro.This suggests that neurons from hippocampus of adult rats cultured in10days could be better for related neurobiological studies. [Key words]Adult rats;Hippocampus neurons;NSE staining;Culture [作者简介]李玉(1965~),男,云南昆明市人,医学硕士,副教授,主要从事癫痫外科和功能神经外科临床研究工作.

含雌激素高的食物

什么食物含雌激素高 吃富含雌性激素多的食物可使皮服富光泽,但注意雌性激素亦是一把双刃剑,多食有害于身体。所以我重点推荐具有几种双向调节功能的食物,只有这样补,才是最安全的。 (1)黄豆和豆制品中还含有异黄素,它具有平衡雌激素和双向调节的作用,在食物中很难找得第二种。 (2)维生素D与激素有一定的关联,如果每天食用1杯牛奶和500克鱼,长期坚持,能起到调理雌激素平衡的作用。 (3)富含硒和锌的食物对平衡雌激素也有特殊功效。含硒蔬菜有荠菜、大蒜、香菇、番茄、南瓜等;含锌食物有牡蛎、青花鱼、鳗鱼、海带、豆类、芝麻、胡桃等,其中牡蛎的含锌量尤为可观。 (4)来自牛奶、红肉、乳酪含有大量的饱和脂肪,如摄取过多会刺激雌激素过度分泌, (5)而坚果、种子、鱼、橄榄油中的不饱和脂肪对平衡激素水平有一定功效。 (6)海带、紫菜等海藻类食物也有一定的作用。 (7)每天摄取40克以上的食物纤维,并减少20%脂肪摄入,可以保持激素水平平衡。食物纤维在植物类食物,如新鲜蔬菜和水果中的含量比较高。 (8)鸡、猪等肉类,尤其是肥肉、鸡皮、鸡脖子少吃,黄鳝少吃,草莓少吃,明显不成比例的,特别大的水果、大的蔬菜少吃,因雌性激素含量太大。 其它含雌性激素的食物: 由雌性激素喂养的大多集中在家禽、家畜和淡水鱼类;水果蔬菜所含的雌性激素均为正常,人工增产基本上不是用的这个,且植物中的雌性激素大多对人性调节政党的激素水平有利,但草莓不要吃,记住过于异形的,过于个大的,颜色过艳的水果、蔬菜不要吃,非当季的、进口的和超贵的水果蔬菜不要吃就行了。

环境污染造成的大量食物有害物质残存,会诱导雌性激素过量产生,而适当调整身心,加强运动有助于恢复正常的雌性激素水平。 所有食物与影响因素共分为五大类,具体总结如下,请酌情采纳即可: (1)含有雌性激素的酌情酌量少吃: 肥鸡鸭(皮、脖、内脏尽量不要碰)、鱼(甲鱼,黄鳝、鲫鱼、锂鱼、鲶鱼最好少吃)、猪肉、牛肉、牛奶、雪蛤、羊胎盘、人参、西洋参、蜂王浆、避孕药物、美容品、木瓜、芒果、当归等。肉的话尽量吃瘦肉,且少量,吃深海鱼可以(小黄鱼、鲳扁鱼、带鱼、鲅鱼、墨鱼均可)、笨鸡蛋等可以。 (2)促进雌性激素上升的,此类最好少碰: 油炸食品、甜食、快餐、酒、咖啡、肥肉、动物内脏;化妆品、农药残留、化肥残留、杀虫剂残留,塑料制品、橡胶制品、尾气、废水、黏合剂、色素、防腐剂、氟利昂、垃圾浓烟、除草剂与其它环境污染。 (3)促进雌性激素稳定,此类应积极调节: 情绪稳定、少生气、遇烦恼的事想开些;劳逸结合;多运动少肥胖;良好睡眠;每天70克蛋白质即可,勿多。 (4)对人体调节雌性激素有益的,此类应注意补充: 每天三十种左右不同的食物,适当均衡且多样化: 蔬菜、水果、粗粮、黑芝麻、黑木耳、蘑菇、莴苣、胡萝卜、南瓜、黄瓜、菜花、菠菜、白菜、芹菜、黄花菜、西红柿。荠菜、大蒜、香菇、牡蛎、青花鱼、鳗鱼、海带、黑叶蔬菜、豌豆、谷类、扁豆、小麦、黑米、洋葱、柚子、杨梅、紫葡萄、有核的水果(比如樱桃、李子)、苹果、石榴、银杏、以及绿茶等。 (5)具有双向调节雌性激素功能的,此类每日不能少: 葛根、红薯、山药、黑豆、黄豆,豆腐、核桃,松仁、腰果、亚麻籽、葵花籽、芝麻、洋葱、红葡萄酒、花生酱。

小鼠海马神经元的培养

小鼠海马神经元的培养 一、实验材料: 1、所有用于细胞培养的器械、器皿剂溶液必须灭菌消毒。 2、多聚赖氨酸铺板以磷酸盐缓冲液(PBS)或蒸馏水溶解多聚赖氨酸(分子量为30-70KD)至1mg/ml。分装储存。临用前稀释至终浓度为20-60mg/ml过滤备用。在培养板或皿中加少量多聚赖氨酸溶液,以覆盖底部为宜,在37℃、CO2孵箱中过夜。次日,用移液管吸取多聚赖氨酸,并用水洗2-3遍,晾干备用,如果培养目的适用于电生理的单细胞记录或者免疫组化和荧光染色,则在培养皿的底部加上盖玻片,多聚赖氨酸铺于盖玻片上,则更易得到强烈的荧光信号。 3解剖液(HEPES平衡盐溶液)取100ml10x平衡盐溶液(Hank’s balance salt solution,HBSS) HEPES 3.9g, NaHCO30.84g, 青霉素104U, 链霉素100mg, H2O800ml。 以1mol/LHCl调节PH至7.2,再加H2O之后总体积为1L,以0.2μm 直径的滤菌器过滤,4℃保存。 4、DMEM培养基(Dulbecco’s modified Eagle’s medium)DMEM培

养基500ml,加小牛血清和或马血清各10%(血清需经56℃,30min灭活)1%的青/链霉素. 5、无血清培养基最常用的一种无血清培养基为,Neurobasal+2% 的b27+1%抗生素 6、2.5%胰蛋白酶(typsin)溶液临用前以解剖液稀释至终浓度0.125%。 7、台盼蓝(typan blue)溶液终浓度为0.2%-0.4%。 8、阿糖胞苷终浓度为8-10μmol/L。 9、动物妊娠天数的选择通常选择出生24h之内的乳鼠。 二、实验步骤: 1、脱臼处死乳鼠,75%的酒精浸泡3-5min,将清洗完的乳鼠放入含预冷解剖液的培养皿中。 2、用两把尖镊逐个去除鼠的头部皮肤和颅骨,取出全脑,置于另一含预冷解剖液的(PBS)培养皿中,小心剥离并去除脑膜及脉络丛。 3、在中线处用尖镊分离大脑半球,在解剖显微镜下小心去除嗅球、中隔、丘脑及下丘脑,剥离脑膜及脉络丛,在大脑皮层下方小心取出海马,置于含冰冷解剖液的6cm培养皿中。 4、用弯头尖镊把海马剪成小碎片,收集全部海马碎片,置于一含有0.25%胰蛋白酶溶液的培养皿中(该溶液必须在37℃孵箱中预暖),在孵箱中消化5-7min。 5、收集全部海马碎片,置于10ml预暖的DMEM培养基的试管中(培养基中含有10%的胎牛血清和或马血清各,1%抗生素,以及谷氨酰胺)。

海 马 神 经 元 培 养

海马神经元培养 (1)材料 ①孕鼠:海马:孕18d,皮层或纹状体:孕16d ②Neurobasal medium (Gibco-BRL, cat. no. 21103) L-Glutamine (Gibco-BRL, cat. no. 25030) 谷氨酰胺 Glutamic acid (Sigma, cat. no. G-1626) 谷氨酸 B27 (Gibco-BRL, cat. no. 17504) ③Poly-D-lysine (mol wt 30,000—70,000) (Sigma, cat. no. P-7280)多聚赖氨酸 ④Hank’s balanced salt solution (HBSS) (Gibco-BRL, cat. no. 14025) ⑤HBSS without Ca2+, Mg2+ (Gibco-BRL, cat. no. 14175) ⑥trypsin 胰酶 ⑦NaHCO 3 ⑧Na pyruvate (Gibco-BRL, cat. no. 11840)丙酮酸钠 ⑨Trypan blue, 0.4% 台盘蓝 ⑩巴氏吸管,前端用火抛光 刻度吸管 离心管 闪烁瓶 玻璃培养皿:小:3套 大:2套 冰袋、纱布 手术器械、筛网 培养瓶或培养板

(2)步骤 ①准备 a.配制试剂 i) Poly-D-lysine(需保存在聚苯乙烯容器中,不能保存在玻璃、聚碳酸酯或聚丙烯容器中) 配制硼酸缓冲液(pH8.4) A液(硼砂溶液):1.907g硼砂溶于100ml纯水(0.05M),0.22μm微孔滤膜过滤除菌,4℃保存 B液(硼酸溶液):1.237g硼砂溶于100ml纯水(0.2M)0.22μm微孔滤膜过滤除菌,4℃保存 4.5mlA液+ 5.5mlB液 5mg P-D-L溶于10ml硼酸缓冲液中,配制成0.5mg/ml贮存液,0.22μm微孔滤膜过滤除菌,-20℃保存使用时用硼酸缓冲液稀释10倍。 ii)HBSS without Ca2+, Mg2+(D-Hank’s溶液)配制 不含钙、镁的HBSS粉剂:4.75g溶于400ml纯水 NaHCO3:0.175g加入溶液 1M NaOH 调节pH至7.2-7.4 纯水定容至500ml,0.22μm微孔滤膜过滤除菌,4℃保存 iii)1M NaOH溶液配制 NAOH:4g 溶于100ml纯水 iv)0.125%胰酶+0.02%EDTA D-Hank’s溶液10ml EDTA 20mg 溶解后 D-Hank’s溶液80ml 胰酶125mg 溶解后 1M NaOH溶液调节pH至7.2 D-Hank’s溶液定容至100ml,0.22μm微孔滤膜过滤除菌,4℃保存 v)D-Hank’s溶液配制(0.035% NaHCO3,1mM Na pyrurate,10mM HEPES,pH7.4) 不含钙、镁的HBSS粉剂: 2.375g溶于200ml纯水 NaHCO3:0.088g加入溶液 HEPES:0.596g加入溶液 Na pyrurate(100mM): 2.5ml加入溶液 1M NaOH 调节pH至7.4 纯水定容至250ml,0.22μm微孔滤膜过滤除菌,4℃保存 vi)Hank’s溶液配制(0.035% NaHCO3,1mM Na pyrurate,10mM HEPES,pH7.4) 含钙、镁的HBSS粉剂: 2.45g溶于200ml纯水 NaHCO3:0.088g加入溶液 HEPES:0.596g加入溶液 Na pyrurate(100mM): 2.5ml加入溶液

海马结构及图

海马结构,希望有所帮助 海马结构(hippocampal formation,HF)属于脑的边缘系统(1imbic system)中的重要结构,与学习、记忆、认知功能有关,尤其是短期记忆与空间记忆。海马皮质从海马沟至侧脑室下角依次为分子层、锥体层和多形层。齿状回也分三层:分子层、颗粒细胞层和多形层。依据细胞形态、不同皮质区的发育差异以及纤维排列的不同,将海马分为4个区,即CAl、CA2、CA3、CA4区。海马结构是大脑边缘系统的重要组成部分.在进化上是大脑的古皮质,位于大脑内侧面颞叶的内侧深部,左右对称。一般认为海马结构由海马或称Ammon角、齿状回、下托及海马伞组成,结构比较复杂。在功能和纤维联系上,不仅与嗅觉有关,更与内脏活动.情绪反应和性活动有密切关系。细胞学研究表明,海马头部主要是由CAI区折叠而成,而CAI区对缺氧等损伤最为敏感,也被称为易损区,因此海马头部也是最易发生病变的部位。 海马结构由海马(hippoeampus)、齿状回(dentate gyrls)、下托(subiculum)和围绕胼胝体的海马残体(hippoeampal rudimerit)组成,其中海马为体积最大最主要的部分。 大脑海马(hippocampus)是位于脑颞叶内的一个部位的名称,人有两个海马,分别位于左右脑半球. 它是组成大脑边缘系统的一部分,担当着关于记忆以及空间定位的作用. 名字来源于这个部位的弯曲形状貌似海马(希腊语hippocampus). 在阿兹海默病中,海马是首先受到损伤的区域; 表现症状为记忆力衰退以及方向知觉的丧失。大脑缺氧(缺氧症)以及脑炎等也可导致海马损伤 . 在动物解剖中, 海马属于脑的演化过程中最古老的一部分。来源于旧皮质的海马在灵长类以及海洋生物中的鲸类中尤为明显。虽然如此, 与进化树上相对年轻的大脑皮层相比灵长类动物尤其是

6.雌激素信号通路在肿瘤中的调控机制

项目名称:雌激素信号通路在肿瘤中的调控机制 申报奖种:自然科学奖 主要完成单位:军事医学科学院生物工程研究所 主要完成人:叶棋浓黄君健丁丽华张浩金蕊 项目简介: 本项目属于基础医学研究领域。肿瘤是危害人类健康的重大疾病,它的发生发展与癌基因的激活和抑癌基因的失活密切相关。美国两位科学家因癌基因的发现而获得1989年诺贝尔生理学或医学奖。一些肿瘤的发生具有性别差异,如乳腺癌和肝癌,它们分别在女性和男性肿瘤死亡率中位居前列,但这种性别差异的分子机制还不清楚。已有研究表明,雌激素在乳腺癌和肝癌等肿瘤的发生发展中起重要作用,它通过与属于转录因子类的雌激素受体(ER)结合来发挥作用。目前临床上广泛使用的内分泌治疗药物即是通过阻断雌激素/ER的活性来治疗乳腺癌,但经常产生耐药现象。尽管人们对雌激素信号通路有了一定的认识,但其在性别相关肿瘤发生、发展和预后中的具体调控机制还不清楚,这些问题是当前世界生物医学前沿领域的热点和难点。 本项目以雌激素和ER调节的下游靶基因为切入点,系统研究了雌激素信号通路的调控机制,取得了以下重要发现:(1)发现了雌激素抑制的靶基因FHL1是人类乳腺癌和肝癌的新的抑癌基因。FHL1在肝癌和乳腺癌患者中表达水平下降,在这些肿瘤细胞中重新表达FHL1可抑制其生长。(2)发现了雌激素信号通路中促进乳腺癌细胞生长的新的癌基因NFAT3和HPIP,揭示了促进乳腺癌等肿瘤细胞生长的雌激素诱导蛋白端粒酶核仁定位的新功能。(3)首次发现了雌激素诱导蛋白XBP-1与乳腺癌内分泌治疗耐药相关。(4)揭示了雌激素信号通路调节的多种

新机制,包括发现乙肝病毒蛋白通过抑制雌激素信号通路诱发肝癌的新机制,部分解释了肝癌发生的性别差异;发现了转录因子通过大规模染色质伸展调节ER 转录活性的新机制;揭示了雌激素调节的下游靶基因调节雌激素和TGF-β信号通路间交互作用的新机制。 科学价值:这些重要发现揭示了雌激素信号通路中多个癌基因和抑癌基因的异常与乳腺癌和/或肝癌发生、发展和预后密切相关的功能及其分子机制,尤其是FHL1和XBP-1的研究因我们的新发现成为当今肿瘤领域研究的热点;深化了人们对雌激素信号通路的认识;新发现的癌基因、抑癌基因和耐药相关基因为乳腺癌、肝癌等的诊断和治疗提供了科学依据和新的药物开发靶标。 本项目在Journal of Clinical Investigation、Cancer Research、Nucleic Acids Research、Journal of Biological Chemistry、Journal of Cell Science等SCI杂志上发表核心论文20篇,总影响因子108,被包括多位美国科学院院士在内的国内外同行发表的Nature Genetics、Nature Immunology等论文或专著他引310次,SCI他引220次。其中8篇代表性论文总影响因子65,被他引229次,SCI他引162次。发表在Journal of Clinical Investigation杂志上的关于FHL1的论文被当期杂志选为亮点,并被中国、美国、英国等多家生物医学新闻网站或杂志以“一组新的与癌症发生发展相关的蛋白质”为题进行报道。发表在Journal of Cell Science杂志上的论文被当期杂志以“核仁端粒酶未解之谜”为标题选为亮点。 论文目录(8篇代表性论文): 1*. Lihua Ding, Zhaoyun Wang, Jinghua Yan, Xiao Yang, Aijun Liu, Weiyi Qiu, Jianhua Zhu, Juqiang Han, Hao Zhang, Jing Lin, Long Cheng, Xi Qin, Chang Niu, Bin Yuan,

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