石蜡组织DNA提取SOP

石蜡组织DNA提取SOP
石蜡组织DNA提取SOP

提取石蜡包埋组织基因组DNA标准操作规程

1. 目的:由石蜡包埋组织中提取出基因组DNA,以保证后续检测的正常进行。

2. 操作者:病理科负责取材的技术员、病理医师以及分子病理技术员。

3. 准备工作:

3.1 56℃和90℃水浴锅

3.2二甲苯或无毒脱蜡液(Deparaffinization Buffer)

3.3无水乙醇

3.4蛋白酶K溶液:每管干粉状的蛋白酶K中加入1.1ml蛋白酶K溶解液,颠倒让蛋白酶K充

分溶解,分装保存于-20℃。

3.5洗涤液GW1使用前,须加入17ml无水乙醇进行稀释。

3.6洗涤液GW2使用前,须加入80ml无水乙醇进行稀释。

4. 步骤:

4.1标本接收:分子病理技术员负责核对送样登记表所记录的病理号与标本编号是否一致,要求10um肿瘤组织病理石蜡切片不少于4张,可以是已经切好并放在载玻片上的切片;所有切片均应是未经染色的白片。

4.2脱蜡(可按以下方案A或方案B去除石蜡):

方案A:二甲苯去除石蜡(经典方案)

A1:石蜡蜡卷

A1-1:将石蜡切片置于1.5ml离心管中,加入1ml二甲苯,盖紧涡旋振荡10s,13000r/min 离心2min,吸去上清,保留沉淀;如脱蜡不完全,可重复该步骤一次。

A1-2:向离心管中加入1ml无水乙醇,涡旋振荡混匀,13000r/min离心2min,吸弃上清,用移液器吸头小心将组织摊开粘附于管壁,置于恒温加热器(预先设置为37℃)10min晾干,直到乙醇完全挥发,之后按4.3步骤进行操作。

A2:石蜡切片

A2-1:将组织切片置于二甲苯浸泡10分钟,两次;

A2-2:无水乙醇浸泡5分钟,一次;

A2-3:蒸馏水中浸泡,刮取肿瘤区域到1.5ml离心管中,之后按4.3步骤进行操作。

方案B:无毒脱蜡液(Deparaffinization Buffer)去除石蜡

B1-1:加入0.5ml Deparaffinization Buffer至样品中,剧烈涡旋10s。

B1-2:短暂离心让样品浸泡到脱蜡液中,56℃水浴3~5min,剧烈涡旋20s。

B1-3: 14,000 x g离心2min,彻底吸弃上清液,不要吸到沉淀,之后按4.3步骤进行操作。4.3消化:

4.3.1 向脱蜡的组织中加入200ul裂解液 ATL,再加入20ul蛋白酶K溶液,吹打混匀。

4.3.2 取一小条保鲜膜将离心管缠绕封口(以防后续高温管盖爆开),56℃温浴1-3h或直

到样品完全消化,其间需颠倒混匀数次。样品也可以消化过夜,过夜消化对提取结果无负面影响。

4.4孵化:标本消化完全后置于90℃水浴孵化1h。

4.5(可选)若液体仍存在明显不消化的杂质,10,000 x g 离心3min去除杂质。转移上清

液至新的离心管。

4.5吸附洗涤:

4.5.1 离心收集管壁上的液体,待温度降至室温,加入200ul 变性液AL和200ul无水乙醇,

涡旋混匀15s。

4.5.2 转移混合液至吸附柱。10,000 x g离心30~60s。

4.5.3 倒弃滤液,把柱子装回收集管中,加入500μl洗涤液GW1(已用乙醇稀释)至吸附柱

上,10,000 x g离心30~60s。

4.5.4 倒弃滤液,把柱子装回收集管中,加入650μl洗涤液GW2(已用乙醇稀释)吸附柱中,

10,000 × g离心30~60s。(可选,重复操作此步骤1次,有助于提高核酸纯度。)。

4.5.5 倒弃滤液,把吸附柱装回收集管中,10,000 × g离心空柱3min。

4.6洗脱:将吸附柱转移至新的1.5ml离心管中,加入15~100μl 洗脱液EB至柱子的膜中

央。放置1分钟,10,000 × g离心1min。(如有需要可吸取滤液重复洗脱一次)。

4.7定量:对提取好的基因组DNA定量,操作方法参照Thermo超微量紫外可见分光光度计使用操作规程,记录数据。

4.8提取完成的基因组DNA应尽快完成后续实验,如暂时不安排实验,长时间保存须将

DNA置于-20℃或-80℃。

5. 清场:将移液器,吸头等设备耗材归位,维护;并做好相关记录。

6. 质量控制:操作技术员应控制好消化时间,加试剂时核对试剂名称,多个标本同时进行

提取时要做好记号,严格要求操作的每一步,防止标本间的污染。

实验九-动物组织中核酸的提取和鉴定

实验七动物组织中核酸的提取和鉴定 【原理】 动物组织细胞中的核糖核酸(RNA)与脱氧核糖孩酸(DNA)大部分与蛋白质结合形成核蛋白。核蛋白可被三氯醋酸沉淀,再用95%乙醇加热可以除去附着在沉淀上的脂类杂质,然后用10%NaCl溶液提取出核酸的钠盐,加入醇可使核酸钠沉淀析出。 先用水由动物肝中提出核蛋白,再籍酚将核酸与蛋白质之间的结合键断裂,并用乙醚抽提去蛋白质及其它杂质,最后用乙醇将核酸沉淀。 核酸(RNA、DNA)可被硫酸水解产生磷酸。有机碱(嘌岭、嘧啶)和戊糖(核糖、脱氧核糖)。 此三类化合物可用下列方法鉴定之。 1、磷酸:能与钼酸试剂作用生成磷钼酸,后者在还原剂的作用下。还原成兰色的钼兰。常用的还原剂有氨基苯磺酸、氯化亚锡,维生素C等。 H3PO4+12H2MoO4→H3PO4·12MoO3 + 12H2O H3PO4·12MoO3H3PO4·6MoO3·3Mo2O5 2、嘌呤碱:能与苦 味酸作用形成针状结晶 3、戊糖: (1)核糖:经与强酸 (盐酸与硫酸)共热生成 糠醛,后者可与3;5二羟 甲基苯缩合成绿色化合 物。 (2)脱氧核糖:在强 酸中加热,可生成ω—羟 基γ—酮基戊醛,后者再 与二苯胺作用生成一蓝 色化合物。 上述二反应如下 【操作】

(一)核酸提取 l、用酚提取法: (1)取小白鼠一只,断头处死,剖腹取肝,置于研钵中,加入玻璃少许,研磨至糊状后,加入蒸馏水3ml,继续研磨约三分钟。 (2)于该研钵中再加酚液5ml,研磨约十分钟后,倒入—-圆底离心管中,离心5分钟(约2000转/分钟)。 (3)用毛细管将上液吸出,置于一圆底离心管中,加乙醚2ml,用拇指将管口按住,用力振摇1—2分钟(提出酚),离心5分钟后,用毛细滴管吸取全部下层液于一圆底离心管中。 (4)于该管中加入95%乙醇2ml,用玻棒搅拌约2分钟,离心3分钟,取出.去上清液,沉淀部分即为核酸。 2、用三氯醋酸提取法 (1)杀兔;取肝,称重,按每克肝脏4ml比例加入1%三氯醋酸,制成肝匀浆。每组量取肝匀浆5ml于带塞离心管中,3000转/分离心5分钟。 (2)将离心后的上清液倾去,于沉淀中加95%乙醇5ml充分混匀,在水浴中加热至沸2分钟,注意酒精沸腾后将火关小,避免酒精蒸汽燃烧。冷却后离心。 (3)倾去上层乙醇液。于沉淀中再加入10%NaCI溶液4ml,置沸水浴中8分钟,并用玻棒不断搅拌,取出;冷却后再离心, (4)将上清液倾入另一离心管中,再离心一次,除去可能存在的微量残渣,将上清液倒入一试管。 取等量95%的乙醇,逐滴加入到上清液中,即可见白色沉淀逐渐出现,静置10分钟后。将其内容物摇匀后倒入一圆底离心管中,离心5分钟,将上液倾去,所得白色沉淀即为核酸钠。 (二)核酸的水解: 在有核酸沉淀的离心管中加入蒸馏水2ml。振摇至沉淀溶解后,加入10%H2SO42mL摇匀,于沸水浴中加热10分钟,即得核酸水解液,用流水冷却后进行下列定性试验。 (三)鉴定: l、嘌呤碱的鉴定: 取中试管一支,加入饱和苦味酸约2ml,再加入核酸水解液4—6滴,摇匀。静置于室温中,观察有无黄色针状结晶出现,。 2、脱氧核糖的鉴定:

石蜡切片技术实验(内附组织染色后的照片)

石蜡切片技术实验 实验目的 掌握动植物材料石蜡切片的方法及要求。 实验材料 小白鼠各种器官组织 实验方法 ? 石蜡切片技术(一)取材与固定 ? 石蜡切片技术(二)渗透与包埋 ? 石蜡切片技术(三)切片 ? 石蜡切片技术(四)染色 ? 石蜡切片技术(五)观察总结 一、取材与固定 1 准备工作:工具、药品、计划等 2 动物的麻醉:氯仿麻醉 3 解剖取材 4 材料分割:保持样品的完整性与代表性,考虑切片方向,实心组织大小5*5*2mm,空心细长组织10mm长。 5 固定:布温氏固定液固定24h。 6 漂洗:70%乙醇换洗3次,每次20~60min。 7 保存:70%乙醇0~4 ℃。 二、脱水、渗透与包埋 1 脱水:85%乙醇→95%乙醇→100%乙醇→100%乙醇,每步30min~60min 2透明:1/2乙醇+1/2二甲苯→二甲苯→二甲苯,每步30min~60min 3 渗透: 1/2二甲苯+ ?石蜡→石蜡→石蜡,每步20min~60min,温度62℃

4 包埋:将材料放入盛有石蜡的纸盒中,摆好位置(要考虑下一步的修快与切片方向),在水中冷却5~10min. 三、切片 1 修块用单面刀片在玻璃板上修快使达到以下要求: (1)一个蜡块含一个材料,蜡块呈正方形或长方形,材料位于蜡块正中央。 (2)材料边缘与蜡块边缘平行,各面要平直,材料边缘与蜡块边缘的距离约3mm。 2 固着将修好块的蜡块用烧热的解剖刀固着在样品台上。 3 切片按以下顺序进行 (1)将样品台固定在切片机样品臂上,使切面竖直; (2)调切片厚度5~10um; (3)将切片刀用纱布蘸少许二甲苯擦净后装到切片机上,调刀角15~20,将刀固定好;(4)调刀距使样品与刀口尽可能靠近; (5)切片顺时针摇动切片机速度40-60r/min; (6)将切好的蜡带光面向下用毛笔放到台纸上 4 贴片 (1)清洗载波片; (2)加粘片剂,要求薄、匀; (3)放切片,光面向下; (4)加水于切片下面; (5)展片将载波片放于50℃的温台上至切片完全展平; (6)烤干吸掉多余水,继续放于温台上至水完全干燥; 5 贴标签临时标签,用铅笔写明组号、姓名。 四、染色 1 脱蜡二甲苯(2)→二甲苯(1),每步510min;

石蜡切片制作标准程序

动物病理组织学 石蜡切片制作标准操作程序(SOP) 一、\器材和试剂准备 (一)载玻片和盖玻片的清洁 1.载玻片和盖玻片清洗方法 (1)锅内倒入适量清洗液(100 mL水+30 m L洗洁精+30 mL 84消毒液); (2)将玻片逐片放入锅中, 加热至沸腾10 min, 停止加热, 自然冷却; (3)捞出玻片流水冲洗10min,彻底冲净泡沫(弹簧夹上后,单片过水); (4)将玻片从水中取出, 用蒸馏水冲洗三遍(最好单片过水); (5)将玻片放入 95%乙醇(分析纯)中浸泡; (6)取出玻片,码在切片盒,自然干燥(或无风适度高温干燥)备用; 注意:由于盖玻片很薄,不能同载玻片放在一起处理;盖玻片从95%乙醇溶液中取出后要放在吸水纸上摊开,干燥后,放在小盒子中备用。 2.粘片剂(蛋白甘油)的制作及载玻片的预处理 (1)蛋白甘油的制作取新鲜鸡蛋,先将其尖端用眼科剪或拨针挑破一小孔,再将蛋的另一端挑破一小孔并稍加扩大,大孔端朝下,使蛋白流入100~200毫升的烧杯中(不要蛋黄),以玻棒打拌蛋白完全变为雪花状泡沫,然后倒入垫有几层纱布的漏斗中过滤而得到透明、清凉的的蛋白液,再加入等量甘油,振摇使之充分混合,加入1%麝香草酚或樟脑防腐。一般将其盛入滴瓶或树胶瓶中备用,不用时盖好防尘。 或1个鸡蛋的蛋清+500mL双蒸馏水,混匀,加10mL浓氨水。 (2)将蛋白甘油倒在小烧杯中,载玻片用弹簧夹夹上后侵入蛋白甘油中,贴壁刮干,放在切片盒内晾干备用。 二、石蜡组织切片的制作 (一)取材 注意事项: 1.材料质量:材料必须新鲜,应争取在死后半小时内处理完毕。 2.取材体积:组织块力求小而薄(厚度不要超过5mm,以2mm最佳) 3.取材力度:取材器具锋利。勿使组织块受挤压,切割时不可来回挫动。夹取组织时,切勿猛压,以免挤压损伤组织。取材时,组织块可稍大一点,以便在固定后,将组织块的不平整部分修去。 4.固定形状:固定尽量保持组织的原有形态新鲜组织经固定后,或多或少会产生收缩现象,有时甚至完全变形。为此可将组织展平,以尽可能雅持原形。对神经、肌肉、皮肤组织等,则可将其两端用线扎在木片上或硬纸片上固定。 5.切向选择:选好组织块的切面应熟悉器官组织的结构并据此决定其切面的走向。纵切或横

QIAGEN试剂盒——动物组织样品DNA提取方法

QIAGEN试剂盒提取组织DNA 试验前的注意事项 1、仔细阅读试剂盒使用说明。 2、所有的离心操作应在15-25℃下完成。 3、涡旋一般进行5-10s。 4、对于福尔马林或石蜡浸泡过样品,另见说明。 5、总RNA提取另见说明。 试验准备 1、Buffer ATL 和 Buffer AL保存时可能会出现沉淀,如果必要的话,可置于56°C 水浴至完全溶解。 2、提供的Buffer AW1 和 Buffer AW2是高浓度液,使用前需用96-100%的乙醇稀释至瓶子上注明的使用浓度。 3、预备一个热的振荡器或摇床或摇动的平板至56°C备步骤2使用。 4、如果为冻存的组织,需要将其溶至室温。但是要避免此类的反复溶解。 应额外准备的物品: 200μL枪及枪头;20μL枪及枪头;2mL的微量离心管;96-100%乙醇;56℃水浴锅;离心机(20,000×g(14,000rpm));小镊子;振荡器

操作步骤: 1、取25mg的动物组织(脾脏最多10mg)粉碎成碎片放入1.5ml的微量离心管中。对于啮齿类的尾巴,择取两只小鼠或一只大鼠尾巴0.4-0.6cm。加入180μL buffer ATL,并将对应的动物作以标记。 (保证足够量的组织样本,对于脾脏由于其细胞含量丰富,我们建议不超过10mg。我们强烈建议将组织粉碎以便于溶解提取DNA。最好的方法是在添加bufferATL和蛋白酶K之前置于液氮中冻融。同时,也可以采用QIAGEN公司产的几种组织匀浆机进行组织粉碎) 2、加入20μL蛋白酶K,涡旋混合均匀,56℃孵育直至溶解。在组织溶解的过程中不断(偶尔)涡旋使组织充分散开,或将该微量离心管置于摇晃的平台上,如摇床等。(不同组织溶解时间不同,通常组织为1-3h,小鼠尾巴为6-8h。如果试验条件许可,可以溶解过夜,其不会影响DNA提取) 3、涡旋15s。加入200μL buffer AL 并涡旋使充分混匀,70℃孵育10min,然后加入200μL乙醇(96%-100%),再次涡旋混合。 (如果在做多个样品时,可以将buffer AL和乙醇先混合均匀,一起加入到组织中涡旋均匀。在添加bufferAL与乙醇后可能会出现白色沉淀,该沉淀不会影响试剂盒的操作。一些组织(如脾脏)添加了bufferAL与乙醇后出现凝胶状产物,这种情况下,我们建议剧烈摇晃或涡旋样本使之消失。70℃孵育10min该步骤在我在河南农大用的盒子操作中没有) 4、移出步骤3中的混合物(包括沉淀物)至DNeasy Mini spin column,该柱子放在一2mL收集管中(本试剂盒提供的)。6000 × g(8000 rpm)离心1min,收取管子,弃去滤液。 13000 rpm 5、将DNeasy Mini spin column放入另一2mL的收集管中(本试剂盒提供),加入500μLbuffer AW1,6000×g (8000 rpm)离心1min,收取管子,弃去滤液。 6、将DNeasy Mini spin column 放入另一2mL的收集管中(本试剂盒提供),加入500μLbuffer AW2,20,000 ×g (14,000 rpm)离心3min,使Dneasy膜干燥,收取管子,弃去滤液。 (使DNeasy Mini spin column膜干燥是非常重要的,因为残留的乙醇会影响下面的反应。这个离心步骤就是为了确保没有残留的乙醇影响下步的洗脱。离心后,小心地取出DNeasy Mini spin column防止其与下边的滤液接触。如果与下边的滤液接触沾了少量乙醇则需要再次20,000×g(14,000rpm)离心1mim) 7、向DNeasy Mini spin column膜移入1mL或2mL的微量离心管中(本试剂盒不提供)直接加入200μL buffer AE,清洗DNeasy Mini spin column膜,室温孵育1min,然后6000 × g(8000 rpm)离心1min。 (为了DNA浓度可将200μL buffer AE改为100μL,但是这样会减少DNA的总产量) 8、推荐:如果需要获取最大量的DNA,可将步骤7重复1次。 (使用一个新的1mL或2mL的微量离心管,这样可防止降低前者DNA浓度。当然也可以使用前者离心管) 注意:洗脱液不要多于200μL,以防止滤液过多与DNeasy Mini spin column发生接触。

组织切片石蜡切片过程

石蜡切片过程 一、石蜡包埋: 1.脱水:组织水洗后便可酒精脱水,70% →80% →90% →95%→ 100%酒精(无水乙醇)→100%酒精,各级酒精脱水时间30-45 min。(注意:80%酒精内组织可留之较久,当天如果来不及做完就可以暂时保存一晚上,次日再继续做下去。70%的酒精可作为更久的保存剂。) 2.透蜡:脱水后组织:50%酒精+50%二甲苯30 - 45min. 二甲苯(组织透明即可停止) 15min. 50%二甲苯+50%石蜡20-30min. 纯石蜡1 45min. 纯石蜡2 45min.(透腊之前做好准备工作:准备腊杯,烘箱温度保持55—60℃左右,使石腊熔化,温度不宜过高,以免使组织发脆。) 3.包埋: a.折好纸盒,准备小镊子、酒精灯、解剖针、冷水等。 b.用温热吸管吸取石蜡注入纸盒。等待底稍微凝固,温镊子夹住样品放入盒子中央,面朝底(可以将蜡一次倒入纸盒,然后待蜡表面起膜后,用温镊子夹住样品放入蜡中,待冷却即可,整个操作过程中,切勿让蜡中起气泡)。 c.两手拿着两端,入冷水一半,吹气,使表面石蜡形成移较厚腊层,然后急速全部进入冷水中3分钟。 d.修正蜡块(上下两个面一定要平行并且光滑) e.固着蜡块

二、切片 1.切片(切片时,可以在刀片以及刀片周围涂上一点甘油) 2.贴片烤片(甘油蛋白=1/2甘油+1/2鸡蛋清)(在贴片时,用细吸管取一点点甘油蛋白(越少越好)于载玻片上,然后用手抹匀,手一定要干净。将切片放在载玻片(光亮面朝向下),然后滴几滴冷水使切片悬于水上。接着将载玻片放在37℃上烘烤。 常见问题分析: 1.切片分离不能形成蜡带:?室温过低,蜡过硬。 2.蜡带弯曲:?蜡块口下面不平行,或蜡块不与刀刃平行所致。 3.切片厚薄不一:?切片刀或蜡块未固定紧。 4.切成片后,组织与蜡块脱离:?脱水不干净等。 5.蜡片易粘在切片上或蜡片萎缩:?室温太高或蜡太软或刀的角度 太小。 6.切片破裂:?浸蜡不足或浸蜡温度过高,或在脱水剂、透明剂中 时间过长,引起组织发脆或有杂质,材料脱钙不完全,此种无法补救。 7.蜡片上卷,切过刀口即破裂:?刀口太钝或沾有石蜡或刀的角 度过大或蜡太硬。 *:包埋时,时间长会使标本变质,过短则石蜡不能透进标本。石蜡包埋过程中,注意控制温度保持在58-60℃,石蜡不能融化。

动物肝脏中DNA的提取检测实验报告

动物肝脏中DNA的提取及检测 一、前言 脱氧核糖核酸 脱氧核糖核酸(DNA,为英文Deoxyribonucleic acid的缩写),又称去氧核糖核酸,是脱氧核糖核酸染色体的主要化学成分,同时也是组成基因的材料。有时也被称为“遗传微粒”,原因是在繁殖过程中,父代会把它们自己DNA的一部分复制传递到子代中,从而完成性状的传播。 DNA是高分子聚合物,DNA溶液为高分子溶液,具有很高的粘度,可被甲基绿染成绿色。DNA对紫外线(260nm)有吸收作用,利用这一特性,可以对DNA进行含量测定。当核酸变性时,吸光度升高,称为增色效应;当变性核酸重新复性时,吸光度又会恢复到原来的水平。较高温度、有机溶剂、酸碱试剂、尿素、酰胺等都可以引起DNA分子变性,即DNA双链碱基间的氢键断裂,双螺旋结构解开—也称为DNA的解螺旋。 在细胞内,DNA能与蛋白质结合形成染色体,整组染色体则统称为染色体组。对于人类而言,正常的体细中含有46条染色体。染色体在细胞分裂之前会先在分裂间期完成复制,细胞分裂间期又可划分为:G1期-DNA合成前期、S期-DNA合成期、G2-DNA合成后期。对于真核生物,如动物、植物及真菌而言,染色体主要存在于细胞核内;而对于原核生物,如细菌而言,则主要存在于细胞质中的拟

核内。染色体上的染色质蛋白,如组织蛋白,能够将DNA进行组织并压缩,以帮助DNA与其他蛋白质进行交互作用,进而调节基因的转录。 脱氧核糖核酸的结构 DNA的结构:DNA的结构一般可划分为一级结构、二级结构、三级结构和四级结构四个水平。 DNA是一种长链聚合物,组成单位为四种脱氧核苷酸,即腺嘌呤脱氧核苷酸(dAMP 脱氧腺苷)、胸腺嘧啶脱氧核苷酸(dTMP 脱氧胸苷)、胞嘧啶脱氧核苷酸(dCMP 脱氧胞苷)、鸟嘌呤脱氧核苷酸(dGMP 脱氧鸟苷)。而脱氧核糖(五碳糖)与磷酸分子借由酯键相连,组成其长链骨架,排列在外侧,四种碱基排列在内侧。每个糖分子都与四种碱基里的其中一种相连,这些碱基沿着DNA长链所排列而成的序列,可组成遗传密码,指导蛋白质的合成。读取密码的过程称为转录,是以DNA双链中的一条单链为模板转录出一段称为mRNA(信使RNA)的核酸分子。 DNA是由许多脱氧核苷酸按一定碱基顺序彼此用3’,5’-磷酸二酯键相连构成的长链。大多数DNA含有两条这样的长链,也有的DNA为单链,如大肠杆菌噬菌体φX174、G4、M13等。DNA 有环形DNA和链状DNA之分。在某些类型的DNA中,5-甲基胞嘧啶可在一定限度内取代胞嘧啶,其中小麦胚DNA的5-甲基胞嘧啶特别丰富。在某些噬菌体中,5-羟甲基胞嘧啶取代了胞嘧啶。40年

肌纤维石蜡组织切片的制作

肌肉组织学常用测量指标及方法 一、肌纤维直径和面积测量(H.E染色):(方法见附件一) 各样品测100条肌纤维,在5个不同的切面视野上,随机取样。 方法1――在10X 40倍显微镜下,用直线测微尺随机测量,由于肌纤维横断面常为不规则椭圆形或多边形,所以无法精确测量其直径。参考椭圆形长短轴的测量方法求其直径。先通过中点量出肌纤维横断面上最长两点间的距离为长径—反之为短径,然后长短径的几何平均数为每条肌纤维的直径,计算出面积。 方法2――以日本产MICRO-SCALE定每个样品的肌纤维长径和短径,每个样品测 定200根肌纤维的值,肌纤维的选取尽量以肌束为单位,完整测量各肌束内所有肌纤维,以减小取样误差。肌纤维的面积以“长径X短径X 0.7 ”的经验公式求得。取所测定的100根肌纤维的平均值作为每个样品的值用于以后的研究。 二、肌束内肌纤维根数的测量(H.E染色):(方法见附件一) 在10X40倍显微镜下,随机选择视野,记录每个样本20束肌束内肌纤维根数, 求其平均值和标准误。 三、肌纤维间距、肌束间距,肌大束间距的测量(H.E染色):(方法见附件一) 在10X40倍显微镜下,直线形目微尺测量,各样品测100个间距,在5个不同的切面式视野上随机取样。 四、肌纤维密度(H.E染色):(方法见附件一) 在目镜中加入网格目测微尺,在10X 40倍显微镜下,用网格形目测微尺测量5个视野内的肌纤维根数,换算成每平方毫米面积内肌纤维的根数。在选择视野时避开较大的肌束膜。 五、肌纤维、结缔组织、脂肪组织的面积比和体积比(H.E染色):(方法见附件一)方法1――取染色的切片,用显微投影仪放大技术放大于白纸上,对3种组织绘出或打印,剪下分别称重并换算出其3种组织面积比。 方法2――采用测量单位参照面上肌纤维与结缔组织的面积分数来反映其体积分数。在15X40倍显微镜下,每个样本取5个不同视野进行显微摄影,再将照片洗出(彩色5寸或更大)。将所得照片按肌纤维与结缔组织分别剪下,用1/ 10000电子分析天平称重,分别得出肌纤维与结缔组织的重量。由于相纸密度相同,所以此重量比能反映其面积和体积比。 六、肌节长度: 方法1——于新鲜肉样中心部位取3cm1左右的一小块与20ml的0.08mol/L KCl 溶液混合,于高速组织捣碎机中均质30s,制压片一张,用相差显微镜10X 100 倍显微测量肌节长度,每个样本随机测定20根肌原纤维的肌节,其平均值代表该肌肉样本的肌节长度。 方法2——电子显微镜超微结构观察:新鲜取样约1 cm X 1.5cm,置于2.5%戊二醛溶液中预固定,用眼科剪刀剪切成 1 cm3大小,放在戊二醛溶液中继续固定,经PBS冲洗后用1%的锇酸固定2.5小时,梯度丙酮脱水(50%, 70%, 85%, 90%, 100%), Epon-812树脂包埋。超簿切片机切成50nm超薄切片,经醋酸铀和柠檬 酸铅染色,透射电镜(1-4万倍)观察、拍照、冲洗印相,用游标卡尺测量肌节长度、肌原纤维直径,I带及A带长度,并观察肌纤维超微结构的特征,肌纤维间线粒体、肌糖元、脂肪滴的含量。(我校为70-80元/张,只需要采样后交给电镜室即

动物组织基因组DNA提取试剂盒说明书

磁珠法动物组织基因组DNA提取试剂盒 MagBeads Tissues Gen DNA Extraction Kit 【目录号】TGDE-5005、TGDE-5030 【运输条件】2~25℃; 【保存条件】磁珠悬浮液2~8℃,其它组分室温保存; 【试剂盒组成】 【注意事项】 1. 磁珠悬浮液严禁反复冻融和离心,使用前请充分混匀; 2. 使用前请检查裂解液1和裂解液2是否出现结晶,如有结晶请置于65℃水浴重新溶解; 3. 在使用本试剂盒前,请用户自配80%乙醇; 4. 如需去除RNA请自备RNase A溶液(100mg/mL, 分散液10mM Tris-HCl, 1mM EDTA, pH值8.0); 5. 本操作指南经本公司反复验证,使用前请仔细阅读,并且按照操作指南的建议操作。

磁珠法·自动化:为生命科学提供自动化磁纳米捕获方案 【产品简介】 本产品适用于从各种动物组织以或者细胞样本中提取基因组DNA。试剂盒采用具有独特分离作用的纳米磁珠和独特的缓冲液系统。特殊技术包埋的纳米磁珠在特定条件下对核酸具有极强的亲和力,而当条件改变时可以释放所吸附的核酸,从而达到快速分离纯化核酸的目的。 本试剂盒提取所得基因组DNA产物得量高、纯度好,适用于各种下游分子生物学实验,如:酶切、PCR、QPCR、文库构建、Southern 杂交、芯片检测和高通量测序等。本试剂盒可配合核自动化酸提取仪或工作站使用,实现高通量操作。 【试剂盒说明】 【自备仪器、耗材及试剂】 仪器自动版 研钵(或组织研磨机、匀浆机)、英芮诚ETP-300型全自动核酸提取仪、核酸提取仪配套用磁棒套、水浴锅或金属浴、涡旋振荡仪、96孔方孔圆底板、80%乙醇、异丙醇、液氮。 手动版 研钵(或组织研磨机、匀浆机)、水浴锅或金属浴、涡旋振荡仪、真空干燥箱、80%乙醇、异丙醇、2.0mL离心管、离心管配套用磁力架、液氮。 【仪器自动版操作步骤】 本操作以英芮诚ETP-300型全自动核酸提取仪为例,同步可完成32个样本的提取。 1.准备96孔板 参照下表向96孔板各孔位中分别加入相应试剂:

植物组织石蜡切片的制备与染色观察

植物组织石蜡切片的制备与染色观察 一.实验器具与试剂 1.器具 小培养皿、锡箔纸、尖头和平头镊子、剪刀、刀片、吸水纸、移液枪、1枪头、移液器和移液管、量筒(50,100,250,500)、废液瓶、水浴锅、酒精灯、三角瓶、真空锅、烘片箱、木筷、石蜡切片机、染色缸、载玻片、盖玻片、显微镜等2.试剂 100%酒精、100%二甲苯、100%叔丁醇、石蜡块、蒸馏水、多聚甲醛、中性树胶、甲苯胺蓝()染色剂等 二. 实验步骤 1.溶液配制 10×溶液: (国药或生工)75.95g 24.12H2O(国药)25.07g 24.2H2O (国药) 4.68g 充分溶解后,用(国药)调7.0,定容1000,高压灭菌25,4℃保存。 4%多聚甲醛固定液: 1×100 1 0.5 水浴加热至60-70℃,在通风橱中加入4g多聚甲醛,待溶解后冷却至4℃,加入100μl的10%的浓硫酸调节为7.0。 2.材料准备 ⑴固定 取幼嫩的植物材料,将植物组织剪成合适大小的小块,立即放入一个装有新配制的4%多聚甲醛固定液的小器皿中,固定液体积视材料多少而定,一般材料少时10材料较多时可放15,小器皿置于冰上。上面用锡箔纸盖好后扎孔。抽真空使得材料浸没其中(反复真空和非真空状态,并保固定液不要沸腾),待材料下沉到管底。具体操作如下:

①放置在冰上的器皿放入真空锅里,盖上锅盖,拧开盖上螺旋,拧紧侧面螺旋,打开开关当压力表上显示到0.2时可计时10分钟。 ②关上锅盖螺旋,拧松侧面螺旋,外面空气会进入真空锅内,当内外压力相等时计时10分钟。 ③再重复步骤①,换一次新的固定液,4℃过夜固定,但不要超过16h。 (2)漂洗 用1×缓冲液(7.0)漂洗组织块2次,每次4℃放置30。 注意容易结晶可75℃水浴加热。 (3) 脱水 在翻转下进行梯度乙醇和叔丁醇脱水:30%、40%、50%、60%、70%乙醇(此步可保存可过夜)、10%叔丁醇+20%水+70%乙醇、20%叔丁醇+10%水+70%乙醇、30%叔丁醇+70%乙醇、50%叔丁醇+50乙醇、70%叔丁醇+30%乙醇、90%叔丁醇+10%乙醇、100%叔丁醇(2次),30次。 补充:若没有叔丁醇,可替换一下步骤进行30%、40%、50%、60%、70%、80%、95%、100%乙醇,然后1/4二甲苯+3/4乙醇、1/2二甲苯+1/2乙醇、3/4二甲苯+1/4乙醇、100%二甲苯(2次),每步均30 。 (4) 浸蜡 用刀片将石蜡块切成碎末,逐步加入到上述最后一步的材料中大约是1/4的量,37℃烘箱过夜;继续加石蜡,同时放入到42℃,待石蜡不继续熔化时放入到60℃烘箱中,等待全部融化后,将叔丁醇和石蜡的混合物换成纯蜡,每天上午下午(9点)各换纯蜡一次,持续3天。 (5) 包埋 最后将材料包埋备用。在切片前将包埋块4℃冰箱中保存,可保存至少一年。3.组织切片

石蜡切片的制作过程(精)

石蜡切片的制作 目的要求:了解生物制片的基本原理和方法;了解石蜡切片制作的基本过程;学会制作石蜡切片。 一、生物制片的基本原理 (一生物制片的目的与发展概况 生物制片是研究生物有机体微观结构的基础方法,其目的是提供在显微镜下以适度的样品,有效地对其进行形态和功能观察研究。 (二生物制片的方法 当我们研究生物体的组织或细胞时,除了某些生物体可用相差显微镜或偏光显微镜等方法达到观察目的外,其余大部分生物体,因为组织较厚,光线不易透过内部等关系而达不到观察的要求,为了达到此目的,就必须将生物体的组织切成薄切片或不切片,经过一系列处理,使光线易于透过,即可进行观察。因此,根据标本的制作方法分为切片法和非切片法两种。这些方法,各有优缺点,应该适当的配合使用,才能获得比较理想的结果。 1.切片法 (1切片法的种类 切片法就是利用锐利的刀具,将器官组织或幼小个体分割成许多极薄的薄片,而制成切片标本的一种方法。切片法在切成薄片以前必须设法使组织内渗透某种支持物质。使组织保持一定的硬度,然后利用切片机进行切片。根据所用支持物质的不同切片法又可分为石蜡切片法、火棉胶切片法、冰冻切片法、炭蜡切片法等类型。现分述如下: ⅰ.石蜡切片法

石蜡切片法即用石蜡作为支持剂进行切片的方法。石蜡切片法是一般组织学、病理学等常规制片方法,因此用得最多,它有很多优点:比较省时间,容易操作,可切成极薄的切片(4um 以下,能制作连续切片,组织块可包埋在石蜡中永久保存。缺点是只能用于较小的组织块,较大的组织块不易切好,容易破碎,组织在脱水透明过程中产生收缩并易变脆。制片时间太长。 ⅱ.火棉胶切片法 火棉胶切片法是以火棉胶为支持剂进行切片的方法。此法的优点是包埋过程中不用二甲苯及石蜡,不经高温,可避免组织收缩及变脆,适于精细材料(如脑的切片,也引火棉胶有韧性切片不知有折卷或破裂,适宜于大块组织及多空洞的组织(脑、眼球,硬度较高的组织(骨、肌腱。缺点:手续麻烦、费时间,切片不能切薄,起码在10um以上,不能作连续切片,因此,在生物制片技术上已经不经常采用。 ⅲ.冰冻切片法 冰冻切片法是利用液体二氧化碳或其它药剂(如氯乙烷在变成气体时吸收大量的热使组织迅速结成冰块而后再进行切片的方法。目前国内外用半导体致冷调节器来代替二氧化碳的冰冻,冷冻速度更快更为方便。 冰冻切片法的优点是较前两种方法简便,组织不经脱水、透明、包埋等手续即可切片,因而可节省很多时间,十分钟左右即能制成切片。常用于临床病理手术诊断,银材料不经溶媒处理就可直接进行切片,材料不受试剂的激烈刺激及温度影响,所以组织没有显著的收缩,细胞形态不致有大的改变,也引冰冻切片不需有机溶剂处理,所以能保存脂肪、类脂等成分,所以冰冻切片法常用于组织化学,尤其是神经组织,临床病理学等方面的研究。 新鲜的组织或已经固定的组织,经短时间处理后即可进行切片。用任何固定及处理的材料均适合冰冻切片,但一般的经验用福尔马林固定的材料最适合冰冻切片,而用酒精、甘油保存的材料必须充分水洗后才易于冰冻,否则不易切成完整的切片

植物组织石蜡切片制作

植物组织石蜡切片的制作 一、实验目的 1.熟练掌握石蜡切片的方法。 2.掌握永久制片的制作过程,为研究植物的内部结构奠定基础。 3.学会植物内部结构的比较研究方法。 二、实验器具与试剂 1.器具 石蜡切片机、烘箱、显微镜、染色缸、小培养皿、镊子、毛笔、吸水纸、纱布、载玻片、盖玻片等。 2.试剂 10%番红水溶液、0.5%固绿(用95%的酒精配制)、酒精(100%、95%、80%、70%、50%)、二甲苯、蒸馏水、甘油、中性树胶等。 三、实验材料 幼嫩植物各部分,根据季节选择材料。 四、实验内容与方法 石蜡切片法是显微技术上最重要、最常用的一种方法。它是把材料封埋在石蜡里面,用旋转切片机切片,可以切出很薄的切片。凡是精细的工结构,大都用石蜡切片。全都过程如下:1.固定 2.洗涤 3.脱水与硬化 4.脱酒精 2.封埋 6.切片 7.粘片 8.脱蜡 9.染色 10.脱水 11. 透明 12.胶封 (一)固定 1.固定的意义:固定就是用药品把细胞杀死,使细胞的原生质凝固,死后不发生变化,尽可能保持原来的结构以供我们观察。良好的固定剂,应是穿透力强,使细胞立刻致死,原生质全部凝固;不发生任何变形,增强折光率,并且不妨碍染色。 2.固定液的种类:固定液的种类很多,根据配制成分可划分为: (1) 简单固定液:以一种化学药品配制的固定液。常用的简单固定液有: A.酒精即乙醇,用作固定液,常用纯酒精或95%酒精。酒精穿透力强,固定时间常在1小时以内。高浓度酒精有使材料收缩的作用。70%的酒精可作保存液。配制低度酒精必需要用普通酒精即95%的酒精,绝不可用纯酒精。酒精为还原剂,不能与铬酸、锇酸、重铬酸钾等氧化剂配合。酒精可使核酸,蛋白质及肝醣等发生沉淀,但能溶解脂肪及拟脂。 B.福尔马林即甲醛,具强烈刺激性的气味,纯净的甲醛,为无色透明液体。固定用的浓度为4-10%甲醛也是强还原剂。不能与铬酸、锇酸等氧化剂配合。经固定后,材料变硬,通常不引起皱缩,但随后经过他种药剂处理时,就每每出现皱缩。所以甲醛一般不单独作固定,而与其他液体混合使用。 C.醋酸:为无色透明的液体,刺激性极强,冷则凝结成冰,故又叫冰醋酸。醋酸以与水和酒精配成各种比例的溶液,所用浓度为0.2~5%,也常与其他固定剂配合使用。醋酸穿透性很强,单独使用,有使原生质膨胀的作用,故常与酒精,甲醛等合用,醋酸为固定染色体的优良固定液,因此固定染色体的固定液中,几乎都含有醋酸。 (2) 混合固定液:由几种药剂,适量配制而成。常用的有下列几种: A、F.A.A固定液(又称万能固定液): [用途]这个固定液在植物研究上,应用最多,为植物组织最常用的固定液。固定时间,不受

石蜡切片

(请教)石蜡切片时碎片的缘故! vetsyl 发贴:67 积分: 1 状态:离线 2005-04-28 17:08 石蜡切片时怎么老是碎片和片堆积到一起,褶皱很大啊 vetsyl 发贴:67 积分: 1 状态:离线 2005-04-28 17:10 请各位专家给出宝贵的建议!谢谢 bluelove 用心做好每件事 发贴:164 积分:33 状态:隐身 2005-04-28 19:28 组织切下来之后要先放到水浴锅里,温度一般是40度左右,待组织完 全展开之后再捞片,就不会皱了! 碎片的原因有很多,有可能是你的组织处理(脱水问题)的问题,也有 可能是切片时蜡块没有修齐,要找到原因再对症处理了! vetsyl 发贴:67 积分: 1 状态:离线 2005-04-29 15:58 这边展片不是在水浴锅里,是放在载玻片上,然后放到一个加热 的板上。 但是问题是切片时那些薄片松散的很厉害,像一包渣样,假如有 浴锅可能都放不进去呀,不知道是刀片的问题,还是脱水的问题, 还是修切的问题? bluelove2005-04-29 19:53

用心做好每件事 发贴:164 积分:33 状态:隐身 我个人认为组织放到载玻片上之后就沾上去了展片效果不好,还 是在水浴锅里等组织完全展开之后再捞片效果好一些! 你的切片是什么地方烂?如果是组织烂就可能是组织处理的问 题,如果石蜡部分都是烂的,恐怕就是你修切的问题了吧! 野原 诺言来之不易 丁香园版主 发贴:3774 积分:404 状态:隐身 2005-04-30 08:12 vetsyl wrote: 这边展片不是在水浴锅里,是放在载玻片上,然后放到一个加热的板上。 但是问题是切片时那些薄片松散的很厉害,像一包渣样,假如有浴锅可 能都放不进去呀,不知道是刀片的问题,还是脱水的问题,还是修切的 问题? 1.切片时用一块冰在石蜡切面上冷冻一下蜡块再切。 2.使用的蜡太软,换用硬一些的蜡再次浸蜡包埋。 3.换用新刀片,找高手切。 4.标本处理有问题,在纯酒精中时间太久导致组织脱水严重从而质地变 硬变脆。 GOOD LUCK! bluelove 用心做好每件事 发贴:164 积分:33 状态:隐身 2005-04-30 13:07 野原wrote: 1.切片时用一块冰在石蜡切面上冷冻一下蜡块再切。 2.使用的蜡太软,换用硬一些的蜡再次浸蜡包埋。 3.换用新刀片,找高手切。 4.标本处理有问题,在纯酒精中时间太久导致组织脱水严重从而质地变 硬变脆。

石蜡组织切片实验操作练习详细指导

石蜡切片实验操作练习详细指导 提供给实验室的实验用品及每个小组的用量: 1、器材 切片刀,切片机,恒温箱,温台,熔蜡炉,蜡杯,酒精灯,蜡铲,展片台,解剖刀,解剖针,解剖剪,解剖盘,培养皿,吸管,镊子,单面刀片,台木,毛笔,洒精灯,包埋纸盒,染色缸,盖玻片,载玻片,玻片盘,树胶,树胶瓶,显微镜,温度计,脸盆,水浴锅。 2、试剂 卡诺氏固定液、FAA固定液、各种浓度的酒精、二甲苯、石蜡、蜂蜡、埃利希苏木精染液,1%伊红酒精溶液,1%盐酸酒精溶液,甘油蛋白粘片剂,郝普特氏粘片剂,中性树胶。1%番红,1%固绿,1%过碘酸,Schiff试剂,0.5%偏重亚硫酸钠溶液,醋酸酐-吡啶混合液,0.5%~1%淀粉糖化酶溶液。 3、材料 鼠肝、肾、心肌、骨骼肌或其他组织、大豆或小麦、绿豆、洋葱、大蒜、蚕豆的根、茎、叶等。 4、每个实验小组的用量 (一)器材 切片机,切片刀,温台,恒温箱,熔蜡炉,水浴锅等这类几个小组用一台就行;解剖刀,单面刀片,小台木,毛笔一只,蜡铲一个,盖玻片和载玻片30个,脸盆一个,酒精灯各一个,包埋纸盒2~3个,染色缸一个,瓷杯3个,显微镜一台。 (二)试剂 FAA固定液50ml、1%番红100ml、1%固绿100ml、1%过碘酸100ml、Schiff试剂100ml、亚硫酸盐300ml、醋酸酐-吡啶混合液100ml、0.5%~1%淀粉糖化酶溶液200ml,石蜡半盒、蜂蜡10块、埃利希苏木精染液100ml、1%伊红酒精溶液100ml、1%盐酸酒精溶液100ml、95%酒精5瓶、二甲苯2瓶,甘油蛋白粘片剂数滴,中性树胶数滴。 (三)材料 小白鼠一只、蚕豆种,小麦和大豆种10~20粒,洋葱和大蒜由实验室统一种,然后取其所需部分。 石蜡切片法实例(一)

动物组织细胞基因组DNA提取

动物组织细胞基因组DNA提取 一、实验原理 真核生物的一切有核细胞(包括培养细胞)都能用来制备基因组DNA。真核生物的DNA 是以染色体的形式存在于细胞核内,因此,制备DNA的原则是既要将DNA与蛋白质、脂类和糖类等分离,又要保持DNA分子的完整。提取DNA的一般过程是将分散好的组织细胞在含SDS(十二烷基硫酸钠)和蛋白酶K的溶液中消化分解蛋白质,再用酚和氯仿/异戊醇抽提分离蛋白质,得到的DNA溶液经乙醇沉淀使DNA从溶液中析出。 蛋白酶K的重要特性是能在SDS和EDTA(乙二胺四乙酸二钠)存在下保持很高的活性。在匀浆后提取DNA的反应体系中,SDS可破坏细胞膜、核膜,并使组织蛋白与DNA分离,EDTA则抑制细胞中Dnase的活性;而蛋白酶K可将蛋白质降解成小肽或氨基酸,使DNA 分子完整地分离出来。 二、仪器及试剂 1. 仪器: 恒温水浴锅、台式离心机、紫外分光光度计(GeneQuant)、移液器、玻璃匀浆器、离心管(灭菌)、吸头(灭菌) 2. 试剂: (1)细胞裂解缓冲液: Tris (pH8.0) 100 mmol/L EDTA (pH 8.0) 500 mmol/L NaCL 20 mmol/L SDS 10%

胰RNA酶20ug/ml (2)蛋白酶K:称取20mg蛋白酶k溶于1ml灭菌的双蒸水中,?C20℃备用。 (3)TE缓冲液(pH 8.0):高压灭菌,室温贮存。 (4)酚?氯仿?异戊醇(25:24:1)、 (5)异丙醇、冷无水乙醇、70%乙醇、灭菌水。 三、操作步骤 1. 取新鲜或冰冻动物组织块0.1g(0.5cm3),尽量剪碎。置于玻璃匀浆器中,加入1ml 的细胞裂解缓冲液匀浆至不见组织块,转入1.5ml 离心管中,加入蛋白酶K (500ug/ml)20μl,混匀。在65℃恒温水浴锅中水浴30min,也可转入37℃水浴12~24h,间歇振荡离心管数次。于台式离心机以12000 rpm离心5min,取上清液入另一离心管中。 2.加2倍体积异丙醇,倒转混匀后,可以看见丝状物,用100ul 吸头挑出,凉干,用200ul TE 重新溶解。(可进行PCR反应等,需要进一步纯化的按下列步骤进行) 3.加等量的酚?氯仿?异戊醇振荡混匀,离心12000 rpm,5min。 4.取上层溶液至另一管,加入等体积的氯仿?异戊醇,振荡混匀,离心12000 rpm,5min。 5. 取上层溶液至另一管,加入1/2体积的7.5mol/L乙酸氨加入2倍体积的无水乙醇,混匀后室温沉淀2min ,离心12000 rpm ,10min。 6.小心倒掉上清液,将离心管倒置于吸水纸上,将附于管壁的残余液滴除掉。 7.用1ml 70%乙醇洗涤沉淀物1次,离心12000 rpm ,5min。 8.小心倒掉上清液,将离心管倒置于吸水纸上,将附于管壁的残余液滴除掉,室温干燥。 9.加200ul TE重新溶解沉淀物,然后置于4℃或?C20℃保存备用。 10.吸取适量样品于GeneQuant上检测浓度和纯度。

小鼠部分组织的石蜡切片制作

小鼠部分组织的石蜡切片制作 一、实验原理:利用脱水剂除去组织中的水分,再用透明剂二甲苯可以去除脱水剂酒精,而二甲苯可以溶解石蜡并将其导入到已脱水的组织细胞中,然后用熔化的石蜡对组织进行包 埋,冷却后即可将柔软的组织包埋在石蜡中,使其具有一定硬度,且不改变其大小和形状。用旋转切片机可将其切为极薄的薄片,经染色、脱水、装片后在显微镜下可以清晰地观察其 组织结构。 二、材料与用具 1 ?材料:小鼠肝脏、脾脏等。 2 ?用具:溶蜡箱、蜡杯、不同熔点的石蜡、酒精灯等。 三、实验内容与步骤 1 .取材及固定 取小鼠,采用拉颈处死或麻醉处死法将其杀死,取其脾脏和肝脏,切为边长约为0.5cm的组 织块。用先用0.85%的生理盐水漂洗以洗去血液与污渍,如果是管状组织则必须把管腔中污 物洗净,可用注射器自一端向管腔中注射生理盐水数次,使其管腔冲洗干净,切忌不可用刀 或其他器具刮之。 由动物身上切取的组织必须是新鲜的,材料越新鲜越好,一般不应超过死后24 hr。如果是 管状器官或是其中有分泌之消化液,则死后应迅速采取,以免组织自溶或上皮剥落。 取下的材料马上进行固定,采用FAA固定液,固定液的用量与组织块体积之比一般在20:1 , 固定时间2 hr以上,超过24hr时可继续浸泡或转入70%酒精中保存。不应使组织块贴于容器壁上,应记录固定液的名称,材料的种类,动物品种及开始固定的时间。 2 .冲洗 固定后的组织块在进行脱水前用70%酒精洗去固定液。 3 .脱水和硬化 经过固定后的组织在水洗后要进行脱水,脱水的目的将组织内的水分用酒精或其他溶剂置换 出来,使组织逐渐变硬,便于油类或其他透明及浸入,为熔化的石蜡浸渗到组织中创造条件。 常用的脱水剂是不同浓度的酒精,因为酒精与水有很大的亲和力,酒精浓度可以逐渐升高,置换出组织中的水。脱水必须充分,脱水不充分会影响透明和浸蜡。脱水过程要逐级上升,不能操之过急,跳级脱水会引起组织块强烈的收缩变形。 脱水所用的酒精浓度及过程如下: 30%> 5C%> 7%> 80%> 9%> 95%> 10(% (I )> 10(% (n ) 组织块在各级较低浓酒精(小于70% )中脱水的时间应视组织块的大小而定,大小不超过 0.5立方厘米的组织块脱水时间为6?12 hr,在高浓度酒精中(大于70%)脱水时间为3 hr 左右。组织块在无水酒精中需经过两次处理,以保证脱净水分。由于无水酒精有使组织变脆 的缺点,故在无水酒精中脱水的时间不宜过长,一般应在15?30 min左右。在脱水瓶中酒 精的量与组织块之比约为50:1。 简化步骤如下: 70% (一夜)——80% (1 hr)——90% (30 分)——95% (30 分)——100% (15 分)——酒精+二甲苯(15分)——二甲苯(3分)——石蜡+二甲苯(30分)——石蜡(80分) 4 .透明 透明是石蜡切片法切片前必经的一步。其目的在于用矿物油或植物油等透明剂置换出无水酒 精,以便于熔化的石蜡浸渗到组织间隙中,故透明剂必须是能分别与石蜡和酒精相溶的。经

实验九动物组织中核酸的提取和鉴定

实验七 动物组织中核酸的提取和鉴定 【原 理】 动物组织细胞中的核糖核酸(RNA)与脱氧核糖孩酸(DNA)大部分与蛋白质结合形成核蛋白。核蛋白可被三氯醋酸沉淀,再用95%乙醇加热可以除去附着在沉淀上的脂类杂质,然后用10%NaCl 溶液提取出核酸的钠盐,加入醇可使核酸钠沉淀析出。 先用水由动物肝中提出核蛋白,再籍酚将核酸与蛋白质之间的结合键断裂,并用乙醚抽提去蛋白质及其它杂质,最后用乙醇将核酸沉淀。 核酸(RNA、DNA)可被硫酸水解产生磷酸。有机碱(嘌岭、嘧啶)和戊糖(核糖、脱氧核糖)。此三类化合物可用下列方法鉴定之。 1、磷酸:能与钼酸试剂作用生成磷钼酸,后者在还原剂的作用下。还原成兰色的钼兰。常用的还原剂有氨基苯磺酸、氯化亚锡,维生素C 等。 H 3PO 4+12H 2MoO 4→H 3PO 4·12MoO 3+12H 2O H 3PO 4·12MoO 3 H 3PO 4·6MoO 3·3Mo 2O 5 2、嘌呤碱:能与苦味酸作用形成针状结晶 3、戊糖: (1)核糖:经与强酸(盐酸与硫酸)共热生成糠醛,后者可与3;5二羟甲基苯缩合成绿色化合物。 (2)脱氧核糖:在强酸中加热,可生成ω—羟基γ—酮基戊醛,后者再与二苯胺作用生成一蓝色化合物。上述二反应如下 【操 作】(一)核酸提取l、用酚提取法:(1)取小白鼠一只,断头处死,剖腹取肝,置于研钵中,加入玻璃少许,研磨至糊状后,加入蒸馏水3ml,继续研磨约三分钟。 (2)于该研钵中再加酚液5ml,研磨约十分钟后,倒入—-圆底离心管中,离心5分钟(约2000转/分钟)。 (3)用毛细管将上液吸出,置于一圆底离心管中,加乙醚2ml,用拇指将管口按住,用力振摇1—2分钟(提出酚),离心5分钟后,用毛细滴管 吸取全部下层液于一圆底离心管中。 (4)于该管中加入95%乙醇2ml,用玻棒搅拌约2分钟,离心3分钟,取出.去上清液,沉淀部分即为核酸。2、用三氯醋酸提取法 (1)杀兔;取肝,称重,按每克肝脏4ml 比例加入1%三氯醋酸,制成肝匀浆。每组量取肝匀浆5ml 于带塞离心管中,3000转/分离心5分钟。 (2)将离心后的上清液倾去,于沉淀中加95%乙醇5ml 充分混匀,在水浴中加热至沸2分钟,注意酒精沸腾

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