细菌DNA提取方法综述

细菌DNA提取方法综述
细菌DNA提取方法综述

细菌DNA提取方法综述

姓名:刘燕

学号:1430170088

班级:周二班

摘要:高效稳定的细菌基因组DNA提取方法对后续分子生物学的研究有着重要的意义。不同的方法提取的DNA产量和纯度等方面有差异,会对后续步骤产生很大影响。本文综述了目前广泛使用的DNA 提取方法。

关键词:细菌、基因组DNA、提取方法

现代分子生物学技术如DNA 重组技术(又称基因工程)、分子克隆技术、PCR技术等,为进一步认识生命活动的本质,更好地利用其规律为人类服务提供了重要手段(马尧等, 2005)。但是,DNA 分离是成功利用这些技术的第一步,也是非常重要的一步,可以说DNA 质量的好坏直接决定了后续实验的成败。

[1]

基因组DNA提取方法不同,对细菌DNA降解程度的影响也不同,因此,从细菌中提取基因组DNA的潜在困难较大。目前国内外很多学者都在积极探索并研究各种高效的细菌基因组DNA提取方法,本文就近10年来国内外有关细菌基因组DNA的提取方法进行综述。[2]

1 DNA细菌提取方法

综合国内外文献,大致将细菌基因组DNA取提方法分为3大类:机械法、化学法和酶法。机械法包括冻融法、超声波法和玻璃珠法等; 化学法包括加入SDS 和苯酚等; 酶法包括加入裂解酶、蛋白酶K和溶解酶等。[3]

1.1机械法

液氮冷冻研磨破碎细胞壁的方法通常用于植物总基因组DNA的提取破碎细胞的物理方法。对于不同的样品,需要根据具体的实际情况对超声条件进行优化。超声波法常与其他方法结合使用,如与复合螯合剂( 脱氧胆酸钠+PEG +Chelex 100) 等结合使用。微珠振荡法也是常被研究者们采用的一种DNA 提取方法。赵文怡等[10]比较不同方法破除金黄色葡萄球菌细胞壁时,发现玻璃微珠法可以

有效破坏金黄色葡萄球菌的细胞壁,所提取的基因组DNA可以作为模板用于PCR 试验。[3]

1.2 化学法

化学法主要是指通过添加化学试剂使细胞裂解从而释放出DNA,所用化学药品主要有SDS和苯酚等。

1)DNA-SDS)传统抽提法(酚氯仿法):先用(十二烷基硫酸钠)溶解破坏细胞膜蛋白和细胞内蛋白,并沉淀蛋白质;然后用蛋白酶K水解消化蛋白质,特别是与DNA 结合的组蛋白,使DNA得以释放;再用有机溶剂去除蛋白质和其他细胞组分;最后用乙醇沉淀核酸。

2)加热煮沸法:通过加热煮沸使菌体破裂、蛋白热变性沉淀并释放DNA。3)Chelex-l00抽提法:离子螯合剂Chelex-100悬液在100℃碱性环境(pH10-11)条件下,导致细胞膜破裂,DNA变性和释放,同时能通过结合金属离子,防止所提取的DNA降解。

4)改良DNA抽提方法:即几种提取方法的结合或条件的优化,有改进溶菌酶法、

SDS-NaOH法、SDS-酶裂解法、SDS-CTAB法SDS-PVP法和Chelex-l00煮沸法等。

5)试剂盒抽提法:利用新型硅基材料Hi-bind的可逆结合特点,联合迷你柱旋转分离技术,将细菌DNA结合到柱上,再用无菌去离子水洗脱DNA。主要有离心柱法、真空泵法等,也有报道采用自动化操作提取细菌基因组DNA.[9]

1.3酶法

目前广泛使用的酶法是溶菌酶法。溶菌酶能切断肽聚糖中N- 乙酰葡萄糖胺和N- 乙酰胞壁酸之间的β- 1, 4 糖苷键,破坏肽聚糖支架,从而细菌细胞在内部渗透压的作用下胀裂而死亡。赵文怡等比较了不同方法破除金黄色葡萄球菌细胞壁的结果,发现溶菌酶法用时最长,且效率最低。而刘敏等通过比较几种不同的细菌DNA提取方法提取金黄色葡萄球菌DNA 得出结论,溶菌酶能有效地降解金黄色葡萄球菌细胞壁,且用溶菌酶破壁后提取的DNA 适于PCR试验。[3]

2几种细菌DNA提取方法的优劣

传统提取方法(酚-氯仿抽提法)及改良方法虽然效率较高,但费时费力,操作

中需要多次离心,步骤繁琐,增加了样品污染的可能性,且提取过程中易造成DNA损失。加入酚类物质或SDS会严重干扰后续PCR反应,且所用试剂有一定毒性,大量使用有害健康,易造成环境污染,不适合常规使用。

加热煮沸法操作简单、提取时间短,但加热过程中菌体破裂比例极少,且煮沸过程中部分DNA降解,致使DNA 提取效率很低。同时因革兰氏阳性细菌的细胞壁较厚,加热不能使其破裂,故无法提取基因组DNA ,这是该方法的另一大缺陷。

Chelex-100煮沸法被认为是目前抽提革兰氏阳性和革兰氏阴性细菌基因组DNA最为简便快捷的方法 [4],且成本较低,但其所提DNA纯度比酚 - 氯仿抽提法低,提取的 DNA 保存时间也有待验证,故该法只可用于短期研究。碱裂解法[5] 是一种简便的细菌基因组DNA提取方法,但该法需使用强碱,对DNA具有一定的腐蚀性。在强碱性及一定温度条件下能迅速破碎细胞膜和核膜,使核酸酶变性,并释放DNA ,此时DNA的一级结构相对完整,此方法在细菌质粒DNA 提取中应用较多。

SDS裂解法及溶菌酶法一般需要复杂的裂解液体系,并借助蛋白酶K和 RNA 酶获得高质量的抽提产物,且部分药品及相关酶试剂价格昂贵[6]。

CTAB抽提法常用于植物和部分革兰氏阴性菌中。

试剂盒法提取的DNA 效率和产量相对较高、质量稳定、易标准化,但试剂盒价格昂贵,使用次数有限,不适用于大量样本的基因组DNA 提取。不同厂家和生产批次的试剂盒也有差异,分别偏重于细胞、病毒、细菌的基因组DNA提取,对不同类型的样品效果也不相同。

3 同一文献对不同方法提取效果和效率的比

较夏涵等[7]用加热煮沸法、酚 - 氯仿法、Chelex-100 法及试剂盒法比较细菌基因组DNA 提取产量和OD 260 /OD 280 值,发现试剂盒法提取效果最好,Chelex-100和酚 - 氯仿抽提法效果次之,沸水浴法效果最差, 4 种方法除沸水浴法均可扩增出 3 种细菌的目的基因片断,且效果较好,没有出现杂带和拖带现象。

姚红等[8]用酚 - 氯仿抽提法、DNA试剂盒抽提法、沸水浴法、溶菌酶裂解法、SDS裂解法对同种细菌基因组DNA提取得率进行比较,发现溶菌酶 - 盐析法提取效率最高,酚 - 氯仿抽提法提取效率次之,碱裂解煮沸法和溶菌酶煮沸法提取效率较低,加热煮沸法提取效率最低。

4 细菌DNA 提取的建议

1 )实验研究时根据不同细菌,选择和建立不同提取方法,获得高纯度、高质量模板DNA;

2 )提取过程中应多做几组平行样,以保证DNA提取得率及质量的准确性;

3 )用乙醇洗涤后无法看到DNA沉淀时,可加入醋酸铵,出现沉淀后再用乙醇洗涤;

4 )在细菌基因组DNA提取过程中,某些物理、化学因素也会影响DNA的提取效率或后续实验的准确性,因此在提取细菌DNA的过程中应将这些物质净化处理,尽量减小提取过程中引进的物质对后续实验研究的不利影响;

5 )提取的细菌基因组DNA 用乙醇多次洗涤,去除杂质后再保存备用。

5 结论与讨论

比较文献后发现,大部分文献都采用改良方法和试剂盒法提取DNA,以提高DNA得率,但相同方法在不同文献中得到的细菌基因组 DNA 得率相差较大,没有可比性。综合比较各文献DNA提取得率和同一文献或实验室中使用不同的提取方法可知 ,改良后的传统法提取得率较高,Chelex-100和试剂盒法次之,加热煮沸法最低。

目前,有效、快速、经济地提取高纯度、高质量的细菌基因组DNA,仍是分子生物学研究的基本问题。本文针对近几年国内外的各种DNA提取方法进行阐述比较后发现:简化实验步骤,用非有机溶剂法代替传统的有机溶剂法以减少污染,采用各种固体吸附剂有效去除PCR 反应抑制剂以及降低成本,已成为提取细菌基因组 DNA 的发展趋势。

参考文献:

[1]熊明华,朱继荣,王光利,等.一种快速经济提取革兰氏阴性和革兰氏阳性细菌基因组 DNA 的方法[J].基因组学与应用生物学,2016年,第35 卷,第2 期,第 385-390页.

[2]郝敏,刘占英,杨天舒,等.细菌基因组DNA提取方法概述[J].生物学通报 ,2014年,第49卷,第3期.

[3]高慧琴,刘凌.PCR-DGGE技术中不同DNA 提取方法综述[J]. 安徽农业科学,Journal of Anhui Agri.Sci.2011,39( 1) :52,102 .

[4]Cheng H. R., Jiang N.. Extremely Rapid Extraction of DNAfrom Bacteria anYeasts.Biotechnol Lctt,2006,28(1):55—59.

[5]周双清,黄小龙,黄东益等. Chelex-100快速提取放线菌DNA作为PCR扩增模板.生物技术通报,2010,(2):123—125.

[6] 余道军,童文娟,陈岳明等.临床标本细菌基因组DNA提取方法探讨.中国微生态学杂志,2007,19(6):519.

[7]夏涵,府伟灵,陈鸣.快速提取细菌DNA方法的研究.现代预防医学,2005,32(5):571—573.

[8]姚虹,吕治,苏建荣.不同方法提取阴道加德纳菌细菌基因组DNA的比较.中国实验诊断学, 2011,15(1):123—125.

[9]Stormer M., Kleesiek K., Dreier J.. High-volume extraction ofnucleic acids by magnetic bead technology forultrasensitivedetection of bacteria in blood component. Clin Chem,

2007,53(1):104—105.

[10]赵文怡,高强,谯娜娜,等.玻璃微珠法提取葡萄球菌基因组DNA的研究[J].现代食品科技,2010( 2) : 154 -156.

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