WHO第五版精子形态巴氏染色方法过程

1、将涂片浸入95%（v/v）的乙醇中至少15分钟

2、80%（v/v）乙醇30秒

3、50%（v/v）乙醇30秒

4、纯水30秒

5、Harris’s苏木素4分钟

6、纯水30秒

7、酸性乙醇反复浸入4～8次，每次1秒

8、冷流水冲洗5分钟

9、50%（v/v）乙醇30秒

10、80%（v/v）乙醇30秒

11、95%（v/v）乙醇至少15分钟

12、G-6橙染色1分钟

13、95%（v/v）乙醇30秒

14、95%（v/v）乙醇30秒

15、95%（v/v）乙醇30秒

16、EA-50绿染色1分钟

17、95%（v/v）乙醇30秒

18、95%（v/v）乙醇30秒

19、100%（v/v）乙醇15秒

20、100%（v/v）乙醇15秒

巴氏染色法

巴氏染色液说明书【产品名称】巴氏染色液【包装规格】货号：DA0082 单瓶(盒)包装规格：100ml 、250ml 、500ml 、5000ml ；套组(盒)包装规格：4×100ml/盒、4×250ml/盒、4×500ml/盒。【预期用途】主要用于对脱落细胞的组织细胞学染色。【检验原理】细胞学常规染色普遍使用巴氏(Papanicolaou)法，橘黄G 与EA36或EA50联合使用可将胞浆染成颜色鲜明的绿色、蓝色和粉色，细胞中的细胞核是由酸性物质组成，它与碱性染料的亲和力较强；而细胞浆则相反，它含有碱性物质和酸性染料的亲和力较大。巴氏染色液利用这一特性对细胞进行多色性染色，细胞经染色后能清晰地显示细胞的结构，胞质透亮鲜丽，各种颗粒分明，细胞核染色质非常清楚，从而较容易发现异常细胞。通过巴氏染色可反映出细胞在炎症刺激下和癌变后的形态学变化，对早期发现和诊断一些病变和肿瘤具有较重要意义。【主要组成成分】试剂组成主要成分 l 、苏木素染色液苏木素 2、1%盐酸乙醇分化液盐酸、乙醇 3、橘黄G 染色液橘黄G 4、EA50染色液或EA36染色液 EA50染色液：淡绿、伊红、磷钨酸、冰乙酸； EA36染色液：淡绿、伊红、磷钨酸【储存条件及有效期】 5℃～35℃环境保存，原包装未开封染色液的有效期为18个月，在有效期内的已开封染色液建议在开封后6个月内使用完，每次用后应及时拧紧瓶盖，以免挥发或变质。【样本要求】新鲜标本涂片后，应尽快用95%乙醇固定，以避免细胞变形。【检验方法】 1、固定：将细胞涂片置于95%乙醇中固定； 2、染色，按要求进行染色。 3、二甲苯透明，中性树脂封片，镜检。【检验结果的解释】【检验方法的局限性】仅供形态学初检观察染色使用。【注意事项】 1、冬季气温较低时，苏木素染色液不易着色，可适当延长染色时间。细胞核蓝紫色或黑色非角化细胞的胞质淡蓝色或淡绿色角化细胞的胞质粉红或橘黄色红细胞鲜红色或橙红色粘液淡蓝或粉红色

13.巴氏染色液

巴氏染色液说明书【产品名称】巴氏染色液【产品名称】巴氏染色液PAP Staining Solutions 【产品编号】PAP-500ml,PAP-1000ml,PAP-2500ml 【包装规格】苏木素染色液500ml、1000ml 2500ml；橘黄G6染色液500ml、1000ml 2500ml；EA50染色液500ml、1000ml 2500ml。【预期用途】主要用于对脱落细胞的组织细胞学染色。【检验原理】巴氏染色液由3部分组成：苏木素染色液、橘红G6染色液和EA50染色液。苏木素染色液，是一种针对正常以及变态细胞学涂片染料，对核膜、核质、核仁染色效果非常清晰。涂片标本可是妇科或非妇科的，如痰液，尿液及细胞学穿刺样本。为获得优质的染色效果，苏木素染液技术完全按照帕氏染色法，以及OG-6染液；EA 31染液；同时供应选择性多色复染染料，如EA50试剂；EA65试剂，满足细胞学染色需求。橘黄G6染色液，是橘黄G (Orange G) 染料添加磷酸（PMA）后的酒精溶液。Papanicolaou染色，首先用苏木素将细胞核染色，之后用OG-6 试剂和EA试剂继续染色。橘黄G染料对细胞质染色，并保持在成熟细胞和角质化细胞。之后的EA试剂对未染色的细胞组分染色，如鳞状细胞，核仁，纤毛，红细胞。测试样本可为妇科细胞样本和非妇科细胞样本，如痰液，尿液，细胞穿刺等。为获得优质的染色效果，OG-6试剂特性与其他用于Papanicolaou染色法中染色试剂-苏木素试剂，EA 31试剂，及对比染色试剂EA50试剂，EA65试剂相符。 EA50染色液,为伊红Y和亮绿SF酸（加入了磷钨酸，PTA）染液的酒精溶液。Papanicolaou染色，首先用苏木素将细胞核染色，之后用OG-6 试剂和EA试剂继续染色。橘黄G染料对细胞质染色，并保持在成熟细胞和角质化细胞。之后的EA试剂对未染色的细胞组分染色，如鳞状细胞，核仁，纤毛，红细胞。测试样本可为妇科细胞样本和非妇科细胞样本，如痰液，尿液，细胞穿刺等。为获得优质的染色效果，EA 50 Pap 3B试剂特性与其他用于细胞学涂片染色试剂（苏木素试剂，OG-6试剂）相符。【主要组成成分】苏木素：乙二醇、苏木素、碘酸钠、硫酸铝；橘黄G染液：橘黄G6、磷酸、稳定剂；EA50：伊红Y、亮绿 SF、磷钨酸、稳定剂【储存条件及有效期】保证产品包装完整的情况下，储存温度在+15°C 和+25°C

巴氏染色的几点体会

巴氏染色的几点体会李瑞祥熊灏靳敏巴氏（Papanicolaou）染色法是脱落细胞染色中最好的染色方法。其适用于上皮细胞及间皮组织的标本。是阴道脱落细胞检查中最常用的染色方法。该染色法不但具有显示细胞核结构清晰，分色明显，透明度好，胞浆受色鲜艳等特点，而且所染标本不易脱色，可长久保存。对如何染好巴氏染色，笔者有以下几点体会，报告如下。 1 EA 36 染液pH值的测试 EA 36 染液的酸碱度对巴氏染色的成功起着关键性作用，EA 36 染液由伊红、亮绿、桔黄及俾麦棕等染料配成。伊红、亮绿、桔黄及俾麦棕等属于酸性染料。在溶媒中其发色团是负离子部分。发色团可与蛋白质中带正电的氨基结合，从而使胞浆显蓝色、绿色、桔黄色或红色。但蛋白质所带正负电荷的多少是随溶液的pH值而改变的。在偏碱环境中，蛋白质的羧基游离增多（带负电）。在偏酸环境中蛋白质氨基游离增多（带正电）。所以必须把染液pH 值调至5.2为宜［1］。EA 36 染液pH的调节，可用石蕊试纸法，也可用酸度计测试。当然用酸度计法最为准确。但以上方法均比较麻烦，同时还要受到仪器设备的限制，不方便。本文采用一种简单方便的方法。即用10%磷钨酸及饱和碳酸锂溶液直接测试。具体做法是，拿一张滤纸先滴少量染液于纸上，若滴染液处呈紫色，说明染液偏碱，则滴加少量10%磷钨酸。若显绿色，说明染液偏酸，则滴加少量饱和碳酸锂。并充分混匀。直至染液滴在纸上既显绿色又有红色，颜色鲜艳为宜。用此法测试染液pH同用石蕊试纸法测试一样，同样可获得满意的染色效果。磷钨酸在染色过程中，不但作为媒染剂可增加染料的着色力。同时磷钨酸与碳酸锂还是一对弱酸弱碱，实际上是一对缓冲剂。可中和分色及蓝化时可能留下的少量酸或碱。保证染色达到理想效果。 2 分色分色或酸化，对染色效果也很重要。分色目的是去掉胞浆中染上的多余的苏木素，使胞核着色显示特异性。因此，经分色后的胞浆在镜下观察应无色为佳。若胞浆中还残留有苏木素染料，会影响EA 36 染液的着色。结果会出现该红的胞浆不红，该绿的胞浆不绿，或不红不绿的现象。看不到红蓝相间现象。因此，掌握好分色是关键。分色时间不能过短或过长。太短胞浆中苏木素除不尽，太长会把核上的苏木素也退掉。每次应在数秒内完成。盐酸浓度应偏低（0.5%为好）。这样便于掌握分色的时间。 3 蓝化或碱化蓝化的目的是使胞核着色更具有特异性。经蓝化后的胞核紫中带蓝。这与红色的胞浆对比更鲜明。蓝化所用的碳酸锂是一种弱碱。因此，蓝化过程中碳酸锂还可中和分色时可能残留下的少量盐酸。为EA 36 的着色创造良好条件。所以蓝化时间可适当长些，以肉眼观察涂片变蓝为好［2］。若涂片经EA 36 染色后，镜下观察效果不理想时。根据涂片着色情况，可于EA 36 染液中滴加少量10%磷钨酸或饱和碳酸锂后重染EA 36 3～5min而补救。比如:角化细胞浆不红，就滴加10%磷钨酸。若角化前细胞浆也变红，就滴加饱和碳酸锂如此边复染边镜下观察，直至获得最佳染色效果为止。

精子数量和形态检查及医学意义

精子数量和形态检查及医学意义一、精子数量通过精子计数可求得精子浓度，乘以精液量还可求得一次射精排出的精子总数。正常成年男性，精子数量个体间的差异较大，精子浓度为（50～100）×109/L。＜20×109/L为少精症；正常人一次射精排出精子总数为≥40×106。精子数量减低可见于： ①精索静脉曲张； ②有害金属和放射性损害； ③先天性和后天性睾丸疾病（如睾丸畸形、萎缩、结核、淋病、炎症等）； ④输精管、精囊缺陷； ⑤老年人在50岁以上者精子生成减少。二、精子活动力和存活率 1．活动力：精子活动力（sperm motility）是指精子向前运动的能力。世界卫生组织（WHO）将其分为四级： a级：精呈前向运动； b级：慢或呆滞的前向运动； c级：非向前运动； d级：不动。精子活动力受温度和保存时间的影响。精液射出后于37摄氏度条件下放置8小时，全部精子将失动活动力。因此必须使用液化后的新鲜标本检查。活动力正常值：射精后60分钟内，精子50%或更多具有前向运动，25%或更多具有快速前向运动。精子活动力减弱或死精子过多是导致不育的主要原因。 2．精子存活率以“活”精子比率表示，若不活动的精子较多（＞50%），应进行体外活体染色检查，以鉴别其死活。活精子的细胞膜能阻止伊红Y、台盼蓝等染色剂进入细胞内，故不被染色；死精子细胞膜完整性受损。失去屏障功能，可被染色成橘红或蓝色。有生育力男性伊红染色法的活精子率≥75%。 3．检测精子活动力的临床意义精子活动力与受精的关系十分密切。精子活动力低下，难以抵达输卵管或无力与卵子结合而不能完成受精过程。a级活动力的精子量不足也会影响受精率。若连续检查，精子存活

巴氏染色技术要点

巴氏染色巴氏（Papanicolaou）染色法是脱落细胞染色中最好的染色方法。其适用于上皮细胞及间皮组织的标本。是阴道脱落细胞检查中最常用的染色方法。该染色法不但具有显示细胞核结构清晰，分色明显，透明度好，胞浆受色鲜艳等特点，而且所染标本不易脱色，可长久保存。对如何染好巴氏染色，笔者有以下几点体会，报告如下。 1 EA 36染液pH值的测试 EA 36染液的酸碱度对巴氏染色的成功起着关键性作用，EA 36染液由伊红、亮绿、桔黄及俾麦棕等染料配成。伊红、亮绿、桔黄及俾麦棕等属于酸性染料。在溶媒中其发色团是负离子部分。发色团可与蛋白质中带正电的氨基结合，从而使胞浆显蓝色、绿色、桔黄色或红色。但蛋白质所带正负电荷的多少是随溶液的pH值而改变的。在偏碱环境中，蛋白质的羧基游离增多（带负电）。在偏酸环境中蛋白质氨基游离增多（带正电）。所以必须把染液pH值调至5.2为宜［1］。EA 36染液pH的调节，可用石蕊试纸法，也可用酸度计测试。当然用酸度计法最为准确。但以上方法均比较麻烦，同时还要受到仪器设备的限制，不方便。本文采用一种简单方便的方法。即用10%磷钨酸及饱和碳酸锂溶液直接测试。具体做法是，拿一张滤纸先滴少量染液于纸上，若滴染液处呈紫色，说明染液偏碱，则滴加少量10%磷钨酸。若显绿色，说明染液偏酸，则滴加少量饱和碳酸锂。并充分混匀。直至染液滴在纸上既显绿色又有红色，颜色鲜艳为宜。用此法测试染液pH同用石蕊试纸法测试一样，同样可获得满意的染色效果。磷钨酸在染色过程中，不但作为媒染剂可增加染料的着色力。同时磷钨酸与碳酸锂还是一对弱酸弱碱，实际上是一对缓冲剂。可中和分色及蓝化时可能留下的少量酸或碱。保证染色达到理想效果。 2 分色分色或酸化，对染色效果也很重要。分色目的是去掉胞浆中染上的多余的苏木素，使胞核着色显示特异性。因此，经分色后的胞浆在镜下观察应无色为佳。若胞浆中还残留有苏木素染料，会影响EA 36染液的着色。结果会出现该红的胞浆不红，该绿的胞浆不绿，或不红不绿的现象。看不到红蓝相间现象。因此，掌握好分色是关键。分色时间不能过短或过长。太短胞浆中苏木素除不尽，太长会把核上的苏木素也退掉。每次应在数秒内完成。盐酸浓度应偏低（0.5%为好）。这样便于掌握分色的时间。 3 蓝化或碱化蓝化的目的是使胞核着色更具有特异性。经蓝化后的胞核紫中带蓝。这与红色的胞浆对比更鲜明。蓝化所用的碳酸锂是一种弱碱。因此，蓝化过程中碳酸锂还可中和分色时可能残留下的少量盐酸。为EA 36的着色创造良好条件。所以蓝化时间可适当长些，以肉眼观察涂片变蓝为好［2］。

精子形态与精子活力活率的关系

精子形态与精子活力活率的关系【摘要】目的：探讨精子形态与精子活力、活率的关系。方法：应用精子质量自动检测系统（CASA）进行精子活力、活率分析，采用精子形态检测系统下人工修正方法分析精子形态。结果：活力异常组形态正常精子百分率低于活力正常组，两组比较差异有显著性（P＜0.05）；活率异常组形态正常精子百分比亦明显低于活率正常组（P＜0.05）。结论：精子形态与精子活力、活率有密切关系。【关键词】精子；精子形态；精子活力；活率精子形态（strict criteria）是评价男性生育力一个重要参数，随着男性学的发展而日益受到临床的重视。目前，许多资料显示精子形态是体外授精主要预测参数，形态正常精子比例高低可脂解影响受孕[1]。精子运动能力也是评价受精能力重要参数之一，快速运动精子所占比例与受精能力、受精率密切相关[2]。本文探讨了精子形态与精子活力、活率及密度的关系，旨在从精子形态方面为临床评价男性生育力提供实验依据。现报道如下： 1 研究方法 1.1 研究对象：386例男性不育患者均来自遵义医学院生殖中心男科实验室，年龄21～46岁，婚后正常性生活2年以上不育，无外伤及遗传性疾病家族史，体检未发现明显睾丸、附睾及输精管异常。 1.2 精液标本收集：禁欲3～7 d后手淫取精液于干燥消毒量杯内，置37℃水浴箱内液化。进行精子形态分析，精子活力、活率及精子密度检测。 1.3 精子活力检测：采用国产WLJY-9000型伟力彩色精子质量检测系统进行精子活力分析。以a+b级活力50％分为活力正常组和活力异常组。 1.4 精子活率测定：采用伊红－Y染色法分析精子活率。按精子活率50％将精子分为活率正常组和活率异常组。 1.5 精子形态分析：每份标本分别采用国产WLJY-9000型彩色精子形态检测系统下人工修正方法进行精子形态分析。按WHO规定的标准分为形态正常精子和形态异常精子。形态异常精子中包括大头精子、小头精子、锥形头精子、犁形头精子、无定形头精子、空泡样头精子、双头精子、颈部和中段缺陷精子、尾部缺陷精子。

巴氏染色原理及操作步骤

巴氏染色原理及操作步骤巴氏染色法是脱落细胞染色中最好的染色方法。苏木素染液，细胞核内的染色质主要是去氧核糖核酸（DNA）,DNA的双螺旋结构中，两条链上的磷酸基向外，带负电荷，呈酸性，很容易与带正电荷的苏木素精碱性染料以离子或氢键结合而被染色。苏木精在碱性溶液中呈蓝色，所以细胞核被染成蓝色。分化：苏木素染色之后，用水洗去未结合在细胞上的染液，但是在细胞核中结合过多的染料和细胞浆中吸附的染料必须用分化液1%盐酸酒精脱去，才能保证细胞核和细胞浆染色的分明，把这个过程称为染色的分化作用。因酸能破坏苏木素的醌型结构，使色素与组织解离，分化不可过度。蓝化：分化之后苏木素在酸性条件下处于红色离子状态，在碱性条件下处于蓝色离子状态，而呈蓝色，所以分化之后用水洗去酸而中止分化，再用弱碱性水使苏木精染上的细胞核变呈蓝色，称蓝化作用，一般多用自来水浸洗即可变蓝，也可用温水（50度温水最佳）变蓝。EA50染液的酸碱度对于巴氏染色的成功起着关键作用，EA50染液由伊红、亮绿、等染料配成。伊红、亮绿、橘黄等属于酸性染料，在溶解媒中其发色团是负离子部分，发色团可与蛋白质中带正电的氨基结合，从而是胞浆显蓝色、绿色、橘黄色或红色，但蛋白质所带正负电荷的多少是随溶液的PH值而改变的，在偏碱环境中，蛋白质的羧基游离增多（带负电），在偏酸环境中蛋白质氨基游离增多（带正电），磷钨酸在染色过程中，不但作为媒染剂可增加染料的着色力，同时磷钨酸与碳酸锂还是一对弱酸弱碱，实际上是一对缓冲剂，可中和分化及蓝化时可能留下的少量酸或碱，保证染色达到理想效果，其适用于上皮细胞及间皮组织的标本，是阴道脱落细胞检查中最常用的染色方法，该染色法不但具有显示细胞核结构清晰、分色明显、透明度好、胞浆受色鲜艳等特点。巴氏染色法将胞核染为深蓝色；鳞状上皮底层、中层及表层角化前细胞胞质染绿色，表层不全角化细胞胞质染粉红色，完全角化细胞胞质呈桔黄色；细菌：灰色；滴虫：淡蓝灰色；黏液：淡蓝色或粉红色；中性粒细胞和淋巴细胞、吞噬细胞胞质均为蓝色；红细胞染粉红色；高分化鳞癌细胞可染成粉红色或桔黄色；腺癌胞质呈灰蓝色。

正常形态精子率低于4怎么办

正常形态精子率低于4怎么办在每个人的一生中结婚生子是不可避免的，但是可能会因为种种因素而不容易有孩子，其中有女性方面的因素，同时也有男性的因素。其中男性可能因为不注重保护睾丸，而使正常形态精子率过低也会给生孩子这件事带来重重障碍，那么，正常形态精子率低于4怎么办？在这里小编就和大家介绍一下吧。正常形态精子率低于4怎么办（1）改善睾丸血供：改善血液流变功能，睾丸动、静脉管腔内径缩小，增加动脉血流量，降低静脉回流速度，以达到提高睾丸组织中的血流量；（2）促进睾丸生精细胞生长发育：使曲细精管内生精细胞、精子细胞和精子生长发育活跃，细胞数大量增加。曲细精管横径变长、管腔内细胞层数增多，生精细胞增殖活跃，初级精母细胞减数分裂增多，精子畸形数减少，精子密度增加、活力提高；（3）促进雄性激素睾酮的分泌：促进睾丸Leydig细胞生长发育、分泌睾酮增多，而睾酮增加促进生精细胞发育成熟，促进精子的生长；（4）通过调节神经递质促进精子发育：机体内神经递质中DA恢复正常生理水平；间接调节睾丸生殖细胞生存的生理环境，以适应精子生长发育；（5）促进前列腺和精囊腺分泌功能增加；精子畸形的原因正常精子的形态率应该不低于90%,活力要高于60%,正常的精子形态才4%,说明大部分的精子是畸形的精子,这是直接影响受孕的,这样受孕胎儿的畸形率比较高,引起畸形精子症的原因有泌尿生殖道感染,腮腺炎并发的睾丸炎,附睾结核,精索静脉曲张等,它们均可导致畸形精子增加,典型的是双头精子,影响精子的质量;生殖腺受到放射线照射,可引起精子的突变;阴囊局部长期高热,长期酗酒（特别是高浓度的烈性酒）,均可使精子发生畸变。以上就是正常形态精子率低于4怎么办的简要介绍，小编也向大家介绍了精子畸形的几个主要因素。希望广大男性同胞们在这方面多上点心，一定要注重睾丸的保护且不要长期饮酒醉酒，烈性酒尽量不要喝，毕竟这是建立幸福婚姻的前提和基础。

巴氏染色的操作方法及注意事项

巴氏染色的操作方法及注意事项染色染色有4个步骤：1、固定；2、核染色；3、胞浆染色；4、透明。主要达到以下要求：1、核的结构清晰；2、透明度高；3、分色恰当。一、固定固定的目的细胞制片的迅速固定是制片过程中关键的一步，否则会影响细胞学诊断的准确性。对于不同的标本需要不同的固定方法。最为常用的固定方法是95％酒精作为固定液的湿固定法。酒精作为一种脱水剂能够防止细胞内的酶捋蛋白质分解而自容，并凝固细胞内的物质如蛋白质、脂肪和糖类等，使其保持与组织生活相仿的成分，从而使细胞各部分，尤其核染色质易于着色。对于巴氏染色来说，酒精固定最为重要的。如果酒精浓度不足引起的固定不佳，可造成细胞的人为变化，并可导致假阳性或假阴性的诊断。1、固定方法湿固定法：作为用95％酒精固定液固定的细胞学标本一定使用湿固定法。制片制备完后，趁标本新鲜而又湿润时，立即放入盛有95％酒精的固定缸内。制片在固定液内至少保持15-30min。固定时间通常不超过1周。这种制片染色后，颜色鲜艳，结构清晰。如果细胞制片需要送至另一实验室或邮寄他处染色时，可以固定15min后，把制片取出后立即密封的容器中或者使用甘油防止制片干燥。因为无论固定前或固定后的制片，如果发生干燥后都会影响染色的效果。 2、固定注意事项固定液的过滤：为了防止细胞污染，凡是

使用过的固定液，必须过滤后才能再使用。使用过长的固定液，必须用酒精相对密度计测定，酒精浓度低于90％时应该及时更换新液。湿固定的重要性：标本再新鲜时及时固定时保证染色效果的重要因素。如苏木素对细胞核的染色，巴氏染色中胞浆的特殊着色作用，均可因标本干燥后固定而大受影响。制片标本的邮寄：标本再固定15min后取出，立即加甘油数滴于制片上，装入密封的小盒中。实验室在收到标本后，先浸入95％酒精中，使甘油溶去，再进行染色。二、核染色1、苏木素液浸染时间一般在3-5min，但是必须随气温和燃料情况而酌情改变。夏季或放置较久的苏木素染液容易着色，时间要缩短；冬季或新配制的苏木素染液和应用已久较稀释的苏木素液不易着色，时间要延长。在使用苏木素染色时，一般有2种方法：1）过染法：首先有意识地进行深染，然后通过盐酸酸化过程使核染色趋于合适。这种方法能够在酸化过程中把胞浆内黏附多余的苏木素染料去掉，使胞浆染色更为鲜艳、清晰、多用于黏液多的标本。2）淡染法：在核染色过程中，严格掌握染色时间，使核染色适宜而不用盐酸酸化，但是胞浆中少量的苏木素会影响EA 染色的质量。主要用于黏液少的标本，避免在酸化和自来水冲洗的过程中使细胞成片地脱落。在使用苏木素染色时，一定要每日进行过滤，否则苏木素结晶会影响染色的质量。一般苏木素染液可以使用较长时间，所以每日增加少量新鲜

精子畸形率高吃什么

精子畸形率高吃什么【导读】畸形精子症是指异常形态的精子数比例过多的一种病症。畸形精子不具备正常的活动能力和受孕能力，是引起男性不育的主要原因之一.一般有如下病因可引起：（1）生殖道感染；（2）精道部分梗阻；（3）先天性畸形；（4）原发性睾丸功能衰竭；（5）免疫因素，如：自身抗精子抗体等；（6）长期接触有毒化学物质，电离辐射；（7）空气、水质、环境污染及吸烟、酗酒等；（8）长期穿紧身裤及热水坐浴等因素有关。那么男人精子畸形率高吃什么好呢，吃什么可以最好最快补精子？精子是衡量健康好坏的重要标准,一旦出问题,可能发展成男性不育。所以补精子行动志在必行。所以吃什么补精子并且可有效提高精子质量进而有效的防治男性不育是至关重要的。男人吃什么可以改善精子畸形率过高呢？其实在需要补充维生素，平时多吃水果之外还有以下方法哦。一、富含优质蛋白质的食物蛋白质是构成抗体、激素、酶和各种组织器官的基本成分，男人体内缺乏蛋白质将对生殖健康产生重要影响。蛋白质是雄性激素的营养来源，蛋白质摄入不足会导致雄性激素分泌受阻，此外，蛋白质也是构成精液的基本原料，它的匮乏将使体内的氨基酸浓度无法得到均衡，影响精液的生成。二、含硒高的食物男性体内的硒有20%——40%集中在生殖系统，硒也因此被称为“男人的体内黄金”。它参与了男性睾丸酮的合成和运载活动，帮助提高精子活力以及受精等生殖活动，硒还是影响精子生产和代谢的一系列酶的重要组成，男人缺硒可致精子生成不足、精子活性变低、精子出现畸形等。三、含锌高的食物锌对男人的作用想必很多人都知道，睾丸、前列腺、精液都含有很高浓度的锌，它被誉为男性的“生命之花”，是合成人体抗氧化酶的必要营养素，对维系男性健康、加快新陈代谢、增强免疫能力有很大的作用。补锌可改善少精、弱精、精子不液化，还能有效防治前列腺炎等男科疾病。另外提醒处于正在备孕男性应戒烟戒酒，规律生活，按时作息，而适当运动有利于精子的代谢和生成，帮助提高精子质量。精子畸形率高的原因通常情况下，男性精子畸形率高常常会导致一些婴儿出现畸形，那么是什么原因导致精子畸形率高呢。专家介绍，在我们的日常生活中，精子畸形率高的原因有很多，而男性的生殖器感染疾病是导致此现象的主要原因之一。精子畸形率高的原因有很多，一般多见于泌尿生殖道感染（如：支原体、衣原体、淋菌、G+球菌、G-杆菌等）、先天性睾丸发育不全、腮腺炎并发的睾丸炎、附睾结核、慢性中毒、营养不良、精神过度紧张、性交过频、精索静脉曲张等；以上疾病均可影响精子的发生过程。据有关专家介绍，男性精子的畸形率高具体是指正常形态的精子少于50%，即精液中畸形精子超过50%。畸形精子是指头、体、尾的形态变异，头部畸形有巨大头、无定形、双头等;体部畸形有体部粗大、折裂、不完整等; 尾部畸形有卷尾、双尾、缺尾等。然而引起男性精子的畸形率比较高的原因有泌尿生殖道感染、腮腺炎并发的睾丸炎、附睾结核、精索静脉曲张等，它们均可影响男性精子的质量;使用激素或某些化学药物，如抗癌药、利血平、马利兰、呋喃类等，可使精子发育不成熟;生殖腺受到放射线照射，可引起精子的突变;阴囊局部长期高热、长期酗酒(特别是高浓度的烈性酒)，均可使精子发生畸变。

巴氏染色

巴氏染色法是脱落细胞染色中最好的染色方法。苏木素染液，质去氧核糖核酸（DNA）,DNA的双螺旋结构中，两条链上的磷酸基向外，荷，呈酸性，很容易与带正电荷的苏木素精碱性染料以离子或氢键结合而被染色。苏木精在碱性溶液中呈蓝色，所以细胞核被染成蓝色。分化：苏木素染色之后，用水洗去未结合在细胞上的染液，但是在细胞核中结合过多的染料和细胞浆中吸附的染料必须用分化液1%盐酸酒精脱去，才能保证细胞核和细胞浆染色的分明，把这个过程称为染色的分化作用。因酸能破坏苏木素的醌型结构，使色素与组织解离，分化不可过度。蓝化：分化之后苏木素在酸性条件下处于红色离子状态，在碱性条件下处于蓝色离子状态，而呈蓝色，所以分化之后用水洗去酸而中止分化，再用弱碱性水使苏木精染上的细胞核变呈蓝色，称蓝化作用，一般多用自来水浸洗即可变蓝，也可用温水变蓝。EA50染液的酸碱度对于巴氏染色的成功起着关键作用，EA50染液由伊红、亮绿、等染料配成。伊红、亮绿、橘黄等属于酸性染料，在溶解媒中其发色团是负离子部分，发色团可与蛋白质中带正电的氨基结合，从而是胞浆显蓝色、绿色、橘黄色或红色，但蛋白质所带正负电荷的多少是随溶液的PH值而改变的，在偏碱环境中，蛋白质的羧基游离增多（带负电），在偏酸环境中蛋白质氨基游离增多（带正电），磷钨酸在染色过程中，不但作为媒染剂可增加染料的着色力，同时磷钨酸与碳酸锂还是一对弱酸弱碱，实际上是一对缓冲剂，可中和分化及蓝化时可能留下的少量酸或碱，保证染色达到理想效果，其适用于上皮细胞及间皮组织的标本，是阴

道脱落细胞检查中最常用的染色方法，该染色法不但具有显示细胞核结构清晰、分色明显、透明度好、胞浆受色鲜艳等特点。巴氏染色法将胞核染为深蓝色；鳞状上皮底层、中层及表层角化前细胞胞质染绿色，表层不全角化细胞胞质染粉红色，完全角化细胞胞质呈桔黄色；细菌：灰色；滴虫：淡蓝灰色；黏液：淡蓝色或粉红色；中性粒细胞和淋巴细胞、吞噬细胞胞质均为蓝色；红细胞染粉红色；高分化鳞癌细胞可染成粉红色或桔黄色；腺癌胞质呈灰蓝色

精子形态

精子形态文章目录*一、精子形态的基本信息1. 定义2. 专科分类3. 检查分类4. 适用性别5. 是否空腹*二、精子形态的正常值和临床意义1. 正常值2. 临床意义*三、精子形态的检查过程及注意事项1. 检查过程2. 注意事项*四、精子形态的相关疾病和症状1. 相关疾病2. 相关症状*五、精子形态的不适宜人群和不良反应1. 不适宜人群2. 不良反应精子形态的基本信息 1、定义精子形态学检查是为了了解正常精子与生理及病理范围内的变异精子所占的比例,是反映男性生育能力的一个重要指标。正常精子形态:头部呈椭圆形,无头部、颈部、中段和尾部缺陷。异常形态精子可出现各种缺陷,如头部形态异常(大头、小头、锥形头、梨形头、无定形头、空泡样头和双头等),颈、中段缺陷(肿胀的中段、不规则中段、弯曲的中段和异常薄的中段等),尾部的异常形态(短尾、无尾、双尾、卷尾和断尾等)。 2、专科分类男科检查 3、检查分类精液及前列腺液检查

4、适用性别男性 5、是否空腹非空腹精子形态的正常值和临床意义 1、正常值正常形态精子超过0.30。 2、临床意义如正常形态精子数少于0.30,称为畸形精子症,见于精索静脉曲张、生殖系统感染、激素水平异常和药物影响。结果偏低可能疾病:精液不液化、女性不孕症。精子形态的检查过程及注意事项 1、检查过程进行精液采集时,使用软皂或者石蜡对生殖器官进行按摩,待射精,把精液收集到无菌的试管中。交给医生进行染色检查。因为精子涂片染色染色是分析精子形态的主要手段,正常精子和生理及病理范围内的变异精子也只能通过染色加以分析。常用的有HE(苏木精-伊红)染色法或瑞-姬氏染色法,形态的特殊鉴别可用改良巴氏染色法。染色后,直接在显微镜下观察精子的形态。 2、注意事项在进行精液采集前,需禁欲3至5天,以确保能采集到准确的精子数量,禁欲时间过长或者过短都会影响检查结

巴氏染色液(Papanicolaou EA50)使用说明

巴氏染色液(Papanicolaou EA50)使用说明产品简介：细胞学常规染色普遍使用巴氏(Papanicolaou)法。Papanicolaou Stain最初仅用检测于阴道上皮雌激素水平以及生殖道念珠菌、滴虫等病原体。橘黄G6与EA36或EA50联用，可将胞浆染成颜色鲜明的绿色、蓝色和粉色。目前大多数实验室采用成品染液，所以每种染液应注意其改良后的最佳条件。最终胞浆染色应透明可见，核染色质应很容易辨别出来。目前改良的巴氏染色液含有多种离子，具有多色性染色效能。染色后胞质鲜艳、透明性好以及核膜、核仁、染色质结构清晰。细胞核染色液主要为Harris苏木素染液，细胞质染色液主要为EA36染液、EA50染液。巴氏染色液用于细胞脱落标本，细胞核呈蓝色或黑色，角化鳞状细胞胞浆呈粉红或橘红色。巴氏染色液(Papanicolaou EA50)细胞质染色采用EA50染液，细胞核染色采用无毒改良型苏木素染色液，不仅适用于妇科细胞学涂片染色如筛查宫颈癌和癌前病变，也适用于胸水、腹水、痰液等非妇科细胞样本的染色。产品组成：规格名称 G1540 4×100ml G1540 4×500ml Storage 试剂(A):苏木素染色液100ml500ml RT避光试剂(B):蓝化液100ml500ml RT 试剂(C):橘黄G6染色液100ml500ml RT避光试剂(D):EA50染色液100ml500ml RT避光使用说明书1份

自备材料：固定液如95%乙醇-冰乙酸固定液；系列乙醇；显微镜，盐酸乙醇分化液。操作步骤（仅供参考）： 1、细胞涂片用95%乙醇-冰乙酸固定液固定10～15min。 2、95%的乙醇浸泡1min。 3、80%的乙醇浸泡1min。 4、70%的乙醇浸泡1min。 5、蒸馏水或自来水浸泡或冲洗1min。 6、苏木素染液染色5～10min。 7、自来水冲洗2min。 8、1%的盐酸乙醇分化液分化约4～5s或0.5%盐酸水溶液分化10s。 9、自来水冲洗2min。 10、蓝化液中蓝化2min。 11、自来水冲洗2min。 12、70%的乙醇脱水2min。 13、80%的乙醇脱水2min。 14、95%的乙醇(Ⅰ)(Ⅱ)各脱水2min。 15、橘黄G6染液染色2min。 16、95%的乙醇(Ⅰ)(Ⅱ)各脱水2min。 17、EA50染液染色3～5min。 18、95%的乙醇(Ⅰ)(Ⅱ)各脱水1min。 19、无水乙醇(Ⅰ)(Ⅱ)各脱水1min。

精子形态学分析

精子形态学分析正常形态精子百分率是评价精子受精能力的重要指标之一。目前，用于精子形态学分析的染色方法有：改良巴氏染色法、苏木精-伊红（HE）染色法、瑞氏染色法、瑞-吉氏染色法、Diff-Quik染色法和Shorr染色法。 1 涂片的制备一般用新鲜的液化精液或生理盐水洗涤过的精子悬液进行涂片，通常每份标本涂双份片子，以备染色或操作出问题。载玻片应洁净，可用70%酒精洗涤并干燥后使用；涂片的厚薄应根据精子密度而定，精子密度高者涂片应薄些，而精子密度低者涂片应尽可能厚些。涂片的方法有多种，WHO推荐的方法有拉薄技术和滴管法，拉薄技术即用另一张载玻片的边缘拖拉载玻片上的一滴精液；滴管法即水平持滴管使一滴精液沿载玻片的表面展开。由于精液有一定粘稠度，这两种方法都很难涂成均匀的涂片。可建议用以下方法涂片：用滴管将一滴精液置于载玻片上，然后从液滴中央向周围循环吸净多余的精液，注意滴管的头要平整，滴管与载玻片垂直，缓慢吸去多余的液体。低密度、粘稠的、或充满碎屑的标本，建议先离心去除精浆，沉淀的精子团重新悬浮在适当体积中，以获得尽可能高的密度，但不应超过80×106/ml。正常精子密度且液化良好的精液标本亦可以洗涤后用精子悬液进行涂片，但离心操作对精子形态分析有无影响，尚需要进一步验证。精子涂片可进行空气干燥并固定。固定程序取决于染色方法。 2 改良巴氏染色法这是WHO手册推荐的方法。它可以使精子和其他细胞很好地染色，可使精子头部的顶体和顶体后区、胞浆小滴、中段和尾部着色。染液中的俾士麦棕为盐基性染料，伊红、亮绿、橙黄等为酸性染料，能与细胞中具有相反电荷的蛋白质结合，而染成各种不同的颜色，从而能清楚地区分各种细胞成分。以往用巴氏染色法进行染色时，操作步骤繁琐，目前已有改良的单一的巴氏染色液出售，操作非常简单，只需在自然干燥的精子涂片上滴加1~2滴巴氏染液，染15分钟即可。流水冲洗后自然晾干，显微镜油镜下观察精子形态。 3 HE染色带正电荷的碱性染料苏木素能与细胞核中带负电荷的核酸结合而使核染成紫蓝色，伊红为酸性染料，能与细胞质中具有相反电荷的蛋白质结合，使胞质呈红色。HE染色为医院病理科的常用染色方法，操作比较繁琐，对于可以借助病理科染色的医疗单位可以选用此法对精子进行染色。 4 瑞氏和瑞-吉氏染色法瑞氏染料是由酸性染料伊红和碱性染料美蓝组成的复合染料，细胞染色后可用于观察内部结构；吉氏染料是由天青、伊红组成的染料，天青对细胞核着色较好，结构显示更清晰。因此，瑞-吉氏染色法比瑞氏染色法效果稍好些，两种染液均可自行配制或购买，操作都比较简单。 ①瑞氏染液：取瑞氏染料0.1 g放入清洁干燥的研钵中，边加少量甲醇边磨至染料完全溶解，加甲醇到60 ml，倒入棕色瓶中，室温下放置1周以后即可用。②Giemsa染液：取Giemsa 染料0.5 g，置于33 ml甘油中，60℃水浴2小时，使其溶解，再加入60℃预热的甲醇33 ml，混匀后置棕色瓶中，室温下放置数周后方能使用（最好放置半年以上）。③30.1 mol/L pH6.9磷酸盐缓冲液：称取NaH2PO4?2H2O 1.4 g、Na2HPO4?12H2O 3.94 g，加蒸馏水至100 ml。染色时，将单独瑞氏染液或瑞氏∶吉氏（10∶1）混合染液滴加于精子涂片上，静置10秒后，滴加等量pH6.9磷酸盐缓冲液，染色10分钟后自来水冲洗，自然干燥，置于油镜下观察。 5 Shorr染色法精子涂片空气干燥后，用苏木精染色1~2分钟；流水浸洗后置42℃温水中蓝化5分钟（或浸入乙醇铵中蓝化）；Shorr染剂（BDH Shorr粉4 g溶于220 ml 50%温乙醇中，冷却，加入

育儿知识：正常形态精子2%怎么办

正常形态精子2%怎么办如果想要怀孕生子，男性的精子质量与女性的卵子质量要达标才行。由于生活中不良生活习惯，在加上抽烟喝酒会影响男性精子质量。男性精子质量如果畸形率高对生育有很大程度影响。正常形态精子2%怎么办？下面跟小编一起来看看。正常形态精子2%怎么办？正常形态，精子比例只有2%，这种情况是不容易受孕的，通常畸形率高，可能治疗起来比较慢，需要找到原发病，是哪里的问题，建议积极的进行治疗，可以到院经检查排除前列腺炎附睾炎睾丸炎等情况的可能，针对病因进行治疗。影响精子质量的环境因素 1、有机物质许多有机物质对精子具有毒性，如苯、甲醛、食品添加剂、化妆品等一些有害化学物质会阻碍精子的生成和活力，甚至导致睾丸萎缩。 2、气体(汽车尾气) 、“白色污染”也是造成男性不育的罪魁祸首。研究发现，汽车废气中的一氧化氮和铅最容易破坏精子质量，尾气中的一些重金属如铅、汞、镉等也是生精的大敌。除此以外，“白色污染”也会对男性生育造成很大影响。如果用塑料饭盒加热食物或者装热饭热菜，会产生类雌激素，使激素分泌紊乱，在抑制性欲的同时，会影响睾丸的生精功能。 3、农药和药物随着农业的发展，农药对精子质量的影响越来越受到人们的重视，比如敌敌畏、马拉硫磷、亚甲蓝、靛青红等可以影响精子的运动能力，使精子的数量减少、形态发生改变。 4、金属元素已经证明对生殖具有毒性的金属有汞、铅、镉等。长期接触这些重金属可以导致精子数量下降、精子密度减少、精子活力降低、一次排精量减少和畸形精子比例增加。 5、辐射生殖细胞是对辐射最敏感的细胞之一，超量辐射对精子可以产生不良影响。电磁波、核辐射、X线照射都是人类精子的杀手，可使精细胞异常、孕妇流产及胎儿发育不良。以上是小编对“正常形态精子2%怎么办”的相关介绍，男性不育有很多方面，目前出现较多的案例是精子质量差导致的。男性的精子在生育中起到关键作用，当精子出现问题一定要及时去医院找出原因，并根据原因采取对应的措施。突然胃痛怎么快速缓解有时候一些人会突然发生胃痛的现象，其实胃痛疾病是很常见的，所以说当出现胃痛的时候，也一定要掌握他的一些快速缓解方法，因为这样的话才能给自己减轻病痛。那么突然，胃痛怎么快速缓解呢？都有哪些好的处理方法呢？下面就跟大家分享一下。突然胃痛怎么快速缓解如果胃突然疼，又没有药的话，记得，蹲下来，双手抱住自己胃的地方，尽量把自己的上身压在蹲的两腿上，紧紧地压一下自己的胃部，这样会改善胃疼的尖锐感。胃疼的时候，记得，可以倒一杯较热的水，然后喝下去，这样，也会起到缓解的作用。这种的是因为可能胃酸过多导致了胃疼，所以喝水会稀释掉。也可以喝一杯较浓的牛奶，必须是纯牛奶，这样的喝下去后，也会对你的胃疼有所改善。因为牛奶进入胃后，会隔开胃壁与其他物质的接触而减少疼痛的。突然胃痛是怎么回事导致胃痛的原因有很多，包括工作过度紧张、食无定时、吃饱后马上工作或做运动、饮酒过多、吃辣过度、经常进食难消化的食物等。某些疾病导致的，但大多数是由胃酸反流引起的。也就是原本待在胃内的液体逆流入食道。如患了胃炎、胃溃疡、十二指肠溃疡、反流性胃炎等疾病，都是可能会出现胃痛的。受他们的饮食上，坏的习惯的影响，才使你也患上了胃病，从而可能会导致胃痛的现象。由于生活饮食没有规律造成的。不吃或者暴饮暴食都会

巴氏染色液(Papanicolaou EA65)操作步骤及注意事项

巴氏染色液(Papanicolaou EA65)操作步骤及注意事项货号：G1614 规格：4×100ml/4×500ml 有效期：6个月有效。产品内容：产品组成4×100ml4×500ml Storage 试剂(A):苏木素染色液100ml500ml RT避光试剂(B):蓝化液100ml500ml RT 试剂(C):橘黄G6染色液100ml500ml RT避光试剂(D):EA65染色液100ml500ml RT避光产品说明：细胞学常规染色普遍使用巴氏(Papanicolaou)法。Papanicolaou Stain最初仅用于检测阴道上皮雌激素水平以及生殖道念珠菌、滴虫等病原体。橘黄G6与EA36或EA50联用使用，可将胞浆染成颜色鲜明的绿色、蓝色和粉色。目前大多数实验室采用成品染液，所以每种染液应注意其改良后的最佳条件。最终胞浆染色应透明可见，核染色质应很容易辨别出来。目前改良的巴氏染色液含有多种离子，具有多色性染色效能。染色后胞质鲜艳、透明性好以及核膜、核仁、染色质结构清晰。细胞核染色液主要为Harris苏木素染液，细胞质染色液主要为EA36染液、EA50染液。巴氏染色液用于细胞脱落标本，细胞核呈蓝色或黑色，角化鳞状细胞胞浆呈粉红或橘红色。巴氏染色液(Papanicolaou EA50)细胞质染色采用EA50染色液，细胞核染色采用无毒改良型苏木素染色液，不仅适用于妇科细胞学涂片染色如筛查宫颈癌和癌前病变，也适用于胸水、腹水、痰液等非妇科细胞样本的染色。

自备材料： 1、固定液(如95%乙醇-冰乙酸固定液) 2、系列乙醇 3、显微镜 4、盐酸乙醇分化液操作步骤(仅供参考)： 1、细胞涂片用95%乙醇-冰乙酸固定液固定10～15min。 2、95%的乙醇浸泡1min。 3、80%的乙醇浸泡1min。 4、70%的乙醇浸泡1min。 5、蒸馏水或自来水浸泡或冲洗1min。 6、苏木素染液染色5～10min。 7、自来水冲洗2min。 8、1%的盐酸乙醇分化液分化约4～5s或0.5%盐酸水溶液分化10s。 9、自来水冲洗2min。 10、蓝化液中蓝化2min。 11、自来水冲洗2min。 12、70%的乙醇脱水2min。 13、80%的乙醇脱水2min。 14、95%的乙醇(Ⅰ)、(Ⅱ)脱水各2min。 15、橘黄G6染液染色2min。 16、95%的乙醇(Ⅰ)、(Ⅱ)冲洗各2min。

精子质量标准

精子质量标准【导读】很多男性朋友并不了解精子质量标准到底是什么，常规精液分析主要可以了解精液量、精子密度及其精液中精子的总数量、精子凝集、精子活力与活率、精子形态、精液液化等方面的信息。通过以上的信息可以了解到自己精子质量的标准。百科希望通过本文让各位男性朋友了解更多关于这方面的知识。衡量精子质量标准由以下10项组合而成，百科给整合出来让大家作为参考。 1、精液量:正常≥2ml.大于7ml时为过多,不但精子密度降低,而且易从阴道中流出,以致精子总数降低,常见于精囊炎;小于2ml为精液量过少,但通常以1ml以下为过少.此时精液与女性生殖道接触面积小,或因粘稠不利于精子进入女方宫颈口而导致不育,常见于严重的副性腺炎症,睾酮水平低下,射精管梗阻,逆行射精等. 2、颜色:正常是灰白色或略带黄色.乳白色或黄绿色提示生殖道或副性腺存在炎症;粉色,红色,显微镜下见红细胞者为血性精液,常见于副性腺,后尿道的炎症,偶可见于结核或肿瘤. 3、酸碱度:精液正常的pH值为7 2~7 8.小于7 2见于射精管梗阻或受尿液污染;大于7 8见于精囊炎症或标本陈旧. 4、液化时间:正常精液射出后,在精囊凝固酶的作用下变为胶冻状,经15~30分钟在前列腺液化酶的作用下变为液体,此为精液液化.射出精液30分钟后,精液仍不液化属于异常。 5、粘稠度:将玻璃棒接触已经液化的精液,轻轻提捧,可形成精液丝,正常时其长度小于2 cm. 6、精子计数:一般以每毫升精液中的精子数表示.正常计数≥20×106/ml.低于此值为精子过少,见于各种原因导致的生精功能障碍等,可因精子进入子宫腔及输卵管的机会减少而致生育力低下或不育.如精子计数大于250×106/ml为精子过多,因其活动力受影响也可导致不育. 7、精子形态:正常形态的精子≥50%,否则可造成不育. 8、活动力: 精子中呈直线迅速向前运动者≥50%. 9、白细胞:正常精液中白细胞1×106/ml.白细胞增多表明生殖道或副性腺存在感染. 10、存活率:通常指射精后1小时内检查,活精子≥50%.导致精子活动力及存活率降低的常见原因有副性腺炎症,精索静脉曲张,慢性呼吸道感染引起的纤毛呆滞综合征,精液中存在抗精子抗体或标本贮存不当精子质量标准的常规检查精子质量标准的常规检查是通过以下各种数值作为参考的，百科让大家更为清晰的看出都需要检查什么项目。颜色：均匀的灰白色精液量：5日内没有排过精之后的第6天排精量达到3～5毫升，通常不少于1.5毫升，均视为正常排精量；反之，可视为精浆减少。 H 值：7.2 ~ 8.0 精子浓度：20 ×106 / ml 以上精子活率：75%以上是活的精子形态：30%以上为正常白血球：少于1 × 106 / ml 液化时间：刚取出的精液为凝胶状，但在室温下60分钟内即完全液化。液化不完全会影响精子活动性精浆色泽和黏稠度：正常精浆为灰白色胶冻状，一般10分钟后常液化为透明液体，如果过久（1个月左右）未排精后第一次排出的精浆，呈淡黄色，亦属正常。精子质量标准的参考值

巴氏染色液EA 染色液使用说明书

EA50染色液使用说明书【产品名称】EA50染色液【产品编号】EA50-OT-100，EA50-OT-500，EA50-OT-1L，EA50-OT-2.5L 【包装规格】100ml500ml1000ml2500mL 【预期用途】细胞质染色试剂，用于Papanicolaou染色法细胞学上使用的对比染料【检验原理】 EA50染色液,Pap3B试剂为伊红Y和亮绿SF酸（加入了磷钨酸，PTA）染液的酒精溶液。Papanicolaou染色，首先用苏木素将细胞核染色，之后用OG-6试剂和 EA试剂继续染色。橘黄G染料对细胞质染色，并保持在成熟细胞和角质化细胞。之后的EA试剂对未染色的细胞组分染色，如鳞状细胞，核仁，纤毛，红细胞。测试样本可为妇科细胞样本和非妇科细胞样本，如痰液，尿液，细胞穿刺等。为获得优质的染色效果，EA50Pap3B试剂特性与KOHYPATH其他用于细胞学涂片染色试剂（苏木素HP，Pap1A试剂，OG-6，Pap2A试剂）相符。【主要组成成分】含生物染料级别（BSC）的伊红Y和亮绿SF，并添加磷钨酸和适当的稳定剂，两者浓度和比例不同于其他EA Pap试剂。细胞学涂片染色：收集和准备细胞学材料的两种方法：收集细胞学样本后置于载玻片（Vitro Gnost）上，立即喷洒固定液（CitoSpray）进行固定，干燥后染色备用。样本固定后可放置于95%乙醇（Histanol95）中30min。用液体基质的细胞学方法（LBC），刷子刷下细胞学样本，立即浸入固定液（CitoFix）固定。染色前，从固定液中分离样本细胞（离心固定液），置于载玻片上，准备进一步染色。巴氏（Papanicolaou）染色法，进行性染色：染色之前，样本材料应收集并固定于载玻片上。如样本已经用CitoSpray固定并干燥，应放置于95%乙醇（Histanol95）中 10min，以去除聚乙二醇；若样本是经95%乙醇（Histanol95）溶液固定，请忽略此步骤。细胞学样本染色过程中（用LBC法），包含低浓度乙醇，因此无需用递减梯度的乙醇进行水化。后续用苏木素HP，Pap1A染色。 1.递减梯度浓度乙醇溶液（Histanol95,Histanol 4组，每次上下跌落6-8次80and Histanol70）水化，并用蒸馏水或去离子水冲洗 2.苏木素HP，Pap1A染色2-3min 3.Scott溶液或显蓝试剂处理1min 注：若没有此试剂，可直接用自来水冲洗3-5min 4.递增梯度浓度乙醇溶液（Histanol70,Histanol 3组，每组上下跌落6-8次80and Histanol95）进行脱水 5.OG-6，Pap2A染色2-3min 6.95%乙醇（Histanol95）冲洗2次，每次上下跌落6-8次 7.EA31，Pap3A试剂染色/EA50，Pap3B试2-3min