小鼠乳腺上皮细胞体外原代培养方法研究进展

摘要综述了有关于小鼠乳腺上皮细胞体外原代培养方法的研究进展,阐述了乳腺细胞培养的意义,介绍了乳腺组织原代培养的过程,

并分析了所取得的研究成果。

关键词小鼠;乳腺上皮细胞;原代培养;细胞工程

原代培养即直接从有机体摘取细胞、组

织或器官,使其在体外维持与生长。合适的培养条件对体

外培养细胞的生存和增殖都十分重要。一般而言,不同动

物、不同组织器官来源的细胞对培养条件的要求存在一定差

异,因此,需要使体外环境下的培养条件尽可能地模拟体内

环境。体内乳腺组织的增殖、分化和组织结构重塑受内环境

(如类固醇、生长因子、结合蛋白及细胞外基质间复杂的相互

作用等)因素的影响和作用,这些因素同样也影响体外培养

乳腺上皮细胞的增殖分化和功能表现。对于某种动物特

定组织细胞的体外培养,对培养液、添加因子、附着底物及培

养温度、pH值等都需进行仔细的选择,乳腺上皮细胞的体外

培养建立在乳腺上皮原代培养细胞的基础上,针对不同的研

究目的应采取不同的培养方法,以对细胞进行分化诱导。

张以涛比较了不同pH值、不同血清浓度配比的生长培养液

对小鼠乳腺上皮细胞生长的影响,结果表明, pH值7. 4含

10%血清的培养基为最佳生长液。现代研究普遍认为,内

分泌激素在乳腺上皮细胞发育各个阶段都发挥影响作用,不

同时期乳腺组织的形态、组成及功能均有差异,这对选择乳

腺上皮细胞体外培养的取材时间有指导意义。张以涛比

较了取自不同时期乳腺上皮细胞的生物学特性,得出妊娠期

细胞生存、增殖能力均强于泌乳期细胞,妊娠期小鼠乳腺为

获得细胞的最佳取材时期。乳腺上皮细胞的原代培养,首

先是尽可能地分离出乳腺上皮细胞,同时减少分离过程对细

胞的损伤和浪费,以及通过采用一定的方法,使最终得到富

集的乳腺上皮细胞及杂质细胞尽可能少甚至被完全清除。

1乳腺细胞培养的意义

将动物细胞或组织在体外进行培养,能有效排除神经体

液等因素对其造成的影响,可直接进行药物对细胞的活动代

谢、毒性和杀伤作用等检测,如秦君等以王不留行为试验材

料,对其3类主要成分(皂甙类、黄酮甙类及香豆素类)进行

提取,分别以不同浓度添加到细胞培养液中,寻找王不留行

促进泌乳的有效成分。与细菌相比,可合成并分泌蛋白质

的细胞具有修饰功能,若对外源基因进行表达,则可生产出

许多与人类健康和生存密切相关的生物技术产品。自从

Gordon等应用转基因技术从哺乳期小鼠的乳腺中分泌人组

织源性纤维酶原激活剂以来,对乳腺生物反应器的研究得到

了迅速发展,让外源基因在哺乳动物的乳腺中特异表达,

使转基因动物的乳腺组织可直接生产药用蛋白已成为近年

来生物技术领域新的研究热点,世界各国对转基因动物乳腺生物反应器的研究极为重视。利用人工培养的动物细胞

繁殖病毒,大大减少了用病毒直接在动物体进一步繁殖而造成的经济损失。此外,乳腺上皮细胞是乳腺的主要组成和分泌功能成分,而乳腺癌属高发病,国内外许多研究者都研究

乳腺癌的发生发展机理,这使乳腺上皮细胞培养进一步受到了重视。

细胞培养工程正在逐步形成一支独特的高新技术产业,

并显示出巨大的工业发展前景。许多科学家把乳腺视为

一种理想的试验模型系统,用以研究解决许多基础原理问题,其涉及的领域有细胞生物学、发育生物学及内分泌学、生物化学与分子生物学等学科,为医药产业开创了一个新的

制药途径。乳腺细胞培养是研究构建模型系统的基础,为研究提供了大量上皮细胞。

2乳腺组织原代培养的过程

2. 1乳腺上皮细胞的原代培养要点乳腺的间质和实质的基本结构随发情周期的改变而改变,静止期乳腺脂肪细胞和结缔组织多,间质发达;活动期尤其在妊娠期乳腺实质发达,

腺泡数量增多且变大。在母畜妊娠中期,发育中的腺泡出

现分泌腔,腺泡和导管的体积不断增大,同时乳房内的血管

和神经纤维不断增生,且在这个时期所采集的乳腺组织

中所含杂质,如脂滴和结缔组织相对较少,这大大降低了乳

腺细胞体外培养的劣势。因此,对小鼠乳腺细胞的体外培养取材,大多采用妊娠中期小鼠乳腺,能得到相对较多的乳腺

腺泡细胞,妊娠期小鼠乳腺细胞增殖能力旺盛,适合于传代

培养。

当前,原代乳腺上皮细胞培养大都采用组织块培养法及

胶原酶消化法。李震等比较了几种乳腺细胞分离培养方

法的特点,证明了胶原酶消化法和组织块种植法均可用于动物原代乳腺细胞的培养,且比较了这2种方法的优缺点,结

果表明,胶原酶消化法容易得到均匀的乳腺细胞,且上皮细

胞所占比例也较高;组织块培养法不容易丢失,不易损伤上

皮细胞,上皮细胞长出较晚,且所占比例较低;组织块直接培

养法操作过程简单,但细胞从组织块长出所需时间较长,成

纤维等结缔组织细胞最先长出,随后出现含上皮细胞丰富的细胞单层,该方法比较适合于小动物(如小鼠)的乳腺细胞

培养。

乳腺细胞原代培养过程中,常常伴随着成纤维细胞的生

长,因此需要在之后的传代培养中进行纯化。然而,对于小

鼠乳腺细胞而言,其具有生长缓慢,老化速度快,纯化难等特点,符合要求的乳腺上皮细胞系很难建立。最早得到公认的细胞系是1984 年获得的COMMA21D 小鼠乳腺上皮细胞系,该细胞系在合适的培养条件下可以合成乳蛋白。Ball

等在COMMA21D 的基础上分离得到小鼠乳腺细胞系

HC11;已获得的机能正常且非瘤性小鼠乳腺上皮细胞系

还有小鼠乳腺细胞系NMuMG[ 15 ] , C57MG cells[ 16 ] ,NOG8[ 17 ] , EpH4 [ 18 ] , CID29 [ 19 ] , SCp2[ 20 ] , FSK cell[ 21 ] , Fos2ER[ 22 ]等。

2. 2小鼠乳腺上皮细胞原代培养

2. 2. 1小鼠乳腺组织的采集与处理。

2. 2. 1. 1小鼠乳腺组织的采集。用CO2 窒息法处死妊娠中

期小白鼠,置于75%乙醇中浸泡消毒;将小鼠四肢固定在蜡

盘上,用灭菌的手术器械呈“V”字型,沿小鼠腹中线剪开腹

部皮肤,用镊子牵拉开皮肤并用大头针固定住,暴露左右各5

个乳腺组织部位;尽量避开淋巴结和肌腱,将乳腺组织小心

剥离,放入灭过菌的烧杯中。

2. 2. 1. 2乳腺组织的处理。用PBS液漂洗乳腺组织,以

除去油脂及血液,留少许PBS液于容器内,保证乳腺组织的

活力。若采用组织块培养法,则将乳腺组织剪切成小于1

mm3 组织块,因为体积大于1 mm3 的组织块在培养液中仅有

处于其边缘的少量细胞能获得营养而得以生存和生长,而大

部分内部细胞因营养物质穿透有限而代谢不良,且受纤维成

分束缚而难以移出。若采用酶消化法,用眼科剪直接将

乳腺组织剪成均匀一致的糊状物,以便组织充分接触到消化

液,消化结束后,再用PBS液漂洗2次,离心收集沉淀的细

胞团。

2. 2. 2小鼠乳腺上皮细胞原代培养的一般方法。

2. 2. 2. 1组织块种植法。吸取已处理好的组织小块于进口

培养皿底部,并按0. 5 cm左右的间距均匀种植。轻轻翻转

培养瓶,瓶底向上,将其置于37 ℃、5%CO2 培养箱内2 h左

右,使组织小块微干涸贴壁,然后将培养瓶从培养箱取出,轻

轻加入少许20%生长液,使培养液缓缓浸过瓶底上的组织小

块,尽量避免冲洗掉已贴壁的小块。随后将培养瓶静置于培

养箱内培养,待细胞从组织块游出数量增多后,再换掉或补

加培养液。

2. 2. 2. 2胶原酶消化法。将乳腺组织糜转入离心管并加入

5倍体积的0. 2%胶原酶Ⅳ消化液于37 ℃中进行消化。每

0. 5 h振荡1次或用吸管吹打1次,使细胞分离。3 h左右消

化液中已无明显大块组织,用移液管将消化的乳腺组织吹

散, 100目不锈钢细胞筛网过滤除去杂质; 3次离心( 1 500

r/min, 2 min)清洗收集细胞,用少量生长培养液将收集的细

胞吹成单细胞和小细胞团块,转入进口培养皿或培养板,并

置于5%CO2、37℃培养箱中培养,视细胞生长状况换液或

传代。

2. 2. 3纯化方法。上皮细胞培养中常混杂有成纤维细胞,

培养时其生长速度往往超过上皮细胞,且难纯化,随传代的

不断进行,上皮细胞逐渐被生长较快的成纤维细胞取代。

同时,上皮细胞难以在体外长期生存,因此,纯化和延长生存

时间是培养关键。

利用成纤维细胞和上皮细胞对胰蛋白酶敏感性不同及

贴壁时间差异,对原代培养的乳腺上皮细胞进行纯化培养,

即利用上皮细胞与培养瓶的结合力比成纤维细胞牢固的特点,用胰酶/EDTA溶液轻微消化去除成纤维细胞。但在实

际操作中,该方法很难在小鼠乳腺上皮细胞的培养中完成纯化。通过密度梯度离心收集腺上皮细胞,可得到较纯净的上皮细胞,但该方法往往损失大量细胞。Medina等和Matitashvili等通过加入压绷氨酸或霍乱毒素选择性培养液,以促进上皮细胞的生长和抑制成纤维细胞的增殖;彭新

荣等在对牛乳腺上皮细胞进行体外培养时,用细胞刮刀

刮去大部分成纤维细胞。陶海静等在组织块培养过程中

利用组织块转培法,即选择以上皮细胞生长为主的组织块,

用灭菌铜针将其挑出,转移至另一培养瓶中进行培养;结合

胰酶/EDTA消化法除去成纤维细胞,从而得到了上皮细胞富集的细胞系。

2. 2. 4在细胞培养前的纯化。以上纯化时机都在细胞长出后进行,这时同乳腺上皮细胞生长的有大量成纤维细胞,它

们对维持乳腺上皮细胞分化状态起着积极作用,同时可形成类似乳腺组织的二维空间结构,但这些成纤维细胞一方面

成为杂质细胞,对某些单纯需要乳腺上皮细胞的研究会造成干扰甚至阻碍,另一方面,乳腺上皮细胞会被生长迅速的成

纤维细胞取代,这样也不利于研究中对乳腺上皮细胞的利用,因此在乳腺上皮细胞原代培养的研究中便诞生了新方法。①胰蛋白酶、胶原酶分段消化。有研究表明,采用胶原酶、链霉蛋白酶分段消化乳腺组织,可得到纯上皮细胞。张以涛等在进行小鼠乳腺上皮细胞原代培养时,先将1 g乳

腺组织加入0. 125%胰蛋白酶于37 ℃消化20～25 min,然后用含5100%血清的DMEM /F12洗涤液漂洗1次,最后加入胶原酶溶液于37 ℃培养20～25 min, 6层消毒纱布过滤后离心(1 500 r/min, 2 min)收集细胞,用该法得到了富集的乳腺

上皮细胞。②5%FCS洗纯。Kittrell等将切碎的小鼠乳腺

组织用0. 15%胶原酶于37 ℃消化3～4 h,离心后的细胞沉淀用含5%胎牛血清的PBS清洗4遍以除去胶原酶,Virginia 等对Kittrell等的方法进行了改良,将小鼠乳腺组织切

碎后,放入含胰岛素及抗生素的由DMEM /F12配制的A型胶原酶中,于37 ℃振荡消化3 h, 1 000 g离心10 min收集细胞沉淀,加入DNA酶轻摇消化2 min,用含4%胎牛血清的DMEM /F12培养基稀释DNA酶,再次1 000 g离心10 min收集细胞沉淀,接着用含5%成牛血清的PBS重悬浮细胞,并

用该介质1 500 g离心15 s,重复6次,可以除去基质细胞,最终能够得到纯度为90%以上的乳腺上皮细胞。

3结果与分析

乳腺细胞在铺有人工基底物或塑胶基底上生长和繁

殖[ 32 - 33 ] ,因此在培养小鼠乳腺上皮细胞时可使用进口细胞

培养器材。按照乳腺上皮细胞原代培养的一般方法培养出

来的细胞中,除了乳腺上皮细胞外,还含有大量的成纤维细

胞(图1a) ;经胰蛋白酶、胶原酶分段消化,并用5% PBS洗纯

后的细胞贴壁生长后,在镜下可见细胞形态均一,呈岛屿状

或铺路石样生长,且在乳腺上皮细胞岛边缘,几乎无扁平、多

突起呈星状的成纤维样细胞(图1b) 。

对于乳腺细胞生长增殖而言,添加因子具有十分重要的

注: a为混有成纤维细胞的体外培养的多乳腺上皮细胞,图中黑框部分显示混杂生长的扁平、多突起呈星状成纤维细胞; b为经胰蛋白酶、胶原

酶分段消化,并用5%PBS洗纯后的细胞。

Note: a. The mouse mammary ep ithelial cellsmixed with fibroblasts cultured in vitro; b. The cells digested by tryp sin, collagenase and washed by 5% PBS.

图1机械法和酶消化法结合分离组织块离散细胞过程中用含5%血清的PBS洗纯与未经洗纯的比较

Fig. 1Compar ison of wa shing or not wa shing by PBS conta in ing 5% serum in the process of separating tissue cells by usingmechan icalmeth2

od and enzyma tic digestion method

作用,添加因子主要包括激素、细胞因子,许多研究发现,中

药提取成分对乳腺上皮细胞的生长也有显著影响,如秦君

等[ 4 ]发现,王不留行黄酮甙类成分具有促进泌乳的作用,可

通过诱导周期蛋白cyclin D1的表达而促进小鼠乳腺上皮细

胞的增殖。

有些激素对许多细胞生长有促生长作用,如胰岛素,它

能促进细胞对葡萄糖和氨基酸的利用。有些激素对某类细

胞有明显的促进作用,如氢化可的松可促进表皮细胞的生

长,泌乳素有促进乳腺上皮细胞生长的作用等。小鼠乳腺细

胞在仅含血清的培养基中生长速度慢,老化速度相当快(图

2a) ;与之形成鲜明对比,在生长培养液为DMEM /F12,含

10%胎牛血清,添加胰岛素(5μg/ml) 、EGF (5 ng/ml)、氢化

可的松( 1 μg/ml) 、青霉素( 200 IU /ml) 及链霉素( 011

mg/ml)中,小鼠乳腺细胞的生长状况明显改善[ 3 ] (图2b) 。

注: a为没有额外添加激素的培养基中生长的小鼠乳腺上皮细胞; b为添加有激素的培养基中生长的乳腺上皮细胞。

Note: a. The mouse mammary ep ithelial cellswith no hormone in culture medium; b. The mammary ep ithelial cellswith hormone in culture medium.

图2添加激素与未添加激素的小鼠乳腺上皮细胞原代培养4 d时的差异

Fig. 2 D ifferences of mouse mammary epithelial cell primary cultur ing for 4 d with or without hormone

4讨论

(1)获得乳腺上皮细胞的基础是乳腺上皮细胞的原代培

养,任何一种动物细胞的体外培养都是从原代培养做起,因

此选择细胞原代培养的方法十分重要。原代培养步骤一般

包括:从生物体切取预培养的材料,制备成可用于培养的组

织块或细胞,接种到合适的无菌培养液中,在适宜的环境下

进行体外培养等[ 23 ] ,细胞需要完成从体内环境到体外环境

的过渡和适应过程,恢复分裂增殖与生长发育的能力。解离

释放细胞的方法主要有消化法和机械法2类,二者常结合使

用,这样能使细胞得到有效解离。用胶原酶可消化结缔组织

或胶原成分的组织,对蛋白质具有消化功能的胰蛋白酶则适

于消化细胞间质少的软组织。但这种消化液中含有大量能

够影响细胞贴壁生长的细碎颗粒(可能是脂蛋白聚集物)和

DNA纤维等混合物,直接用这种消化物滤过液培养也不易长

3490 安徽农业科学2010年

出大片细胞,而且长出的往往是上皮和成纤维混杂的细胞单

层[ 34 ] ,需要将消化后的混合物用150μm滤网或6层纱布过

滤,再离心清洗细胞。

(2)薛庆善[ 35 ]总结了体外培养细胞的纯化方法包括:差

速粘附处理、细胞悬液过滤法、等密度或密度梯度离心法和

培养过程中的选择性分离。这些方法日渐丰富,应用范围十

分广泛和频繁。Virginia等[ 31 ]用含5% PBS溶液清洗除去杂

质细胞的差速离心方法,是根据腺上皮细胞和基质细胞在该

介质中通过离心力场作用下沉速率的差异来完成细胞的分

离和富集。该离心方法也由多曙光等[ 36 ]应用于牛乳腺上皮

细胞的分离培养中,得到了仅含少量成纤维细胞的纯度高乳

腺上皮细胞。

(3)复合的细胞组成有利于上皮细胞分化状态的维持,

然而混杂的乳腺细胞在传代过程中往往会使上皮的成分损

失,这样便不利于对上皮细胞分化增殖进行研究[ 24 ] 。小鼠

乳腺上皮细胞的体外培养用胰酶进行消化纯化,一方面会丢

失乳腺上皮细胞,另一方面乳腺上皮细胞对胰酶敏感,会造

成乳腺上皮细胞的退化。Freshney (1994)认为,胰蛋白酶对

细胞DNA有一定的损伤,胰酶作用时间过短,细胞纯化效果

较差;作用时间过长,则传代细胞的生长受到影响。

(4)乳腺上皮细胞之间的相互接触,对乳腺上皮细胞极

性的建立和乳汁分泌的方向具有重要作用[ 2 ] 。对采集的组

织糜进行消化时,时间不可过长,消化终结时悬液中的小细

胞团块更容易贴壁生长。另外,McGRA TH等[ 37 ]指出,泌乳

期或怀孕后期动物的乳腺组织脆弱易碎,难以经受住酶的消

化分离作用以及深低温保藏,因此,有些研究者更青睐于采

集妊娠中期但尚未开始泌乳的乳腺组织进行乳腺上皮细胞

的培养。

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原代细胞的培养与建系

原代细胞的培养与建系(一) 细胞的来源多样，培养方法也各不相同，凡是来源于胚胎、组织器官及外周血，经特殊分离方法制备而来的原初培养的细胞称之为原代细胞。原代细胞经分散接种之手段称为传代。凡能经传代方式进行再次培养的细胞称为传代细胞。若能稳定生长传至10~20代以上的细胞可确立为细胞系。若有条件能开展单细胞克隆、纯化，经大量扩增后所形成的生物学特性稳定的克隆化细胞群，称之为细胞株或克隆细胞。此过程称为细胞的纯化或细胞克隆。这些基本技术是从事细胞培养工作的基础，只有熟悉和掌握了基本技术，才可能更快捷地学习和掌握其他方法，本章重点叙述常用的基本技术。第一节原代细胞的取材人和动物细胞的取材是原代细胞培养成功的首要条件，是进行细胞培养的第一步，若取材不当，将会直接影响细胞的体外培养，现将取材的基本要求和注意事项叙述如下：一、取材的基本要求（1）取材要注意新鲜和保鲜新鲜组织易于培养成功，取材时应尽量在4~6h内能制作成细胞，尽快入箱培养，若不能即时培养，应将组织浸泡于培养液内，于4℃存放。若组织块较大，应在清除表面血块、坏死组织、脂肪和结缔组织后，切碎于培养液内4℃存放，但时间不能超过24h.对于已切碎的组织或血液、淋巴组织应加入含10%二甲基亚砜的培养基，按细胞冻存方式于液氮中冷冻保存。（2）取材应严格无菌所取标本材料应在无菌条件下进行，为了确保无菌，对所取材料若疑有污染的可能，应将所取组织在含高浓度抗菌素（400单位/mL）甚至加入适量的两性霉素B或10%达克宁液的培养液内于4℃下存放2小时以上，再用PBS洗2~3次，以确保所取材料无菌。要用无菌包装的器皿或事先消毒好的带少许培养液（内含400单位/mL抗菌素）的小瓶等便于携带的物品来取材，所取材料应避免接触有毒有害的化学物质，如碘、汞等。（3）取材和原代细胞制作时，要用锋利的器械，如手术刀或剃须刀片切碎组织，尽可能减少对细胞的机械损伤。（4）要仔细去除所取材料上的血液（血块）、脂肪、坏死组织及结缔组织，切碎组织时应避免组织干燥，可在含少量培养液的器皿中进行。（5）取材应注意组织类型、分化程度、年龄等，一般来讲，胚胎组织较成熟个体组织容易培养，分化低的较分化高的组织容易生长，肿瘤组织较正常组织容易培养。取材时应尽量选用易培养的组织进行培养。（6）原代细胞取材时要同时留好组织学标本和电镜标本。对组织的来源、部位、包括供体的一般情况要做详细的记录，以备以后查询。二、各类组织的取材技术

原代细胞培养与分离

原代细胞的培养与建系凡是来源于胚胎、组织器官及外周血，经特殊分离方法制备而来的原初培养的细胞称之为原代细胞。细胞的纯化或细胞克隆技术是细胞培养工作的基础。原代细胞的取材人和动物细胞的取材是原代细胞培养成功的首要条件，直接影响细胞的体外培养。一、取材的基本要求 .1．取材要注意新鲜和保鲜 .2．应严格无菌 .3．防止机械损伤 .4．去除无用组织和避免干燥 .5．应注意组织类型、分化程度、年龄等 .6．作好记录二、各类组织的取材技术皮肤和粘膜的取材内脏和实体瘤的取材血液细胞的取材骨髓、羊水、胸/腹水细胞取材动物组织取材人胚体组织取材鸡（鸭）鸟类胚胎组织取材鸡（鸭）鸟类胚胎组织取材皮肤和粘膜的取材主要取自于手术过程中的皮片，方法似外科取断层皮片手术操作，但面积一般2~4平方厘

米。内脏和实体瘤的取材内脏除消化道外基本是无菌的，但取材时要明确和熟悉所需组织的类型和部位，实体瘤取材时要取肿瘤细胞丰富的区域，要避开破溃、坏死液化部分，以防污染，尽量去除混杂的结缔组织。血液细胞的取材血细胞、淋巴细胞的取材，一般多抽取静脉外周血，或从淋巴组织中（如脾、扁桃体、胸腺、淋巴结等）分离细胞，取材时应注意抗凝。骨髓、羊水、胸/腹水细胞取材严格无菌，注意抗凝，还要尽快分离培养，离心后，用无钙、镁PBS洗两次，再用培养液洗一次后即可培养，不宜低温存放。动物组织取材 1、鼠胚组织取材首先用引颈或气管窒息致死法处死孕期合适的动物，然后将其整个浸泡在含有75%酒精的烧杯中，5分钟后（注意时间不能太长，以避免酒精从口或其他通道进入体内，影响组织活力），取出动物，在消毒过的木板上可用无菌的图钉或大头针固定四肢，切开皮肤，用无菌操作法解剖取胚或用无菌止血钳挟起皮肤、用无菌眼科剪沿躯干中部环形剪开皮肤，用止血钳分别挟住两侧皮肤拉向头尾，把动物反包，暴露躯干，然后再固定，更换无菌解剖器材，采用无菌操作法解剖取出胚胎。 2、幼鼠胚肾（或肺）取材幼鼠采用上述方法处死消毒后，腹部朝上固定在木板上，先切开游离毛皮并拉开至两侧：然后采用无菌法打开胸腔取肺，或背部朝上固定在木板上，先将背部毛皮切开游离并拉向两侧，

细胞生物学实验三小鼠脾脏细胞原代培养及观察计数(山东大学)

实验三小鼠脾脏细胞原代培养及观察计数 13生物基地 201300140059 刘洋 2015-04-06 同组者：吕赞洪俊蔡正琦一、实验目的 1.学习掌握细胞培养的基本原理以及具体方法，并对小鼠脾细胞进行原代培养。 2.掌握无菌操作的具体过程及无菌操作台的使用。 3.学习掌握染色法鉴别细胞的生死状态的原理及方法。 4.学习使用血球计数板对细胞总数及活细胞数进行计数。二、实验原理 1.细胞培养细胞培养指的是在无菌条件下，把动植物细胞从组织中取出，在体外模拟体内的生理环境，使离体的细胞在体外生长和繁殖，并且维持其结构和功能的一种培养技术。动物细胞培养可分为原代培养和传代培养。从供体获得组织细胞，在无菌条件下，用胰蛋白酶消化或机械分散等方法，将动物组织分散成单个细胞开始首次培养长出单层细胞的方法称为细胞的原代培养。当培养的动物细胞生长增殖达到一定密度，形成致密的单层细胞时，用胰蛋白酶将细胞消化分散成单细胞，从一个容器中以1：2或其他比例转移到另一个容器中扩大培养的方法，称为细胞的传代培养。传代培养的累计次数就是细胞的培养代数。高等生物是由多细胞构成的整体，在整体条件下要研究单个细胞或某一群细胞在体内的功能活动是十分困难的。但如果把活细胞拿到体外培养、增殖并进行观察和研究，则要方便和简单得多。被培养的动物细胞是非常好的实验对象和实验研究材料，对体外培养的活细胞进行研究可以帮助人类揭开生、老、病、死的规律，探索优生、抗衰老和防治各种疾病的途径和机制，也可以人为地诱导和改变细胞的遗传性状和特性，使其向有利于人类健康长寿的方向发展。因此动物细胞体外培养技术是研究细胞分子机制非常重要的实验手段，被广泛应用于医学、生物技术、基因工程等研究领域。细胞培养的意义:具有其他生物技术无可比拟的优点；培养条件易改变和控制，便于单因子分析；便于人们直接对细胞内结构、细胞生长及发育等过程的观察；在生物学的各个领域(如分子生物学、细胞生物学、遗传学、免疫学、肿瘤学及病毒学等)已被广泛应用。细胞培养的局限性：在脱离机体复杂环境下，细胞培养条件与躯体环境有一定距离；观察到的结果有时难以正确反映机体内的状况；细胞培养得到的产物少。培养细胞的条件有水的质量、无菌环境，最适温度、渗透压、气体条件、最适PH、营养条件和培养基质等。 2.细胞死活鉴定细胞生死状态的鉴别方法主要是化学染色法和荧光染色法。活细胞和死亡细胞在生理机能和性质上主要存以下差异： ①细胞膜通透性的差异：活细胞的细胞膜是一种选择性膜，对细胞起保护和屏障作用，只允许物质选择性地通过；而细胞死后，细胞膜受损，其通透性增加。基于此，发展出了以台盼蓝、伊红、苯胺黑、赤藓红、甲基蓝以及荧光染料碘化丙啶或溴化乙啶等为染料鉴别细胞生死状态的方法，上述染料能使死亡细胞着色，而活细胞不被着色。此外，应用植物质壁分离的性质也可鉴定植物细胞的生死状态。活细胞的原生质具有选择透过性，死细胞因其原生质的选择透过性已遭破坏，故与高渗透压溶液接触

原代小鼠肝细胞制备

细胞培养室肝细胞原代培养标准操作规程实验试剂培养基：William’s E Medium(GiBCO 12551-032), 谷氨酰胺(GiBco 21051-024-100g)292mg/L，双抗（GiBco 15140-122 penicillin +10,000Units/mL, streptomycin +10,000μg /mL）5mL/500mL, 胰岛素(GiBCO 12585-014 4 mg/mL)8μg/mL, 地塞米松（中国药品生物制品检定所）5mg/L。 D-Hanks’液（CaCl2 0.55g/L, NaCl 8.0g/L, KCl 0.4g/L, KH2PO4 0.06g/L, Na2HPO4?7H2O 0.06g/L, NaHCO3 0.35g/L, 三蒸水溶解，NaHCO3调pH 7.2-7.4, 4℃保存） 0.05%胶原酶Ⅳ溶液(（Sigma C5138-1G） D-Hanks’液溶解, 0.22μm微孔滤膜过滤除菌, -20℃ 保存）) PBS预灌流溶液（NaCl 8.0g/L, KCl 0.2g/L, KH2PO40.2g/L, Na2HPO4?7H2O 1.56g/L, EDTA 0.1mM, 三蒸水溶解, NaHCO3调pH 7.2-7.4, 0.22μm微孔滤膜过滤除菌，4℃保存）鼠尾胶原（GiBCO A10483-01 20mL/ 瓶）（0.05 mg/ mL）用0.02M 的醋酸稀释,临用现配） 0.02M 的醋酸：115μL的醋酸(大于99%)用水稀释至100mL 0.05 mg/ mL-200μL鼠尾胶原（5 mg/ mL）用0.02M的醋酸稀释至20 mL Overlay(0.25 mg/ mL的Matrigel（BD 356237）(用William’s E Medium稀释，视具体批号而定稀释倍数，临用现配） Hanks’液（CaCl2 0.14g/L, NaCl 8.0g/L, KCl 0.4g/L, KH2PO4 0.06g/L, MgCl2?6H2O 0.10g/L, MgSO4.7H2O 0.10g/L, Na2HPO4?7H2O 0.09g/L, NaHCO3 0.35g/L, D-葡萄糖 1.0 g/L，三蒸水溶解，NaHCO3调pH 7.2附近，4℃保存）实验仪器 CO2 恒温培养箱（日本SANYO 公司）； Sigma高速离心机； IX-51 型荧光倒置显微镜（日本尼康公司）； DHL-A电脑恒流泵（上海青浦沪西仪器厂）；液相-质谱联用分析系统（LC/MS/MS）由美国Thermo系列四元泵、在线脱气机、自动进样器、以及Thermo Finnigan LTQ线性离子阱质谱检测器，系统工作软件为XcaLibur（美国）； Sigma5310离心机； ZHWY-103B多振幅轨道式恒温培养振荡器（上海智城分析仪器制造有限公司）。实验方法实验准备

原代细胞培养和传代培养的方法及其注意事项

初代培养原理将动物机体的各种组织从机体中取出，经各种酶（常用胰蛋白酶）、螯合剂（常用EDTA）或机械方法处理，分散成单细胞，置合适的培养基中培养，使细胞得以生存、生长和繁殖，这一过程称原代培养。仪器、材料及试剂仪器：培养箱（调整至37℃），培养瓶、青霉素瓶、小玻璃漏斗、平皿、吸管、移液管、纱布、手术器械、血球计数板、离心机、水浴箱（37℃）材料：动物组织块试剂：1640培养基（含20%小牛血清），0.25%胰酶，Hank′s液，碘酒初代消化培养法 1. 准备：取各种已消毒的培养用品置于净化台面，紫外线消毒20分钟。开始工作前先洗手、75%酒精擦拭手至肘部。 2. 布局：点燃酒精灯，安装吸管帽。 3. 处理组织：把组织块置于烧杯中，用Hanks液漂洗2~3次，去除血污；如怀疑组织可能污染，可先置于含有青链霉素的混合液中30~60分钟。 4. 剪切：用眼科剪把组织切成2~3毫米大小的块，以便于消化。加入比组织块总量多30~50倍的胰蛋白酶液，然后一并倒入三角烧瓶中，结扎瓶口或塞以胶塞。 5. 消化：或用恒温水浴，或置于37℃温箱消化均可，消化中每隔20分钟应摇动一次，如用电磁恒温搅拌器消化更好。消化时间依组织块的大小和组织的硬度而定。 6. 分离：在消化过程中见消化液发混浊时，可用吸管吸出少许消化液在镜下观察，如组织已分散成细胞团或单个细胞，立即终止消化，随即通过适宜不锈钢筛，滤掉尚未充分消化开的组织块。低速（500~1000转/分）离心消化液5分钟，吸出上清，加入适量含有血清的培养液。 7. 计数：用计数板计数，如细胞悬液细胞密度过大，再补加培养液调整后，分装入培养瓶中。对大多数细胞来说，pH要求在7.2~7.4范围，培养液呈微红色，如颜色偏黄，说明液体变酸，可用NaHCO3调整。 8. 培养：置于36.5℃温箱培养，如用CO2温箱培养，瓶口需用纱布棉塞或螺旋帽堵塞，纱布塞易生霉菌，每次换液时需要换新塞。初代组织块培养法 1. 剪切：把组织小块置于小烧杯或青霉素小瓶中，用Hanks液漂洗二三次以去掉表面血污，吸静Hanks液，用眼科剪反复剪切1mm3块为止。 2. 摆布：用弯头吸管吸取若干小块，置于培养瓶中，用吸管弯头把组织小块摆布在培养瓶底部，小块相互距离以0.5cm为宜，每一25ml培养瓶底可摆布20~30块。 3. 轻轻翻转培养瓶，另瓶底向上，注意翻瓶时勿另组织小块流动，塞好瓶塞，置36.5℃温箱培养2小时左右（勿超过4小时），使小块微干涸。 4. 培养：从微箱中取出培养瓶，开塞，46度斜持培养瓶，箱瓶底脚部轻轻注入培养液少许，然后缓缓再把培养瓶翻转过来，让培养液慢慢覆盖附于瓶地上的组织小块。置温箱中静止培养。待细胞从组织块游出数量增多后。再补加培养液。

小鼠脾细胞培养实验

山东大学实验报告2011年3月30日姓名张行润系年级 2009级生科4班学号同组者张少华科目细胞生物学实验题目小鼠脾细胞培养实验仪器编号105 一、实验目的了解原代细胞培养的基本方法及操作过程。学习细胞计数、营养液的配制等，初步掌握无菌操作方法。二、实验原理 (一)细胞原代培养原代细胞培养是指直接从动物体内获取的细胞、组织和器官，经体外培养后，直到第一次传代为止。这种培养，首先用无菌操作的方法，从动物体内取出所需的组织（或器官），经消化，分解成单个游离细胞，在人工培养下，使其不断的生长及繁殖。细胞培养是一种操作繁琐而又要求十分严谨的实验技术。要使细胞能在体外长期生长，必须满足两个基本要求：一是供给细胞存活所必须的条件，如适量的水、无机盐、氨基酸、维生素、葡萄糖及其有关的生长因子、氧气、适宜的温度，注意外环境酸碱度与渗透压的调节。二是严格控制无菌条件。 (二)细胞死活鉴定死活细胞的鉴定方法有很多种，常用的有染色法和仪器分析法。染色法是常用的细胞死活鉴定方法，简便，易于操作。不同的死活细胞鉴定方法有各自不同具体的反应机理，但无论采用何种办法，都是利用了死活细胞在生理机能和性质上的差异。染色法分化学染色法和荧光染色法，根据染色机理的不同，染料或使死细胞着色，或使活细胞着色。死活细胞在生理机能和性质上的差异主要包括：死活细胞细胞膜通透性的差异：活细胞的细胞膜是一种选择性膜，对细胞起保护和屏障作用，只允许物质选择性的通过；而细胞死亡之后，细胞膜受损，通透性增加。常用的以台盼蓝鉴别细胞死活的方法就是利用了这一性质。台盼蓝，又称锥蓝，是一种阴离子型染料，不能透过完整的细胞膜。所以经台盼蓝染色后只能使死细胞着色，而活细胞不被着色。甲基蓝有类似的染色机理。植物细胞的质壁分离也可鉴定死活。死活细胞在代谢上的差异：是采用美蓝染料鉴定酵母细胞死活的依据。美蓝是一种无毒染料，氧化型为蓝色，还原型为无色。由于活细胞中新陈代谢的作用，使细胞内具有较强的还原能力，能使美蓝从蓝色的氧化性变为无色的还原型，因此美蓝染色后活的酵母细胞无色；而死细胞或代谢缓慢的老细胞，则因它们的无还原能力或还原能力极弱，使美蓝处于氧化态，从而被染成蓝色或淡蓝色。除此之外，还有一些细胞器的专有染料。如液泡系的专有染料中性红。中性红是一种低毒性染料，可以使活细胞液泡着红色，而细胞质和细胞核不被着色；死细胞的液泡不被着色或浅染，染料弥散于整个细胞中，细胞核和细胞质被染成红色。有时侯为了增加染色效果可以将两种染料结合使用，如甲基蓝-中性红混合染色法。三、实验器材

细胞原代培养细胞生物学实验报告

细胞生物学实验报告细胞原代培养姓名：学号：班级：专业：同组成员：一、实验原理

细胞培养是生物学和医学研究中最常用的手段之一，可分为原代培养和传代培养两种。原代培养是直接从生物体获取组织或器官的一部分进行培养。由于培养的细胞刚刚从活体组织分离出来，故更接近于生物体内的生活状态。这一方法可为研究生物体细胞的生长、代谢、繁殖提供有力的手段。同时也为以后传代培养创造条件。原代培养的方法： 1、组织块法在平皿中用弯头剪把组织尽量剪碎，每个组织块小于1mm3大小。用Hanks 液洗涤2—3次，自然沉淀。用吸管吸去上清液。将组织块贴于培养瓶进行培养。 2、酶消化法将1mm3大小的组织块放入1个三角瓶内加入10—30ml的%的胰蛋白酶。370C磁棒搅拌消化20－30分钟。然后终止消化。用几层无菌纱布过滤。取过滤液，离心800rpm 5—10分钟收集细胞。弃上清，加入带有双抗的培养基，放入培养瓶培养。取材注意事项：取材要注意新鲜和保鲜。取材应严格无菌。取材和原代细胞制作时，要用锋利的器械，如手术刀或剃须刀片切碎组织，尽可能减少对细胞的机械损伤。要仔细去除所取材料上的血液（血块）、脂肪、坏死组织及结缔组织，切碎组织时应避免组织干燥，可在含少量培养液的器皿中进行。取材应注意组织类型、分化程度、年龄等，一般来讲，胚胎组织较成熟个体组织容易培养，分化低的较分化高的组织容易生长，肿瘤组织较正常组织容易培养。二、实验目的 1、理解细胞原代培养原理 2、熟悉细胞原代培养方法与过程 3、了解细胞原代培养的应用 4、独立进行细胞原代培养操作三、实验材料手术小直剪刀、眼科直镊子、眼科弯镊子、玻璃平皿、培养瓶、试管、移液管、巴斯德吸管、废液缸、75%酒精棉球、酒精灯。动物：9-12日龄的鸡胚蛋四、实验步骤

胚胎干细胞体外培养

胚胎干细胞体外培养 (一)胚胎干细胞的来源目前胚胎干细胞的主要来源有：①囊胚的ICM及受精卵发育至桑葚胚之前的早期胚胎细胞；②从胚胎生殖嵴及肠系膜中分离原始生殖细胞PGCs后培养建系的胚胎生殖细胞(embryonic germ cells，EG细胞)，也具有ESCs的特性，可以分化为各种类型的成熟细胞；③体细胞核转移(somatic cell nuclear transplantation，SCNT)至去核卵母细胞后培育出来的全能细胞。其中囊胚的ICM最为常用。 (二)胚胎干细胞的分离 1.分离获取ESCs的时间：以既保证ESCs的全能性又要有足够的细胞数量为原则来确定ESCs分离获取的最佳时间。以ICM为ESCs来源时：小鼠取3～5天囊胚；猪取9～10天囊胚；羊取7～8天囊胚；牛取6～7天桑葚胚或早期囊胚；人取7～10天囊胚。以PGCs取ES细胞时：小鼠取1 2.5天胎儿生殖嵴；大鼠可取10.5天尿囊、中胚层组织块、12.5天背肠系膜或1 3.5～1 4.5天生殖嵴；牛取29～35天胎儿生殖嵴；人取35～63天的生殖嵴。 2.分离获取ESCs的方法：从PGCs分离ESCs的方法常为机械剪切与消化相结合法，即把采取的胚胎组织充分剪碎，采用EDTA、EDTA/胰酶消化。从囊胚分离ICM的方法主要有三种： (1)免疫外科学方法：体外培养的小鼠胚泡去除透明带后，经兔抗JCR小鼠脾脏细胞抗血清(抗H-26)作用30分钟，移至1∶6稀释的新鲜豚鼠血清中作用30分钟，Hank’s液冲洗，此时胚泡的滋养外胚层呈空泡状，用眼科手术刀挑去死了的滋养层细胞，留存ICM 细胞用于培养。这种方法利用囊胚腔对抗体的不通透性，通过抗体、补体结合对细胞的毒性杀伤作用，去除滋养层细胞，保留ICM细胞进行培养。 (2)组织培养法：在小鼠受精2.5天后切除卵巢，给予外源激素，使胚胎继续发育，但延缓着床，4～6天后，由子宫冲取胚泡进行培养。结果滋养层细胞生长并推开饲养层细胞，在培养皿底壁上铺展；而ICM细胞增殖，垂直向上生长，形成卵圆柱状结构，在显微镜下用细玻璃针挑出这种柱状结构，消化传代。Evans和Kaufman采用这种方法第一个建立了小鼠ESCs系。 (3)显微外科学方法：小鼠受精后3～4天，由子宫冲取胚泡，利用显微操作系统直接从胚泡中吸出ICM细胞进行培养。由于免疫外科学方法需要特殊的试剂去除透明带和滋养层，易对内细胞群造成损伤，而显微外科学方法需要专门的仪器设备，且对人员的技术水平要求较高，均难以推广应用。组织培养法将胚泡接种在饲养层上，模拟体内胚泡的着床，更接近自然发育过程，内细胞群增殖旺盛，较易获得胚胎干细胞样集落。 (三)胚胎干细胞的培养和建系 ESCs的分离培养和建系是其得以应用的前提。ESCs建系的原理是：将分离获取的ICM 或PGCs与饲养层共同培养，使之增殖而又保持其未分化状态，这样代代相传从而使ESCs

细胞生物学小鼠细胞培养实验报告

广州大学综合设计性实验报告学院生命科学学院课程细胞生物学实验实验项目细胞培养实验题目小鼠肝细胞的原代培养专业生物技术年级、班别生技142 姓名徐嘉宽学号 1414300030 任课教师陈鲲

细胞培养 ——小鼠细胞的原代培养摘要目的探讨体外分离和培养小鼠肾、脑、心肌细胞的方法。方法采用脱臼法处死新生小鼠，结合酶消化法和组织块法对新生小鼠肾、脑、心肌细胞进行了体外分离、培养。（用眼科剪把新生小鼠心肌细胞组织剪成小于1mm3大小的植块，然后用胰蛋白酶消化5~10min，最后将心肌组织块接种于培养瓶中进行体外培养。脑和肾直接进行组织块培养。）结果比较成功地进行了原代肾、脑、心肌细胞培养，并进行了形态学观察。结论采用该方法能够实现对小鼠心肌、肾、脑细胞的体外原代培养，较好观察到心肌、脑、肾细胞的形态。关键词原代培养小鼠细胞组织块法酶消化法 1前言初步了解动物细胞原代培养的基本方法、原理和基本操作过程，初步掌握无菌操作方法。学习植块培养法、营养液的配置及酸碱度的调节。细胞培养是当前细胞生物学乃至整个生命科学研究与生物工程中最基本的实验技术。当前，细胞培养技术广泛应用于分子生物学、遗传学、免疫学、肿瘤学、细胞工程等领域，已发展成为一种重要的生物技术。了解动物细胞培养的技术的基本操作过程，观察体外培养细胞的生长特征，并对原代培养有一个基本概念。结合酶消化法和组织块法通过无菌操作培养新生小鼠细胞。 2实验原理原代细胞培养是指直接从动物体内获取的细胞、组织或器官，经体外培养后，直到第一次传代为止。这种培养，首先用无菌操作的方法，从动物体内取出所需的组织（或器官），用植块培养法或酶解法，在人工培养下，使其不断地生长及繁殖。细胞培养是一种操作繁琐而又要求十分严谨的实验技术。要是细胞能在体外长期生长，必须满足两个基本要求：一是供给细胞存活所必须的条件，如适量的水、无机盐、氨基酸、维生素、葡萄糖及其有关的生长因子、氧气、适宜的温度，注意外环境酸碱度与渗透压的调节。二是严格控制无菌条件。 3实验用品 3.1器材解剖剪、镊1套；眼科剪7把、眼科镊6把；吸管直、弯头各7支，2 ml刻度吸管5支；吸管胶头：小18个、大6个；细胞培养瓶5个；青霉素瓶及瓶塞：6个（其中一个用于分装胰酶液）；培养皿(用于解剖取材)：大、小各1套。烧杯：5～10ml 2个、100 ml 1个。用于无菌操作：解剖镊1把，广口瓶大、小各1个（装消毒棉球），医用棉花、纱布，有盖白瓷盘1个、消毒盒3个、牛皮纸、棉绳。小培养皿(装盖玻片)1个。

原代细胞培养：原代肝细胞

【嘉美生物】肝是生物转化和蛋白质合成的主要器官，也是药物毒性作用发挥的主要场所。因此许多的体外测试都选用肝细胞来研究药物间的相互作用和其他一些生化过程。嘉美生物用于培养原代细胞的组织采集于各大医院（包括协和医院、301医院、北三医院等），采集根据美国IRB 和HIPAA批准的方案进行。这些原代细胞均来自新鲜组织，并采用公司专利的技术来优化目的细胞生长条件，降低杂细胞（如脂肪细胞、纤维细胞等）的污染。分离的细胞经过短暂培养、传代，然后迅速冻存。这些保持分化状态的细胞可以用于评估体外药物模型系统和调节特定基因的遗传功能。嘉美生物原代肝细胞产品均经过严格的QA/QC检测，可以直接用于药物优化和筛选、基因克隆、表达图谱分析以及各种分子生物学和药物学实验的研究。凭借着先进的技术设备和资深的专业经验，嘉美生物能为您提供高品质的原代细胞产品和特殊的定制服务： 1、各种新鲜原代肝细胞嘉美生物除提供多种人、小鼠、大鼠、猴等新鲜肝细胞产品外，嘉美生物还可以为您提供特定动物、特定组织、特定年龄的新鲜肝细胞定制服务。 2、各种原代细胞提取物嘉美生物除提供的人、小鼠、大鼠、猴等四大类的肝微粒体、肝S9、CYP450酶和其他亚细胞提取物外，嘉美生物还可以为您提供专业的原代细胞提取物定制服务。嘉美生物可以同时提供高质量的原代细胞产品和专业的个性化定制服务，为您的研究提供最新鲜优质的实验材料，提供其他原代细胞相关专业服务（原代肝细胞靶药分析服务、原代细胞靶药优化服务和原代细胞药物筛选等）。嘉美生物能完美整合各类原代细胞类服务，是原代细胞分离，原代细胞提供，原代细胞实验课题服务中的佼佼者。

《细胞实验》02 原代细胞培养和传代培养的方法

原代细胞培养和传代培养的方法原代培养原理将动物机体的各种组织从机体中取出，经各种酶（常用胰蛋白酶）、螯合剂（常用EDTA）或机械方法处理，分散成单细胞，置合适的培养基中培养，使细胞得以生存、生长和繁殖，这一过程称原代培养。仪器、材料及试剂仪器：培养箱（调整至37℃），培养瓶、青霉素瓶、小玻璃漏斗、平皿、吸管、移液管、纱布、手术器械、血球计数板、离心机、水浴箱（37℃）材料：动物组织块试剂：1640培养基（含20%小牛血清），0.25%胰酶，Hank′s液，碘酒初代消化培养法 1. 准备：取各种已消毒的培养用品置于净化台面，紫外线消毒20分钟。开始工作前先洗手、75%酒精擦拭手至肘部。 2. 布局：点燃酒精灯，安装吸管帽。 3. 处理组织：把组织块置于烧杯中，用Hanks液漂洗2~3次，去除血污；如怀疑组织可能污染，可先置于含有青链霉素的混合液中30~60分钟。 4. 剪切：用眼科剪把组织切成2~3毫米大小的块，以便于消化。加入比组织块总量多30~50倍的胰蛋白酶液，然后一并倒入三角烧瓶中，结扎瓶口或塞以胶塞。 5. 消化：或用恒温水浴，或置于37℃温箱消化均可，消化中每隔20分钟应摇动一次，如用电磁恒温搅拌器消化更好。消化时间依组织块的大小和组织的硬度而定。 6. 分离：在消化过程中见消化液发混浊时，可用吸管吸出少许消化液在镜下观察，如组织

已分散成细胞团或单个细胞，立即终止消化，随即通过适宜不锈钢筛，滤掉尚未充分消化开的组织块。低速（500~1000转/分）离心消化液5分钟，吸出上清，加入适量含有血清的培养液。 7. 计数：用计数板计数，如细胞悬液细胞密度过大，再补加培养液调整后，分装入培养瓶中。对大多数细胞来说，pH要求在7.2~7.4范围，培养液呈微红色，如颜色偏黄，说明液体变酸，可用NaHCO3调整。 8. 培养：置于36.5℃温箱培养，如用CO2温箱培养，瓶口需用纱布棉塞或螺旋帽堵塞，纱布塞易生霉菌，每次换液时需要换新塞。初代组织块培养法 1. 剪切：把组织小块置于小烧杯或青霉素小瓶中，用Hanks液漂洗二三次以去掉表面血污，吸静Hanks液，用眼科剪反复剪切1mm3块为止。 2. 摆布：用弯头吸管吸取若干小块，置于培养瓶中，用吸管弯头把组织小块摆布在培养瓶底部，小块相互距离以0.5cm为宜，每一25ml培养瓶底可摆布20~30块。 3. 轻轻翻转培养瓶，另瓶底向上，注意翻瓶时勿另组织小块流动，塞好瓶塞，置36.5℃温箱培养2小时左右（勿超过4小时），使小块微干涸。 4. 培养：从微箱中取出培养瓶，开塞，46度斜持培养瓶，箱瓶底脚部轻轻注入培养液少许，然后缓缓再把培养瓶翻转过来，让培养液慢慢覆盖附于瓶地上的组织小块。置温箱中静止培养。待细胞从组织块游出数量增多后。再补加培养液。传代培养法原理细胞在培养瓶长成致密单层后，已基本上饱和，为使细胞能继续生长，同时也将细胞数量扩大，就必须进行传代（再培养）。传代培养也是一种将细胞种保存下去

原代肝细胞培养

原代肝细胞培养原代肝细胞培养 1．实验材料灌流液：NaCl、KCl、NaH2PO4.2H2O、Na2HPO4.H2O、NaHCO3、HEPES、EDTA、Glucose （国药或阿拉丁）。消化液：Collagenase IV（Yeasen，翊圣生物，产品货号：40510ES60，100 mg ，279￥）、CaCl2。 Percoll：Percoll（GE Healthcare，17-0891-02）我买的是分装的100ml，450￥的17-0891-01-1。麻醉剂：10%水合氯醛。实验器材：200目细胞筛、20ml 注射器、头皮针、手术剪3把、手术镊3把（实验前灭菌），细胞培养皿2个，离心机，实验前备冰盒及水浴锅，鼠板及大头针（实验前酒精及紫外消毒）。 2. 实验前准备 1) 灌流液 Perfusion Solution NaCl KCl NaH2PO4.2H2O Na2HPO4.H2O NaHCO3 HEPES EDTA Glucose 离子）。用前37℃温育。每只老鼠消耗15ml灌流液。 2）消化液 100× CaCl2：560mg CaCl2，加入10 ml PBS/ ddH2O，分装-20℃保存。10× CollagenaseIV：100 mgCollagenaseIV粉末溶于20 mlDMEM（无血清），0.22 uM滤膜过滤除菌，每管1.5ml分装。消化液：13.5 mlDMEM（无血清）加入150 μl100× CaCl2（终浓度5 mM），再加入1.5 ml10× CollagenaseIV（终浓度0.5 mg/ml），于37℃温育。每只老鼠消耗15ml消化液。 3）40%Percoll g/L 8.0 0.4 0.078 0.151 0.35 2.380 0.19 0.9 调节pH 7.2-7.4，配好后过滤除菌。（不能高压灭菌，其中含葡萄糖及HCO3- 16.2 ml 100%percoll原液，加入1.8 ml10×PBS，再加入27ml 1×PBS，得45 ml。（等渗溶液）每只老鼠消耗5-6 ml40%Percoll。

小鼠超数排卵与早期胚胎体外培养效果研究

江丙农业学报2010，22(12)：144～146 A c t a A g r i c uhu r ae J i an gxi 小鼠超数排卵与早期胚胎体外培养效果研究林峰，陈玉霞+，孙克宁，杨婷，田晓军 (河南农业大学牧医工程学院，河南郑州450002) 摘要：为探讨冲胚方法对小鼠超数排卵效果的影响，分别采用子宫切碎法与子宫冲胚法对超排小鼠进行了冲胚。结果表明：子宫冲胚法的平均采卵数和平均获胚数极显著高于子宫切碎法(P<0．01)，而平均可用胚数显著高于子宫切碎法(P< O．05)，两种方法的平均未受精卵数则差异不显著(P>0．05)，说明冲胚方法对小鼠超数排卵效果的影响显著，且子宫冲胚法明显优于子宫切碎法。小鼠早期胚胎发育观察结果表明：超排处理后，在公母鼠合笼后76～79．5h采胚，胚胎大多处于桑椹胚期，而在公母鼠合笼后88～91．5h采胚，胚胎大多处于致密桑椹胚期与囊胚期；采用TC M l99+15％胎牛血清培养液对小鼠胚胎进行体外培养是可行的。关键词：小鼠；超数排卵；早期胚胎；体外培养；冲胚方法中图分类号：Q132．8文献标识码：A文章编号：1001—8581(2010)12—0144—03 St udy on E f f ect of Super ovul a t i on and i n vi t r o C ul t ur e of Ear l y Em br yo i n M ous e LI N Fe n g，C H E N Y u—xi a‘，SU N K e—ni ng，Y A N G Ti ng．T I A N X i ao—j u“ (C ol l ege of A n i m a l H us ba ndr y a nd V et er i nar y M e di ci ne，H enan A矛c ul t ur al U ni ver si t y．Z he ngzhou450002，C hi na) A bs t r act：I n t hi s paper．t he e ffe c t of dif f erent m e t h ods of c o l l ec t i n g e m br yos on t he s uper ovul at i on of m i c e w a s s t udi ed，and t he e m br yos i n t he suoer ovul at ed m i Ce w er e coll ected by usi ng t he ut erus—m i nc i ng m e t ho d a nd ut er us—col l ect i ng m e t hod re s pec t i ve l y．ne r es ult s show e d t ha t t he aver age num ber of eggs and em bryos obt ai ned by t he ut er us—co l l ect i ng m e t ho d w er e,ext r em el y s ignif i ca ntl y hi gher(P<0．01)t han t hos e obt ai ned by t he ut e r us—m i nci ng m e t hod，an d t he aver age nu m ber of us abl e em bryos obt ai ned by t he u t e r r us—coll ect i ng m e t he d w强si gni f i cant l y hi gher(P<0．05)t han t ha t di d by t he ut erus—m i nc i ng m et hod．ne aver age num be r of an-fe r t i l i zed eggs obt ai ned by t hes e t w o m e t h ods w a s no t s ignif i cant ly di f f er e nt(P>O．05)．So t he s uper ovu l at i on e ffe c t of m i c e W a S s i g-nif i e ant lv i nnue nee d by t he m e t ho d of coll ect ing em bryos．T he obs er vat i on r es ult s of ear l y e m br yos de vel opm ent i ndi cat ed t hat m ost of t he em bryos coll ected76—79．5hour s aft er com bi ni ng cages w e r e at m or ul a s t age．w hi l e m os t of t}l e em bryos coll ected88～91．5 hour s a ft e r com bi ni ng cages w e r e a t com pa ct e d m or u l a s t a ge and bla s t o e yst s t ag e．I t W a S f eas i ble t ha t t he em bryos of m i c e w er e cul t i—vat ed i n vi t ro by usi n g t he m i xed s o l ut i o n of T C M l99and15％F C S． K e y w or ds：M ouse；Sup er ov ul at i on；E ar l y em br yo；I n vi t ro cul t ur e；M e t hod of coll ect ing em bryos 雌性哺乳动物一生所产的卵子总数早在其胚胎发育形成卵巢的过程中已被确定，成熟卵子在成年后的发情周期中分别排出，但是单纯依靠动物的自然排卵，一方面所得到的卵母细胞数或胚胎数较少，另一方面又消耗大量的时间和浪费较多的动物．因此为了获取大最的胚胎，多采用超数排卵的方法，即利用外源性促性腺激素诱发多个卵泡同时发育并排出具有正常受精能力的卵子¨。1。该技术大幅度地开发利用了卵巢上的卵母细胞资源，为胚胎工程和转基因动物等相关领域的研究提供了大量的研究素材。小鼠具有个体小、生长快、繁殖力强等特点，是畜牧兽医科学研究领域应用最为广泛的实验动物，研究小鼠超数排卵对动物胚胎工程等研究具有重要意义。近年来，随着遗传工程小鼠的大量开发，人们对小鼠卵母细胞和胚胎的需求量日趋增多，因而完善的超数排卵技术是遗传工程小鼠研究获得成功的重要前提条件。到目前为止，能够获得大量胚胎来源的技术仍为超数排卵。超数排卵反应是一个极其复杂的生理过程。研究资料表明，小鼠超排效果受激素的种类、剂鼍以及动物的生理状态等多种因素影响，这些因素错综复杂，使超数排卵效果很不稳定H—o。为了进一步研究冲胚方法对超数排卵的影响及小鼠冲胚的有效方法，本试验在控制以上因素一致的条件下，采用两种不同的冲胚方法来进行对比，以期为今后的小鼠超数排卵研究提供一定的参考依据，为胚胎生物技术研究提供借鉴。 l材料与方法 1．1试验地点和时间本试验于2009年l O月16日至2010年5月27日在河南农业大学牧医工程学院胚胎生物技术研究室进行。 1．2试验动物 1．2．1试验动物的条件试验用昆明小白鼠购于河南省实验动物中心。雌性小鼠(未经产)为17周龄、体重30 收稿日期：2010一基金项目：河南省重点科技攻关计划项目(82102130005)；河南省蕈大科技攻关计划项目(0422011200)。作者简介：林峰(1972一)。男．山东栖霞人．副教授，博士，主要从事动物胚胎生物技术研究。通讯作者：陈玉霞。

小鼠脾细胞的体外培养及形态观察

小鼠脾细胞的体外培养及形态观察黄殿玲,李核,何文琴,李霞,杨佩,王纯摘要：用组织块法和冷消化法对小鼠脾细胞在含血清培养液中进行原代培养,并对正常细胞形态进行观察。结果表明组织块法和消化法培养可获得比较均一、稳定的细胞群,细胞呈典型的成纤维形态。关键字：脾细胞原代培养形态多细胞生物的细胞可以分离出来，在适宜的培养液以及培养箱中存活，并在一定的时间内，保持其形态、生理、生化特性，经过一定时间还可以观察到一定量的细胞。直接从身故体内分离的细胞，如小鼠的脾细胞，在体外培养的过程中尚未发生细胞分裂、增殖的细胞即为原代培养细胞；原代培养细胞在一定条件下可以继续增殖，在数量上大量扩增，此时的细胞为继代培养细胞。在生物体内或体外，正常的细胞只能分裂一定的次数，然后停止分裂，最终死亡。这一过程称为衰老，此为正常的现象。只有细胞被转化后，细胞可以无限增殖，就称为细胞系/株。细胞培养基要满足细胞的生长需要，包括pH、渗透压、营养和生长因子等，已保证细胞的增殖。细胞培养皿是特殊制造的使细胞可以贴壁。这就要为细胞的培养创造适宜的环境，使细胞更容易存活或生长。细胞培养箱常指二氧化碳培养箱。它可以提供合适的温度和二氧化碳浓度。二氧化碳和培养基中的缓冲系统共同作用，保持细胞培养液的酸碱度。超净台通过将空气进行过滤，为细胞培养的各种操作提供了一个干净的环境，使细胞培养免于细菌和真菌的污染。在细胞原代培养的操作过程中，这个设备是必要的，细胞本来就比较易感染，不易存活，在空气中，以及人体表面存在许多易感染细菌，所以为了提高细胞的存活率，一定要保持操作过程干净，无污染。细胞培养是细胞生物学研究的中心技术。通过细胞培养可以观察研究细胞的某些生理特性，同时在体外进行细胞培养，也打破了以往的细胞只能在生物体内增殖、分裂。其特点包括：大量实验材料；单一、纯粹细胞类型培养基的成分可控，即生长条件可控/全合成、无血清培养基；易于观察；易于操作。 1 材料与方法 1.1 实验材料取出生一周的小鼠，采用颈椎脱臼的方法牺牲小鼠。取一只小鼠置于解剖盘中，抓住小鼠的尾巴，确保小鼠的前爪在解剖盘中，慢慢的安抚使小鼠安静下来；用剪刀或手术钳紧紧的按住小鼠的颈的后部，用力向后拉小鼠的尾巴；切记不要

原代细胞的取材

原代细胞的取材一、取材的基本要求（1）取材要注意新鲜和保鲜新鲜组织易于培养成功，取材时应尽量在4~6h内能制作成细胞，尽快入箱培养，若不能即时培养，应将组织浸泡于培养液内，于4℃存放。若组织块较大，应在清除表面血块、坏死组织、脂肪和结缔组织后，切碎于培养液内4℃存放，但时间不能超过24h。对于已切碎的组织或血液、淋巴组织应加入含10%二甲基亚砜 (DMSO) 的培养基，按细胞冻存方式于液氮中冷冻保存。（2）取材应严格无菌所取标本材料应在无菌条件下进行，为了确保无菌，对所取材料若疑有污染的可能，应将所取组织在含高浓度抗菌素（400单位/mL）甚至加入适量的两性霉素B或10%达克宁液的培养液内于4℃下存放2小时以上，再用PBS洗2~3次，以确保所取材料无菌。要用无菌包装的器皿或事先消毒好的带少许培养液（内含400单位/mL抗菌素）的小瓶等便于携带的物品来取材，所取材料应避免接触有毒有害的化学物质，如碘、汞等。（3）取材和原代细胞制作时，要用锋利的器械，如手术刀或剃须刀片切碎组织，尽可能减少对细胞的机械损伤。（4）要仔细去除所取材料上的血液（血块）、脂肪、坏死组织及结缔组织，切碎组织时应避免组织干燥，可在含少量培养液的器皿中进行。（5）取材应注意组织类型、分化程度、年龄等，一般来讲，胚胎组织较成熟个体组织容易培养，分化低的较分化高的组织容易生长，肿瘤组织较正常组织容易培养。取材时应尽量选用易培养的组织进行培养。（6）原代细胞取材时要同时留好组织学标本和电镜标本。对组织的来源、部位、包括供体的一般情况要做详细的记录，以备以后查询。原代细胞的分离和制作人或动物体内（或胚胎组织）由于多种细胞结合紧密，不利于各个细胞在体外培养中生长繁殖，即使采用1mm3的组织块，也只有少量处于周边的细胞可能生存和生长，若需获取大量细胞，必须将现有的组织块充分散开，使细胞解离出来，常采用的方法如下：一、悬浮细胞的分离方法组织材料若来自血液、羊水、胸水或腹水的悬液材料，最简单的方法是采用1000r/min 的低速离心10分钟，若悬液量大，可适当延长离心时间，但速度不能太高，延时也不能太长，以避免挤压或机械损伤细胞，离心沉淀用无钙、镁PBS洗两次，用培养基洗一次后，调整适当细胞浓度后再分瓶培养，若选用悬液中某些细胞，常采用离心后的细胞分层液，因为，经离心后由于各种细胞的比重不同可在分层液中形成不同层，这样可根据需要收获目的细胞．二、实体组织材料的分离方法（一）机械分散法所取材料若纤维成分很少，如脑组织，部分胚胎组织可采用剪刀剪切、用吸管吹打分散组织细胞或将已充分剪碎分散的组织放在注射器内（用九号针），使细胞通过针头压出，或在不锈钢纱网内用钝物压挤（常用注射器钝端）使细胞从网孔中压挤出。此法分离细胞虽然简便、快速，但对组织机械损伤大，而且细胞分散效果差。此法仅适用于处理纤维成分少的软组织。（二）消化分离法 1、酶消化分离法酶消化分离法常采用胰蛋白酶和胶原酶，其分离方法如下：（１）胰蛋白酶分散技术胰蛋白酶（简称胰酶）是广泛应用的消化剂。胰蛋白酶是一种胰脏制品，对蛋白质有水介作用，主要作用于赖氨酸或精氨酸相连接的肽键，使细胞间质中的蛋白质水介而使细胞分散开．胰蛋白酶对细胞的作用，取决于细胞类型、酶的活力、配制的浓度、消化的温度、无机盐离子、pH以及消化时间的长短等。 ①细胞类型胰蛋白酶适于消化细胞间质较少的软组织,能有效地分离肝、肾、甲状腺、羊膜、胚胎组织、上皮组织等。而对含结缔组织较丰富的组织,如乳腺、滑膜、子宫、纤维肉瘤、肿瘤组织等就无效．