标本前期处理

妇科血样标本的制片前处理

目的：本方法的目的是用于重复制作那些上皮细胞数量不够或极少，而又含有大量血细胞的标本，该法处理后制片应有改善，如效果仍不佳，应视为不满意标本。然后应考虑重新采样。如发现收集的标本颜色为浅红色至深红色即为出血标本，应按照此步骤作溶血处理。

步骤：

1、将采集到的20毫升保存液内的血样细胞转移到50毫升的离心管内，然后用离心机离心沉淀10分钟(2000至2500转/分)。

2、弃上清液，再加入20毫升10%冰醋酸处理液（细胞处理液18ml+冰醋酸2ml），振荡使细胞重悬于溶液中5到10分钟，观察到颜色变浅。

3、离心沉淀10分钟(2000至2500转/分)，弃上清液，再加入20毫升细胞保存液，振荡使细胞重悬于溶液中，转移细胞回标本瓶静置15分钟。

4、常规机器制片和染色。

非妇科标本TCT制片一、细针抽吸标本 (FNA)

二、呼吸道和肠胃的粘液性标本

三、各种体液(包括胸腹水)标本制作

标本洒溢处理流程

xx人民医院检验科标本洒溢处理流程一、标本或感染性废物发生洒溢时，首先根据洒溢位臵判断是否会立即造成工作人员职业暴露，如果洒溢发生在实验室未直接接触医务人员身体的地方，应先设臵洒溢标识，防止其他工作人员接触到或被污染。二、各种区域处理程序 1、工作人员在处理洒溢事件时必须穿工作服或防护服，戴口罩、手套等防护设备。 2、实验室地面，台面，桌面的消毒：发生洒溢后（洒溢量超过10mL）立即用清洁布或吸水纸覆盖受污染的物品表面或区域，然后在上面倒上含500mg/L有效氯消毒液，覆盖30分钟后擦拭清洁污染区域。洒溢量少于10mL时直接向洒溢处倾倒含500mg/L有效氯消毒液，覆盖30分钟后擦拭清洁污染区域，然后将擦拭后的清洁布或吸水纸放于感染性废弃物的容器内。再用清洁的抹布擦洗溢出区域，去除残留的消毒液。用后的抹布臵于含500mg/L有效氯的消毒液内30分钟。 3、实验室内使用材料、试验仪器内外表面有感染性物质洒溢时，一般选择小型喷雾器喷雾消毒，以降低有机材料被损害的程度。 4、衣物被污染后应立即脱下浸泡于含500mg/L有效氯消毒液30分钟后清洗。 5、潜在感染性标本在离心时发生破裂与洒溢时应立即关闭离心机电源，先使离心机仓内气溶胶沉淀30分钟再打开离心机盖处理，处理玻璃碎片时应当使用镊子或镊子夹着棉花来进行，玻璃碎片应臵于利器废物盒处理。离心机腔内发生洒溢的部位均应用500mg/L有效氯消毒液擦拭2-3次，然后用清洁水擦拭干净并干燥，将所有的擦拭物品按感染性废物处理。 7、若标本或感染性液体溅入眼睛或口鼻腔，立即用大量生理盐水反复冲洗。

8、标本洒溢导致工作人员意外吸入或意外接触暴露后应立即处理，并及时报告科主任和院感科，如工作人员在处理操作过程中不慎被锐器损伤，应立即按相关程序紧急处理。襄垣县人民医院医务人员职业暴露应急处置预案医务人员职业暴露，是指医务人员在从事诊疗、护理活动过程中接触有毒、有害物质，或传染病病原体，从而损害健康或危及生命的一类职业暴露。一、局部紧急处理： 1、用肥皂和流动水冲洗被污染的皮肤，用生理盐水冲洗粘膜，至少10分钟。 2、如有伤口应立即从伤口周边由近心端向远心端轻轻挤压，尽可能地挤出伤口部位的血液，禁止局部按压。 3、用75%酒精或 0.5%碘伏等消毒剂消毒伤口，并包扎。二、评估与上报 1.发生暴露30分钟内向本科主任报告，科主任在2小时内上报医院感染管理科。 2.做好登记表的填写及资料保存。 3.确定患者是否具有传染性及职业暴露当事人免疫情况，立即进行检测，检测项目包括HCV、HBV、HIV、梅毒。 4.请感染科专家对患者、操作者的检验结果、发生职业暴露的暴露级别和暴露源的病毒载量水平进行评估，确定下一步预防或治疗方案。 5.若患者HCV、HBV、HIV、梅毒抗原检测阴性或职业暴露当事人HCV、HBV、HIV、梅毒抗体检测阳性无需做特殊处理。

标本处理(核酸纯化)程序

1目的：保证标本处理标准化、规范化，使不规范操作因素对实验结果造成的影响减至最小。 2适用范围：乙型肝炎病毒核酸提取、解尿支原体核酸提取、沙眼衣原体核酸提取、HPV核酸提取、HCV核酸提取、结核杆菌核酸提取、淋球菌核酸提取。 3操作人：李成庭、李丽蒙、高子文李华娇张国华 4标准操作程序 4.1乙型肝炎病毒（DNA血清） 1）双手戴上手套，从冰箱取出标本，将离心管依次编号。 2）取出1.5ml离心管，对应标本编号，置于离心管架上。 3）将移液器调到70卩l，先混匀DNA提取液，再吸取70^1加入到已编号的离心管中。然后吸取30 ^1血清，加入离心管中混匀，注意每吸取一份血清标本应更换一次枪头。处理全部标本，然后将离心管插到金属浴孔内，100C加热10分钟。 4）裂解完成后将离心管取出，然后10000rpm离心5分钟，取上清液 20 ^1加样上机。 5）收拾台面至准备状态。 4.2 CT、UU NGH DNA（分泌物）

1）双手戴上手套，从冰箱取出标本，将化验单和离心管依次编号。 2）双手换上新手套，取出1.5ml灭菌离心管，对应标本编号，置于离心管架上 3）向有棉拭子的离心管中加入2ml 无菌生理盐水，振荡混匀，将混悬液用移液器吸取1.0ml 加入到已编号的离心管中。10000rpm 离心5分钟，弃上清液，留取沉淀加50微升DNA提取液混匀，金属浴100C 加热10 分钟。4）裂解完成后取出离心管，然后lOOOOrpm离心5分钟，取上清液2 口1 加样上机。 5）收拾台面至准备状态。 4.3结核杆菌（DNA痰液、胸腹水等） 1）双手戴上手套，从冰箱取出标本，将化验单和离心管依次编号。 2）双手换上新手套，取出1.5ml 灭菌离心管，对应标本编号，置于离心管架上。 3）用移液器吸取4倍体积4%NaO到痰液容器，液化30分钟，用移液器调吸取1ml加入到已编号的离心管中，然后lOOOOrpm离心5分钟，弃上清，留取沉淀，用无菌生理盐水洗涤两次，沉淀加50ulDNA 提取液，充分震荡混匀。胸腹水、脑脊液直接混匀后，用移液器调吸取1ml加入到已编号的离心管中，然后lOOOOrpm离心5分钟，弃上清，留取沉淀，加5OulDNA提取液，充分震荡混匀。然后将离心管插到金属浴孔内，1OO C加热1O分钟。 4）裂解完成后将离心管取出，然后lOOOOrpm离心5分钟，取上清液 2 口1加样上机。

实验室标本处理的流程

一.实验室接受标本 (1）时间实验室接受标本后应予以准备离心。标本凝集时间要充分；加促凝剂的标本可于血液采集后5min～１5miｎ尽早处理;加抗凝剂的血液标本可以立即离心。 (2）温度冷却(2℃~８℃)标本应保持在这个温度直到准备离心。条件许可时推荐采用温度控制离心机。（3）试管位置实验室接受标本后,仍应保持标本管垂直，管口(管塞)向上放置。 (4)试管封口采血管应一直有试管塞塞紧管口。试管塞移去后，由于血液中二氧化碳丢失,会造成ｐH（增加)、离子钙(减少）、酸性磷酸酶（减少)等变化,尤其pH的增高会影响某些试验结果的准确性;试管的封口还可以减少标本之间的交叉污染及标本的蒸发,防止标本喷溅和逸出。（5)标本拒收规定有下列情况的标本不接受。 ①标本信息不明 ②血量不足 ③使用不正确的标本试管血标本采集试管选择错误会直接影响试验结果的准确性，应该根据不同的试验目的选择不同种类(无添加剂或加不同添加剂）的血标本采集试管。 ④溶血静脉穿刺不顺利或标本收集后处理不当可造成人为的标本溶血；溶血性疾病等可造成病理性溶血。前者所致的体外“中度溶血”时,将导致某些试验结果不准确。 ⑤抗凝不当,标本凝固标本接收时,血常规．血沉.凝血标本等应注意标本是否凝固。 ⑥储存温度不当例如：应冷藏运送到实验室的标本未予冷藏;应冰冻运输的血清或血浆,未予冰冻；应常温及时送检的标本未能及时送检。 ⑦标本采集时间不准确空腹标本.皮质醇或ACＴH应注意采集时间,采集时间不准确对检验结果有严重影响。 ⑧样本外漏,容器破损由于现在一般都采用真空采血管,上述情况很少发生，但仍应注意,避免标本间的污染。二．标本接收记录实验室工作人员接收标本时,应认真核对试管上的检验条形码（核对标本来源及其类型、检验目的等）,对有关情况应做认真记录。三．离心标本准备直到离心后、取出血清或血浆样品前标本管应一直保持封闭。离心时间和相对离心力（RCF)：离心时间为5miｎ～10min，RCＦ（以g来表示）为1000~120０×g。四．温度控制离心离心时产热影响分析物的稳定性，一般条件下应使用温度控制离心机。五．标本离心要及时从标本收集时间算起,应在２h内分离血清／血浆,尽可能缩短从标本采集到分离血清/血浆的时间。六.分离的血清或血浆贮存为保证分析物的稳定性和试验结果的准确性,必须有标本的确切的处理和贮存条件。实验室的室温及血清/血浆的贮存温度，是分析物稳定性的重要参数。（一)已分离的血清/血浆,在２2℃保存不超过8h;如果试验在8h内不能完成,血清/血浆应转入冰箱(2℃～8℃）保存，所有标本应都在48小时能完成。 (二)带分离胶的试管，离心后血清或血浆可以在凝胶屏障上停留一定时间;而应用非凝胶分离

手术室标本管理制度及送检流程

手术室标本管理制度 1、凡在手术室内实施手术时取下的组织、器官或与患者疾病有关的物体、异物等均视为手术标本。 2、无病理价值和保留价值的组织、器官、肢体等均应让家属看后并做好手术标本的登记，然后将其用标本固定液固定，派专人送到殡仪馆烧毁。对无病理检查价值的体内异物、内固定物等，让患者家属看后做好登记并按医疗废弃物处理。 3、洗手护士负责妥善保管术中切下的标本，术后与手术医生核对无误后，由手术医生用标本固定液固定，放入标本存放柜内并做好登记。特殊感染标本应有标记，标识醒目。 4、每日下午由手术室护士将标本登记，病理检查单及标本袋上标签逐一核对无误后由手术室标本送检人员送往病理科，与病理科医生进行核对并签字。 5、手术过程中需要做细菌培养、涂片者应事先开好化验单并记账，标本取下后应立即送检。 6、手术标本需放入带锁的存放柜内，家属看标本时不可带出手术室，严禁有实习生、进修生或其他人代为固定、存放、代送标本，

防止标本遗失。 7、切下的手术标本必须及时用标本固定液固定。固定液不少于标本的5－10倍，必须将标本全部浸泡在液面以下并封口，防止标本风干和腐败现象发生。特大标本应剖开浸泡。

冰冻切片管理制度 1、术中需做冰冻切片及细菌培养的标本，应立即干燥送检。严禁在标本袋内加入福尔马林等液体，如天气炎热，应用塑料袋装好冰块后放在冰冻切片标本周围，防止标本腐败。巡回护士和手术医生、洗手护士三方核对确认后方可送检。 2、巡回护士将标本放入标本袋内，袋外贴上标签，注明病人科室、姓名、性别、年龄、床号、住院号、标本名称、标本数量等，巡回护士携带标本告知家属后，及时交给手术室标本送检人员，双方核查签字后，由送检人员立即（15分钟内）将标本送病理科或细菌培养室，并与病理科医生查对签收。 3、如果是特殊感染病人的冰冻标本，应在标本袋外注明感染标示。 4、病理科应在30分钟内报告结果，手术室原则上不接受病理科电话报告冰冻结果，应以书面反馈或电话传真报告结果。 5、接收报告人员收到报告结果后，及时送往手术间，和巡回护士查对，巡回护士及时将结果告知手术医生。并将纸质结果保存于病历中。

标本洒溢处理流程

襄垣县人民医院检验科标本洒溢处理流程一、标本或感染性废物发生洒溢时，首先根据洒溢位置判断是否会立即造成工作人员职业暴露，如果洒溢发生在实验室未直接接触医务人员身体的地方，应先设置洒溢标识，防止其他工作人员接触到或被污染。二、各种区域处理程序 1、工作人员在处理洒溢事件时必须穿工作服或防护服，戴口罩、手套等防护设备。 2、实验室地面，台面，桌面的消毒：发生洒溢后（洒溢量超过10mL ）立即用清洁布或吸水纸覆盖受污染的物品表面或区域，然后在上面倒上含500mg/L 有效氯消毒液，覆盖30 分钟后擦拭清洁污染区域。洒溢量少于10mL 时直接向洒溢处倾倒含500mg/L 有效氯消毒液，覆盖30 分钟后擦拭清洁污染区域，然后将擦拭后的清洁布或吸水纸放于感染性废弃物的容器内。再用清洁的抹布擦洗溢出区域，去除残留的消毒液。用后的抹布置于含500mg/L 有效氯的消毒液内30 分钟。 3、实验室内使用材料、试验仪器内外表面有感染性物

质洒溢时，一般选择小型喷雾器喷雾消毒，以降低有机材料被损害的程度。 4、衣物被污染后应立即脱下浸泡于含500mg/L 有效氯消毒液30 分钟后清洗。 5、潜在感染性标本在离心时发生破裂与洒溢时应立即关闭离心机电源，先使离心机仓内气溶胶沉淀30 分钟再打开离心机盖处理，处理玻璃碎片时应当使用镊子或镊子夹着棉花来进行，玻璃碎片应置于利器废物盒处理。离心机腔内发生洒溢的部位均应用500mg/L 有效氯消毒液擦拭2-3 次，然后用清洁水擦拭干净并干燥，将所有的擦拭物品按感染性废物处理。 7、若标本或感染性液体溅入眼睛或口鼻腔，立即用大量生理盐水反复冲洗。 8、标本洒溢导致工作人员意外吸入或意外接触暴露后应立即处理，并及时报告科主任和院感科，如工作人员在处理操作过程中不慎被锐器损伤，应立即按相关程序紧急处理。

标本采集应急预案及处理程序

标本采集应急管理制度和应急预案 1、正确标本的采集 1）、血液标本的采集：静脉采血时，除卧床病人，采血时一般取坐位，成人多用肘前静脉，婴幼儿常用颈静脉。使用止血带的时间不应超过一分钟，穿刺成功后应立即松开止血带。禁止在静脉输液管道内采血，从未输液的另一侧或输液部位以下的部位采血。血清(浆)标本的收集各室应根据所检验项目的要求采用相应的标本收集管，并确定采血量。 2）、尿液标本的采集一般由患者或护理人员按医嘱留取。取样时应注意明确标记，避免污染，使用合格的一次性洁净专用尿杯收集尿样。中段尿、导管尿等特殊尿样的采集由医护人员行相关操作留取标本。 3）、粪便标本的采集留取后收集于合格的一次性洁净专用粪杯送检。应取新鲜标本，选取异常成分的粪便，如含有黏液、脓、血等病变成分的标本，外观无异的从表面、深处及粪端多处取材，取3～5 g及时送检。 4）、阴道分泌物标本的采集一般由妇科医师采集。采集阴道分泌物标本前24小时应避免性生活、盆浴。应于各种治疗、检查前采集标本，避免阴道冲洗或上药，被检者在采样前2小时不能排尿。患者取膀胱截石位。用阴道扩张器暴露宫颈，采样前，用棉拭子将宫颈口过多的分泌物轻轻搽拭干净。更换棉拭子，用生理盐水浸润的棉拭子伸到宫颈管内0．5-2cm，稍用力转动两周，以取得分泌物及脱落细胞。 5）、痰标本的采集嘱病人先行清水反复漱口，并指导或辅助病人深咳嗽，从呼吸道深部咳出新鲜痰液于无菌容器送检。一般应采集清晨第一次咳出的痰液，采样时应收集带血丝部分或有干酪样颗粒的部分。痰液极少者可用溶液雾化吸入导痰。痰液收集于一次性洁净专用痰杯内及时送检。 6）、其他标本的采集脑脊液、胸腹水及支气管灌洗液等其他标本由临床医师按相应操作采集。 2、临床不合格标本常见的原因 1）标本溶血主要是因为标本采集量不足，管内剩余真空的存在造成血球破裂；用注射器采血转装于采血管时，未卸下注射器针头(血样在一定压力下，通过狭小的通道受到挤压，血细胞变形或破裂)；在摇匀抗凝剂，抗凝管摇匀方式错误或幅度太大(血样冲击力过大，破坏血球)；使用干粉剂采血管时，不及时摇匀(其溶解接触面不均衡，介面温度过高，出现溶解热和反应热)。 2）标本凝血使用注射器采血时，分装量超过采血管额定量；抗凝管没有摇匀或未及时摇匀、摇匀方式错误；血液粘度高的病人，选择采血针型号过小，采血速度过慢；异常的开塞操作(即水剂的抗凝剂常吸附在丁基胶塞上)，异常开塞后胶塞会带走部分预加的抗凝剂，导致抗凝剂剂量不足；由于患者疾病或自身因素造成血管条件不理想,致使抽血时间过长而导致血液凝固；多项采血时将血常规标本放在最后,导致拔针后针管内的血液返入试管,造成血量过多而凝固；止血带使用时间过长。 3）采血容器不当、采血量过少护士对检验相关业务和一些新开展业务不熟，造成对

实验室标本处理的流程

一．实验室接受标本（1）时间实验室接受标本后应予以准备离心。标本凝集时间要充分；加促凝剂的标本可于血液采集后5min～15min尽早处理；加抗凝剂的血液标本可以立即离心。（2）温度冷却（2℃～８℃）标本应保持在这个温度直到准备离心。条件许可时推荐采用温度控制离心机。（3）试管位置实验室接受标本后，仍应保持标本管垂直，管口（管塞）向上放置。（4）试管封口采血管应一直有试管塞塞紧管口。试管塞移去后，由于血液中二氧化碳丢失，会造成pH（增加）、离子钙（减少）、酸性磷酸酶（减少）等变化，尤其pH的增高会影响某些试验结果的准确性；试管的封口还可以减少标本之间的交叉污染及标本的蒸发，防止标本喷溅和逸出。（5）标本拒收规定有下列情况的标本不接受。 ①标本信息不明 ②血量不足 ③使用不正确的标本试管血标本采集试管选择错误会直接影响试验结果的准确性，应该根据不同的试验目的选择不同种类（无添加剂或加不同添加剂）的血标本采集试管。 ④溶血静脉穿刺不顺利或标本收集后处理不当可造成人为的标本溶血；溶血性疾病等可造成病理性溶血。前者所致的体外“中度溶血”时，将导致某些试验结果不准确。 ⑤抗凝不当,标本凝固标本接收时，血常规.血沉.凝血标本等应注意标本是否凝固。 ⑥储存温度不当例如：应冷藏运送到实验室的标本未予冷藏；应冰冻运输的血清或血浆，未予冰冻；应常温及时送检的标本未能及时送检。 ⑦标本采集时间不准确空腹标本.皮质醇或ACTH应注意采集时间，采集时间不准确对检验结果有严重影响。 ⑧样本外漏,容器破损由于现在一般都采用真空采血管，上述情况很少发生，但仍应注意，避免标本间的污染。二．标本接收记录实验室工作人员接收标本时，应认真核对试管上的检验条形码（核对标本来源及其类型、检验目的等），对有关情况应做认真记录。三．离心标本准备直到离心后、取出血清或血浆样品前标本管应一直保持封闭。离心时间和相对离心力（RCF）：离心时间为5min~10min,RCF（以g来表示）为1000~1200×g。四．温度控制离心离心时产热影响分析物的稳定性，一般条件下应使用温度控制离心机。五．标本离心要及时从标本收集时间算起，应在2h内分离血清/血浆，尽可能缩短从标本采集到分离血清/血浆的时间。六．分离的血清或血浆贮存为保证分析物的稳定性和试验结果的准确性，必须有标本的确切的处理和贮存条件。实验室的室温及血清/血浆的贮存温度，是分析物稳定性的重要参数。（一）已分离的血清/血浆，在22℃保存不超过8h；如果试验在8h内不能完成，血清/血浆应转入冰箱（2℃～８℃）保存，所有标本应都在48小时能完成。

穿刺液标本的处理程序

穿刺液标本的处理程序 1概述穿刺液是指穿刺采集到的除了血液，骨髓和脑脊液外的无菌体液，包括胸腔积液，腹腔积液，心包液，关节液，鞘膜液等，正常穿刺液是无菌的。穿刺液标本中检出病原菌提示该部位有感染，常见病原菌有：革兰阳性菌包括金黄色葡萄糖、链球菌属、酵母样真菌、肠球菌属；革兰阴性菌包括肠杆菌科、铜绿假单胞菌还有结核分枝杆菌等。对病原菌进行分离培养和鉴定及药敏试验，可为临床提供诊疗参考依据。2标本的采集及要求标本不主张加抗凝剂。由于厌氧菌在这些感染中占有较大比例，故除了进行一般细菌培养外，还应进行厌氧菌培养，方法是将穿刺液标本（1-5ml）直接注入厌氧菌培养瓶送检，一般细菌培养也建议注入需氧培养瓶送检。另外如为慢性非卧床腹膜透析有关胡腹膜炎采集标本应至少需50ml，离心取沉淀物进行培养，这样可提高病原菌的检出。具体详见《标本的采集、运输及保存程序》。 3仪器试剂与材料 VITEK2 Compact System微物物鉴定及药敏分析仪、Ⅱ级生物安全柜、显微镜、恒温培养箱、酒精灯、接种环、营养肉汤、血平板、巧克力平板、沙保罗平板。 4标本的接种及培养 4.1接种及培养前处理标本接种前进行验收及LIS系统签收，详见《标本的核收和接种程序》。

所送检的穿刺液标本均视为有潜在生物危害性材料，须按实验室生物安全操作程序处理。所用培养基使用前应放置35℃孵箱内或室温约30min恢复至室温。 4.2一般细菌培养如标本放在无菌管内送检，且为脓性（非脓性标本则最好1500r/min,离心15min,取沉淀接种）则直接将穿刺液分别接种血平板、巧克力平板、营养肉汤，置35℃5%CO2孵箱培养48h，每日观察菌落生长情况。 5 鉴定及药敏试验见相应细菌鉴定及药敏试验程序。 6 结果处理 6.1脓液及创伤标本培养检出细菌（真菌），对于无菌部位的感染灶，分离到细菌（真菌）一般有临床意义，应进行相应的菌种鉴定与药敏试验；内源性感染病灶的分泌物多以多种细菌混合存在，且以革兰阴性杆菌为主，外源性感染如有明显致伤原因如动物咬伤、鱼钩刮伤等，应根据相应的致伤病原菌排除环境污染菌的可能性，病原菌应进行菌种鉴定和药敏试验；报告菌名、菌量及其药敏结果。对于不能进行药敏试验的如奴卡菌则可根据文献推荐首选复方新诺明进行治疗。 6.2 脓液及创伤标本在平板上48h无细菌生长时，报告为“培养48小时无细菌生长”。

手术病理标本处理规定及流程

手术室病理标本管理制度为了规范病理标本管理，避免各类差错事故的发生，保证准确及时发出病理报告，根据我院实际情况特制定以下规定。一、手术中取下的标本（不论组织大小），都必须送做病理检查，不得随意丢弃。二、凡需手术病员，由床位医生术前填写“病理申请单”，于手术当天与病历一起送人手术室。手术中切下的标本由巡回护士放入容器内，按规定标本完全浸入10%中性福尔马林溶液或95％乙醇溶液内，并贴好标码（姓名﹑住院号），送交手术室专职人员登记签收。三、送检的病理标本连同病理申请单由手术室专职人员送到病理科，负责送检标本人员必须带上“病理标本签收簿”，由病理科工作人员核对无误签收后，方能留下标本。四、凡送检冰冻病理标本，手术医师必须按要求填写冰冻病理申请单，并由手术主刀或一助（特殊情况下可由手术室专职人员）将手术标本给病人家属或委托人确认。然后由手术室专职人员将冰冻标本﹑病理申请单一同送到病理科。凡需送冰冻检查，临床医师应提前一天通知病理科。五、病理科收到标本后应及时操作检查。病理报告签发时限：

1、冰冻报告一般在收到标本后半小时左右发出临时冰冻报告。如遇特殊情况应及时通知手术室，三天后发出正式冰冻报告。 2、石蜡切片报告在实际收到标本后五个工作日内发出，如遇特殊情况（需做酶标﹑特染﹑脱钙等）应及时发出临时报告。 3、细胞学检查：穿刺涂片一般在穿刺后一小时发出报告，如有特殊情况需和病人约定发出报告日期，脱落细胞检查在收到标本后二个工作日内发出报告。六、病理标本检查后至少保留一个月。七、凡违反上述规定者，按性质﹑后果，责任到人。

手术室病理标本管理制度流程

实验室标本处理的流程

实验室标本处理的流程-标准化文件发布号：（9456-EUATWK-MWUB-WUNN-INNUL-DDQTY-KII

标本溢洒处理程序

标本溢洒处理程序来自所有病人的血液和体液标本都应被认为是具有传染性。 1. 皮肤及粘膜的处理：在标本处理过程中，手或其它部位的皮肤在接触血液或其它体液后必须立即用水充分清洗。应立即用0.2%过氧乙酸溶液或0.5%的碘伏溶液涂擦，作用1-3分钟后用清水冲洗，必要时进行双消毒。眼睛若被血液或其它体液溅到，立即用大量的生理盐水冲洗。若手套接触到血液或其它体液，应立即更换。 2. 台面、地面等处理：标本或培养物外溢、溅泼或器皿打破、洒落于表面，应隔离现场，用布或纸巾覆盖并吸收溢出物。向纸巾上倾倒含2000mg/L有效氯或0.2%-0.5%过氧乙酸的消毒液，并立即覆盖周围区域。消毒液应浸过污染表面，保持30-60分钟。使用消毒剂时，应从溢出区域的外围开始，向中心进行处理。待消毒液彻底浸泡30分钟后，对污染的物品进行清理。清理后的物品要高压灭菌。如果含有碎玻璃或其他锐器，则要使用撮箕或硬的厚纸板来收集处理过的物品，并将它们置于防漏、防穿透的废弃物处理容器以待处理。对溢出区域再次清洁并消毒(如有必要，重复多次)。用过的拖把在2000mg/L有效氯的消毒液中浸泡60分钟以上，洗净晾干。 3. 如痰标本溢洒，立即用蘸有2000mg/L有效氯或0.5%过氧乙酸溶液的沙布盖上，消毒60分钟，并打开可移动紫外车照射60分钟。 4. 感染性物质外溢在防护服上：立即用喷雾消毒剂进行局部消毒；脱去防护服，轻轻由内向外反脱，将反面朝内卷小，放入黄色生物安全垃圾袋内；更换新的防护服，污染的防护服进行高压灭菌处理。

5. 在空气与液体面摩擦时就可形成气溶胶，在操作时比较剧烈地摇动反应管，开盖时、吸样时及污染进样枪的反复吸样都可形成气溶胶而污染。如怀疑气溶胶污染，应立即封闭污染空间30-60分钟，再进行空气消毒和表面消毒。空气消毒，用紫外线灯照射30-60分钟，或使用空气净化设备。 6. 离心机内溢洒的处理：1）在离心感染性物质时，要使用密封管以及密封的转子或安全桶。每次使用前，检查并确认所有密封圈都在位并状态良好。 2）离心结束后，至少再等候5分钟打开离心机盖。3）如果打开盖子后发现离心机已经被污染，立即小心关上。如果离心期间发生离心管破碎，立即关机，不要打开盖子。切断离心机的电源，至少30 分钟后开始清理工作。 4）穿着适当的个体防护装备，准备好清理工具。必要时，清理人员需要佩戴呼吸保护装置。 5）消毒后小心将转子转移到生物安全柜内，浸泡在适当的非腐蚀性消毒液内，建议浸泡60分钟以上。 6）小心将离心管转移到专用的收集容器中。一定要用镊子夹取破碎物，可以用镊子夹着棉花收集细小的破碎物。 7）通过用适当的消毒剂擦拭和喷雾的方式消毒灭菌离心转子仓室和其它可能被污染的部位，空气晾干。 7. 器材的消毒：凡直接接触或间接接触过临床检验标本的器材均视为具有传染性，应进行消毒处理。已知接触传染性器材应进行针对性消毒处理，按《消毒技术规范》有关要求执行。 8. 废弃标本及其容器的消毒处理：严格按《医疗废物处理条例》 9. 消毒处理完成，视污染情况向上级汇报。

标本溢洒处理流程

标本溢洒处理流程泼洒后处理及一般原则泼洒后处理标本泼洒台面、地面后的处理 1、用吸水纸吸干，防止渗流。 2、可用500-1000mg/l的84消毒液喷洒。静置10-15分钟。（如果漏出量大或存在污染工作人员鞋的可能性时，应穿防水鞋套） 3、静置10-15分钟后及时用清水擦洗，以除去残留的消毒液。存在较多有机物(如血液、分泌物、排泄物)的物品消毒时，应加大消毒药物的使用剂量和/或延长作用时间。泼洒后处理泼洒后手的处理 1、立即用流水冲洗。 2、采用医用消毒凝胶酒精进行手表面消毒。 3、肥皂洗手，按照洗手消毒原则执行。 4、洗手后可用一次纸巾擦拭。 5、最好用烘干机烘干。泼洒后处理血液标本离心过程破碎后的处理 1、标本如在离心机内破损，在开始去污染之前，设备应至少保持关闭状态30 min 以上，使血/体液的液滴沉降，同时杜绝离心过程中由于空气摩擦加热形成的气溶胶外溢。 2、用吸水纸吸干（必须带乳胶手套操作），防止渗流和扩大污染范围（注意玻璃或塑料碎片）。碎玻璃或其他物体，不得直接用手取走或弃置。可用硬纸板或带推板的一次性塑料铲作为“推送工具”和“收集工具”处理该类物体;也可用钳子或镊

子。这些用具应与所处理物一并弃置于适当的耐扎生物危险物容器中。 3、可用500-1000mg/l的84消毒液喷洒，量大时直接用含氯洁消净干粉覆盖，静置10-15分钟左右。 4、泼洒量大时要适当延长含氯消毒液静置时间。再次用吸水纸吸干，然后用清水擦洗，以除去残留的消毒液防止腐蚀离心机内胆。（注意气溶胶污染），由于大部分消毒剂在有高浓度蛋白质(如血液或血清中的)存在时活性较低甚至无效，因而应在去污染之前将大部分漏出的液体吸尽。应用一次性吸附材料(如纸巾、纱布垫或卫生纸巾)吸附漏出物。如果漏出量大，可用粒状吸附材料(如用于吸附腐蚀性漏出物的)吸附漏出液。将颗粒很细的硅胶撒在漏出物上，可立即将液体凝结，然后再用“收集工具”处理移走。含遇湿时可释放抓的化学制剂的粒状吸附材料和硅胶可供使用。这些材料的去污染效果尚不清楚，因而不应依靠其对漏出物进行去污染。在吸附完液体后。所有被污染的材料应弃置于生物危险废物容器中。性材料洒溢处理的一般原则 1、戴手套和穿防护服 2、用干布或吸湿纸巾覆盖 3、倾倒消毒剂 4、消毒，由外向中心，适当时间后处理 5、再次消毒、清水擦洗 6、污染材料放置在废弃物处理容器中，并通知有关部门收纳。

检测标本处理程序

检验科发热门诊隔离病房检测标本处理程序及实验室环境保护新型冠状病毒属于B属的冠状病毒，病毒对紫外线和热敏感，56℃30分钟、乙醚、75%乙醇、含氯消毒剂、过氧乙酸和氯仿等脂溶剂均可有效灭活病毒。主要传播途径为经呼吸道飞沫和接触传播，气溶胶和粪口等传播途径，尚待明确，人群普遍易感。目的：规范实验室流程管理，做好标本的接收处理检验等工作。使用范围：适用于全科工作人员步骤： 1.标本接收标本接收人员：工作服隔离衣、医用帽、外科口罩或N95口罩、塑胶手套。接收时，确认转运者标识，确认转运箱特殊标识。如果没有标识，拒收标本。确认装箱前有消毒环节。如果确定没有消毒、不确定是否消毒、怀疑消毒不到位时，可于开箱瞬间，75%乙醇喷雾消毒。 2.标本分拣、离心、送抵（1）接收、分拣、离心疑似或确诊患者标本时，操作者须二级生物安全防护。特殊情况时，升级为三级生物安全防护。（2）标本放至生物安全柜中，打开抽风，从密封袋取出标本后，须紫外消毒15分钟，或75%乙醇喷雾消毒。（3）标本离心时，操作者不能离开实验室。如果疑似意外，比如离心过程有异常声响，则停止离心。改为三级生物安全防护后，停止离心30min 以上，小心开盖，75%乙醇喷雾消毒后进行处理。尽可能在生物安全柜中将离心管放入和取出转子。（4）标本离心无意外，离心停止10min以上，开盖喷雾消毒，尽可能在生物安全柜中开盖。按检测项目和分工将标本送抵相应实验区操作台。 3.标本检验（1）如果操作过程不必打开采血管的帽（血常规等），则二级生物安全防护。（2）如果操作过程须打开试管塞（生化、免疫、PT4、金标CRP等），或可能产生气溶胶，或可能接触标本本身，则三级生物安全防护。标本开盖时轻柔缓慢，和操作者面部保持距离。尽可能缩短打开的持续时间。尽可能避免产生气溶胶。如果可以，喷雾消毒，操作尽可能在生物安全柜内进行。打开试管塞后，盖子消毒、弃去。（3）呼吸道分泌物（咽拭子，鼻拭子等）操作，须三级生物安全防护、生物安全柜操作。可以对标本先行消毒，56℃孵育30min以上，标准流程检验。