人骨髓间充质干细胞分化潜能的探讨

人骨髓间充质干细胞分化潜能的探讨
人骨髓间充质干细胞分化潜能的探讨

第二军医大学

博士学位论文

人骨髓间充质干细胞分化潜能的探讨

姓名:陶欣荣

申请学位级别:博士

专业:细胞生物学

指导教师:胡以平

20050501

入骨髓l司充质千细胞分化潜能的探讨

独创性声明

本人声明所呈交的学位论文是我个人在导师指导下进行的研究工作。除了文中特别加以标注和致谢的地方外,论文中不包含其他人已经发表或撰一过的研究成果。与我一同工作的同志对本研究所做的任何贡献均已在论:

作了明确的说明并表示谢意。本人承担本声明的法律责任。

学位论文作者签名:陶f17天尔签字日期:j一。r年岁月2)日

学位论文使用授权书声明

本人完全了解第二军医大学有关保留、使用学位论文的规定,有权保留并向国家有关部门或机构送交论文的复印件和磁盘,允许论文被查阅和借阅。本人授权第二军医大学可以将学位论文的全部或部分内容编入有关数据库进行检索,可以采用影印、缩印或扫描等复制手段保存,汇编学位论文。(保密的学位论文在解密后适用本授权书)

学位论文作者签名:确ff天承导师签名:磊橱∽亿豸。

签字日期:如。r年r月)弓日签字日期:蛊佃缉f月乒2日’

英文缩写MSCs

HSCs

CFU—FsFACS

BP

EGFP

c-met

SDF一1Q0ct一4

PPARV

OSM

HGF

FGF.4

CK

ALB

心飞

MAP2

Tau

GFAP

NF.M

NSE

B.TubⅡIFBS

PBS

DMSO

BME

缩略词表

英文名称

mesenchymalstemcells

hematopoieticStemCells

ColonyFormingUnit-fibroblasts

FluorescentActivatedCellSorting

basepairs

EnhancedGreenFluorescentProtein

HepatocyteGrowthFactorReceptor

StromaICell—DerivedFactor-1a

octamer-bindingprotein4

PeroxisomeProliferators-ActivatedReceptor

OncostaⅡnM

HepatocyteGrowthFactor

FibroblastGrowthFactor-4

Cytokeratin

AIbumin

a1-anUtrypsin

Microtubule-associatedprotein2

microtublinassociatedproteinTau

glialacidicfibdllaryprotein

neumfilament-M

neuron?spec珩cenolase

B-tublinⅢ

FetalBovineSerum

Phosphate-BufferedSaline

DimethylSulfoxide

B—mercaptoethanol

中文名称

阃充质干细胞

造血于细胞

集落形成成纤维细胞

流式细胞仪

碱基对

绿色荧光蛋白

肝细胞生长因子受体

基质细胞衍生因子1a

八聚物结合蛋84

过氧化物酶体增殖物激活受体

制瘤素M

肝细胞生长因子

成纤维生长因子4

细胞角蛋白

白蛋白

a卜抗胰餐自酶

微管相关蛋82

微管相关蛋EtTau

胶原纤维酸性蛋白

神经丝蛋白

神经元特异性烯醇化酶

B一微管蛋白Ⅲ

胎牛血清

磷酸盐缓冲液

二甲亚砜

p一巯基乙醇

BHA

BCIP,

NBT

CCl4

RT.PCR

H&E

SClD

SPFbutylatedhydroxyanisole

5-Bromo-4-?Chloro-?3??IndolylphosphateI

Nitrobluetetrazoliumsalt

Carbontetrachloride

Reversetranscriptionpolymerasechain

reaction

Hematoxylinandeosin

Severecombinedimmunodeficiency

SpecificPathogenFree

叔丁基对羟基茴香醚

5.溴一4一氯.3一吲哚磷酸,

氮蓝四唑盐

四氯化碳

逆转录聚合酶链反应

苏木精和曙红

重度联合免疫缺陷

无特殊病原体

陶欣茉博上论文人骨髓问充质干细胞分化游能的探讨

中文摘要

人骨髓间充质干细胞(humanmesenchymalstemcells,hMSCs)是骨髓中的一类与造血干细胞(hematopoieticstemcells,HSCs)不同的,具有向骨、软骨、脂肪、肌肉等多种组织细胞分化能力的成体干细胞,它在体外可以大量增殖,并具有克隆形成的能力。它就是人们很早就知道的骨髓基质细胞(bonemarrowstromalcells,BMSCs)。由于其具有多向分化的潜能,在体外又较容易培养扩增,加之具有潜在的细胞治疗价值,故引起了生物学界和医学界的关注。

然而,相对于HSCs来说,人们对MSCs生物学特性的认识要滞后得多,就连其表型特征和分化潜能的认识也尚不一致。造成这种情况的主要原因可能有:1)个体发育的不同阶段,MSCs的表型和功能有差异;2)骨髓中存在不同分化等级的MSCs;3)骨髓中不同空间位置的MSCs存在差异:4)不同实验室分离MSCs的方法不同,分离后体外培养的条件也不一样,以致所获得的MSCs也不同;5)用于研究MSCs分化潜能的体外诱导和体内移植的体系不一致。因此,MSCs迄今尚无公认的、高度特异性的分子标记,也没有较为标准的分离和培养方法。FriedensteAJ(1970)和GronthosS(2003)等人的研究发现体外培养的单个骨髓基质细胞贴壁生长后可以形成克隆,称为集落形成成纤维样细胞(clonogenicprecursors,或colony-formingfibroblasticunits,CFU-F),一般所说的骨髓问充质干细胞很可能就是其中的某种或某些类型的细胞群体。

基于这样一个研究背景,本课题试图直接从人骨髓中分离较为原始的骨髓间充质千细胞,以期对MSCs的基本生物学特性能够有一个比较全面的认识。本文的目的在于:’)建立克隆化的人骨髓间充质干细胞系,并建立适合其生长和增殖的体外培养条件;2)鉴定它的基本生物学特性;3)研究其向外胚层神经细胞和内胚层肝脏细胞分化的潜能。

本实验以年龄为17y-65y的正常人骨髓为材料,利用hMSCs贴壁生长和具集落形成能力的特点,得到了多个克隆化的细胞系。对其中的一个可稳定传代的细胞系(hMSCs-2002-3)的基本生物学特性进行了系统的研究,探讨了骨髓hMSCs在体内和体外的分化潜能,以及其在损伤肝和神经系统中的植入和分化命运。所获得的主要结果如下:

(1)hMSCs-2002-3具有问充质干细胞基本的生物学特性。选取骨髓细胞原代培养物

陶欣荣博士论文人骨髓问克质千细胞分化潜能的椿讨

中贴壁生长的,具集落形成能力的成纤维样细胞,挑取来源于单个细胞的最早出现和较大的细胞集落,并进行逐步扩大培养,得到了多个克隆化的细胞系。对其中的一个可稳定传代的细胞系(hMSCs一2002—3)的生物学特性进行了系统的研究。相差显微镜下该细胞系中的细胞为均一的小梭形细胞、细胞核较大、核仁明显,有1—2个核仁,胰酶消化后细胞直径为10一15“m,大丽扇的细胞很少。在适合其生长和增殖的体外培养条{牛(DMEM—LG培养液中添加10%经过筛选的胎牛血清、低密度种植,细胞生长至70~80%汇合时传代)下,该细胞系中的细胞在体外扩增至60PD时仍保持良好的生长状态,细胞生长汇合达100%时为旋涡状或平行排列。取第8代的纫胞,绘制缨胞的生长蓝线,计算出缨胞倍增时间为29.5±2.3h。经液氮冻存18月后复苏,该细胞仍保持良好的生长状态,为均~的小梭形细胞。

液氮冻存1年后复苏的细胞,克隆形成实验结果显示该细胞仍具有很高的克隆形成能力。

染色体记数分析结果显示,细胞中的染色体数目为46条。流式细胞术捡测DNA含量,结果显示该细胞为正常的二倍体细胞。将2×107个细胞植入到SCID4,鼠腹股沟皮下组织,观察3个月,未检查到肿瘤发生。

本实验对该细胞在体外向成骨细胞、软骨细胞、脂肪细胞的分化潜能分别进行了鉴定。在成骨诱导培养液(含10彳mol/L地塞米松,O.2mmol/L维生素C,10mmol/LB?甘油磷酸,10%FBS,DMEM—LG)的诱导分化条件下,细胞诱导5天时就可以检测到向成骨细胞分化早期的特征性酶:碱性磷酸酶的表达;诱导10天时免疫细胞化学染色分析I型胶原为阳性;诱导14天时细胞化学方法染色(茜素红.S染色)显示细胞外基质中有钙化点;而未分化的细胞均束检测到。诱导7天时RT-PCR就可以检测到与成骨细胞外基质中羟磷灰石沉积相关的骨桥蛋白(osteopontin)基因的表达,诱导14天时osteopontin基因呈强表达,而未分化的hMSCs则不表达。以上结果表明,该细胞在体外适当的条件下可以分化为成骨细胞。在脂肪细胞诱导培养液(含1umol/L地塞米松,0.5mmol/L3一异丁基.1.甲基黄嘌岭,0.2mmol/L碍l哚美辛,10ug/ml胰岛素,IO%FBS,DMEM-HG)和脂肪细胞维持培养液(含10ug/ml胰岛素,10%FBS,DMEM.HG)的诱导分化条件下,10天时就可以在相差显微镜下观察到胞质中有发亮的脂滴,随着诱导时间的延长,细胞中的脂滴变大、增多,脂肪样的细胞也逐渐增加。向脂肪细胞诱导8天时,RT-PCR就可以检测到调控向脂肪细胞分化的关键转录因子过氧化物酶增殖激活受体(PPARy2)的表达,诱导21天时PPARy2基因呈强表达,而未分化I构hMSCs则不表达。诱导21天时的细胞用脂肪特异性结合的染料油红一O染色,结果大部分细胞的胞质中的脂滴都被染为红色。以上结果表明,该细胞在

体还可以向脂肪细胞分化。在无血清软骨诱导培养液(10ng/mlTGF。131,ITS其中含5u

g/ml胰岛素、5ug/m1人转铁蛋白、5ng/ml亚硒酸钠,O.111mol/L地塞米松:1mmol/L丙酮酸钠;DMEM—HG培养液)的诱导条件下,细胞团在三维的培养体系中体积增大,第3天时体积最大,接下来体积无明显变化;而未诱导的细胞团第2天缩小。碱性甲苯胺蓝细胞化学染色结果显示诱导分化的细胞团细胞外基质中有氨基多糖;免疫细胞化学染色分析II型胶原为阳性;而未分化的hMSCs均未检测到。诱导7天时RT-PCR就可以检测到细胞外基质中软骨特异性的聚集蛋白聚糖(aggrecan)基因的表达,诱导21天时aggrecan基因呈强表达,而未分化的hMSCs贝JJ不表达。以上结果表明,细胞在体还可以向软骨细胞分化。这些结果有力地证明了,hMSCs一2002—3体外可以分化为3种不同的中胚层细胞(成骨、软骨、脂肪细胞),克隆化的hMSCs一2002-3细胞系无致瘤性,是正常的可稳定传代的问充质干细胞系。

(2)hMSCs.2002-3不表达造血干细胞的分子标记,表达基质细胞的分子标记。流式细胞术检测体外扩增40PD的细胞,结果显示细胞不表达CD34、CD45、CDl4、HI_A-DR,但表达CD44、CD29、CD90、HLA.1。RT-PCR检测结果显示细胞表达OCT-4、SDF一1u、CD49a、CKl9、c-met基因。以上结果表明,该细胞不表达造血干细胞的分子标记(CD34、CD45),也不表达II类组织相容性抗原;表达基质细胞一些分子标记(CD44、CD29、CD90、CD49a、SDF.1a),还表达多能性干细胞的标记OCT-4。

(3)hMScs.2002.3在向脂肪细胞分化过程中蛋白质表达谱有明显的变化。抽取诱导前和向脂肪细胞诱导分化后的细胞总蛋白,二维电泳(2DSDS-PAGE)的方法分析脂肪细胞诱导前、后蛋白的表达,结果显示未分化hMSCs细胞与向脂肪细胞分化后的细胞,两者蛋白质表达谱有明显的差异。由于用于分析的蛋白质量有限,接下来的MALDI.TOF分析,只鉴定了actin和tublin。结果显示向脂肪细胞诱导分化后actin和tublin的表达明显减少。该结果表明,可以通过分析hMSCs诱导分化前后蛋白质表达谱的改变,鉴定间充质于细胞特异性的蛋白质。另外,蛋白质表达谱分析的方法可以用于hMSCs细胞分化机制的研究。

(4)hMSCs?2002-3在适当的体外诱导条件下可以分化为外胚层神经样的细胞和内胚层肝细胞样的细胞。体外向神经细胞的诱导条件为:DMEM.HG培养液中添加20%FBS,5mM0-巯基乙醇或2%DMSO/0.2mM叔丁基对羟基茴香醚或DMEM.HG/2%DMSO

/0.2mMBHA/25mMKCI/2mMvalproicacid/10p-Mforskolin/1pM

hydrocortisone/5pg/mlinsulin。诱导5h后细胞的形态发生明显改变,有些细胞的细胞质收缩,细胞体向外伸出双

极或多极的长突起。28小时后多数细胞形态上有改变,细胞伸出长长的多极分支的突起,有的细胞还可以看到生长锥和丝突样的结构。免疫细胞化学分析结果显示诱导后的细胞表达神经元细胞特异的NSE、NF-M、Tau。但细胞在体外的存活时间只有3.5天,最长存活7d,然后死亡。体外向肝细胞的诱导条件为:IMDM/F12培养液中添加2%FBS,10ng/mlFGF-4,10ng/mlEGF,20nglmlHGF。20ng/mlOSM。1Ilmol/L地塞米松等因子。细胞形态出现改变,由原来的梭形变为多角形,出现小的连成片的细胞群,有些细胞为双核。PAS糖原检测实验为阳性。免疫组织化学分析结果显示诱导后的一些细胞表达自蛋白,CI{.抗胰蛋白酶,还有些细胞表达CKl9、CKl8。以上结果表明,hMSCs在体外合适的诱导条件下,可以分化为神经样细胞和肝细胞样的细胞。

(5)hMSCs.2002.3移植到新生小鼠的脑中后,可以分化为神经细胞。标记有eGFP的hMSCs,以前囟门为标记植入到新生3天C57BU6J小鼠的侧脑里。植入0d、9d、14d取脑,4%多聚甲醛固定后冰冻切片。荧光显微镜下检测植入0天时的脑冠状切片,发现大部分的细胞可以植入到注射部位下的单侧脑室中;检测植入9天、14天时的脑冠状切片,结果显示有些植入的细胞从注射部位还向脑组织的其它部位(注射部位的同侧和对侧)发生了不同距离的迁移。在侧脑室,皮层下纹状体,海马。皮层等部位均有分布。激光共聚焦显微镜下的照片显示,虽然大部分的轴突和树突被切断了,但是仍可以看到植入的细胞变为神经元样的细胞形态,胞体变为多角形,细胞伸出多极的树突样结构,还可以看到有些细胞发出的轴突样结构。运用绿色荧光蛋白与间接免疫荧光双重标记的方法来检测脑组织中植入的hMSCs分化情况,激光共聚焦显微镜下共定位双重标记的植入细胞,结果显示移植的细胞大部分表达神经元细胞特异的13-Tub¨nⅢ、MAP2、Tau标记蛋白,少部分细胞表达神经胶质细胞特异的GFAP。hMSCs在新生小鼠脑内可以存活2周(冰冻切片只检测到植入细胞2周时)且状态非常好,能参与到神经系统正在发育的小鼠脑组织里。移植细胞的小鼠可以一直存活,没有观察到饮食和行为异常的现象(实验只观察到植入细胞6个月时)。以上结果表明,hMSCs植入后受到脑组织特定的微环境影响,在体内可以分化为神经元细胞和神经胶质细胞。

(6)hMSCs-2002-3移植到0C14损伤的SOlD小鼠肝脏中,可以分化为肝细胞。另一方面,标记有eGFP的hMSCs经脾植入到CCl4急性损伤的SCID小鼠肝脏中。移植后2W。5w。8w取肝脏组织,4%多聚甲醛固定后冰冻切片,荧光显微镜下放大40倍观察植入hMSCs的SCID4、鼠肝脏的冰冻切片,发现肝组织中有散在分布的绿色荧光标记的细胞簇,进一步用

陶欣荣博士论文人骨髓问充质干细胞分化潜能的探讨

激光共聚焦显微镜观察发现,可以清晰地看到细胞形态已经发生明显的变化,细胞变为肝细胞样,有些细胞为双核。在中央静脉四周和门管区都发现有绿色荧光标记的细胞簇,每簇中有1~8个绿色荧光标记的细胞。按观察到的每个绿色细胞簇含有的细胞个数,来显示增殖细胞所占有的比例。统计结果表明,植入2w时2个细胞以上为一簇的占多数(79.4%)。由此可见,植入2w对大部分存活的植入细胞在SCID:J,鼠肝脏中已经增殖。hM¥Cs可以在SCID:J、鼠肝脏中植入并长期存活达8周(冰冻切片检测到8周)。同样运用绿色荧光蛋白与间接免疫荧光双重标记的方法来检测肝组织中植入的hMSCs分化情况,激光共聚焦显微镜下共定位双重标记的植入细胞,结果显示外源移植的hMSCs细胞,在COl4损伤SCID:b鼠肝内,还表达白蛋白和Q1-抗胰蛋白酶(均为肝脏实质细胞的分子标志)。Masson三色法(对胶原纤维染色)和H&E染色结果显示,CCl4损伤2w时,SCID:J、鼠肝组织中央静脉周围的肝细胞有轻微的坏死、炎细胞增生和轻微的胶原纤维增生。损伤5w和8w时,SCID小鼠肝细胞大面积坏死、纤维增生明显。由此推测,应用于本实验的SCID:J、鼠肝脏损伤模型,其体内的环境还是较适合外源细胞的植入和增殖,但外源植入细胞的治疗作用,可能还需更长时间的观察和进一步研究结果的证实。以上结果有力地证明了,hMSCs在损伤的肝脏中不仅可以长期存活、增殖,而且能分化为成熟的肝细胞。

综合以上结果,本项研究首次利用间充质千细胞贴壁生长、具集落形成能力的特点,用改进了的真接法建立了克隆化的人骨髓间充质干细胞系,该细胞系中的细胞在体外合适的条件下长期传代、稳定增殖并保持未分化状态。体内、外分化潜能的实验结果首次证明了,克隆化的CFU—F中的人骨髓间充质千细胞在不同的体内特定微环境里,分化的去向有明显的差异,其可以分化为神经细胞和肝细胞。由于其在体外长期培养、扩增后仍具有多向分化的潜能,因此显示了hMSCs成为肝功能衰竭、肝脏代谢性疾病和神经系统疾病细胞治疗的种子细胞的可能性。本研究结果为人骨髓间充质千细胞的分离培养及在体外维持未分化状态的条件提供了有价值的实验依据,本研究结果还为hMSCs参与损伤肝重建与修复治疗的研究奠定了基础。

关键词:问充质干细胞:人骨髓;CFU-F;细胞系;克隆;细胞分化;细胞移植

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ABSTRACT

Humanmesenchymalstemcells(hMSCs)arenon—hematopoieticprogenitorcells,

tissuesincludingfattcapableofdifferentiatingintomaturecellsofmultiplemesenchymal

bone.cartilage,muscle.ThehMSCsisolatedfrombonemarrowarealsocalledmarrow

stromalcells.Inrecentyears。themuRipledifferentiationpotentialsofhMSCscoupled

withtheeaseofinvitroculturinghasspurredconsiderableinterestsinbetterunderstandingthebiologyofhMSCsandtheirpotentialtherapeuticapplications.Despitetheseincreasinginterests,comparedwithhematopoieticstemcells(HSCs)ourunderstandingofhMSCsbiologyremainsrudimentary.Infact,hMSCsmaintainedindifibrentlaboratoriesorMSCsjsolatedfromdifierentspeciesarevariousjntheircharacteristics.Therearemanyfactorsconfoundingtheunderstandingofthecharacteristicsof,hMSCsandtheirdifferentiationpotentials.Fi噶t.dudngtheindividualdevelopment,hMSCshavedifferentphenotypesandfunctions.Second,therearesubpopulationsofMSCsinbonemarrow,diffedngbythestageoftheirdifferentiation.Third,MSCsatdifierentsitesinthebonemarrowmaybedifferent.Fourth。differentisolatingmethodsandcultureconditionsmayaffectthecharacteristicsoftheMSCsmaintained.Finally。theinductionparadigmusedinvitroandinv/VOmayaffecttheirdifferentiationpotentials.1-odate.thereisnospecificmarkerorcombinationofmarketstoidentifyhMSCseitherinvivoorinvitro,andthereisnostandardizedproceduretoisolatehMSCs.FriedensteAJ。1970andGronthosS.2003observedthatsingle-bonemarrowstromaIcelladherenttoplasticculturedishcanformcolonyofcellsmorphologicallyresemblingfibroblastsinvitro.calledclonogenicprogenitorcellsorcolony-formingfibroblasticunits(CFU-F).Theyfurtherdemonstratedthattheinvitrogrowthofdifferentadherentcoloniesareheterogeneousandonlycellsfiomsomecoloniesmaybemulti—potentialhMSCs.However,likealltheotherCurrentisolationprocedure-thismethodofisolationyieldsaheterogeneouscellpopulation.Theseplasticadherentcellsexhibitwidelyvaryinggrowthkinetics.cellmarkersanddifferentiationcapabilities.

陶欣荣博上论文人骨髓间充质{二细胞分化潜能的探讨linesfromtheseCFU—F,anduncoveringcultureconditionstokeephMSCsatundifferentiationstate。WethenwenttocharacterizethesehMSCscel|Iinesandidentifyclonesforfurtherinvestigation,Finally,weevaluatedthemultipotentialdifferentiationcapabilityofthishMSCsintohepaticandneurallineageinvivoandinvitro.hMSCswereisolatedfromhealthyhumanbonemarrowbyfirsttakingadvantageoftheirpreferentialadherencetotheplasticsurfaceoftheculturedish.Then,individualclonesofclonogeniccellswhicharerapidlyadherentandlargerinsizewerepickedwithsterilepipettetipsundermicroscope.ClonalcellIineswereestablisheda舱rexpansioninvitro.Thesecelllinesweresystematicallycharacterizedandtheirdifferentiationcapabilitieswereevaluated.OnecelIIinethathastheclassicalcharacteristicsofhMSCsandWasabletodifferentiateintoheptocyte-likecellsandneuron—likecellsinvitrowasfurtheranalyzedbyevaluatingtheirfatesininjuredliveranddevelopmentalbrain.Themainresultsareasfoflowed:

(1)SomeisolatedclonalcelllineshavebasicfeaturesofmesenchymalstemceilsUnderphase?contrastmicroscope,thesecellsarehomogeneouslysmallspindle-shapedandlittlebroadercellswereseenamongthem.Growthcurvewasdrawedatpassages8andthepopulationdoubling(PD)timewas29.5±2.3hbycalculation.SeverallinesofevidencesuggestthesecellsarehMSCs.First,evenafterinvitrocultureover60PD,thesecellshavethecapacityforself-renewal.Second.theymaintaintheabilitytogiver.isetothreedifferenttypesofdifferentiatedmesenchymallineageprogeny(osteogeniccells,adiopogeniccellsandchondrogeniccells).Inaddition.thesecellshavenormalkaryotype,diploidDNAcontent.Notumorswereformedfor3monthsaftertheywereinjectedsubcutaneousIyintoSClDmice.Therefore.wewillcallthemhMSCsthereafter.(2)hMSCsexpressedvariousmarkersfordifferentlineagecellSincludingmesenchymalcells.butnothemopoieticstemcells.ByusingRT-PCR.weshowthatthesecellsexpressthefollowingsetofgenemarkers:OCT-4,SDF-1q.CD49a,CKl9,andC-met.ByusingFluorescenceActivatedCellSorting(FACS),weshowthatthesecellsexpressthefollowingcellsudaceanUgens:CD44,CD29,CD90,HLA。1,butnotCD34,CD45.CDl4.andHLA-0R,TheseresultsshowedthathMSCsdonotexpress

堕堕茎堡里婆苎叁壁塑塑壅堕王塑堕坌些堂堂堕堡塑markersofhemopoieticstemcells(CD34,CD45)andHLA一1.either,butdoexpressexpressmarkersofmesenchymalstemcells(CD44、CD29、CD90、CD49a、SDF-1Ⅱ)andOCT一4

(3)hMSCshaveobviousproteomechangesaftertheydifferentiateintoadipocytes.ProteomeofthehMSCsbeforeandafterdifferentiationwereanalyzedby2DSDS—PAGE.Comparativeanalysisoftheproteinspotspatlernrevealedsubstantialchangesoftheproteomecompositionduringthedifferentiationprocess.Becauseoflimitedamountofproteinusedfortheanalysis,subsequentMALDI-TOFanalysisonlyidentifiedtheactinandtubuiin,whichdecreasesharplyduringdifferentiation.However,thispreliminarystudydemonstratesthefeasibilityofusingthehMSCstocharacterizethemesenchymalstemcellproteomeandasamodeltoinvestigatethemechanismsofdifferentiation.

(4)InvitrodifferentiationstudyshowedthathMSCscandifferentiateintoneural。likecellsandhepatic.1ikecells.ToinducehMSCsintoneuraldifferentiation,weuse5ram132mercaptoethan01.orO.2mMbutylatedhydroxyanisole/2%DimethylSulfoxideor

forskolin.After5houmofinduction,fibroblast-likehMSCsstarttoexhibitneuron—likemorphology。extendinglongprocessesterminatingintypicalgrowthconesandfilopodia.FuRherimmunocytochemicalanalysisrevealedthatmostofdifferentiatedcellsexpressmanyneuronmakers:neuron—specificenolase。neurofilament-M,andtau.However,itisdifficulttomaintaintheviabilityofthecellsafterinduction.Majorityofcellsweredeadafter3-5dinduction.nolongerthan7days.ToinducehMSCsintohepaticdifferentiation,weuseFGF-4.EGF,HGF.OSM.2%FBSinlMDM,F12medium.After21daysinduction,theshapeofhMSCschangesfromspindle?shapetocuboid-shapewithsmallernucleartocytoplasmratio.Binuclearceilscouldbeobserved.ImmunocytochemistryandRT—PCRanalysisshowedthatcellsexpresshepticcellspecificmarkers:whilesmallpercentageofdifferentiatedcellsexpressesCKl9andCKl8,someofdifferentJatedceltsexpressalbumin.al。antitrypsin,Periodicacidishiff(PAS)stainingrusherrevealedabundantglycogenstoresincytoplasmofsomeofthedifferentiatedceils.whichisacharacteristicofhepaticcells.Inconclusion,theclonalcelllineofhMSCscan

陶欣荣博士论文人骨髓问充质干细胞分化潜能的探讨d_fferentiateIntoneuron—likeandhepatic-likecellsinv/tro.

(5)InvivodifferentiationstudyshowedthathMSCscandifferentiateintoneuron

cellsinneonatalmousebrain.WefurtheranalyzedthehMSCsdifferentiationpotentials

invivo.hMSCsweremarkedgeneticallywithenhancedgreenfluorescentprotein(EGFP)

injectedintothelateralventricleofbyretroviralmethodsandweresubsequently

neonatalmicebrain.At0day,9daysand14dpost-injection,micewerekilledandtheirbrainswerefixedwith4%paraformaldehyde.ExaminationofcryostatsectionbyfluorescentmicroscopyrevealedthathMSCscanengraftintobrain,andmigratefrominjectionsitetostdatum.hippocampus.thecortex,evenareasofbraincontralateraltothesideofinjection.Neuron—specificdifferentiationandengraftmentwasconfirmedbyexaminingtheexpressionofneuron-specificproteinmarkersoftheseEGFP—expressinghMSCs.Byusingconfocalmicroscopy,wewereabletoCO—localizetransplantedEGFP—labledhMSCshaveB-TublinIⅡ、MAP2、raustainingalthoughsomehaveGFAPstaining.TheseresultssuggestthatthesehMSCscanrespondtobrainmicroenvironmentanddifferentiateintoneuronsandastrocytes.

(6)InvivodifferentiationstudyshowedthathMSCscandifferentiateintohepatocytesinCCl4injuriedSCIDmouseliver.hMSCslabeledwithEGFPwerealsosurgicallyinjectedintothespleenofrecipientSCIDmicetreatedbycarbontetrachloride.Cryostatsectionsofrecipientliverwereobservedunderfluorescentandconfocalmicroscopyatdifferenttimepoint.TransplantedcellclustersweredetectedbyEGFPfluorescenceat2,5and8weeksaftercelltransplantation.Theshapeofcellschangedfromfibroblast-likeintohepatocyte?like.Someofthembecomebi—nucleated.ClusterswereobservedinbothcentraIveinandportalareas.StatisticaIresultsindicatedlhatclusterswith2cellsormoreconstitutedthemajority(79.4%)ofcellrepopulationat2weekspost-transplantation.Thesedatademonstratedthattransplantedcellscanengraftlongtime(observed8weeksaftercelltransplantaton)andmostofsurvivalcellshaveproliferatedintheinjuriedliver2weeksposttransplantation.Furthermore,immuno—colocalizationstudiesdemonstratethatthetransplantedcellsexpresshepatocytespecificproteinmarkers:albuminandal—antitrypsinininjuriedSClDmice

liver.MassonstainingwithcollagenandHematoxylinandeosin(H&E)stainingrevealedthattherearelighthepatocytesnecrosisaroundportal,manyinflammatorycellsemergingandlightfibrosisinacute0014-injuriedSCIDmiceliversat2weekspostinjury.Theinjuryincreaseheavilywithalargeareaofhepatocytesnecrosisandthedegreeoffibrosisgrewheavilyat5weeksand8weeks.ItseemsasiftheinjuriedlivermicroenvironmentweresuitablefortheengraftmentandproliferationoftransplantedhMSCs.However,theeffectsoftransplantedcellsontheliverinjuryneedlongertimeobservationandfurtherstudy.TheseresultsgavestrongevidencethathMSCscouldnotonlysurvivelongtimeandproliferateintheinjuriedliverbutalsodifferetiateintomaturehepatocytes.

Toourknowledge,thisisthefirststudyestablishingasimpleproceduretoisolateaclonalmulti—potentialhMSClinefromhumanbonemarrow.Wehavealso.forthefirsttime,demonstratedthathMSCsfromadulthumanbonemarrowbysimpleprocedureofisolationandculturesystemhavetheabil时todifferentiateintopregenyofotherembryonicgermlayerssuchaslivercellsandneuralcells.WealsodiscoveredthatthesamehMSCsassumedifferentfateunderspecificmicroenvironmentinvivo.Byusinganinjuredlivermousemodel,wewereabletodemonstratethatthesehMSCsnotonlyhavelong-termsurvivingandproliferatingabilitybutalsocandifferatiateintofunctionalmaturehepatocytoes.ItisworthnotingthatevenafterlongterminvitroculturingtherehMSCsstillmaintainthismulti—potential.differentiationcapability,whichwillallowsufficienttimeforfurtherinvitromanipulationofthesestemcellsbeforefurtherclinicalapplications.Overall.weconcludethathMSCsfrombonemarrowmaybeanideafstemcellsourceforcelltherapiesforliverdiseaseandcentalneuralsystemdisease.

Keywords."mesenchymalstemcells;humanbonemarrow;CFU—F:cellline;clonecelldifferetiation;celltransplant

13

前言

入骨髓问充质干细胞是骨髓中的一类与造血干细胞的不同的,具有向骨、软骨、脂肪、肌肉等多种组织细胞分化能力的成体干细胞,它在体外可以大量增殖,并具有克隆形成的能力。

研究表明,个体发育时充质干细胞也经历了一系列的发育和分化过程。在人和鼠胚胎发育胚体形成阶段,背主动脉区为原始造血部位,其下主动脉.生殖腺嵴一中肾管区(aorto—gonadal-mesonephf.c,AGM)有很多基质样细胞,从AGM区分离的基质缨胞系可以支持胚胎或成体造血,其贴壁生长的特性以及体外培养扩增的条件与MScs非常相似(如培养液垦需添加10.20%的FBS),但对其表型和分化潜能研究铰少(CortesFetal,,1999;MarshallCJeta1..1999)。CampagnoliC(2001)等研究发现,人妊娠前三个月胚胎的外周血中不仅含有较多的HSCs,还同时含有丰富的MSCs,一直延续到妊娠12w,之后胎血里的MSCs数目很快减少甚至消失。胎肝、骨髓里的问充质干细胞存在的数目,也象外周血里的MSCs一样,随着胚胎发育的进展,数目明显减少。研究结果还显示,胚胎里的MSCs与成体MSCs在生物学特性上非常相似,但与成体MSCs相比,胚胎期MSCs的CFU.F形成能力和增殖能力强。12w后外周血中的MSC迅速减少,但是有证据表明有很少的多潜能MSC残存下来。从脐带血分离得到多潜能非造血干细胞的实验也映证了这~点(GoodwinHSela1.,2001:WernetPeta1.,2001),他们得到的细胞与MSCs很相似,不表达I类或l|类组织相容性抗原,表达CDl3。CD44,Rexl和SSEA4。VeffaillieCM(ReyesMeta1..2001)研究小组分离鉴定的MAPCs(multipotentadultprogenitorcells,MAPC),KuznetsovSA(2001)等从外周血中分离鉴定的骨祖细胞,都提示生物体内存在循环的多潜能非造血干细胞。我们认为MSCs存在不同的发育等级,个体发育阶段中一些MSCs与造血干细胞共存,不仅支持造血,还可以迁移,形成其它组织里的细胞成分。而残存于成体里的该类细胞可能在整个生命过程中扮演着组织损伤和修复的重要角色。

事实上,成体骨髓中多潜能的于细胞的存在,还有待于进一步研究结果的证实。还有许多问题有待于迸一步研究结果的回答,如骨髓中何种特征的细胞具有多潜能?其多向分化的机制是怎样?这些在体内的多能性细胞,在体外长期培养扩增后回输到体内,是否还具有多潜能?

一、骨髓间充质干细胞分离、培养及鉴定的研究现状

相对于HSCs来说,人们对MSCs生物学特性的认识要滞后得多,对MSCs的表型特征和分化潜能的认识也不统一。造成这种情况的原因可能有:1)个体发育的不同阶段,MSCs的表型和功能有差异;2)骨髓中存在不同分化等级的MSCs;31骨髓中不同空间位置的MSCs存在差异;4)不同实验室分离MSCs的方法不同,分离后体外培养的条件也不一样,以致于所获得的MSCs也不同;5)用于研究MSCs分化潜能的体外诱导和体内移植的体系不一致。因此,目前MSCs没有公认的、高度特异性的分子标记,也没有较为标准的分离和培养方法去获得MSCs。用来证明实验中得到的细胞是间充质干细胞的惟一金标准是其能向中胚层3种细胞(骨、软骨、脂肪细胞)分化的潜能。尽管近年来关于间充质干细胞有大量的文献报道,但对其生物学特性的认识还是很粗浅的,各个实验室的结果也不相同,没有一个统一的标准。

综合文献报道,分离间充质干细胞的方法很多,有根据细胞贴壁生长的特点采用直接贴壁分离法,有密度梯度分离法、有根据细胞表面标志使用磁珠吸附的方法、有根据细胞的大小分离的方法(PittengerMFetaI,,1999;CongerPAeta1.,1999;JonesEAetal。,2002;HungSCetal。,2002);分离得到的MSCs体外培养的条件也不同,分子特征也有差别。分离得到的多是不均一的细胞群(MuragliaAetal..2000)。进一步的研究发现,单个hMSCs细胞在体外培养的过程中,亚克隆里的细胞形态、增殖能力和分化潜能也不同(ColterDCeta1.,2000。2001)。虽然近几年研究鉴定了一些hMSCs特异性标记,细胞表达CD29,CD44,CDl66;不表达典型的造血系统抗原CD34,CD45,HI_A-DR.CDl4L单核细胞,巨噬细胞),CD31(内皮细胞),CDlla(淋巴细胞),但是目前还没有发现高度特异性的抗原可以被用来分离hMSCs。

FriedensteinAJ等在1970年就发现体外培养的单个骨髓基质细胞可以形成克隆,称为集落形成成纤维样细胞(6lonogenicprecursors,或cotony-formingfibroblasticunits,CFU—F)。而具有克隆形成能力的骨髓细胞是那些快速贴壁、增殖速度快、不同于巨噬细胞的骨髓基质细胞。随后有研究发现,不同的CFU—Fs增殖产生的细胞集落,其中细胞的分子特征、分化潜能等特征也不一样:而且现有的研究结果提示,一般所说的骨髓间充质干细胞很可能就是其中的某种或某些类型的细胞群体。

基于这样一个研究背景,本实验以年龄为17y-65y的正常人骨髓为材料,利用间充质干细胞贴壁生长、具集落形成能力的特点,挑取较早出现和较大的单个CFU.Fs细胞集落

陶欣荣博士论文人骨髓问充质干细胞分化潜能的探讨

中细胞,试图直接从成体人骨髓中分离较为原始的骨髓问充质干细胞,得到了多个克隆化的细胞系,建立了适合其生长和增殖的体外培养条件,迸一步研究了其在体内、外的分化潜能。

二、骨髓间充质千细胞多向分化潜能的研究概况

PittengerMF等(1999)发表了第一篇最为有说服力的关于人成体骨髓中存在多向分化潜能的间充质干细胞(multilineagepotentialofadulthumanmesenchymalstemcells)的文章。该研究小组利用密度梯度的分离方法,从人骨髓中分离hMSCs,体外克隆化的hMSCs仍具有向骨、软骨和脂肪细胞分化的能力。随后VerfaillieCM研究小组,发表了~系列的关于问充质干细胞多向分化潜能的研究结果。其中ReyesM等(2001)从骨髓中分离CD45(-)/GIyA(-)的贴壁细胞,证明是中胚层组织的祖细胞(mesodermalprogenitorcells,MPCs),MPCs不仅可以形成肢体中胚层的骨细胞、软骨细胞、脂肪细胞、骨骼肌细胞、基质细胞,还可以形成脏壁中胚层的内皮细胞。JiangY等(2002)在单个细胞水平,进一步证明了MPCs在体内和体外可以分化为内、中、外三个胚层的细胞,称为多潜能的成体干细胞(MAPCs)。同年,JiangY等从小鼠的骨髓、肌肉和脑组织里也分离到了多潜能的成体祖细胞。以上的研究表明,骨髓中存在多潜能的干细胞,但是它究竟是何种类型的细胞,目前还没有统一的认识。

研究表明,细胞的分离方法和培养条件对骨髓中多潜能间充质干细胞的获得与维持至关重要。JiangY等建立的多潜能成体祖细胞(MAPC)被认为是间充质干细胞的亚系,MAPCs是用CD45.,GIyA.为标志及其贴壁生长的特性来分离的。MAPCs在骨髓细胞里存在的比例是1,5x103CD45.GIyA.细胞或1,105骨髓单核细胞。其体外分离和培养的条件比较特殊,在纤维连接蛋白包被的细胞培养皿里贴壁生长,培养液里添加EGF、PDGF和2%胎牛血清。实验证明MAPCs与MSCs相比具强大的增殖能力,可以在体外扩增60多个细胞倍增周期。传25代的多潜能MAPC表达端粒酶,具多向分化潜能(可以分化为内、中、外三个胚层的细胞),且继续增殖至50代。PochampallyRR等(2004)的研究结果也映证了培养条件对获得的MSC表型特征有很大影晌。用没有添加血清、细胞因子的培养液,培养较早代次的人骨髓基质干细胞,2至4周后,筛选出的亚系接着在含17%胎牛血清的培养液中培养,其与一直用有血清的条件培养筛选出的对照组相比,端粒长度长与对照组。

RT-PCR及基因芯片分析结果表明,该细胞系是非常早期的祖细胞,表达OCT-4及其它胚

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陶欣荣博士论文人骨髓间充质干细胞分化潜能的探讨

胎期细胞表达的基因。

对入骨髓间充质于细胞分化潜能的实验研究,主要在体内和体外两个方面进行。相对于间充质干细胞体外分化潜能的研究,其体内分化潜能的研究却很有限,其在体内分化的机制知道的更少。而只有研究清楚其在体内的特异微环境中的分化和功能状态,才能更好地将其应用于临床。如MAPCs在体外可以分化为有功能的肝脏细胞,而未见向肝细胞分化的体内实验报道。

分析MSCs的分子表达谱发现,MSCs同时表达中胚层、内胚层、外胚层细胞的分子特征(WoodburyDeta1.,2002)。RatajczakMZ(2004)等研究发现,小鼠骨髓Sca一1(+)的单核细胞或人类CD34(+/.)ACl33(+/-)CXCR4(+)的细胞,在正常的生理状态下,以很少的数目存于外周血中,而一旦组织损伤后,骨髓中这些细胞就会被动员出来,这些细胞在外周血中水平会很快升高。这些结果提示.骨髓中的非造血千细胞在体内特异的环境中,如组织损伤的情况下,可能会在肌体不同的组织中分化为该组织中的细胞。

以上的研究结果提示,间充质干细胞的分化命运由细胞外部环境的信号与细胞内在的“程序”共同决定的。为研究同一种hMSCs在不同胚层来源的组织中的分化命运,本研究将分离鉴定的hMSCs标记上绿色荧光蛋白,移植到CCf4损伤的SCIDtJ、鼠肝脏中,同时又移植到新生3天的C57B∽小鼠脑中,观察其分化的去向,以探讨hMSCs分化的机制。

三、本课题的研究目的和意义

本课题的研究目的有:1)建立克隆化的人骨髓间充质干细胞系,并建立适合其生鹾和增殖的体外培养条件;2)鉴定它的基本生物学特性;3)研究其向神经细胞和Jj千脏细胞分化的潜能。

本实验获得的间充质干细胞系不仅为研究间充质干细胞的生物学特性提供一个良好的细胞模型,而且还可以用于研究细胞的分化机制。本研究结果为人骨髓间充质干细胞的分离培养及在体外维持未分化状态的条件提供了有价值的实验依据,还为hMSCs参与损伤肝重建与修复治疗提供了有力的证据,hMSCs将来有可能成为肝功能衰竭、肝脏代谢性疾病细胞治疗和神经系统疾病治疗的种子细胞。

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第一部分

克隆化的人骨髓间充质干细胞系的建立及其基本生物学特性的研究

人间充质干细胞的组织来源很多,但是从组织中hMSCs的含量、取材的方便程度,分离扩增后可以紧接着用于细胞移植的角度,我们认为骨髓是hMSCs将来临床应用最好的来源。人骨髓间充质干细胞存在许多亚系,各个亚系在形态、分化潜能、细胞移植后的归巢能力上不同【I叫J。因此,建立克隆化的hMSCs细胞系并对其分化潜能和细胞的分子特征做鉴定是非常有意义的。

有研究表明,不同的分离方法与培养条件,对多潜能hMSCs的获得与维持非常重要。如研究发现低密度种植可以维持其快速增殖,提高产量,最大限度地保持其多向分化潜能的干细胞特性HJ:进一步研究发现,hMSCs经无斑清条件培养筛选后,OCT-4表达增强16】;Verfaillie研究小组获得的人骨髓多潜能的干细胞MAPCs[7]是使用比较特殊的分离与培养的条件。本研究的目的是从成体人骨髓中分离间充质干细胞,利用hMSCs贴壁生长和具集落形成能力的特性,试图直接从人骨髓中分离较为原始的骨髓问充质干细胞,以期对MSCs的基本生物学特性能够有一个比较全面的认识。挑取原代最早出现和较大的来源于单个细胞的集落形成单位(CFU—Fs)中的成纤维样细胞,逐步扩大培养,建立了多个克隆化的细胞系。对细胞的分子特征和分化潜能的鉴定证明了建立的细胞系是间充质干细胞系,为下一步研究其跨胚层分化潜能奠定基础。

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实验材料

1.细胞分离的主要试剂及其制各

1,1Percoll,购自Pharmacia公司。1.0739/mlPercoll的制备:50ml无菌离心管中加入22.05mlPemoU,2.45mlNaCI(1.5M)和10.5mlTyrode缓冲液,混匀后,20,0009,15min。4"C贮存备用。

1.2FicoU(1.0779/m1),购自上海生物工程有限公司。

1.3红细胞裂解液;139.6mmol/LNH4CI,16.96mmol/LTris,用1mollLHCI调pH至7.2。过滤灭菌,4℃保存。

2。细胞培养的主要试剂及其制各方法

2.1DMEM.LG液体培养基:购自GibcolBRL公司。

2.2胎牛血清:购自Hyclone。

2.3青霉素,链霉素溶液(P/S100×):10000units/ml青霉素和10000ul/ml链霉孝的盐溶液,购自GibcolBRL公司。

2.4200raMGlutamaxTM:购自GibcolBRL公司。.20。C保存。

2.50.05%胰蛋白酶,0.02%EDlA:GibcolBRL公司

2.61M磷酸盐缓冲液(10xPBS);称KCl29,KH2P0429,NaCI809,Na2HP04qH2015.69,加ddH20至900ml,混匀,用NaOH或HCI调节PH值至7.2左右,O.22pro滤膜过滤,分装,高压灭菌,40c保存。

0.1M磷酸盐缓冲液(1xPBS),取10xPBS100ml,加ddH20定容至1000ml。用0.1M盐酸调节PH值至7.2左右,分装,高压灭菌,4。C保存

2.7细胞冻存液:DMEM?LG液体培养基:胎牛血清:OMS0=7:2:1分装,-200C保存,使用前40C解冻。

3.细胞诱导的主要试剂及其制备方法

3.1维生素C及其贮备液配制:维生素C购自华美公司。取0.359,溶于10m|三蒸水,配成0.2moI,L(1000×)的贮备液浓度。0.2m滤膜过滤,分装,-20oC保存备用。

3.2口-甘油磷酸:母-甘油磷酸购自Sigma公司。取2.169,溶于10mE蒸水。配成

骨髓间充质干细胞研究进展(一)

骨髓间充质干细胞研究进展(一) 【摘要】骨髓间充质干细胞是干细胞领域的研究热点之一。虽然近几年来有关间充质干细胞的研究已取得了很大进展,但仍有很多问题有待进一步解决。本文主要对间充质干细胞的生物学特性、以及免疫耐受性、分化和促修复、间充质干细胞的标记等问题进行综述。 【关键词】骨髓间充质干细胞分化标记 骨髓间充质干细胞,BMSCs)是骨髓内除造血干细胞(hematopoieticstemcells,HSC)之外的另一类干细胞,是骨髓造血微环境的重要组成部分,在体内外均具有支持和调控造血的作用。因其比较容易贴壁和形成成纤维样的克隆,因此也称成纤维细胞集落形成单位(Colonyformingunitfibroblast,。又由于它们来自骨髓的支持结构,并作为滋养层支持造血干细胞的生长,因此也有人称其为骨髓基质细胞(Bonemarrowstromalcells,BMSCs)。 1骨髓MSCs的生物学特性 不同物种的BMSCs体外培养的形态学特征大致相同,主要表现为梭形、纺锤形,少数为多角形。目前,BMSCs的分离方法主要有以下几种:(1)全骨髓培养,是将无菌抽取的骨髓加入培养液制成细胞悬液并培养,原代培养培养物以造血细胞成分居多,为利于BMSCs的贴壁生长,可采用DMEM和胎牛血清培养。BMSCs对营养要求高,胎牛血清终浓度为10%~20%,有人认为红细胞会随着换液而逐渐被自然去除,对BMSCs影响不大。细胞融合后以1:2比例传代,3~4天换液一次〔1〕;(2)离心培养法,是根据骨髓中细胞成分比重的不同,采用离心分离法提取单核细胞进行培养。在新鲜无菌的骨髓抽取物中加入抗凝培养液稀释1500~2000r/min离心20~30min,采集交界处的单核细胞层,PBS洗涤2~3次后,加入培养液接种培养;(3)细胞表面分子标记分选法,主要是根据BMSCs的细胞表面分子特征来分离。一般采用流式细胞仪、免疫磁珠或免疫沉积法来进行分选。但由于目前仍未找到BMSCs 特异性的细胞表面标记物〔2〕该法较少采用。影响BMSCs扩增的主要因素:(1)血清:血清对大量扩增BMSCs起着重要的作用,不同浓度的血清对培养BMScs纯度的影响亦较大,常用10%~20%的胎牛血清培养BMSCs;(2)接种密度:BMSCs的体外扩增速度与其接种密度也有关,一般认为较低密度种植有益于增殖。高密度接种后细胞生长较慢其原因可能是由于细胞间的接触抑制,或细胞释放到培养基中的因子影响了BMSCs的生长;(3)细胞因子:一些细胞因子对于维持BMSCs增殖和未分化状态亦十分重要;(4)动物种属:一般认为BMSCs的生长特性相似,但也有资料显示BMSCs生长特点有种属差异〔3〕。 2间充质干细胞移植后的免疫耐受性 在移植治疗中,一般情况下,移植物会引起宿主的免疫排斥反应。但对于间充质干细胞来说却不是这样。实验表明间充质干细胞可以抑制T细胞的增殖从而导致免疫耐受〔4~7〕。T 细胞与其它细胞的相互作用可以通过混和淋巴细胞反应来观察。被标记的T细胞与其它细胞混合后,如果可以引起T细胞的免疫反应,则可以观察到T细胞的增殖现象。但当把间充质干细胞与T细胞混合后却观察不到T细胞的增殖反应,而且这种现象并不是由于T细胞凋亡或其它的有害作用引起的。因为在去除间充质干细胞后,这些T细胞仍然可以对其它物质进行反应。此外,使用趋化膜将两种细胞分隔开培养后,间充质干细胞对T细胞的抑制作用依然存在,表明这种抑制作用可能通过某种可溶性的小分子起作用。另外,除了未分化的间充质干细胞可以抑制T细胞的增殖外,实验也表明,随着干细胞的分化,其抗原性并没有随之增加〔8〕。总之,间充质干细胞可以通过某种机制抑制T细胞的成熟来逃避免疫系统的清除。也暗示间充质干细胞可能在机体免疫系统的调节及骨髓中各种干细胞未分化状态的维持方面起作用。 3促组织修复和细胞分化 骨髓间充质干细胞(BMSCs)是存在于骨髓组织中的一类成体干细胞(adultstemcells,AS),在一

人骨髓间充质干细胞的贴壁分离与体外培养

万方数据

ISSN1673—8225CN21.1539/R赵凌云,等人骨髓间充质干细胞的贴壁分离与体外培养wwM.zglckf,comkf23385083@sina.com 0引言 骨髓间充质干细胞是具有形成骨、软骨、脂肪、神经和成肌细胞能力的多种分化潜能的细胞亚群,取材方便,易于体外扩增,可进行自体移植,而不存在组织配型和免疫排斥的问题,被认为是骨组织工程中最佳的种子细胞。本实验目的在于建立一种可行的骨髓间充质干细胞取材和分离扩增的培养方法。 1材料和方法 设计:开放性实验。 单位:解放军济南军区总医院脊髓修复科。 材料:实验于2006—02/12在解放军济南军区总医院脊髓修复科完成。骨髓来源于解放军济南军区总医院脊髓修复科收治的脊髓完全性损伤患者,对本实验均知情同意。基础培养液由含体积分数为0.15胎牛血清和低糖仪一MEM配置。低糖d-MEM培养基(Hyclone);淋巴细胞分离液(密度1.077g/mL,上海试剂二厂生产);胰蛋白酶,胎牛血清(Gibico);C02培养箱(上海力申科学仪器有限公司,HF90);生物安全柜(上海力申科学仪器有限公司,HFsafe一1200/c);倒置显微镜(Leica);离心机(JOUANB4i多功能台式机)。 设计、实施、评估者:设计、实施为第一作者,评估为第二、三作者,均经过系统培训,未使用盲法评估。 方法: 骨髓间充质干细胞的分离及传代培养:在无菌条件下,以含5mL肝素钠生理盐水的20mL注射器,于患者髂后上棘穿刺抽取骨髓组织6mL,移入含5mL肝素钠生理盐水的试管内,混匀,而后沿管壁缓慢加入含10mL淋巴细胞分离液的离心管中,2000r,min离心20min,小心吸取界面层细胞,用D—Hanks平衡盐溶液洗2次,2000r/min离心8min,加入基础培养液,血细胞计数板计数,调整细胞的浓度,将细胞悬液按109—1010L-1接种于培养瓶,放置37℃、体积分数为0.05的C02饱和湿度孵箱中培养。于培养后的两三天更换培养液,并用D-Hanks平衡盐溶液冲洗2次,以去除未贴壁的造血细胞,以后每3d换液一次,进一步去除未贴壁的细胞。观察细胞生长情况,待细胞融合成片、长满培养瓶底部后,用质量浓度为2.5g/L的胰蛋白酶流过所有细胞表面,盖好瓶盖,将培养瓶放在倒置显微镜下观察,发现细胞变圆,部分脱壁,控制消化时间不超过3min,立即加入2mL有血清培养液终止消化,用弯头吸管轻轻吹打细胞生长区域,吹打过程中不要用力,结束后再用少量培养液漂洗一遍,然后加入适 5650量培养液计数,分别接种在新的培养瓶内。 骨髓间充质干细胞的生长曲线的绘制:取第3代生长状态良好的细胞,用质量浓度为2.5g/L的胰蛋白酶消化制成细胞悬液,接种至24孔培养板,3孔/组,细胞1×104/孔,每孔加入培养液1mL,放置37℃、体积分数为0.05的C02孵箱中培养。以细胞数为纵坐标,时间为横坐标,绘制细胞生长曲线。 骨髓间充质干细胞贴壁率的测定:取第3代生长状态良好的细胞,用质量浓度为2.5g/L的胰蛋白酶消化制成细胞悬液,接种至24孔培养板,3孔/组,细胞1×104/孔,每孔加入培养液1mL,放置37℃、体积分数为0.05的C02孵箱中培养,每隔2h进行细胞贴壁率检测。 主要观察指标:①骨髓间充质干细胞的形态学观察。②骨髓间充质干细胞的生长曲线。③骨髓间充质干细胞的贴壁率。 统计学分析:由第一作者采用ESA4.0软件进行统计处理,数据以娃s表示。 2结果 2.1骨髓间充质干细胞的形态学观察倒置显微镜下,骨髓间充质干细胞接种1d即贴壁,2d时贴壁细胞较多。经冲洗和换液去除悬浮细胞后,贴壁细胞继续培养3d开始增殖,伸展为椭圆型、短梭型、多角型及不规则型等(图1)。至14d细胞密集在集落中心,基本铺满瓶底,第3~5代细胞呈均匀一致的长梭型,排列成旋涡状或放射状(图2)。 图1原代培养的骨髓间充质干细胞贴壁后3d开始增殖,伸展为椭圆型、短梭型、多角型及不规则型等(倒置显微镜,x20) 2.2骨髓间充质干细胞的生长曲线骨髓间充质干细胞传代后3d内处于潜伏期,3d后进入生长期,7d后进入平台期。第3代骨髓间充质干细胞生长曲线见图3。 P.O.Box1200。Shenyang110004kf23385083@sina.com www.zglckf.com  万方数据

小鼠骨髓间充质干细胞的分离培养与鉴定

小鼠骨髓间充质干细胞的分离培养与鉴定 发表时间:2012-05-24T09:50:06.677Z 来源:《医药前沿》2012年第1期供稿作者:林芸1 蔡鹏威2 陈为民1 孟春3 [导读] 分离、培养符合实验要求的小鼠骨髓间充质干细胞并进行鉴定,为进一步的研究打基础。 林芸1 蔡鹏威2 陈为民1 孟春3 ( 1 福建医科大学省立医院临床学院血液科福建福州 3 5 0 0 0 1 ) ( 2 福建省立医院检验科福建福州 3 5 0 0 0 1 ) ( 3 福州大学生物工程学院福建福州 3 5 0 0 0 1 ) 【摘要】目的分离、培养符合实验要求的小鼠骨髓间充质干细胞并进行鉴定,为进一步的研究打基础。方法采用贴壁培养法培养小鼠骨髓间充质干细胞,观察细胞的形态及生长特性,并应用流式细胞仪对细胞表面抗原CD34、CD45、CD29、CD44进行表型鉴定。结果原代分离的间充质干细胞在接种后培养24小时,细胞开始贴壁,胞体呈圆形或多边形,培养第3-5天,细胞开始较紧密贴附壁上并开始有细胞呈梭形,培养第7天开始观察到细胞分裂,随着细胞数的增加,细胞的生长速度变快,逐渐成漩涡状排列,培养第12天贴壁细胞长满瓶底的80%,并融合成片。传代后细胞生长迅速,培养7天左右即可长满瓶底的80%。传至10代仍具有良好的增殖活性。流式细胞仪检测第4代及第8代MSCs细胞均不表达CD34、CD45,但表达CD29、CD44,纯度分别为73.8% 、91.65%。结论采用贴壁培养法可获得生长状态良好、增殖能力强的间充质干细胞,随传代数增加,其纯度增加,且该方法简单、实用。 【关键词】骨髓间充质干细胞细胞培养流式细胞术表型鉴定 【中图分类号】R392.2 【文献标识码】A 【文章编号】2095-1752(2012)01-0082-02 间充质干细胞(mesenchymal stem cells,MSCs)起源于中胚层,具有高度增殖和自我更新的能力,有向骨、软骨、脂肪、血管内皮细胞、神经星型胶质细胞等分化的潜能[1],可分化成骨髓基质支持造血,并可分泌多种细胞因子促进造血干细胞增殖分化,同时它能抑制同种异体反应性T淋巴细胞,在同种异基因造血干细胞移植后的造血重建及免疫调节,预防移植物抗宿主病等方面有广阔的应用前景[2],但骨髓间充质干细胞含量极低,仅占骨髓单个核细胞的0.001%-0.010%[3],因此,培养出生长状态良好,足够数量的骨髓间充质干细胞是应用的前提。 1 材料和方法 1.1 材料 1.1.1 实验动物雄性,C57B L/6小鼠,清洁级,8周龄,体重18-20g,购于吴氏动物实验中心。 1.1.2 实验仪器与试剂低糖DMEM培养基(Gibco公司),特级胎牛血清(Hy c l o ne公司),胰蛋白酶(Si gma公司),青霉素钠(Si gma公司),链霉素(Si g m a公司),5%C O2培养箱(日本三洋公司),流式细胞仪(BD FA CSCalibur),倒置显微镜(OLYMPUS),大鼠抗小鼠单克隆抗体:CD29-PE、CD44-FITC、CD34-PE、CD45-FITC(BD公司)。 1.2 方法 1.2.1 小鼠骨髓间充质干细胞的分离及原代培养取8周龄雄性C57BL/6小鼠,颈椎脱臼法处死,75%酒精浸泡5分钟,取出双侧腿骨,置于装有P BS溶液的培养皿中小心剔除粘连于骨上的肌肉组织,移入装有预冷的含10%特级胎牛血清、青霉素钠100U/ml、链霉素0.1g/L 的低糖DMEM培养液的培养皿中,剪去腿骨两端,用1m l注射器抽取培养液反复冲洗骨髓腔,直至骨发白,收集冲洗液,反复吹打使细胞打散,静置10分钟,小心将上清移至灭菌的10m l离心管中,4℃3000r p m离心3分钟,弃上清,用含10%特级胎牛血清的L-DMEM培养液重悬细胞,反复吹打混匀,4℃3000r p m离心3分钟,弃上清,再用含10%特级胎牛血清的L-D M EM培养液重悬细胞,反复吹打混匀,4℃3000r p m离心3分钟,弃上清,再用含10%特级胎牛血清的L-DMEM培养液重悬细胞,反复吹打混匀,调整细胞密度为5×105个/ml接种于25cm2培养瓶中,置于5%C02,37℃,饱和湿度95%的培养箱中培养4小时后,轻轻吸出上清,并加入新鲜培养液。培养24小时后轻轻吹打,使未贴壁的细胞悬浮,吸出上清,加入新鲜的培养液,继续培养。以后每天换液1次,并观察细胞形态。 1.2.2 小鼠骨髓间充质干细胞的传代培养原代细胞生长接近瓶底的80%时,吸去上清,加入0.125%胰蛋白酶,37℃条件下消化并观察细胞形态,待细胞呈球形、不在粘连时吸弃胰酶,加入新鲜培养液重悬细胞,4℃3000r pm离心3分钟,弃上清,再加入培养液重悬细胞,反复吹打混匀,按1:2比例接种到新的培养瓶,置于5%C02,37℃,饱和湿度95%的培养箱中继续培养,仍然每天换液,直至细胞贴壁融合成片,接近瓶底80%时,重复以上操作,再次传代。 1.2.3 小鼠骨髓间充质干细胞的表型鉴定收获第4代及第8代生长良好的细胞,胰酶消化后,4℃1000r p m离心5分钟,弃上清,PBS洗涤细胞2次,每代细胞分别设2管,调节每管细胞数为5×105,分别加入C D29和C D44、CD34和CD45单抗,室温孵育30分钟,PBS洗涤细胞3次,流式细胞仪检测分析,同时用PBS作为一抗设置阴性对照。 2 结果 2.1 小鼠骨髓间充质干细胞的原代培养及扩增培养4小时后吸出上清,加入新鲜培养液后,大多数悬浮细胞被吸出,瓶中细胞数目明显减少,并且都呈现球转,折光率较强,原代分离的间充质干细胞在接种后培养24小时,细胞开始贴壁,胞体呈圆形或多边形,培养第3-5天,细胞开始较紧密贴附壁上并开始有细胞呈梭形,并不断长大、变长,但未观察到细胞分裂,培养第7天开始观察到细胞分裂(图1),随着细胞数的增加,细胞的生长速度变快,逐渐成漩涡状排列,培养第12天贴壁细胞长满瓶底的80%,并融合成片(图2)。传代后细胞生长迅速,培养7天左右即可长满瓶底的80%。传至10代仍具有良好的增殖活性。

_骨髓间充质干细胞在骨科中的应用

第9卷第18期·总第122期 2011年09月·下半月刊 87骨髓间充质干细胞在骨科中的应用※ 陈亮1陈跃平1,2* 摘要:骨髓间充质干细胞(BMSC)是一种来自中胚层发育的早期干细胞,具有多向分化潜能的特性,可分化为骨细胞、软骨细胞、脂肪细胞等。临床上还运用BMSC治疗骨科疾病大量的体外实验已获成功。 关键词:骨髓间充质干细胞;骨科学;文献综述 doi:10.3969/j.issn.1672-2779.2011.18.055 文章编号:1672-2779(2011)-18-0087-03 骨髓中含有2类干细胞,①造血干细胞,它为循环血液提供前体细胞;②非造血性干细胞,它是骨髓中造血结构性和功能性支持细胞,在调节造血干细胞的长期存活,生长分化中起重要作用。早期分离培养时,发现其形状呈成纤维细胞样而称其为“成纤维细胞集落形成单位”或“骨髓基质成纤维细胞”。随着研究的深入,人们发现其对骨髓造血干细胞起支持诱导作用,又因其来自于骨髓基质,因而称其为“骨髓基质细胞”。因其在不同的诱导条件下,有向中胚层组织细胞分化的能力,又称其为“骨髓间充质干细胞”。 1 骨髓间充质干细胞多向分化特性 多向分化潜能被认为是BMSC最重要的生物学特征。大量体外实验证明,在不同诱导条件下,BMSC可以向多种中胚层来源的组织细胞分化,如成骨细胞、软骨细胞、脂肪细胞等。 1.1 BMSC向成骨细胞的定向诱导分化BMSC在体外培养中,通过地塞米松、β磷酸甘油和抗坏血酸等的诱导,能够分化为成骨细胞。Ouyang等[1]在培养基内加入抗坏血酸后BMSC排列紧密呈片状生长,将BMSC片与去除矿物质的移植骨片结合植入受损部位,3周后形态学、组织学、免疫组织化学观察显示,植入物的结构与正常骨膜相似,并向成骨、软骨分化。 1.2 BMSC向软骨细胞的定向诱导分化BMSC向软骨细胞的定向诱导分化将此分离的BMSC加入无血清培养体系中培养,培养体系中加入转化生长因子β、软骨来源形态形成蛋白及整合素可促使BMSC向软骨细胞分化。舒朝锋等[2]实验证明,在单层诱导培养条件下,人骨髓BMSC能分泌软骨细胞特征性细胞外基质如Ⅱ型胶原、糖胺多糖等,具有作为软骨组织工程种子细胞来源的可能。 1.3 BMSC向脂肪细胞的定向诱导分化 1999年,Pittenger等[3]人的BMSC培养体系中加入甲基异丁基黄嘌呤、地塞米松、胰岛素和茚甲新等,结果成功地诱导出脂肪细胞,细胞内聚集脂滴,并表达过氧化物酶体增殖物激活受体,脂蛋白脂酶和脂肪酸结合蛋白aP2。在这种培养条件下,约95%的细胞向此系分化,细胞内的脂质小泡持续增加直至充满细胞,这些物质可被油红染成红色。 ※基金项目:广西壮族自治区科技厅自然基金[No:2010GXNSFA013223] 作者单位:1 广西中医学院附属瑞康医院骨科(南宁530011) 2 南方医科大学在读博士(南宁530011) *通讯作者 2 骨髓间充质干细胞的分离方法 骨髓中BMSC含量很少,仅占骨髓内单个核细胞总数的0. 001%~0.01%,并随年龄的增加而减少,因此,必须实现其体外分离培养、扩增。目前BMSC的分离方法主要以下几种:①密度梯度离心法:主要根据骨髓中细胞成分的比重不同,清除红细胞,分离提取骨髓单个核细胞进行贴壁培养。目前较常用Percoll 液(1.073 g/ml)和Ficoll 液(1.077 g/ml)进行密度梯度离心。值得注意的是,不同密度的分离液对BMSC的纯度影响极大。这种方法分离培养的BMSC大小均匀,纯度较高,Pittenger等[4]在过密度梯度离心法分离培养的BMSC在第1代纯度可达95%,第2代达98%。因此该法被广泛采用。②贴壁筛选法:即全骨髓法,是根据BMSC贴壁生长而造血系细胞悬浮生长的特性,通过定期换液除去不贴壁细胞,收集贴壁生长BMSC,其纯度可达95%。目前多用这两种方法,细胞的粘附特性仍是分离和纯化BMSC的最基本原则,物理性富集后塑料器皿内的贴壁培养仍是分离BMSC的最基本方法,更好的分离方法还有待于进一步的探索。 3 BMSC的表面标志及鉴定 3.1 表面标志到目前为止,BMSC的表面抗原具有非专一性,它表达了间质细胞、内皮细胞和表皮细胞的表面标志。主要包括:①粘附分子,如CD166、CD54、CD102、CD44、CD106等。②生长因子和细胞因子受体,如IL-1受体、IL-3受体、IL-4受体、IL-6受体、IL-7受体、干扰素γ受体、肿瘤坏死因子α等。③整合素家族成员,包括CD49a、CD49b、CD49c、CD29、CD104等。④其它,如CD90、CD105等。不表达造血细胞的表面标志,如CD34、CD45、CD14、CD3、CD4、CD8等,也不表达与人白细胞抗原识别有关的共刺激分子B721、B722及主要组织兼容性复合物Ⅱ类分子如人白细胞DR 抗原等[5,6]。此外,BMSC自身还能产生一些造血及非造血的生长因子、白细胞介素和化学激动因子,但除细胞因子是持续性产生外,其它的仅仅在受到刺激后表达,BMSC还能产生一系列的基质分子,包括纤维连接素、胶原、蛋白聚糖,还能表达基质2细胞,细胞2细胞等相互作用的反受体,其中特别有关的是对CD44强表达,CD44是多种配体的受体,其分别在骨、骨髓中对细胞外基质构建起着重要的作用[7,8 ]。 3.2 鉴定对BMSC进行鉴定可联合细胞化学和流式细胞分析方法[9]。细胞化学方法,BMSC具有独特的代谢特点,几乎所有细胞酸性萘酚酸酯酶及糖原阳性,酸

人骨髓间充质干细胞的生物学特性分析

[基金项目]广东省科技计划项目资助(2002A3020206)。?论著? 人骨髓间充质干细胞的生物学特性分析 陈建锋1,高 毅2,潘明新2 (1中国人民解放军第401医院,山东青岛266071;2南方医科大学珠江医院) [摘要] 目的 对人骨髓间充质干细胞(HM SCs)的生物学特性进行初步分析,为其临床应用奠定基础。方法 抽取4例健康人髋骨内骨髓5~20m l,密度梯度离心法分离HM SCs。体外培养扩增后流式细胞仪检测HM-SCs表面标记物;M M T法绘制生长曲线,计算细胞倍增时间;吉姆萨染色法检测细胞核型。结果 HM SCs表面标记物CD29、CD44、CD71、CD105、CD166、HL A-A BC、U EA-1阳性表达;CD34、CD45、HLA-DR阴性表达;生长曲线呈S 形,细胞倍增时间随代次增加而延长;核型分析显示第3、6代HM SCs的染色体数目未发生改变。结论 密度梯度离心法可得到纯度较高的HM SCs,表可达人类间充质干细胞的表型特征。HM SCs可在体外较长时期培养。在第7代之前细胞增殖旺盛,之后细胞增殖能力逐渐下降;在第6代之前染色体数目未发生改变。 [关键词] 人;骨髓;间充质干细胞;细胞培养 [中图分类号] R329.2+7 [文献标识码] A [文章编号] 1002-266X(2006)29-0001-03 Isolati o n an d cu ltivati o n of hu man bone marrow mesen chym al stem cells in vitro an d analysis of th ei r biological characterization s CH EN J ian-f eng,GA O Y i,PA N M ing-x in (401H osp ital of PL A,Qingdao266071,P.R.China) Abstract:[Objective]T o establish a sim ple and feasible method t o culture and pr olifer ate human bone marro w der ived mesenchy mal stem cells(HM SCs)in v itro and analyze t heir biological characterizations.[M ethods]HM SCs w er e isolated by combining gradient density centrifug ation w ith plastic adherence.T he g row th curves o f HM SCs w er e dr aw n by M T T assay,cell phenoty pes wer e detected by flow cyt ometry,cell doubling time was caculated,and cell kar yoty pes wer e measur ed by Giemsa staining.[Results]T he posit ive ex pr essio n of cell pheno type of HM SCs includes CD29,CD44,CD71,CD105,CD166,HL A-A BC,U EA-1,w hile the neg ative expression of cell phenoty pe in-cludes CD34,CD45,HL A-DR.T he g row th curve of HM SCs w as“S”shaped.T he cell doubling time pro longed w ith the passag es increased.T he chr omosome number of HM SCs of passage3and6were both46,same as human be-ings.[Conclusion]HM SCs of higher purity can be isolated by combining gr adient density centrifug ation with plastic adher ence,and maintain cell pheno types as human beings.T he pr olifer ation ability of HM SCs is strong before pas-sag e7,but decreases r apidly later.T he chr omosome number of HM SCs remains orig inal befo re passage6. Key words:human;bone mar row;m esenchymal stem cell;cell culture 骨髓组织可分为造血和基质两大系统。骨髓基质细胞是来源于骨髓基质的一种间充质细胞,在空间上起支持作用,在造血方面起精细的调节作用。体外获得足够的基质细胞是进行各项研究的基础。2004~2005年,我们对人骨髓间充质干细胞(HM SCs)进行了体外培养扩增,并对其表型、生长曲线、核型等生物学特性进行了初步分析。现报告如下。 1 材料与方法1.1 HM SCs的获取及培养 采集4例无血液疾病志愿者髂骨内骨髓5~20ml。5m l骨髓标本中加入5 ml的PBS,900g离心10min2次,以PBS制成4×107细胞数的悬液,取5m l加到5ml Percoll分离液(1.073g/ml)上,900g离心30min,吸取富含有核细胞的中间细胞层。将获取的单个核细胞加2倍量的PBS,900g离心5min,弃上清,以1×106/ml的密度接种于50ml培养瓶中,加入HM SCs完全培养基10 ml。待贴壁细胞达到80%~90%融合后,以1÷3的比例传代培养。 1.2 HM SCs表型鉴定 取传至第3~6代HM SCs, 1 山东医药2006年第46卷第29期

大鼠的骨髓间充质干细胞提取

大鼠的骨髓间充质干细胞提取 第一步,SD大鼠麻醉处死,75%乙醇皮肤消毒,无菌条件下迅速剪开两侧后肢皮肤及肌肉,取股骨及胫骨,浸泡在PBS中。 心得体会:①鼠龄4周,重量在160-200g之间的雄性SD大鼠。老鼠太老了,骨髓都分化的太厉害,没有年幼老鼠的骨髓这么有活力。雌的也行,但是雌的比较厉害,咬人。Wistar 大鼠行不行,也行,但是就品种而言,SD的生存力更强大。 ②我个人认为引颈处死不人道。麻醉药品为氯胺酮、安定、阿托品各一支混到一起,腹腔麻醉,保证30秒老鼠躺倒,安乐死。如果你水平够高,可以直接用注射器抽取心脏内的血液,可以减少手术中老鼠出血较多而影响术野不清的问题。 ③老鼠的两支前肢取下来也行,但老鼠太小,前肢更小,如果你的确需要大量的细胞取下来也无妨。浸泡的15ml的一次性离心管中(也可以用培养皿),管中提前加好含有青链霉素的PBS 10ml就行了,青链霉素的浓度为500U/ml,这样是区别于生长液中青链霉素浓度,组织抑菌是200-500U/ml,生长液抑菌是20-100U/ml。就当初步的消毒吧! ④整个手术过程要快,一般控制在20分钟之内,时间长了,骨髓会凝,不利于后期的冲洗。老鼠浑身都是宝,可以叫上研究脂肪的,嗅鞘的,心肌的其他人员一起来,把剩下不要的老鼠尸体给别人,做实验要巧花钱。一般老鼠一条腿的一根股骨就够种在一个60mm的皿里了,具体根据个人经验而言。 第二步,⑴将装有骨头的离心管置于紫外线下消毒30分钟后移至超净台,倒掉PBS后,再用含青链霉素的PBS清洗骨头三遍。 ⑵去掉骨头两侧的骨骺端,暴露出骨髓腔,用5ml的一次性注射器吸取5.2ml的细胞生长液,用针头插到骨头的一端冲洗,然后换另一端接着冲。将骨髓冲出的细胞生长液至60mm 培养皿中(皿最好倾斜45度),冲洗数次直至将绝大部分骨髓冲出。 ⑶换1ml注射器的针头,反复在培养皿中吹吸细胞悬液2-3次后再全部吸到无菌容器中,大约此时的细胞悬液为5ml。 心得体会: ①离心管中得骨头要用无菌的镊子夹取,放到一次性培养皿的皿盖上,皿是用来承装细胞悬液的,这样可以节省一个皿。 ②5.2ml的细胞生长液经过冲骨髓后或多或少都会有一些残留在骨髓中,所以到最后可能就剩下5ml细胞悬液了,甚至更少,如果不够5ml,可以加至5ml,这样是方便你计数用的。冲洗的过程中以骨腔颜色变白为标准,基本3-4次就差不多。培养皿倾斜45度是为了在冲洗和吹打过程让较大的杂质停留,方便去除的,相对保持细胞悬液的清晰度。 ③换用1ml的针头是为了能更好的打散细胞,当然这个过程要轻柔,避免用力破坏细胞。无菌容器最好是光滑的,因为在转移细胞悬液的时候会存在细胞的丢失,临床上经常使用的抗生素瓶子就非常好用,但是要经过严格的清洗和消毒。 ④以上的细胞生长液5ml具体配制为 DMEM(90%)+胎牛血清(10%)+L-VC(忽略不计)+青链霉素(忽略不计) 低糖DMEM液(含有glutamine的,Gibco公司的,500ml一瓶,大约60元)浓度90%,5ml细胞生长液中大约需要4.5ml

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