药动课
教学大纲药代动力学
358.036.1药物代谢动力学教学大纲一．前言药物代谢动力学是药理专业的一门专业课．是研究药物体内过程，即体内药量随时间呈动态变化的一门学科。
通过学习，要求学生掌握药物代谢转化的基本知识，掌握药物体内变化过程和体内药物浓度与药理作用强度之间的关系并能运用数学方程定量描述，从而为设计或改进给药方案，提高药物疗效，减少毒、副反应及进行新药的开发研究打下基础。
教学内容主要包括药物代谢和药物动力学两部分。
总学时为54，理论课38学时，实验课16学时。
二、教学内容和要求第一篇药物代谢第一章概论目的要求：了解药物代谢研究的内容及任务以及在药理专业教学中的作用．时数：2学时教学内容：药物体内转运与生物转化过程随时间变化的规律及相互关系．药物代谢对研究药物活性或毒性变化，药物不良反应的发生，临床合理用药以及解释某些发病机理和设计新药等方面提供理论根据。
第二章药物代谢部位及其酶系目的要求：掌握药物代谢反应的发生部位及其催化的酶系。
时数：2学时教学内容：药物生物转化主要在肝脏进行。
生物转化的酶系主要分布在微粒体，其次在可溶性部位，少数在线粒体：肝微粒体混合功能氧化酶系及其对药物的氧化过程。
第三章药物代谢反应的类型目的要求，掌握药物代谢反应的阶段(相)及其反应类型时效，8学时教学内容：药物代谢一般分为非结合和结合代谢，I相代谢反应主要有微粒体酶系及非微粒体酶系的氧化，还原以及水解，'相反应为结合代谢；各类代谢反应过程。
第四章影响药物代谢的主要因素目的要求：熟悉影响药物代谢的因素，包括化学因素、生物因素及人为因素。
时数：2学时教学内容：药物代谢酶系受到药物抑制和诱导而影响代谢速率，酶系诱导剂和抑制剂在临床治疗上的应用，药物首过作用对药理作用的影响，影响药物代谢的生物因素包括种属，个体、遗传因素等及疾病状况。
第五章药物代谢的研究方法目的要求：了解药物代谢的研究方法、原则和技术。
时数：2学时教学内容：药物代谢的研究方法包括体内法和体外法；生物样本中药物代谢产物的分离检测：实验动物的药物代谢研究结果对人体情况的推断。
药动学软件PPT课件
药物治疗监测
定期监测患者的药物治疗效果和不良 反应，及时调整用药方案。
05
04
药物相互作用
分析患者正在使用的其他药物与当前 用药的相互作用。
案例三：某药物经济学研究的成本-效果分析
成本分析
评估药物治疗的成本，包括药 品成本、治疗费用、护理费用 等。
成本-效果分析
计算药物治疗的成本与效果比 值，评估不同治疗方案的经济 效益。
药动学软件的功能与特点
药物代谢动力学模型建立
总结词
该功能用于建立药物在体内的代谢动力学模型，模拟药物在体内的吸收、分布、代谢和排泄过程。
详细描述
药动学软件通过输入药物的基本信息，如分子量、溶解度、吸收率等，以及生理参数，如体重、血流 量等，自动构建出药物在体内的代谢动力学模型。该模型能够预测药物在不同个体内的效果和安全性 ，为临床用药提供科学依据。
药动学软件的应用领域
新药研发
药物代谢动力学研究
药动学软件可模拟药物在体内的吸收、分布、代谢和排泄过程，为新药研发提供重要参 数，如半衰期、清除率等。
药物相互作用预测
通过药动学软件的模拟，可预测新药与其他药物或食物的相互作用，有助于避免潜在的 药物安全问题。
临床用药指导
个性化给药方案制定
根据患者的生理特征和疾病状态，药动学软 件可为医生提供个性化的给药方案，提高治 疗效果并降低不良反应。
根据个人偏好和工作流程，进行软件 设置，如界面布局、默认参数等。
系统要求
了解并确保计算机系统满足软件运行 的系统要求，如操作系统版本、硬件 配置等。
文档与帮助
阅读软件用户手册和在线帮助文档， 以便更好地理解和使用软件功能。
数据输入与处理
数据准备
生物药剂学与药物动力学(生物制药专业)-已修订
生物制药专业《生物药剂学与药物动力学》课程教学大纲课程名称：生物药剂学与药物动力学课程代码：05101902 课程类型：限制性专业课总学时：54 学分：3实验（训）学时：12 自主学习学时：4考核方式：分散一、课程教学目标生物药剂学是生物制药专业的一门主要专业课程。
它是研究药物及其剂型在体内的吸收、分布、代谢、排泄过程，阐明药物的剂型因素，机体生物因素和药物疗效间相互关系，并应用动力学原理与数学处理方法，定量描述药物在体内动态变化规律的学科。
它的基本目的是：对体内过程进行定量描述，正确评价药剂质量，设计合理剂型、处方及生产工艺，为临床合理用药提供科学依据，使药物发挥最佳治疗作用。
通过本课程的教与学，力求使理论与实际相结合，不仅培养学生具有生物药剂与药物动力学的基本理论、基本知识和基本技能，而且培养学生独立分析和解决问题的能力及严谨的科学作风。
为从事药学及临床药学工作，保证药品质量，合理用药，充分发挥药效，降低毒副反应，以及研究探讨新剂型和新制剂，更好地为卫生保健事业服务打下良好的基础。
二、教学内容与学时分配第一章绪论[目的要求]1.掌握生物药剂学的定义与研究内容；2.掌握剂型因素与生物因素的含义；3.熟悉药物的体内过程；4.了解生物药剂学研究在新药开发中的作用。
[教学内容]1.生物药剂学的定义；2.药物的体内过程；3.生物药剂学研究内容；4.生物药剂学的发展；5.生物药剂学与相关学科的关系。
[教学方法] 课堂讲授法[讲课时数] 3学时第二章口服药物的吸收[目的要求]1.了解生物膜的结构2.掌握药物通过生物膜的转运机制3.熟悉胃肠道的结构、功能4.掌握影响药物消化道吸收的生理因素、药物因素和剂型因素5.熟悉口服药物制剂作用快慢的主要原因[教学内容]1.药物的膜转运与胃肠道吸收2.影响药物吸收的生理因素3.影响药物吸收的物理化学因素4.剂型因素对药物吸收的影响5.口服药物吸收与制剂吸收与制剂设计[教学方法] 讲授法，实验[讲课时数] 15学时，课堂讲授学时9，实验学时6。
专业基础课-《生物药剂学与药代动力学》课程教学大纲
《生物药剂学与药代动力学》课程教学大纲适用对象：药学专业学生（学分：2 ；学时： 36小时）一、课程的性质和任务：《生物药剂学与药物动力学》是研究药物及其制剂在生物体内的动态过程并应用数学分析手段来处理的一门课程。
主要内容包括药物在生物体内吸收、分布、代谢和排泄过程及其影响因素。
采用隔室模型、非线性动力学或统计矩分析药物体内过程，并将药物动力学参数应用于新药研发。
生物药剂学和药物动力学。
二者既相互独立又相互联系，生物药剂学是解析药物体内过程的机制的学科，而药物动力学是定量描述药物体内过程的学科。
本课程要求学生掌握影响药物体内吸收、分布、代谢和排泄四个过程的生理因素和剂型因素。
计算药物动力学参数的方法。
熟悉生物药剂学原理在制剂设计尤其是缓控释制剂中的应用。
了解药物的生物利用度和药物动力学在临床药学和新药研发中的应用。
教材选用刘建平主编《生物药剂学与药物动力学》（第5版），人民卫生出版社2016年出版。
二、教学内容和要求（含每章教学目的、基本教学内容和教学要求）：三、课程的重点和难点：1、各种药代动力学模型的定义,使用,和参数的计算。
2、不同的剂量和给药方案计算。
四、参考性教学时间安排：五、实践（实验）教学环节（含实验项目、实践内容）：六、教材和主要参考书：《Basic Pharmacokinetics》，Michael C. Makoid, Phillip J. Vuchetich，Umesh V. Banakar. The Virtual University Press刘建平.《生物药剂学与药物动力学》第5版。
北京：人民卫生出版社，2016七、其他说明：注：1、表格不够可自行添加。
2、范文可参见教务处主页上教学大纲一栏中土木系教学大纲。
中药生物药剂学与药动学
中药生物药剂学与药动学
中药生物药剂学与药动学是中药学专业的重要课程之一，是研究中药制剂的剂型因素、生物因素和药效之间相互关系的科学。
其目的是为了正确评价中药制剂质量，设计合理的中药制剂处方和制备工艺，为临床合理用药提供科学依据，使中药制剂发挥最佳的治疗作用并确保用药的有效性和安全性。
中药生物药剂学的研究内容主要包括中药制剂的剂型分类、药物在体内的吸收、分布、代谢和排泄过程及其影响因素、药物在体内的动力学过程和药物制剂的生物利用度、药物制剂的有效性和安全性等。
具体而言，中药生物药剂学的研究方法包括动物实验法、离体实验法和人体试验法等。
动物实验法是最常用的方法之一，通过观察动物体内的药动学参数和生物利用度等指标来评价中药制剂的有效性和安全性。
离体实验法是通过体外实验的方法来研究药物在体内的吸收、分布、代谢和排泄过程，常用的人体肠道吸收模型、皮肤渗透模型等。
人体试验法是通过观察人体内的药动学参数和生物利用度等指标来评价
中药制剂的有效性和安全性，需要遵循严格的伦理要求和法律法规。
中药生物药剂学与药动学是一门涉及多个学科领域的综合性学科，其研究成果对于提高中药制剂的质量和临床疗效、推动中药现代化和国际化具有重要意义。
授课内容
主要
参考资料
张德昌主编，《医学药理学》，中国协和医科大学出版，1998
课后自我
总结分析
进展良好
备注
（对本章节的课堂教学需补充说明的内容）
授课内容
抗高血压药，抗心绞痛药
教学目的
和要求
掌握常用抗高血压代表药：利尿药、交感神经抑制药、血管扩张药的药理作用、作用机制、临床应用及主要不良反应和防治。
课后自我
总结分析
进度适中，学生接受良好
备注
（对本章节的课堂教学需补充说明的内容）
授课内容
传出神经系统药理学概论，胆碱能系统激动药和阻断药
教学目的
和要求
掌握传出神经系统的受体；熟悉传出神经药物的作用方式与分类；掌握胆碱能系统激动药和阻断药阿托品的药理作用、机制、药动学特点、主要临床应用和不良反应。熟悉毛果芸香碱、东莨菪碱、山莨菪碱的作用特点与应用。
2、阿托品中毒有哪些临床表现？如何救治？
3、东莨菪碱的主要用途是什么？
4、山莨菪碱的作用特点及主要用途是什么？
5、阿托品有哪些主要用途？分别阐述其药理作用依据。
6、东莨菪碱用于麻醉前给药为何优于阿托品？
主要
参考料
杨宝峰主编.药理学. 北京: 人民卫出版社. 第6版, 2003.
课后自我
总结分析
进度适中，学生接受良好
一、药动学基本原理
药动学模型：一室模型、二室模型、生理药动学模型
消除速率过程：一级动力学、零级动力学、米-曼氏速率过程
二、药动学参数及其基本计算方法
半衰期、表观分布容积、血药浓度-时间曲线下面积、生物利用度、总体清除率、稳态血药浓度与平均稳态血药浓度
药理学与药物动力学教学设计
药物动力学专著
如《药物动力学导论》、《临床药物动力学》等，提 供深入的理论知识。
辅助参考书籍
包括相关领域的期刊、论文集等，以扩大学生知识面 。
网络资源链接分享
专业数据库
如PubMed、CNKI等，提供海量的学术文献资 源。
在线课程与讲座
国内外知名专家的网络公开课、专题讲座等， 丰富教学内容。
实验教学
通过实验操作和数据分析 ，加深学生对理论知识的 理解和掌握，培养实践能 力和科研素养。
辅助教学
利用多媒体课件、网络教 学资源等现代化教学手段 ，提高教学效果和学习效 率。
02 教学内容与计划
药理学基础知识
药物的定义和分类
阐述药物的基本概念、分类方式及各类药物的特 点。
药物的作用机制
详细介绍药物如何与生物体相互作用，包括药物 的受体理论、酶抑制作用等。
动物准备
选取健康、体重相近的实 验动物，禁食不禁水12小
时。
采血
在预设的时间点从动物眼 眶或尾静脉采血，收集于
离心管中。
测定药物浓度
采用适当的方法（如分光 光度法）测定血浆中药物
的浓度。
给药
按照预设剂量和给药途径 给动物注射药物溶液。
分离血浆
将采集的血液加入肝素钠 溶液抗凝，离心分离血浆
。
数据记录
将每个时间点的药物浓度 记录在表格中。
。
药物动力学概念
研究药物在生物体内吸收、分布、 代谢和排泄等过程，以及体内药物 浓度随时间变化规律的科学。
学科关系
药理学与药物动力学相互关联，共 同为临床合理用药提供理论依据。
课程目标与要求
药理学3药动学
药理学3药动学
生 物 转化 （biotransformation）
又称代谢或药物转化，是指 药物在体内发生的化学结构 改变。转化后的药物活性降 低或失去药理活性，极性增 加，易于排泄。
药理学3药动学
生物转化的部位及其催化酶
•生物转化的主要部位是肝脏。 •生物转化由肝微粒体细胞色
药理学3药动学
药物通过生物膜的转运
• 细胞膜主要由脂类（磷脂、胆固醇与糖脂） 和蛋白质组成。
• 大多数极性（离子化程度较强）药物难于 通过脂质双层，而脂溶性药物可以通透。 小分子药物可从膜孔透过膜。
• 药物通过生物膜的能力主要决定于药物的 脂溶性、解离度及分子量，其转运机制可 分为被动转运和载体转运两大类。
---是指体内药物或其代谢物排出体外 的过程，它与生物转化统称为药物消 除（elimination）。
药理学3药动学
载体转运 ---是指细胞膜上的载体与药物结合，并
载运它到膜另一侧的过程。
• 主动转运：又称“上山”或逆流转运。 特点是：①逆浓度梯度或逆电化学梯度 透过细胞膜 ②细胞膜的载体对药物有特 异的选择性 ③消耗细胞能量 ④以同一载 体转运的两种化合物可出现竞争性抑制 ⑤转运速度有最高限度。
代谢酶的活性，增加自身或其他药物的代谢速率。 苯巴比妥是典型的酶诱导剂。
(2) 酶的抑制：某些化学物质能抑制肝微粒体药物
代谢酶的活性，减慢其他药物的代谢速率。红霉 素是酶抑制剂。
3. 生理因素与营养状态 生物转化有明显的种属差 异、种族差异和个体差异
4. 病理因素
药理学3药动学
排 泄（excretion）
药理学3药动学
pKa值的概念
• pKa值——是弱酸性或弱碱性药物在50% 解离时溶液的pH值。注意：pKa值不是药 物自身的pH值。药物离子化程度受pKa值 及所在溶液的pH值决定。
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3.4狗的取血法 股动脉取血：
第4节 唾液、胆汁和尿液收集法
4.1 狗颚下腺排泄插管法 [操作步骤] 狗经麻醉后仰卧位固定在手术台上， 向后肢静脉内插入一静脉插管，需要时可通过插 管进行追补麻醉，由下颚部开始进行颈部剃毛， 皮肤切开，找到颚下腺排泄管、舌下腺排泄管， 舌神经及鼓索神经，在颚下，腺排泄管作一小口， 然后插入聚乙烯管，固定结扎，在舌神经头端结 扎、切断，保留鼓索神经，当刺激舌神经外周端 时有唾液流出。 [注意事项]为便于观察刺激引起的唾液在管内上升 的高度，可在管的末端注入红墨水等带色液体。
4.2.2.2 慢性实验 [操作步骤] 缝合腹壁切口。
[注意事项]手术完毕后，橡皮囊及纱布包好。取胆 汁时打开此包，通过T形管自由端将胆汁从橡皮囊 中抽出，再换以消毒棉花纱布。液收集法 4.3.1 大鼠代谢笼法 [操作步骤] 选择体重150~250g雄性大鼠预选使之 适应代谢笼的生活环境，实验时，用普通水灌胃， 并轻压下腹部排空膀胱，然后灌胃或注射给药， 给药完毕后，立即将大鼠放入代谢笼，收集并记 录给药后0~30min，30~60min，60~90min的尿量。 [注意事项]大鼠在实验前一天供给充足的饮水量。
也可采用交替切割尾静脉方法取血。每次可取 0.3~0.5ml。三根尾静脉可交替切割。 或用硫喷妥钠50mg/kg麻醉，按上述方法尾尖取血。
需要全血时，应事先将抗凝剂至于采血管中，如用血 细胞混悬液立即与生理盐水混合。
第三节
大鼠取血法
大鼠的捉持法
腹腔注射法 腹部向上，头呈低位 右腹侧下腹部刺入皮下， 沿皮下向前推进3~5mm， 然后刺入腹腔， 此时有抵抗力消失感觉 针头保持不动状态下，推 入药液， 一次注射量为0.1~0.2 ml/10g 体重。
2.3 肌内注射法 （1）大鼠、小鼠、豚鼠因肌肉少，很少作肌内注 射给药，必要时可注射于股部肌肉。小鼠一侧药 液注射量＜0.4ml，针头选用5~7号。 （2）兔注射于肌肉较发达的臀部肌肉或腹部肌肉， 固定动物后，右手持注射器与肌肉呈60°角刺入 肌肉注射，为防止药液进入血管，应在注射前回 抽针拴，如无回血，则可注药，注射完毕，用手 轻揉注射部位，帮助吸收。狗、猴与兔相似。
5.2 注射麻醉药物的用法 [注意事项] 使用全身麻醉时，一定要正确掌握用药剂量，在 麻醉过程中注意保暖，静脉注射需缓慢，浓度适 中，冬季作实验前应将药液加温到体温温度。 麻醉浓度不够时，必须经过一定时间才能补足麻 醉剂，补加剂量一次不宜超过原注射量的 20%~25%。
5.3动物的处死 （1）颈椎脱位法： 豚鼠，则为左手倒持豚鼠用右手掌尺或木棒猛击 颈部，使颈椎脱位，迅速死亡。 （2）断头、毁脑法：常用于蛙类。可用剪刀剪去 头部，或用金属探针，经枕骨大孔破坏大脑和脊 髓而致死。大鼠和小鼠也可用断头法处死。 （3）空气栓塞法：术者用50~100ml注射器，向 静脉血管迅速注入空气，气体栓塞心腔和大血管 而使动物死亡。兔和猫致死的空气量为10~20ml， 狗为70~150ml。
图1-2 豚鼠灌胃法
1.4 兔灌胃法 一人就坐，将兔的躯体夹于两腿之间，左手紧握 双耳，固定前身，另一人将开口器横放在兔上下颌之 间，固定在舌面上，然后将导尿管经开口器中央小孔 ，沿上颚壁慢慢插入食管15~18cm，注入药液，再注 入10ml清水。
图1-3 兔灌胃法
1.5 狗灌胃法
在驯化下，将插管从鼻腔或口腔插入食管内 给予液体药物。
4.2 胆汁收集法 4.2.1 兔胆汁收集法 [操作步骤] 麻醉后仰卧位固定于兔手术台上， 颈部剪毛，沿颈正中线切开皮肤，分离左侧 迷走神经（因左侧迷走神经分支支配肝）， 穿线备用。 十二指肠上端的背侧可见以黄绿色较粗的肌 性管即胆总管。
4.2.2 胆总管插入法 4.2.2.1 急性实验 [操作步骤] 大鼠称重，--腹腔注射---麻醉仰 卧固定，---腹中线切开----十二指肠----追踪 胆总管----在乳头部上方3~5cm处---胆总管 完全暴露----穿过两根线----扎紧---胆管切口 插管----固定----收集胆汁
（3）兔：兔儿耳缘静脉脉注射比较容易，注射前 先剪去注射部位的毛，用酒精棉球涂擦耳缘静脉 部位皮肤，以左手拇指与中指捏住固定耳尖部， 食指放在耳下垫起兔耳。右手持带有6~8号针头 的注射器，尽量从血管远端刺入血管，（不一定 有回血）注射时，针头先刺入皮下，
（5）狗：以麻醉的狗可选用股静脉给药，未麻醉 的狗应用前肢皮下头静脉或后肢隐静脉注射，注 射前先除去注射部位的毛，扎紧橡皮带时静脉充 盈，针头朝向心端刺入静脉，回抽针拴，有回血 即可推注药液。
常用实验动物的一些生理常数
小白鼠 指 标 适用体重 (kg) 0.018~ 0.025 0.12~0.20 0.3~0.5 1.5~2.5 2~3 5~15 大白鼠 豚 鼠 家 兔 猫 狗
各种实验动物的麻醉和处死 5.1各种实验动物的麻醉方式 （1）吸入麻醉： 于口鼻处放置一50ml针筒（已抽去针栓），内
放置乙醚棉球可追加麻醉时间，一般可维持30min 以上。 （2）注射麻醉：方法有静脉、肌处、腹腔和皮 下淋巴囊等注射方法。小鼠、兔、大鼠、狗对巴 比妥类药物的肝代谢能力依次递减。 （3）局部麻醉：浸润麻醉、阻滞麻醉和椎管麻 醉常用0.5%~1%普鲁卡因注射液，表面麻醉宜用 2%丁卡因溶液。
1. 灌胃法 1.1 小鼠灌胃法 灌药量一般为0.1~0.3 ml/10g体重
图1-1 小鼠灌胃法
图1-2 豚鼠灌胃法
1.2 大鼠灌胃法 一次灌胃量一般在1~2 ml/100g
1.3 豚鼠灌胃法
豚鼠 体重＜ 200g以下 者 ， 灌 胃方法与大鼠相同， 体重 ＞ 200g以 上时 ， 应用 木 制开口器和导尿管灌胃。 插入食管8~10cm，注入药液。 再注入清水2ml或一些空气
（3）眼眶取血法：左手持鼠，拇指与食 指捏紧头颈部皮肤，使鼠眼球突出， 右手持弯曲镊子或止血钳，钳夹一侧 眼球部，将眼球摘除，鼠倒置，头部 向下，此时眼眶很快流血，将血滴入 预先加有抗凝剂的玻璃管内，直至流 血停止。此时由于取血过程中动物未 死，心脏不断跳动，一般可取鼠体重 4%~5%的血液量，是一种较好的取 血方法，但只适用一次性取血。
I 实验动物的一般技术 第一节 第二节 第三节 第四节 第五节 第六节 常见实验动物的捉持和给药方法 注射给药法 动物取血法 药理学试验中有关药品的基本知识 实验设计的基本知识 实验记录
实验动物的一般技术
第一节 常见实验动物的捉持和给药方法 经口给药 口服 灌胃
口服法 药物掺入饲料或溶于水中， 由动物自由摄取， 为了保证药物的剂量准确性，应使用 灌胃法。 供选择的动物有小鼠、大鼠、豚鼠、 兔、猫、狗等动物。
鼠尾刺血法
（2）眼球后静脉丛取血法 1%肝素溶液浸泡 取血时，左手持鼠，拇指与中指抓住颈部皮肤， 食指按压头部向下，阻滞静脉回流，使眼球后 静脉丛充血，眼球外突。 从内眦部刺入，沿内下眼眶壁，向眼球后推进 4~5mm旋转吸血针头，切开静脉丛，血液自 动进入吸血针筒，拔出吸血针，放松手压力， 出血可自然停止。
大鼠取血法 （1）剪毛取血法：将清醒鼠装入深颜色 的布袋中，布袋将鼠身裹紧，露出尾巴， 用手先将尾巴尖部摸几下，稍停片刻，尾 静脉血即可流出，用手轻轻地从尾根部向 尾尖挤捏，可以取到一定量的血。取血后， 先用酒精棉球压迫止血，并立即用6%火 棉胶涂于伤口处，使伤口外结一层薄膜。
也可采用交替切割尾静脉方法取血。每 次可取0.3~0.5ml。三根尾静脉可交替切 割。 或用硫喷妥钠50mg/kg麻醉，按上述方 法尾尖取血。 需要全血时，应事先将抗凝剂至于采血 管中，如用血细胞混悬液立即与生理盐 水混合。
1皮下注射法 （1）小鼠
注射药量不超过0.1~0.2ml/10g。
（2）大鼠 与小鼠注射基本相似，常注于背
部及大腿部下。 注入药量不超过1ml/100g体重.
2.2皮内注射法 注射器沿表皮浅层插入，注射药液。 如果成功，在注射部位有一圆形白色的小皮丘。 大鼠注射部位一般选用背部或腹壁部的皮肤。 猴的注射部位选用上眼睑皮肤。 针头选用4号，注射药液每个皮丘0.1ml。
4.3.2 导尿管法 [操作步骤]体重相近的健康雄兔1只，称重，用 50ml/kg灌胃，给予水负荷。腹腔注射20%乌拉坦 5ml/kg麻醉，麻醉后背部固定于手术台上。用充 满生理盐水的无菌导尿管(蘸少许液体石蜡)，从 尿道插入膀胱8cm左右，可见尿液滴出即可，用 胶布将导尿管固定于兔台上，轻压腹部使膀胱内 积尿排尽。开始收集药前30min和给药后的尿量。
腹主动脉取血法
静脉注射法 （1）小鼠和大鼠： 一次注射量0.05~0.1ml/10g体重。大鼠还可 以用舌下静脉注射或麻醉后切开大腿内侧皮 肤股静脉注射后颈外静脉注射给药。
3.3兔的取血 （1）兔耳缘静脉取血： 小血管夹子夹紧耳根部 持粗针头从耳尖部的血管逆回流方向入静 脉取血，或用刀片切开静脉， 血液自动流出，取血后棉球压迫止血， 一般取血量为2~3ml，压住侧支静脉，血液 更容易流出， 取血前耳缘静脉涂擦液体石蜡，可防止血 液凝固。
第三节 动物取血法 3.1 小鼠、大鼠取血法 （1）剪毛取血法：将清醒鼠装入深颜色的布袋中， 布袋将鼠身裹紧，露出尾巴，用手先将尾巴尖部摸几 下，稍停片刻，尾静脉血即可流出，用手轻轻地从尾 根部向尾尖挤捏，可以取到一定量的血。取血后，先 用酒精棉球压迫止血，并立即用6%火棉胶涂于伤口 处，使伤口外结一层薄膜。
（4）大量放血法 1）鼠可用摘除眼球，从眼眶动静脉大量放血致死。 2）猫和猴可在麻醉状态下切开颈三角区暴露颈动 脉，用两把止血钳子夹住，插入动脉插管，而松 开心脏侧的钳子，压迫胸部，尽可能大量放血。 3）麻醉狗也可恒向切开股三角区，切断股动静脉 血液喷出，同时用自来水冲洗出血部位，使股动 静脉出口畅通，3~5min动物死亡，采集病理切片 标本宜用此法。