实验 蛋白质标准曲线的制作
蛋白标准曲线的制作
蛋白标准曲线的制作蛋白标准曲线是实验室常见的一种实验方法，用于定量测定蛋白质的含量。
制作蛋白标准曲线的过程并不复杂，但需要严格按照操作步骤进行，以确保实验结果的准确性和可靠性。
首先，准备实验所需的材料和试剂。
这些材料包括蛋白标准品、蛋白定量试剂盒、比色皿、移液器、离心机等。
在准备材料的过程中，要确保所有的试剂和仪器都是干净的，并且在实验操作过程中要严格避免污染。
接下来，按照蛋白定量试剂盒的说明书，准备蛋白标准品的稀释液。
通常情况下，蛋白标准品会提供一系列不同浓度的标准溶液，我们需要按照一定比例将这些标准溶液稀释成不同浓度的样品。
在稀释的过程中，要注意使用精确的移液器，并严格按照比例稀释，以确保每个标准溶液的浓度准确无误。
然后，将稀释好的标准溶液加入比色皿中，再加入蛋白定量试剂盒提供的染色试剂。
染色试剂的作用是与蛋白质结合，形成有色化合物，从而可以通过光密度测定仪器来测定蛋白质的含量。
在加入染色试剂的过程中，要轻轻摇匀比色皿，确保试剂充分混合。
接着，使用光密度测定仪器测定每个标准溶液的吸光度。
在测定过程中，要注意每个比色皿中的溶液要充分均匀，避免气泡和悬浮物的干扰。
测定完成后，记录下每个标准溶液的吸光度数值。
最后，根据吸光度数值绘制蛋白标准曲线。
通常情况下，吸光度与蛋白质浓度呈线性关系，我们可以利用这一特性绘制标准曲线。
将吸光度数值作为纵坐标，蛋白质浓度作为横坐标，通过连接各个标准溶液的数据点，就可以得到蛋白标准曲线。
在整个制作蛋白标准曲线的过程中，要严格按照操作规程进行，确保实验过程的准确性和可重复性。
此外，实验结束后要对实验产生的废液和废料进行正确处理，以确保实验室的安全和环保。
总的来说，制作蛋白标准曲线是一项常见但重要的实验操作，通过这个方法可以准确测定样品中蛋白质的含量，为后续的实验和研究工作提供可靠的数据支持。
希望本文的介绍能够对您有所帮助，祝您实验顺利！。
双缩脲法测定蛋白质浓度标准曲线的绘制
0.000 0.0 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0 1.2
蛋白质浓度/（微克）
的绘制 样液1
样液1加1ml
卵清蛋白
卵清蛋白加1ml
(A595nm)
0.140
考马斯亮蓝法测定--蛋白质浓度
4.0 ？ 0.180
4.0 ？ 0.369
0.120 0.100 0.080 0.060
0.040
y = 0.002x - 0.006 R² = 0.969
A 线性
线性
0.020 0.000 (0.020) 0
1浓度/(微克/ml)
A 线性 (A)
1.2
（微克）
A
线性 (A)
线性 (A)
60
微克/ml)
双缩脲法测定蛋白质浓度——标准曲线的绘制 管号 试剂 2mg/ml卵清蛋白液/ml 蒸馏水/ml 双缩脲试剂/ml 蛋白质浓度/(mg/ml) A 0 0.0 3.0 2.0 0.0 0.000 1 0.3 2.7 2.0 0.2 0.245 2 0.6 2.4 2.0 0.4 0.345 3 0.9 2.1 2.0 0.6 0.398 4 1.2 1.8 2.0 0.8 0.488 5 1.5 1.5 2.0 1.0 0.574
充分混匀，在540nm比色
考马斯亮蓝法测定蛋白质浓度——标准曲线的绘制 管号 试剂 标准蛋白液/ml 0.9% Nacl/ml 考马斯亮蓝染液/ml 蛋白质浓度/(微克/ml) A 0 0.0 1.0 4.0 0 0.000 1 0.1 0.9 4.0 10 0.009 2 0.2 0.8 4.0 20 0.041 3 0.3 0.7 4.0 30 0.077 4 0.4 0.6 4.0 40 0.083 5 0.6 0.4 4.0 50 0.123
蛋白质标准曲线a595
蛋白质标准曲线a595蛋白质的浓度是实验中常需要确定的一个重要参数，而蛋白质标准曲线a595就是一种用于测定蛋白质浓度的常用方法。
蛋白质标准曲线a595是利用波长为595纳米的紫外-可见光吸收特性来测定蛋白质浓度的一种方法。
在实验中，首先需要制备一系列已知浓度的蛋白质溶液，然后测定它们在595nm波长下的吸光度，并根据吸光度与浓度的关系确定蛋白质浓度的标准曲线。
制备蛋白质标准曲线前，首先需要选择一种合适的蛋白质作为标准样品。
常用的标准样品有牛血清白蛋白（BSA），人血清白蛋白（HSA）等。
这些蛋白质具有高纯度、易得、稳定等优点，可以作为标准样品来制备蛋白质标准曲线。
制备标准曲线的方法有多种，以下是一种常用的方法：1.准备一系列已知浓度的蛋白质溶液。
通常可以从高浓度开始，按等差或等比例逐步稀释来得到不同浓度的蛋白质溶液。
每个浓度的蛋白质溶液都需要重复制备，以保证实验数据的准确性。
2.使用595nm的波长，将每个已知浓度的蛋白质溶液分别置于紫外-可见光分光光度计或酶标仪中测定吸光度。
在测定吸光度时，需要使用空白对照来校正系统和试剂的吸光度。
3.将吸光度数值绘制在坐标系中的纵轴上，将已知浓度绘制在坐标系中的横轴上。
每个浓度的蛋白质溶液所对应的吸光度数值与浓度呈现出一定的关系，通常是线性关系。
通过绘制吸光度与浓度的散点图，并使用最小二乘法进行线性拟合，可以得到蛋白质标准曲线的方程。
4.利用蛋白质样品的吸光度测量数据和标准曲线的方程，可以计算出蛋白质样品的浓度。
在使用蛋白质标准曲线a595进行测定时，需要注意以下几点：1.需要选择合适的波长。
对于大多数蛋白质溶液来说，595nm波长是一个适用的选择，但对于特定的蛋白质可能需要进行调整。
2.需要注意标准曲线的线性范围。
在制备标准曲线时，应该选择涵盖待测样品浓度的范围来进行制备标准曲线。
3.注意样品的预处理。
在测定吸光度之前，需要对样品进行一定的处理，例如去除悬浮物、除去背景色素等。
bca法测蛋白浓度标准曲线
bca法测蛋白浓度标准曲线BCA法测蛋白浓度标准曲线。
BCA法是一种常用的蛋白质浓度测定方法，其原理是利用蛋白质与铜离子和蛋白质还原剂在碱性条件下形成紫色螯合物，通过比色测定蛋白质浓度。
为了准确测定样品中蛋白质的浓度，需要建立标准曲线，以便将待测样品的吸光度值转化为蛋白质浓度。
本文将介绍如何通过BCA法建立蛋白质浓度标准曲线。
首先，准备工作。
在进行BCA法测定蛋白质浓度之前，需要准备好蛋白质标准品、BCA试剂盒、96孔板、移液器、比色皿等实验器材和试剂。
蛋白质标准品通常是已知浓度的牛血清蛋白（BSA），可以根据需要稀释成不同浓度的标准溶液。
BCA试剂盒中包含BCA试剂A和BCA试剂B，需要按照说明书中的方法配置成工作液。
96孔板用于将标准溶液和待测样品加入，移液器用于分配液体，比色皿用于吸光度测定。
其次，制备蛋白质标准曲线。
首先将BCA试剂A和BCA试剂B按照说明书中的比例混合制备成工作液，然后将不同浓度的BSA标准溶液分别加入到96孔板中，每个浓度加入3个重复孔。
接下来加入适量的BCA工作液，混合均匀后，放置在37°C恒温箱中孵育一定时间。
孵育结束后，用比色皿在570nm波长下测定各孔的吸光度值，记录下吸光度值和对应的蛋白质浓度。
然后，绘制标准曲线。
将吸光度值作为横坐标，蛋白质浓度作为纵坐标，绘制出各个浓度点的标准曲线。
通常情况下，吸光度值与蛋白质浓度呈正相关关系，可以通过线性回归分析得到标准曲线的方程。
标准曲线的斜率和截距可以用于计算待测样品的蛋白质浓度。
最后，利用标准曲线测定待测样品的蛋白质浓度。
将待测样品加入到96孔板中，每个样品加入3个重复孔，然后加入适量的BCA工作液，混合均匀后，放置在37°C恒温箱中孵育一定时间。
孵育结束后，用比色皿在570nm波长下测定各孔的吸光度值，利用标准曲线的方程计算出待测样品的蛋白质浓度。
通过以上步骤，我们可以成功建立BCA法测蛋白浓度的标准曲线，并且利用该标准曲线准确测定待测样品中蛋白质的浓度。
考马斯亮蓝法测蛋白质含量
标准曲线制作—考马斯亮蓝法测卵白质含量之迟辟智美创作一、标准曲线一般用分光光度法测物质的含量，先要制作标准曲线，然后根据标准曲线查出所测物质的含量.因此，制作标准曲线是生物检测分析的一项基本技术.二、卵白质含量测定方法1、凯氏定氮法2、双缩脲法3、Folin-酚试剂法4、紫外吸收法5、考马斯亮蓝法三、考马斯亮蓝法测定卵白质含量—标准曲线制作（一）、试剂：1、考马斯亮蓝试剂：考马斯亮蓝G—250 100mg溶于50ml 95%乙醇，加入100ml 85% H3PO4，用蒸馏水稀释至1000ml,滤纸过滤.最终试剂中含0.01%（W/V）考马斯亮蓝G—250,4.7%（W/V）乙醇，8.5%（W/V）H3PO4.2、标准卵白质溶液：纯的牛血清血卵白，预先经微量凯氏定氮法测定卵白氮含量，根据其纯度同0.15mol/LNaCl配制成100ug/ml卵白溶液.（二）、器材：1、722S型分光光度计使用及原理（）.2、移液管使用（）.（三）、标准曲线制作：1、10ug、20 个点为ug、30 ug、40 ug、50 ug、60 ug），在坐标轴上绘制标准曲线.1）、利用标准曲线查出回归方程.2）、用公式计算回归方程.3）、或用origin作图，测出回归线性方程.即A595nm=a×X( )+6一般相关系数应过0.999以上，至少2个9以上.4）、绘图时近两使点在一条直线上，在直线上的点应该在直线两侧.（四）、卵白质含量的测定：样品即所测卵白质含量样品（含量应处置在所测范围内），依照把持步伐1把持，测出样品的A595nm，然后利用标准曲线或回归方程求出样品卵白质含量.一般被测样品的A595nm值在0.1—0.05之间，所以上述样品如果A595nm值太年夜，可以稀释后再测A595nm 值，然后再计算.（五）、注意事项：1、玻璃仪器要洗涤干净.2、取量要准确.3、玻璃仪器要干燥，防止温度变动.4、对比：用被测物质以外的物质作空白对比.药品的配制（磷酸缓冲液的配制）一、药品的配制步伐（一）、实验准备：1、准备所需的药品和玻璃仪器.2、洗涤.（怎样洗涤算干净？）（二）、计算：1、百分比浓度计算：1)、G/V比例如配1% NaCl，称1g NaCl溶于100ml 水.2）、V/V比：例如配75%乙醇100ml，75%×100%=100%×X, X=75ml.取75ml无水乙醇，加25ml蒸馏水.乙醇：乙醚：丙酮=2：1：2配500ml，各取200 ml，100ml，200 ml混合.3）G/V比：用的较少，如计算灰分中某种元素如Fe的含量.2、摩尔浓度计算：注：药品的分子量一般在标签中注明. 1）、0.1M或0.1mol/L NaCl配100ml.M=质量/体积（L）称取NaCl0.1×0.1×40=0.4g 摩尔数=G （g）/摩尔质量毫摩尔数=G（mg）/摩尔质量微摩尔数=G（ug）/摩尔质量称取NaCl0.1×0.1×40=0.4ug 3、混合溶液配制的计算：如配3uMEDTA，2.25mM NBT以及60uM 溶液100ml，用50mM磷酸缓冲液配制.注意：1、分别标定体积计算2、分别配制再混合，但总体积不能为100ml （三）、标量：1、根据需要选择分歧量程的天平根据要求去分歧精度的丈量器，如量筒或移液管.2、电子分析天平的使用.（四）、溶解：1、根据药品配置要求选择溶剂.蒸馏水，双蒸水，无离子水等.2、只能用烧杯溶解.注意加入溶剂只能加入总体积的2/3左右，剩余溶剂洗涤烧杯三次左右，直到洗涤干净.小知识：药品标签中一般标识有药品的溶解性能和分子式，可根据分子式和所学的知识判断药品的结构和性质特点（包括溶解性质）.如酸碱两性物质的配制（AA、卵白质、核苷酸等）如果溶解性能欠好可以用稀酸或稀碱增进溶解，但pH应在被要求的范围内.3、加热增进溶解，但注意应在配制的范围内有的药品还需水溶加热较好.如:配0.1%的淀粉，水裕加热（温度在80-90.C），过量会糊化.（五）、定容：1、用容量瓶定容；2、用玻璃棒引流或用小漏斗；3、用溶剂加入到接近刻度，然后用滴管加入到刻度.要求刻度与液体凹面相切为止（眼睛可视）；4、上下窑洞容量瓶几次，混合均匀即可.(注意不再定容了，防止溶液漏失落.)（六）、装入试剂瓶，贴上标签.标签应注明以下内容：药品浓度、名称、配制人、配制日期等.（七）、清理实验场所.二、磷酸缓冲液的配制.（一）、配制0.2mol/L即0.2M pH=6.8的磷酸缓冲液.用磷酸氢二钠—磷酸二氢钠做缓冲液.选用药品：Na2HPO4·12H2O（碱）和NaH2PO4·12H2O （酸）配缓冲液100ml.书中说明.（二）、计算：1、注：书中有注明配置的量.2、含有分歧结晶水的换算.书中配1/15mol/L的缓冲液配1L，书中用Na2HPO4·2H2O 需要11.87g/L但用Na2HPO4·12H2O需几多g？11.87=（178/358）×X，X=23.87g.（三）、分别配制缓冲液各100ml（根据需要确定配制的量）.即：0.2M Na2HPO4·2H2O和NaH2PO4·2H2O100ml.（四）、按书中的量配制取量再混合.如：pH=6.8，分别去缓冲对49ml和51ml.（五）、用pH试纸ceni索赔的缓冲液的pH值，检测配置是否准确.（六）如配50mM pH =6.8的缓冲液100ml ，以你配制的母液稀释即可.计算：50×0.1=0.2×1000×X （L）；X =0.025L；取0.2M pH=7.2的缓冲液25ml，用蒸馏水定容至100ml即可.。
蛋白质标准曲线制作
在96孔板中制作蛋白质标准曲线：Bradford法
编号
0 1 2 3 4 5 6 7 BSA标准液
10mg/ml
0 0.1 0.2 1 2 5 7.5 10
蛋白液体积（稀释后）0 1μL 2μL 10μL 20μ
L
5μL 7.5μ
L
10μ
L
蛋白液稀释到0.1μg/μL 蛋白液稀释到1.0μg/
μL
蒸馏水20μ
L 19μ
L
18μ
L
10μ
L
0 15μL 12.5μ
L
10μ
L
Bradford液200
μL 200μ
L
200μ
L
200
μL
200
μL
200μ
L
200μ
L
200
μL
先将BSA标准液10mg/ml也就是10μg/μl稀释十倍到1μg/μl，然后再稀释到0.1μg/μl。
根据所要做的组数和重复，确定需要稀释的体积。
如果每组做3个重复，那么则需要90.9μl的0.1μg/μL蛋白液；67.5μl的1μg/μl蛋白液。
10μL的BSA标准液10μg/μl+90μL的水=100μL的1μg/μl蛋白液；
10μL的1μg/μl蛋白液+90μL的水=100μL的0.1μg/μl蛋白液。
将各液体加入96孔板中，震荡摇匀之后，测其吸光度值。
体系的总体积为220μL，横坐标为蛋白的量，纵坐标是吸光度值。
待测蛋白液的体积是20μL，最后将浓度换算为mg/ml.
例：表中的吸光度值为每组三个平行实验的平均值
根据标准曲线和待测蛋白的吸光度值即可求出其浓度：。
蛋白质标准曲线绘制
蛋白质标准曲线绘制蛋白质标准曲线是生物化学实验中常用的一种技术手段，它可以帮助我们准确测定样品中蛋白质的含量。
在实验室中，我们通常使用分光光度计来测定蛋白质的含量，而绘制蛋白质标准曲线是进行这一测定过程中至关重要的一步。
接下来，我将为大家介绍如何绘制蛋白质标准曲线。
首先，我们需要准备一系列已知浓度的蛋白质标准溶液。
这些标准溶液的浓度应该尽量均匀地覆盖我们预期样品中蛋白质含量的范围。
通常情况下，我们会选择一系列浓度为0.1mg/ml、0.2mg/ml、0.5mg/ml、1mg/ml等的标准溶液。
这些标准溶液可以通过稀释已知浓度的蛋白质溶液来得到。
接下来，我们需要使用分光光度计来测定这些标准溶液的吸光度。
在进行吸光度测定之前，我们需要设置分光光度计的工作波长，通常情况下，蛋白质的吸光度测定波长为280nm。
在测定吸光度时，我们需要使用纯水作为空白对照。
将每种标准溶液和空白对照分别放入分光光度计中进行测定，记录下它们的吸光度数值。
在获得了各个标准溶液的吸光度数值之后，我们就可以开始绘制蛋白质标准曲线了。
通常情况下，我们会选择将标准溶液的浓度作为自变量，吸光度作为因变量，绘制出一条浓度与吸光度之间的曲线。
在绘制曲线时，我们可以使用Excel等软件进行数据处理和图表绘制，也可以手工绘制曲线。
绘制蛋白质标准曲线后，我们需要对曲线进行拟合，通常情况下，我们会选择线性拟合或者非线性拟合。
线性拟合通常适用于浓度较低的标准溶液，而非线性拟合适用于浓度较高的标准溶液。
通过拟合后，我们可以得到一条通过各个标准溶液数据点的曲线，这条曲线就是蛋白质标准曲线。
最后，当我们需要测定样品中蛋白质的含量时，只需要将样品的吸光度数值代入蛋白质标准曲线中，就可以通过曲线得到样品中蛋白质的浓度。
需要注意的是，在进行吸光度测定时，样品的浓度应该选择在标准曲线范围内，这样才能保证测定结果的准确性。
总之，蛋白质标准曲线的绘制是蛋白质含量测定过程中的关键一步，它可以帮助我们准确地测定样品中蛋白质的含量。
540nm蛋白质吸光度标准曲线
540nm蛋白质吸光度标准曲线随着生物技术的发展，蛋白质的定量分析在科研和生产中变得越来越重要。
蛋白质吸光度法是常用的蛋白质定量方法之一，其原理是利用蛋白质在特定波长下的吸光度与其浓度成正比的关系。
在蛋白质吸光度法中，540nm波长是常用的检测波长之一。
为了准确测定蛋白质的含量，需要构建一条540nm蛋白质吸光度标准曲线，以便根据吸光度值反推蛋白质浓度。
以下是构建540nm蛋白质吸光度标准曲线的步骤和注意事项。
一、实验原理1.1 吸光度法原理吸光度法是一种利用物质对光的吸收来测定物质浓度或者含量的分析方法。
在540nm波长下，蛋白质具有一定的吸光度，其吸光度与蛋白质的浓度成正比关系。
1.2 构建标准曲线原理构建蛋白质吸光度标准曲线的目的是为了根据待测蛋白质的吸光度值反推其浓度。
需要构建一系列浓度已知的蛋白质标准溶液，测定它们在540nm波长下的吸光度值，并绘制吸光度与浓度的标准曲线。
二、实验步骤2.1 制备蛋白质标准溶液准备一系列已知浓度的蛋白质标准溶液，可以使用已知浓度的蛋白质标准品溶解制备。
2.2 测定吸光度值分别取一定体积的蛋白质标准溶液，用分光光度计在540nm波长下测定其吸光度值，记录下吸光度值。
2.3 绘制标准曲线将已知浓度的蛋白质标准溶液的浓度及对应的吸光度值作图，绘制吸光度与浓度的标准曲线。
三、实验注意事项3.1 蛋白质标准品的选取选择纯度高、浓度准确的蛋白质标准品，并确保其溶解均匀。
3.2 测定条件的控制在测定吸光度值时，需要控制好温度、光程和样品吸光度的线性范围，避免因为实验条件不同导致数据的偏差。
3.3 数据处理在绘制标准曲线时，需要对数据进行统计分析，同时需确保各点数据的准确性。
四、实验结果的应用构建好的540nm蛋白质吸光度标准曲线可以应用于后续蛋白质含量的测定。
通过测定待测蛋白质样品的吸光度值，根据标准曲线反推出其浓度，从而进行蛋白质的定量分析工作。
本文介绍了540nm蛋白质吸光度标准曲线的构建方法及实验注意事项，希望能对需要进行蛋白质定量分析的实验人员提供帮助。
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三、实验仪器和试剂
（一）试剂
1. 考马斯亮蓝试剂：
考马斯亮蓝G－250 100mg溶于50mL 95%乙醇， 加入100mL 85% H3PO4，用蒸馏水稀释至 1000mL,滤纸过滤。最终试剂中含0.01% （W/V）考马斯亮蓝G—250,4.7%（W/V）乙 醇，8.5%（W/V）H3PO4。
2. 标准蛋白质溶液：
纯的牛血清血蛋白(BSA)，预先经微量凯氏定氮 法测定蛋白氮含量，根据其纯度同0.15mol/L NaCl配制成1mg/mL蛋白溶液。
（二）器材
721型分光光度计、移液管（1mL，5mL）、试 管及试管架
四、实验步骤
试管编号 1mg/mL标准蛋白（mL） 0.15mol/L NaCl （mL）
定。中间不要用蒸馏水润洗比色杯，仅用待测液润洗2～3次即可。 另外，还要注意，玻璃仪器要洗涤干净并保持干燥，避免温度变化；
取量要准确；分光光度计十分灵敏，测定时要认真仔细。
六、问题与思考
1．为何制作蛋白质标准曲线？ 2．酶活的一般定义？在提取过程，为何要测
定蛋白质浓度？
曲线的直线范围内（0～1000µg），根据所测 定的A595nm，利用标准曲线或回归方程求出相 当于标准蛋白质的量（µg），从而计算出未知 样品的蛋白质浓度（mg/mL）。
一般被测样品的A595nm值在0.1—0.5之间，所以 上述样品如果A595nm值太大，可以减少取样量， 如果仍然很大，可以定量稀释后再进行测定。
Coomassie Dye-Based 蛋白质定量
PROTEIN
O CH2CH3
Coomassie G-250
NH
+
CH3 C
CH3
+ CH3CH2 N
CH2
N CH2CH3 CH2
SO3-
SO3Na
Acid
BLUE
Amax = 595nm
Protein - Dye Complex
蛋白质和染料结合是一个很快的过程，约2min 即可反应完全，呈现最大光吸收，并可稳定1h， 之后，蛋白质―染料复合物发生聚合并沉淀出 来。
1. 利用标准曲线查出回归方程。
2. 用Excel作图，测出回归线性方程。即 A595nm=a×X。相关系数一般大于0.9。
3. 未知样品蛋白质浓度的测定：
测定方法同上，取合适体积的未知样品(奶粉， 1g奶粉溶于30mL 0.15mol/L NaCl，3000rpm 离心5分钟，取上清待用 )，使其测定值在标准
五、注意事项：
（一）蛋白质与考马斯亮蓝G-250结合的反应十分迅速，在2min左 右反应达到平衡；其结合物在室温下1h内基本稳定。如果测定要求 很严格，可以在试剂加入后的5－20min内测定光吸收，因为在这段 时间内颜色是最稳定的。
（二）测定中，蛋白－染料复合物会有少部分吸附于比色杯壁上， 实验证明此复合物的吸附量是可以忽略的。测定完后可用乙醇将蓝 色的比色杯洗干净。
01234 5 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 1 0.8 0.6 0.4 0.2 0
考马斯亮蓝试剂 （mL）
55555 5
充分摇匀，20min内以0号管为空白对照,在595nm测定
A595nm
－
以A595nm为纵坐标，标准蛋白含量为横坐标 （六个点为200µg、400 µg、600µg、800 µg、 1000 µg），在坐标轴上绘制标准曲线。
实验一 蛋白蓝（Coomassie Brilliant Blue）法测定蛋白质浓度的原理和方 法
二、实验原理
一般用分光光度法测物质的含量，先要制作标 准曲线，然后根据标准曲线查出所测物质的含 量。
考马斯亮蓝法测定蛋白质浓度，是利用蛋白质 ―染料结合的原理，定量的测定微量蛋白浓度 的快速、灵敏的方法。
考马斯亮蓝G－250存在着两种不同的颜色形式， 红色和蓝色。它和蛋白质通过范德华力结合， 在一定蛋白质浓度范围内，蛋白质和染料结合 符合比尔定律（Beer’s law）。此染料与蛋白 质的碱性氨基酸（特别是精氨酸）和芳香族氨 基酸残结合，通过测定595nm吸光度可测定蛋 白质的含量。另外，反应体系中呈现的颜色变 化主要是G-250分子间疏水相互作用形成的聚集 体聚集程度不同引起的。单体形式表现为蓝色， 单体和聚集体共存时表现为绿色，全为聚集体 形式呈现为棕红色。影响因素主要为溶液体系 中磷酸、乙醇、NaCl的含量。
1．Bradford法由于染色方法简单迅速，干扰物质少，灵敏度高，现 已广泛应用于蛋白质含量的测定。
2扰．测有定些，阳但离大子量，的如去K污+、剂N如a+T、ritMongX2+-、10(0N、HS4D)2SS等O严4、重乙干醇扰等测物定质。不干 3．测定时仅使用一套比色杯（2个），并从低浓度到高浓度依次测