临床微生物标本采集注意事项
微生物检验标本的正确采集及注意事项
微生物检验标本的正确采集及注意事项正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。
可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。
为此应正确采集各种细菌学标本。
一、血液标本的采集1、采集方法（1）75%酒精清洁局部皮肤。
（2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm（直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。
（3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。
（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。
2、注意事项（1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。
（2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，也应在下次用药前采血。
切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。
（3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。
（4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。
（5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。
（6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。
（7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。
（8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。
二、骨髓的采集1、采集方法在病灶部位或髂前（后）上脊处严格消毒后抽取骨髓1ml，注入血培养瓶内。
2、注意事项（1）骨髓内含有大量的单核巨噬细胞系统的细胞，因而骨髓培养对伤寒病人的诊断较血培养优越。
微生物标本采集
微生物标本采集是一项基础且重要的工作，对于临床诊断、疾病防控以及科学研究都具有至关重要的作用。
本文将详细介绍微生物标本采集的基本原则、采集方法、注意事项以及标本的保存与运送。
一、微生物标本采集的基本原则1.及时性：微生物标本采集应在患者出现症状或怀疑感染微生物时尽快进行，以便获取具有代表性的标本。
2.无菌操作：采集微生物标本时，必须遵循无菌操作原则，避免污染标本，确保检测结果的准确性。
3.适量：采集的微生物标本应足够进行所需检测，同时避免过量采集，减少对患者造成的不适。
4.适宜的标本类型：根据微生物的生长特性、感染部位以及检测目的，选择适宜的标本类型。
5.标本标识：采集的微生物标本应进行清晰、准确的标识，包括患者姓名、标本类型、采集时间等信息。
二、微生物标本采集方法1.皮肤、黏膜表面：使用无菌棉签或无菌注射器，轻轻擦拭或抽取皮肤、黏膜表面的分泌物。
2.血液：采用无菌注射器抽取静脉血，避免皮肤消毒剂污染。
3.呼吸道标本：采用无菌吸痰管或纤维支气管镜采集呼吸道分泌物；咳痰患者应采集清晨第一口痰。
4.尿液：采集清洁中段尿，必要时可采用导尿术。
5.粪便：采集粪便标本时，应避免粪便与尿液混合，采用无菌容器。
6.生殖道分泌物：男性患者采用无菌拭子采集尿道口分泌物；女性患者采集宫颈分泌物。
7.组织标本：在无菌条件下，切取感染部位的组织，放入无菌容器。
三、微生物标本采集注意事项1.采集前准备：了解患者的病情、用药情况以及采集部位，确保采集时机适宜。
2.消毒：采集部位应进行充分消毒，避免污染标本。
3.避免污染：采集过程中，避免触及非无菌部位，确保无菌操作。
4.采集量：根据检测需求，采集适量的标本。
5.标本保存：采集后的微生物标本应尽快送检，无法及时送检的标本应妥善保存。
四、微生物标本保存与运送1.温度：根据微生物的生长特性，选择适宜的保存温度。
一般而言，细菌标本应在4℃保存，病毒标本应在-70℃保存。
2.时间：微生物标本应在采集后尽快送检，如无法及时送检，应按照相关规定保存。
临床微生物样本采集规范
临床微生物样本采集规范临床微生物样本采集规范1. 范围和目的本规范适用于临床微生物样本的采集、处理和管理，旨在保证样本采集的质量和规范性，确保临床微生物诊断结果的准确性和可靠性。
2. 术语和定义（1）微生物：指包括细菌、真菌、病毒、支原体、立克次体、螺旋体等在内的微小生物体。
（2）临床样本：指从患者体内采集的各种生物标本，如血液、口腔、鼻咽部、骨髓、尿液、痰液、脑脊液等。
（3）采集容器：指用于采集临床样本的容器，如血液采集管、尿样瓶、培养皿等。
（4）采集套装：指一次完整的样本采集过程中所需的所有采集工具和材料。
3. 采集前准备（1）确定采集部位、时间和采集方式，注意患者的生命体征和病情变化。
（2）准备好所需的采集套装和采集容器，在样本采集前做好标签，并核对患者信息。
（3）认真阅读所有相关规范和实验室要求，确保样本采集符合要求。
4. 采集操作步骤（1）根据采集部位和样本类型选择合适的采集套装。
（2）采集前应让患者了解采集的目的和过程，并获得其同意。
（3）采集前要检查采集部位，患者的身体状态和生命体征，确保采集过程安全和无痛苦。
（4）采血时应注意采血量、采血速率、采血部位、采血方式等。
（5）尿样采集时应注意尿样的采集量、采集时间、采集方式、保护好样本的完整性和纯度。
（6）痰液采集时应注意痰液的颜色、黏度、量和纯度，选择合适的采集器具和采集方式。
（7）脑脊液采集时应注意采集部位、采集方式、采集量、采血顺序和样本处理标准等。
（8）其他临床样本采集时，应根据具体要求和操作规范，选择合适的采集方法和器具。
5. 样本运输和储存（1）在采集后，立即将样本放入相应的采集容器中，尽快送至实验室进行处理。
（2）若无法立即处理样本，应按要求在采集容器中注明采集时间和采集者信息，并存储在规定温度下，以便后续处理。
（3）运输过程中应遵循规范，确保样本不泄漏、不污染，并尽快送至目的地。
（4）储存过程中应保持样本的纯度和完整性，控制储存温度，在保质期内使用。
微生物培养标本留取的注意事项
微生物培养标本留取的注意事项正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。
正确的采集、运送、保存与处理临床微生物检验标本，对于保证临床微生物检验工作质量至关重要。
采集标本的一般原则1、采集最佳时间是病程早期、急性期，最好在使用抗菌药物之前采集，以提高病原菌的检出率。
2、用于微生物培养的标本在收集时应注意严格的无菌操作和及时送检。
3、无菌操作采集标本时应尽量避免或减少感染部位附近皮肤或黏膜常居菌群的污染，以防止外源性细菌污染标本。
在采集血液、脑脊液、胸腹水或关节液等无菌标本时，应注意对周围和局部皮肤的消毒，严格执行无菌操作。
对于采集与外界相通的腔道标本时，如窦道等，为防止受皮肤表面正常菌群的污染，应从窦道底部采集标本送检，而非从窦道口取标本，以免造成病原菌与正常菌群相混淆致使临床误诊。
采集标本均应盛于无菌容器内送检，盛装标本的容器不能使用消毒剂处理，标本中也不得添加防腐剂，以免降低病原菌的分离率。
临床标本的采集1、下呼吸道分泌物（痰液）:要求患者早上起床后用净水漱口，立即从下部呼吸道咳出第一口痰，吐在无菌塑料痰盒中，及时送检。
对于咳痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，使其咳嗽，待咳嗽后用无菌棉拭子采集标本。
气管镜下采集:用气管镜在肺炎病灶附近用导管吸引，或者使用支气管刷直接取得标本。
2、尿液（中段尿）:早晨起床后第一次尿，取中断尿留于专用尿培养杯中（注意无菌操作），女性病人应清洗外阴部后再留取；标本需及时送检。
3、尿道分泌物:男性患者用75%酒精棉球消毒尿道外口后，轻轻积压阴茎体，继而流出来的分泌物，需用无菌男性拭子蘸取分泌物,半小时内送检。
4、阴道、子宫颈分泌物:应由医生采集，标本采集前24h-48h禁欲、禁盆浴、禁阴道灌洗及局部上药。
标本采集时，常规无菌操作消毒外阴或尿道口，用扩阴器扩张阴道，用无菌棉拭子拭取宫颈口或宫颈后穹窿的分泌物，不可碰及阴道壁，放入无菌拭子管中。
5、脓液：先尽可能的除去坏死的脓液，然后用蘸有生理盐水的棉拭子蘸取感染灶血肉交接部位标本，要尽量多取一些，然后将棉拭置于无菌试管中，及时送检。
临床微生物标本的采集与运送图文
临床微生物标本的采集与运送在医学临床的诊断过程中，微生物检验是不可缺少的一环。
临床微生物标本的采集与运送是保证准确诊断的关键步骤之一。
本文将介绍临床微生物标本的采集与运送的一些注意事项。
1. 标本类型临床微生物标本通常包括血液、尿液、粪便、血培养瓶、脑脊液、切口分泌物等。
2. 采集方法2.1 血液标本采集血液标本时，一定要做好消毒工作。
选择采血部位后，用酒精或碘酒消毒，再用无菌针头采血，避免受污染。
血液标本采集后可以分成两份，一份用于血常规，另一份用于血培养。
2.2 尿液标本收集尿液标本时，要让患者用清洁肥皂清洁外阴部，再用无菌尿杯收集尿液，避免手部直接触摸尿杯和尿液。
尽量将尿液标本送至检验室的时间控制在2小时之内。
2.3 粪便标本采集粪便标本时，要确定所采集的粪便样本来自于患者的肛门临近处。
最好不要使用纸巾，而是用无菌容器收集粪便。
粪便标本采集窗口为3天。
2.4 血培养瓶标本采集血培养瓶标本时，首先要选择采血部位进行消毒，然后将血培养瓶插入采血针器上，打开外部装置，使血液顺利流入血培养瓶中。
采集集中在早晨时段，每次采集2-3个血培养瓶。
2.5 脑脊液标本采集脑脊液标本需要医生进行，患者应严格卧床休息，医生在患者腰部，采用穿刺的方式进行脑脊液的采集。
2.6 切口分泌物标本采集切口分泌物标本时，需要选择无菌医用棉签，消毒采集部位。
在采集过程中，应尽量避免被采集部位感染污染到。
3. 运送方法临床微生物标本的运送是重要的环节。
标本在采集后应及时送至细菌学检验实验室。
并且在运送过程中需要遵循以下几点：3.1 收集后尽早送检临床微生物标本的采集窗口不长，应尽早将标本送至检验室进行分析。
3.2 标本容器和包装标本容器必须选择无菌容器，容器体积大小要相应合适。
送检前，要核对标本标签与标签上的医学记录是否一致。
标本包装时，应采取干燥、保温、防震、防漏、防碎的原则。
3.3 运输温度不同种类的标本，其运输温度介于4-25摄氏度之间。
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则一、临床微生物标本采集基本原则1.标本来源与采集部位临床微生物标本主要来源于患者体内的各类体液、组织和生物材料。
采集部位包括呼吸道、消化道、泌尿生殖道、皮肤、创伤、手术部位等。
采集时应选择感染灶、病变部位或易感部位，以确保标本的代表性和可靠性。
2.采集工具与消毒采集微生物标本时，应使用无菌、一次性采集器具。
采集器具在使用前应进行消毒处理，以确保不会引入外来微生物污染。
消毒方法可选用高温、高压、化学消毒剂等。
3.采集操作步骤（1）准备工作：评估患者病情，向患者及家属解释采集目的和注意事项，取得患者知情同意。
（2）佩戴个人防护装备：口罩、手套、护目镜或面罩。
（3）消毒：使用消毒剂对采集部位进行皮肤消毒。
（4）采集：根据不同标本类型，进行相应操作，如穿刺、刮片、抽取等。
（5）封装：将采集完成的标本放入无菌容器中，密封，注明患者信息、采集部位、日期等。
二、临床微生物标本运送基本原则1.标本容器与标记运送微生物标本时，应选用防漏、耐压、易保存的容器。
容器表面应清晰标记患者信息、采集部位、标本类型等，以便于实验室接收和处理。
2.运送条件与时间要求微生物标本应在采集后尽快送达实验室，一般要求在2-4小时内完成。
运送过程中，应保持标本容器密封，避免剧烈晃动，确保标本质量。
3.运送过程中的注意事项（1）夏季高温时，可采取冰袋降温措施，防止标本变质。
（2）注意标本容器不离手，避免摔碎或泄露。
（3）如需长途运输，应采取适当包装，确保标本在运输过程中不受损。
三、标本质量控制与标准化1.微生物实验室的质量管理体系实验室应建立完善的质量管理体系，包括人员培训、设备维护、检测方法、室内质量控制等，以确保检验结果的准确性和可靠性。
2.标本接收与处理实验室接收标本时，应核对标本信息，检查标本容器、运送条件等。
对标本进行登记、分类、编号，并按照标准化流程进行处理。
3.室内质量控制与外部质量评估实验室应定期进行室内质量控制，包括质控品的检测、方法比对、仪器校准等。
临床微生物标本采集作业指导书
临床微生物标本采集作业指导书一、引言本文档旨在提供临床微生物标本采集作业的指导，以确保标本采集的质量和准确性。
本指导书适用于医疗机构的相关工作人员，包括医生、护士和实验室技术人员等。
二、目的准确的微生物标本采集是诊断和治疗感染病例的重要环节。
本指导书的目的是提供清晰的指导，确保标本的采集过程符合规范，以减少错误和污染的风险，从而提高诊断的准确性。
三、采集前准备在进行微生物标本采集之前，需要做好以下准备工作：1.了解标本类型和采集方法：不同类型的标本需要采集不同的方法，例如血液标本、尿液标本和呼吸道标本等。
在采集前要了解每种标本的采集方法和要求。
2.准备采集工具和材料：根据标本类型和采集方法，准备好相应的工具和材料，例如采血针、尿液收集容器和标本袋等。
3.按照消毒和无菌要求准备采集区域：在采集前要确保采集区域干净、消毒和无菌。
根据需要，可以使用消毒剂和无菌覆盖物等。
四、标本采集步骤4.1 血液标本采集血液标本采集是常见的微生物标本采集方法之一。
下面是血液标本采集的步骤：1.确定采集部位：通常选择患者的上臂静脉作为采集部位。
2.消毒：用75%乙醇消毒采集部位，采用无菌棉球擦拭。
3.选择合适的采血针：根据患者的年龄和采血需要选择合适的采血针。
4.采集血液：在消毒后，用采血针穿刺患者的静脉，收集所需的血液量。
5.采集完毕后，用无菌棉球和胶布固定针头，然后将血液转移到标本管中。
6.标本管标记：在标本管上正确标记患者的信息和采集时间等。
4.2 尿液标本采集尿液标本采集常用于泌尿系统感染的诊断。
以下是尿液标本采集的步骤：1.洗手：采集前要洗手并戴好一次性手套。
2.选择合适的容器：选择容量合适的尿液收集容器。
3.女性患者：清洁外阴部，将尿液收集容器放置在外阴，以接收尿液。
4.男性患者：将尿液收集容器放置在清洁的阴茎上方，以接收尿液。
5.患者采集尿液：患者尽量采集中段尿，避免采集到开始或结束的尿液。
6.收集完毕后将尿液收集容器密封，标记患者的信息和采集时间等。
临床微生物标本采集
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血培养采集的时间和频率
①采血培养应尽量在抗菌药物使用之前，在24h内采集2～3套 血培养，每套包括1个需氧瓶+厌氧瓶。因为研究已证实，2～3 套血培养足以检测所有的菌血症和真菌血症。
②入院前2周内接受抗菌药物治疗的患者，连续3天，每天采 集2套，可选用能中和或吸附抗菌药物的培养基。
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【标本采集注意事项】
1 采集时间：应在急性期采样，以提高检出 率，应在抗生素应用前或停药一周后采集标本， 如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采 集。
2 送检：应立即送检，室温条件下不能超过 2h。如不能立即送检，则保存于4℃冰箱待送 出。
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化脓和创伤标本的微生物检验
采集前先用复合碘消毒周围皮肤。 【标本采集注意事项】 1 采集时间：应在用药之前采取。
2 送检：应立即送检。
3标本运送过程中必须保证其安全，防止溢 出，避免细菌污染。
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血管导管的微生物检验
一、标本送检指征 病人携带中心静脉导管超过48h，出现以下情
8. 鼻咽拭子法：用无菌拭子经鼻轻轻插入 鼻咽部后部，慢慢旋转拭子5s，吸收分泌物， 然后取出。
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【标本采集注意事项】
1 采集时间： （1）以晨痰为好。多数病人清晨痰较多，易
于采集。且清晨痰含有的病理成分较多。会增 加培养的阳性率。 （2）最好在应用抗菌药物之前采集标本。 2 送检 采集后应立即送检，以防止某些细菌在外环 境中死亡，室温保存≤2h 。做真菌培养的标 本如不能及时送检，可放4℃保存，以免杂菌 生长。 标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，16
对于痰量少或无痰的患者可采用雾化吸入 45℃10％NaCL水溶液，使痰液易于排出。对咳 痰少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，使13
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临床微生物标本采集注意事项一 .血液标本1.血液标本采集应尽可能抽取患者动、静脉血管中血液。
2.血液标本采集自留置管、中心静脉导管内，应在申请检验单上注明。
3.不管临床症状经历的严重程度，但患者血液中病原菌浓度水平相当低，因此临床应多次采集血液标本进行培养，但24h内一般不超过3次，成人每次血量10~20ml，可提高检出率。
二 .呼吸道标本1.上呼吸道标本 A.咽拭子：用无菌棉拭子直接擦拭咽后壁、扁桃体、或假膜边缘处。
B.口腔内溃疡：用无菌棉拭子直接在溃疡处采集标本。
C.鼻拭子：用无菌棉拭子插入鼻孔约 2.5cm，接触鼻黏膜采集。
2.下呼吸道标本采集①自然咳痰法：A.患者早上起床后用清水漱口，不要刷牙，收集从下呼吸道咳出的第二口痰，吐在塑料痰盒中。
B.痰量少或无痰的患者可采取雾化吸入10%NaOH水溶液，使痰液易于排出。
C.对于咳痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，使其咳嗽，待咳嗽后用无菌棉拭子采集标本。
②气管镜下采集法：用气管镜在肺炎病灶附近用导管吸引，或者使用支气管刷直接取得标本，但这种方法患者有一定痛苦。
三 .尿液标本 1.导尿虽然可以减少污染，但多次重复导尿可造成逆行感染，因此多采用中段尿，简单易行，又无感染的危险。
通常取晨起第一次尿送检。
2.女性：成年女性外阴部以肥皂水清洗，再用无菌水洗净，用无菌纱布擦拭，然后排尿弃去前段尿，留取中段尿3毫升，置于无菌容器内。
3.男性：用肥皂水清洗尿
道口，后用清水洗后取中段尿。
包皮过长者为防止包皮内细菌污染，可将包皮翻开冲洗后再取中段尿。
4.儿童：采集中段尿较困难。
如尿中细菌明显增多，高度怀疑尿路感染，无细菌则可否定，细菌数中度增加时，有必要用膀胱穿刺术或导尿采集尿液。
5.为确定菌尿是否来自肾脏，可通过膀胱镜，输尿管插管采集左右肾盂尿。
四 .大便标本1.自然排便采集法：自然排便后，可挑取新鲜粪便中有脓血、黏液部分的粪便约2-3克，粘液状大便取絮状物，盛于无菌的容器中或置于保存液中送检。
2.直肠拭子法：适宜不易获得大便或排便困难的患者及幼儿。
方法是将拭子前端用无菌甘油盐水湿润，然后插入肛门约4-5cm（幼儿约2-3cm）处，轻轻在直肠内旋转，檫取直肠表面粘液后取出，置于无菌试管或保存液中送检。
3.采集大便标本应在急性期，使用抗生素前进行，并要采集新鲜粪便。
五 .生殖道标本 1.男性应冲洗尿道口，采集从尿道口溢出的脓性分泌物或用男性专用拭子插入尿道内2-4厘米取分泌物。
2.前列腺液可用前列腺按摩法采集标本于无菌试管。
3.女性则用窥器扩张阴道，用无菌棉拭子可根据临床需要采集阴道、宫颈、宫内分泌物。
六 .脓液及创伤分泌物标本尽可能在应用抗生素前采集标本。
当创伤出血时，敷用药物在2小时内以及烧伤在12小时内不应采集标本。
采集标本时应注意分泌物的性状、色泽和气味。
标本采集需注意无菌操作，及时送检。
1.开放性感染和已破溃的化脓灶标本采集前先用灭菌生理盐水
冲洗表面污染菌，再用拭子蘸取或注射器吸取脓性分泌物，无菌试管送检。
2.慢性感染如污染严重，很难分离到致病菌，可取感染部位下层的组织，经研磨匀浆后分离培养。
3.瘘管内脓液：用灭菌棉拭子挤压瘘管弃取前端脓液后用灭菌容器收集脓汁。
4.眼结膜脓性分泌物：先用无菌生理盐水冲洗眼部，用灭菌棉拭子拭干，再用灭菌棉拭子采集分泌物。
分泌物较多时，用灭菌棉球擦拭，再用灭菌棉拭子取结膜囊分泌物，无菌试管送检。
5.耳、鼻、口腔分泌物：采集时易被黏膜上的正常菌群污染，所以采集标本时应尽量避免与周围黏膜接触。
6.闭索性脓肿：主要指皮肤化脓和皮下软组织化脓感染。
用碘酒和酒精消毒周围皮肤后，穿刺抽取脓液或分泌物无菌试管送检。
七 .脑脊液标本 1.通过腰椎穿刺术以无菌手续收集脑脊液3-5ml于无菌小瓶或无菌试管中。
2.脑脊液标本应立即送检，并要注意保温，不可置于冰箱保存，否则会使病原菌死亡，尤其是脑膜炎奈瑟菌、肺炎链球菌及流感嗜血杆菌。
3.所有的脑脊液培养标本接收后应立即接种至相应的培养基。
八 .穿刺液标本穿刺液多为浆膜腔液，包括胸腔积液（胸水）、腹腔积液（腹水）、关节液、心包腔积液、鞘膜腔积液等。
多因浆膜腔发生循环障碍、炎症、癌侵润等病变，腔内液体渗漏增加所致。
一般由临床医师在无菌操作下穿刺抽取，取5-10ml于无菌肝素抗凝小瓶中（0.5mg肝素可抗凝5ml标本），充分混匀后立即送检，不能有凝块。
九 .支原体标本 1.必需在用药前采集标本，支原体对
细胞表面有很强的亲和力，应尽可能多收集细胞，标本采集后应尽快接种，不可在室温或普通温箱久存，以免拭子干燥而致使支原体活力降低甚至死亡。
2.男性：用男性无菌拭子由前尿道1~2cm处取尿道分泌物，根据病情需要，也可取前列腺按摩液、精液。
3.女性：采集宫颈分泌物，标本采集时应先擦去宫颈口多余粘液，再用另一拭子在宫颈管内1~2cm处取宫颈分泌物。
取材时要在宫颈内旋转并至少停留20秒，以便获得较多的细胞。
4.如果必须用尿液做支原体培养，可留取清晨中段尿10~20ml，高速离心后，取沉淀物接种，但尿液支原体培养的阳性率明显低于尿道（或宫颈）分泌物。
5.整个采样过程应注意无菌操作。