大鼠颅骨缺损模型的建立
大鼠弥漫性脑损伤模型的具体方法及步骤
大鼠弥漫性脑损伤模型的具体方法及步骤(1)复制方法健康大鼠，雌雄不限，体重为300～350g。
1)落体撞击装置①有机玻璃管：长为2m、内径为19mm、外径为26mm的有机玻璃管，3点固定于墙上，其下端距地面15cm，以放海绵床和大鼠。
并在管壁上每10cm 钻一直径为5mm的小孔，对应两排，以减少空气阻力。
②打击垫片：直径为10mm、厚为3mm的圆形不锈钢片，用以制作弥漫性轴突损伤模型，另一种在其不锈钢垫片距中心2.5mm处钻一直径1.5mm的小孔，置入一不锈钢圆柱，使之高出垫片平面3mm以制作弥漫性脑损伤同时合并局灶性脑损伤动物模型。
2)脑损伤的方法大鼠经腹腔注射水合氯醛(按350～400mg/kg体重的剂量)或戊丨巴丨比丨妥丨钠(按50～60mg/kg体重的剂量)麻醉。
手术区域皮肤消毒，行气管插管，呼吸机辅助呼吸。
股动脉插管以记录动脉压，并监护心电、血压、脉搏、呼吸等变化。
将大鼠俯卧固定于一已知弹性系数的海绵床上，移至有机玻璃管下端，垫片正对有机玻璃管中央，有机玻璃管上方置一滑轮，在铜柱上端系一小绳，将滑轮调整至绳索跨过滑轮后铜柱处于有机玻璃管中央为止。
待动物开始苏醒，有肢体活动时，将400g重铜柱由1m 高处自由坠落于不锈钢垫片上，立即移开海绵床以免再次损伤，将大鼠移至手术台上接呼吸机给以呼吸支持。
观察打击中及打击前后动物的呼吸、心率及血压。
记录肢体活动、尿失禁、瞳孔改变及神经系统体征。
敲击后可选取3～24h间的时间段，快速断头取脑，记录蛛网膜下腔出血及肉眼所见的脑挫伤情况。
并将全脑浸泡于甲醛液中24h，固定好的脑作冠状切片，层厚2mm HE染色。
也可作心脑灌注，分别取左右顶叶皮层、海马、胼胝体、脑干等组织，处理后超薄切片，进行电镜观察。
(2)模型特点敲击后动物的死亡率在25％左右。
1)一般症状伤后动物表现为竖毛、尿失禁、四肢抽搐、单侧或双侧瞳孔散大、呼吸抑制等症状。
血压立即出现平均动脉压上升，然后是一段时间的低血压，并在30～60min内恢复到伤前水平。
我实验大鼠分级脑损伤模型的建立
文献标识码 ： Ａ
文章编号 ： １ ６ ７ １ ． ５ ８ ３ ７ （ ２ ０ １ ５ ） １ ２ — ０ ２ ５ ６ ． ０ １
Ａｂ ｓ ｔ ｒ ａ ｃ ｔ ： ０ｂ ｊ ｅ ｃ ｔ ｉ ｖ ｅ ： ｔ ｏ ｍａ ｋ ｅ ａ ｄ ｉ ｆ ｅ ｒ ｅ ｎ ｔ ｄ ｅ ｇ ｒ ｅ ｅ ｏ ｆ ｂ ｒ ａ ｉ ｎ ｉ ｎ ｊ ｕ ｒ ｙ ｍｏ ｄ ｅ １ ． Ｍｅ ｔ ｈ ｏ ｄ ｓ ： ｓ ｅ ｌ ｅ ｃ ｔ ｅ ｄ １ ０ ０ ｈ ｅ ａ ｌ ｔ ｈ ｙ ｍａ ｌ ｅ Ｓ Ｄ ｒ ａ ｔ ｓ ， ｗ ｅ ｒ ｅ ｄ ｉ ｖ ｉ ｄ ｅ ｄ
处 切 开头 皮 ，分 离 骨 膜 ，用 牙 科 钻 于 中线 旁 ２ ． ５ ｍｍ 开 出 一 直经 ５ ｍ ｍ 的圆形窗 口，保持硬脑 膜完整。假手术组开 口后 缝合 头皮 ，不撞击 ，手术组首先用 ２ ０ ｇ砝码从 １ ０ ｃ ｍ、２ ５ ｃ ｍ 处 撞 击 ，再 用 ３ ０ ｇ砝 码 从 ２ ５ ｃ ｍ 处 撞 击 ，分 别 致 轻 、 中 、重
ｉ ｎ ｔ ｏ ｎ ｏ ｒ ｍａ ｌ ｇ ｒ ｏ ｕ ｐ ，ｃ ｏ ｎ ｔ ｒ ｏ ｌ ｇ ｒ ｏ ｕ ｐ ，ｏ ｐ ｅ ｒ ａ ｔ ｅ ｄ ｇ ｒｏ ｕ ｐ ，ｂ ｒ ａ ｉ ｎ ｔ ｉ ｓ ｓ ｕ ｅ ｉ ｎ ｅ ａ ｃ ｈ ｇ ｒ ｏ ｕ ｐ ｗｅ ｒ ｅ ｏ ｂ ｓ ｅ ｒ ｖ ｅ ｄ ｂ ｏ ｔ ｈ ｖ ｉ ｓ ｕ ａ ｌ ｌ ｙ ａ ｎ ｄ ｕ ｎ ｄ ｅ ｒ
的现实意义 。本实验脑损伤模型 的制作 ，方法简单 ，条件可
控，具有可重复性 。 ３ ． ２既 往 的 自由落 体 硬 膜 外 撞 击 法 存 在 两 大 弊 端 ，一 是 手动控制砝码 撞击 大脑 ， 二是简单 以砝码重乘 以落高进行脑 损伤程度的分组，但这不能反应脑部所受到的外力量，很难 制作出理想的不同程度脑损伤模 型， 本实验则首先根据材料 应力 学公式计算 出冲 击应力 ，再采 用 电磁感 应模式控 制开 关 ，解决 了既往实验弊端，制作出可重复性的脑损 伤模 型， 为法医学进一步研 究脑 损伤 提供 可靠模 型。 参考 文献 ［ １ ］ Ｌ ｉ ｇ ｈ ｈａ ｔ ｌ ｌ Ｊ Ｗ． Ｃ ｏ ｎ ｔ ｒ ｏ ｌ ｌ ｅ ｄ ｃ ｏ ｒ ｔ ｉ ｃ ａ ｌ ｉ ｍｐ ａ ｃ ｔ ： ａ ｎ ｅ ｗ ｅ ｘ ｐ ｅ ｒ ｉ ｍｅ ｎ ｔ ａ ｌ ｂ ｒ ａ ｉ ｎ ｉ ｊｕ ｎ ｒ ｙ ｍｏ ｄ ｅ １ ． Ｎｅ ｕ ｒ ｏ ｔ ｒ ａ ｕ ｍａ １ ９ ８ ８ ； ５ （ １ ） ：
大鼠颅骨缺损模型的建立
取大鼠颅骨极限缺失模型，在每个SD大鼠颅骨上用直径5mm的模钻造成全颅骨缺损，不穿破大脑硬脑膜。
2%戊巴比妥钠40mg/kg腹腔注射麻醉，固定大鼠，头部碘伏消毒，正中切开皮肤约5-8mm，用带直径5mm钻头的电钻在头颅造成直径为5mm圆形骨缺损，骨缺损为颅骨全层缺损，但不损伤硬脑膜，在钻孔的过程中需要用无菌生理盐水冲洗钻头以降温。
将上述4材料放置入5mm颅骨缺损中，用5-0丝线缝合皮下层，消毒后用1#丝线缝合皮肤层。
术后保温直到大鼠苏醒，术后每日腹腔注射青霉素40万单位，连续3天，术后分笼正常喂养。
二、
1.4动物模型建立
大鼠腹腔麻醉后，3.5%用水合氯醛，按0.35/Kg用药，麻醉成功后，将大鼠俯卧位固定于操作台上，顶部去毛，75%酒精消毒，正中切口长约1.5cm，暴露颅骨并钻孔，直径8mm，保护好硬脑膜。
缝合骨膜，关闭切口。
术日及术后3天每天腹腔注射青霉素20万U。
大鼠股骨骨缺损模型步骤
大鼠股骨骨缺损模型步骤
【最新版】
目录
1.实验目的
2.实验材料
3.实验步骤
3.1 实验动物选择与准备
3.2 股骨骨缺损手术
3.3 术后护理与观察
4.实验结果与分析
5.实验结论
正文
一、实验目的
本实验旨在建立大鼠股骨骨缺损模型，以探讨股骨骨缺损的修复与再生机制，为临床治疗股骨骨缺损提供理论依据。
二、实验材料
1.大鼠：健康成年大鼠，品系、性别、年龄一致。
2.手术器械：手术刀、镊子、止血钳等。
3.麻醉药：氯胺酮。
4.骨缺损模具：用于制作股骨骨缺损的模具。
5.其他：消毒器械、消毒液、生理盐水等。
三、实验步骤
1.实验动物选择与准备
选择健康成年大鼠，分为实验组与对照组。
实验前对大鼠进行称重、分组，并进行麻醉。
2.股骨骨缺损手术
(1) 将大鼠仰卧在手术台上，充分暴露股骨部位。
(2) 使用手术刀在股骨上进行纵向切口，暴露股骨。
(3) 使用骨缺损模具在股骨上制作骨缺损。
(4) 将制作好的骨缺损部位进行冲洗，清除血迹和碎骨片。
(5) 缝合切口，将大鼠放回笼子中。
3.术后护理与观察
(1) 每天观察大鼠的精神、食欲、活动等情况，记录异常情况。
(2) 定期更换笼子中的垫材，保持清洁。
(3) 每周对大鼠进行称重，了解其恢复情况。
(4) 实验结束后，处死大鼠，取股骨进行病理检查。
四、实验结果与分析
通过对术后大鼠的观察和病理检查，分析股骨骨缺损模型的成功率以及大鼠的恢复情况。
大鼠创伤性脑损伤模型2
TBI模型建立步骤
一.麻醉。用20％ 乌拉坦注射液，按5 ml／kg在 实验前半小时腹腔注射麻醉。
二.暴露大鼠颅骨,固定撞垫。
大鼠顶枕部毛剪，常规 消毒后于顶部中线切开头皮 ，钝性剥开软组织、骨外膜， 暴露颅骨，在冠状缝与人字 缝中间置放撞垫，撞垫为一 直径10 mm、厚3 mm的不锈 钢圆片，通过一薄层牙科水泥 固定于大鼠颅顶。
二.脑创伤的模型
脑创伤的常用 建模方法
1.液压 冲损伤 模型
2.控制性皮 层撞击 模型
3.重物坠落 模型 (自由落体 脑损伤法)
4.爆炸冲击 波致脑外伤 模型
实验动物选择：雄性SD大鼠
30只(SPF级，川北医学院动物 实验中心提供)，平均质量(30025)g，共分2组，脑损伤组15只， 打击重力为250 g×1 m，假手 术对照组15只。
实验用品：
• 1.TBI落体损伤装置（支架、落体砝码、导引管、 定向光和撞垫5部分组成） • 2.外科操作器械3.20％乌拉坦注射液、注射器。 4.碘伏、75%酒精等常规消毒液。5、牙科水泥
4 6 5
TBI落体损伤装置
1.底座
2垂直住 3.连接条 4.砝码
3
2
7
5.定位孔 6.导引管 7.泡沫床
1
大鼠创伤性脑损伤模型的建立
讲解： 陈 怡 制作： 闵旭立 课题设计：夏中友
2013级3班
创伤性脑损伤( traumatic brain injury, TBI) 专指由外伤引
起的脑组织损害, 又称颅脑损伤或头部外伤。 社会意义：随着社会发展，交通、工矿机械所致创伤性 脑(traumatic brain Injury，TBI)的发生率逐年升高。研究其 致伤机制，对于救治TBI及其并发症具有重要意义。动物模 型的复制一直是探讨TBI发生机制和研究神经损伤 后修复的 重要组成部分 。因此,用简易行的方法创建TBI模型将使科研 事半功倍。
大鼠股骨骨缺损模型步骤
大鼠股骨骨缺损模型步骤1.动物选择与麻醉准备：在实验开始前，选择健康的成年大鼠作为实验动物。
在实施手术前，大鼠需要进行一般的麻醉准备，如禁食水和食物4-6小时，然后以麻醉药（如异氟醚）进行麻醉。
2.操作器材准备：准备好所需要的手术器械和材料，如手术刀、医用剪刀、钳子、缝线、针和缝线的皮肤清洗剂。
3.手术部位消毒：使用皮肤清洗剂对大鼠的手术部位进行消毒，确保手术区域干净无菌。
4.皮肤切割：在大鼠股骨近端进行中线垂直切割，将皮肤、皮下脂肪组织与肌肉切开，暴露出股骨。
5.缺损制备：使用尖头钝微锯骨刀或者电动骨锯，在大鼠股骨近端制作一个骨缺损。
缺损的大小可以根据研究的需要来确定，通常为3-5毫米。
6.处理骨缺损：根据实验设计的需要，可以选择对骨缺损进行特定处理。
例如，使用成骨细胞移植、骨替代物或生物活性分子等。
7.缝合创口：使用缝线和针将切割的皮肤和皮下组织进行缝合，确保创口处无菌，并加快伤口愈合。
8.术后护理：实施手术后，将大鼠观察和放置在干燥、温暖和舒适的环境中。
观察大鼠的活动、食欲、伤口愈合和其他不适症状。
9.骨缺损评估：在特定的时间点，可以通过断层扫描、X射线或组织学等方法来评估骨缺损部位的修复情况。
根据需要，可以选择不同的评估方法。
总结：大鼠股骨骨缺损模型是一种常用的实验动物模型，用于研究骨修复、再生和骨疾病治疗等方面的问题。
模型的步骤包括动物选择与麻醉准备、操作器材准备、手术部位消毒、皮肤切割、缺损制备、处理骨缺损、缝合创口、术后护理和骨缺损评估等。
通过建立此模型，可以更好地研究骨缺损修复的机制和方法。
大鼠脑缺血再灌注损伤模型造模方法
大鼠脑缺血再灌注损伤模型造模方法
方法简述：
体重230-260g雄性SD大鼠，禁食，自由饮水，麻醉，颈部去皮，仰卧位固定，颈正中线切口，沿胸锁乳突肌内缘分离肌肉和筋膜，分离左侧颈总动脉(CCA)、颈外动脉(ECA) 和颈内动脉(ICA)，在CCA 远心端和近心端及ECA处挂线备用。
用微动脉夹暂时夹闭ICA，然后近心端结扎CCA、ECA。
然后在距CCA分叉部4mm处剪一小口，将栓线插入到ICA, CCA远心端的细线轻轻系牢栓线，用眼科镊轻推栓线，从血管分叉处开始算距离，当插入深度在18mm时，结扎固定好栓线及ECA血管，后拔除栓线至ECA，再次扎紧ECA，缝合，术后给予青霉素抗炎。
注意事项：
1. 保温:60W白炽灯高度为37cm，直接照射能使肛温保持在37℃。
2. 推栓线时，要将血管放松至原来状态,且保证标记点在分叉处。
3. 栓线事先剪好。
4. 栓线不能在血管里反复进退，否则极容易造成蛛网膜下腔出血。
5. 插入线栓要轻柔熟练，速度尽可能快，以避免时间长了血管内血栓形成。
颅脑损伤大鼠模型构建方法
颅脑损伤大鼠模型构建方法
颅脑损伤大鼠模型的制备
建模方法：
1. 称量大鼠，腹腔麻醉，头部正中剃毛后用碘酒及酒精擦拭手术区域。
2. 沿头部正中稍偏右切开头皮约 2 cm，钝性分离软组织及骨外膜后暴露颅骨，在人字缝前方2 mm，颅骨中线旁2 mm，用颅骨钻打开直径为4 mm 的圆形骨窗，保持硬脑膜完好无损，采用自由落体撞击至脑挫伤的方法。
3. 用一个 40 g 的金属重物自 25 cm 高处垂直坠落，撞击置在硬脑膜上的圆柱体，致伤冲击力为1000 g·cm 造成右顶叶脑挫裂伤，致伤面积为4 mm × 4 mm，致重度脑损伤，然后用骨蜡封闭骨窗，缝合头皮。
4. 待大鼠苏醒后自由饮水，正常饲养。
5. 对照组仅作右顶叶相应部位颅骨开窗，不致伤。
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取大鼠颅骨极限缺失模型，在每个SD大鼠颅骨上用直径5mm的模钻造成全颅骨缺损，不穿破大脑硬脑膜。
2%戊巴比妥钠40mg/kg腹腔注射麻醉，固定大鼠，头部碘伏消毒，正中切开皮肤约5-8mm，用带直径5mm钻头的电钻在头颅造成直径为5mm圆形骨缺损，骨缺损为颅骨全层缺损，但不损伤硬脑膜，在钻孔的过程中需要用无菌生理盐水冲洗钻头以降温。
将上述4材料放置入5mm颅骨缺损中，用5-0丝线缝合皮下层，消毒后用1#丝线缝合皮肤层。
术后保温直到大鼠苏醒，术后每日腹腔注射青霉素40万单位，连续3天，术后分笼正常喂养。
二、
1.4动物模型建立
大鼠腹腔麻醉后，3.5%用水合氯醛，按0.35/Kg用药，麻醉成功后，将大鼠俯卧位固定于操作台上，顶部去毛，75%酒精消毒，正中切口长约1.5cm，暴露颅骨并钻孔，直径8mm，保护好硬脑膜。
缝合骨膜，关闭切口。
术日及术后3天每天腹腔注射青霉素20万U。