凝胶电泳技术ppt课件
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变性梯度凝胶电泳精品PPT课件

演讲人:XXXXXX 时 间:XX年XX月XX日
的序列差异都能被区分开。
凝胶变性剂浓度梯度的确定
在分析微生物群落的 PCR 扩增产物时,一般 先要用垂直电泳来确定一个大概的变性剂范围
垂直电泳和水平电泳
A :凝胶的变性梯度方向与电泳方向垂直。 B:左泳道,突变型等位基因;中,野生型等位基因;右,突变型与野生型等位基因
电泳时间的确定
一般采用时间间歇(timetravel)的方法,即 每隔一定时间加一次样品,从而使样品的电泳 时间有一个梯度,根据这个结果,确定最佳的 电泳时间
微生物生态学中应用的缺点
除了前面提到过的一些优缺点,分析微生物群落结构组 成是还存在以下缺点:
1、分析微生物群落结构组成时,有很多偏差。不同细菌 的基因组大小和核糖体 RNA 拷贝数不同;提取基因 组总 DNA 时细胞的裂解效率不同;DNA提取和纯化 时有偏差;PCR 扩增过程中有偏差。
2、DGGE一般只能分析 500 个碱基对以下的 DNA 片段, 因此得到的系统进化相关的信息就很少
PCR反应 16SrDNA 聚丙烯酰胺凝胶电泳 解链温度
解链温度
既使是很小的变化也会引起DNA片段Tm值 的改变,如单碱基替代可引起1.5℃的差异
DGGE 技术在一般的聚丙烯酰胺凝胶基础上, 加入了变性剂(尿素和甲酰胺)梯度,从而能 够把同样长度但序列不同的 DNA 片段区分开 来
根据以往经验,参考文献
染色方法的选择:
溴化乙啶(ethidium bromide, EB),SYBR Green I, SYBR Gold和银染法。
染色法的优缺点
EB 法染色的灵敏度最低,且致癌,但价廉。 SYBR Green I 和 SYBR Gold 相比 EB,能更
的序列差异都能被区分开。
凝胶变性剂浓度梯度的确定
在分析微生物群落的 PCR 扩增产物时,一般 先要用垂直电泳来确定一个大概的变性剂范围
垂直电泳和水平电泳
A :凝胶的变性梯度方向与电泳方向垂直。 B:左泳道,突变型等位基因;中,野生型等位基因;右,突变型与野生型等位基因
电泳时间的确定
一般采用时间间歇(timetravel)的方法,即 每隔一定时间加一次样品,从而使样品的电泳 时间有一个梯度,根据这个结果,确定最佳的 电泳时间
微生物生态学中应用的缺点
除了前面提到过的一些优缺点,分析微生物群落结构组 成是还存在以下缺点:
1、分析微生物群落结构组成时,有很多偏差。不同细菌 的基因组大小和核糖体 RNA 拷贝数不同;提取基因 组总 DNA 时细胞的裂解效率不同;DNA提取和纯化 时有偏差;PCR 扩增过程中有偏差。
2、DGGE一般只能分析 500 个碱基对以下的 DNA 片段, 因此得到的系统进化相关的信息就很少
PCR反应 16SrDNA 聚丙烯酰胺凝胶电泳 解链温度
解链温度
既使是很小的变化也会引起DNA片段Tm值 的改变,如单碱基替代可引起1.5℃的差异
DGGE 技术在一般的聚丙烯酰胺凝胶基础上, 加入了变性剂(尿素和甲酰胺)梯度,从而能 够把同样长度但序列不同的 DNA 片段区分开 来
根据以往经验,参考文献
染色方法的选择:
溴化乙啶(ethidium bromide, EB),SYBR Green I, SYBR Gold和银染法。
染色法的优缺点
EB 法染色的灵敏度最低,且致癌,但价廉。 SYBR Green I 和 SYBR Gold 相比 EB,能更
蛋白质凝胶电泳PPT课件.ppt

2.制备分离胶:按分离胶配制方法配好分离胶,缓慢注入胶 模中(占玻璃板的2/3),为了防止氧化,沿 玻璃板壁轻轻加一层水层(注意不能将胶冲 起),室温下聚合40min。
3. 制备浓缩胶:配制好3%浓缩胶。将胶模中上层水倾倒出 去,用滤纸吸干余水。倒入浓缩胶插好样品 梳,注意避免汽泡出现。
4. 电泳:将胶模装好,去胶条后,装入电泳槽中,检查是否 漏液后,倒入电泳缓冲液,胶模内侧的液面没过 矮板但不可超过高板(矮板在内)。
实验原理 实验仪器 实验试剂与材料 实验步骤
实验原理
以聚丙烯酰胺作为支持介质的一种电泳技术。凝胶是 聚丙烯酰胺和甲叉双丙烯酰胺交联而成的,催化剂为过硫 酸铵,加速剂为TEMED。
本实验采用聚丙烯酰胺凝胶不连续体系与非解离体系, 电泳迁移率的大小与带电粒子的大小、形状和带净电荷的 数量等因素有关。不同蛋白质,可根据其所带电荷大小、 形状而得到分离。
分离胶:溶液1 5ml、溶液3 3.75mL、水6.25ml、1O%AP 0.O5mL、 TEMED 0.0lmL
实验材料: 胰蛋白酶(牛的胰蛋白酶氨基酸残基223
个,分子量为23300)和牛血清白蛋白(分子 量68KD)混合物。
实验步骤
1.胶模固定:将两块洗净的玻璃板,按要求对齐,夹好。将 胶模装入电泳槽固定好,并将胶模下端封好, 防漏。(电泳槽按要求清洗干净)。
46ml冰乙酸定容到5O0ml。 7.加样缓冲液:甘油3.2m1,2M Tris一HCl(pH6.8)1.25ml,溴酚兰粉末少许加水至
l0ml。 8.脱色液: 20%甲醇,7%~10%的冰乙酸(现用现配) 9.凝胶配制:实验用分离胶为10%,浓缩胶为3%(现用现配)
浓缩胶:溶液2 1.25ml、溶液3 0.65mL、水3.05ml、1O%AP 25μl、 TEMED 5μl
3. 制备浓缩胶:配制好3%浓缩胶。将胶模中上层水倾倒出 去,用滤纸吸干余水。倒入浓缩胶插好样品 梳,注意避免汽泡出现。
4. 电泳:将胶模装好,去胶条后,装入电泳槽中,检查是否 漏液后,倒入电泳缓冲液,胶模内侧的液面没过 矮板但不可超过高板(矮板在内)。
实验原理 实验仪器 实验试剂与材料 实验步骤
实验原理
以聚丙烯酰胺作为支持介质的一种电泳技术。凝胶是 聚丙烯酰胺和甲叉双丙烯酰胺交联而成的,催化剂为过硫 酸铵,加速剂为TEMED。
本实验采用聚丙烯酰胺凝胶不连续体系与非解离体系, 电泳迁移率的大小与带电粒子的大小、形状和带净电荷的 数量等因素有关。不同蛋白质,可根据其所带电荷大小、 形状而得到分离。
分离胶:溶液1 5ml、溶液3 3.75mL、水6.25ml、1O%AP 0.O5mL、 TEMED 0.0lmL
实验材料: 胰蛋白酶(牛的胰蛋白酶氨基酸残基223
个,分子量为23300)和牛血清白蛋白(分子 量68KD)混合物。
实验步骤
1.胶模固定:将两块洗净的玻璃板,按要求对齐,夹好。将 胶模装入电泳槽固定好,并将胶模下端封好, 防漏。(电泳槽按要求清洗干净)。
46ml冰乙酸定容到5O0ml。 7.加样缓冲液:甘油3.2m1,2M Tris一HCl(pH6.8)1.25ml,溴酚兰粉末少许加水至
l0ml。 8.脱色液: 20%甲醇,7%~10%的冰乙酸(现用现配) 9.凝胶配制:实验用分离胶为10%,浓缩胶为3%(现用现配)
浓缩胶:溶液2 1.25ml、溶液3 0.65mL、水3.05ml、1O%AP 25μl、 TEMED 5μl
实验三琼脂糖凝胶电泳ppt课件

2、将溶解的琼脂糖(约50℃)倒入制胶模具中,直至厚度为4-6 mm,插 入适当的梳子,在室温下冷却凝固。
3、充分凝固后小心垂直向上拔出梳子,以保证点样孔完好。将凝胶置入电 泳槽中,加0.5TBE电泳缓冲液至液面覆盖凝胶1-2 mm。
(二)点样
用微量取液器(P20)吸取质粒DNA样品2 l于点样板小孔中,再加入8 l TE及1 l的载样缓冲液,混匀后,小心加入点样孔,蓝色样品混合物将沉 入点样孔下部。同时点5 l MarkerⅢ作为分子量标准。
5、必须保证琼脂糖充分完全熔解,否则,会造成电泳图像模糊不清。 6、电泳槽中缓冲液使用次数过多,缓冲能力下降。特别是TAE缓冲液,
一般用2-3次就要更换,TBE缓冲液则可使用10次左右。 7、为了节约成本,没有跑过DNA的凝胶部分可切下来重复利用,但反复
熔化会降低分辨效率,建议时向哪一极移动? 2、什么是迁移率?影响迁移率的因素有哪些?什么是分辨率?
分辨率与凝胶浓度的关系? 3、DNA荧光染料的发光原理? 4、质粒DNA存在哪些构型?其迁移率有何差异? 5、loading buffer成分是什么?各成分有何作用?
注意:如何判断单酶切是否完全? 如何判断双酶切是否完全?
质粒DNA三种构型:环状超螺旋、开环和线性。 质粒电泳三条带:超螺旋、开环和复制中间体(即2个没有复制完全的质粒 连在了一起)。 同一种酶切后电泳谱带的规律:从高分子量到低分子量条带亮度逐渐减弱 由于DNA Marker与酶切产物所含成分不同,因此迁移率不一定相同!
不同波长的紫外光
短波紫外光:254nm 中波紫外光:302nm 长波紫外光:365nm
1、为什么分光光度计测定的浓度很高,但电泳检测浓度却很低?
GoldViewI GoldViewII
3、充分凝固后小心垂直向上拔出梳子,以保证点样孔完好。将凝胶置入电 泳槽中,加0.5TBE电泳缓冲液至液面覆盖凝胶1-2 mm。
(二)点样
用微量取液器(P20)吸取质粒DNA样品2 l于点样板小孔中,再加入8 l TE及1 l的载样缓冲液,混匀后,小心加入点样孔,蓝色样品混合物将沉 入点样孔下部。同时点5 l MarkerⅢ作为分子量标准。
5、必须保证琼脂糖充分完全熔解,否则,会造成电泳图像模糊不清。 6、电泳槽中缓冲液使用次数过多,缓冲能力下降。特别是TAE缓冲液,
一般用2-3次就要更换,TBE缓冲液则可使用10次左右。 7、为了节约成本,没有跑过DNA的凝胶部分可切下来重复利用,但反复
熔化会降低分辨效率,建议时向哪一极移动? 2、什么是迁移率?影响迁移率的因素有哪些?什么是分辨率?
分辨率与凝胶浓度的关系? 3、DNA荧光染料的发光原理? 4、质粒DNA存在哪些构型?其迁移率有何差异? 5、loading buffer成分是什么?各成分有何作用?
注意:如何判断单酶切是否完全? 如何判断双酶切是否完全?
质粒DNA三种构型:环状超螺旋、开环和线性。 质粒电泳三条带:超螺旋、开环和复制中间体(即2个没有复制完全的质粒 连在了一起)。 同一种酶切后电泳谱带的规律:从高分子量到低分子量条带亮度逐渐减弱 由于DNA Marker与酶切产物所含成分不同,因此迁移率不一定相同!
不同波长的紫外光
短波紫外光:254nm 中波紫外光:302nm 长波紫外光:365nm
1、为什么分光光度计测定的浓度很高,但电泳检测浓度却很低?
GoldViewI GoldViewII
琼脂糖凝胶电泳 ppt课件

• 有热可逆性
• 机械强度差,易破碎,浓度 不能太低。
• 易被细菌污染,不易保存, 临用前配制。
• 琼脂糖支持层上的区带易于 扩散,电泳后必须立即固定 染色。
• 与PAGE相比,分子筛作用小, 区带少。
9
ppt课件
琼脂糖凝胶的配置
1. 根据电泳需要,配置合适浓度的电泳及制胶 缓冲液。一般为 1× TAE或0.5×TBE。
注意:用于电泳的缓冲液和用于制胶的缓冲液必须是相 同的。
2. 根据制胶量及凝胶浓度,在加有一定量的电 泳缓冲液的三角锥瓶中,加入准确称量的琼脂 糖粉。
注意:总液体量不宜超过三角锥瓶的50%容量。
3. 在微波炉中加热溶解琼脂糖
注意:必须保证琼脂糖充分完全溶解,否则,会造成电 泳图像模糊不清。加热时如胶液剧烈沸腾发泡,停止加 热。微波炉中加热时间不宜过长。
2) 分子大小相近的DNA带不 增加电泳时间,核准正确的凝胶
易分辨
浓度
DNA带缺失 3) DNA 变性
电泳前请勿高温加热DNA链,以 20mM NaCl Buffer稀释DNA
4) DNA链巨大,常规凝胶电泳 在脉冲凝胶电泳上分析 不合适
31
注意:不要产生气泡,溶液温度太高(>60℃),会使得水 分过分蒸发,改变凝胶离子浓度,影响电泳效果。
6. 在室温下使胶凝固(大约30 分钟),然后放置 于电泳槽中进行电泳。
注意: 凝胶不立即使用时,用保鲜膜将凝胶包好在4℃ 下保存,或者放在制胶的缓冲液中,一般可保存2~5 天。
11
ppt课件
琼脂糖凝胶缓冲液
电泳前于65℃加热DNA 5分钟,然后 在冰上冷却5分钟
不规则DNA带迁移 2) 电泳条件不合适
电泳电压不超过20V/cm;温度<30℃; 经常更换电泳缓冲液
• 机械强度差,易破碎,浓度 不能太低。
• 易被细菌污染,不易保存, 临用前配制。
• 琼脂糖支持层上的区带易于 扩散,电泳后必须立即固定 染色。
• 与PAGE相比,分子筛作用小, 区带少。
9
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琼脂糖凝胶的配置
1. 根据电泳需要,配置合适浓度的电泳及制胶 缓冲液。一般为 1× TAE或0.5×TBE。
注意:用于电泳的缓冲液和用于制胶的缓冲液必须是相 同的。
2. 根据制胶量及凝胶浓度,在加有一定量的电 泳缓冲液的三角锥瓶中,加入准确称量的琼脂 糖粉。
注意:总液体量不宜超过三角锥瓶的50%容量。
3. 在微波炉中加热溶解琼脂糖
注意:必须保证琼脂糖充分完全溶解,否则,会造成电 泳图像模糊不清。加热时如胶液剧烈沸腾发泡,停止加 热。微波炉中加热时间不宜过长。
2) 分子大小相近的DNA带不 增加电泳时间,核准正确的凝胶
易分辨
浓度
DNA带缺失 3) DNA 变性
电泳前请勿高温加热DNA链,以 20mM NaCl Buffer稀释DNA
4) DNA链巨大,常规凝胶电泳 在脉冲凝胶电泳上分析 不合适
31
注意:不要产生气泡,溶液温度太高(>60℃),会使得水 分过分蒸发,改变凝胶离子浓度,影响电泳效果。
6. 在室温下使胶凝固(大约30 分钟),然后放置 于电泳槽中进行电泳。
注意: 凝胶不立即使用时,用保鲜膜将凝胶包好在4℃ 下保存,或者放在制胶的缓冲液中,一般可保存2~5 天。
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琼脂糖凝胶缓冲液
电泳前于65℃加热DNA 5分钟,然后 在冰上冷却5分钟
不规则DNA带迁移 2) 电泳条件不合适
电泳电压不超过20V/cm;温度<30℃; 经常更换电泳缓冲液
DNA的琼脂糖凝胶电泳分析ppt课件

❖ 上样量不宜过多,会造成条带的相互挤压;
❖ 如果点样孔多余,将样点到中间,尽量避免边缘 效应 ,中间电场比较均匀 ;
❖ 做胶的缓冲液和跑胶的缓冲液浓度应该一致;
❖ 加样时不要太快,让其自然沉底,均匀分布在电 ห้องสมุดไป่ตู้孔内 ;
❖ 电泳开始时可以采用低电压使其跑出孔后,再调 高电压。
采用PP管及配件:根据给水设计图配 置好PP管及配 件,用 管件在 管材垂 直角切 断管材 ,边剪 边旋转 ,以保 证切口 面的圆 度,保 持熔接 部位干 净无污 物
琼脂糖凝胶 0.3 0.6 0.7 0.9 1.2 1.5 2.0 浓度(%)
可分辨的线
10~ 7~ 6~ 4~ 3~
性DNA大小 60~5 20~1 0.8 0.7 0.4 0.2 0.1 范围(kb)
采用PP管及配件:根据给水设计图配 置好PP管及配 件,用 管件在 管材垂 直角切 断管材 ,边剪 边旋转 ,以保 证切口 面的圆 度,保 持熔接 部位干 净无污 物
采用PP管及配件:根据给水设计图配 置好PP管及配 件,用 管件在 管材垂 直角切 断管材 ,边剪 边旋转 ,以保 证切口 面的圆 度,保 持熔接 部位干 净无污 物
❖ 2、 50×TAE电泳缓冲液:称取242gTris碱 (即三羟甲基氨基甲烷, Tris为弱碱,在室 温(25℃)下,它的pKa为8.1;根据缓冲理 论,Tris缓冲液的有效缓冲范围在pH7.0到 9.2之间。Tris碱的水溶液pH在10.5左右,一 般加入盐酸以调节pH值至所需值,即可获得 该pH值的缓冲液。但同时应注意温度对于 Tris的pKa的影响 ), ,加H2O800ml,待 完全溶解后,加57.1ml冰乙酸, 100ml0.5mol/LEDAT(pH8.0),用H2O定 容至1000ml。临用前用H2O稀释成1×TAE 电泳缓冲液。
❖ 如果点样孔多余,将样点到中间,尽量避免边缘 效应 ,中间电场比较均匀 ;
❖ 做胶的缓冲液和跑胶的缓冲液浓度应该一致;
❖ 加样时不要太快,让其自然沉底,均匀分布在电 ห้องสมุดไป่ตู้孔内 ;
❖ 电泳开始时可以采用低电压使其跑出孔后,再调 高电压。
采用PP管及配件:根据给水设计图配 置好PP管及配 件,用 管件在 管材垂 直角切 断管材 ,边剪 边旋转 ,以保 证切口 面的圆 度,保 持熔接 部位干 净无污 物
琼脂糖凝胶 0.3 0.6 0.7 0.9 1.2 1.5 2.0 浓度(%)
可分辨的线
10~ 7~ 6~ 4~ 3~
性DNA大小 60~5 20~1 0.8 0.7 0.4 0.2 0.1 范围(kb)
采用PP管及配件:根据给水设计图配 置好PP管及配 件,用 管件在 管材垂 直角切 断管材 ,边剪 边旋转 ,以保 证切口 面的圆 度,保 持熔接 部位干 净无污 物
采用PP管及配件:根据给水设计图配 置好PP管及配 件,用 管件在 管材垂 直角切 断管材 ,边剪 边旋转 ,以保 证切口 面的圆 度,保 持熔接 部位干 净无污 物
❖ 2、 50×TAE电泳缓冲液:称取242gTris碱 (即三羟甲基氨基甲烷, Tris为弱碱,在室 温(25℃)下,它的pKa为8.1;根据缓冲理 论,Tris缓冲液的有效缓冲范围在pH7.0到 9.2之间。Tris碱的水溶液pH在10.5左右,一 般加入盐酸以调节pH值至所需值,即可获得 该pH值的缓冲液。但同时应注意温度对于 Tris的pKa的影响 ), ,加H2O800ml,待 完全溶解后,加57.1ml冰乙酸, 100ml0.5mol/LEDAT(pH8.0),用H2O定 容至1000ml。临用前用H2O稀释成1×TAE 电泳缓冲液。
《双向凝胶电泳 》课件

它结合了等电聚焦和SDS-聚丙烯酰胺 凝胶电泳的原理,能够分离出成千上 万的蛋白质。
双向凝胶电泳的原理
等电聚焦
在第一向电泳中,蛋白质根据其等电点进行分离,聚焦在相应的pH区域。
SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳
在第二向电泳中,已经分离的蛋白质加入SDS(十二烷基硫酸钠)后带负电荷,在聚丙烯酰胺凝胶中按分子量大 小进行分离。
生物标志物发现
通过双向凝胶电泳技术寻 找新的生物标志物,用于 疾病预警、监测和治疗。
药物研发
利用双向凝胶电泳技术分 析药物作用机制和靶点蛋 白质,为新药研发提供支 持。
研究展望
蛋白质组学研究
随着蛋白质组学研究的深入,双 向凝胶电泳技术有望在更广泛的 领域发挥重要作用。
跨学科合作
加强与其他学科领域的合作,共 同推动双向凝胶电泳技术的发展 和应用。
样品上样
将处理好的蛋白质样品上样到第一向 等电聚焦凝胶中。
等电聚焦
在第一向等电聚焦凝胶中进行等电聚 焦,分离蛋白质。
固相pH梯度第二向分离
将第一向分离后的蛋白质从凝胶中转 移到第二向SDS-PAGE凝胶中进行第 二向分离。
图像分析
染色与脱色
01
对第二向分离后的凝胶进行染色和脱色,以便观察和检测蛋白
研究疾病的发生和发展机制,为疾病的诊断和治疗提供依据。
03
生物标志物发现
利用双向凝胶电泳技术可以发现与疾病相关的生物标志物,如肿瘤标志
物、感染性疾病相关蛋白等,有助于疾病的早期诊断和预后评估。
在医学研究中的应用
1 2 3
药物作用机制研究
通过双向凝胶电泳技术分析药物作用前后蛋白质 表达谱的变化,有助于揭示药物的作用机制和靶 点。
数据共享和分析
双向凝胶电泳的原理
等电聚焦
在第一向电泳中,蛋白质根据其等电点进行分离,聚焦在相应的pH区域。
SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳
在第二向电泳中,已经分离的蛋白质加入SDS(十二烷基硫酸钠)后带负电荷,在聚丙烯酰胺凝胶中按分子量大 小进行分离。
生物标志物发现
通过双向凝胶电泳技术寻 找新的生物标志物,用于 疾病预警、监测和治疗。
药物研发
利用双向凝胶电泳技术分 析药物作用机制和靶点蛋 白质,为新药研发提供支 持。
研究展望
蛋白质组学研究
随着蛋白质组学研究的深入,双 向凝胶电泳技术有望在更广泛的 领域发挥重要作用。
跨学科合作
加强与其他学科领域的合作,共 同推动双向凝胶电泳技术的发展 和应用。
样品上样
将处理好的蛋白质样品上样到第一向 等电聚焦凝胶中。
等电聚焦
在第一向等电聚焦凝胶中进行等电聚 焦,分离蛋白质。
固相pH梯度第二向分离
将第一向分离后的蛋白质从凝胶中转 移到第二向SDS-PAGE凝胶中进行第 二向分离。
图像分析
染色与脱色
01
对第二向分离后的凝胶进行染色和脱色,以便观察和检测蛋白
研究疾病的发生和发展机制,为疾病的诊断和治疗提供依据。
03
生物标志物发现
利用双向凝胶电泳技术可以发现与疾病相关的生物标志物,如肿瘤标志
物、感染性疾病相关蛋白等,有助于疾病的早期诊断和预后评估。
在医学研究中的应用
1 2 3
药物作用机制研究
通过双向凝胶电泳技术分析药物作用前后蛋白质 表达谱的变化,有助于揭示药物的作用机制和靶 点。
数据共享和分析
《凝胶电泳》课件
《凝胶电泳》PPT课件
目录
• 凝胶电泳简介 • 凝胶电泳实验操作 • 凝胶电泳的优缺点 • 凝胶电泳的发展趋势与展望 • 凝胶电泳与其他分离方法的比较
01
凝胶电泳简介
定义与原理
定义
凝胶电泳是一种利用凝胶作为支持介质的电泳技术,用于分离和检测生物分子 。
原理
利用电场的作用,使带电分子在凝胶介质中迁移,从而实现分离和检测。
减少污染
通过改进实验操作和加强实验室管理,减少 凝胶电泳过程中的污染。
缩短实验时间
研究更有效的染色和检测方法,缩短凝胶电 泳的实验时间。
拓展应用范围
进一步探索凝胶电泳在其他领域的应用,如 医学、生物工程等。
04
凝胶电泳的发展趋势与展望
研究方向
新型凝胶材料的研发
探索具有优异分离性能和稳定性的新型凝胶材料,以提高凝胶电 泳的分离效果和检测灵敏度。
应用广泛
高灵敏度
凝胶电泳不仅可以用于DNA和RNA的分析 ,还可以用于蛋白质分离和纯化等,应用 范围广泛。
通过现代化的染色和检测技术,凝胶电泳 可以检测到低浓度的DNA或RNA,灵敏度 高。
缺点
01
时间长
凝胶电泳通常需要几小时甚至更 长时间才能完成分离,对于需要 快速得到结果的实验不太适用。
03
易受污染
。
标准化与规范化
随着凝胶电泳技术的普及和应用 ,标准化和规范化的需求将逐渐 凸显,需要制定相关标准和规范
,促进技术的健康发展。
05
凝胶电泳与其他分离方法的 比较
离心分离
离心分离是通过离心力将不同 密度的物质进行分离的方法。
离心分离的优点是操作简便、 分离速度快,适用于大量样品 的分离。
目录
• 凝胶电泳简介 • 凝胶电泳实验操作 • 凝胶电泳的优缺点 • 凝胶电泳的发展趋势与展望 • 凝胶电泳与其他分离方法的比较
01
凝胶电泳简介
定义与原理
定义
凝胶电泳是一种利用凝胶作为支持介质的电泳技术,用于分离和检测生物分子 。
原理
利用电场的作用,使带电分子在凝胶介质中迁移,从而实现分离和检测。
减少污染
通过改进实验操作和加强实验室管理,减少 凝胶电泳过程中的污染。
缩短实验时间
研究更有效的染色和检测方法,缩短凝胶电 泳的实验时间。
拓展应用范围
进一步探索凝胶电泳在其他领域的应用,如 医学、生物工程等。
04
凝胶电泳的发展趋势与展望
研究方向
新型凝胶材料的研发
探索具有优异分离性能和稳定性的新型凝胶材料,以提高凝胶电 泳的分离效果和检测灵敏度。
应用广泛
高灵敏度
凝胶电泳不仅可以用于DNA和RNA的分析 ,还可以用于蛋白质分离和纯化等,应用 范围广泛。
通过现代化的染色和检测技术,凝胶电泳 可以检测到低浓度的DNA或RNA,灵敏度 高。
缺点
01
时间长
凝胶电泳通常需要几小时甚至更 长时间才能完成分离,对于需要 快速得到结果的实验不太适用。
03
易受污染
。
标准化与规范化
随着凝胶电泳技术的普及和应用 ,标准化和规范化的需求将逐渐 凸显,需要制定相关标准和规范
,促进技术的健康发展。
05
凝胶电泳与其他分离方法的 比较
离心分离
离心分离是通过离心力将不同 密度的物质进行分离的方法。
离心分离的优点是操作简便、 分离速度快,适用于大量样品 的分离。
实验琼脂糖凝胶电泳的原理与方法 PPT
六、血浆脂蛋白琼脂糖凝胶电泳
按电泳法分:
按超速离心法分:
乳糜微粒(CM)
乳糜微粒CM ( < 0、96 )
-脂蛋白 (-位) 极低密度脂蛋白VLDL(0、961、006)
前-脂蛋白(2-位) 低密度脂蛋白LDL (1、0191、063) -脂蛋白 (1-位) 高密度脂蛋白HDL(1、0631、21)
进行印迹转移电泳时,要注意缓冲液得离子强度要低,pH要远 离pI,使蛋白质带有较多电荷,一般用稳定性较好得Tris-缓冲体 系。还要注意凝胶与支持膜之间不能有气泡。适当提高电压或 电流可以提高转移速度,但亦会增加热效应,故电压或电流不可过 高。
五、交变脉冲电场凝胶电泳
一般琼脂糖凝胶电泳只能分离小于20kb得DNA。 这就是因为在琼脂糖凝胶中,DNA分子得有效直径超 过凝胶孔径时,在电场作用下,迫使DNA变形挤过筛孔, 而沿着泳动方向伸直,因而分子大小对迁移率影响不 大。如此时改变电场方向,则DNA分子必须改变其构 象,沿新得泳动方向伸直,而转向时间与DNA分子大小 关系极为密切。
D-半乳糖
3,6-脱水-L-半乳糖
琼脂糖链依分子内与分子间氢键及其它力得作 用使其互相盘绕形成绳状琼脂糖束,构成大网孔型凝 胶。
冷却
松散,随机地,盘绕地琼脂糖链
双螺旋结构区域与线性链相链接
淬火
溶胶状态
初级胶
最终得凝胶结构
琼脂糖为电泳支持物进行平板电泳,其优点如下: (1)琼脂糖凝胶电泳操作简单,电泳速度快,样品不需事
按支持物得装置形式不同,区带电泳可为: ➢平板式电泳,支持物水平放置,就是最常用得 电泳方式; ➢垂直板式电泳,聚丙烯酰胺凝胶常做成垂直 板式电泳; ➢垂直柱式电泳,聚丙烯酰胺凝胶盘状电泳即 属于此类; ➢连续液动电泳,首先应用于纸电泳,将滤纸垂 直竖立,两边各放一电极,溶液自顶端向下流, 与电泳方向垂直。
细胞凋亡的DNA琼脂糖凝胶电泳PPT课件
与细胞坏死区别
细胞坏死是被动的过程,通常由外界因素如物理、化学损伤引起 ,而细胞凋亡是主动过程,由基因调控。
细胞凋亡的过程
起始阶段
细胞受到凋亡信号刺激,开始进入凋亡过程。
执行阶段
细胞内部发生一系列生化反应,如DNA断裂、蛋白 质降解等。
降解阶段
细胞被分解成小碎片,即所谓的“死亡小体”,随后 被周围的巨噬细胞或邻近细胞吞噬。
物种鉴定
通过DNA琼脂糖凝胶电泳对物种进行鉴定,如 PCR-RFLP、DNA指纹分析等。
细胞凋亡研究
通过DNA琼脂糖凝胶电泳检测细胞凋亡相关的 DNA片段,如梯状带等。
03
细胞凋亡的DNA琼脂糖凝胶电泳检测
细胞凋亡DNA的提取
细胞凋亡过程中,DNA会经历一系列的降解过程, 形成凋亡小体。
提取凋亡细胞中的DNA,是进行琼脂糖凝胶电泳检测 的重要步骤。
凋亡机制探讨
02
结合实验结果,可以探讨细胞凋亡的机制,如内源性途径和外
源性途径等。
影响因素分析
03
分析实验过程中可能影响结果的因素,如温度、pH值、DNA提
取方法等。
实验结论与讨论
01
02
03
实验结论
根据实验结果,可以得出 关于细胞凋亡的结论,如 凋亡诱导剂或抗凋亡剂的 作用效果、凋亡机制等。
实验意义
细胞凋亡的意义
80%
维持内环境稳定
细胞凋亡有助于清除不再需要的 或异常的细胞,维持内环境的稳 定。
100%
发育和组织成熟
在胚胎发育和组织成熟过程中, 细胞凋亡有助于塑造和修剪多余 或异常的细胞。
80%
防御和免疫
细胞凋亡有助于清除被感染或发 生癌变的细胞,从而维持机体的 健康。
细胞坏死是被动的过程,通常由外界因素如物理、化学损伤引起 ,而细胞凋亡是主动过程,由基因调控。
细胞凋亡的过程
起始阶段
细胞受到凋亡信号刺激,开始进入凋亡过程。
执行阶段
细胞内部发生一系列生化反应,如DNA断裂、蛋白 质降解等。
降解阶段
细胞被分解成小碎片,即所谓的“死亡小体”,随后 被周围的巨噬细胞或邻近细胞吞噬。
物种鉴定
通过DNA琼脂糖凝胶电泳对物种进行鉴定,如 PCR-RFLP、DNA指纹分析等。
细胞凋亡研究
通过DNA琼脂糖凝胶电泳检测细胞凋亡相关的 DNA片段,如梯状带等。
03
细胞凋亡的DNA琼脂糖凝胶电泳检测
细胞凋亡DNA的提取
细胞凋亡过程中,DNA会经历一系列的降解过程, 形成凋亡小体。
提取凋亡细胞中的DNA,是进行琼脂糖凝胶电泳检测 的重要步骤。
凋亡机制探讨
02
结合实验结果,可以探讨细胞凋亡的机制,如内源性途径和外
源性途径等。
影响因素分析
03
分析实验过程中可能影响结果的因素,如温度、pH值、DNA提
取方法等。
实验结论与讨论
01
02
03
实验结论
根据实验结果,可以得出 关于细胞凋亡的结论,如 凋亡诱导剂或抗凋亡剂的 作用效果、凋亡机制等。
实验意义
细胞凋亡的意义
80%
维持内环境稳定
细胞凋亡有助于清除不再需要的 或异常的细胞,维持内环境的稳 定。
100%
发育和组织成熟
在胚胎发育和组织成熟过程中, 细胞凋亡有助于塑造和修剪多余 或异常的细胞。
80%
防御和免疫
细胞凋亡有助于清除被感染或发 生癌变的细胞,从而维持机体的 健康。
《sdspage凝胶电泳》课件
生物标志物发现
通过SDS-PAGE凝胶电泳结合质谱分析等技术,可以发现新的生物 标志物,用于疾病诊断、药物研发和生物医学研究等领域。
药物筛选
SDS-PAGE凝胶电泳可用于药物筛选过程中的目标蛋白分离和纯化, 提高筛选效率和成功率。
在蛋白质组学研究中的应用前景
蛋白质表达分析
SDS-PAGE凝胶电泳可以用于分析不同细胞或组织中蛋白 质的表达情况,有助于研究疾病发生发展过程中蛋白质表 达的改变。
对样品处理要求高
为了获得理想的分离效果,需要对蛋白质样品进行充分处理,如加入 变性剂、还原剂等,这可能会影响样品的天然构象和功能。
05
CATALOGUE
SDS-PAGE凝胶电泳的发展前景
在生物科学研究中的应用前景
蛋白质组学研究
SDS-PAGE凝胶电泳是蛋白质组学研究中常用的分离技术之一,可 用于分离和鉴定蛋白质,为研究蛋白质结构和功能提供基础数据。
缺点
样品损失
在SDS-PAGE凝胶电泳过程中,样品中的蛋白质可能会吸附到凝胶或 电极上,导致一定程度的损失。
无法分离大分子量蛋白质
对于分子量大于凝胶孔径的蛋白质,SDS-PAGE凝胶电泳无法进行有 效分离。
无法分离带电荷差异小的蛋白质
SDS-PAGE凝胶电泳主要依据蛋白质的分子量和电荷差异进行分离, 对于带电荷差异较小的蛋白质,分离效果可能不佳。
03
CATALOGUE
SDS-PAGE凝胶电泳结果分析
蛋白质条带的观察与识别
蛋白质条带观察
通过染色或荧光染色,观察凝胶 电泳后的蛋白质条带,判断蛋白 质是否成功分离。
蛋白质识别
根据蛋白质条带的颜色、亮度、 形状等特征,识别并标记不同的 蛋白质条带。
通过SDS-PAGE凝胶电泳结合质谱分析等技术,可以发现新的生物 标志物,用于疾病诊断、药物研发和生物医学研究等领域。
药物筛选
SDS-PAGE凝胶电泳可用于药物筛选过程中的目标蛋白分离和纯化, 提高筛选效率和成功率。
在蛋白质组学研究中的应用前景
蛋白质表达分析
SDS-PAGE凝胶电泳可以用于分析不同细胞或组织中蛋白 质的表达情况,有助于研究疾病发生发展过程中蛋白质表 达的改变。
对样品处理要求高
为了获得理想的分离效果,需要对蛋白质样品进行充分处理,如加入 变性剂、还原剂等,这可能会影响样品的天然构象和功能。
05
CATALOGUE
SDS-PAGE凝胶电泳的发展前景
在生物科学研究中的应用前景
蛋白质组学研究
SDS-PAGE凝胶电泳是蛋白质组学研究中常用的分离技术之一,可 用于分离和鉴定蛋白质,为研究蛋白质结构和功能提供基础数据。
缺点
样品损失
在SDS-PAGE凝胶电泳过程中,样品中的蛋白质可能会吸附到凝胶或 电极上,导致一定程度的损失。
无法分离大分子量蛋白质
对于分子量大于凝胶孔径的蛋白质,SDS-PAGE凝胶电泳无法进行有 效分离。
无法分离带电荷差异小的蛋白质
SDS-PAGE凝胶电泳主要依据蛋白质的分子量和电荷差异进行分离, 对于带电荷差异较小的蛋白质,分离效果可能不佳。
03
CATALOGUE
SDS-PAGE凝胶电泳结果分析
蛋白质条带的观察与识别
蛋白质条带观察
通过染色或荧光染色,观察凝胶 电泳后的蛋白质条带,判断蛋白 质是否成功分离。
蛋白质识别
根据蛋白质条带的颜色、亮度、 形状等特征,识别并标记不同的 蛋白质条带。
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TNE(Tris 醋酸钠,EDTA):电流大,适合于长时间低 压电泳,分辨率高。
在缓冲液中加入EDTA,可以鳌合二价离子,抑制 DNase,保护DNA。
TBE一般配10 ×或5 ×的贮存液,都以1×TBE作为 使用液进行琼脂糖凝胶电泳。但0.5×的使用液已具备 足够的缓冲容量;进行聚丙烯酰胺凝胶垂直槽的缓冲 液槽较小, 故通过缓冲液的电流量通常较大,需要使 用1×TBE以提供足够的缓冲容量。
EB存在的情况下,线状DNA的电泳迁移率约降低 15%,因此,当需要知道DNA片段的准确大小(如 DNA限制酶酶切图谱的鉴定),凝胶应该在无EB情况 下电泳,电泳结束后用EB染色。
EB在凝胶或染色液中的浓度为0.5 g/ml或0.1 g/ml。
注意:
EB见光易分解,应存棕色试剂瓶中于4℃下保存。
溴化乙锭可以嵌入碱基分子中,导致错配。溴化乙锭 是强诱变剂,具有高致癌性!
4) DNA上样量过多 减少凝胶中DNA上样量;
5) DNA样含盐过高 电泳前通过乙醇沉淀去除过多的盐;
6) 有蛋白污染 电泳前酚抽提去除蛋白;
7) DNA变性 电泳前勿加热,用20mM NaCl缓冲液稀释 DNA。
二、核酸电泳的指示剂与染色剂
核酸电泳常用的指示剂有两种,溴酚蓝(bromophenol blue, Bb)呈蓝紫色;二甲苯晴(xylene cyanol, Xc) 呈蓝色,它携带的电荷量比溴酚蓝少,在凝胶中的的 迁移率比溴酚蓝慢。
凝胶作为支持介质的引入大大促进了电泳技术 的发展,使电泳技术成为分析蛋白质、核酸等生物 大分子的重要手段之一。最初使用的凝胶是淀粉凝 胶,但目前使用得最多的是琼脂糖凝胶和聚丙烯酰 胺凝胶。蛋白质电泳主要使用聚丙烯酰胺凝胶。
电泳的基本原理:
在电场中,推动带电质点运动的力(F)等于质点 所带净电荷量(Q)与电场强度(E)的乘积。F=QE 质点的前移同样要受到阻力(F)的影响,对于一个球 形质点,服从Stoke定律,即:F′=6πrην式中r为质点 半径,η为介质粘度,ν为质点移动速度,当质点在电场 中作稳定运动时:F=F′即QE=6πrην
溴化乙锭可以用来检测单链或双链核酸(DNA或 RNA)。但是染料对单链核酸的亲和力相对较小,所 以其荧光产率也相对较低。事实上,大多数对单链 DNA或RNA染色的荧光时通过染料结合到分子内形 成较短的链内螺旋产生的。最低检出量100ng
染色完毕后,通常不需要脱色。但是在检测小量 DNA(小于10ng)片段时,通常要将染色后的凝胶进 行脱色。
4、碱基组成: 对迁移率影响不明显,单链DNA形成 发头结构,影响迁移率,单链(1kb)小于双链DNA (1kb)
(二)支持物介质(种类和浓度)
核酸电泳通常使用琼脂糖凝胶和聚丙烯酰胺凝胶 两种介质,琼脂糖是一种聚合链线性分子。含有不同 浓度的琼脂糖的凝胶构成的分子筛的网孔大小不同, 适于分离不同浓度范围的核酸分子。聚丙烯酰胺凝胶 由丙烯酰胺(Acr)在N,N,N′-四甲基乙四胺 (TEMED)和过硫酸铵(AP)的催化下聚合形成长 链,并通过交联剂N,N′-亚甲双丙烯酰胺(Bis)交叉 连接而成,其网孔的大小由Acr与Bis的相对比例决定。
3、种类 :
TAE(Tris、醋酸、EDTA):缓冲能力差,电流大易发 热,长时间使用阴极为碱性 ,阳极为酸性 ,需要循环使 两极的pH一致;但价格便宜。
TBE(Tris、硼酸、EDTA):缓冲能力强。首选TBE。
TPE(Tris 磷酸,EDTA):缓冲能力强,但回收DNA 易与DNA一起沉淀,影响酶反应。
DNA吸收254nm处的紫外辐射并传递给染料,而被 结合的染料本身吸收302nm和366nm的光辐射。这两 种情况下,被吸收的能量在可见光谱红橙区的590nm 处重新发射出来。
由于溴化乙锭-DNA复合物的荧光产率比没有结合 DNA的染料高出20-30倍,所以当凝胶中含有游离的 溴化乙锭(0.5ug/ml)时,可以检测到少至10ng的 NDA条带。
TBE溶液长时间存放后会形成沉淀物,为避免这一 问题,可在室温下用玻璃瓶保存5×溶液或高压灭菌。
DNA电泳带模糊的原因:
1) DNA降解,应 避免核酸酶污染;
2) 电泳缓冲液陈旧 电泳缓冲液多次使用后,离子强 度降低,pH值上升,缓冲能力减弱,从而影响电 泳效果。建议经常更换电泳缓冲液;
3) 所用电泳条件不合适 电泳时电压不应超过20V/cm, 温度<30℃;巨大DNA链电泳,温度应<15℃; 核查所用电泳缓冲液是否有足够的缓冲能力 ;
② 用滤纸过滤并将活性碳与滤纸密封后丢弃。
银染:
银染色液中的银离子(Ag )可与核酸形成稳定的 复合物,然后用还原剂如甲醛 使Ag 还原成银颗粒, 可把核酸电泳带染色黑褐色。主要用于聚丙烯酰胺 凝胶电泳染色,也用于琼脂糖凝胶染色。其灵敏度 比EB高200倍.但银染色后,DNA不宜回收。
EB的替代物:
凝胶电泳技术
电泳(electroghoresis):带电物质在电场中向相反 电极移动的现象 。
电泳技术就是利用在电场的作用下,由于待分离样 品中各种分子带电性质以及分子本身大小、形状等 性质的差异,使带电分子产生不同的迁移速度,从 而对样品进行分离、鉴定或提纯的技术。
自由界面电泳没有固定支持介质,所以扩散和 对流都比较强,影响分离效果。于是出现了固定支 持介质的电泳,样品在固定的介质中进行电泳过程, 减少了扩散和对流等干扰作用。
(二)染色剂
核酸电泳后,需经染色后才能显现出带型,最常用的是 溴化乙锭染色法,其次是银染色,目前还有其他不仅安 全的染色剂。
溴化乙锭(ethidium bromide,EB)最常用260nm, 300nm,360nm,发出590nm橙红色。
溴化乙锭含有一个可以嵌入DNA堆积碱基之间的一 个三环平面基团。它与DNA的结合几乎没有碱基序列 特异性。在高离子强度的饱和溶液中,大约每2.5个碱 基插入一个溴化乙锭分子。当染料分子插入后,其平面 基团与螺旋的轴线垂直并通过范德华力与上下碱基相互 作用。这个基团的固定位置及其与碱基的密切接近,导 致与DNA结合的染料呈现荧光,其荧光产率比游离溶 液中染料有所增加。
球形质点的迁移率,首先取决于自身状态,即与所 带电量成正比,与其半径及介质粘度成反比。除了自身 状态的因素外,电泳体系中其它因素也影响质点的电泳 迁移率。
电泳迁移率(m)是指在单位电场强度(1V/cm) 时带电分子的迁移速度
迁移率与带电分子所带净电荷成正比,与分子 的大小和缓冲液的粘度成反比。
DNA分子在碱性缓冲液中带负电荷,在外加电场 作用下向正极泳动。
核酸吸收260nm紫外线 ,导致DNA的断裂,因此回收 DNA应在长波紫外线下观察较好,以减少对DNA的损 伤。
荧光易淬灭,注意观察的时期,不要反复在紫外下照 射。
由于溴化乙锭具有一定的毒性,实验结束后,应对含 EB的溶液进行净化处理再行弃置,以避免污染环境和 危害人体健康。 (1) 对于EB含量大于0.5mg/ml的溶液,可如下处理:
载样缓冲液的作用:
①增加样 品密度,使其比重增加,以确保DNA均匀沉 入加样孔内;
②在电泳中形成肉眼可见的指 示带,可预测核酸电泳 的速度和位置;
③使样品呈色,使加样操作更方便。
配方:
将0.25%溴酚蓝、0.25%二甲苯青FF或分别,或同时 加入或30%甘油水溶液,或40%(W/V)蔗糖水溶 液,或15%聚蔗糖(Ficoll400)中。
GoldView DNA染料是一种可代替溴化乙锭(EB)的 新型DNA染料,使用方法与之完全相同。采用琼脂糖 凝胶电泳检测DNA时,GoldView与核酸结合后能产生 很强的荧光信号,其灵敏度与EB相当,在某些波段甚 至超过EB。在100ml琼脂糖胶溶液中加入5μl GoldView 即可,亦可在电泳缓冲液中以同样比例稀释后直接使 用。在紫外灯下双链DNA呈现绿色荧光,而单链多聚 核酸链呈红色荧光。因此,GoldView不仅能染双链 DNA,也可用于染RNA和单链DNA。GoldView DNA 染料在不同的波长下灵敏度有一定影响,建议使用 312nm波长。
聚丙烯酰胺 浓度 有效分离范围(bp) 二甲苯青FF
3.5
1000-2000
460
5.0
80-500
260
8.0
60-400
160
12.0
40-200
70
15.0
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
25-150
60
20.0
6-100
45
溴酚蓝
100 65 45 20 15 12
(三)电场强度
电场强度是指单位长度(cm)的电位降,也称电势梯 度。
1-5V/cm(低压),低压时,线性DNA迁移率与电压成 正比,而对于大片段电泳,甚至用0.5-1.0V/cm电泳过夜。
电场强度愈大,带点颗粒的泳动越快。但凝胶的有效分 离范围随着电压增大而减小。
高电压影响凝胶的分离范围,使分辨率下降:因为 随电压上升,不同长度DNA泳动的增加程度不同, 凝胶有效分离范围随电压上升而下降 。
凝胶浓度 浓度越小,孔径越大,浓度越大,孔径 越小 。
不同浓度琼脂糖凝胶的有效分离范围
浓度%(W/V)
0.3 0.6 0.7 0.9 1.2 1.5 2.0
线状DNA分子的有效 分离范围(kb)
5-60 1-20 0.8-10 0.5-7 0.4-6 1.2-3 0.1-2
DNA在聚丙烯酰胺凝胶中的有效分离范围
但是由于琼脂糖浓度、电场强度、离子强度和 溴化乙锭等的影响,会出现相反的情况。
3、带电量:核酸分子是两性解离分子,pH3.5是碱基 上的氨基解离,而三个磷酸基团中只有一个磷酸解离, 所以分子带正电,在电场中向负极泳动;而pH8.0-8.3 时,碱基几乎不解离,而磷酸基团解离,所以核酸分 子带负电,在电场中向正极泳动。不同的核酸分子的 电荷密度大致相同,因此对泳动速度影响不大。
在缓冲液中加入EDTA,可以鳌合二价离子,抑制 DNase,保护DNA。
TBE一般配10 ×或5 ×的贮存液,都以1×TBE作为 使用液进行琼脂糖凝胶电泳。但0.5×的使用液已具备 足够的缓冲容量;进行聚丙烯酰胺凝胶垂直槽的缓冲 液槽较小, 故通过缓冲液的电流量通常较大,需要使 用1×TBE以提供足够的缓冲容量。
EB存在的情况下,线状DNA的电泳迁移率约降低 15%,因此,当需要知道DNA片段的准确大小(如 DNA限制酶酶切图谱的鉴定),凝胶应该在无EB情况 下电泳,电泳结束后用EB染色。
EB在凝胶或染色液中的浓度为0.5 g/ml或0.1 g/ml。
注意:
EB见光易分解,应存棕色试剂瓶中于4℃下保存。
溴化乙锭可以嵌入碱基分子中,导致错配。溴化乙锭 是强诱变剂,具有高致癌性!
4) DNA上样量过多 减少凝胶中DNA上样量;
5) DNA样含盐过高 电泳前通过乙醇沉淀去除过多的盐;
6) 有蛋白污染 电泳前酚抽提去除蛋白;
7) DNA变性 电泳前勿加热,用20mM NaCl缓冲液稀释 DNA。
二、核酸电泳的指示剂与染色剂
核酸电泳常用的指示剂有两种,溴酚蓝(bromophenol blue, Bb)呈蓝紫色;二甲苯晴(xylene cyanol, Xc) 呈蓝色,它携带的电荷量比溴酚蓝少,在凝胶中的的 迁移率比溴酚蓝慢。
凝胶作为支持介质的引入大大促进了电泳技术 的发展,使电泳技术成为分析蛋白质、核酸等生物 大分子的重要手段之一。最初使用的凝胶是淀粉凝 胶,但目前使用得最多的是琼脂糖凝胶和聚丙烯酰 胺凝胶。蛋白质电泳主要使用聚丙烯酰胺凝胶。
电泳的基本原理:
在电场中,推动带电质点运动的力(F)等于质点 所带净电荷量(Q)与电场强度(E)的乘积。F=QE 质点的前移同样要受到阻力(F)的影响,对于一个球 形质点,服从Stoke定律,即:F′=6πrην式中r为质点 半径,η为介质粘度,ν为质点移动速度,当质点在电场 中作稳定运动时:F=F′即QE=6πrην
溴化乙锭可以用来检测单链或双链核酸(DNA或 RNA)。但是染料对单链核酸的亲和力相对较小,所 以其荧光产率也相对较低。事实上,大多数对单链 DNA或RNA染色的荧光时通过染料结合到分子内形 成较短的链内螺旋产生的。最低检出量100ng
染色完毕后,通常不需要脱色。但是在检测小量 DNA(小于10ng)片段时,通常要将染色后的凝胶进 行脱色。
4、碱基组成: 对迁移率影响不明显,单链DNA形成 发头结构,影响迁移率,单链(1kb)小于双链DNA (1kb)
(二)支持物介质(种类和浓度)
核酸电泳通常使用琼脂糖凝胶和聚丙烯酰胺凝胶 两种介质,琼脂糖是一种聚合链线性分子。含有不同 浓度的琼脂糖的凝胶构成的分子筛的网孔大小不同, 适于分离不同浓度范围的核酸分子。聚丙烯酰胺凝胶 由丙烯酰胺(Acr)在N,N,N′-四甲基乙四胺 (TEMED)和过硫酸铵(AP)的催化下聚合形成长 链,并通过交联剂N,N′-亚甲双丙烯酰胺(Bis)交叉 连接而成,其网孔的大小由Acr与Bis的相对比例决定。
3、种类 :
TAE(Tris、醋酸、EDTA):缓冲能力差,电流大易发 热,长时间使用阴极为碱性 ,阳极为酸性 ,需要循环使 两极的pH一致;但价格便宜。
TBE(Tris、硼酸、EDTA):缓冲能力强。首选TBE。
TPE(Tris 磷酸,EDTA):缓冲能力强,但回收DNA 易与DNA一起沉淀,影响酶反应。
DNA吸收254nm处的紫外辐射并传递给染料,而被 结合的染料本身吸收302nm和366nm的光辐射。这两 种情况下,被吸收的能量在可见光谱红橙区的590nm 处重新发射出来。
由于溴化乙锭-DNA复合物的荧光产率比没有结合 DNA的染料高出20-30倍,所以当凝胶中含有游离的 溴化乙锭(0.5ug/ml)时,可以检测到少至10ng的 NDA条带。
TBE溶液长时间存放后会形成沉淀物,为避免这一 问题,可在室温下用玻璃瓶保存5×溶液或高压灭菌。
DNA电泳带模糊的原因:
1) DNA降解,应 避免核酸酶污染;
2) 电泳缓冲液陈旧 电泳缓冲液多次使用后,离子强 度降低,pH值上升,缓冲能力减弱,从而影响电 泳效果。建议经常更换电泳缓冲液;
3) 所用电泳条件不合适 电泳时电压不应超过20V/cm, 温度<30℃;巨大DNA链电泳,温度应<15℃; 核查所用电泳缓冲液是否有足够的缓冲能力 ;
② 用滤纸过滤并将活性碳与滤纸密封后丢弃。
银染:
银染色液中的银离子(Ag )可与核酸形成稳定的 复合物,然后用还原剂如甲醛 使Ag 还原成银颗粒, 可把核酸电泳带染色黑褐色。主要用于聚丙烯酰胺 凝胶电泳染色,也用于琼脂糖凝胶染色。其灵敏度 比EB高200倍.但银染色后,DNA不宜回收。
EB的替代物:
凝胶电泳技术
电泳(electroghoresis):带电物质在电场中向相反 电极移动的现象 。
电泳技术就是利用在电场的作用下,由于待分离样 品中各种分子带电性质以及分子本身大小、形状等 性质的差异,使带电分子产生不同的迁移速度,从 而对样品进行分离、鉴定或提纯的技术。
自由界面电泳没有固定支持介质,所以扩散和 对流都比较强,影响分离效果。于是出现了固定支 持介质的电泳,样品在固定的介质中进行电泳过程, 减少了扩散和对流等干扰作用。
(二)染色剂
核酸电泳后,需经染色后才能显现出带型,最常用的是 溴化乙锭染色法,其次是银染色,目前还有其他不仅安 全的染色剂。
溴化乙锭(ethidium bromide,EB)最常用260nm, 300nm,360nm,发出590nm橙红色。
溴化乙锭含有一个可以嵌入DNA堆积碱基之间的一 个三环平面基团。它与DNA的结合几乎没有碱基序列 特异性。在高离子强度的饱和溶液中,大约每2.5个碱 基插入一个溴化乙锭分子。当染料分子插入后,其平面 基团与螺旋的轴线垂直并通过范德华力与上下碱基相互 作用。这个基团的固定位置及其与碱基的密切接近,导 致与DNA结合的染料呈现荧光,其荧光产率比游离溶 液中染料有所增加。
球形质点的迁移率,首先取决于自身状态,即与所 带电量成正比,与其半径及介质粘度成反比。除了自身 状态的因素外,电泳体系中其它因素也影响质点的电泳 迁移率。
电泳迁移率(m)是指在单位电场强度(1V/cm) 时带电分子的迁移速度
迁移率与带电分子所带净电荷成正比,与分子 的大小和缓冲液的粘度成反比。
DNA分子在碱性缓冲液中带负电荷,在外加电场 作用下向正极泳动。
核酸吸收260nm紫外线 ,导致DNA的断裂,因此回收 DNA应在长波紫外线下观察较好,以减少对DNA的损 伤。
荧光易淬灭,注意观察的时期,不要反复在紫外下照 射。
由于溴化乙锭具有一定的毒性,实验结束后,应对含 EB的溶液进行净化处理再行弃置,以避免污染环境和 危害人体健康。 (1) 对于EB含量大于0.5mg/ml的溶液,可如下处理:
载样缓冲液的作用:
①增加样 品密度,使其比重增加,以确保DNA均匀沉 入加样孔内;
②在电泳中形成肉眼可见的指 示带,可预测核酸电泳 的速度和位置;
③使样品呈色,使加样操作更方便。
配方:
将0.25%溴酚蓝、0.25%二甲苯青FF或分别,或同时 加入或30%甘油水溶液,或40%(W/V)蔗糖水溶 液,或15%聚蔗糖(Ficoll400)中。
GoldView DNA染料是一种可代替溴化乙锭(EB)的 新型DNA染料,使用方法与之完全相同。采用琼脂糖 凝胶电泳检测DNA时,GoldView与核酸结合后能产生 很强的荧光信号,其灵敏度与EB相当,在某些波段甚 至超过EB。在100ml琼脂糖胶溶液中加入5μl GoldView 即可,亦可在电泳缓冲液中以同样比例稀释后直接使 用。在紫外灯下双链DNA呈现绿色荧光,而单链多聚 核酸链呈红色荧光。因此,GoldView不仅能染双链 DNA,也可用于染RNA和单链DNA。GoldView DNA 染料在不同的波长下灵敏度有一定影响,建议使用 312nm波长。
聚丙烯酰胺 浓度 有效分离范围(bp) 二甲苯青FF
3.5
1000-2000
460
5.0
80-500
260
8.0
60-400
160
12.0
40-200
70
15.0
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
25-150
60
20.0
6-100
45
溴酚蓝
100 65 45 20 15 12
(三)电场强度
电场强度是指单位长度(cm)的电位降,也称电势梯 度。
1-5V/cm(低压),低压时,线性DNA迁移率与电压成 正比,而对于大片段电泳,甚至用0.5-1.0V/cm电泳过夜。
电场强度愈大,带点颗粒的泳动越快。但凝胶的有效分 离范围随着电压增大而减小。
高电压影响凝胶的分离范围,使分辨率下降:因为 随电压上升,不同长度DNA泳动的增加程度不同, 凝胶有效分离范围随电压上升而下降 。
凝胶浓度 浓度越小,孔径越大,浓度越大,孔径 越小 。
不同浓度琼脂糖凝胶的有效分离范围
浓度%(W/V)
0.3 0.6 0.7 0.9 1.2 1.5 2.0
线状DNA分子的有效 分离范围(kb)
5-60 1-20 0.8-10 0.5-7 0.4-6 1.2-3 0.1-2
DNA在聚丙烯酰胺凝胶中的有效分离范围
但是由于琼脂糖浓度、电场强度、离子强度和 溴化乙锭等的影响,会出现相反的情况。
3、带电量:核酸分子是两性解离分子,pH3.5是碱基 上的氨基解离,而三个磷酸基团中只有一个磷酸解离, 所以分子带正电,在电场中向负极泳动;而pH8.0-8.3 时,碱基几乎不解离,而磷酸基团解离,所以核酸分 子带负电,在电场中向正极泳动。不同的核酸分子的 电荷密度大致相同,因此对泳动速度影响不大。