分子生物学实验 PCR-RFLP检测NQO1 C609T多态性
RFLP 检测内皮一氧化氮合酶基因多态性

RFLP检测内皮一氧化氮合酶基因多态性一、实验背景PCR-RFPLDNA分子水平上的多态性检测技术是进行基因组研究的基础。
RFLP(限制片段长度多态性)已被广泛基因组遗传图谱构建、基因定位以及生物进化和分类的研究。
RFLP是根据不同个体基因组的限制性内切酶的酶切位点发生改变,或酶切位点之间发生碱基的插入、缺失,导致酶切片段大小发生变化,这种变化也可以通过特定探针杂交进行检测,从而可以比较不同个体DNA水平的差异(即多态性)。
内皮一氧化氮合酶基因多态性与高血压一氧化氮合酶(NOS)是一种催化小分子信息化合物,一氧化氮生成的酶广泛参与免疫调节、神经传递、血压生理调控和血小板凝聚的抑制等多种生理功能。
与高血压、糖尿病、肾病等多种疾病的发生密切相关。
NOS可以分为三型:神经元型、诱导型、内皮型。
内皮型一氧化氮合酶(NOS3,又称eNOS)基因在人类染色体上定位于7q35~7q36区域,跨度约21kb,含有26个外显子和25个内含子,相应的信使核糖核酸(mRNA)约4.1kb,翻译成含1203个氨基酸的蛋白产物。
近年来已知的NOS3的3个基因多态性位点与原发性高血压的关系。
1、位于第4内含子上的27bp数目可变的串联重复序列(VNTR),根据重复次数不同有两种等位基因,重复4次为a等位基因,重复5次为b等位基因。
2、位于第8外显子上,由于894位碱基G突变成T(G894T,即rs57135373),导致相应蛋白产物第298位上的谷氨酸被替换成天冬氨酸(Glu298Asp),突变前后的等位基因分别成为G、T等位基因。
3、位于5端侧翼区上786位碱基T突变成C(T786C),突变前后的等位基因分别为T、C等位基因。
G894T多态性1.与血管痉挛的关系:最近的研究显示带有G894T的NOS3基因转染细胞后可以分裂成100Kda和35Kda的两个片段,影响NOS3的功能导致NOS3合成减少或功能下降,NO减少,冠状动脉紧张性升高诱发冠状动脉痉挛。
PCR-RFLP

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C218A
NQO1基因多态性与大肠癌遗传易感性

NQO1基因多态性与大肠癌遗传易感性代恩勇;卢振霞;史洁萍;于雅琴;张静【期刊名称】《中国肿瘤临床》【年(卷),期】2004(31)2【摘要】目的:探讨依赖还原型辅酶Ⅰ/Ⅱ:醌氧化还原酶(NQO1)基因多态性与大肠癌遗传易感性之间的相关性.方法:采用聚合酶链反应-限制性片段长度多态性(PCR-RFLP)基因型分析技术对101例大肠癌患者及103例对照者NQO1 cDNA 609位点多态性进行测定.结果:基因型频率分布在大肠癌组与对照组差异显著(X2=9.52,P <0.01),T/T基因型携带者大肠癌患病危险性是野生纯合型(C/C)的3.56倍(OR=3.56,95%CI为1.58~7.96).NQO1 T等位基因及C等位基因频率在大肠癌组与对照组分别为42.1%、57.3%,57.9%、42.7%,T等位基因频率两组有显著差异(X2=9.43,P<0.01),T等位基因携带者患大肠癌的危险性是C等位基因携带者的1.85倍,(OR=1.85,95%CI为1.25~2.73).结论:NQO1在大肠癌的形成过程中起一定的保护作用,而NQO1 cDNA 609位点T等位基因可能是大肠癌发生的危险因素,NQO1基因的多态性与生活特征共同决定个体大肠癌的患病风险.【总页数】3页(P89-91)【作者】代恩勇;卢振霞;史洁萍;于雅琴;张静【作者单位】吉林大学中日联谊医院血液肿瘤科,长春市,130031;吉林大学中日联谊医院血液肿瘤科,长春市,130031;吉林大学公共卫生学院流行病学教研室;吉林大学公共卫生学院流行病学教研室;吉林大学中日联谊医院血液肿瘤科,长春市,130031【正文语种】中文【中图分类】R735.3+4【相关文献】1.白细胞介素-27的基因多态性与大肠癌的遗传易感性之间的相关性研究 [J], 郭俊宇;覃安强;李如锟;杨昌谋;黄甫达;黄展易;郭厚基2.NQO1基因多态性与肺癌遗传易感性 [J], 林月好;卢锡林;邵明3.血小板源性生长因子-D基因多态性与大肠癌遗传易感性关系的研究 [J], 杨志伟;王燕锋;朱大勇;陈晓红;毛晓光;王燕颖4.MTHFD1基因多态性与大肠癌遗传易感性的研究 [J], 彭勇;崔建华;赵新华;张石峰;张喜梅;黎亚芳;吴琼辉5.NQO1基因多态性与慢性苯中毒遗传易感性的研究 [J], 陈艳;纪之莹;许建宁;吴春玲;李桂兰因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
NQO1基因C609 T多态性与乳腺癌分子分型的关系及意义

NQO1基因C609 T多态性与乳腺癌分子分型的关系及意义汪满金;俸瑞发;刘晓萌;陈威;金美华【期刊名称】《临床与实验病理学杂志》【年(卷),期】2015(000)001【摘要】Purpose To investigate the distribution of polymorphisms of quinone oxidoreductase 1 (NQO1) C609T gene in breast cancer patients, and to analyze the relationship with breast cancer molecular subtype. Methods Genotyping of C609T rs1800566 lo-cus of NQO1 gene in peripheral blood of 248 cases of female breast cancer were detected using high-throughput TaqMan MGB real-time fluorescence quantitative PCR technology, while the detection of ER, PR, HER-2 and Ki-67 in cancerous tissues were used with immu-nohistochemical staining and FISH gene amplification. Results Among 248 cases of breast cancer patients, CC genotype accounted for 27. 42% (68/248), CT genotype accounted for 49. 60% (123/248), TT genotype accounted for 22. 98% (57/248), which con-sistent with Hardy-Weinberg equilibrium law genetic (P>0. 05). 5 cases of HER-2 (++) who did not undergo FISH testing were re-moved, all the rest were done with FISH detection. Luminal A type accounted for 15. 2% (37/243), Luminal B type accounted for 51. 4% (125/243), HER-2 overexpression type accounted for 19. 8% (48/243), basal cell type accounted for 13. 6% (33/243). Compared with patients carrying the CC genotype, ER and PR positive rates in breast cancer patients carrying CTand TT genotype was significantly higher (P<0. 05), while there was no statistically difference on the expression of HER-2 and Ki-67 proteins in two groups (P>0. 05). There was no statistically difference on distribution of C609T polymorphism of NQO1 gene among different molecular sub-types of breast cancer (P>0. 05). Conclusions Here is no relationship between C609T polymorphism of NQO1 gene and breast cancer molecular subtype, miss rate of NQO1 ( CT+TT) in basal cell carcinoma is lower, and its gene polymorphism may provide the reasonable explanation to the heterogeneity of breast cancer molecular subtype.%目的:探讨乳腺癌中醌氧化还原酶1(quinone oxido reductase 1, NQO1)基因第6外显子(C609T)多态性的分布,并分析其与乳腺癌分子分型的关系。
猪NCOA1基因PCR-RFLP多态性分析

猪NCOA1基因PCR-RFLP多态性分析侯永刚;闫守庆;何晓波;柏蒙蒙;孙泰雷;吴明明;孙金海【期刊名称】《安徽农业科学》【年(卷),期】2010(038)012【摘要】[目的]研究猪NCOA1基因的PCR-RFLP多态性,为猪的分子育种和标记辅助选择提供理论依据.[方法]以81头山东寿光六和原种猪场的长白猪为研究对象,采取常规酚-氯仿抽提法从猪耳组织提取基因组DNA,以基因组DNA为模板进行PCR扩增获得440 bp的NCOA1基因目的片段,利用限制性内切酶Rsa Ⅰ对PCR 产物进行酶切和琼脂凝胶电泳检测,并计算各等位基因频率和基因型频率.[结果]琼脂糖电泳检测酶切产物出现3种基因型:AA型(1条带:440 bp)、AB型(3条带:440、282、158 bp)、BB型(2条带:282、158 bp);基因型频率分别为0.54、0.43和0.03;A和B 2个等位基因的基因频率分别为0.76和0.24.[结论]该研究猪群中,A为优势等位基因,AA基因型频率较高.【总页数】2页(P6235-6236)【作者】侯永刚;闫守庆;何晓波;柏蒙蒙;孙泰雷;吴明明;孙金海【作者单位】青岛农业大学动物科技学院,山东青岛,266109;吉林大学畜牧兽医学院,吉林长春,130062;青岛农业大学动物科技学院,山东青岛,266109;青岛农业大学动物科技学院,山东青岛,266109;青岛农业大学动物科技学院,山东青岛,266109;青岛农业大学动物科技学院,山东青岛,266109;青岛农业大学动物科技学院,山东青岛,266109;吉林大学畜牧兽医学院,吉林长春,130062【正文语种】中文【中图分类】S828【相关文献】1.猪GPX5基因、FUT1基因和NCOA1基因的多态性分析 [J], 赵金凤;张冬杰;谷溪;谢雨彤;刘娣2.撒坝猪及长撒二元杂交猪SLA-DQA基因PCR-RFLP多态性分析 [J], 钱锦花;连林生3.猪NCOA1基因PCR-RFLP多态性分析(摘要)(英文) [J], 侯永刚;闫守庆;何晓波;柏蒙蒙;孙泰雷;吴明明;孙金海4.猪NCOA1基因PCR-RFLP多态性分析 [J], 侯永刚; 闫守庆; 何晓波; 柏蒙蒙; 孙泰雷; 吴明明; 孙金海5.大约克猪和二花脸猪SLA-DRB基因外显子2的PCR-RFLP多态性分析 [J], 杨彤彤;张婷婷;赵族;徐银学因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
如何用PCR法检测基因的多态性

如何用PCR法检测基因的多态性多态性(polymorphism)是指处于随机婚配的群体中,同一基因位点可存在2种以上的基因型。
在人群中,个体间基因的核苷酸序列存在着差异性称为基因(DNA)的多态性(gene polymorphism)。
这种多态性可以分为两类,即DNA位点多态性(site polymorphism)和长度多态性(longth polymorphism)。
基因多态性的主要检测方法简述如下:1.限制性片段长度多态性(Restriction Fragment Length Polymorphism,RFLP):由DNA 的多态性,致使DNA 分子的限制酶切位点及数目发生改变,用限制酶切割基因组时,钠问亢兔扛銎蔚某ざ染筒煌此降南拗菩云纬ざ榷嗵裕贾孪拗破纬ざ确⑸谋涞拿盖形坏悖殖莆嗵晕坏恪W钤缡怯肧outhern Blot/RFLP方法检测,后来采用聚合酶链反应(PCR)与限制酶酶切相结合的方法。
现在多采用PCR-RFLP法进行研究基因的限制性片段长度多态性。
2.单链构象多态性(SSCP):是一种基于单链DNA构象差别的点突变检测方法。
相同长度的单链DNA如果顺序不同,甚至单个碱基不同,就会形成不同的构象。
在电泳时泳动的速度不同。
将PCR产物经变性后,进行单链DNA凝胶电泳时,靶DNA中若发生单个碱基替换等改变时,就会出现泳动变位(mobility shift),多用于鉴定是否存在突变及诊断未知突变。
3.PCR-ASO探针法(PCR-allele specific oligonucleotide, ASO):即等位基因特异性寡核苷酸探针法。
在PCR扩增DNA片段后,直接与相应的寡核苷酸探杂交,即可明确诊断是否有突变及突变是纯合子还是杂合子。
其原理是:用PCR扩增后,产物进行斑点杂交或狭缝杂交,针对每种突变分别合成一对寡核苷酸片段作为探针,其中一个具有正常序列,另一个则具有突变碱基。
突变碱基及对应的正常碱基匀位于寡核苷酸片段的中央,严格控制杂交及洗脱条件,使只有与探针序列完全互补的等位基因片段才显示杂交信号,而与探针中央碱基不同的等位基因片段不显示杂交信号,如果正常和突变探针都可杂交,说明突变基因是杂合子,如只有突变探针可以杂交,说明突变基因为纯合子,若不能与含有突变序列的寡核苷探针杂交,但能与相应的正常的寡核苷探针杂交,则表示受检者不存在这种突变基因。
江苏汉族正常人群NQO1基因常见位点多态性

许婧11,尹立红1,浦跃朴1,张文翠1,王仪2,潘恩春21.东南大学公共卫生学院劳动卫生与环境卫生学系,江苏南京(210009)2. 江苏省淮安市疾病预防控制中心,江苏淮安(223200)E-mail:lhyin@摘要:本文应用聚合酶链式反应-限制性片断长度多态性(PCR-RFPL)、等位基因特异性引物-聚合酶链反应技术(AS-PCR)及普通Taqman探针等技术方法,对640例正常体检样本NQO1基因多位点进行分析。
通过研究发现NQO1基因相关位点野生型纯合子、杂合子、突变纯合子三种基因型的分布频率分别是: rs1800566 44.8%,36.4%,18.8%; rs4986998 93.5%,6.2%,0.3%; rs10517 16.1%,60.1%, 23.8%;编码区rs11555215和非编码区rs1050873, rs1063556, rs8056468四个位点未检测到杂合子和突变纯合子。
本研究结果与国内外相关报道有一定的差异。
对了解不同种族、不同地域人群NQO1基因的遗传特征具有一定的参考价值。
关键词:汉族人群;NQO1基因;多态性中图分类号:Q346.51. 引言NQO1基因位于人16号染色体q22区段,长约20kb,一共由6个外显子组成,中间被5个内含子所隔开[2],其编码的NAD(P)H:醌氧化还原酶1 (NAD(P)H: Quinine Oxidoreductase, NQO1;DT-硫辛酰胺脱氢酶,DT-diaphorase)[1]是一种黄素酶,酶分子以双聚体形式存在,每个亚基含有一个黄素腺嘌呤二核苷酸(FAD)分子,相对分子质量为30kb[2]。
该酶催化醌双电子还原反应,对醌及其衍生物有解毒作用,NQO1在细胞内主要存在于细胞质,在微粒体、线粒体、高尔基体中也可以检测到该酶的活性。
能够借助NADH或NADPH作为电子供体,催化体内醌类化合物的还原反应[3]。
醌在自然界中广泛存在,能诱发哺乳动物细胞癌变、突变和坏死。
末端限制性片段长度多态性技术_T_省略_微生物群体分析上的应用与技术优化_李献梅

中国农业大学学报 2009,14(4):1-9Journal o f China A g ricultur al U niv ersity末端限制性片段长度多态性技术(T -RFLP)在微生物群体分析上的应用与技术优化李献梅 王小芬 崔宗均*(中国农业大学农学与生物技术学院/中国农业大学生物质工程中心,北京100193)摘 要 末端限制性片段长度多态性技术(T-RFL P)是以荧光标记引物P CR 为基础,根据末端限制性片段长度区分出微生物群体组成的一种微生物群体图谱法。
本文综述了该方法在群体微生物分析上的应用及DN A 提取、PCR 扩增、酶切和数据分析等步骤的技巧与优化,总结了科学应用该技术的要求以及和多重PCR 、gy r B 基因等相结合的观点。
关键词 T -RF LP ;微生物群体;图谱分析;PCR;克隆中图分类号 Q 936 文章编号 1007-4333(2009)04-0001-09 文献标志码 A收稿日期:2008-10-27基金项目:国家/十一五0科技支撑计划(2006BAD07A 01;2006BA D25B04)第一作者:李献梅,博士研究生,E -mail:staro fchina@g 通讯作者:崔宗均,教授,主要从事生物质资源利用与微生物生态研究,E -mail:acuizj@Applications and optimizations of T -RFLP in fingerprintingenvironm ental microbial populationsLI Xian -mei,WANG Xiao -fen ,CUI Zong -jun *(College of Agronomy and Biotechnology/Center of Biomas s Engineeri ng,Chi na Agricul tural U nivers i ty,Bei jing,100193,China)Abstract Terminal re stric tio n fra gment leng th polymorphis m (T -RFLP)is one o f micro bia l popula tio n fing erprinting me tho ds tha t is ba sed o n labele d primers -PCR to ide ntify microbial co mposition a ccording to diffe re nt terminal re stric tio n frag me nt leng ths.The applic ations and te chnica l o ptimizations we re o ve rv iew ed o f T -RFLP thro ugh the pro cedures of DNA preparation,PCR,enzyme dig estion and da ta analysis.The sc ientific applic ation re quire me nts and new view s of combination with multiple -PCR o r g yr B g e ne we re dra wn.Key words T -RFLP;microbial po pulation;fing erprinting ana lysis;PCR;clone libra ry当前环境微生物组成及生态研究已经成为微生物领域的一大热点[1]。
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GGATCC CCTAGG NhomakorabeaGTC GAC CAG + CTG
G + GATCC G CCTAG
平端切口
粘端切口
NQO1基因C609T(rs1800566)
NQO1基因C609T(rs1800566)
NQO1基因C609T(rs1800566)
本实验利用盐析法提取口腔拭子DNA, PCR扩增后用Hin fⅠ酶切,琼脂糖凝胶电泳 分析NQO1基因C609T多态性。 盐析法提取口腔拭子DNA是用细胞裂解液 和蛋白酶K消化裂解口腔黏膜上皮细胞,使其释 放DNA,然后用浓盐沉淀蛋白质并通过离心去 除蛋白质,再用异丙醇沉淀DNA,最后经70% 乙醇洗涤后得到DNA。
PCR扩增
反应体系(20 μl): 2×Taq master mix 模板 引物(F+R) 灭菌去离子水 离心后放PCR仪扩增(注意盖子)
10.0 μl 1.0 μl 0.8 μl 8.2 μl
反应条件: 94℃ 94℃ 60℃ 72℃ 72℃ 5min 20s 20s 20s 5min
35个循环
PCR-RFLP
PCR (polymerase chain reaction) 聚合酶链式反应 RFLP (restriction fragment length polymorphism)
限制性片段长度多态性
限制性核酸内切酶
限制性核酸内切酶 (restriction 围切割双链DNA的一类内切酶。
2%琼脂糖凝胶电泳
酶切
10×FastDigest Green Buffer PCR产物 FastDigest Hin fⅠ 灭菌去离子水 1 μl 5 μl 1 μl 9 μl
混匀离心后37℃酶切 10min
GAAGCCCAGACCAACTTCTGTTGTTTATAGTACAACT GCATGGAATTGGTTGACTTACCTCTCTGTGCTTTCTG TATCCTCAGAGTGGCATTCTGCATTTCTGTGGCTTCC AAGTCTTAGAA[Y]CTCAACTGACATATAGCATTGGG CACACTCCAGCAGACGCCCGAATTCAAATCCTGGAA GGATGGAAGAAACGCCTGGAGAATATTTGGGATGA GACACCACTGTATTTTGCTCCAAGCAGCCT Y=C或T
gnl|dbSNP|rs1800566|allelePos=501|totalLen=1001|taxid=9606|snpclass=1|alleles='C/T'|mol=Genomic|build=147 AGTGGAAGCC GCAATGAGCC GAGATCGTGC CATGGCACTC CAGCCTGGAC GACCGAGCGA GACTCTGCCT CAAAAAAAAA AAAAAAAAGA AAAAGAAAAA AAGGACTCAT CTAGTTATAT GGAGAGGCAG AGAAATGCAC CCACGCAGGT CTTGGTGAGT CACCTGCCAA GAAACTGAGA CTCCCTAAAG TAACAGAACT TCCAGCCTTC TTGGCAAAGG ATCCAGGTTG GCACAGTTTC AAGGTTTATG CATTTAAAGA AGAACACACC TGAGAAGGCT AAAATTGGTA ACGGCTAGGT AGAGGGTAAG AGAGAGACGC TAGCTCTGAA CTGATTCTCT AGTGTGCCTG AGGCCTCCTT ATCAGAGTGT CTTACTGAGA AGCCCAGACC AACTTCTGTT GTTTATAGTA CAACTGCATG GAATTGGTTG ACTTACCTCT CTGTGCTTTC TGTATCCTCA GAGTGGCATT CTGCATTTCT GTGGCTTCCA AGTCTTAGAA Y CTCAACTGAC ATATAGCATT GGGCACACTC CAGCAGACGC CCGAATTCAA ATCCTGGAAG GATGGAAGAA ACGCCTGGAG AATATTTGGG ATGAGACACC ACTGTATTTT GCTCCAAGCA GCCTCTTTGA CCTAAACTTC CAGGCAGGAT TCTTAATGAA AAAAGAGGTA CAGGATGAGG AGAAAAACAA GAAATTTGGC CTTTCTGTGG GCCATCACTT GGGCAAGTCC ATCCCAACTG ACAACCAGAT CAAAGCTAGA AAATGAGATT CCTTAGCCTG GATTTCCTTC TAACATGTTA TCAAATCTGG GTATCTTTCC AGGCTTCCCT GACTTGCTTT AGTTTTTAAG ATTTGTGTTT TTCTTTTTCC ACAAGGAATA AATGAGAGGG AATCGACTGT ATTCGTGCAT TTTTGGATCA TTTTTAACTG ATTCTTATGA TTACTATCAT GGCATATAAC CAAAATCCGA CTGGGCTCAA GAGGCCACTT AGGGAAAGAT
单核苷酸多态性 ( single nucleotide polymorphisms ,SNPs),
是指群体基因组DNA特定的核苷酸位置上, 不同个体之间存在2种或2种以上不同碱基,形 成DNA序列多态性,其中低频率的等位基因在 群体中的频率不小于1%。
SNPs分类
非同义SNPs 编码区SNPs 同义SNPs 内含子区SNPs 调控区SNPs
GAAGCCCAGACCAACTTCTGTTGTTTATAGTACAACT GCATGGAATTGGTTGACTTACCTCTCTGTGCTTTCTG TATCCTCAGAGTGGCATTCTGCATTTCTGTGGCTTCC AAGTCTTAGAA[Y]CTCAACTGACATATAGCATTGGG CACACTCCAGCAGACGCCCGAATTCAAATCCTGGAA GGATGGAAGAAACGCCTGGAGAATATTTGGGATGA GACACCACTGTATTTTGCTCCAAGCAGCCT Y=C或T
PCR-RFLP检测NQO1 C609T多态性
【学习目的要求】
(一)掌握盐析法快速DNA抽提法的原理。 (二)掌握PCR-RFLP分型SNP的原理。 (三)熟悉盐析法快速DNA抽提法的操作技术。 (四)了解单核苷酸多态性的常用分型方法。
【实验教学内容】
(一)实验原理 (二)实验操作
(一)实验原理
Hin fⅠ
G ANTC
2%琼脂糖凝胶电泳
M 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 M
1: 2: 3:
CT 基因型
TT 基因型
G ANTC × G ANCC
CC 基因型
Bam HⅠ GGATCC CCTAGG
endonuclease,
RE)是识别DNA的特异序列, 并在识别位点或其周
G GATCC + CCTAG G
Ⅱ类酶识别序列特点—— 回文结构(palindrome)
GGATCC CCTAGG 切口:平端切口、粘端切口
HindⅡ
Bam HⅠ
GTCGAC CAGCTG
单核苷酸多态性的常用分型技术 单链构象多态性、RFLP (restriction fragment length polymorphism,限制性片段长度多态性),变性梯度凝 胶电泳、温度梯度凝胶电泳、变性高效液相色谱、单 碱基延伸、高分辨率熔解曲线、DNA测序等,它们都 是在对目的SNP扩增的基础上对PCR产物进行分析。
(二)实验操作
盐析法提取口腔拭子DNA
1、清水漱口,灭菌棉签擦拭颊粘膜10次。 2、将拭子放入1.5 ml 离心管中,加入裂解液400 μl、蛋白酶K 20 μl,搅动使拭子上口腔黏膜上皮细胞脱落,折断拭子(棉 花部分留在离心管中)。 3、将离心管放入65℃恒温水浴箱30 min,期间摇动数次。 4、取出离心管瞬时离心,加入200 μl 5M Nacl,充分混匀。瞬 时离心,将离心管内液体尽量转移到新的离心管中。15000rpm ×5 min,将上清转移到新的离心管中。 5、加入等体积异丙醇,充分混匀。15000 rpm×5 min,弃上 清。沉淀加1.0 ml 70%乙醇洗涤1次,15000 rpm×5 min, 弃上清。 6、瞬时离心,吸出管底乙醇,加入DNA溶解液50 μl。