羊种布鲁氏菌的分离鉴定及其ugpB基因的原核表达

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羊布氏杆菌病的检测与防治策略

羊布氏杆菌病的检测与防治策略

羊布氏杆菌病的检测与防治策略
羊布氏杆菌病是一种由细菌Clostridium perfringens引起的传染病,主要影响羊和其他反刍动物。

本文将介绍羊布氏杆菌病的检测方法以及防治策略。

羊布氏杆菌病的检测主要通过病原体的分离和鉴定来完成。

下面是常用的几种检测方法:
1. 细菌分离:可以采集羊的粪便、肠道和组织样本,将样本接种到富含羊血素和酪蛋白的培养基上,利用细菌的营养需求来培养和分离出布氏杆菌。

2. 生化鉴定:通过观察细菌在不同培养基中的生长特点来鉴定菌株。

羊布氏杆菌在厌氧条件下有较好的生长,并能产生酶和毒素。

3. 分子检测:应用PCR技术检测布氏杆菌的特异基因或DNA序列,以确定是否存在该菌株。

这种方法可以更快速、准确地鉴定病原体。

对于羊布氏杆菌病的防治,以下是一些常用的策略:
1. 养殖环境卫生:保持羊圈、饮水设施和饲料槽等养殖设施的清洁,定期清理粪便和废料,避免污染和细菌扩散。

2. 饲养管理措施:给予高质量的饲料,避免过度饲养和营养不良,保持羊的免疫力和健康状态。

3. 疫苗接种:可使用布氏杆菌疫苗对羊进行预防接种。

在疫区或高风险场所,定期接种疫苗可有效减缓疫情扩散。

4. 药物治疗:对于发生疫情的羊群,可以通过使用抗生素进行药物治疗,有效控制羊布氏杆菌的繁殖和扩散。

5. 隔离和早期发现:对于羊布氏杆菌的感染个体,应及时隔离并进行早期检测和治疗,以防止病情扩大和传播给其他羊。

对于羊布氏杆菌病的检测和防治,关键在于有效控制细菌的扩散和繁殖。

通过科学的管理和预防措施,可以降低感染率和疫情的发生,保障羊的健康和养殖业的稳定发展。

新疆绵羊种布鲁氏菌的首次分离和鉴定

新疆绵羊种布鲁氏菌的首次分离和鉴定

新疆绵羊种布鲁氏菌的首次分离和鉴定
刘志文;缪礼维
【期刊名称】《石河子科技》
【年(卷),期】1992(000)A00
【总页数】4页(P1-4)
【作者】刘志文;缪礼维
【作者单位】不详;不详
【正文语种】中文
【中图分类】S858.26
【相关文献】
1.新疆羊种布鲁氏菌分离株的鉴定与L7/L12蛋白的原核表达和生物信息学分析[J], 刘升;江雅丽;付强;史慧君;李爽;孟露萍;郭飞;张辉;陈创夫
2.首次从犬体内分离出羊种布鲁氏菌变异菌株的鉴定 [J], 石萍
3.贵州省首次从山羊分离到布鲁氏菌及其种型鉴定 [J], 李世军;陈贵春;王月;陈红;田克诚;唐光鹏;王定明;王仕香;周敬祝;刘昭兵
4.病绵羊体内分离的拟似绵羊附睾种布氏菌的首次系统鉴定与分类 [J], 冯培忠;苏城;黄建
5.首次从喜马拉雅旱獭分离布鲁氏菌与鉴定 [J], 谢辉;薛红梅;于守鸿;徐立青;马丽;杨旭欣;张爱萍
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羊种布鲁氏菌dhbC基因的克隆、原核表达及生物信息学分析

羊种布鲁氏菌dhbC基因的克隆、原核表达及生物信息学分析

羊种布鲁氏菌dhbC基因的克隆、原核表达及生物信息学分析李宝宝;李亚颖;王凤阳;杜丽;聂鑫;杨小健;曹瑞勇;朱姝;黄海峰;张振兴;彭冬梅;李国华【期刊名称】《中国畜牧兽医》【年(卷),期】2017(044)007【摘要】This study was aimed to clone and express dhbC gene of Brucella melitensis, and analyze the bioinformatics of its expressed protein.A pair of primers were designed by referring to dhbC gene sequence information of Brucella melitensis M5-90 strain in GenBank, and the dhbC gene fragment was amplified by PCR method.The obtained dhbC gene was ligated into pMD20-T vector to construct pMD20-T-dhbC recombinant plasmid and transformed into E.coli DH5α competent cells.The plasmid was identified by restriction enzyme digestion.The recombinant plasmid pET28a-dhbC was constructed and transformed into E.coli BL21 (DE3) competent cells.The expression was induced by IPTG.The expressed product was analyzed by SDS-PAGE and Western blotting.Bioinformatics analysis of the amino acid sequence encoded by dhbC gene was carried out using bioinformatics software DNAMAN and related online sites ProtParam, SOPMA and Protscale.The results showed that dhbC gene was cloned with the length of 1 093 bp, and protein expression was expressed.The expressed fusion protein was about 47 ku, and was mainly in the form of inclusion body.The molecular weight of the dhbC protein wasC1866H2968N544O562S15, the molecular mass was 42 496.3 u, the theoretical isoelectric point (pI) was 5.81, the extinction coefficient was 33 835, the instability coefficient was 36.76, the hydrophobic index was 86.19, the total average hydrophobicity (GRAVY) was -0.215.The half-life of reticulocytes in mammals was predicted to be 30 h, and the secondary structure was dominated by α-helix (41.94%) and random coil (31.46%).%试验旨在对羊种布鲁氏菌dhbC基因进行克隆及原核表达,并对其表达蛋白进行生物信息学分析.参照GenBank中布鲁氏菌M5-90株dhbC基因序列信息设计1对引物,通过PCR反应扩增获得dhbC基因片段.将得到的dhbC基因连接到pMD20-T载体,构建pMD20-T-dhbC重组质粒并转化大肠杆菌(E.coli)DH5α感受态细胞,提取质粒进行酶切鉴定.鉴定正确后构建pET28a-dhbC重组质粒,转化E.coli BL21(DE3)感受态细胞.经IPTG诱导表达,表达产物用SDS-PAGE和Western blotting进行分析.运用生物信息学软件DNAMAN及相关在线网站ProtParam、SOPMA及Protscale对dhbC基因编码的氨基酸序列进行生物信息学分析.结果表明,试验成功克隆了大小约为1 093 bp的dhbC基因并进行了蛋白表达,表达的融合蛋白大小约为47 ku,且主要以包涵体形式存在.dhbC蛋白的分子式为C1866H2968N544O562S15,分子质量为42 496.3 u,理论等电点(pI)为5.81,消光系数为33 835,不稳定系数为36.76,疏水指数为86.19,总平均疏水性(GRAVY)为-0.215.预测在哺乳动物网织红细胞的半衰期为30 h,其二级结构以α-螺旋(41.94%)和无规则卷曲(31.46%)为主.【总页数】7页(P1947-1953)【作者】李宝宝;李亚颖;王凤阳;杜丽;聂鑫;杨小健;曹瑞勇;朱姝;黄海峰;张振兴;彭冬梅;李国华【作者单位】海南大学热带农林学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海口570228;海南大学热带农林学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海口570228;海南大学热带农林学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海口570228;海南大学热带农林学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海口570228;海南大学热带农林学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海口570228;海南大学热带农林学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海口570228;海南大学热带农林学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海口570228;海南大学热带农林学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海口570228;海南大学热带农林学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海口570228;海南大学热带农林学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海口570228;海南大学热带农林学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海口570228;海南大学热带农林学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海口570228【正文语种】中文【中图分类】Q78【相关文献】1.羊种布鲁氏菌043新疆流行株WbdA基因和WbkE基因的原核表达及生物信息学分析 [J], 王红红;熊意;马亚茹;李爽;张辉;陈创夫2.羊种布鲁氏菌LpxB基因的克隆、原核表达及其蛋白的生物信息学分析 [J], 聂鑫;王凤阳;杜丽;赵天靖;曹瑞勇;彭冬梅;李国华;李亚颖;徐开莲;朱华培;庞峰3.布鲁氏菌外膜蛋白2b基因的克隆、原核表达及蛋白生物信息学分析 [J], 赵天靖;贾晓晓;焦寒伟;朱华培;徐开莲;郭莳雨;史巧芸;荣辉;成鹰4.布鲁氏菌eryA基因的克隆、原核表达及生物信息学分析 [J], 宋前进; 杭天宇; 乌东高娃; 李伊铭; 关平原; 温永俊5.羊种布鲁氏菌Rev.1株VjbR基因的克隆、原核表达及生物信息学分析 [J], 杭天宇; 宋前进; 金铭; 关平原; 温永俊因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

14651392_羊种布鲁氏菌dhbC基因的克隆、原核表达及生物信息学分析

14651392_羊种布鲁氏菌dhbC基因的克隆、原核表达及生物信息学分析
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鉴定布鲁氏菌病疫苗株与野毒株的引物、探针及试剂盒[发明专利]

鉴定布鲁氏菌病疫苗株与野毒株的引物、探针及试剂盒[发明专利]

(19)中华人民共和国国家知识产权局(12)发明专利申请(10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 202010819161.9(22)申请日 2020.08.14(71)申请人 新疆畜牧科学院兽医研究所(新疆畜牧科学院动物临床医学研究中心)地址 830011 新疆维吾尔自治区乌鲁木齐市新市区北区冬融街726号(72)发明人 叶锋 马晓菁 谷文喜 刘丽娅 易新萍 谢彩云 陈荣贵 刘帅 钟旗 古丽努尔·吐尔逊 张旭 (74)专利代理机构 北京众合诚成知识产权代理有限公司 11246代理人 刘妮(51)Int.Cl.C12Q 1/689(2018.01)C12Q 1/6851(2018.01)C12Q 1/06(2006.01)C12N 15/11(2006.01)C12R 1/01(2006.01) (54)发明名称鉴定布鲁氏菌病疫苗株与野毒株的引物、探针及试剂盒(57)摘要本发明提供了一种鉴定布鲁氏菌病疫苗株与野毒株的引物、探针及试剂盒,所述引物的核苷酸序列如SEQ ID NO.1~2所示,所述探针的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示,所述的试剂盒包含上述引物和探针。

既可鉴别纯布鲁氏菌核酸DNA ,也可鉴别组织样本等微量布鲁氏菌核酸DNA,将牛种布鲁氏菌A19‑ΔVirB12分子标记疫苗免疫样品和布鲁氏菌现有疫苗免疫样品、野毒株感染样品区分开来。

本方法具有安全性高操作便捷、灵敏度高、特异性强等优点,能同时检测大量样品,对布鲁氏菌病的防控和诊断具有实际应用价值。

权利要求书1页 说明书4页序列表1页 附图1页CN 111778342 A 2020.10.16C N 111778342A1.一种用于鉴别牛种布鲁氏菌A19-ΔVirB12分子标记疫苗株与布鲁氏菌疫苗株及野毒株的引物,其特征在于,所述引物的核苷酸序列如SEQ ID NO.1~2所示。

2.一种用于鉴别牛种布鲁氏菌A19-ΔVirB12分子标记疫苗株与布鲁氏菌疫苗株及野毒株的探针,所述探针的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示。

羊种布鲁氏菌Omp10基因的克隆及原核表达

羊种布鲁氏菌Omp10基因的克隆及原核表达

羊种布鲁氏菌Omp10基因的克隆及原核表达徐开莲,朱华培,赵天靖,贾晓晓,郭莳雨,庞峰,焦寒伟,成鹰,杜丽,史巧芸,荣辉,张珈宁,王凤阳(海南大学农学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海南海口 570228)摘要:根据GenBank公布的羊布鲁氏菌(B.melitensis)M5-90株外膜蛋白(outer membrane protein,Omp)基因序列,设计1对引物,以其全基因组为模板,采用PCR技术对其进行扩增,得到381bp的目的片段,连接入pMD20-T载体,转化E.coliDH5α感受态细胞;测序正确后,构建pET-28a-Omp10原核表达质粒,再将该质粒转化入E.coli BL21(DE3),IPTG诱导表达融合蛋白His-Omp10,用SDS-PAGE和Western blotting进行分析。

结果表明,成功构建了含Omp10基因的原核表达载体,并在E.coli BL21(DE3)中表达了Omp10基因,诱导得到的融合蛋白经鉴定与目的蛋白大小一致,证明Omp10得到成功表达。

该试验为布鲁氏菌病的进一步研究奠定基础。

关键词:布鲁氏菌;Omp10基因;原核表达;克隆中图分类号:R378.5 文献标识码:A 文章编号:1671-7236(2014)12-0122-04 布鲁氏菌(B.melitensis)病是由细胞内兼性布鲁氏菌引起的,是世界范围内常见的人畜共患病,能引起家畜流产及人的热性疾病(Smith等,2013)。

世界上170多个国家和地区有人、畜布鲁氏菌病的存在和流行(Rajesh,2003)。

布鲁氏菌属为微小革兰氏阴性,无荚膜、鞭毛、芽孢及天然质粒的三层膜结构的多形性球杆菌,其外膜与肽聚糖层紧密结合成细胞壁,含有脂多糖、蛋白质和磷脂(Shohreh等,2002)。

外膜的蛋白质称为外膜蛋白(outer mem-braneprotein,Omps)。

羊种布鲁氏菌Wzt基因的克隆及原核表达

羊种布鲁氏菌Wzt基因的克隆及原核表达庞峰;贾晓晓;赵天靖;朱华培;徐开莲;郭莳雨;史巧芸;荣辉;周海龙【期刊名称】《中国畜牧兽医》【年(卷),期】2014(41)11【摘要】为进一步研究Wzt蛋白在光滑型脂多糖合成路径中的作用,本试验利用PCR技术,以羊种布鲁氏菌16 M株基因组为模板,扩增出大小为759 bp的Wzt基因片段,将其连入pMD20-T载体,测序正确后构建重组质粒pET-28a-Wzt,转化E.coli BL21 (DE3)工程菌,IPTG诱导其表达,最后用Western blotting鉴定蛋白.结果显示,扩增出的Wzt基因片段大小为759 bp,与GenBank中登录的羊种布鲁氏菌16M株Wzt基因序列(登录号:AF047478.1)同源性为99.87%,证明成功克隆了Wzt基因,同时成功构建了pET-28a-Wzt原核表达载体,并在E.coli BL21(DE3)工程菌中表达了Wzt蛋白,诱导得到的融合蛋白大小约为30 ku,位于25~35 ku之间,与目的蛋白大小一致,结果表明成功表达了目的基因.【总页数】4页(P54-57)【作者】庞峰;贾晓晓;赵天靖;朱华培;徐开莲;郭莳雨;史巧芸;荣辉;周海龙【作者单位】海南大学农学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海南海口 570228;海南大学农学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海南海口 570228;海南大学农学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海南海口 570228;海南大学农学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海南海口 570228;海南大学农学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海南海口570228;海南大学农学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海南海口 570228;海南大学农学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海南海口 570228;海南大学农学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海南海口 570228;海南大学农学院,海南省热带动物繁育与疫病研究重点实验室,海口市动物基因工程重点实验室,海南海口 570228【正文语种】中文【中图分类】Q78【相关文献】1.羊种布鲁氏菌dhbC基因的克隆、原核表达及生物信息学分析 [J], 李宝宝;李亚颖;王凤阳;杜丽;聂鑫;杨小健;曹瑞勇;朱姝;黄海峰;张振兴;彭冬梅;李国华2.羊种布鲁氏菌LpxB基因的克隆、原核表达及其蛋白的生物信息学分析 [J], 聂鑫;王凤阳;杜丽;赵天靖;曹瑞勇;彭冬梅;李国华;李亚颖;徐开莲;朱华培;庞峰3.羊种布鲁氏菌Omp10基因的克隆及原核表达 [J], 徐开莲;朱华培;赵天靖;贾晓晓;郭莳雨;庞峰;焦寒伟;成鹰;杜丽4.羊种布鲁氏菌Rev.1株VjbR基因的克隆、原核表达及生物信息学分析 [J], 杭天宇; 宋前进; 金铭; 关平原; 温永俊5.羊种布鲁氏菌wzt基因的原核表达及间接ELISA方法的建立 [J], 赵鹭; 葛志毅; 刘永生; 李学瑞; 曹小安因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

羊布鲁氏菌病原分离诊断和综合防治措施

羊布鲁氏菌病原分离诊断和综合防治措施羊布鲁氏菌病是一种由布鲁氏菌引起的疾病,可影响羊的健康和生产性能。

本文介绍了羊布鲁氏菌病的病原学、诊断方法、防治措施等方面的研究进展和应用实践,旨在为相关研究和实践提供参考和借鉴。

关键词:羊布鲁氏菌病、病原学、诊断、防治一、引言羊布鲁氏菌病是一种由布鲁氏菌引起的疾病,主要影响羊的健康和生产性能。

布鲁氏菌是一种革兰氏阴性杆菌,具有强烈的致病性和传染性,可导致多种动物和人类的疾病。

羊布鲁氏菌病在世界范围内广泛存在,对农业生产和人类健康造成了重大威胁。

因此,对羊布鲁氏菌病的病原学、诊断和防治进行深入研究和探索,具有重要的理论和实践意义。

二、病原学羊布鲁氏菌病的病原菌为布鲁氏菌,属于革兰氏阴性菌,是一种不易培养和诊断的病原菌。

羊感染布鲁氏菌后,病菌可在全身各个器官和组织内繁殖和扩散,导致全身性感染和病变。

病菌主要通过消化道、呼吸道和皮肤创口等途径进入机体,引起感染。

布鲁氏菌具有强烈的抗药性和变异性,对常规抗菌药物的敏感性较低,容易产生耐药菌株和多重耐药。

三、诊断方法羊布鲁氏菌病的诊断主要依靠病原学检测和临床表现。

常见的诊断方法包括:1. 细菌学检测:采用分离培养和鉴定方法,从患羊体内分离出布鲁氏菌,并进行生化、血清学和分子生物学鉴定,以确定病原菌的类型和特征。

2. 血清学检测:采用血清学检测方法,检测患羊体内的布鲁氏菌抗体水平,以确定感染情况和病程。

3. 分子生物学检测:采用PCR等分子生物学技术,检测患羊体内的布鲁氏菌DNA,以确定病原菌的存在和种类。

4. 临床表现:羊布鲁氏菌病的临床表现包括发热、厌食、消瘦、贫血、关节肿痛、流产等症状,可以结合病史和临床表现进行初步诊断。

四、防治措施羊布鲁氏菌病的防治措施主要包括预防和治疗两个方面。

1. 预防措施(1)加强动物管理:加强饲养管理、环境卫生和个体防护,控制动物的感染和传播。

(2)强化疫苗接种:注射有效的布鲁氏菌疫苗,提高群体免疫力,减少病原菌的传播和感染。

羊种布鲁氏菌生物3型的分离和鉴定_王远志


表 1 所用菌株的常规鉴定方法和结果 Table 1 Conventional identification methods and
results of used Brucella strains
( 1. 石 河 子 大 学 新 疆 地 方 与 民 族 高 发 病 省 部 共 建 教 育 部 重 点 实 验 室 / 石 河 子 大 学 动 物 科 技 学 院 , 新 疆 石 河 子 832003 ; 2. 中 国 疾 病 预 防 与 控 制 中 心 传 染 病 预 防 控 制 所 , 北 京 100050)
2结果
2.1 细 菌 培 养 培 养 82 h 后 , 部 分 菌 落 大 小 约 0.5 mm, 边 缘 整 齐 , 呈 露 滴 状 、 折 光 较 明 亮 , 符 合 布鲁氏菌的菌落形态。 2.2 omp22 PCR 鉴 定 对 培 养 82 h 后 长 出 的 42 个 疑 似 布 鲁 氏 菌 菌 落 进 行 PCR 鉴 定 , 并 用 热 灭 活 的 大 肠 杆 菌 DH5α 和 绵 羊 种 布 鲁 氏 菌 63/290 作 为 阴 性 对 照 ( NC) 和 阳 性 对 照 ( PC) , 20 个 菌 落 PCR 为 阳 性 结 果 ( 图 1) 。 2.3 染 色 鉴 定 对 20 个 PCR 鉴 定 为 阳 性 的 菌 落 进 行 改 良 萋 - 尼 氏 染 色 [3], 结 果 镜 下 有 12 个 菌 落 为 单 一的红色球杆菌, 而其他 8 个菌落虽被染成红色, 但有部分呈现蓝色, 说明菌落受到污染。 2.4 RFLP-PCR 鉴 定 PCR 扩 增 电 泳 图 ( 图 2) 显 示 , 阳 性 对 照 P 泳 道 和 1~9 泳 道 中 分 离 的 野 毒 株
图 3 布 鲁 氏 菌 omp2b 基 因 PCR 产 物 EcoRⅠ 酶 切 结 果 Fig.3 EcoRⅠ digestion of Brucella omp2b PCR product

羊种布鲁菌omp25的原核表达与免疫原性检测

羊种布鲁菌omp25的原核表达与免疫原性检测吴杰;吴树清;李东兴;刘艳琴;张明月;海岩【摘要】To express omp25 gene of Brucella in E. Coli Rosella and detect the immunogenicity of the recombinant protein, the target fragment of omp25 gene was amplified by PCR from the B. Melilensis M306 strain and was cloned into expression vector PKT-32a. After transforming into competent E. Coli Rosella and inducing by IPTG, the recombinant protein was expressed. As detected by SDS-PAGK and western-blot, this recombinant protein has immunogenicity. It was confirmed DNA sequencing and restriction enzymes cleavage that the recombinant plasmid PET-32a/omp25 was constructed successfully. Furthermore, the result of SDS-PAGE and western-blot assay showed that PET-32a/omp25 was expressed successfully in E. Coli Rosella and the recombinant protein could react with B. Melilensis positive serum. This study provides a good foundation for the diagnosis of brucellosis and the preparation of new types of vaccines of Brucella.%目的在大肠杆菌中表达羊种布鲁菌omp25基因并鉴定重组蛋白的免疫原性.方法从羊种布鲁菌中用聚合酶链反应技术(PCR)扩增得到布鲁菌omp25基因片段,并将目的基因插入原核表达载体PET-32a中,构建重组质粒PET-32a/omp25转入大肠杆菌E.coli Rosetta中并进行诱导表达,用SDS-PAGE和western-blot检测表达蛋白.结果成功构建了重组质粒PET-32a/omp25,并在大肠杆菌Rosetta中获得了重组蛋白,重组蛋白与布鲁菌阳性血清发生特异性反应.结论重组质粒PET-32a/omp25可以在大肠杆菌Rosetta中成功表达,并且重组蛋白可与布鲁菌阳性血清发生特异性反应,说明该重组蛋白有良好的免疫原性,该研究为疫苗的研制及布鲁菌病的检测打下良好的基础.【期刊名称】《中国人兽共患病学报》【年(卷),期】2012(028)003【总页数】3页(P241-243)【关键词】布鲁菌;omp25;表达;免疫原性【作者】吴杰;吴树清;李东兴;刘艳琴;张明月;海岩【作者单位】内蒙古农业大学兽医学院,呼和浩特,010018;内蒙古农业大学兽医学院,呼和浩特,010018;内蒙古农业大学兽医学院,呼和浩特,010018;内蒙古农业大学兽医学院,呼和浩特,010018;内蒙古农业大学兽医学院,呼和浩特,010018;内蒙古疾病预防控制中心,呼和浩特,010010【正文语种】中文【中图分类】R378.5布鲁菌病是由布鲁菌属细菌引起的动物源性疾病,是一种人畜共患传染性疾病,该病在我国发病呈逐年上升趋势[1]。

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丁美洲部分地区[3]。在我国布鲁氏菌病最主要的 致 病原也是羊种布鲁氏菌[4],近几年,羊种布鲁 氏菌 在我国局部地区也有分离的报道 。 [5-8]
随着世界贸易市场的不断拓宽,世界优势品种 动物流通和交流逐步加深,布鲁氏菌病的人畜疫情 在我国和世界部分国家和地区均出现了回升势头,该 病已成为世界范围内严重的公共卫生问题之一[9],给 畜牧业生产带来严重的经济损失,仅新疆地区每年因 布鲁氏菌病引起流产、空怀等少生幼畜达 100 万头~
ZHANG Hui1,2, CHEN Chuang-fu1,2*, WANG Yuan-zhi3, SHENG Jin-liang2, REN Yan2, GUO Fei2
(1. Key Laboratory of Xinjiang Endemic and Ethnic Disease, Shihezi 832003, China; 2. College of Animal Science and Technology of Shihezi University, Shihezi 832003, China; 3. College of Medicine of Shihezi University, Shihezi 832003, China)
第 31 卷 第 5 期 2009 年 5 月
中国预防兽医学报
Chinese Journal of Preventive Veterinary Medicine
Vol. 31,No.5 May 2009
羊种布鲁氏菌的分离鉴定及其 ugpB 基因的原核表达
张 辉 1,2,陈创夫 , 1,2* 王远志 3,盛金良 2,任 艳 2,郭 飞 2
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中国预防兽医学报
2009 年
1.9 重组融合蛋白 ugpB 的诱导表达及检测 将检 测正确的阳性重组菌接种 10 mL LB 液体培养基,培 养过夜。次日按 2 %的接种 LB 液体培养基,37 ℃培 养至 OD600nm=0.6 左右时,加入终浓度为 1 mmol/L 异 丙 基 硫 代 半 乳 糖 苷 (IPTG) 进 行 诱 导 表 达 。 分 别 于 2 h、3 h、4 h、5 h、6 h 取样,各 1.5 mL 离心,取 沉 淀 的 菌 体 , 进 行 SDS-PAGE 电 泳 分 析 、 western blot 分析;并利用凝胶成像软件 LabWorks 对表达蛋 白占菌体蛋白的含量进行分析,剩余部分菌液离心, 用于重组融合蛋白纯化。 1.10 重组蛋白的 Ni- NTA 亲和纯化 重组融合蛋 白 纯 化 用 QIAGEN 公 司 Ni-NTA Agarose 试 剂 盒 完 成,操作按试剂盒说明书进行。将沉淀的菌体重悬 于 5 mL Buffer B 中,超声破碎 - 冻溶处理 4 次;超 声 破 碎 每 次 10 s, 间 歇 15 s, 10 次 / 周 期 。 4 ℃ 12 000 r/min 离心 30 min,收集上清,加入用 Buffer B 平衡过的 Ni-NTA 琼脂糖珠,4 ℃轻柔震荡 30 min; 用漂洗缓冲液 Buffer C、D 依次清洗 Ni-NTA 琼脂糖 珠;最后用 Buffer E 对 Ni-NTA 琼脂糖珠进行洗脱, 收集洗脱液,进行 SDS-PAGE 电泳检测。
轮 PCR 加 样 量 : 10 × 缓 冲 液 5 μL, dNTP 4 μL, Taq 酶 2.5 μL,SP1 和 SP2 各 1.5 μL,模板为第一轮 的稀释物 2 μL,超纯水 33.5 μL。
PCR 的 反 应 条 件 : 第 一 轮 反 应 : 95 ℃ 3 min, 94 ℃ 80 s,55 ℃ 50 s,72 ℃ 50 s,35 个循环,72 ℃ 10 min。第二轮反应:95 ℃ 3 min, 94 ℃ 30 s,57 ℃ 40 s,72 ℃ 40 s,35 个循环,72 ℃ 10 min。 1.5 生化鉴定 将经过细菌群体、个体形态观察及 PCR 检测后,初步判定为布鲁氏菌阳性的菌株严格 按 《可感染人类的高致病性病原微生物菌(毒)种或 样本运输管理规定》 送交中国疾病预防与控制中心 传染病预防控制所布鲁氏菌病组进行细菌学鉴定。 1.6 羊种布鲁氏菌新疆 027 株 ugpB 基因的克隆 根据 GenBank 中登录的布鲁氏菌(登录号:3827694) ugpB 基 因 序 列 , 用 Primer5.0 软 件 进 行 引 物 设 计 , 引物序列为:P1:5'-GATATCATGTTCACCCGTCTG ATCAC-3'; P2: 5'-GTCGACTTATTGAGCTGCGGC GATT-3'。
(1. 新疆地方与民族高发病教育部重点实验室,新疆 石河子 832003; 2. 石河子大学 动物科技学院,新疆 石河子 832003;3. 石河子大学 医学院,新疆 石河子 832003)
摘 要:对新疆某羊场流产胎儿进行布鲁氏菌病原分离、培养,采用细菌群体形态观察、PCR、生化试验进
行鉴定,结果分离得到了羊种布鲁氏菌生物 3 型,命名为 027 株。应用常规分子生物学方法克隆羊种布鲁氏菌生
Key words: Brucella melitensis; isolation; identification; ugpB gene; protein purification
布鲁氏菌病是一种严重危害人和家畜的世界 性、多宿主感染的细菌性慢性传染病,病原为布鲁 氏 菌 [1], 根 据 布 鲁 氏 菌 的 细 菌 学 特 征 和 感 染 宿 主 的 偏爱性,布鲁氏菌属分为 6 个种,即羊种布鲁氏菌, 牛种布鲁氏菌,猪种布鲁氏菌,犬种布鲁氏菌,绵 羊 附 睾 种 布 鲁 氏 菌 和 沙 林 鼠 种 布 鲁 氏 菌 [2]。 其 中 羊 种布鲁氏菌流行最为广泛,成为引发布鲁氏菌病的 典型菌株,是世界范围内危害人、畜健康的重要病 原菌,该菌广泛分布于地中海沿岸国家、西亚及拉
Abstract: A Brucella isolate was isolated from aborted fetuses at a sheep farm in Xinjiang and characterized by PCR, biochemical assays. The result showed that the isolate belonged to Brucella melitensis biovar 3, and named Brucella melitensis 027. The ugpB gene of 027 strain was cloned into prokaryotic expression vector pET-32a (+) and transformed into E.coli BL21 (DE3) cells. Expression of the fusion protein ugpB was induced by IPTG and confirmed by SDS-PAGE and western blot.
PCR 反应的体系:10×反应缓冲液(含 15 mmol/L MgCl2) 2 μL,dNTP (各 2.5 mmol/L) 0.8 μL,上游引 物 P1 (25 μmol/L) 0.3 μL,下游引物 P2 (25 μmol/L) 0.3 μL,模板 0.5 μL,Taq 酶 0.75 u,补水至 20 μL; PCR 反应条件:94 ℃ 5 min;94 ℃ 50 s,53 ℃ 40 s, 72 ℃ 90 s,30 个循环;72 ℃延伸 10 min。PCR 产 物进行 2 %琼脂糖凝胶电泳分析。 1.7 pGM- T- ugpB 克 隆 载 体 的 构 建 及 鉴 定 将 纯 化的 PCR 产物与 pGM-T 载体 16 ℃过夜连接。连接 产 物 用 化 学 转 化 法 转 化 E.coli JM109 感 受 态 细 胞 。 转化后的 JM109 细胞涂于含 X-gal 和 IPTG 的氨苄抗 性 LB 固 体 培 养 基 上 , 37 ℃ 培 养 , 进 行 蓝 白 斑 筛 选。对阳性克隆进行培养,提取质粒,用 PCR 方法 和限制性内切酶 EcoRⅤ和 SalⅠ双酶切方法鉴定重 组质粒,对鉴定正确的质粒送上海生工生物工程有 限责任公司进行 DNA 测序分析。 1.8 pET- ugpB 原核表达载体的构建及鉴定 分别 将 pET-32a (+)质粒和 pGM-T-ugpB 质粒用限制性内切 酶 EcoRⅤ和 SalⅠ双酶切,分别回收 pET-32a (+)载 体片段和 ugpB 基因片段。将两个基因片段连接。连 接产物转化 E.coli BL21 (DE3)感受态细胞。转化后 的 BL21 细胞涂于含氨苄抗性的 LB 固体培养基上, 37 ℃培养。挑取单菌落进行培养,提取质粒,用 PCR 方法和限制性内切酶 EcoRⅤ和 SalⅠ双酶切鉴定。
Agarose 试剂盒进行蛋白纯化,获得了纯化的融合蛋白。
关键词:羊种布鲁氏菌;分离;鉴定;ugpB 基因;蛋白纯化
中图分类号:S852.614
文献标识码:A
文章编号:1008-0589(2009)05-0356-05
Isolation and identification of Brucella melitensis and prokaryotic expression of its ugpB gene
1 材料和方法
1.1 材料与菌株 新疆石河子地区某养羊场绵羊流 产胎儿 1 只,24 h 内采集流产胎儿新鲜病料。大肠 杆菌感受态细胞 E.coli JM109、E.coli BL21 (DE3)和 表达载体 pET-32a (+)为本室保存。pGM-T 载体试剂 盒购自北京天根生化科技有限公司。 1.2 主 要 试 剂 T4 DNA 连 接 酶 、 Taq DNA 聚 合 酶 、 DNA Marker、 辣 根 过 氧 化 物 酶 标 记 兔 抗 羊 HRP-IgG、western blot 膜封闭液、增强型 HRP-DAB 底物显色试剂盒均购自天根生化(北京)科技有限公 司;DNA 回收试剂盒购自北京百泰克生物技术有限 公 司 ; 限 制 性 内 切 酶 EcoR Ⅴ 、 Sal Ⅰ 购 自 Progema 公司;琼脂糖、硝酸纤维素膜及蛋白质 Marker 购自 上海生物技术工程有限公司;Ni-NTA 纯化试剂盒购 自 QIAGEN 公司;布鲁氏菌阳性血清、阴性血清均 由新疆地方与民族高发病教育部重点实验室提供。 1.3 细菌分离 取绵羊流产胎儿胃内容物接种于血 琼脂培养基,37 ℃,10 % CO2 环境条件进行细菌 培养。12 h、24 h、36 h、72 h、82 h 进行细菌群体 形态观察,菌落形成后采用改良萋 - 尼染色法进行细 菌个体形态观察,初步鉴定出布鲁氏菌阳性的菌落。 1.4 PCR 检测 将初步鉴定为阳性的菌落进行纯化 培 养 , 接 种 少 许 菌 落 于 0.5 mL 超 纯 水 中 , 煮 沸 15 min,制成细菌悬液,作为 PCR 模板。采用巢式 PCR 鉴 定 , [10] 引 物 序 列 为 : LP1: 5'-TGATGGGAG GGACCGACTA-3';LP2:5'-TGGTTCTTCAGGTTGTT ACGC-3';SP3:5'-CGTCTTCCAAATTCCCAAGC-3'; SP4:5'-AAGCGGGTCACGCCATAA-3'。
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