实验一药理学实验基本技能
实验一药理学实验的基本技能
一、实验动物的基本技能和实验技术基础
1.实验动物的标记
大、小鼠和白色家兔的标记常用3～5％黄色苦味酸溶液涂于皮毛上标号。常用的方法：1号 ---左前腿
2号 ---左腰部
3号 ---左后腿
4号 ---头部
5号 ---正中
6号 ---尾根部
7号 ---右前腿
8号 ---右腰部
9号 ---右后腿
10号 ---不标记
2.实验动物的捉持（大、小鼠）
(1)小鼠的捉持用右手提起鼠尾，放在粗糙物（如鼠笼盖）上面，向后轻拉鼠尾；用左手拇指和食指捏住其两耳颈背部皮肤，将小鼠固定在掌中，使其腹部朝上，然后以无名指和小指夹住鼠尾或小鼠的左后肢。
（2）大鼠的捉持捉持和固定方法基本同小鼠，无经验者可戴上防护手套，并应动作轻柔。用右手捉住鼠尾，放在鼠笼盖上，向后轻拉鼠尾；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。
图 1 小白鼠捉持法
3、实验动物的给药方法（大、小鼠）
（1）小鼠的给药方法
灌胃（ig）：将小鼠固定后，使颈部拉直，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，压其头部，使口腔与食道成一直线，沿上腭壁向鼠口腔的后下方轻轻插入食道。如遇阻力，可将针头抽出再插，以免刺破食管或误入气管。一般给药量为0.1～0.3ml/10g（体重）。
图 2 小白鼠灌胃法实验图 3 小白鼠腹腔注射法
皮下注射（H或sc）：常在背部皮下。轻轻捏起背部皮肤，将注射针头刺入皮下，稍稍摆动针头，若容易摆动则表明针尖位于皮下。然后注入药液。一般给药量为0.1～0.20ml/10g （体重）。
图 4 小白鼠皮下注射法
腹腔注射（ip）：左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45度角刺入腹腔，进针约3～5mm，一般给药量为0.1～0.3ml/10g（体重）。
肌内注射(im)：多注射于后肢股部肌肉，一般每侧不超过0.1ml。
尾静脉注射（iv）：将小鼠置于固定筒内，使尾部露在外面，用70％～75％的乙醇棉球擦尾部，或将鼠尾浸入45～59oC温水中，待尾部左右侧静脉扩张后，左手拉尾，右手进针。一般给药量为0.1～0.2ml/10g
（2）大鼠的给药方法
均同小鼠。一般情况下，灌胃剂量为1～2ml/100g，皮下注射、尾静脉注射<1ml /只，腹腔注射为1.5ml /只，肌内注射为0.1～0.2ml/只。此外大鼠尚有舌下静脉给药的方法。
图 5 家兔耳部血管分布图 6 家兔耳静脉注射法
4、实验动物给药量的计算
（1）药物浓度的表示方法
溶液的质量（g）
百分浓度（％）=—————————×100%
溶液的体积（ml）
（2）实验动物给药剂量一般按mg/kg(或g/kg)计算。为了方便，大鼠和豚鼠可按每100g 计算，小鼠可按每10g计算。
给药剂量=药物浓度×给药体积
（3）给药容量的计算：从已知药的浓度和已知给药剂量算出相当于每1kg体重应给药的毫升数（ml）。
例：小鼠体重22g，腹腔注射盐酸吗啡10mg/kg,药物浓度为0.1%,应注射多少毫升?
药物浓度：0.1%=0.1g/100ml=100mg/100ml=1mg/ml
给药剂量：10mg/kg=10ml/kg
小鼠体重：22g=0.022kg
10ml/kg×0.022kg=0.22ml
或换算成ml/10g来计算较为方便：10ml/kg=0.1ml/10g。这样再计算其他小鼠的给药量就很方便。
5、实验动物的处死方法
（1）颈椎脱臼法此法常用于小鼠。用左手拇指、食指或镊子用力压住小鼠的后头部，同时用右手抓住鼠尾用力向后上方牵拉，使之颈椎脱臼，鼠立即死亡。
（2）空气栓塞法此法常用于家兔的处死。用注射器将空气快速注入静脉，可使动物立即死亡。
（3）击打法适用于较小的动物，如家兔、大鼠和小鼠等。提起动物的尾部，用力敲击动物头部，或用要木锤打击头部，致使动物死亡。
（4）断头法此法适用于蛙、蟾蜍、小鼠和大鼠。用剪刀将动物头部剪断，由于脊髓娄离且大量出血，动物很快死亡。
二、实验记录的内容和实验报告的写作
1、实验记录
实验记录是将实验内容如实地记录下来，长期保存备用。其基本原则是真实、及时、准确、完整，实验过程中应认真做好实验记录。内容一般应包括：
（1）时间、天气、温度；
（2）实验标本：动物的种类、体重、标记和标号及如何分组等。
（3）实验药物：药物的来源、批号、剂型、浓度、剂量及给药途径。
（4）实验进程、步骤和方法的详细记录。
（5）观测指标的变化和原始的描记图纸。
2、实验报告的写作
实验报告要实事求事地反映实验的基本过程，并要对实际所得结果进行整理、计算、统计学处理，然后进行科学地分析讨论，进一步阐明实验的目的和意义。一般包括以下内容：[实验目的]
[实验材料] 包括仪器、药品和动物。要尽可能详细、具体、明确。
[实验方法] 可简明扼要地叙述，但关键环节或步骤必须写清楚。
[实验结果] 应根据实验获得的数据进行整理，并可对一个教学实验小组或全实验室的数据进行整理、归纳、分析和对比，尽量总结出图表。尤其有观察时效关系的，描出时效曲线，一目了然。数据须进行统计学处理，选择的统计学方法要恰如，检验效率要高。
[讨论]和[结论] 讨论与结论是报告的核心，应包括对实验结果的分析、思考题的探讨、实验、实验方法及实验中出现异常现象的分析、认识、体会和建议等。
实验二不同给药途径对药物作用的影响
【目的和原理】
观察给药途径不同，动物对药物反应有何不同。
【实验动物】
小白鼠，体重18-24g，雌雄兼用
【实验器材和药品】
小鼠笼、天平、注射器（1ml）、大烧杯、小鼠灌胃器、10%硫酸镁、0.5%戊巴比妥钠【实验步骤和观察项目】
1．硫酸镁不同给药途径对药物作用的影响
取体重相近的小白鼠2只，编号并称重。1号小白鼠腹腔注射10%硫酸镁溶液0.3ml，2号小白鼠经口灌胃10%硫酸镁0.6ml。观察并比较两鼠有何不同现象发生，为什么？
鼠号给药途径剂量（ml/只）呼吸肌张力大便
1号
2号
2．戊巴比妥钠不同给药途径对药物作用的影响
取体重相近的小白鼠3只，编号并称重。观察小鼠正常活动情况及翻正反射，然后用0.5%戊巴比妥钠，分别从不同途径（灌胃、皮下注射、腹腔注射）给药0.1ml/10g，观察小鼠反应，记录小白鼠腹腔注射0.5%戊巴比妥钠的时间、翻正反射消失及恢复时间，计算睡眠潜伏期和睡眠持续时间。
鼠号给药途径剂量（ml/10g）睡眠潜伏期（min）睡眠时间（min）1号
2号
3号
【思考题】
同一药物、同等剂量以不同途径给药将会出现哪些不同反应？
实验三急性毒性（LD50）的测定
【目的】通过实验学习测定药物LD50的方法、步骤及计算过程，观察受试药品一次给予动物后所产生的急性毒性反应和死亡情况。
【原理】药物给药剂量与动物死亡率间呈正态分布，以对数剂量为横坐标、死亡率为纵坐标作图，可得到一对称S型曲线，其两端较平坦，中间较陡，说明两端处剂量稍有变化时死亡率的改变不易表现出来，在50%死亡率处斜率最大，该处剂量稍有变动时，其死亡率变动最明显，即最灵敏，在技术上也最容易测得准确，所以人们常选用LD50值作为反映药物的指标。若将死亡率换算成机率单位，则对数剂量与机率单位呈直线关系，用数学方法可拟合其回归方程式，可精确地计算LD50及引起任何死亡率的剂量及相关数据。
【器材和药品】注射器（1ml）、天平、小鼠笼、苦味酸；盐酸普鲁卡因。
【动物】18～22g健康小鼠50只(正式试验)，雌雄各半（雌鼠应无孕），实验前禁食12h，不禁水。
【方法】
1.预试验目的是寻找引起0%和100%动物死亡的剂量范围，以便正式实验时确定各组剂量。一般是取小鼠9～12只，分3～4组，选择组距较大的一系列剂量腹腔注射给药，观察出现的症状并记录死亡数，找出引起0%及100%死亡率，至少应找出引起20%～80%死亡率的剂量范围，以保证量-效曲线跨越足够的范围。普鲁卡因小鼠腹腔注射（ip）引起0%和100%动物死亡的剂量范围的参考值为：最小剂量（Dmin）121.3mg/kg，最大剂量（Dmax）290mg/kg。
2.剂量计算及药液配制
(1)剂量计算
根据预试结果找出Dmax及Dmin，设正式实验的剂量组数为n，剂量公比为r，则
各组剂量为Dmax·rk-1，k为第几组，一般选用4～5组动物，r为0.6～0.85为宜。
例已知普鲁卡因Dmin=121.3mg/kg，Dmax=290mg/kg
当n=6时，r=0.84, 各组剂量为：
1. 290 mg/kg
2. 290 mg/kg×0.84 = 24
3.6mg/kg
3. 290 mg/kg×0.842= 20
4.6mg/kg
4. 290 mg/kg×0.843= 171.9mg/kg
5. 290 mg/kg×0.844= 144.4mg/kg
6. 290 mg/kg×0.845= 121.3mg/kg
（2）药液配制
①药源充足时的配药方法
最高浓度药液（母液）的配制
小鼠腹腔注射体积为0.2ml/10g= 20ml/kg，每组药液量为4ml左右，为留有余地，各组动物所需药液体积定为6ml。
求出所需母液体积（V）及母液所需药量（M）
V=各组动物所需药液体积/ (1-r)= 6 / (1-0.84)=37.5ml
M = V ′ Dmax/(20ml/kg)=37.5′(290/kg) /(20ml/kg)=543.75mg
各剂量组药液按下法稀释：
543.75mg+生理盐水至37.5ml，混匀→第一组取6ml
↓
31.5ml+生理盐水6ml，混匀→第二组取6ml
↓
31.5ml+生理盐水6ml，混匀→第三组取6ml
↓
31.5ml+生理盐水6ml，混匀→第四组取6ml
↓
31.5ml+生量盐水6ml，混匀→第五组取6ml
↓
31.5ml+生理盐水6ml，混匀，为第六组药液
②药源紧张时的配药法
各组所需母液的体积（ml）为：
第一组6 第二组6*r
第三组6*r2 第四组6*r3
第五组6*r4 第六组6*r5
母液总体积(V)=6′(1+ r+ r2+ r3+ r4+ r5)
总药量(M)=母液总体积′Dmax/（20ml/kg）
计算出V、M后，取药量M，用生理盐水稀释至Vml，用移液管精密吸取各组所需的母液量，加生理盐水稀释至6ml，即为各组试验药液。
3．动物分组：将小鼠雌、雄分开。分别称重，同一重量段（如18.0—18.9g）小鼠放入一个笼内，标记小鼠。雌、雄小鼠分别按重量顺序分层随机分为6组，使不同性别和体重的小鼠能均匀分配于各组，每组10只。
4．给药：各组动物分别腹腔注射相应浓度的药液0.2ml/10g，立即详细观察，记录动物反应情况、死亡时间和数目。在24h内作多次观察，以后每天观察1次以上，连续观察7~14天。按Bliss法及其它方法计算LD50和95%可信限(由于Bliss法计算复杂，可用相关的软件进行处理)。
【结果】记录于表T1-1。
组别剂量
（mg/kg）对数剂
量（X）
动物
数
死亡动物
数
死亡率
（%）
几率单位
（Y）
LD50及95%置
信限
1
2
3
4
5
6
【注意】
(1)随机性：实验中能控制的因素尽量使之均衡化，难以控制的因素也应力求严格随机化。分组时应先将不同性别分开，再将不同体重分开，然后随机分配，此法称为分层随机分组法。
（2）剂量按几何级数排列，转换为对数后，剂间为等距，便于计算结果，估计误差。相邻高低剂量之比一般为1:0.6～1:0.85，剂距小，结果较精确，但过小易出现反应率颠倒的情况。剂距的大小也与给药途径有关，静脉给药时，剂距可偏小，灌胃给药时可适当偏大。（3）药物及给药途径应以静脉注射、腹腔注射和灌胃给药为主，选取的途径必须包括推荐临床给药途径。
（4）LD50受试验中多种因素的影响，如动物的品系、性别、年龄、饥饱以及环境因素中室温、湿度、光照、时辰（上、下午）等。当进行两药的毒性比较时，应尽可能在相同条件下进行，以减少抽样误差。
（5）在试验过程中应详细记动物的中毒症状及可能致死原因，必要时解剖死亡动物肉眼观察，如发现有组织病变时，可进行组织学检查，通常动物死亡多出现在给药后1～2日内，但全部试验应观察7日以上，如遇有迟发性或进行性中毒反应时，需根据实际情况延长观察时间。若发现中毒反应和死亡率对不同动物性别有明显差别，则应选择比较敏感的性别进行试验。
（6）当药物毒性小，以最大浓度和最大体积给药后仍测不出致死毒性时，可测定最大耐受量：即用临床试验的给药途径，以动物能耐受的最高浓度、最大容积的剂量1次或1日内连续2～3次给予动物（小白鼠至少20只，雌雄各半），连续观察7天，详细记录动物反应情况，以不产生死亡的最大剂量为最大耐受量。
【注意事项】
1.剂量要准确，时间掌握好；
2.给药后应保持室内安静，避免刺激实验动物。
【讨论】什么是LD50，测量的LD50目的和意义是什么？
实验四巴比妥钠的抗惊厥作用
【实验目的】
学习动物惊厥模型的复制方法；观察大剂量尼可刹米的中毒反应；掌握苯巴比妥钠的抗惊厥作用。
【实验原理】
尼可刹米(nikethamide)为常用的呼吸中枢兴奋药。主要作用是直接兴奋延脑呼吸中枢，对大脑皮层、血管运动中枢和脊髓也有兴奋作用。过大剂量可引起惊厥，继而发生中枢抑制而死亡。苯巴比妥钠(phenobarbital sodium)是一种普遍性中枢抑制药，具有良好的抗惊厥作用。
【实验对象】
小白鼠，体重18～22g，雌雄不拘。
【实验药品】
5%尼可刹米，0.8%苯巴比妥钠，生理盐水
【实验器材】
小动物电子秤，小鼠鼠笼，lml注射器3支
【实验方法】
1.取体重相近的小白鼠4只，称重，编号，随机分组，分为实验组和对照组。
2.实验组小鼠腹腔注射0.8％苯巴比妥钠80mg/kg；对照组腹腔注射等体积生理盐水。
3.15min后实验组和对照组分别腹腔注射5%尼可刹米750mg/kg，连续观察20min，详细记录两组小鼠的反应情况。
【实验结果】（实验室结果汇总）
以出现阵发性抽搐视为惊厥发生的特征指标。详细记录两组动物各个体撞笼出现时间、惊厥出现时间和死亡时间。给药20min后，清点两组的惊厥动物数和死亡动物数，将实验结果填入下表，并计算惊厥百分率和死亡百分率。
动物总数
惊厥动物数
惊厥百分率
死亡动物数
死亡百分率
对照组
实验组
【注意事项】
l.注意观察小鼠给药后的反应，如出现竖尾、洗脸、猛烈地奔跑、撞笼、跳跃等反应即为惊厥前兆。
2.腹腔注射部位要准确，否则会影响实验结果。
【思考题】
简述苯巴比妥钠的药理作用及临床应用。
实验五药物的相互作用
【实验目的】观察药物的协同与拮抗作用
【实验材料】
1.动物：家兔。
2.药物：5%MgSO4溶液，5%CaCl2溶液
3.器材：磅秤、5ml注射器
【方法与步骤】：
取家兔1只称重，观察其正常活动，然后由耳缘静脉缓慢注射（iv）MgSO42ml/kg药后注意观察所发生的症状，当出现呼吸、心跳减慢减弱，肌肉松弛不能站立时，立即静注5%CaCl2 1ml/kg，如心跳及呼吸恢复，耳壳血管开始转红即可停止注射。
记录症状出现时间，给予拮抗药物后症状恢复时间及有无死亡发生。
【注意事项】 iv MgSO4可缓慢、全量在2～3min注完。
实验时应将CaCl2溶液同时抽好，以便解救使用。
实验六有机磷中毒及其解救
【实验目的】掌握有机磷中毒解救方法及与传出神经作用机理。
【实验原理】有机磷酯类进入机体后，其亲电子性的磷与胆碱酯酶的酯解部位中丝氨酸的羟基进行共价键结合，形成不易水解的磷酰化胆碱酯酶，难以恢复活性，这使得乙酰胆碱大量积聚体内无法水解成胆碱和醋酸失效，因此产生了乙酰胆碱作用的中毒症状。
解磷定解救有机磷中毒的机理是胆碱酶复活剂，通过恢复酶活力，使乙酰胆碱分解而消除中毒症状。
【实验材料】
1.动物：家兔；
2.器材：注射器
3.药品：4%的敌敌畏，2.5%解磷定，阿托品
【实验方法】
1.观察并测量正常家兔的活动，呼吸心率瞳孔并记录测量结果；
2.取家兔，有机磷（敌敌畏4%、0.2ml/kg）后观察上述活动变化
3. 6组中两组阿托平1mg/支静脉注射后观察上述活动变化
两组解磷定100mgl/kg静脉注射后观察上述活动变化
两组阿托品+解磷定静脉注射后观察上述活动变化
【实验结果】观察上述活动变化并记录结果
【注意事项】
1.阿托品要快速注入，以缓解危机的中毒症状，但解磷定注射要慢；
2.一般出现中度中毒时开始解救。
讨论：有机磷中毒的作用机理是什么？阿托品与解磷定解救机理有何不同。
实验七去甲肾上腺素的缩血管作用
【实验目的】
1．观察去甲肾上腺素的缩血管作用，分析其作用机制，联系其临床用途。
2．练习蛙的捉拿及破坏其脑、脊髓的方法。
【实验材料】
1.动物青蛙或蟾蜍。
2.药物0.01%重酒石酸去甲肾上腺素溶液。
3.器材探针、蛙板、蛙腿夹、大头针、手术剪、摄子、滴管、放大镜。
【方法与步骤】取青蛙或蟾蜍1只，应用探针破坏其脑与脊髓后，固定于蛙板上。沿其腹壁一侧剖开腹腔，找出肠系膜，用大头针固定于蛙板上。用放大镜观察肠系膜血管的粗细后，滴0.01%重酒石酸去甲肾上腺素溶液1滴于肠系膜上，待约3min后，再观察肠系膜血管的粗细与滴药前有何不同。
【结果记录】滴药后肠系膜血管与滴药前相比较粗细程度的变化。
实验八局麻药的毒性比较
【实验目的】观察普鲁卡因、丁卡因对小白鼠的作用结果，判断两药的毒性大小，联系临床应用。
【实验材料】
1.动物小白鼠。
2.药物1%盐酸普鲁卡因溶液、1%盐酸丁卡因溶液。
3.器材药物天平1台、1ml注射器2支、5号针头2个、大烧杯（或鼠笼）2个。
【方法与步骤】取小白鼠2只，编号称重，观察其正常活动后，1号鼠腹腔注射1%盐酸普鲁
卡因溶液0.1ml/20g，2号鼠用腹腔注射1%盐酸丁卡因溶液0.1ml/20g。观察两鼠用药后及反应有何差异。
【结果记录】
鼠号体重（g）
药物
（0.1ml/20g）
用药后反应毒性
大小
发生惊厥时间（min）惊厥程度
1 2 1%盐酸普鲁卡因1%盐酸丁卡因
【注意事项】
1．称量准确，用药量准确。
2．注意腹腔注射。
实验九镇痛药的镇痛作用比较
【实验原理】不同类型镇痛药物的镇痛强度、作用机制有所不同。
一、小白鼠扭体法（化学制激法）
【实验材料】
1．动物小白鼠。
2．药品0.2%哌替啶溶液、0.2%罗通定溶液、生理盐水、6%醋酸溶液。
3．器械托盘天平、大烧杯、秒表、1ml注射器。
【实验方法】
1．取健康小白鼠6只，称重后分为1、2、3三组，每组2只。
2．1组腹腔注射0.2%哌替啶溶液0.1ml/10g，2组腹腔注射0.2%罗通定溶液0.1ml/10g，3组腹腔注射生理盐水0.1ml/10g作对照。
3．给药30min后，各鼠腹腔注射0.6%醋酸溶液0.2ml/只，随即观察10min内出现扭体反应的动物数。扭体反应表现为腹部内凹，后腿伸张，躯体扭曲，臀部抬高。
4．实验完毕后，综合全班各组的实验结果，计算出药物镇痛百分率。
【实验结果】
组别鼠数药物扭体反应鼠数
无扭体反应鼠数
1组
2组
3组
药物镇痛百分率计算方法：药物镇痛百分率＝×100%
二、温度刺激法
【实验材料】
1．动物小白鼠。
2．药品0.1%盐酸吗啡溶液、生理盐水。
3．器械小白鼠固定器、秒表、托盘天平、1ml注射器、恒温水箱。
【实验方法】
1．小白鼠2只，分别装入固定器内，将鼠尾由固定器的小圆孔拉出，将鼠尾尖轻轻放入恒温水浴55℃热水内深约0.5cm，记录鼠尾从放入热水内到缩离水面的时间，共测3次，每次间隔10min，取其平均值记录。如在30s以上无反应者，应弃去不用。
2．取的2只小白鼠称重编号，1号鼠腹腔注射0.1%盐酸吗啡溶液0.1ml/10g，2号鼠腹腔注射生理盐水0.1ml/10g对照。注射10min后再将小白鼠放入固定器内，用同样方法测其痛觉反应一次，共测3次，每次间隔10min，记录每次反应时间，如超过30s钟无反应者，应将鼠尾提起以免烫伤，并作为30s钟记录。
3．实验完毕后，分组统计全班实验结果，取其平均值，按下式计算痛阈提高百分率：痛阈提高百分率＝×100%
【结果】
鼠号体重药物及用量
用药前
反应时间
用药后反应时间及痛阈提高百分率
10min % 20min % 30min %
1 2 0.1%吗啡溶
液
生理盐水
s
s
%
%
s
s
%
%
s
s
%
%
三、热板法
【实验材料】
1．动物雌性小白鼠。
2．药品0.4%哌替啶溶液、0.2%吗啡溶液、4%溶液、生理盐水。
3．器械药理生理实验多用仪及附件恒温电热器、镇痛实验盒、1ml注射器、鼠笼、秒表、托盘天平。
【实验方法】
1．在恒温电热器内加水至触及镇痛实验盒底部，温度控制在55℃，将两极引线的插头插入多用仪后面板的“恒温控制”插口，并把附近开关拨向“恒温”，再将后面板输出与电热器相连，通电后即可使电热器内水温恒定于55℃。
2．用药前痛阈测定开始，立即将一只小白鼠放入镇痛实验盒内，密切观察，并记录小白鼠出现舐后足的时间，此段时间为该鼠的痛阈值，随即将鼠取出。用此法挑选反应小于30s 的小白鼠4只。然后重复测定小白鼠的痛阈值一次，将每鼠所得两次痛阈值平均后，作为用药前的痛阈值。
3．以上选出的4只小白鼠，称重编号，分别腹腔注射下列药物：
1号鼠0.2%盐酸吗啡溶液0.1ml/10g
2号鼠0.4%哌替啶溶液0.1ml/10g
3号鼠4%溶液0.1ml/10g
4号鼠生理盐水0.1ml/10g
4．用药后15min、30min、60min、90min，各测小白鼠的痛阈2次，两次测定间隔2~3min，将两次测得阈值平均，作为该时间的痛阈值。如果药后放入镇痛实验盒内60s小鼠仍无舐后足反应，即将小白鼠取出，以免时间太长鼠脚烫伤，此时阈值按60s计算。
【实验结果】实验完毕后，汇总全班所测得痛阈按下列公式计算：
痛阈提高百分率＝×100%
鼠号动物数用药前痛阈平
均值
用药后痛阈平均值及痛阈提高百分率
15min（%）30min（%）60min（%）90min（%）
1
2
3
4
然后根据每组不同时间的痛阈提高百分率作图，横坐标代表时间，纵坐标代表痛阈提高百分率，画出曲线借以比较各药的镇痛强度，作用开始时间及维持时间。
【注意事项】
1．因雄性小白鼠过热时睾丸下垂，阴囊触及热板导致反应敏感，故选用雌性为好。
2．室温在15℃左右较好，过低则小鼠反应迟钝，过高则过于敏感，易产生跳跃，不易得到正确的实验结果。
3．正常痛阈时，凡在30s内不舐后足或逃避、跳跃者则弃之另换。
【思考题】
1．正确理解效能和效价强度的概念。
2．从药物作用强度的不同，指出其临床意义。
实验十普萘洛尔的抗缺氧作用
【实验目的】观察普萘洛尔提高动物对缺氧的耐受力的作用，了解用小白鼠进行耐缺氧的实验方法。
【实验材料】
1．动物：小白鼠。
2.药物0.1%盐酸普萘洛尔溶液、钠石灰、生理盐水。
3.器材250ml广口瓶，注射器、秒表、托盘天平、500ml大烧杯。
【方法与步骤】取250ml广口瓶2个，分别放入钠石灰10g，以吸收二氧化碳和水。再取小白鼠2只（体重18～22g为宜），称重并编号标记。1号鼠腹腔注射0.1%盐酸普萘洛尔溶液0.2ml/10g；2号鼠腹腔注射生理盐水0.2ml/10g作为对照。给药15min后，将两鼠分别放入两只广口瓶内，盖严瓶口，立即记录时间。观察两鼠直至死亡，记录各鼠死亡时间，求出各鼠存活时间。
【结果记录】综合各组实验结果，分别计算出给药鼠和对照鼠的平均存活时间，再用下式求得存活时间延长百分率。
存活时间延长百分率＝×100%
鼠号体重（g）药物剂量放入广口瓶内存活
时间（min）
存活时间延长
百分率（%）
1 0.1%盐酸普萘洛尔
2 生理盐水
【注意事项】
1．小白鼠体重相差不宜超过2g。
2．瓶盖可涂以凡士林，以便密封。
实验十一急支糖浆祛痰实验
【实验目的】掌握祛痰药的作用机理及动物实验法。
【实验原理】祛痰药都能增加呼吸道的分泌，使粘着于呼吸到粘膜的痰稀释而易于咳出。【实验材料】
1.动物：小白鼠；
2.器材：注射器、灌胃器
3.药品：急支糖浆、酚红溶液
【实验方法】
取小鼠6只，随机分成3组，分别为急支糖浆0.1ml/kg，0.2ml/kg，以生理盐水为空白对
早，灌胃给药后20分钟，每只小鼠腹腔注射0.25%酚红溶液0.2毫升，再过20分钟处死，用磨钝的9号针头取5%碳酸氢钠反复冲洗气管中渗出的酚红与标准管比较含量。
【实验结果】所的结果与标准管比较，得出结论。
【注意事项】
给药后应保持室内安静，避免刺激实验动物。
【讨论】急支糖浆祛痰的机理是什么。
实验十二糖皮质激素的抗炎作用------地塞米松对小鼠耳肿胀的作用
【实验目的】观察糖皮质激素的抗炎作用。
【实验材料】
1．动物雄性小鼠，体重25~30g。
2.药物二甲苯、0.5%地塞米松溶液、生理盐水。
3.器材天平、打孔器(直径9mm)、粗剪刀、1ml注射器、5号针头。
【方法与步骤】
1．取体重25~30g雄性小鼠2只，称重、标号。
2．每只小鼠用0.1ml二甲苯涂擦右耳前后两面皮肤，30min后，1号鼠腹
腔注射0.5%地塞米松溶液(0.1ml/10g)，2号鼠腹腔注射等量生理盐水溶液。
3．2h后将小鼠脱颈椎处死，沿耳廓基线剪下两耳，用打孔器分别在两耳同一部位打下圆耳片，分别称重、记录。同一鼠的右耳片重量减去左耳片重量，即为右耳肿胀程度。【结果记录】
鼠号体重（g）药物和用量耳片重量(mg)
肿胀程度左右
１号地塞米松
２
号
生理盐水
【注意事项】
1．所取耳片应与涂二甲苯的部位一致。
2．应使用锋利的打孔器。
实验十三硫酸链霉素的急性中毒及其解救
【实验目的】观察小鼠及家兔硫酸链霉素的急性中毒症状，了解其解救方法。【实验材料】
1．动物小白鼠。
2.药物 7.5%硫酸链霉素溶液、5%氯化钙溶液、生理盐水。
3.器材天平、注射器（1ml）、大烧杯。
【方法与步骤】
1．取小鼠2只，编号，称重，观察并记录正常活动、呼吸、肌张力和翻正反射情况。
2．两鼠分别按0.1ml/10g体重、腹腔注射7.5%硫酸链霉素溶液。
3．待毒性症状明显后（肌震颤、四肢无力、呼吸困难、发绀等），1号鼠腹腔注射生理盐水0.1ml/10g作为对照，2号鼠立即腹腔注射5%氯化钙溶液0.1ml/10g，注毕，观察两鼠有何变化?
【结果记录】观察并记录两鼠的活动、呼吸和肌紧张力。
鼠号体重（g）
正常情况
药物
用链霉素后的反应呼吸肌张力呼吸肌张力
１号5%氯化钙溶液２号生理盐水【实验结果】
【注意事项】
【讨论】
药理学实验(一)
（一）剂量对药物作用的影响 目的：观察不同剂量尼可刹米对小鼠作用的差异 原理：影响药物的因素有药物的给药剂量，当药物的剂量增加，药物的效应也随之增加。但这一效应的增加不是无限制的，当增加到一定的程度时，药物的效应恒定在一定的水平，而当药物剂量过大时，可致中毒或死亡。 材料：器材：电子天平、1ml注射器 药品：2.5%尼可刹米溶液 动物：小白鼠3只 方法：取小鼠3只，标记，称重，随机分为3组，各鼠均腹腔注射不同剂量的尼可刹米溶液（1#：2.5%尼可刹米溶液0.15ml/10g；2#：2.5%尼可刹米溶液0.1ml/10g；3#：2.5%
尼可刹米溶液0.05ml/10g），观察潜伏期、给药前后的表现，并仔细记录观察结果，完成实验报告。 注意：1、小鼠对尼可刹米可能出现的反应，按由轻到重程度有：活动增加，呼吸急促，反射亢进，震颤，惊厥，死亡等。 2、比较各鼠表现出来的药物反应的严重程度和发生快慢。 思考：本实验结果对药理实验和临床用药有何启示？ （二）安定抗尼可刹米惊厥的作用 目的：观察安定对尼可刹米中毒动物的解救作用 原理：安定具有镇静、催眠、抗惊厥的作用，可清除病理性中枢兴奋状态。 材料：器材：电子天平、0.5ml注射器、1ml
注射器、大烧杯 药品：2.5%尼可刹米溶液、0.5%安定溶液、生理盐水 动物：小白鼠2只 方法：取小鼠2只，标记，称重，随机分为2组。1#腹腔注射0.5%安定溶液0.05ml/10g，2#腹腔注射等量生理盐水，然后各鼠均腹腔注射 2.5%尼可刹米溶液0.1ml/10g，观察两鼠给药前后的表现，并仔细记录观察结果，完成实验报告。 注意：使用剂量的准确性 思考：安定为什么能解救尼可刹米所致的惊厥？ （三）不同给药途径对药物作用的影响 目的：观察不同给药途径对硫酸镁作用的影响
(完整版)兽医药理学实验
兽医药理学实验 1.兽医处方的书写（讲授） 2.实验动物的种类、捉拿及给药途径（讲授结合实验） 实验材料：小鼠5-10（22人拟分成4-5组）只，1ml注射器20支，12-16#小鼠灌胃针5个，生理盐水 3.实验动物的采血及处死方法（讲授结合实验） 实验材料：小鼠5-10只（22人拟分成4-5组），1ml注射器20支 4.水合氯醛的全身麻醉作用及氯丙嗪的增强麻醉作用（实验） 实验材料：药物——7％水合氯醛、2.5％氯丙嗪；器械——10ml注射器、酒精棉；动物——家兔3只 5.利尿药对兔的利尿作用观察（实验） 实验材料：药物——1％呋塞米注射液，7％水合三氯乙醛；器械——兔固定器，外科刀、剪刀、棉花、丝线、绷带、输尿管导管、烧杯、镊子、血管钳子；动物——家兔1只。 6.盐类泻药机理分析（实验） 实验材料：药物——10%硫酸钠、常水、生理盐水、7%水合氯醛；器械——兔手术台、剪刀、手术刀、缝线、注射器、针头；动物——家兔1只。 7.试管二倍稀释法测定MIC（讲授） 8.药物的配伍禁忌（讲授） 一. 实验动物的捉拿和固定方法 实验目的：了解常用实验动物的保定及固定方法，掌握实验小鼠的固定方法 实验内容： 1. 狗的捆绑与固定至少由2～3人进行。捆绑前实验者应先对其轻柔抚摸，避免使其惊恐或激怒；用一条粗棉绳兜住上、下颌，在上颌处打一结(勿太紧)，再绕回下颌打第二个结，然后将绳引向头后部，在颈项上打第三个结且在其上打一活结（图3.3-4）。切记住兜绳时，要注意观察狗的动向，以防被其咬伤。如狗不能合作，须用长柄狗头钳夹持其颈部，并按倒在地，以限制其头部活动，再按上述方法捆绑其嘴。捆嘴后使其侧卧，一人固定其肢体，另一人注射麻醉药。此时，应注意狗可能出现挣扎，甚至大小便俱下，以及由于这种捆绑动作往往致使狗呼吸急促，甚至屏气等问题。待动物进入到麻醉状态后，立即松捆，以防窒息。 将麻醉好的狗仰卧置于实验台上，用特制的狗头夹固定狗头(图3.3-3)。固定前将狗舌拽出口外，避免堵塞气道。将狗嘴伸入铁圈，再将直铁杆插入上、下颌之间，再下旋铁杆，使弯形铁条紧压犬的下颌（仰卧固定）或压在鼻梁上（俯卧固定）。再将狗头夹固定在手术台上。 固定好狗头后，取绳索用其一端分别绑在前肢的腕关节上部和后肢的踝关节上部，绳索的另一端分别固定在实验台同侧的固定钩上。固定两前肢时，亦可将两根绳索交叉从犬的背后穿过并将对侧前肢压在绳索下,分别绑在实验台两例的固定钩上。若采取俯卧位固定时，绑前肢的绳索可不交叉，直接绑在同侧的固定钩上。
九年级物理欧姆定律总览全章
第七章 欧姆定律 总览全章 【知识与技能】 【过程与方法】 （1）科学探究电流与电压、电阻关系的全过程的亲身体验，领会科学研究的方法 （2）使学生感悟用“控制变量”来研究物理问题的科学方法 （3）通过测量小灯泡的电阻，了解欧姆定律的应用 （4）使学生具有安全用电的意识和社会责任感，能自觉地执行和宣传安全用电，通过了解避雷针的发明过程，培养学生热爱科学的精神。 【情感态度与价值观】 （1）培养学生严谨的科学态度与协作精神，通过对实验电路的设计、连接以及测量过程中的兴趣培养 （2）重视学生对物理规律的客观性、普遍性和科学性的认识，注意学生科学世界观的形成 各个击破 7.1 探究电阻上的电流跟两端电压的关系 【知识梳理】 1．实验方法：控制变量法 2．（重点）规律：当电阻一定时，导体中的电流与电压成正比；当电压一定时，导体中的电流与电阻成反比 3．电流、电阻、电压之间的关系式：I=U/R 【范例下载】 欧姆定律 电流与电压、电阻的关系 安全用电 欧姆定律 内容 表达式：I ＝U/R 变形公式：U ＝IR R ＝U/I 适用条件：金属导体和溶液导体 电阻的串联和并联 伏安法测电阻 原理：R ＝U/I 器材 步骤
【例1】用如图所示的实验装置来研究电流跟电压的关系。 （1）用铅笔代替导线连接下图的实物图（测导线AB电阻时） （2）用导线AB和用导线CD的实验记录分别如表1和表2： 从以上实验数据中可以发现：同一导体中电流与；在相同电压下，通过导线AB和CD的电流不同，说明不同的导体对电流的是不同的，且通过导体的电流跟该导体的电阻。【解析】电流表应串联在电路中，电压表应并联在电阻AB两端，并且根据表1中的数据，可知，电流表应选择0～3A的量程，电压表应选择0～15V的量程。分析表中的数据可知：同一导体的电流与电压成正比。电压一定时，电流与电阻成反比。 【答案】（1）如图所示 （2）电压成正比阻碍作用成反比 【点拨】在连接电路的题目中，根据题目已有的已知条件选择合适的量程是解答的关键。 【拓展】根据下列一组实验数据，可以得到的结论是[ ]
药理学综合设计性实验汇编
药理学综合设计性实验 实验一氯丙嗪的降温作用（设计性实验，4学时） 实验简介：本实验使学生掌握实验设计的基础理论和方法（包括动物选择、实验分组、对照原则、处理因素的标准化等多方面知识），并通过观察氯丙嗪的降温作用，掌握其降温特点，联系临床应用。 实验辅导：至少双人辅导 【实验目的】掌握实验设计的基础理论，通过观察氯丙嗪的降温作用，掌握其降温特点，联系临床应用。 【实验器材】小鼠、注射器、体温计、冰箱、氯丙嗪等。 【实验过程】 一、首先介绍实验设计的基础理论 （一）实验设计是科学研究计划中关于研究方法与步骤的一项内容，是实验研究所涉及的各项基本问题的合理安排。严密合理的实验设计是顺利进行研究工作的保证，同时也能最大限度地减少实验误差以获得精确可靠的实验结论，甚至可以使研究工作事半功倍。 药理学实验设计的三大要素，即处理因素、实验对象与实验效应。 1.处理因素 (1)处理因素实验中根据研究目的确定的由实验者人为施加给受试对象的因素称为处理因素，如药物、某种手术等。 一次实验涉及的因素不宜过多，否则会使分组增多，受试对象的例数增多，在实际工作中难以控制。但处理因素过少，又难以提高实验的广度和深度。 (2)明确非处理因素：非处理因素虽然不是我们的研究因素，但其中有些因素可能会影响实验结果，产生混杂效应，所以这些非处理因素又称混杂因素。设计时明确了这些非处理因素，才能设法消除它们的干扰作用。 (3)处理因素的标准化：处理因素在整个实验过程中应做到标准化，即保持不变，否则会影响实验结果的评价。如实验设计中处理因素是药物时，则药物的剂型、给药途径、质量(成分、出厂批号等)必须保持不变。 2.实验对象 实验对象的选择十分重要，对实验结果有着极为重要的影响。药理学实验主要实验对象包括整体动物(正常动物、麻醉动物和病理模型)、离体器官、组织及细胞等。 3.实验效应 实验效应是指受试对象在处理因素作用后呈现的反应或受到的影响，其具体表现形式是指标。这些指标包括计数指标(或定性指标)和计量指标(或定量指标)等。指标的选定需符合特异性、客观性、重复性、灵敏性、精确性、可行性等原则。 (二)药理学实验设计的基本原则 为了提高研究效率，控制误差和偏倚，药理学实验设计同其它科学研究一样必须遵循三大基本原则，即对照、随机和重复原则。 1.对照原则 对照是比较的前提。在生物学实验中存在许多影响因素，为消除无关因素对实验结果的
《药理学实验》教学大纲
西南科技大学本科实践教学大纲 《药理学实验》教学大纲 【课程编号】17315272 【英文名称】Experiments of Pharmacology 【课程学时】16 【适用专业】制药工程 一、本实验课程的教学目的和要求 药理学实验是与药理学理论教学密切的重要实践环节。以药理学实验的基本知识、技术和方法为基础，结合不同作用类别的药物，使学生掌握药理学实验的基本知识，掌握药理学实验的基本技能，验证药理学中的基本理论，牢固掌握药理学的基本概念；了解在药物发现和评价过程中，药理学研究的内容和必要性。通过药理学实验，使学生了解获得药理学知识的科学途径，同时培养学生实践操作、互助协作、独立思考、综合分析和解决问题能力，体验科学研究的基本程序，全面提高学生的综合素质。 二、本实验课程与其它课程的关系 药理学实验是对《药理学》和《生理学》理论课程教学的补充和完善，同时有利于《生物化学》的理论知识中的有关部分的理解。 三、实验课程理论教学内容安排 本实验课程不安排理论教学内容 四、实验内容安排 实验一、药理学实验的基本知识和基本技术
生命科学与工程学院 【目的要求】熟悉药理学实验的基本技术；能掌握药理学实验的基本知识和基本技术 【内容】药理学实验基本知识；实验动物的捉拿和固定方法；实验动物标记方法；实验动物给药方法。实验动物取血方法；实验动物处死方法。 【方法】理论讲授结合实际操作 实验二、不同途径、不同剂型、不同剂量的阿托品对药物作用的影响 【目的要求】学习不同途径、不同剂型、不同剂量对药物作用的影响；了解不同给药途径及同一药物不同剂型对药物吸收的影响及特点。通过实验比较不同途径给予阿托品的药效学有何不同。通过实验比较不同剂型、不同剂量的阿托品的作用。 实验动物为健康昆明种小鼠（雌雄不拘）。 【内容】1 介绍静脉注射及静脉滴注、肌肉注射、皮下注射、动脉注射、锥管注射、腹腔注射、胃肠道给药、舌下给药及黏膜给药、直肠给药、吸入给药、透皮给药等途径的药物吸收特点。 2 介绍药物制剂对药物作用影响 3 结合理论进行实验观察 4 根据结果讨论剂型及途径与药物效应的关系。 【方法】静脉注射、胃肠道给药等方法 实验三、水杨酸钠血药浓度及血浆半衰期测定 【目的要求】了解药物血浆半衰期的意义。掌握分光光度法测定水杨酸钠血药浓度，并根据血药浓度计算半衰期的方法。 【内容】1 讲授分光光度法测定药物浓度的原理和半衰期计算方法。 2 分组进行家兔取血、给药、测定等实验过程。 3 根据实测结果计算半衰期。 4 讨论半衰期的临床意义。 【方法】家兔灌胃给药、家兔静脉取血、分光光度法测定水杨酸钠血药浓度 实验四、传出神经系统药物对家兔血压的影响 【目的要求】学习家兔固定、麻醉、气管插管、动脉插管、血压记录； 【内容】1 分组完成家兔固定、麻醉、气管插管、动脉插管、血压记录等过程。 2 根据实验讲义依次给药、观察结果。 3 总结 【方法】动脉插管法 实验五、镇痛药实验及统计学分析 【目的要求】学习镇痛药的实验方法；掌握实验性疼痛的诱导方法，观察各类镇痛药的作用。根据实验结果，运用统计学原理进行结果分析，从而理解各类镇痛药的作用特点并初步掌握统计学在药理学实验中的应用。 【内容】1 介绍统计学基本概念及实验注意事项。 2 分组进行实验操作和观察。 3 以班为单位统计各组实验结果，在教师指导下进行统计学处理分析。 4 根据统计学结果得出结论并理解不同类型镇痛药的镇痛效果。 【方法】光电法 实验六、子宫兴奋药及实验 【目的要求】学习掌握子宫兴奋药的作用特点和临床应用 【内容】介绍平滑肌实验装置、分组进行实验、总结实验结果
最新《药理学》实验讲义汇总
2014《药理学》实验 讲义
《药理学》实验讲义
实验一药理学实验的基本知识和基本技术 一、目的 1. 掌握基本操作，锻炼动手、动脑能力； 2. 更好地掌握药理学基本理论知识； 3. 培养科学思维 二、基本要求 1. 实验前：预习实验内容并复习相关理论知识； 2. 实验时 ⑴实验器材要妥善保管； ⑵实验操作按步骤进行，仔细观察实验中出现的现象，实事求是地做好记录； ⑶注意节约实验药品； ⑷维持良好的课堂纪律。 3. 实验后 ⑴各组同学将实验动物处死，实验台擦干净，将实验方盘送回准备室； ⑵值日生搞好实验室卫生，将死亡动物送至指定场所； ⑶书写实验报告。 三、实验报告的书写 1. 题目 2. 目的 3. 原理 4. 材料：实验动物，器材，药品 5. 方法：用自己的语言简单扼要描述出来； 6. 结果：要求真实、清楚； 7. 讨论：将实验结果进行比较、分析；实验中有哪些不足之处；结果异常或失败的原因； 8. 结论：将实验结果进行归纳总结，应带有提示性质。 四、药理学实验实验设计原则 1.随机原则 按照机遇均等的原则进行分组。其目的是使一切干扰因素造成的实验误差减少，而不受实验者主观因素或其他偏性误差的影响。 2.对照原则 空白对照（指在不加任何处理的条件下进行观察对照）；阴性对照也称假处理对照（给予生理盐水或不含药物的溶媒）；阳性对照也称标准对照（指以已知经典药物在标准条件下与实验药进行对照）。 3.重复原则 能在类似的条件下，把实验结果重复出来，才能算是可靠的实验，重复实验除增加可靠性外，也可以了解实验变异情况。
五、实验动物 1. 动物的选择 （1）小白鼠：适用于需大量动物的实验，如某些药物的筛选，半数致死量的测定。也较适用于避孕药实验、抗炎镇痛药实验、中枢神经系统药实验、抗肿瘤药及抗衰老药实验等。 （2）大白鼠：比较适用于抗炎药物实验，血压测定、利胆、利尿药实验，也可用于进行亚急性和慢性毒性实验。 （3）豚鼠：因其对组胺敏感，并易于致敏，故常被选用于抗过敏药、平喘药和抗组胺药的实验。也常用于离体心脏、心房、肠管实验。又因它对结核敏感，常用于抗结核病药的实验。 （4）家兔：常用于观察研究脑电生理作用，药物对小肠的作用。由于家兔体温变化敏感，也常用于体温实验，用于热原检查。 （5）狗：狗是记录血压，呼吸最常用的大动物。还可利用狗做成胃瘘、肠瘘，以观察药物对胃肠蠕动和分泌的影响。在进行慢性毒性实验时，也常采用狗。 2. 实验动物的编号 狗、兔等较大的动物可用特制的铝质号码牌固定在颈部或耳上。大鼠、小鼠如为白色可用黄色苦味酸在不同的体表标志上标记。 3. 动物固定及给药 （1）小鼠捉拿 小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。在一些特殊的实验中，如进行尾静脉注射时，可使用特殊的固定装置进行固定，如尾静脉注射架或专用小鼠固定筒。如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作，如进行解剖实验则必须先行无痛处死后再进行。 （2）小鼠灌胃 用左手固定鼠，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口腔插入，压迫鼠的头部，使口腔与食道成一直线,将灌胃针沿咽后壁慢慢插入食道，可感到轻微的阻力,此时可略改变一下灌胃针方向，以刺激引起吞咽动作，顺势将药液注入。一般灌胃针插入小鼠深度为3～4cm，大鼠或豚鼠为4～6cm。常用灌胃量小鼠为0.2～1ml,大鼠1～4ml,豚鼠1～5ml。 （3）小鼠腹腔注射 先将动物固定,腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约0.5 厘米，再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。此法大小鼠用的较多。
药理学实验教程资料
药理学实验教程 （中、英文版） 主编 叶春玲 钟玲 暨暨南南大大学学药药学学院院药药理理教教研研室室 22000077年年55月月
药理学实验教程 目目 录录 第一篇 药理学实验基本知识 第一章 药理学实验须知 一、药理学实验课的目的和要求 二、实验结果的整理和实验报告的撰写 第二章 药理学实验设计的基本知识 一、实验设计的基本原则 二、药理实验设计中的剂量问题 三、药理实验设计中的预试问题 第三章 药理学实验的统计处理原则 一、计量资料的统计分析 二、计数资料的统计分析 三、药效和剂量依赖关系（相关性）的统计分析 四、两药药效的等效性分析 第四章 常用实验动物的基本操作 一、实验动物的选择及捉拿固定 二、实验动物的编号 三、实验动物的给药方法 四、实验动物的麻醉和取血 第五章 药理学实验常用仪器操作技术 BL-410生物机能实验系统 第六章 药物剂型与处方学 一、药物剂型 二、处方学 第二篇 药理学总论实验 第一章 药动学实验 实验一 磺胺类药物静脉给药后的药时曲线 实验二 磺胺类药物非血管内给药后的药时曲线 实验三 3P87 计算药物动力学参数
实验四磺胺类药物在体内的分布 实验五磺胺嘧啶的血浆蛋白结合率测定 实验六磺胺类药物在麻醉大鼠体内经胆汁和尿排泄的实验 第二章药效学总论实验 实验一不同给药途径对药物作用的影响 实验二肝功能状态对药物作用的影响 实验三量效关系曲线和有关药效学参数测定 第三章安全性试验 实验一药物急性半数致死量（LD50）的测定 实验二最大耐受量（MTD）测定 第三篇药理学各论实验 第一章传出神经系统药物实验 实验一药物对麻醉动物血压的影响 实验二药物对麻醉动物血流动力学的影响 实验三药物对离体兔主动脉环的作用 第二章中枢神经系统药物实验 实验一药物对小鼠自发活动的影响 实验二药物对益智作用的影响 实验三抗癫痫药和抗惊厥实验 实验四镇痛药实验 第三章心血管系统药物实验 实验一利多卡因对哇巴因诱发心律失常的拮抗作用 实验二强心苷对家兔在体衰竭心脏的作用 实验三药物对垂体后叶素所致的急性心肌缺血心电图变化的影响第四章内脏系统药物实验 实验一呋塞米对小鼠尿量及电解质的影响 实验二药物对组胺诱发豚鼠哮喘的作用 实验三药物对大鼠的利胆作用 第五章激素类及抗炎药物实验 实验一糖皮质激素对毛细血管通透性的影响
药学实验技能大赛方案
广州医科大学药学院第一届药学实验技能大赛方案 一、活动目的： 为了促进我院学生树立崇尚科学，勇于创新，敢于实践的精神风貌，加强学生实验操作技能、综合设计与创新能力的培养，促进我院本科实验教学改革，共同推进高水平大学建设，现决定面向药学专业2013级、2014级本科生举办药学院第一届药学专业学生实验技能竞赛。 二、竞赛时间 2016年9月——10月 三、竞赛地点 番禺校区A3教学楼、A1实验楼 四、参赛人员 药学院2013级、2014级本科学生 五、竞赛组委会 组长：余细勇张超 成员：李悦山宜全徐兰琴陶移文张依罗亦萍张建业 吴爱平刘波涛陈璐 六、具体安排 1.药学实验技能理论笔试（初赛）： （1）时间：2016 年9 月11 日19: 00-21:00 （已定） （2）地点：A3教学楼课室（待定） （3）规则：题型全部为选择题（共100道）。考察范围主要是药学实验的基本知识，包括实验数据处理、误差理论、实验室基本知
识、实验室安全、重要常规化学品的安全使用、基本的实验操作 规范、常规实验仪器和中大型仪器的使用、各门课程实验理论 等。笔试时间为2小时，13级、14级分别按卷面成绩高低评出进入决赛人员名单。（13 级取前6名，14级取前18名） 2.药学实验技能操作竞赛（决赛）： （1）时间：2016年10月14日（初定） （2）地点：A1实验楼（待定） （3）规则：每队4人（其中1人13级，3人14级）。考察范围为生物（生理、药理学与生物化学）与化学（天然产物化学、药物化学、药物分析）两部分通用技术和操作。以一或两个药物相关实验，涵盖生物与化学相关内容。要求：选手按照试卷给定的实验过程和 要求，进行实验，获得相应结果。最后评出一等奖1名，二等奖2名，三等奖3名。 七、考试大纲与评分标准 见附件1、附件2。 八、其他事项 1?学生办负责组织学生参赛及其他赛事组织工作。 2.实验中心负责竞赛操作实验的准备工作，对实验感兴趣的同学 可报名参加决赛实验助理，帮助老师进行实验仪器、试剂的装配工作。 3.组委会负责邀请老师出题、阅卷及担任评委 附件1:考试大纲 附件2 :评分标准
药理学实验心得体会
药理学实验心得体会 这次小学期实验的第一个实验是药理学实验，怀揣着愉悦的心情我开始了我学习药理学之旅。药理学是一门以实验为基础的医学桥梁学科。药理实验是药理教学中不可缺少的组成部分，对学习和掌握药理学知识具有重要作用。通过药理实验既可以验证药理学理论，促进理论与实践相结合，加深学生对理论知识的理解，同时也有助于培养学生动手能力及严谨的工作态度和科学的思维方法，为将来的工作和科研奠定基础。药理学研究药物与机体(包括病原体)相互作用的规律及其原理。古人曾说：“学，然后知不足”。所以，我会在不断的学习及积累知识的过程中，不断的提升自身的科学素养以及为我们的专业课的学习打下坚实的基础。 药理学实验是药理学教学的一个重要组成部分。实验课目的：（1）通过实验，使学生掌握药理学实验的基本操作技能和基本实验方法，了解获得药理学知识的科学途径；（2）验证药理学中的某些重要的基本理论，巩固和加强对理论知识的理解，更牢固地掌握药理的基本概念。(3)培养学生的科学思维方法、严谨的科学工作态度和实事求是的作风，训练学生能客观地对事物进行观察、比较、分析、综合和解决实际问题的能力。 为了达到上述目的，要求做到下列事项：试验前仔细阅读实验指导，了解实验目的、要求、方法和操作步骤。领会其设计原理；结合实验内容，复习有关药理学和生理学、生化学等方面理论知识达到重复理解；估计实验中可能出现的情况和发生的问题。实验中将实验器材妥善安排，正确装置；严格按照实验指导的步骤进行操作，准确计算给药量，防止出现差错意外；认真细致的观察实验过程中出现的现象，准确记录药物反应的时间、表现以及最后的转归、联系课堂讲授内容进行思考；注意节约实验材料。实验后整理实验结果，经过分析思考写出实验报告并按时交给指导老师。药理学实验结果有计量资料如血压、心率、心收缩力、自主活动次数等数据；计数资料如动物存活数、阳性或阴性反应数等数据；生物信息处理软件记录的曲线等。根据不同的资料选择相应的统计学方法，常用的统计学方法有两组间 t检验和 x2检验、方差分析等。生物信息处理软件记录的曲线和图形要进行剪辑，取其精华汇总打印，并注明动物的种类、体重、性别、日期、实验题目、给药剂量和途径等。测量资料和计数资料应列表填入，
实验一药理学实验的基本技能
实验一药理学实验的基本技能 一、实验动物的基本技能和实验技术基础 1.实验动物的标记 大、小鼠和白色家兔的标记常用3～5％黄色苦味酸溶液涂于皮毛上标号。常用的方法：1号---左前腿 2号---左腰部 3号---左后腿 4号---头部 5号---正中 6号---尾根部 7号---右前腿 8号---右腰部 9号---右后腿 10号---不标记 2.实验动物的捉持（大、小鼠） (1)小鼠的捉持用右手提起鼠尾，放在粗糙物（如鼠笼盖）上面，向后轻拉鼠尾；用左手拇指和食指捏住其两耳颈背部皮肤，将小鼠固定在掌中，使其腹部朝上，然后以无名指和小指夹住鼠尾或小鼠的左后肢。 （2）大鼠的捉持捉持和固定方法基本同小鼠，无经验者可戴上防护手套，并应动作轻柔。用右手捉住鼠尾，放在鼠笼盖上，向后轻拉鼠尾；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。 图1 小白鼠捉持法 3、实验动物的给药方法（大、小鼠） （1）小鼠的给药方法 灌胃（ig）：将小鼠固定后，使颈部拉直，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，压其头部，使口腔与食道成一直线，沿上腭壁向鼠口腔的后下方轻轻插入食道。如遇阻力，可将针头抽出再插，以免刺破食管或误入气管。一般给药量为0.1～0.3ml/10g（体重）。
图2 小白鼠灌胃法实验图3 小白鼠腹腔注射法 皮下注射（H或sc）：常在背部皮下。轻轻捏起背部皮肤，将注射针头刺入皮下，稍稍摆动针头，若容易摆动则表明针尖位于皮下。然后注入药液。一般给药量为0.1～0.20ml/10g （体重）。 图4 小白鼠皮下注射法 腹腔注射（ip）：左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45度角刺入腹腔，进针约3～5mm，一般给药量为0.1～0.3ml/10g（体重）。 肌内注射(im)：多注射于后肢股部肌肉，一般每侧不超过0.1ml。 尾静脉注射（iv）：将小鼠置于固定筒内，使尾部露在外面，用70％～75％的乙醇棉球擦尾部，或将鼠尾浸入45～59oC温水中，待尾部左右侧静脉扩张后，左手拉尾，右手进针。一般给药量为0.1～0.2ml/10g （2）大鼠的给药方法 均同小鼠。一般情况下，灌胃剂量为1～2ml/100g，皮下注射、尾静脉注射<1ml /只，腹腔注射为1.5ml /只，肌内注射为0.1～0.2ml/只。此外大鼠尚有舌下静脉给药的方法。
药理学实验
实验一动物实验基本知识 一、实验目的 通过药理学实验的基础知识的学习和练习,掌握药理学实验的基本技能和方法。 二、实验内容 （一）教学电影：动物基本知识与实验技术； （二）实验： 三、实验仪器、设备 实验动物：家兔、小鼠、 实验器材：小鼠固定器家兔固定器、注射器兔台，手术器械，注射器，丝线，纱布等 四、实验方法与步骤 1、教师示教过程 小鼠、大鼠的捉拿灌胃，腹腔注射，皮下注射，标记.家兔捉拿、固定、灌胃、静脉注射，肌肉注射等。重点示教小鼠、大鼠的捉拿灌胃. 2、学生自己做实验操作练习。 小鼠、大鼠的捉拿灌胃，腹腔注射，皮下注射，标记.家兔捉拿、固定、灌胃、静脉注射，肌肉注射等。 1、捉持法以右手提鼠尾，将小鼠放于粗糙面上，将鼠尾轻轻向后拉，以左手 的拇指及其食指捏双耳及头部皮肤，无名指、小指及掌心夹其背部皮肤 及其尾部，便可将小鼠固定。 2、灌胃左手持小鼠，使腹部朝上，颈部拉直，右手拿灌胃器子口交插入口腔， 从舌面紧沿上颚进入食道。若遇阻力，应退出后再插。 3、皮下注射一人抓小白鼠头部皮肤，右手拉鼠尾，另一人左手捏背部皮肤， 右手持注射器刺入背部皮肤。 4、腹腔注射左手抓小白鼠，右手持注射器。取30o将针头从下腹部刺入腹腔。 5、尾静脉注射将小白鼠置于固定筒内或倒置的大漏斗下，使鼠尾露出在外。 用酒精棉球擦鼠尾，使血管扩张。左手拉住尾尖，选一条扩张最明显的尾静脉将针头刺入血管，推药。若有阻力，且局部变白，则需从新刺入血管。
小结: 实验的认真及参与情况,实验室守则和实验的基本要求。同学在实验过程中出现的问题。 五、实验报告要求 实验中认真观察实验现象，将实验记录在原始数据表格中，实验结束后，指导教师检查并签字。撰写实验报告要求内容完整、结论正确、书写规范、条理清楚、有分析、有讨论，并在规定时间内完成，及时交予实验指导教师。 六、实验注意事项 注意实验动物编号；动物捉拿、固定、给药、取血方法 七、思考题 动物捉拿、固定、给药方法有哪些？
药理学实验方法
word 药理学实验方法 第－讲实验动物的选择 在药理学实验中，要根据实验目的，选择不同动物，常用动物有： １、青蛙和蟾蜍 心脏（离体、在体）实验, 制备坐骨Ｎ－腓肠标本等。 ２、小白鼠： 药物初筛：镇痛、耐缺氧、抗肿瘤药物、LD５０测定、避孕药实验等。 ３、大白鼠： 抗炎作用，大白鼠踝关节肿胀实验，血压测量，胆管插管等。 长期性毒性试验。 ４、豚鼠： 对组胺敏感，并易于致敏，常用抗过敏药（平喘药、抗组胺药）实验。离体心房、心脏、肠管实验等。 豚鼠对结核菌也敏感，也用于抗结核病药物实验。 5、兔： 家兔易得，驯服，便于静脉注射和灌胃，常用于观察药物对心脏的作用和对CNS 的作用。 又由于其体温变化较敏感，也常用于体温实验及热原检查。 家兔也常用于避孕药实验。 6、猫： 猫的血压比较稳定，具有咳咳嗽反射和呕吐动作。因而常用于心血管药物实验和镇咳药、镇吐药实验。 7、狗： 狗的血压比较稳定，常用于降压药、升压药和抗休克药实验。 狗比较容易驯服，最适用于慢性实验。手术造瘘（胃、肠）以便观察药物对胃肠蠕动和分泌的影响。 此外，长期毒性实验也常用狗来进行。 * 附:给药途径及剂量限制 1. 小白鼠 （1）灌畏法:0.1～0.25ml／10g体重。 （2）皮下注射：0.1～0.3ml／10g体重。 （3）肌肉注射：0.2ml／每侧。 （4）腔注射：0.1～0.25ml／10g体重。 （5）静脉注射：0.05～0.1ml／10g体重。 1.大白鼠 （1）灌畏法:2.0ml／10og体重。<3.0ml/只。 （2）腔注射：0.1～0.25ml／10g体重。 第二讲实验动物的麻醉和处死 一、各种实验动物的麻醉药物和麻醉方法
药理学实验的基本知识和基本技术
药理学实验的基本知识和基本技术 一、实验动物的种类选择 药理学实验常用的动物有小白鼠、大白鼠、豚鼠、家兔、猫、犬、蛙、蟾蜍等。常根据实验目的和要求选用不同的实验动物。由于不同的动物具有不同的特点，故所选用的动物应能较好地反映试验药物的选择性作用，并符合节约的原则。 小白鼠：系实验室最常用的一种动物。易于大量繁殖，且价廉，适用需要大量动物的实验，如药物筛选、半数致死量测定、药物效价比较、抗感染、抗肿瘤药物及避孕药物的研究等。 大白鼠：与小白鼠相似。一些在小白鼠身上不便进行的实验可选用大白鼠，如药物抗炎作用的实验常选用大白鼠踝关节制备关节炎的模型。此外也可用大白鼠直接记录血压、作胆管插管，或用大白鼠观察药物的亚急性或慢性毒性。大白鼠的血压和人相近，且稳定，现常用于抗高血压药物实验。 豚鼠：是实验室常用动物之一。对组织胺很敏感，容易致敏，常用于平喘药和抗组胺药的实验。对结核菌亦敏感，故也用于抗结核药的研究。此外还用于离体心脏及平滑肌实验，其乳头肌和心房常用于电生理特性及心肌细胞动作电位实验，研究抗心律失常药物的机理。 家兔：温顺、易饲养，常用于观察药物对心脏、呼吸的影响及农药中毒和解救的实验。亦用于研究药物对中枢神经系统的作用、体温实验、热原检查及避孕药实验。 猫：与家兔比较，猫对外科手术的耐受性强，血压较稳定，故常用于血压实验。但价格较贵。此外，猫也常用于心血管药物及中枢神经系统药物的研究。 犬：药理实验需大动物时常用犬。常用于观察药物对心脏泵功能和血流动力学的影响，心肌细胞电生理研究，降压药及抗休克药的研究等。犬还可以通过训练，用于慢性实验研究，如条件反射、高血压的实验治疗、胃肠蠕动和分泌实验、慢性毒性实验。 蛙和蟾蜍离体心脏能较持久地有节律地搏动，常用于观察药物对心脏的作用；坐骨神经和腓肠肌标本可用来观察药物对周围神经、神经肌肉或横纹肌的作用；蛙的腹直肌还可以用于鉴定胆碱能药物的作用。 须注意：由于动物对外界刺激的反应存在个体差异，在选择实验动物时，还应注意动物的年龄、体重、性别、生理状态、健康状况及其品系、等级等因素对实验的影响。 二、实验动物的编号
药理学实验
药理学基础实验 实验一药理学实验的基本知识和技术 6课时 一、动物实验的基本知识和技术 （一）实验动物的要求和选择 药理学实验要求根据不同的实验目的选用相应合格的医学实验动物。实验动物按微生物控制分为四级：一级为普通动物，要求不带有人兽共患病的病原体以及体外寄生虫；二级为清洁动物，在一级要求基础上还必须不带有动物传染病的病原体；三级为无特定病原体的动物；四级为无菌动物。药理教学实验可选用一级普通动物，科研实验必须用二级以上的实验动物。 1．青蛙和蟾蜍其心脏能在离体情况下保持较持久地节律性搏动，可用来观察药物对心脏的作用；其坐骨神经腓肠肌标本可用来观察药物对周围神经、横纹肌或神经肌肉接头的作用，用于局麻药和肌松药实验。 2．小鼠最为常用，易大量繁殖，适用于需要大量动物的实验，如半数致死量测定和药物的初筛实验。 3．大鼠用途与小鼠基本相同。主要用于一些用小鼠不便进行的实验，如血压实验等。大鼠对炎症反应较为灵敏，其踝关节炎模型常用于观察药物的抗炎作用。 4．豚鼠对组胺特别敏感，是筛选平喘药和抗组胺药最理想的动物。 5．家兔性情温顺，易饲养，亦是药理实验中最常用的动物之一，用于观察药物对心脏、血压、呼吸的影响。 6．狗易于通过驯养与人合作，因而很适合于慢性实验，如用手术造成胃瘘、肠瘘以观察药物对胃肠蠕动及分泌功能的影响；高血压的实验治疗；新药临床前毒性试验等。 （二）实验动物的捉持方法 2．小鼠右手提起鼠尾，放在鼠笼（或其他粗糙面）上，向后轻拉其尾，迅速用左手拇指和食指捏住小鼠头颈部皮肤，并以左手小指、无名指压其尾部于手掌尺侧。另一方法是只用左手，先用食指和拇指抓住小鼠尾巴后用手掌尺侧和小指夹住尾根部，然后用左手拇指和食指捏住头颈部皮肤。 （三）实验动物的给药方法 1．灌胃 小鼠：左手捉持小鼠，使头部朝上，颈部拉直，腹部朝向操作者，右手持灌胃管，自口
药理学实验基础知识与总论实验
实验一、药理学实验的基础知识和药理学总论实验 一、实验动物的基本技能和实验技术基础 1、实验动物的标记 大、小鼠和白色家兔的标记常用3～5％黄色苦味酸溶液涂于皮毛上标号。常用的方法：1号 --- 左前腿 2号 --- 左腰部 3号 --- 左后腿 4号 --- 头部 5号 --- 正中 6号 --- 尾根部 7号 --- 右前腿 8号 --- 右腰部 9号 --- 右后腿 10号 ---不标记 2、实验动物的捉持（大、小鼠） (1)小鼠的捉持用右手提起鼠尾，放在粗糙物（如鼠笼盖）上面，向后轻拉鼠尾；用左手拇指和食指捏住其两耳颈背部皮肤，将小鼠固定在掌中，使其腹部朝上，然后以无名指和小指夹住鼠尾或小鼠的左后肢。 （2）大鼠的捉持捉持和固定方法基本同小鼠，无经验者可戴上防护手套，并应动作轻柔。用右手捉住鼠尾，放在鼠笼盖上，向后轻拉鼠尾；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。 3、实验动物的给药方法（大、小鼠） （1）小鼠的给药方法 灌胃（ig）：将小鼠固定后，使颈部拉直，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，压其头部，使口腔与食道成一直线，沿上腭壁向鼠口腔的后下方轻轻插入食道。如遇阻力，可将针头抽出再插，以免刺破食管或误入气管。一般给药量为0.1-0.3ml/10g（体重）。 皮下注射（H或sc）：常在背部皮下。轻轻捏起背部皮肤，将注射针头刺入皮下，稍稍摆动针头，若容易摆动则表明针尖位于皮下。然后注入药液。一般给药量为0.1-0.20ml/10g （体重）。 腹腔注射（ip）：左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45度角刺入腹腔，进针约3～5mm（注意：进针不宜过深，以免伤及肝脏和脾脏。注药前回抽一下，无回血时再注药）。一般给药量为0.1-0.3ml/10g（体重）。 肌内注射(im)：多注射于后肢股部肌肉，一般每侧不超过0.1ml。 尾静脉注射（iv）：将小鼠置于固定筒内，使尾部露在外面，用70％～75％的乙醇棉球擦尾部，或将鼠尾浸入45～59oC温水中，待尾部左右侧静脉扩张后，左手拉尾，右手进针。一般给药量为0.1-0.2ml/10g （2）大鼠的给药方法 均同小鼠。一般情况下，灌胃剂量为1～2ml/100g，皮下注射、尾静脉注射<1ml / 只，腹腔注射为1.5ml /只，肌内注射为
药理学实验一)剂量对药物作用的影响
（一）剂量对药物作用的影响目的：观察不同剂量尼可刹米对小鼠作用的差异 原理：影响药物的因素有药物的给药剂量，当药物的剂量增加，药物的效应也随之增加。但这一效应的增加不是无限制的，当增加到一定的程度时，药物的效应恒定在一定的水平，而当药物剂量过大时，可致中毒或死亡。 材料：器材：电子天平、1ml注射器 药品：2.5%尼可刹米溶液 动物：小白鼠3只 方法：取小鼠3只，标记，称重，随机分为3组，各鼠均腹腔注射不同剂量的尼可刹米溶液（1#：2.5%尼可刹米溶液0.15ml/10g；2#：2.5%尼可刹米溶液0.1ml/10g；3#：2.5%尼可刹米溶液0.05ml/10g），观察潜伏期、给药前后的表现，并仔细记录观察结果，完成实验报告。 注意：1、小鼠对尼可刹米可能出现的反应，按由轻到重程度有：活动增加，呼吸急促，反射亢进，震颤，惊厥，死亡等。 2、比较各鼠表现出来的药物反应的严重程度和发生快慢。 思考：本实验结果对药理实验和临床用药有何启示？ （二）安定抗尼可刹米惊厥的作用 目的：观察安定对尼可刹米中毒动物的解救作用
原理：安定具有镇静、催眠、抗惊厥的作用，可清除病理性中枢兴奋状态。 材料：器材：电子天平、0.5ml注射器、1ml注射器、大烧杯 药品：2.5%尼可刹米溶液、0.5%安定溶液、生理盐水 动物：小白鼠2只 方法：取小鼠2只，标记，称重，随机分为2组。1#腹腔注射0.5%安定溶液0.05ml/10g，2#腹腔注射等量生理盐水，然后各鼠均腹腔注射2.5%尼可刹米溶液0.1ml/10g，观察两鼠给药前后的表现，并仔细记录观察结果，完成实验报告。 注意：使用剂量的准确性 思考：安定为什么能解救尼可刹米所致的惊厥？ （三）不同给药途径对药物作用的影响 目的：观察不同给药途径对硫酸镁作用的影响 原理：给药途径是影响药物作用的分布、代谢、排泄都有较大的影响，因而使药物作用的强度和速度不同，有时甚至会改变药物的作用性质。 材料：器材：电子天平、1ml注射器、小鼠灌胃针头 药品：15%硫酸镁（含水）溶液 动物：小白鼠2只 0.2ml/10g；另一方法：取小鼠2只，标记，称重，随机分为2组，一只腹腔注射15%MgSO 4
《药理学实验》课程教学活动大纲
《药理学实验》课程教学大纲 （执笔人：尹艳艳审核人：周兰兰教学院长：陈志武）一、课程简介 （一）课程代码： （二）课程名称（含英文名称）： 药理学实验（pharmacology experiments） （三）课程类别： 专业基础课 （四）修读对象： 药学专业 （五）总学时与学分： 其中实验54学时，3学分。 （六）相关课程： 药理学 （七）内容提要 本课程涵盖了药理学部分的模拟实验及经典实验项目，以大量的实验尤其是动物实验为基础，复制疾病动物模型，研究用药后的生物体功能活动变化及其规律，以巩固药理学及相关基础理论知识，进一步强化实验操作技术，提高动手能力，培养分析问题和解决问题的能力。 二、教学目的和教学方法 （一）教学目的 1．加强学生的药理学基本理论、基本知识和基本技能的训练，培养理论联系实际和独立开展科学研究的能力。药理学实验可以帮助学生验证药理学理论知识，巩固和加强对药理学理论的掌握；促进学生对药理学一些抽象概念的理解；了解药理学研究的一些基本方法，培养学生药理学实验设计和科研能力；初步掌握药物研究的基本技能，并且通过科研模拟实验加强学生的创新思维能力的培养。
2.药理学实验主要以学生在教师指导下自己动手操作为主，少量示教实验为辅，并且配合课堂讨论和多媒体等方法，达到既验证理论，巩固和加强药理学理论知识学习的目的，又要做到培养学生科研能力和创新思维的开发。 （二）教学方法 采用课堂讲授、现场指导、模拟实验、双语教学、自主设计、病例讨论和课外训练等多种教学手段相结合的教学方法。 三、实践教学学时分配 四、选用教材和主要教学参考书
1.陈志武,董六一,《药理学实验指导》,中国协和医科大学出版社,2013年10月 2.孔德虎，《医学机能学实验教程》，科学出版社，2009年2月。 五、实验教学内容 实验一、动物捉拿及各种药方法（录像） 主要讲授内容：介绍动物捉拿及各种给药方法 教学时数：3学时 重点与难点： 1.小鼠、大鼠和家兔的捉拿方法。 2.小鼠、大鼠和家兔常见的给药方法 实验二、小鼠戊巴比妥钠LD50和ED50的测定 主要讲授内容：ED50及LD50的概念，其测定方法和小鼠腹腔注射的方法 教学时数：4学时 重点与难点： 1.小鼠腹腔注射的方法。 2.LD50和ED50的计算方法。 思考题或练习题： 1. 半数有效量（ED50）和半数致死量（LD50）测定的目的意义如何？ 2. 药物的剂量与药物作用有何关系？ 3. 治疗指数和安全范围之间有何联系？ 实验三、吗啡的镇痛作用（小鼠热板法和小鼠扭体法） 主要讲授内容： 1.镇痛药物的热板实验方法测定，观察镇痛药的镇痛作用，熟练掌握小鼠皮下注射的方法； 2.镇痛药物的扭体实验方法测定，观察镇痛药的镇痛作用，熟练掌握小鼠腹腔注射的
药理学实验的基础知识.doc
第一章药理学实验的基础知识 第一节药理学实验的目的和要求 药理学实验的目的在于通过循序渐进的常规实验，使学生验证和巩固所学的基木理论；通过综合实验了解较为先进的科研方法和技能，同时培养学生联想及综合分析问题的能力；通过设计性实验，培养学生独立思考、科学思维及创新的能力，建立实事求是、严谨的科学态度，提高解决实际问题的能力，为后续知识的学习和毕业麻的科研工作奠定良好的基础。为了达到上述H的，要求学生做到以下几点。 【实验前】 1.仔细阅读实验指导，了解实验目的、原理、要求、方法和操作步骤。 2.结合实验内容，复习有关药理学、生理学、生物化学及免疫学等方面的理论知识，做到充分理解。 3.预测实验屮可能岀现的情况和发生的问题。 【实验时】 1.实验器材的放置力求稳当、桀齐、有条不紊。 2.严格按照实验指导上的步骤进行操作，准确计算给药量，节省器材和药品。要注意保护实验动物和标本，避免与实验内容无关的刺激。 3.仔细、耐心地观察实验过程屮岀现的各种现象，实事求是地记录药物出现反丿'V的时间、表现以及最后的转归，联系课堂讲授的内容进行思考。 4.在实验过稈屮遇到疑难之处，先要白己设法解决，如一时解决不了，应向指导教师说明情况，请求教师协助解决。对于贵重仪器，在未熟悉其性能Z前，不可轻易调试。 5.实验室内保持安静、整洁。用药示须用原瓶塞塞好，公丿IJ药品和器材不可随意挪动。 【实验后】 1.将实验用器材清洗擦干，清点整理后放到指定位置。如有损坏、缺少，应及时报告老师。将存活和死亡动物分别送至指定处所。 2.认真整理实验记录，经过分析思考，撰写实验报告，按时交给指导老师。 3.做好实验室的清洁一卫生工作。 第二节药理学实验设计的基本原则 在进行药理学实验时，为保证实验结果的客观性和可信性必须遵循以下基木原则:
药理学实验方案
元胡止痛片对小鼠镇痛抗炎镇痛活性研究 药理实验设计 设计人： 2011 级药学一班张 礼杰2011515010 信 盼2011515024 陈茂琴 2011515026 何朵朵 2011515028 药学四班 杨森2011515101 冯 禹2011515110 王同月 2011515102
元胡止痛片中抗炎和镇痛作用研究 1. 实验目的：探讨元胡止痛片的镇痛和抗炎作用 2. 实验原理：（1）元胡止痛片收载于《元胡止痛片收载于《中国药典》是由元胡、白 芷两味药组成的中药复方制剂为行气活血止痛剂临床用于治疗气滞血瘀胃痛、胁痛、头 痛及月经痛等症疗效确切。本实验是为验证元胡止痛片的镇痛和抗炎作用进行验证。实 验对四川禾邦阳光制药厂家生产元胡止痛片不同剂量进行了药效学研究采用小鼠醋酸扭 体法、小鼠热板法和耳肿胀法实验分别测定小鼠扭体反应抑制率、小鼠痛阂值提高率和 肿胀率从而确定不同剂量的镇痛和抗炎作用效果。 在基础医学研究中筛选镇痛药的常用致痛方法概括有物理法（热、电、机械）和化学 法。动物的疼痛反应常表现出嘶叫、舔足、翘尾、蹦跳及皮肤、肌肉抽搐。化学法，即将 某些化学物质，如强酸、强碱、钾离子、缓激肽等，涂布于动物的的某些敏感部位或腹腔 注射。腹腔注射损伤物质引起受试动物腹痛，动物表现出“扭体反应”（即腹部内凹、躯 干与后肢伸张、臀部高起）。 3. 实验方法:使用小鼠热板法、醋酸扭体法、耳肿胀法，并分别建立小鼠疼痛和炎症 模型，灌胃给予不同剂量元胡止痛片配成的溶液，观察对动物的镇痛和抗炎作用。 4. 实验过程： 1?内容 4.1药品与试剂 元胡止痛片：四川禾邦阳光制药股份有限公司，国药准字Z51021658,规格：片芯重0.25g,12 片 阿司匹林：浙江金华市第三制药厂，国药准字：H13023716，临用前用蒸馏水配制为适当浓度的混悬液。 4.2动物：健康昆明种小白鼠，雌性， 32只 4.3器材：数控超级恒温槽，烧杯、 1ml注射器、电子秤 4.4分组： 空白对照组（灌胃0.9%生理盐水10 mL/kg） 元胡止痛片高、低剂量组（0.2，0.4mg/ 10g） 阳性药阿司匹林对照组（灌胃阿司匹林 0. 4 g/kg） 4.5人和动物剂量换算公式 人？0.0026 / 小白鼠= /g 20 2方法 （1）热板法 1. 动物筛选：致痛潜伏期（痛阈值）为5~30s之间的合格雌性小鼠。32只，热板法镇痛试验筛选痛阈值合格的小鼠，取早小鼠于给药前先用热板仪于55 ± 0. 5 C分别测定每只 小鼠的正常痛阈值［将小鼠放于智能热板仪上至出现舔后足的所需时间作为痛阈值（s）,