(医疗药品)药用植物组织培养实验指导

(医疗药品)药用植物组织培养实验指导
(医疗药品)药用植物组织培养实验指导

甘肃农业大学农学院

药用植物组织培养实验指导

柳福智编

农学院中草药栽培与鉴定教研室

2007年8月

前言

药用植物组织培养实验是根据中草药栽培与鉴定专业的培养要求,为学生开设的一门实验课程。药用植物组织培养实验的任务是使学生加深对药用植物组织培养基本理论的理解,掌握药用植物组织培养实验的基本操作技能,学习药用植物组织培养实验的基本知识,养成严格、认真和实事求是的科学态度,提高观察、分析和解决问题的能力,为将来参加工作打下良好的基础。

编者

2007年8月

学生实验守则

1、实验前认真预习,领会实验原理,明确本次实验的目的和要求,了解实验步骤和注意事项。

2、实验时要严格按照规范操作进行,仔细观察实验现象,认真记录有关数据。

3、要认真写好实验报告,实验报告要清楚、简练、整洁。

4、学生进入实验室必须严格遵守实验室规则,服从带教老师的指导。

5、爱护实验室的仪器设备,不准将实验室的仪器设备私自带出室外。

6、严格遵守操作规程及实验时应注意的事项,在使用不熟悉其性能的仪器和药品之前,应查阅有关资料或请教指导教师,不要随意进行实验,以免损坏仪器,浪费试剂,使实验失败,更重要的是预防发生意外事故。

7、实验过程中应注意防火灾、防爆炸、防腐蚀、防污染工作,牢固树立“安全第一”意识。

8、实验结束后,一切仪器试剂应放回原处,玻璃仪器要清洗干净,一些有毒、有腐蚀性的废液应倒入废液缸内。

9、实验台面要擦试干净,由值日生负责安全卫生工作,包括清理实验室,检查水、电的开关,清除垃圾和污物,关好门窗后方可离开实验室。

药用植物组织培养实验报告一般包括以下内容和要求:

(1)实验名称、实验日期。

(2)实验目的写明通过本实验要达到的训练目的。

(3)实验原理用文字表述本实验的基本原理。

(4)操作步骤简明扼要叙述实验的操作步骤。

(5)实验数据的处理及结果。

(6)问题及讨论应对实验中观察到的现象及实验结果进行分析和讨论,如果实验失败,要寻找失败原因,总结经验教训,以提高自己的基本操作技能。

目录

实验一组培室设备参观及器皿的洗涤和灭菌.............

实验二母液的制备及培养基的配制、灭菌...............

实验三药用植物茎尖培养............................

实验四药用植物的花药培养.........................

实验五试管苗的移栽...............................

实验一组培室设备参观及器皿的洗涤和灭菌

一、目的要求:

1.通过参观,了解组织培养室的几个主要组成部分和各部分应有的基本设备以及有关仪器的用途与功能。

2.通过实际操作,学会洗涤剂的配制和各种器皿的清洗和灭菌方法。

二、实验内容

了解组培室的结构及主要设备的用途和性能是十分必要的,总体上的了解有利于以后各实验的进行以及正确的使用各种仪器和设备。植物组织培养是一项十分细致的工作,为了保证植物外植体不受污染,第一关就是要对各种器皿进行清洗和消毒,使它们保持无菌状态,做这些工作同样有一套科学的方法和需要熟练的技巧,因此每个学生必须学好这套基本功。

三、实验原理

实验仪器的清洗、消毒和灭菌是组织培养成功的关键所在,是外植体免受污染的前提。由于灭菌剂的种类不同,所以选择消毒剂既要考虑良好的消毒、杀菌作用,同时易被蒸馏水冲洗掉。

四、实验仪器与材料:

高压灭菌锅、烘箱、超净工作台、双筒解剖镜、酸度测定仪、空调机、控温仪、百分之一与万分之一天平、电炉、玻璃器皿(试管、三角瓶、移液管、漏斗、烧杯、容量瓶、试剂瓶、量筒酒精灯),以及镊子、解剖刀、解剖针、手术剪,肥皂、洗衣粉、重铬酸钾、浓硫酸等。

五、方法和步骤:

首先在老师带领下参观组培室,并听取讲解,然后配制洗液,称取工业用重铬酸钾40克,溶解在500ml在水中,然后徐徐加入450ml粗制浓硫酸(或废硫酸)配好的溶液呈红色,铬酸洗液是一种强氧化剂,去污能力强,但玻璃器皿上沾有油脂、凡士林、石蜡等则用此液无效,铬酸洗液可反复使用,直到溶液呈青褐色为止。此溶液腐蚀性强,洗涤时需注意。

每人清洗部分玻璃器皿,方法:清水洗净→泡入洗衣粉水溶液中进行洗刷→清水反复冲洗→蒸馏水淋一遍→烘干备用。

然后清洗部分较脏的玻璃器皿,方法:采用先碱后酸,即用洗衣粉洗刷后冲洗干净→晾干→侵入酪酸洗液,浸泡时间视器皿的肮脏程度而定→清水反复冲洗干净→蒸馏水淋洗一遍→烘干备用。

带有石蜡或胶布的器皿:先将其除去,再用常规洗涤,石蜡用水煮沸数次即可去掉,胶布粘着物则需用洗衣粉液煮沸数小时,再用水冲洗,凉干后浸入洗液,以后的步骤同前。

对器皿和用具进行高压灭菌,即用手提式高压灭菌锅,在1.2个大气压下保持15~20分钟。解剖刀、手术剪、解剖针、镊子等用具在接种前还要用百分之七十的酒精棉球擦一下,再用酒精灯的火焰灭菌,冷却后即可应用。

六、作业:

试阐述为什么要对器皿和用具进行严格的洗涤和灭菌?

实验二母液的制备及培养基的配制、灭菌

一、目的要求:

通过掌握培养基对母液制备及常用培养基的配制和灭菌方法,为植物组织培养准备合适的营养条件。

二、实验内容

学习母液和培养基的配制,灭菌的方法。

三、实验原理

植物材料培养要获得成功,并正常生长,培养基的组成成分是一个决定性因素,不同植物要求不同的培养基,因此,在进行大量工作之前,对不同培养基应进行分析、比较、试验,选择一个符合试验材料需要的适宜培养基。

大多数植物组织培养所用的培养基由无机营养物、碳源、维生素、生长调节物质和有机附加物等五类物质组成。

四、实验仪器与材料

高压灭菌锅、冰箱、普通及精密天平、电炉、铝锅、玻璃器皿(烧杯、量微、容量瓶、移液管、试剂瓶、三角瓶、漏斗),化学试剂(CaCl2·2H2O,KNO3,MgSO4·7H2O,

NH4NO3,KH2PO4,Na2—EDTA,FeSO4·7H2O,MgSO4·4H2O,ZnSO4·7H2O,H3BO3,KI,NaMoO4·2H2O,CuSO4·5H2O,CoCl2·6H2O,甘氨酸,盐酸硫胺素,盐酸吡哆醇,烟酸,肌醇,蔗糖,琼脂,若干种生长调节

物质及天然复合物,HCL,NaOH,酒精),以及称量纸、药匙、玻璃棒、精密度纸,瓶盖用纸,线绳或橡皮筋、铅笔、标签纸。

五、方法和步骤

1、母液的配制

母液的配制是按所使用药品的类别,而分别配成大量元素、微量元素、维生素和铁盐等。配制母液时特别要注意无机盐成分在一起,可能产生的化学反应,如Ca2+和SO2-4,Ca2+,Mg2+和PO3-4一起溶解后,会产生硫酸钙或磷酸钙的不溶物沉淀,因此不能配在一起作母液贮存,应分别配制和保存。

配制母液时要用双重蒸馏水等纯度较高的水,药品应采用化学纯或分析纯级,药品的称量及定容都要准确,各种药品先以少量蒸馏水使其充分溶解,然后按培养基上的排列顺序混合。

现以Murashige和Skoog(1962)培养基为例叙述如下:根据各种药品的特点,母液可配成4种。

母液Ⅰ:把大量元素按培养基配方的20倍浓度混合在一起。

KNO338克

NH4NO333克

MgSO4/7H2O7.4克

KH2PO43.4克

CaCl2/2H2O8.8克

加水定容至1000毫升,配1升培养基时,吸收50毫升,注意CaCl2应待其它度剂彻底溶解后再加入,否则易出现沉淀。

母液Ⅱ:把硼、锌、锰、铜、钴、钼等微量元素,接培养基配方浓度的1000倍浓缩配制在一起。

MnSO4*4H2O22.3g

ZnSO4*7H2O8.6g

H3BO36.2g

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野生药用植物驯化实验指导

甘肃农业大学农学院

野生药用植物驯化实验指导

陈垣编

农学院中草药系

2007年8月

前言

本实验指导是《野生药用植物驯化》课程的配套实验教材,根据本系驯化经验经反复修改、充实编撰而成,其内容包括:野生药用植物种子休

药用植物资源调查、野生药用植物种子采集、田间覆盖试验、营养繁殖试

物引种观察等,除常规驯化栽培实验外还注意结合高难度名贵稀缺药用植学生实际应用技能,注意突出对学生独立工作能力的训练和培养。本实验培与鉴定专业本科生实验教学,亦可作为农林等其他有关专业学生及教师

编者

2007年8月

学生实习守则

一、学生实验期间不得准无故缺席、迟到、早退。

二、完成每次实验任务后,及时认真撰写实验报告。

三、严禁实验报告相互抄袭,一经发现按当次实验成绩为零计算,并从新

四、按各次实验成绩和综合实验成绩计算实验成绩,实验成绩占综合考评

五、实验操作要认真细致、数据真实。

六、防止实验设备损坏、因粗心或操作不当造成设备损坏要赔偿。

七、每次实验结束,检查实验室设备关闭,整理放归原处,清洁实验室,

离开。

实验报告的基本内容和要求

实验报告的基本内容

按照实验指导书各次实验作业内容撰写实验报告。实验报告格式:

实验题目实验小组学生姓名(空格间隔)(班级)

(甘肃农业大学农学院)

一、目的意义

二、材料与方法

包括材料与资料数据来源、试验方法。

三、结果

四、讨论与结论

参考文献

作者姓名,论文题目,期刊,卷(期),年份:页码

目录

实验一野生药用植物种子休眠特性的测定...............................................

实验二野生药用植物资源调查..................................................................

实验三野生药用植物种子采集及贮藏......................................................

实验四田间覆盖试验...............................................................................

实验五营养繁殖试验...............................................................................

实验六高原野生药用植物引种观察........................................................

实验一野生药用植物种子休眠特性的测定一、实验目的

了解植物种子的休眠特性。

掌握打破种子休眠的方法。

二、实验内容

测量植物种子的休眠特性、打破种子的休眠。

三、实验原理

(一)休眠机理

种子休眠是种子的一种生理现象,是植物长期适应气候变化的结果。繁衍后代具有深远意义,但对于种子繁殖栽培来说,它无疑给我们造成了

子休眠的原因主要有以下几种。

1复被结构的限制

复被结构是指胚的外围结构,包括果皮、外果皮、外稃、内稃、颖片乳等。其中种皮是因复被结构限制而引起种子休眠的主要结构。复被结构是由于其不透性限制或机械阻碍作用而造成的。

1.1复被结构的不透性限制

不透性限制从四个方面影响种子萌发。

1)阻止水分吸收:不透水的种子也叫硬实。这类种子的种皮极为坚硬能吸水,种子内原生质处于凝胶状态,呼吸强度很低,物质转化也很缓慢萌发。

2)阻止气体交换:不能进行气体交换,种子就得不到足够的氧气进行子内产生的二氧化碳气体也不能及时排出,致使种子内二氧化碳不断积累代谢障碍,从而影响种子发芽。

3)阻止胚内抑制剂逸出:种子胚中含有一定量的发芽抑制剂,复被结制剂逸出的作用,从而使胚中抑制剂过多而不能萌发。

4)阻碍光线到达胚部:有些光敏感种子,由于复被结构的滤光器作用光的比例,从而决定光敏素是否活化,并最终决定种子是否休眠。

1.2复被结构的机械阻碍作用

有的种子因种皮坚硬,膨胀的胚不能冲破种皮而使种子处于不能发芽

2胚未成熟

胚未成熟主要有两种情况,一是胚未发育完全,一是胚虽发育完全但两种情况下,种子都不能正常发芽。

2.1胚未发育完全

有的种子虽然已经脱离母体,从外形上看似已成熟,但胚尚未发育完继续生长,待胚发育完全后,种子才能萌发。

2.2胚尚未完成生理后熟

有的种子在成熟时胚已发育完全,但在适宜条件下也不能萌发,需要部发生一系列生理生化反应后才能萌发。

3萌发抑制剂存在

萌发抑制剂的种类很多,有挥发油、生物碱、有机酸、酚、醛等。其可能存在于复被结构中,也可能存在于胚中,或者两者中都存在。

4综合休眠

综合休眠就是兼有种皮障碍和胚体休眠的种子。这类种子萌发时,既皮)阻碍,又要克服胚的生理休眠,所以其发芽相当困难。

(二)打破休眠的方法

1解除复被结构障碍

1.1物理处理

用手工或机械方法去除或刮破复被结构(主要是种皮),使种子可以

交换。切割种皮时应注意不要伤害到胚。

1.2化学处理

酸处理:把种子放在浓硫酸或硝酸种浸泡30min,然后用水冲洗干净酸处理可使坚硬的种皮软化,容易透气透水。

碱处理:用一定浓度的碱溶液浸泡种子,可使颖苞外的大部分蜡质脱打破种子休眠。

2解除化学抑制因素

2.1植物激素处理

某些植物激素,如赤霉素、乙烯利、激动素等有促进种子发芽的作用激素处理种子可以使休眠种子中存在的化学抑制剂钝化或失效。

2.2其它化学药剂处理

除了植物激素外,其他一些化学物质也可以打破种子休眠或促进非休质包括酸碱、无机盐类、有机物、氰化物及其它呼吸抑制剂,某些植物的剂和氧化剂等等。

3打破胚休眠

3.1低温湿沙层积处理

低温湿沙层积处理对于打破种子休眠有综合性效果,它不但可以使胚除化学抑制因素,并使种皮透性改善。对于打破种子休眠而言,这是一种

3.2光照处理

有些种子经湿沙层积处理后仍不发芽,则可能是需要一定的光照刺激种子浸泡在水中并用15~25瓦白色荧光灯或红色灯泡在15~25cm距4打破综合休眠

综合休眠是几种因素同时作用引起的,因此,要打破综合休眠就要综处理种子,从而打破其休眠。

四、实验仪器与材料

仪器:研钵、培养皿、镊子、生物显微镜

材料:赤霉素、滤纸、细沙、甘草种子、秦艽种子

五、实验方法与步骤

1.准备培养皿滤纸和种子。

2.将甘草种子与2倍细沙混合,在研钵中研磨至种皮磨损。

3.用0、20、40、60mg/L的赤霉素浓度浸泡秦艽种子12小时。放培养皿放100粒种子,每个处理3次重复。

4.将研磨和未研磨的甘草种子放培养皿中发芽,每个培养皿放100 5.统计发芽率。

六、作业

以发芽率为结果,撰写实验报告。

实验二野生药用植物资源调查

一、实验目的

掌握野生植物资源调查的方法。

二、实验内容

调查学院内及周边地带的野生药用植物资源。

三、实验原理

中药资源调查是以植物科学(包括植物分类学、植物资源学、植物生态动物学、动物生态学、矿物药材学为基本理论指导,通过周密的调查研究资源的种类、用途、贮藏、生态条件、地理分布、利用现状、资源消长变社会生产条件等,挖掘新资源,揭示中药资源利用工作中存在的问题。中区域中药资源开发利用和保护管理计划的第一手资料。中药资源评价是在通过对中药资源的现状和利用现状的综合分析,对区域中药资源的开发和科学的评判,进而为制定区域中药资源的持续开发利用和保护管理计划提中药资源调查的基本方法包括现场调查、路线调查、访问调查和野外括起来就是点、线、面、访问相结合的综合调查方法。

(一)现场调查

现场调查是中药资源调查工作的主要内容,分为踏查和详查两种方式踏查也称概查,是对调查地区或区域进行全面概括了解的过程,目的资源的范围、边界、气候、地形、土壤,以及中药资源种类和分布的一般

踏查应配合分析各种有关地图资料进行。如植被分布图、土壤分布图、土甚至遥感图象资料等,这样可达到事半功倍的效果。

踏查,从调查全局来讲是认识整个调查地区,选择重点取样区域的过是认识取样区域,选择具体调查样地的过程。踏查应由有关专业人员与熟术人员共同进行,以便更好地了解情况,少走弯路。可见踏查是贯穿整个详查是在踏查研究的基础上,在具体调查区域和样地上完成中药资源终步骤,是中药资源调查的主要工作内容。

(二)路线调查

中药资源的调查是遵循一定的调查路线有规律地进行的,并在有代表样地,进行中药资源种类及贮量的详查。

中药资源的分布及其种群数量受区域生态环境的影响,特别是地形的中药资源分布的重要参考依据。因为不同的植物类型分布有不同的中药资同,因此,选择调查路线的基本原则是能够垂直穿插所有的地形和植被类地区应给予补查。

决定调查路线必须进行慎重的研究。因为中药资源种类分布的调查和上是在调查路线上,通过选择有代表性的样地进行取样获得的。调查路线代表性,直接影响调查结果的客观性和准确性。踏查、访问和各种参考图植被分布图等,是正确确定调查路线的必要保证。

路线的布局方法分为路线间隔法和区域控制法两种。

1.路线间隔法路线间隔法是中药资源路线调查的基本方法,是在调查

原则,布置若干条基本平行的调查路线。这种方法采用的基本条件是地形中药资源的分布规律比较明显,穿插部位有道路可行。调查路线之间的距被的复杂程度、中药资源分布的均匀程度以及调查精度的要求而决定(表

表2-1常用不同精度调查路线间距参考数据

2.区域控制法当调查地区地形复杂,植被类型多样,中药资源分布不查区域按一定间距布置调查路线时,可按地形划分区域,分别按选择调查线间隔法,进行路线调查。

在调查路线上,选择具有代表性的地段作为样地,并做一定数量的样类的各种数量要素,主要包括密度、盖度、高度、生物量、利用部位生物条件和土壤条件等,为定性和定量分析调查地区中药资源贮量及其变化规表性样地的选择既要反映中药资源分布的普遍意义,又要反映其集中分布在调查路线上,应按一定的距离,随时记录中药资源种类的分布情况植物标本和需要做实验分析的样品。

路线调查按在地图上布置好的调查路线进行,在野外首先找到路线的

植物组织培养实验基本步骤。。

植物组织培养实验基本步骤 一、母液的配置 1、MS大量元素母液的配制 将大量元素配制成10倍的母液,使用时再稀释10倍。按照配方表中用量依次分别称取扩大10倍的:NH4NO3 、KNO3 、KH2PO4 、 MgSO4·7H2O 、CaCl2·2H2O ,所有药品称取完毕后用蒸馏水逐个溶解,待全部溶解后,最后定容至500ml,转入500ml细口试剂瓶中,贴上标签,注明母液名称、放大倍数、配制日期、配制人姓名,置于4℃冰箱中保存备用。 2、MS微量元素母液的配制 将微量元素配制成100倍的母液,使用时再稀释100倍。按照配方表中用量分别依次称取:MnSO4· 4H2O 、ZnSO4·7H2O 、 H3BO3 、KI 、CuSO4·5H2O 、CoCl2·6H2O ,用蒸馏水逐个溶解,待全部溶解后,用容量瓶定容至500ml,转入500ml细口试剂瓶中,贴上标签,注明母液名称、放大倍数、配制日期、配制人姓名,置于4℃冰箱中保存备用。 3、MS铁盐母液配制 将铁盐配制成100倍的母液,使用时再稀释100倍。按照配方表中用量分别称取扩大100倍的:称

FeSO4·7H2O 和Na2·EDTA ,把FeSO4·7H2O和Na2·EDTA·2H2O分别置于200ml蒸馏水中,加热并不断搅拌使之溶解(磁力搅拌器,边加热,边搅拌)。保持加热,把FeSO4溶液慢慢倒入Na2·EDTA溶液中并不断搅拌,接近沸腾时停止加热,待溶液冷却后加蒸馏水到最终容积500ml,置于棕色细口瓶中,用力振荡1~2min,贴上标签,注明母液名称、放大倍数、配制日期、配制人姓名。在室温下避光保存一段时间令其充分反应后,再置于4℃冰箱中保存备用。 4、MS有机化合物母液的配制 将有机化合物配制成100倍的母液,使用时再稀释100倍。按照配方表中用量分别称取扩大100倍的:肌醇、维生素B1 、烟酸、甘氨酸、维生素B6 、蔗糖,用蒸馏水依次溶解并定容至500ml后,转入500ml 细口试剂瓶中,贴上标签,注明母液名称、配制日期、配制人姓名,置于4℃冰箱中保存备用。 二、植物激素的配置 常见激素:二氯苯氧乙酸(2,4-D)、萘乙酸(NAA)、吲哚乙酸(IAA)、吲哚-3-丁酸(IBA)、激动素(6-糠氨基嘌呤、 KT)、6-苄氨基嘌呤(6-BA)、赤霉素(GA3)、 1、生长素类: (1)、生长素类在组织培养中的主要作用是:诱导细胞的分裂和根的分化,诱导愈伤组织

(医疗药品)药用植物组织培养实验指导

甘肃农业大学农学院 药用植物组织培养实验指导 柳福智编 农学院中草药栽培与鉴定教研室 2007年8月 前言 药用植物组织培养实验是根据中草药栽培与鉴定专业的培养要求,为学生开设的一门实验课程。药用植物组织培养实验的任务是使学生加深对药用植物组织培养基本理论的理解,掌握药用植物组织培养实验的基本操作技能,学习药用植物组织培养实验的基本知识,养成严格、认真和实事求是的科学态度,提高观察、分析和解决问题的能力,为将来参加工作打下良好的基础。 编者 2007年8月 学生实验守则 1、实验前认真预习,领会实验原理,明确本次实验的目的和要求,了解实验步骤和注意事项。

2、实验时要严格按照规范操作进行,仔细观察实验现象,认真记录有关数据。 3、要认真写好实验报告,实验报告要清楚、简练、整洁。 4、学生进入实验室必须严格遵守实验室规则,服从带教老师的指导。 5、爱护实验室的仪器设备,不准将实验室的仪器设备私自带出室外。 6、严格遵守操作规程及实验时应注意的事项,在使用不熟悉其性能的仪器和药品之前,应查阅有关资料或请教指导教师,不要随意进行实验,以免损坏仪器,浪费试剂,使实验失败,更重要的是预防发生意外事故。 7、实验过程中应注意防火灾、防爆炸、防腐蚀、防污染工作,牢固树立“安全第一”意识。 8、实验结束后,一切仪器试剂应放回原处,玻璃仪器要清洗干净,一些有毒、有腐蚀性的废液应倒入废液缸内。 9、实验台面要擦试干净,由值日生负责安全卫生工作,包括清理实验室,检查水、电的开关,清除垃圾和污物,关好门窗后方可离开实验室。 药用植物组织培养实验报告一般包括以下内容和要求: (1)实验名称、实验日期。 (2)实验目的写明通过本实验要达到的训练目的。

药用植物组织培养的基本知识

项目十五:药用植物组织培养的基本知识 姓名:学号:班级: 引言:中国野生药用植物种质资源非常丰富,据统计在5000种以上,但传统的中草药获取方法是以采集和消耗大量的野生植物资源为代价的,当采集和消耗量超过自然资源的再生能力时,必然会导致物种濒危甚至灭绝。近年来,药用植物组织培养技术渗入到了古老的中药研究中,它丰富了传统药用植物研究的内容,借助组织培养,保存和繁殖濒临灭绝的药材资源,保持自然界生物的多样性。(脱毒地黄,使其稳定的增产幅度在90%左右。人参愈伤组织发根培养生产人参皂苷。细胞培养培养含有特殊抗癌活性物质的药用植物红豆杉,提高了天然植株药物活性成分含量。) 一)、药用植物组织培养的定义、类型和原理 1.含义:药用植物组织培养(plant tissue culture)即药用植物的无菌培养技术或药用植物的克隆技术,是根据植物细胞具有全能性(totipotency)的理论,利用药用植物体的离体器官、组织或细胞,(如根、茎、叶、花、果实、种子、胚、胚珠、子房、花药、花粉以及贮藏器官的薄壁组织、维管束组织等),在无菌和适宜的人工培养基及光照、温度等条件下,能诱导出愈伤组织、不定芽、不定根,最后分化、生长形成完整植株的过程。简言之,即将植物体的一部分,从母体分离出来,在无菌的适宜条件下培养而使之发育成与母体植株相同的新的植物体的技术。由于培养的是脱离植物母体的培养物,在试管内培养,也叫离体培养或试管培养。 2. 原理:细胞全能性(指细胞携带着一套完整的基因组并具有产生完整植株的潜在能力。植物细胞全能性为药用植物组织培养的理论基础) 3. 药用植物组织培养的类型:(根据培养过程,先是初代培养(从植物体上分离外植体进行的第一次培养。),再是继代培养(将初代培养的培养物(愈伤组织、芽等)重新切割转移到新的培养基中继续扩大培养的过程。)

植物组织培养实验报告

植物组织培养实验报告 Modified by JACK on the afternoon of December 26, 2020

院(系、部) 化学与生物工程学院专业生物技术(师范)年级13级学号 姓名组别第二组课程名称植物细胞工程学实验日期 指导老师实验名称植物组织培养综合实验 一、实验目的 1.熟悉MS培养基的组成,掌握贮备液的配制方法 2.学习、掌握植物组织固体培养基的配制和灭菌方法; 3.掌握超净工作台上的接种方法与注意事项,了解接种室的灭菌方法; 4.了解组织培养的基本程序; 5.掌握接种的方法和材料的培养过程; 6.掌握无菌操作技术,包括外植体除菌和接种技术; 7.观察外植体的生长状况、染菌状况,剔除染菌外植体; 8.了解MS培养基和1/2MS培养基的区别 二、实验原理 1.植物细胞的全能性 一切植物都由细胞构成,细胞是构成植物体的基本结构与功能单位。 植物细胞含有全套遗传信息,具有形成完整植物的潜能。 2.植物细胞表现出全能性的条件 1.离体状态; 2.有一定的营养物质,激素和其他外界条件(无菌、温度、pH); 3.选择性能优良、细胞全能性表达充分的基因型 3.无菌条件

把植物的组织、器官等,使其在人工控制的无菌条件下,使植物在人工培养基上繁殖。用于进行组织培养的组织、器官和细胞称为外植体。在组培中外植体都死带菌的,在接种前必须进行表面消毒,这时取得培养成功的最基本和重要的前体。组织培养的主要过程都是在无菌条件下进行的,所以所有的器材、植物体、接种室都应是无菌的。 4.脱分化与愈伤组织 已有特定结构与功能的植物组织,在一定条件下,其细胞被诱导改变原来的发育途径,逐步逆转其原有的分化形态,转变为具有分生能力的胚细胞的过程称为脱分化。脱分化所用的化学物质与MS培养基的区别是需要激素诱导。所以脱分化培养需在MS培养基上添加激素进行愈伤组织诱导。 5.培养基 植物组织培养常用的培养基为MS培养基。常用的凝固剂是琼脂,它的主要作用是使液体培养基凝固,琼脂本身并不提供任何营养,它只是一种高分予的碳水物从海藻中提取出来,仅溶解于热水,成为溶胶,冷却后(40℃以下)即凝固为固体状凝胶。琼脂的用量一般在4—10克/升之间。琼脂的凝固能力除与原料、厂家的加工方式等有关外,还与高压灭菌时的温度、时间、pH值等因素有关,长时间的高温会使凝固能力下降,过酸过碱加之高温会使琼脂发生水解而丧失凝固能力,存放时间过久,琼脂变褐,也会逐失去凝固能力。MS培养基属于富盐平衡培养基,特点是:无机盐浓度较高,元素间的比例适当,离子平衡性好,具有较强的缓冲性,因而在培养的过程中可维持较好的稳定性;营养丰富,在一般培养中无须额外加

植物组织培养实验报告

如对你有帮助,请购买下载打赏,谢谢! 院(系、部) 化学与生物工程学院专业生物技术(师范)年级13级学号姓名组别第二组课程名称植物细胞工程学实验日期2016.3-6 指导老师实验名称植物组织培养综合实验 一、实验目的 1.熟悉MS培养基的组成,掌握贮备液的配制方法 2.学习、掌握植物组织固体培养基的配制和灭菌方法; 3.掌握超净工作台上的接种方法与注意事项,了解接种室的灭菌方法; 4.了解组织培养的基本程序; 5.掌握接种的方法和材料的培养过程; 6.掌握无菌操作技术,包括外植体除菌和接种技术; 7.观察外植体的生长状况、染菌状况,剔除染菌外植体; 8.了解MS培养基和1/2MS培养基的区别 二、实验原理 1.植物细胞的全能性 一切植物都由细胞构成,细胞是构成植物体的基本结构与功能单位。植物细胞含有全套遗传信息,具有形成完整植物的潜能。 2.植物细胞表现出全能性的条件 1.离体状态; 2.有一定的营养物质,激素和其他外界条件(无菌、温度、pH); 3.选择性能优良、细胞全能性表达充分的基因型 3.无菌条件 把植物的组织、器官等,使其在人工控制的无菌条件下,使植物在人工培养基上繁殖。用于进行组织培养的组织、器官和细胞称为外植体。在组培中外植体都死带菌的,在接种前必须进行表面消毒,这时取得培养成功的最基本和重要的前体。组织培养的主要过程都是在无菌条件下进行的,所以所有的器材、植物体、接种室都应是无菌的。 4.脱分化与愈伤组织 已有特定结构与功能的植物组织,在一定条件下,其细胞被诱导改变原来的发育途径,逐步逆转其原有的分化形态,转变为具有分生能力的胚细胞的过程称为脱分化。脱分化所用的化学物质与MS培养基的区别是需要激素诱导。所以脱分化培养需在MS培养基上添加激素进行愈伤组织诱导。 5.培养基 植物组织培养常用的培养基为MS培养基。常用的凝固剂是琼脂,它的主要作用是使液体培养基凝固,琼脂本身并不提供任何营养,它只是一种高分予的碳水物从海藻中提取出来,仅溶解于热水,成为溶胶,冷却后(40℃以下)即凝固为固体状凝胶。琼脂的用量一般在4—10克/升之间。琼脂的凝固能力除与原料、厂家的加工方式等有关外,还与高压灭菌时的温度、时间、pH值等因素有关,长时间的高温会使凝固能力下降,过酸过碱加之高温会使琼脂发生水解而丧失凝固能力,存放时间过久,琼脂变褐,也会逐失去凝固能力。MS培养基属于富盐平衡培养基,特点是:无机盐浓度较高,元素间的比例适当,离子平衡性好,具有较强的缓冲性,因而在培养的过程中可维持较好的稳定性;营养丰富,在一般培养中无须额外加入复杂的有机成分;微量元素种类全,浓度高。这类培养基是目前使用最广泛的培养基。 6.生长调节物质 包括天然植物激素额人工激素类似物。植物激素是一类植物自身合成、同时对其生长发育具有重要调节作用的有机化合物。生长调节物质对于离题培养中的细胞分裂分

国内外植物组织培养技术的差距

国内外植物组织培养技术的差距 姓名:*** 学号:********* 指导教师:*** 专业班级:生物工程2009级1班 完成日期:2012-06-05

摘要 植物组织培养技术是农业生物技术中最早实现产业化并取得显著经济效益和社会效益的领域,在理论研究和生产实践中具有广泛的应用价值。通过对国内外植物组培的发展概况以及技术差距的分析,指出了我国植物组织培养技术的发展现状、目前存在的主要问题和应采取的措施,并对植物组织培养技术的发展作了展望。 关键词:组织培养概况差距展望 Abstract The plant tissue culture technology is agricultural biotechnology as the first realized industrialization and get a remarkable economic and social benefits of the field, in the theoretical research and production practice has wide application value. Through the domestic and international plant tissue and the development situation of the technology gap analysis, and pointed out the plant tissue culture technology's development present situation, the existing problems and the measures should be taken, and the development of plant tissue culture technology are discussed. Key words:Tissue culture situation gap looking

植物组织培养实验室(组培室)规划设计

植物组织培养实验室 (组培室规划设计 2009年 05月 31日星期日 10:18一、实验室要求 理想的组织培养实验室应该建立在安静、清洁、远离污染源的地方, 最好在常年主风向的上风方向, 尽量减少污染。规模化生产的组织培养实验室最好建在交通方便的地方, 便于培养产品的运送。 实验室的建设均需考虑两个方面的问题:一是所从事的实验的性质, 即是生产性的还是研究性的, 是基本层次的还是较高层次的; 二是实验室的规模, 规模主要取决于经费和实验性质。 无论实验室的性质和规模如何,实验室设置的基本原则是:科学、高效、经济和实用。一个组织培养实验室必须满足 3个基本的需要:实验准备 (培养基制备、器皿洗涤、培养基和培养器皿灭菌、无菌操作和控制培养。此外,还可根据从事的实验要求来考虑辅助实验室及其各种附加设施,使实验室更加完善。 在进行植物组织培养工作之前,首先应对工作中需要哪些最基本的设备条件有个全面的了解, 以便因地制宜地利用现有房屋, 或新建、改建实验室。实验室的大小取决于工作的目的和规模。以工厂化生产为目的,实验室规模太小,则会限制生产,影响效率。在设计组织培养实验室时, 应按组织培养程序来没计, 避免某些环节倒排, 引起日后工作混乱。植物组织培养是在严格无菌的条件下进行的。要做到无菌的条件, 需要一定的设备、器材和用具, 同时还需要人工控制温度、光照、湿度等培养条件。 二、实验室组成 (一基本实验室 基本实验室包括准备室、洗涤灭菌室、无菌操作室、培养室、缓冲间,是组织培养实验所必须具备的基本条件。如进行工厂化生产,年产 4万 -20万, 需 3-4间实验用房,总面积 60平方米。

植物组织培养实验设计及.doc

植物组织培养实验设计及 常用设备的使用与维护 一.实验目的 1.熟悉植物组织培养实验室的组成及设备 2.掌握植物组织培养实验室的设计要求 3.熟悉植物组织培养所需的仪器设备 二.实验原理 植物组织培养是通过无菌操作,在人工控制条件下进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其他产品的技术。要达到无菌操作和无菌培养,就需要人为创造无菌的环境,使用无菌的器皿及器械,同时还需要人工控制的温度,光照,湿度等培养条件。无菌环境和培养条件的创造需要一定的设施及设备。 三.实验步骤 1.实验室的设计要求 功能齐全、布局合理、环境清洁、易于灭菌 2.实验室的组成及功能 实验室的组成: 洗涤室、药品室、称量室、培养基配制室、灭菌室、接种室、培养室、观察记录室、储藏室、移苗室 实验室的功能: 洗涤室用于玻璃器皿、实验用具的清洗、干燥、培养材料清洗、预处理也可在本室完成。室内应建造大型水槽和一个或几个浸泡

池,水槽最好上一内衬白瓷片的水泥槽,为防止碰坏玻璃器皿,下面可铺一活动的橡胶板。备有晾瓶架,用于放置刷净的培养器皿,配备有一定数量的周转盘或小推车,用于运输培养器皿。地面要注意防滑,排水通畅,墙壁要有耐湿、防潮功能。 药品室用于存放各种药品试剂。室内要求干燥、通风,避免光照,配有药品柜、冰箱等设备。化学试剂物品分类存放于柜中,有毒物质如升汞需要专人密封保存。原药可室温下存放,配好的母液,宜置于4℃冰箱中保存。药品室紧邻称量室较好,便于工作。 称量室进行化学药品的称量。要求干燥、密闭,无直射光照,避免腐蚀性药品和水气直接接触。有固定的水磨石平台,安放普通天平、精密天平和分析天平,要有电源插座,最好设计在阴面的房间,这样对怕光药品的保存和称量有利,称量室紧邻培养基配制室较好,以方便配制母液和培养基。房间较少时,可以与药品室合二为一。 培养基配制室主要进行母液的配制,培养基的配制、分装、包扎和灭菌前的暂时存放。在条件允许下,面积宜大不宜小,室内应有大型实验台。配有电炉、锅子、量具、培养基分装器具、吸管、培养容器、水浴锅和酸度计等。如规模较小,可与洗涤室、灭菌室合并在一起。

药用植物组织培养是在无菌条件下

药用植物组织培养是在无菌条件下,在人工培养基上培养药用植物的离体器官、组织或细胞的技术。可用于药用植物细胞的生长和分化、器官形成和植株再生;研究药用植物培养组织和细胞合成有药用价值的次生代谢物质的能力和生物转化能力,以及影响它们的各种因素,以达到利用培养细胞进行工业化生产药物的目的。 据不完全统计,经组织培养成功的药用植物有百余种。从培养物中产生的药用成分已有200余种,天然药物所含的各种主要化合物类型都可从各种药用植物的培养物中得到。我国从60年代初开始进行药用植物的组织培养,现已有数十种植物培养成功。组织培养的应用如下: (1) 药用植物品种改良和快速繁殖:应用离体器官培养、单倍体培养和原生质体融合技术,可以得到无性繁殖种苗、体细胞杂种植物、单倍体植株和无病毒植株,对保存优良种质,培育新品种和进行珍贵、稀有药用植物的快速繁殖有重要意义。我国已获得十余种药用植物的再生植株,如枸杞、当归、地黄、罗汉果和娃儿藤植株等。 (2)天然药物的工业化生产:药用的天然产物多数为植物的次生代谢产物。日本进行了人参培养细胞工业化生产,其提取物与人参提取物几乎相同。油麻藤悬浮培养生产的L-多巴,产率较高,较化学合成的光学纯度高,也不受微生物法只能将结构相近的前体转变为L-多巴的局限性。目前的研究着重在以下几方面:①培养技术的改进,如从实验室培养过渡到大量培养或连续培养,不断提高细胞的生长速率以适应工业生产的需要; ②次生代谢调节的研究,如改变培养条件,用生物化学或遗传学的手段筛选和保持高产细胞株系,调节次生代谢物生物合成的类型和速率,提高生产效率; ③降低生产成本的研究,应用细胞工程、发酵工程等生物技术进行综合研究以降低生产费用,提高经济效益。 (3)用植物细胞培养系统进行生物转化:培养的植物细胞能够进行如下反应:环氧化、氧化、酯化、糖基化、异构化、甲基化、羟基化、脱甲基、双键还原、引入羰基和醛基。 植物细胞进行生物转化的利用有两个方面:①使用培养植物中不存在的物质作底物,以得到具有新的结构和生物学特性的化合物。②将某一植物原有的、含量高但药用价值不大的化合物转变为药用价值高的化合物,如烟草的培养物能将蒂巴因脱甲基而形成吗啡。用植物细胞进行生物转化,尤其适用于微生物法和化学方法难于转化的化合物。 (4)用植物细胞培养进行生物合成的研究:培养的植物细胞在代谢速率和发育阶段上都比较均一,且不受气候、土壤的限制,是进行生物合成研究的适宜系统。植物细胞培养还给无细胞系统和酶学研究提供良好条件。如从长春花吲哚生物碱生物合成的研究,基本弄清了生物合成的主要步骤。 (5)从细胞培养中发现新物质:组织培养物能合成和积累某些原植物中没有发现的物质,可望成为获得新的生物活性物质的一个来源。如芸香组织培养物中的芸香素(rutacultin)和穿心莲组织培养产生的内酯A、B、C(paniculides A、B、C)都是原植物中不含的化合物;酸藤果属植物Embelica officinalis的培养物具有抗微生物作用,细胞中生成的棓酸乙酯是其有效成分;长春花愈伤组织不仅能治愈鸡的球虫病,而且是耐各种合成药的艾美虫属致病原虫的强力预防剂。 目前细胞培养在生产某些特殊药物方面已接近于工业化的水平,但在探求获得其代谢产物量等于或高于相应植物的细胞培养,高产细胞系的筛选及其保持,以及成本、工艺等方面

植物组织培养实验参考答案9

植物组织培养实验复习题 一、名词解释 1、大量元素:指含量占生物总重量万分之一以上的元素,包括C、H、O、N、P、S、K、C、Mg等。 2、微量元素:含量占生物总重量万分之一以下的元素。 3、植物生长调节剂:人工合成的对植物的生长发育有调节作用的化学物质。 4、外植体:把由活植物体上切取下来以进行培养的那部分组织或器官 5、细胞全能性:植物体的每个细胞都含有该植物全部的遗传信息。 6、基础培养基:根据植物营养原理和植物组织离体培养的要求而人工配置的营养基质。 7、愈伤组织:人工培养基上由外植体组织的增生细胞产生的一团不定形的疏松排列的薄壁细胞。 8、褐变:植物组织中多酚氧化酶被激活,使酚类物被氧化成醌类物,可抑制其他酶活性,毒害外植体。 9、茎尖脱毒:茎尖分生区的病毒传播速度很慢,利用茎尖组培获得无病毒苗,来达到脱毒的目的。 10、不定芽:凡从叶、根或芽节间或是离体培养的愈伤组织上等通常不形成芽的部位生出的芽。 11、污染率:污染数除以接种数,再乘以100%。 12、诱导率:愈伤数除以未污染数,再乘以100%。 13、成活率:成活数除以未污染数,再乘以100%。 14、接种:将表面消毒的外植体转接到无菌的培养基上的过程。 15、消毒:消灭材料上的病菌(不损伤植物材料)。 16、灭菌:利用物理或化学的方法,达到组织培养所学的无菌环境。 17、母液:欲配培养液的浓缩液。 18、无病毒苗:指不含该种植物的主要危害病毒,即经检测主要危害病毒在植物内的存在表现为阴性反应的苗木。 19、植物组织培养:在无菌条件下,将离体的植物器官、组织、细胞以及原生质体,培养在无菌培养基上和人工控制的环境中,使其生长、分化、增殖,甚至长出新的植株的过程和技术。 20快速繁殖:采取培养基配制,材料灭菌,无菌培养,幼苗转移到苗床,成苗转至大田栽种五步走的繁殖培养方式 21、继代培养:继代培养是指愈伤组织在培养基上生长一段时间后,营养物枯竭,水分散失,并已经积累了一些代谢产物,此时需要将这些组织转移到新的培养基上的培养方式。 22、生根培养:将长到一定长度的微枝(>10mm)转移到生根培养基上培养。 23、玻璃化现象:试管苗的茎叶变成透明水渍状,生长畸形,增殖系数明显下降,难以诱导生根,即使诱导生根,其根系质量极差,移栽成活率极低。 24、暗培养: 25、液体培养:将所需培养物的悬浮液在液体培养基中培养的方法。 26、脱分化:一个成熟细胞回复到分生状态或胚性细胞状态的现象。 27、分化:由于细胞的分工而导致的细胞结构和功能的改变或发育方式改变的过程。 28、热处理脱毒:利用高温下使植物组织中的病毒部分钝化或完全失去活性的方法。 1 / 6 29、微尖嫁接技术:把极小(<0.2mm)的茎尖作为接穗嫁接到实生砧木上(无菌种子培养获无菌

药用植物组织培养的研究进展

药用植物组织培养的研究进展 李黎 陈菲 宫伟 (黑龙江省科学院自然资源研究所,黑龙江 哈尔滨 150040) [摘 要] 现阶段,药用植物的发展存在许多问题,而组织培养作为一个有效的技术手段可以解决部分问题并推动药用植物的发展,本文就药用植物的组织培养发展进行了探讨。 [关键词] 药用植物 组织培养 Study On The Tissue Culture Development Of Medical H erb Li Li Chen Fei G ong Wei (Natural Resource Research Institute Of Science Academy In Heilongjiang Province ) A bstract :There are many problems in the development of medical herb in present stage and tissue culture can s olve s ome prob 2lems to prom ote the development.This paper discusses the tissue culture development of medical herb.K ey w ords :medical herb ;tissue culture 随着医疗和保健事业的发展,世界上出现了回归自然、崇尚利用天然药物的潮流,植物药被越来越多地利用于防病、治病中。由于长期过度采伐,资源日渐萎缩。人工栽培又面临品质退化、种子带病与农药残留等问题,而且药用植物在不同生态环境中生长,其活性物质的组成与含量也有差异。药用植物种苗的快速繁殖通过植物组织或器官的离体培养和形态发生,可实现种苗的大量快速繁殖,这对于因病毒病害严重影响产量和质量的药用植物、靠有性繁殖提供种子而种子发育不完善或种子成本高的药用植物、靠无性繁殖提供“种子”而无性繁殖系数低且种子需求量大的药用植物和濒危或濒危药用植物的引种驯化以保护植物资源等都具有重要的科研和生产意义。本文仅就药用植物的组织培养发展进行探讨。 1 概述 我国传统药材中88%为植物药。而植物细胞具有全能性,即单个细胞在适宜的环境下可分化发育成植株,并具有整株植物所具有的合成化合物的能力。这为通过植物组织和细胞培养来获得其药用活性成分提供了新的途径。 随着不断的探讨研究,药用植物组织培养方面已取得了巨大的成绩:如培养方法已从固体、液体、悬浮培养,深层大罐发酵发展到液体连续培养;培养材料也从药用植物的根、茎、叶、胚、果实、种子等组织器官,这些器官诱导出的愈伤组织或冠瘿组织,一直发展到目前的细胞。目前这项技术已发展成一门精细的实验技术。在选材消毒、接种培养、诱导筛选、继代保存、分离鉴定等方面建立了一整套完整的技术方法。 2 植物组织培养生产药物的优点 211 四季均可生产,不受地区、季节及有害生物的影响。占 地面积少,便于工厂化生产,可对细胞生长自动控制和代谢过程合理调节。 212 便于筛选高产细胞株;利于生物转化,寻找新的有效药 物成分。植物细胞内存在羟基化酶、氧化酶、还原酶、甲基化酶、酯化酶、糖基转移酶、糖苷酶等多种酶,植物培养物作为一种生物反应器转化外源化合物,能够产生原植物所没有的,甚至是至今自然界尚未发现的化合物。 213 个体差异小,生产周期短,设备简单,能节省人力、物力 等。利用组织培养过程中出现的芽变或人工诱变,或进行脱毒,培育新品种,提高药用植物品质。保存种质资源。 3 药用植物的组织培养主要着重于四个方面:植株的培养、 成分的比较、植物生理和工业化生产的探索 311 植株的培养 植株的培养方面,首要的培养出新的植株,而能否培养出新的植株关键是培养条件。据不完全统计,目前已有400多种植物建立了组织和细胞培养体系,并从中分离出600多种代谢产物,其中代表性的研究成果如:中国科学院植物研究所的紫草细胞大规模培养、代中理工大学的红豆杉细胞大规模培养、上海中医药大学的黄芪毛状根大规模培养等。 312 成分的测定及比较 药用植物的组织培养价值如何,主要取决于其有效成分与自然植株的差异,有研究表明,以干重微基础的粗人参皂苷,在愈伤组织中的含量(2111%)显著高于天然根(411%)。紫草中的有效成分萘醌类化合物———紫宁草及其衍生物在我国被用来治疗烧伤、皮肤病和痔疮,并具有抗肿瘤活性,对获得的高产细胞系进行悬浮培养和发酵培养后发现:其细胞生长的最高月产率达22克.干重/升,色素含量达培养物干重的17.5%。应用10升搅拌式反应器发酵培养,月产率达 9.47克.干重/升,色素含量达干重的14.26%,而通常在完 整植株中仅含1.5%左右。在白芷的悬浮培养系统的研究中发现,在培养基中加20克/升吸附剂Amberlite XAD -7可提高其主要成分imperatorin 产量140倍。 (下转第8页)

植物组织培养实验报告

植物组织培养实验报告 一实验目的 让植物组织经过脱分化作用,形成愈伤组织,经过再分化作用,愈伤组织又能重新分化为有结构的组织和器官,最终形成完整的植株。 二实验原理 植物组织培养是把植物的器官,组织以至单个细胞,应用无菌操作使其在人工条件下,能够继续生长,甚至分化发育成一完整植株的过程。植物的组织在培养条件下,原来已经分化停止生长的细胞,又能重新分裂,形成没有组织结构的细胞团,即愈伤组织。这一过程称为“脱分化作用”,已经“脱分化”的愈伤组织,在一定条件下,又能重新分化形成输导系统以及根和芽等组织和器官,这一过程称“再分化作用”。植物激素在此过程中起着重要的作用,吲哚乙酸(IAA )和 6 –苄基氨基腺嘌呤(6 – BA )的比例,决定了根和芽的分化。 三实验器材 (一)试剂 乙醇、IAA 或 2 ,4 – D 、HgCl 2 (或次氯酸钠)、6- 苄基氨基腺嘌呤(6-BA ) MS 培养基 (二)仪器设备 培养室,高压灭菌锅,水浴锅,解剖刀,三角烧瓶(100mL ),烧杯,量筒,培养皿,超净工作台,分析天平,长镊子,剪刀,橡皮筋等 三实验步骤 1. 配制培养基 (1 )愈伤组织诱导培养基:MS 培养基(蔗糖含量为10 g/L ,2,4 – D 含量为 2 mg/L ,琼脂10 g/L )。 (2 )试验培养基:在MS 培养基中按表33 – 1 加入IAA 和6–BA 。 吲哚乙酸先用少量0.1 mol/L NaOH 溶解,6- 苄基氨基腺嘌呤先用少量0.1 mol/L HCl 溶解,然后用蒸馏水稀释,再加入培养基中。 2. 培养基灭菌 将配好的培养基加入琼脂加热溶解,调至pH 5.8 ,趁热分装于100 mL 三角烧瓶中,每瓶约20 mL 。待培养基冷却凝固后,用两层称量纸包扎瓶口,并用橡皮筋扎牢,然后在高压灭菌锅中121 ℃( 1 kg/cm 2 )下灭菌20 min 。取出三角烧瓶放在台子上,

植物组织培养技术

第2章植物组织培养技术 第二节植物组织培养概述 一、授课章节 第二节植物组织培养概述。 二、学时安排 2学时。 三、教学目标 1.掌握植物组织培养的含义。 2.了解植物组织培养的类型划分。 3.理解植物组织培养的应用原理。 4.掌握植物组织培养的特点和应用。 四、教学重点、难点分析 重点: 植物组织培养的含义、特点和应用。 难点: 植物组织培养的应用原理。 五、教具 电化教学设备,植物组织培养试管苗。 六、教学方法 讲授法,多媒体课件。 七、教学过程 Ⅰ.导入 前面我们学习了有关植物育种的一些知识,今天,请看我给同学们看一样东西(教师拿出试管苗),问同学们这是什么呢?这就是我们要学的植物组织培养。 II.新课

一、植物组织培养的含义 植物组织培养是指在无菌条件下,将离体的植物器官、组织、细胞以及原生质体培养在人工培养基上,给予适宜的培养条件,使其长成完整植株的过程。由于培养物脱离母株在试管内培养,故又称离体培养、试管培养。 二、植物组织培养的类型 植物组织培养由于分类依据不同可划分为不同的类型。 三、植物组织培养的应用原理 (一)植物细胞全能性 植物细胞全能性,是指植物体上每个具有完整细胞核的植物细胞,都具有该植物体的全部遗传信息和产生完整植株的能力。植物的体细胞一旦脱离所在器官或组织的束缚成为离体状态时,在一定的营养、激素和外界条件作用下,就可能表现出全能性,而生长发育成为完整的植株。

(二)细胞的分化和形态建成 (三)植物的再生功能 四、植物组织培养的特点 (一)研究材料来源单一,无性系遗传信息相同 (二)试验经济,管理方便,工作效率高 (三)培养条件人为控制,可周年连续进行试验或生产 (四)生长快,周期短,繁殖率高 五、植物组织培养的应用 (一)优良品种的快速繁殖 (二)脱毒及脱毒苗的再繁育 (三)植物新品种的培育 (四)种质资源的保存和交换 (五)有用次生代谢产物的生产 III.作业 1.简述植物组织培养的概念和培养类型。 2.植物组织培养技术有哪些特点? 3.植物组织培养在生产上有哪些方面的应用? 4.通过学习,你对植物组织培养技术是怎样理解的? 第二节植物组织培养厂房的设计与构建一、授课章节 第二节植物组织培养厂房的设计与构建。 二、学时安排 2学时。

第五章 植物组织培养技术实验方案

第五章植物组织培养技术 一、植物组织培养中的基本概念 (1) 植物组织培养技术: 在无菌培养的条件下,将离体的植物器官(根,茎,叶,花,果实等)、组织(形成层,花药组织等)、细胞(体细胞,生殖细胞等)以及原生质体等培养在人工配制的培养基上,并给予适当的培养条件,使其长成完整植株的过程。 (2) 理论依据: 植物细胞的全能性,即指植物机体的每个细胞都含有该物种全套的基因组,具有发育成完整个体的潜力。 (3) 外植体: 从活体植株上切下的,用于组织培养的细胞、组织和器官。一般包括茎尖、根、茎、叶、花、种子等器官以及他们形成的体细胞胚等材料。 (4) 分化: 在个体发育过程中,由一种相同的细胞类型经细胞分裂后逐渐在形态、结构和功能上形成稳定性差异,产生不同的细胞类群的过程称为细胞分化。 (5) 脱分化: 已经高度分化的植物器官、组织或细胞,在切割损伤和培养物内外因素的共同作用下,逐渐丧失原来的分化结构和功能,最后形成无组织的细胞团或愈伤组织的过程。 (6) 愈伤组织: 在人工培养基上由外植体脱分化形成的一团无序生长的薄壁细胞。(具有细胞分裂能力)。 (7) 再分化: 已经脱分化的细胞在一定条件下,又可经过愈伤组织或胚状体,再分化出根和芽,形成完整植株,这一过程叫作再分化。 (8) 不定芽: 在高等植物正常的个体发育中,芽一般是只从茎尖或叶腋等的一定位置生出。所以这种象顶芽、腋芽、副芽等均在一定部位生出的芽,称为定芽。与此相反,凡从叶、根、或茎节间等通常不形成芽的部位生出的芽,则统称为不定芽。 (9) 胚状体: 在离体植物细胞、组织或器官培养过程中,由一个或一些体细胞,经过胚胎发生和发育过程,形成的与合子胚相类似的结构。 二、植物组织培养过程(菊花为例) 1、培养基的配制: 方法:培养基干粉配制法 称取培养基干粉42g加水加热煮沸溶解后定溶至1L,按照需要的浓度分别加入激素。 (其中生根用的植物激素NAA为0.2mg/1000ml) 用1mol/L NaOH和1mol/L HCl调节pH至5.8。将配好的培养基迅速分装至150ml组培瓶中,拧上盖子,放入灭菌锅121℃,灭菌20min。 2、菊花接种与培养:

药用植物的组织培养[文献综述]

毕业论文文献综述 生物工程 药用植物的组织培养 一、前言部分 1.1药用植物及其现状 药用植物资源指在一定社会和经济条件下,被人们认识和利用的植物资源中对人体疾患具有医疗或保继作用,并对家养动物病害具有治疗作用,以及具有杀虫、杀菌、除草等功效的各类植物的总称。【1】中药是中华文明的瑰宝,为人类健康做出了巨大贡献,而药用植物资源是中药资源最重要的组成部分。随着我国“中药现代化科技产业行动,‘计划”的实施和中药产业的快速发展,对药用植物资源的需求量也越来越大。但是,由于缺乏对绝大多数药用植物资源更新规律的研究,加上药材采收的不合理,抢采、抢收、掠夺式利用现象十分严重。【2】生态经济学理论是药用植物资源可持续管理的理论基础,药用植物资源可持续管理是一种对药用植物资源的经营管理过程,在这个过程中既要实现经济的可持续增长,又要使药用植物资源的开发利用不能超过其最大生态生产量,既能使药用植物资源满足当代人最大持久的利益,又要保持其潜力以满足后代的需求”。【3】建立药用植物资源的科学采收制度和可持续利用理论与技术体系相当重要。药用植物资源的再生能力,从狭义上讲,是指药用植物资源具有不断繁殖后代的能力;从广义上讲,不仅指其繁殖后代的能力,而且还包括其自身组织和器官的再生能力。【4】植物快繁是利用体外培养方式快速繁殖植物的技术,主要应用于用其他方式不能繁殖,或繁殖效率低的植物的繁殖。为了保持某一品种的基因型稳定,避免在有性繁殖过程中发生变异,也采用植物快繁技术。快繁中利用的植物材料主要是茎尖、茎切段、叶片、胚等。快繁技术容易掌握,繁殖率高。【5】 1.2组织培养技术 植物组织培养是以植物生理学为基础发展起来的一门新生的生物技术学科。植物组织培养包括了所有类型的无菌培养技术,主要有:成熟及未成熟植物胚胎的离体培养;离体器官包括根尖、茎尖、叶原基、花器官原基或未成熟花器官各部分以及未成熟果实的培

植物组织培养技术实验

《植物组织培养技术》课程 实验实训教学大纲 (2004级食用菌与蔬菜专业适用) 生物工程与农业经济系 濮阳职业技术学院 2005年9月

说明 本大纲是根据2004级三年制食用菌与蔬菜专业教学计划而制订的。一、课程性质和任务 植物组织培养技术实验实训课程是食用菌与蔬菜专业专业的主要专业基础课程之一。 植物组织培养是在无菌条件下,利用人工培养基对植物的器官、组织、细胞和原生质体进行培养的技术,是现代生物技术的核心技术之一。在植物的优良品种快速繁殖,脱毒苗木生产、缩短育种进程、种质资源保存等方面具有其它技术无法比拟的优势。 植物组培实验实训课程的教学任务在于使学生掌握组织培养的基本操 作技能和技巧,为进一步开展组培实训及从事组织培养工作奠定基础。 为适应高职高专教育改革的要求、突出高职高专教育的特点,适应本地农村产业结构调整的需要,本大纲以2003年的教学大纲为蓝本,在教学内容上进行了调整。 2、本课程教学的基本内容: 本课程是一门理论性、技术性和实践性强的的课程,通过本课程的学习,要求学生掌握植物组织培养基础知识、基本理论和基本技术。重点是植物的快速繁殖技术和组培苗工厂化生产技术。并紧紧围绕培养高等应用型技术人才,以强化技术应用能力培养为主线,着眼于培养学生应职岗位综合能力和创新精神,提高学生实践动手能力、科学实验能力、技术推广与市场开拓能力和组培苗工厂化生产经营与组织管理能力。 3、内容安排与学时分配 本大纲将教学内容分为实验教学、实训教学两个模块。实验教学结合理论讲授,在第三学期开设,共22学时。实训教学在第三、四学期开设,每学期为期一周。具体教学内容和学时分配见下表:

植物组织培养在中药领域的应用研究

植物组织培养在药用领域的应用研究 李淼 (中山大学生命科学院09级生物科学与技术广州510275) 摘要:现阶段,药用植物的研究发展快速,组织培养作为一个有效的技术手段可以解决草药稀缺、次级代谢产物过少的问题,能够显著推动药用植物的发展。本文就近几年来在药用领域的应用进展进行了探讨,特别就抗癌药物的进展做了简单介绍。 关键词:药用植物;组织培养;次级代谢产物 药用植物组织培养是现代生物技术在药用植物学领域中研究与应用的一个重要组成部分,是指在无菌和人为控制的营养及环境条件下对药用植物器官、组织或细胞进行培养,用来生产药用活性成分或进行药用植物无性快速繁殖的技术。药用植物所以能够发挥防治疾病的作用,是因为其体内含有一些药理活性成分,包括酚类化合物、萜类化合物、含氮化合物三大类[1]。植物组织培养技术具有生产周期端、不受地域限制、便于工业化生产等优点。在拯救濒危药用植物和引种驯化等方面具有重要的科研和生产意义。 1 药用植物组培概述 植物组织培养生产药物的优点很多,主要在于生产具有自主性,便于寻找新的有效药物成分,生产周期短,设备简单,能够保存种质资源。药用植物的组织培养主要着重于四个方面:植株的培养、成分的比较、植物生理和工业化生产的探索。 1.1 植株的培养 植株培养的首要任务是成功培养出新的植株,而决定能否成功的关键是培养条件。近十年来,已有约200多种药用植物通过试管育苗获得了成功[2]。其中代表性的研究成果如:中国科学院植物研究所的紫草细胞大规模培养、代中理工大学的红豆杉细胞大规模培养、上海中医药大学的黄芪毛状根大规模培养等。 1.2 成分的比较 药用植物的组织培养价值如何,主要取决于其有效成分与自然植株的差异,有研究表明,有40余种化合物在培养的组织细胞中含量高于完整植物水平。如培养的人参细胞中人参皂甙含量是天然植物的5.7倍[3];雷公藤培养细胞中雷公藤内酯的含量是原植物含量的49倍;紫草的色素含量达干重的14.26%,而于完整植株的仅含1.5%。1.3 植物生理的研究 在植物组织培养的过程中,“种子植株——愈伤组织——再生植株”的培养模式需要各类植物激素的共同作用。组培有助于了解药用植物的生物合成和生长规律,人们不仅研究再生植株的培育,还重点研究研究愈伤组织的一些特性,比如利用愈伤组织鉴别植物抗性[5]。可以通过人工调控生长物质来进行亚细胞组织的电镜观察等,并研究胚性在植物生理上的重要作用[4]。 1.4 工业化生产研究与革新技术 组织培养的技术能够使发芽率极低的药用植物一小部分可以培养出数十万株植物。试管育苗工厂已经成为一种新型产业。目前,应用细胞悬浮培养或毛状根生产人参皂甙和紫草宁已达到了工业化生产的规模[6]。但如何实现工业化仍面临一部分难题:主要是:细胞增殖速度慢、生产成本较高、生产设备的完善度不够。为了改进工业化生产工艺,产生了一些新技术,20世纪80年代末,日本千叶大学古在丰树教授发明了一种全新的植物组培技术——无糖组培技术。此项技术改变碳源供给途径,使植株由异养型转变为自养型。这能够大大降低工业化生产的成本,但同时却对环境的要求更高。无糖组培技术现已成功应用于半夏[7]、草莓、

植物组织培养实验报告

院(系、部) 化学与生物工程学院专业生物技术(师范)年级13级学号17130208 姓名组别第二组课程名称植物细胞工程学实验日期2016.3-6 指导老师实验名称植物组织培养综合实验 一、实验目的 1.熟悉MS培养基的组成,掌握贮备液的配制方法 2.学习、掌握植物组织固体培养基的配制和灭菌方法; 3.掌握超净工作台上的接种方法与注意事项,了解接种室的灭菌方法; 4.了解组织培养的基本程序; 5.掌握接种的方法和材料的培养过程; 6.掌握无菌操作技术,包括外植体除菌和接种技术; 7.观察外植体的生长状况、染菌状况,剔除染菌外植体; 8.了解MS培养基和1/2MS培养基的区别 二、实验原理 1.植物细胞的全能性 一切植物都由细胞构成,细胞是构成植物体的基本结构与功能单位。植物细胞含有全套遗传信息,具有形成完整植物的潜能。 2.植物细胞表现出全能性的条件 1.离体状态; 2.有一定的营养物质,激素和其他外界条件(无菌、温度、pH); 3.选择性能优良、细胞全能性表达充分的基因型 3.无菌条件 把植物的组织、器官等,使其在人工控制的无菌条件下,使植物在人工培养基上繁殖。用于进行组织培养的组织、器官和细胞称为外植体。在组培中外植体都死带菌的,在接种前必须进行表面消毒,这时取得培养成功的最基本和重要的前体。组织培养的主要过程都是在无菌条件下进行的,所以所有的器材、植物体、接种室都应是无菌的。 4.脱分化与愈伤组织 已有特定结构与功能的植物组织,在一定条件下,其细胞被诱导改变原来的发育途径,逐步逆转其原有的分化形态,转变为具有分生能力的胚细胞的过程称为脱分化。脱分化所用的化学物质与MS培养基的区别是需要激素诱导。所以脱分化培养需在MS培养基上添加激素进行愈伤组织诱导。 5.培养基 植物组织培养常用的培养基为MS培养基。常用的凝固剂是琼脂,它的主要作用是使液体培养基凝固,琼脂本身并不提供任何营养,它只是一种高分予的碳水物从海藻中提取出来,仅溶解于热水,成为溶胶,冷却后(40℃以下)即凝固为固体状凝胶。琼脂的用量一般在4—10克/升之间。琼脂的凝固能力除与原料、厂家的加工方式等有关外,还与高压灭菌时的温度、时间、pH值等因素有关,长时间的高温会使凝固能力下降,过酸过碱加之高温会使琼脂发生水解而丧失凝固能力,存放时间过久,琼脂变褐,也会逐失去凝固能力。MS培养基属于富盐平衡培养基,特点是:无机盐浓度较高,元素间的比例适当,离子平衡性好,具有较强的缓冲性,因而在培养的过程中可维持较好的稳定性;营养丰富,在一般培养中无须额外加入复杂的有机成分;微量元素种类全,浓度高。这类培养基是目前使用最广泛的培养基。 6.生长调节物质 包括天然植物激素额人工激素类似物。植物激素是一类植物自身合成、同时对其生长发育具有重要调节作用的有机化合物。生长调节物质对于离题培养中的细胞分裂分化、器官形成和个体再生等均起着重要而明显的调节作用。一般来说,基本培养基只能保证培养物的生存,维持其最低的生理活动,而只有植物激素的配合使用,才能完成离体培养物中按照需要设计的各个调节环节。常用的植物组培激素种类主要有生长素类、细胞分裂素类、赤霉素。

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