1、血液样本的采集、运输、处理、保存
艾滋病筛查实验室标准操作规程血液样本的采集、编号、运输、处理、保存
sop 版本号：第五版
标准操作规程（SOP）
编号：DZJY/ZY450-01
题目：血液样本的采集、编号、运输、处理、保存
版本：第五版
作者：曲文才
日期：2010/05/20
页数：３
修订历史：
联系人：曲文才
SOP 1 版本号：第五版
艾滋病筛查实验室标准操作规程血液样本的采集、编号、运输、处理、保存sop 版本号：第五版
一、目的
确保样品的采集、运输、处置、保存得到有效的管理, 保证样品的良好、完整、不被污染、且不污染环境, 样品在检测前保存完好、完整, 编号清晰。保证分析数据、血样的准确性和具有可追溯性。
二、范围
适用于HIV实验室样品的采集、运输、处置、保存。
三、责任
操作人员严格按要求执行。
四、定义
无
五、背景
本SOP 是为配合HIV实验室检测，现场样品从采集到检测前的工作而制定的, 以确保检测样品良好、完整、不被污染、且不污染环境。
六、程序
1、采集
(1) 所需材料: 乳胶手套, 工作服, 帽子, 口罩, 注射器, 止血带, 医用酒精棉球, 无菌棉签, 医用酒精, 碘伏, 采血枕, 一次性纸垫, 试管及试管架。
(2) 采血方法:
采血员洗手, 戴手套, 帽子, 口罩。
70% 酒精清洁采血工作台面, 铺上一次性纸垫。
在采血枕上铺上一次性纸垫。
让调查对象坐在凳子上, 露出一只胳膊直至上臂, 袖口不可过紧。
将胳膊放在采血枕上, 掌心向上, 用止血带在上臂扎紧, 肘部应低于心脏水平线。
在肘前区寻找鼓起的静脉，并且该静脉与周围组织固定良好，触摸该静脉，确认是静脉。
用碘伏成同心圆状向外消毒, 不得用手接触己消毒部位。
用酒精成同心圆状向外消毒。
待酒精彻底干燥后, 让调查对象用力握拳。
沿血流方向, 以与前臂成150°将针头插入静脉内。
血液流入采血管, 松开止血带, 让调查对象慢慢松开拳头, 待血液到达采血量要求后, 将采血针头拔出的同时用无菌棉球按住采血伤口。
采血管编号后直立、按顺序插入试管架内。
嘱咐调查对象按住棉球 5 分钟以上, 抬起胳膊使之高于心脏水平; 将针头弃入金属制容器桶, 一次性纸垫等放入垃圾桶。
(3) 血清采集
取静脉血3ml，室温放置2小时，待血液凝固、血块收缩后，3000rpm离心15分钟，吸出血清备用，编号登记。
抗凝血样品采集：用注射器抽取静脉血，转移至加有抗凝剂的试管内，反复SOP 2 版本号：第五版
艾滋病筛查实验室标准操作规程血液样本的采集、编号、运输、处理、保存sop 版本号：第五版
轻轻颠倒混匀6～8次，编号登记，备用。
2、样品编号
(1) 编号原则：唯一性原则，简明性原则，稳定性原则。
(2) 方法：样品编号前4位数字为年代号，后4位为样品序号
□□□□-□□□□
年代号:为年代后四位，例如：2010年，年代号为2010
样本序号：按采样或接受样本先后顺序进行的流水编号
3、样品的运送
(1) 应符合生物安全要求，有专人专程护送，运送样品必须有记录。
(2) 样品应置于带盖的试管内，试管上应有明显的标记，标明样品的编号或受
检者姓名
(3) 采用三层容器对样品进行包装，随样品附有送检单。
(4) 接样第一层为带盖的试管，第二层为带密封口的塑料袋，第三层为保温壶。
(5)用于抗体检测的血清或血浆样品应在冻存条件下运送，用于CD4+和CD8+T 淋巴细胞测定的样品应在室温下（18～25℃）或4℃（特殊要求时）运送。用于病毒载量检测的样品应在-20℃以下运输。
4、样品的接受
(1) 样品必须在具有处理感染性材料能力的实验室内、由经过培训的工作人员在生物安全柜中打开，用后的包裹应及时进行消毒。
(2) 核对样品与送检单，检查样品管有无破损和溢漏。如发现溢漏应立即将尚存留的样品移出，对样品管和盛器消毒，同时报告实验室负责人。
(3) 检查样品的状况，记录有无严重溶血、微生物污染、血脂过多以及黄疸等情况。如果污染过重或者认为样品不能被接受，应将样品安全废弃。并将样品情况立即通知送样人。
(4) 接受样本编号登记。
5、样品的保存
用于抗体和抗原检测的血清或血浆样品，短期（1周）内进行检测的可存放于2～8℃，一周以上应存放于-20℃以下。
七、参考文件
《全国艾滋病检测技术规范》（2009年修订版）中国疾病预防控制中心《程序而文件》（第三版）德州市疾病预防控制中心
SOP 3 版本号：第五版
检验标本采集运输指南
封面
前言 医学检验的目的就是对临床标本进行检测分析，为临床疾病诊断、治疗及疗效观察提供实验室依据。为确保实验结果的及时、准确、可靠，就必须保证分析前标本的质量，这就要求广大医护工作者及就诊患者了解各类标本采集、运输等方面的知识和要求。为此，医学检验科、护理部、感染管理科共同制订《检验标本采集运输指南》手册，供全院医务人员使用，以确保实验室分析前的标本质量，并真诚希望广大医务人员在使用本手册的过程中多提宝贵意见，以利于进一步的提高和完善。 宾阳县人民医院 检验科、护理部、感染管理科 2016年8月4日
目录 第一部分检验科各检测项目标本采集要求 (4) 第二部分检验标本采集运输要求 (5) 第三部分患者采血前的准备 (6) 第四部分检验标本采集运输作业指导书 (6) 一、静脉血液采集运输作业指导书 (6) 二、末梢血采集运输作业指导书 (8) 三、动脉血液采集运输作业指导书 (9) 四、尿液标本采集运输作业指导书 (10) 五、粪便标本采集运输作业指导书 (11) 六、前列腺液采集运输作业指导书 (11) 七、精液采集运输作业指导书 (12) 八、脑脊液标本采集运输作业指导书 (13) 九、浆膜腔积液（胸水）采集运输作业指导书 (14) 十、浆膜腔积液（腹水）采集运输作业指导书 (15) 十一、骨髓采集运输作业指导书 (16) 十二、临床微生物标本采集运输作业指导书 (18) 第五部分标本采集运输流程 (20) 第六部分检验标本的接收、拒收标准及流程 (21) 1 . 检验标本的接收标准: (21) 2 . 不合格标本拒收标准: (21) 3 . 检验标本接收流程: (22) 4 . 不合格标本拒收流程: (23)
血液样本的采集与保存
实用帖｜血液样本的采集与保存 在脊椎动物中，外周血一直被认为是侵害性较小、富有价值的检测样本。在许多生物样本库中，由于血液样本的常规收集、处理及保存方法简便、成本低且富含可利用成分和生物分子，因此是进行多种项目分析的理想实验材料。然鹅，科研僧们历经千辛万苦最后发现获得的血液样本RNA降解了。。。。额，这就很惆怅了。 所以呢，在样本采集、处理及储存过程中必须格外注意，从根本上确保获得高质量的RNA。 今天小编和大家一起来聊一聊在进行RNA实验时血液样本如何进行收集与保存。 血液的组成 首先来熟悉一下血液的组成。 人类的血液由血浆和血细胞组成。其中血浆约占血液的55%，是水，糖，脂肪，蛋白质，钾盐和钙盐等的混合物。血细胞约占血液的45%，主要分为红细胞、白细胞和血小板。而哺乳动物成熟的红细胞和血小板是无核的。
血浆和血清 血浆是离开血管的全血经抗凝处理后，通过离心沉淀，所获得的不含细胞成分的液体，其中含有纤维蛋白原，不含游离的Ca2+，若向血浆中加入Ca2+，血浆会发生再凝固。 血清是离体的血液凝固之后，经血凝块聚缩释出的液体，其中已无纤维蛋白原，但含有游离的Ca2+，血清中少了很多的凝血因子但多了很多的凝血产物。
采血管的选择 采血管，大家都不陌生，去医院抽个血，一定会用到采血管，那么问题来鸟，这么多颜色的采血管，有什么区别呢？下面小编来给大家介绍一下采血管的分类及不同颜色试管帽代表的含义。 1.蓝色头盖管（含有柠檬酸钠抗凝剂的采血管） 2.黑色头盖管(含有 0.109mol/L 柠檬酸钠) 3.紫色头盖管(含有乙二胺四乙酸以及其盐的采血管) 4.绿色头盖管（肝素抗凝管） 5.灰色头盖管(含有草酸钾/氟化钠） 6.橘红色头盖管（促凝管） 7.金黄色头盖管（含有惰性分离胶及促凝剂的采血管）
血样样本的采集和处理
血液样本的采集和处理 血液样本的采集和处理 (1) CD4+和CD8+ T淋巴细胞样品的采集和处理 (4) 血液样本的采集和处理 一、血清样品的采集和处理 1、用一次性注射器（或真空采血管）抽取一定量静脉血，室温下自然放置1～2h，待血液凝固、血块收缩后再用3000r/min离心15min，吸出血清于血清管内备用。 2、如用滤纸片采样，则手指或耳垂局部严格进行消毒，在刺破皮肤后，迅速把滤纸片沾上，切勿让血液滴落在其他物体表面造成污染。采血后要待血样干燥后再包装送检。 二、抗凝血样品采集和处理 1、用加有抗凝剂的真空采血管（或一次性注射器抽取静脉血，转移至加有抗凝剂的试管），反复轻摇，分离血浆和血细胞备用。 2、应根据实验要求选用适当的抗凝剂，如CD4+ /CD 8+T淋巴细胞测定可选用K3EDTA或肝素或枸橼酸钠，HIV病毒分离、核酸定性/定量检测可选取K3EDTA或枸橼酸纳。 3、用于核酸定性检测时，采集的抗凝全血应在4～8h内分离PBMC和血浆，否则应在24～48h内分离血浆和血细胞。
三、采集样品注意事项 1、采集样品原则上应按临床采血技术规范操作（试剂盒说明书有特殊要求除外）。 2、采集样品时应注意安全，建议采用真空采血管及蝶形针具（有条件者可用持针器），以避免直接接触血液；直接接触HIV感染者/艾滋病（AIDS）病人血液/体液的操作，应戴双层手套。 四、样品的保存 1、用于抗体检测的血清或血浆样品，应存放于-20℃以下，短期（一周）内进行检测的样品可存放于2-8℃。 2、用于抗原和核酸检测的血浆和血细胞样品应冻存于-20℃以下，进行病毒RNA检测的样品如需存放3个月以上应置于-80℃。 3、用于CD4+/CD8+T淋巴细胞测定的样品不能长期存放，样品采集时间超过48h则不可检测。 五、样品的运送 1、实验室间传递的样品应为血清和血浆，除特殊情况外一般不运送全血。 (1) 第一层容器：装样品，要求防渗漏。样品应置于带盖的试管内，试管上应有明显的标记，标明样品的编号或受检者姓名、种类和采集时间。在试管的周围应垫有缓冲吸水材料，以免破碎。随样品应附有送检单，送检单应与样品分开放置。 (2) 第二层容器：要求耐受性好，防渗漏，容纳和保护第一层
临床检验标本采集、运输、保存操作规程
临床检验标本采集、运输、保存操作规程 目录 第一章、体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 二、阴道分泌物标本采集、运输 三、精液标本采集、运输、保存 四、粪便采集、运输、保存 第二章、血液一般检验的标本采集、运输、保存操作规程 一、未梢血标本采集 二、静脉血采集、运输、保存 第三章、生化检验标本采集、运输、保存操作规程 前言 在临床工作中，检验标本的分析结果是临床医生诊断疾病、制订治疗方案的重要依据，而标本采集及送检工作的合格与否直接影响检验结果的真实性，进而影响疾病的诊治工作。为了进一步提高检验结果的准确性和可靠性，除了要求检验科提高检验质量水平外，还要求临床医护人员正确采集标本。为确保标本的正确采集、运输和保存，检验科特编写了临床检验标本采集、运输、保存操作规程，要求医护人员严格按操作规程采集、运输和保存标本。 第一章体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 （一）检查项目 1．尿液干化学测定：尿液比重、pH 值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、亚硝酸盐、葡萄糖、抗坏血酸。 2．尿液有形成份检测：包括红细胞及白细胞形态等。
3．其它：尿HCG、尿液红细胞显微镜形态分析。 （二）标本采集 【容器及采样量】 门诊病人由检验科提供专用塑料尿杯，采样量20-30ml。住院病人使用清洁容器取尿，再将尿液倒入专用的试管内，量约5-10ml。24小时尿液收集于清洁容器中，如小的带盖的塑料桶。 【标本种类及适用人群或项目】 （1）晨尿 即清晨起床后的第一次尿标本，为较浓缩和酸化的标本，血细胞、上皮细胞及管型等有形成分相对集中且保存得较好。门诊患者可采集清晨第二次尿标本。适用：住院病人、可疑或已知泌尿系统疾病的动态观察及早期妊娠试验等。 （2）随机尿（随意一次尿） 即留取任何时间的尿液。本法留取方便，但易受饮食、运动、用药等影响，可使低浓度或病理临界浓度的物质和有形成分漏检，也可能出现饮食性糖尿或药物如维生素C等的干扰。适用：门诊和急诊病人。 （3）其他 包括留取中段尿（女病人易受阴道分泌物污染，应采集中段尿）、导尿、耻骨上膀胱穿刺尿等。 【注意事项】 （1）避免阴道分泌物、月经血、粪便等污染，女性病人应采集中段尿，尽量避免经期做尿常规检查； （2）避免干扰化学物质（如表面活性剂、消毒剂）混入； （3）住院病人送检的标本要标上病人姓名，门诊病人的标本和检验申请单放在指定的标本收集盘上。
血液样本采集标准操作规程
血液样本采集标准操作规程 1.目的 规范样本库采集人体血液样本的操作规程。 2.适用范围 适用于使用真空采血管采集人体血液样本的活动过程。 3.定义和术语 3.1知情同意 保证被收集者了解并理解研究的目的和内容，并自愿同意参加试验的原则。知情同意具有国际性，是对所有进行人体研究或人体取样调查的研究人员的伦理要求。在以人为研究/试验对象的科研领域，收集者必须获得研究对象/参与者的知情同意，保护被收集者合法权益的同时保护收集者免于诉讼。 3.2知情同意书 知情同意书，是每位被收集者表示自愿参加某一项试验而签署的文件。知情同意的具体体现是知情同意书的签署。知情同意书由收集者和被收集者共同签署，一式两份。正本由收集者保存，被收集者保存副本。 3.3真空采血管采血法 将有头盖胶塞的采血试管预先抽成不同的真空度，利用其负压自动定量采集静脉血样。 3.4血清和血凝块 指在凝血过程中，血浆中的纤维蛋白原转变为不溶的血纤维。血纤维交织成网，将很多血细胞网罗在内，形成血凝块。血液凝固后，血凝块又发生回缩，并释放出淡黄色液体，称为血清，其中已无纤维蛋白原。
3.5血浆 血浆是离开血管的全血经抗凝处理后，通过离心沉淀，所获得的不含细胞成分的液体，其中含有纤维蛋白原。 3.6白细胞 白细胞人体血液及组织中的无色细胞，是血液中的一类细胞，有细胞核。根据形态特征可分为粒细胞、淋巴细胞和单核细胞。 3.7枸橼酸钠(柠檬酸钠) 枸橼酸能与血液中的钙离子结合形成螯合物，阻止血液凝固。 3.8乙二胺四乙酸二钾(EDTA·K2) 与枸橼酸钠的抗凝机制相同，用21.5-2.2mg EDTA·K2可阻止1ml血液凝固。 3.9肝素 一种相对分子质量为15000，含硫酸基团的黏多糖，与抗凝血酶Ⅲ结合，促进其对凝血因子和凝血酶活性的抑制，抑制血小板聚集从而达到抗凝。 4.职责 4.1临床护理人员 按照标准操作规程采集血液。 4.2样本管理员 协助样本的采集，对样本进行处理和储存，并作相关记录。 5.设备和耗材 5.1个人防护装备 实验防护服、手套、口罩、护目镜及其它相关防护装备。 5.2设备
实验样品采集运输保存方法
1.R N A实验样品采集、保存方法 使用范围及样品量 类别：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 样本量： 样本样本量 哺乳动物培养细胞样品（悬浮细胞）1*107个 哺乳动物培养细胞样品（贴壁细胞）15cm2 植物组织样品100mg-1g，根据植物不同部位的组织决定组 织需要量，尽可能多些，但不必超过1g 动物组织样品 新鲜组织样品 A. 使用RNAlater试剂 取新鲜组织（注：动物死亡后尽快在10min内取材），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，所用组织必须切至厚度在一下，然后放入装有5倍体积RNAlater的离心管（或冻存管）中。 4度孵育过夜，此时样品管需要横置以便组织块充分接触到RNAlater，然后转入-20中保存，样品在-20不会冻结，但溶液中可能会有一些晶体出现，这并不影响后续的RNA抽提。 B. 使用Trizol试剂 取新鲜组织（1min以内），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，每50-100mg组织加入1ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品，最好冰上进行操作。
匀浆的裂解液4度短期保存（1month），-20或者-70度长期保存。 冻存组织 生物体死亡后尽快（10min以内）切取新鲜组织，并以PBS或生理盐水清洗干净切成小块；培养液倒入离心管中，离心沉淀细胞，弃去上清液。 细胞沉淀（1*107个）中加入1ml Trizol裂解液 反复吸打几次后，目视可见细胞层溶液完全 -70保存 贴壁细胞 从培养容器中吸出并弃去培养液 培养瓶直接加入Trizol试剂，Trizol用量与细胞贴壁面积有关，15cm2细胞贴壁面积加入1mlTrizol。 反复吸打几次后，目视可见细胞层溶解完全。 -70度保存。 植物组织样品 准确取得所需新鲜组织后，如有必要可用PBS清洗干净，将所用组织切碎，装入冻存管中或者用锡箔包裹好。 立即投入液氮中保存。 2.血液类样品采集、保存方法 适用范围及样品量 全血/血细胞：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 血清/血浆：Microarray Service；PCR Array& PCR Service
检验科标本采集运送手册
检验标本的采集运输指南 一、医生申请 ?遵循有效性、时效性、经济性的原则正确填写相应的检验申请单?申请单内容包括：姓名、性别、年龄、住院号、科别、床号、临床诊断、标本种类、申请医师姓名、日期、检验项目 ?临床医生正确填写申请单，字迹清晰 二、患者采集前准备 ?患者状态：一般要求处于安静、休息状态，晨起是大部分标本采集的最佳时间。 ?饮食：多数试验要求采血前禁食8-12h ，饮食中的不同成分可直接影响检验结果。餐后血液中ALT、GLU、BUN、Na+等均可升高 ?药物：化学影响和物理影响 三、标本采集 1血液标本的采集注意事项 ?尽量采集早晨7-9时的空腹血。 ?采血管上正确标明患者的姓名、住院号、科别等信息，切勿混淆。?采静脉血避免止血带结扎过久，结扎时间过久可导致某些指标产生变化，如血浆总蛋白、胆固醇、胆红素等
?避免溶血，溶血影响多项检测项目的结果，会使血清中钾、ALT、AST、LDH等升高，钠、氯、钙等降低。 ?要特别注意不能在输液的同侧采血，更应杜绝在输液管内采血。?输注脂肪乳，6小时内影响检验结果。 ?采血后立即颠倒混匀，避免剧烈震荡。 2、常规尿液标本的采集 ?晨尿：即清晨第一次尿，适合住院病人，较浓缩、条件恒定，能真实地反映肾脏病情况。 ?随机尿：适于门诊、急诊病人，但受多种因素的影响，有形成分的浓度较低。 ?24h尿：适于代谢产物24h定量测定，如尿蛋白、钠、钾、等。应准确的收集24h尿液送检，根据检验目的加入适当防腐剂。 尿液标本的采集、送检注意事项 ?在容器上标明患者姓名、住院号等信息 ?收集尿标本的容器必须清洁、干燥，防止混入异物 ?尿常规与一般定性检查留取量至少要在尿标本收集管的中间刻度线以上。 ?尿常规标本应尽量在1小时内送检；尿液红细胞形态标本尽量在2小时内送检；其它项目标本应在留取后尽快送检，不能超过4小时。 3、粪便标本的采集 ?在容器上标明患者姓名、住院号等信息
标本采集运输指南
标本采集运输指南 1目的 对检验申请、患者的准备、临床标本的采集与运输以 及样品在实验室内的传输过程进行控制，以保证检验前样 品的质量。 2 范围 适用于检验科受理的标本。 3 职责 3.1临床医师负责检验的申请。 3.2检验科主任负责组织人员编写检验标本采集手册。 3.3医护人员和检验人员均负责指导患者如何正确留 取标本。 3.4门诊抽血人员和病房护理人员负责临床标本的采集，特殊标本由临床医生采集。 3.5医院指定的标本收集人员负责定时到临床各科室 收集标本和运输。 3.6相关检验人员负责样品在实验室内的传输。 4 工作程序 4.1检验申请 4.1.1 检验项目选择
临床医师根据病人病情需要和检验项目的敏感度、特 异性来正确选择检验项目。检验科人员可为其提供检验项 目的咨询，监督实验室服务对象选择的检验项目是否明确，实验室检验项目能否满足实验室服务对象的要求。 4.1.2检验申请表 本实验室的检验申请表包括以下内容： a)患者的唯一性标识，如门诊病人的诊疗卡号、住院 病人的住院号； b)患者的姓名、性别、年龄； c)患者就诊或住院的科别、床号； d)样品的类型和原始解剖部位，如静脉抗凝血等； e)申请的检验项目或项目的组合； f)临床标本采集日期和时间； g)实验室收到样品的日期和时间； h)申请者姓名； i)申请日期。 4.2病人的准备 为了使检验结果有效地用于临床，临床医护人员和检 验人员应了解标本收集前影响结果的非病理性因素，如饮食、标本采集时间、体位和体力活动、病人用药等对标本 采集的影响。提出要求病人予以配合和服从的内容，采取 切实措施，保证采集的标本符合疾病的实际情况。
土壤样品采集与处理实验报告
土壤样品采集与处理实 验报告 Document number：WTWYT-WYWY-BTGTT-YTTYU-2018GT
实验一土壤样品的采集与处理 土壤样品的采集是土壤分析工作中的一个重要环节，是关系到分析结果和由此得出的结论是否正确的一个先决条件。由于土壤特别是农业土壤的差异很大，采样误差要比分析误差大若干倍，因此必须十分重视采集具有代表性的样品。此外，应根据分析目的和要求采用不同的采样方法和处理方法。 一、土壤样品的采集 （一）采样时间 土壤中有效养分的含量随季节的改变而有很大变化。分析土壤养分供应情况时，一般都在晚秋或早春采样。同一时间内采取的土样，其分析结果才能相互比较。 （二）采样方法 采样方法因分析目的和要求的不同而有所差别： 1．土壤剖面样品研究土壤基本理化性质，必须按土壤发生层次采样。 2．土壤物理性质样品如果是进行土壤物理性质测定，须采原状样品。 3．土壤盐分动态样品研究盐分在剖面中的分布和变动时，不必按发生层次取样，而自地表起每l0cm 或20cm 采集一个样品。 4．耕层土壤混合样品为了评定土壤耕层肥力或研究植物生长期内土壤耕层中养分供求情况，采用这种方法。 （1）采样要求 在采样时，要求土样有代表性，因此需多点取样，充分混合，布点均匀，混合样品的取样数量应根据试验区的面积以及地力是否均匀而定，通常为5~20个点，采样深度只需耕作层土壤0~20cm ，最多采到犁底层的土壤，对作物根系较深的，可适当增加采样深度。 （2）采样方法 根据地形、样点数量和地力均匀程度布置采样点。面积不大，比较方正，可采用对角线取样法；面积较大，形状方正，肥力不匀的地块可采用棋盘式采样方法（方格取样法）；面积较大，形状长条或复杂，肥力不匀的地块多采用 土时应除去地面落叶杂物。采样深度一般取耕作层土壤20cm 左右，最多采到犁底层的土壤，对作物根系较深的土壤，可适当增加采样深度。 对角线取样法 棋盘式取样法蛇形取样法法
检验标本采集核对 制度
检验标本采集核对、运送、交接制度 临床检验的任务就是对临床标本进行检测分析，为临床疾病诊断、治疗及疗效观察提供实验室结果，并为临床提供咨询服务。因此，检验标本的正确采集、运输、交接处理是确保临床检验顺利进行的重要条件。为此，制订检验标本采集核对、运送和签收制度。 标本采集核对制度 1、护士应掌握各种标本的正确留取方法。 2、护士为患者采集标本时要实施正确的双人核对。双人核对医嘱、标本容器及标识、患者身份等，必要时病人参与确认。 3、正确选择标本采集时机。晨起患者处于安静状态，为大部分标本采集的最佳时间。静脉采血前至少要禁食8h；血脂测定需禁食12-14h；做微生物培养检查，最好在使用抗生素之前采集标本；大便隐血检查前要素食3天；尿液检查应按不同项目分别留置取晨尿、随机尿、计时尿等。 4、正确选择标本采集体位。如住院患者建议采用卧位采血，非住院患者可采用坐位；醛固酮检测要在起床前卧位取血，起床后活动4h 立位取血。 5、正确选择标本容器。护士根据采集血液、尿液及粪便等不同标本种类及容量，准备合适的采集容器。在容器外整齐规范地贴上条形码。 6、正确使用止血带。采集血液标本时应尽量缩短使用止血带的压迫时间，一般不超过1min。见到血液进入采血容器后立即松开止血带。当需要重新采集标本时，应换另一手臂。
7、尽可能避免在输液过程中采集血液标本。因为血液被稀释、输入药物可能干扰检验结果。静脉输入葡萄糖、氨基酸、蛋白质或电解质的患者，应在输液结束1h后采集标本；输入脂肪乳剂的患者，应在输液8h后采集标本。如必须在输液时采集标本，要避免在输液同侧的静脉采集标本。 8、采集血液标本时，要避免导致标本溶血的因素。包括：标本管壁粗糙、容器不干燥和不清洁、穿刺处消毒液未干即开始采血、从血肿处采血、抽血速度过快、血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫、震荡过于激烈、止血带捆扎时间过长或让患者反复拽拳、运送标本震荡及放置时间过长等因素。 9、对于有特殊要求的如：患者体位、采集时间、患者体温等需要特别说明的标本，请在条形码空白处用文字备注，字迹清晰。 10、不得随意涂改标本条码上的信息，包括：患者信息、检验项目等。 标本运送和签收制度 1、各病区、科室标本采集后，由责任护士与运送工人双方做好交接清点、并做好交接记录（项目、数目、时间、签名），再由运送工人送检验科。 2、安全、及时地运送标本。标本应统一安排后勤服务公司专职人员送检。标本运送应遵循唯一标识、生物安全和及时运送三大原则：（1）唯一标识原则：应用可扫描自动识别的条形码是解决唯一标识最好的方式。 （2）生物安全原则：要求使用可以反复消毒的专用容器运送标本。
标本采集与运输培训答案
1、将每一份标本都看作是无法重新获得、唯一的标本，必须小心地： 采集、保存、转运。 2、空腹标本一般指进食8h后采集的血和尿标本（但不能超过12h,禁食时间过长可引起部分指标异常；如补体 C3、转铁蛋白等。）因为标本是在空腹和安静时采集的，干扰因素较少，对病人来讲，若多次检查同一项目，也便于比较、对照。 3、临床实验室标准化协会推荐多种血液标本时，采血次序为： 血培养管、普通血清管、枸橼酸钠管、凝胶分离管、肝素管/肝素凝胶分离管、EDTA管。 4、抗凝血必须及时、充分、轻轻颠倒混匀血液和抗凝剂，至少3次以上。避免采血损伤和用力旋转容器。 5、血液标准化委员会建议： 在室温（18～25℃）下，4h完成检测分离血浆和血清；血细胞与血清或血浆接触＞2h，血浆或血清将浓缩、分析物被破坏。冷凝集试验、血氨、凝血项目检测立即送检。泡沫可使蛋白质变性，血小板激活。 6、血液中脂蛋白成分的增加常会导致血清、血浆浑浊或奶酪状，通常称之为脂血。 7、痰液采集方法： 自然咳痰法： 清晨起床后，清水反复漱口后用力吐第一口痰于无菌容器中立即送检。上呼吸道标本： 采用无菌棉拭子。标本采集后立即送检，如不能立即送检，放冰箱保存
8、粪便标本采集具有病理意义的便（如浓血、血粘液、水样等选取）5g在半小时内送检，2小时内检测完毕，否则因PH变化及消化酶的影响可使便的细胞成分破坏分解。嘱患者在收集标本前三天禁食动物性食物，并禁服铁剂和维生素 C.且连续检查三天，收集后须迅速送检。 二、简答题 1、血液标本基本要求 保持标本完整性： 控制各种干扰因素 保持标本xx： 最好的尺度是时间 拒绝不合格血标本： 脂血、溶血、凝固等 2、标本溶血常见原因？ 标本溶血常见原因： 采血不熟练、劣质采血器和试管、注射器血急速注入试管、试管混匀用力过猛、从已有血肿的静脉采血、采血量不足、穿刺处所用消毒液未干、注射器和针头连接不紧采血时空气进入产生泡。 肉眼未见溶血，但乳酸脱氢酶、血红素、转氨酶或钾等值异常增高时，应警惕是否发生了非显性溶血。 3、采血容器的颜色、用途和采血量？ 头盖颜色添加剂用途采血量（ml）紫色EDTA-K2血常规、HLA- B27、2.0
临床血液标本采集指南 (一医院资料)
临床血液标本采集指南 一、检验申请 规范填写检验申请单 项目填写齐全，用词规范、字迹清楚、避免涂改。不同标本类型最好分开申请对于被检者的特殊情况，应当在申请单上注明，供检验人员判断结果参考。 检验科要求检验人员加强与临床医护人员沟通，及时解决检验项目申请和送检标本存在的问题和疑问；对于不合格检验申请单和不合格送检标本按照“医学检验工作制度”进行登记、处理。对于漏填或错填申请科室的检验申请单，检验科一律禁止发送检验报告，必要时送交医务科处理。 二、病人准备 医护、检验人员指导病人做好准备 考虑饮食、运动、生理周期、疾病及药物等对检验结果可能产生的影响，指导病人正确采集标本。 (一) 控制饮食 （1）大多数检验项目都要求在早晨空腹采血，咖啡、浓茶、高糖及可乐类饮料也应禁食。 （2）肝功、血脂、凝血等项目要求禁食12-16小时，且提前一天的晚餐应当避免饮酒、禁止高脂肪、高蛋白饮食。 （3）饮食对血脂检验影响重大，至少应当在抽血前的三天内注意保持正常饮食。
（4）在做内生肌酐清除率测定之前，待检者应禁食肉类3天，不饮咖啡和茶，停用利尿剂，实验前避免剧烈运动，饮足量的水。（二）避免药物影响 许多药物（如VitC、雌激素、降血脂药等）对检验结果尤其是血、尿、便的生化检验结果产生影响，抗生素应用将对微生物培养检验结果产生直接的影响。申请检验前医生应该了解待检者近期及当前相关药物使用情况并给予适当指导，在对检验结果可能产生明显影响时，应当在检验申请单上注明，或以电话或其他方式告知相关检验人员。 举例：降血脂、避孕药、噻嗪类利尿剂、§-受体阻滞剂、免疫抑制剂、某些降压药、降糖药、胰岛素及其它激素制剂等可影响血脂检验结果；应根据药物特性，在作血脂检验前停药数天至数周。如不能停药，应记录用药情况，恰当评估药物及检验结果的影响。（三）避免运动影响 （1）剧烈运动可以使许多血液成分发生变化，甚至持续24小时以上，因此剧烈运动之后不能立即抽血；快步行走之后至少应休息10-15分钟后再抽血。 （2）应在平静状态抽血，避免情绪激动。 （四）注意生理差异 临床医生申请检验项目及评估检验报告时，应考虑性别、年龄、昼夜节律、季节变动、生理周期（如怀孕、月经）等因素对检验结果的影响，并给与必要指导。
检验标本的采集与运送规范
检验标本的采集与运送规范（护理） 一、血液常规采集与运送规范 （一）、常用真空采血管的种类 1、促凝管／分离胶促凝管（橙色／黄色）：用于医学检验中生化学、免疫学、 血清学、各种病毒检测及血库检查血液标本的采集与盛装。管壁经特殊处理，防止挂壁及溶血现象。 2、枸橼酸钠１:９（蓝色）管：用于凝血机制等检查，按抗凝剂与血样体积比为 1：9设定的真空采血管，具有准确的血液量与抗凝剂总量，配比精度较高。 3、肝素钠／锂（绿色／墨绿色）管：用于急诊生化、血液流变学、全血铅测定 的血液标本采集。对血液成份干扰少，不影响红细胞体积，不引起溶血。具有血浆分离速度快，与血清标本指标兼容性强等优点。 4、EDTA（紫色）管：抗凝剂为乙二胺四乙酸（EDTA，分子量292）及其盐， 适用于一般血液学检验，不适用于凝血试验及血小板功能检查，亦不适用于钙离子，钾离子，钠离子，铁离子，碱性磷酸酶，肌酸激酶和亮氨酸氨基肽酶的测定及PCR试验。 （二）多管采样时采集次序 多管采血时一般按下列顺序：凝血试验→血沉→血常规→其它。以防止凝血因子活化，或者血小板聚集而影响检验结果。 多项检测同时采血时应按下列顺序采血：①血培养；②无添加剂管或促凝管；③凝血管；④有添加剂管的顺序为：a．橼酸盐管；b．肝素管；c．EDTA管；d．草酸盐/氟化钠管。 （三）各种血标本的采集及注意事项 1、血常规检验标本 一般用EDTA-2K(EDTA-K2?2H2O) 1.5～2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管,紫色帽）采血。 采血注意事项： 1)应按抗凝管刻度准确采静脉血至2ml。 2)采血后立即上下颠倒混匀（5～10次，不可用强力震荡,以免造成溶血。）；
检验科标本采集、运送及管理制度
检验科标本采集、运送及管理制度 1、制定《标本采集手册》，对检验、医护、运送等相关人员 进行教育和培训，避免由于标本采集、运送、管理等因素而影响检 测质量及生物安全。 2、标本采集前应告知患者注意事项，以减少因运动、过度空腹、饮食、饮酒、吸烟等因素对检验结果的影响。 3、采集时核对患者基本信息、检验项目、标本类型、容器、抗凝剂选择、采集量等，按照正确的标本采集途径，规范的操作方法， 采集合格的标本。 4、标本采集后应在规定的时限内及时送检，避免因暂存环 境和时间延缓等因素，而影响标本检测结果的准确性。不能及时送 检的标本，要按规定的贮存条件及方式妥善保管。 5、建立标本验收、登记、处理的工作程序。接收标本时须 认真核对患者基本信息、标本类型、标本量、容器、标识、检验目 的等，对不符合采集规范的标本应及时通报送检医师或其它相关人员，明确处理意见，做好记录。不合格标本不得上机检测，更不能 将明知是“失真的”检验结果签发报送临床，危及救治质量和患者 安全。 6、标本接收后应及时处理，防止标本中被测成分降解或破坏。缓检标本应核对后妥善保存。 7、向外单位送检或接收外单位送检的标本应专人负责并有
记录，医院其他科室使用检验标本从事科研时，必须征得专业主管、科主任同意，并作详细记录备案。 8、检验后的标本应按规定根据不同要求和条件限时保留备查，特殊标本特殊保存。 9、标本采集、运送及检验人员须严格执行生物安全防护要求，使用合格的标本输送箱，加盖封闭运送，检验申请单不得与标本容器卷裹混放。接触标本时须佩带防护手套，工作完毕后，按要求彻底清洗双手，防止感染。 10、废弃标本应严格按照实验室感染性材料和废弃物管理相关规定处理。 保持门窗干净、无尘土、玻璃清洁、透明。
血液样本采集和血涂片制备
血液样本采集和血涂片制备 1、抽血时针栓只能外抽，不能内推，以免静脉内注入空气形 成气栓，造成严重后果。 2、属于酸性染料的是：伊红属于酸性染料，通常为钠盐，有 色部分为阴离子。 3、疟原虫检查常用的染色方法是：吉姆萨染液对细胞核、 寄生虫（如疟原虫等）找色较好，结构更清晰，但对细胞质的着色能力略差。 4、手工推片法，推片与载玻片的夹角为25°～30°。 5、血液黏度与血细胞比容和血浆黏度有关，其中，血浆黏度 受血浆中纤维蛋白原、球蛋白等大分子蛋白质的影响，它们的浓度越高，血浆黏度越高。 6、涂片瑞氏染色时，缓冲液常用的pH为6.4～6.8。 7、瑞氏染料是由酸性染料伊红和碱性染料亚甲蓝（又名美 蓝）组成。染色原理既有物理的吸附作用，又有化学的亲和作用。血红蛋白、嗜酸性颗粒为碱性蛋白质，与酸性染伊红结合，染粉红色；细胞核蛋白、淋巴细胞、嗜碱性粒细胞胞质为酸性，与碱性染料亚甲蓝或天青结合，染紫蓝色或蓝色； 中性颗粒呈等电状态与伊红和亚甲蓝均可结合，染淡紫红色；原始红细胞、早幼红细胞胞质、核仁含较多酸性物质，染成较浓厚的蓝色；中幼红细胞既含酸性物质，又含碱性物
质，染成红蓝色或灰红色；完全成熟红细胞，酸性物质彻底消失后，染成粉红色。瑞氏染色法是最经典、最常用染色法。 8、瑞氏染料亚甲蓝容易氧化为一二三甲基硫堇等次级染料 （即天青）。将适量伊红、亚甲蓝溶解在甲醇中，即为瑞氏染料，由酸性染料伊红（E－）和碱性染料亚甲蓝（M＋）组成。 Ⅱ液磷酸盐缓冲液pH为6.4～6.8。在偏碱性环境中负电荷增多，易与亚甲蓝结合，所有细胞呈灰蓝色，颗粒呈深暗，嗜酸 颗粒呈暗褐，甚至棕黑色，中性颗粒偏粗，呈紫黑色。 9、细胞各种成分均属蛋白质，由于蛋白质系两性电解质，所带电荷随溶液pH而定，在偏酸环境中正电荷增多易与伊红结合染色偏红；在偏碱环境中负电荷增多易与亚甲蓝或天青结合偏蓝。因此，细胞染色对氢离子浓度十分敏感，所以在瑞氏染色中缓冲液起到恒定pH作用。 10、染色原理：既有物理的吸附作用，又有化学的亲和作用。各种细胞成分化学性质不同，对各种染料的亲和力也不一样。11、血清与血浆的差别是：血清中缺少某些凝血因子，如凝血因子Ⅰ（纤维蛋白原）、凝血因子Ⅱ（凝血酶原）、凝血因子Ⅴ、凝血因子Ⅷ等。 12、正常成人血量约为（70±10ml）/kg体重，成人4～5L，占体重的6%～8%，其中血浆占55%，血细胞占45%。
《样品采集、保存和管理作业指导书》
样品采集和保存 一样品采集和保存 ①氨氮:水样采集在聚乙烯瓶或玻璃瓶内，要尽快分析。如需保存，每升样品中应加1ml 浓硫酸，并在4下贮存，用酸保存的样品，测定时用氢氧化钠将PH值调至7左右。 ②溶解氧：样品应采集在细口瓶中，测定就在瓶内进行。试样充满全部细口瓶。不得有气 泡。 ③化学需氧量：水样采集于玻璃瓶中，应尽快分析。如不能立即分析时，应加入硫酸至PH ＜2，置4℃保存，时间不能多余5天。采集水样的体积不得少于100ml。 ④悬浮物：所用聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶要用洗涤剂洗净。在采样之前，再用即将采集的水 样清洗三次。然后采集水样500—1000ml，盖严瓶塞。 ⑤总磷：采集500ml水样后加入1ml硫酸调节样品的PH值，使之低于或等于1，或不加 任何试剂于冷处保存。 ⑥PH值：最好现场测定。否则应在采样后把样品保持在0—4℃，并在采样后6小时内进 行测定。 ⑦水温：最好现场测定。否则，应在采样后把样品保持在0~4，并在采样后6h之内进行测 定 ⑧氯化物：采集代表性水样，放在干净且化学性质稳定的玻璃瓶或聚乙烯瓶内。保存时不 必加入特别的防腐剂 ⑨色度：所用于样品接触的玻璃器皿都要用盐酸或表面活性剂溶液加以清洗，最后用蒸馏 水或去离子水洗净、沥干。样品采集在容积至少为1L的玻璃瓶内，在采样后尽快进行测定。 ⑩总氮：将采集好的样品储存在聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶中，用浓硫酸调节PH值至1～2，常温下可保存7天。储存在聚乙烯瓶中，-20℃冷冻，可保存一个月。 ⑾五日生化需氧量：采集的样品应充满并密封于棕色玻璃瓶中，样品量不小于1000ml，在0～4℃的暗处运输和保存，并与24小时内尽快分析。24小时不能分析可冷冻保存。 ⑿粪大肠菌群：采样瓶使用500ml已灭菌的磨口玻璃塞广口瓶，采集水样时应避免瓶盖及瓶子颈部受杂菌污染。灭菌后的采样瓶2周内未使用需重新灭菌 采集好的水样需放置约4℃冷藏设备内保存运输，一般要求在采集4小时内测定。
血液标本的采集方法及注意事项
血液标本的采集方法及注意事项 生化检验用的血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。静脉血是最常用的标本，静脉穿刺是最常用的采血方法。毛细血管采血主要用于儿童，血气分析多使用动脉血。 （一）静脉采血法 1.采血步骤 采血前要核对病人姓名、年龄、性别、编号及检验项目等，按试验项目要求，准备好相应的容器，如空白试管、抗凝管或促凝管等。病人应取坐位或卧位，采血部位通常是前臂肘窝的正中静脉。若用普通采血法，采血后应取下针头，将血液沿管壁缓慢注入试管内。 2.注意事项 （1）很多生化成分受膳食影响，因此，采血前要确认病人是否空腹。 （2）避免充血和血液浓缩：采血时应动作迅速，尽可能缩短止血带使用时间。用止血带压迫时间最好不超过半分钟，否则将使生化结果升高或下降。 （3）若病人正在进行静脉输液，不宜在输液同侧手臂采血；若女性病人做了乳腺切除术，应在手术对侧手臂采血。 （4）采血的体位：体位改变可引起一系列的生理变化，使血液中的许多指标发生改变。一般采取直立位采血，其二标本的测定值比卧位高5％～15％。因此，采血时要注意保持正确的体位（坐位或卧位），以及体位的一致性。 （5）采血时只能向外抽，决不能向静脉内推，以免注入空气，形成气栓而造成严重后果。 （6）防止溶血：造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁；穿刺不顺利，组织损伤过多；淤血时间过长；抽血速度太快；血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫；震荡过于剧烈等。若用普通注射器采血后，未取针头直接将血注入真空管内，也易造成溶血。体内溶血属合格标本，但应在报告单上注明。 （二）动脉采血法 肱动脉、股动脉、桡动脉以及其它任何部位的动脉都可以作为采血点，但多选择肱动脉和桡动脉。在摸到明显搏动处，按常规消毒，左手固定搏动处，右手持注射器，针头成60°角刺入，血液将自动进入注射器内。 （三）真空采血法 双向针一端插入真空试管内，另一端在持针器的帮助下刺入静脉，血液在负压作用下自动流入试管内。由于在完全封闭状态下采血，避免了血液外溢引起的污染，并有利于标本的转运和保存。标准真空采血管采用国际通用的头盖和标签颜色显示采血管内添加剂种类和试验用途。
血液样本的采集与保存
实用帖血液样本的采集与保存 在脊椎动物中，外周血一直被认为是侵害性较小、富有价值的检测样本。在许多生物样 本库中，由于血液样本的常规收集、处理及保存方法简便、成本低且富含可利用成分和生物分子，因此是进行多种项目分析的理想实验材料。然鹅，科研僧们历经千辛万苦最后发现获 得的血液样本RNA降解了。。。。额，这就很惆怅了。 所以呢，在样本采集、处理及储存过程中必须格外注意，从根本上确保获得高质量的 RNA 今天小编和大家一起来聊一聊在进行RNA实验时血液样本如何进行收集与保存。 血液的组成 首先来熟悉一下血液的组成。 人类的血液由血浆和血细胞组成。其中血浆约占血液的55%是水，糖，脂肪，蛋白质, 钾盐和钙盐等的混合物。血细胞约占血液的45%主要分为红细胞、白细胞和血小板。而哺 乳动物成熟的红细胞和血小板是无核的。
11^ 血浆和血清 血浆是离开血管的全血经抗凝处理后，通过离心沉淀，所获得的不含细胞成分的液体, 其中含有纤维蛋白原，不含游离的 Ca 2+ ，若向血浆中加入 ，血浆会发生再凝固。 血清是离体的血液凝固之后， 经血凝块聚缩释出的液体， 其中已无纤维蛋白原, 游离的Ca 2+ ，血清中少了很多的凝血因子但多了很多的凝血产物。 不加卿赛 mm BW. 血囲 其他有形咸分 但含有 血浆 有形成分
采血管的选择 采血管，大家都不陌生，去医院抽个血，一定会用到采血管，那么问题来鸟，这么多颜 色的采血管，有什么区别呢？下面小编来给大家介绍一下采血管的分类及不同颜色试管帽代 表的含义。 1. 蓝色头盖管（含有柠檬酸钠抗凝剂的采血管） 2. 黑色头盖管（含有0.109mol/L 柠檬酸钠） 3. 紫色头盖管（含有乙二胺四乙酸以及其盐的采血管 ） 4. 绿色头盖管（肝素抗凝管） 5. 灰色头盖管（含有草酸钾/氟化钠） 6. 橘红色头盖管（促凝管） 7. 金黄色头盖管（含有惰性分离胶及促凝剂的采血管） 8.红色头盖管（无添加剂的干燥真空管） f l m ■ M M ■ ■ 机 ■ 忡-M M
病原微生物标本采集 运送
病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。 一、标本采集的一般原则 1.早期采集 采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌的检出。 2.无菌操作 采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。采集的标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌的检出。 3.适量的标本 标本量过少可能导致假阴性结果。 4.适当的采集方法 对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻。 5.盛放标本的容器 采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容器内。 二、标本的运送 1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4度冰箱保存，且不能超过24小时。 2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。 三、不同标本的采集，运送
（一）血液标本采集，运送 1.血培养指针征 当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。 2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时或间隔短时间内采集２套以上血培养标本。成年患者：推荐同时采集２－３套（不同部位）血培养标本（即双瓶双臂同时采集血培养标本），采血量每瓶不少于5ml;婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同部位）血培养标本,采血量每瓶不少于2ml。（少于病人总血容量的1%）.在采取血培养后的2—5天内，无需重复采取血培养。两个例外：细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。 3.血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。 检出率与采血量成比例增长，每增加1ml的血液，病原菌的检出率就会相应增加。儿童患者血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人。采用一对（需氧瓶+厌氧瓶）组合，比采用二个需氧瓶的组合可检出更多的葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌。采血量不能满足推荐的量时，应首先满足需氧瓶的需要。 推荐从外周静脉采集血液标本,不推荐静脉留置导管，因其常伴有高污染率。如果必须从留置导管内采血，也应同时从外周静脉采集另外一个血培养标本以帮助阳性结果的判读。 4.血标本采集的注意事项 在采血之前，血培养瓶的橡皮塞需使用75%酒精消毒并干燥。然后再进行穿刺部位的皮肤消毒。严格按照“酒精、含碘消毒剂、酒精”的消毒步骤操作，并等待足够的消毒时间。严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手接触静脉，除非带有无菌手套.不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头;采集后的血培养瓶应在1小时之内送往实验室,血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏或冷冻。 (二)痰培养标本采集，运送 1.痰培养指征
实验一土壤样品的采集与预处理
实验一土壤样品的采集与预处理 一、目的和要求 土壤样品(简称土样)的采集与处理，是土壤分析工作的一个重要环节，直接关系到分析结果的正确与否。因此必须按正确的方法采集和处理土样，以便获得符合实际的分析结果。 二、内容与原理 学习土壤农化样品的采样布点方法及分样方法。在大田中，采用蛇形取样法采集1kg 有代表性的土壤样品，采用四分法分样。土样标签书写内容，样品风干要求。 三、主要用具 小土铲、布袋或塑料袋、标签 四、操作方法与实验步骤 (一)土样的采集 分析某一土壤或土层，只能抽取其中有代表性的少部份土壤，这就是土样。采样的基本要求是使土样具有代表性，即能代表所研究的土壤总体。根据不同的研究目的，可有不同的采样方法。 1.土壤剖面样品 土壤剖面样品是为研究土壤的基本理化性质和发生分类。应按土壤类型，选择有代表性的地点挖掘剖面，根据土壤发生层次由下而上的采集土样，一般在各层的典型部位采集厚约l0厘米的土壤，但耕作层必须要全层柱状连续采样，每层采一公斤；放入干净的布袋或塑料袋内，袋内外均应附有标签，标签上注明采样地点、剖面号码、土层和深度。 2.耕作土壤混合样品 为了解土壤肥力情况，一般采用混合土样，即在一采样地块上多点采土，混合均匀后取出一部份，以减少土壤差异，提高土样的代表性。 (1)采样点的选择选择有代表性的采样点，应考虑地形基本一致，近期施肥耕作措施、植物生长表现基本相同。采样点5—20个，其分布应尽量照顾到土壤的全面情况，不可太集中，应避开路边、地角和堆积过肥料的地方。 (2)采样方法：在确定的采样点上，先用小土铲去掉表层3毫米左右的土壤，然后倾斜向下切取一片片的土壤(见图1)。将各采样点土样集中一起混合均匀，按需要量装入袋中带回。 3.土壤物理分析样品 测定土壤的某些物理性质。如土壤容重和孔隙度等的测定，须采原状土样，对于研究土壤结构性样品，采样时须注意湿度，最好在不粘铲的情况下采取。此外，在取样过程中，须