临床微生物标本采集注意事项

临床微生物标本采集注意事项
临床微生物标本采集注意事项

临床微生物标本采集注意事项一 .血液标本1.血液标本采集应尽可能抽取患者动、静脉血管中血液。 2.血液标本采集自留置管、中心静脉导管内,应在申请检验单上注明。 3.不管临床症状经历的严重程度,但患者血液中病原菌浓度水平相当低,因此临床应多次采集血液标本进行培养,但24h内一般不超过3次,成人每次血量10~20ml,可提高检出率。二 .呼吸道标本1.上呼吸道标本 A.咽拭子:用无菌棉拭子直接擦拭咽后壁、扁桃体、或假膜边缘处。 B.口腔内溃疡:用无菌棉拭子直接在溃疡处采集标本。 C.鼻拭子:用无菌棉拭子插入鼻孔约 2.5cm,接触鼻黏膜采集。 2.下呼吸道标本采集①自然咳痰法:A.患者早上起床后用清水漱口,不要刷牙,收集从下呼吸道咳出的第二口痰,吐在塑料痰盒中。 B.痰量少或无痰的患者可采取雾化吸入10%NaOH水溶液,使痰液易于排出。 C.对于咳痰量少的幼儿,可轻轻压迫胸骨上部的气管,使其咳嗽,待咳嗽后用无菌棉拭子采集标本。②气管镜下采集法:用气管镜在肺炎病灶附近用导管吸引,或者使用支气管刷直接取得标本,但这种方法患者有一定痛苦。三 .尿液标本 1.导尿虽然可以减少污染,但多次重复导尿可造成逆行感染,因此多采用中段尿,简单易行,又无感染的危险。通常取晨起第一次尿送检。 2.女性:成年女性外阴部以肥皂水清洗,再用无菌水洗净,用无菌纱布擦拭,然后排尿弃去前段尿,留取中段尿3毫升,置于无菌容器内。 3.男性:用肥皂水清洗尿

道口,后用清水洗后取中段尿。包皮过长者为防止包皮内细菌污染,可将包皮翻开冲洗后再取中段尿。4.儿童:采集中段尿较困难。如尿中细菌明显增多,高度怀疑尿路感染,无细菌则可否定,细菌数中度增加时,有必要用膀胱穿刺术或导尿采集尿液。 5.为确定菌尿是否来自肾脏,可通过膀胱镜,输尿管插管采集左右肾盂尿。四 .大便标本1.自然排便采集法:自然排便后,可挑取新鲜粪便中有脓血、黏液部分的粪便约2-3克,粘液状大便取絮状物,盛于无菌的容器中或置于保存液中送检。

2.直肠拭子法:适宜不易获得大便或排便困难的患者及幼儿。方法是将拭子前端用无菌甘油盐水湿润,然后插入肛门约4-5cm(幼儿约2-3cm)处,轻轻在直肠内旋转,檫取直肠表面粘液后取出,置于无菌试管或保存液中送检。

3.采集大便标本应在急性期,使用抗生素前进行,并要采集新鲜粪便。五 .生殖道标本 1.男性应冲洗尿道口,采集从尿道口溢出的脓性分泌物或用男性专用拭子插入尿道内2-4厘米取分泌物。 2.前列腺液可用前列腺按摩法采集标本于无菌试管。

3.女性则用窥器扩张阴道,用无菌棉拭子可根据临床需要采集阴道、宫颈、宫内分泌物。六 .脓液及创伤分泌物标本尽可能在应用抗生素前采集标本。当创伤出血时,敷用药物在2小时内以及烧伤在12小时内不应采集标本。采集标本时应注意分泌物的性状、色泽和气味。标本采集需注意无菌操作,及时送检。

1.开放性感染和已破溃的化脓灶标本采集前先用灭菌生理盐水

冲洗表面污染菌,再用拭子蘸取或注射器吸取脓性分泌物,无菌试管送检。 2.慢性感染如污染严重,很难分离到致病菌,可取感染部位下层的组织,经研磨匀浆后分离培养。3.瘘管内脓液:用灭菌棉拭子挤压瘘管弃取前端脓液后用灭菌容器收集脓汁。 4.眼结膜脓性分泌物:先用无菌生理盐水冲洗眼部,用灭菌棉拭子拭干,再用灭菌棉拭子采集分泌物。分泌物较多时,用灭菌棉球擦拭,再用灭菌棉拭子取结膜囊分泌物,无菌试管送检。 5.耳、鼻、口腔分泌物:采集时易被黏膜上的正常菌群污染,所以采集标本时应尽量避免与周围黏膜接触。6.闭索性脓肿:主要指皮肤化脓和皮下软组织化脓感染。用碘酒和酒精消毒周围皮肤后,穿刺抽取脓液或分泌物无菌试管送检。七 .脑脊液标本 1.通过腰椎穿刺术以无菌手续收集脑脊液3-5ml于无菌小瓶或无菌试管中。 2.脑脊液标本应立即送检,并要注意保温,不可置于冰箱保存,否则会使病原菌死亡,尤其是脑膜炎奈瑟菌、肺炎链球菌及流感嗜血杆菌。 3.所有的脑脊液培养标本接收后应立即接种至相应的培养基。八 .穿刺液标本穿刺液多为浆膜腔液,包括胸腔积液(胸水)、腹腔积液(腹水)、关节液、心包腔积液、鞘膜腔积液等。多因浆膜腔发生循环障碍、炎症、癌侵润等病变,腔内液体渗漏增加所致。一般由临床医师在无菌操作下穿刺抽取,取5-10ml于无菌肝素抗凝小瓶中(0.5mg肝素可抗凝5ml标本),充分混匀后立即送检,不能有凝块。九 .支原体标本 1.必需在用药前采集标本,支原体对

细胞表面有很强的亲和力,应尽可能多收集细胞,标本采集后应尽快接种,不可在室温或普通温箱久存,以免拭子干燥而致使支原体活力降低甚至死亡。 2.男性:用男性无菌拭子由前尿道1~2cm处取尿道分泌物,根据病情需要,也可取前列腺按摩液、精液。 3.女性:采集宫颈分泌物,标本采集时应先擦去宫颈口多余粘液,再用另一拭子在宫颈管内1~2cm处取宫颈分泌物。取材时要在宫颈内旋转并至少停留20秒,以便获得较多的细胞。 4.如果必须用尿液做支原体培养,可留取清晨中段尿10~20ml,高速离心后,取沉淀物接种,但尿液支原体培养的阳性率明显低于尿道(或宫颈)分泌物。 5.整个采样过程应注意无菌操作。

常见微生物标本的采集

常见微生物标本的采集、处理与检测 标本采集的基本原则:尽早采集、根据可疑的病原体,选择不同采集时机和标本种类、在抗生素应用前采集、遵守无菌操作、正确保存和运送。容器应密封不易碎,标本不得污染容器的口和外壁。 1.血液标本正常人的血液是无菌的。当细菌侵入时可引起严重的菌血症或败血症。 一般情况下在患者发热初期或发热高峰时采集;持续性菌血症可随时采集;间歇性菌血症,应预测其体温上升期进行采血。一般在使用抗生素前采集2~3次;多部位采集,如两侧肘静脉或动、静脉同时采取;对于已使用抗生素而无法停止的患者,也应在下次用药前采取。在感染局部的附近血管中采血,可提高阳性率。采血量成人一般5~10ml,婴幼儿1~2ml。 采集的血液标本注入培养瓶中先进行增菌培养,培养基和血液标本量的比例应>10:1,将血液中的各类杀(抑)菌物质充分稀释。需氧菌常用培养基有胰酪蛋白大豆胨肉汤和葡萄糖酚红肉汤等,常加入对氨基苯甲酸(PABA)50μg/ml中和磺胺类,青霉素酶2单位/ml破坏青霉素类,硫酸镁中和链霉素、四环素、土霉素、金霉素、新霉素及多粘菌素等抗生素。加入0.03~0.05%的聚茴香磺酸钠(sodium polyanethol sulfonate, SPS)可抑制血清中的抗菌物质,并对氨基糖苷类和多肽类抗生素有灭活效果。并加入Ⅹ、Ⅴ因子等生长因子。 培养瓶每天观察一次。如发现①培养瓶内液体浑浊;②血球层上面出现颗粒状的生长物,并且有自下而上的溶血;③有明显的凝块;④液体表面有菌膜,培养液清晰或浑浊等,表明有细菌生长。直接进行涂片染色初步报告。同时分别接种血平板、巧克力(色)平板,普通培养和5%CO2 35℃培养。也可直接进行体外药敏试验。无细菌生长迹象的培养瓶孵育至第7d,接种血平板、巧克力(色)平板,分别进行普通培养和5%CO2环境35℃孵育24h。为了提高检出的速度,在培养的第2~3d时应移种一次。 有厌氧菌感染时,同时注入需氧瓶和厌氧瓶,厌氧培养基通常用硫乙醇酸盐培养基、牛心脑浸液肉汤等;培养液中有刃天青,无氧时无色,有氧时呈红色。需氧瓶和厌氧瓶同时浑浊,或需氧瓶无生长而厌氧瓶液体浑浊,提示厌氧菌生长。分别接种血平板和厌氧血平板,置需氧和厌氧环境中,如果都只生长1种细菌,则为兼性厌氧菌;如果仅在厌氧环境中生长,可以直接报告“有厌氧菌检出”。 若长期应用抗细胞壁类抗生素,应考虑细菌L型存在,将血液接种高渗培养基中,分别进行需氧、厌氧和5%CO2环境培养。每周移种2~3次于高渗固体培养基上,观察有无细菌L型菌落生长。 2.呼吸道标本 正常上呼吸道有正常菌群。下呼吸道正常情况下无细菌或仅有少量细菌侵入

临床微生物标本采集注意事项

临床微生物标本采集注意事项一 .血液标本1.血液标本采集应尽可能抽取患者动、静脉血管中血液。 2.血液标本采集自留置管、中心静脉导管内,应在申请检验单上注明。 3.不管临床症状经历的严重程度,但患者血液中病原菌浓度水平相当低,因此临床应多次采集血液标本进行培养,但24h内一般不超过3次,成人每次血量10~20ml,可提高检出率。二 .呼吸道标本1.上呼吸道标本 A.咽拭子:用无菌棉拭子直接擦拭咽后壁、扁桃体、或假膜边缘处。 B.口腔内溃疡:用无菌棉拭子直接在溃疡处采集标本。 C.鼻拭子:用无菌棉拭子插入鼻孔约 2.5cm,接触鼻黏膜采集。 2.下呼吸道标本采集①自然咳痰法:A.患者早上起床后用清水漱口,不要刷牙,收集从下呼吸道咳出的第二口痰,吐在塑料痰盒中。 B.痰量少或无痰的患者可采取雾化吸入10%NaOH水溶液,使痰液易于排出。 C.对于咳痰量少的幼儿,可轻轻压迫胸骨上部的气管,使其咳嗽,待咳嗽后用无菌棉拭子采集标本。②气管镜下采集法:用气管镜在肺炎病灶附近用导管吸引,或者使用支气管刷直接取得标本,但这种方法患者有一定痛苦。三 .尿液标本 1.导尿虽然可以减少污染,但多次重复导尿可造成逆行感染,因此多采用中段尿,简单易行,又无感染的危险。通常取晨起第一次尿送检。 2.女性:成年女性外阴部以肥皂水清洗,再用无菌水洗净,用无菌纱布擦拭,然后排尿弃去前段尿,留取中段尿3毫升,置于无菌容器内。 3.男性:用肥皂水清洗尿

道口,后用清水洗后取中段尿。包皮过长者为防止包皮内细菌污染,可将包皮翻开冲洗后再取中段尿。4.儿童:采集中段尿较困难。如尿中细菌明显增多,高度怀疑尿路感染,无细菌则可否定,细菌数中度增加时,有必要用膀胱穿刺术或导尿采集尿液。 5.为确定菌尿是否来自肾脏,可通过膀胱镜,输尿管插管采集左右肾盂尿。四 .大便标本1.自然排便采集法:自然排便后,可挑取新鲜粪便中有脓血、黏液部分的粪便约2-3克,粘液状大便取絮状物,盛于无菌的容器中或置于保存液中送检。 2.直肠拭子法:适宜不易获得大便或排便困难的患者及幼儿。方法是将拭子前端用无菌甘油盐水湿润,然后插入肛门约4-5cm(幼儿约2-3cm)处,轻轻在直肠内旋转,檫取直肠表面粘液后取出,置于无菌试管或保存液中送检。 3.采集大便标本应在急性期,使用抗生素前进行,并要采集新鲜粪便。五 .生殖道标本 1.男性应冲洗尿道口,采集从尿道口溢出的脓性分泌物或用男性专用拭子插入尿道内2-4厘米取分泌物。 2.前列腺液可用前列腺按摩法采集标本于无菌试管。 3.女性则用窥器扩张阴道,用无菌棉拭子可根据临床需要采集阴道、宫颈、宫内分泌物。六 .脓液及创伤分泌物标本尽可能在应用抗生素前采集标本。当创伤出血时,敷用药物在2小时内以及烧伤在12小时内不应采集标本。采集标本时应注意分泌物的性状、色泽和气味。标本采集需注意无菌操作,及时送检。 1.开放性感染和已破溃的化脓灶标本采集前先用灭菌生理盐水

微生物标本采集 送检及处理原则

微生物标本采集、送检及处理原则 一、标本采集的一般原则: 1、病程早期、急性期或症状典型时,使用抗生素前。 2、无菌采集应无污染,严格进行无菌操作。 3、根据目的菌的特性用不同的方法采集适量标本,采集量不应过少。 4、注意在不同病程采集不同部位标本。 5、采集标本时要防止传播和自身感染。 二、标本的处理: 1、标本保存在4℃环境中,在2h之内送检。脑脊液则要在25 ℃保存,用于细菌培养的标本保存时间不应超过24h。对环境敏感的细菌应保温并立即送检。 2、标本中可能含有致病菌,必须注意安全防护。切勿污染环境。对于烈性传染病标本运送时更要由专人运送,严格按规定包装。 3、厌氧性标本应放在专门的运送瓶或试管内运送,有时可直接用抽取标本的注射器运送。 Ⅰ血液及骨髓标本: 血液标本的细菌培养是诊断菌血症或败血症的基本方法。如从患者血液中检出细菌,一般应视为病原菌。 常见的病原菌主要有金黄色或表皮葡萄球菌、链球菌(A、B群、肺炎链球菌等)、肠球菌、产单核细胞李斯特菌、脑膜炎奈瑟菌、伤

寒及副伤寒沙门菌和厌氧菌等。 1、采血时间及次数 2、抽血部位及抽血量 3、报告方式:培养5d无菌生长者报告“培养5d无菌生长”。 查见细菌报告菌名和药敏结果。 4、菌血症、败血症的诊断标准:1)两次培养均出现同一种细菌(可排除污染); 2)发病星期后血中抗体滴度上升。 Ⅱ脑脊液标本: 脑脊液的细菌学检查对于细菌性脑膜炎的诊断有重要价值。正常人的脑脊液是无菌的,检出细菌提示有细菌性(急性化脓性、结核性等)脑膜炎。 常见的病原菌主要有脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、链球菌(A、B群和肺炎链球菌)、葡萄球菌、产单核细胞李斯特菌、结核分枝杆菌等。 1、涂片检查: (1) 一般细菌涂片检查:例如:革兰阴性、凹面相对的球菌,可能是脑膜炎奈瑟菌;链状排列的革兰阳性球菌;长丝状等多形态性的革兰阴性杆菌,可能是流感嗜血杆菌。 (2)结核分枝杆菌涂片检查 (3)新生隐球菌涂片检查

微生物检验标本的正确采集及注意事项

微生物检验标本的正确采集及注意事项 正确采集临床微生物标本,直接影响到微生物培养鉴定结果。据相关统计:微生物标本的检测误差来源:80%来源于分析前20%来源于分析中和分析后其它检验样本的检测误差来源:45%分析前10%分析中(仪器))45%分析后.检验标本采集质量控制的重要性,分析前的误差来源所占比例的这个数据是惊人的,在我们的大型医院都存在这个问题,而在我们医院应该不会低于这个数据。 可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗,为临床科学用药和成功的感染控制提供依据,是正确、合理使用抗菌药物,延缓细菌耐药,减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步,也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、采集方法 (1)75%酒精清洁局部皮肤。 (2)待皮肤干后,再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒,范围不应小于5cm (直径),且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 (3)皮肤碘酒干后(约1min),穿刺采集血液,采血量成人5-10ml,婴幼儿1-5ml。 (4)采血后立即在床旁接种培养瓶,并迅速轻摇,充分混匀防止凝固,但又不可剧震以防溶血。 2、注意事项 (1)怀疑菌血症应尽早采血,体温上升(38.5℃)采血可提高阳性率,但也要防止因等待而延误时机。 (2)对已经使用抗菌药物,而又不能停药者,应在抗菌药物浓度最低时采集也即在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本,也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 (3)培养基与血液之比以10:1为宜,以稀释血液中的抗生素,抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人,培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。 (4)近年研究表明,将血液注入血培养基前,更换针头反而易导致污染。 (5)每例至少采血两次,间隔0.5-1h,以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 (6)疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人,以肘动脉或股动脉采血为宜,除在发热期采血外,并要多次采血(24h 3-4次)和增加采血量(可增加10ml)。 (7)采血后立即送检,如不能立即送检可置室温,而不能放置冰箱。 (8)如临床表现很似败血症,而血培养多次阴性者,提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、呼吸道 1、痰标本 (1)采集方法 ①清晨起床后用凉开水漱口多次,以除去口腔内大量杂菌,用力咳出肺深部的脓痰,置于清洁干燥容器中或无菌管中送检。 ②痰量极少者可用45℃ 3%-10%的氯化钠溶液约25ml雾化。对于咯痰量少的幼儿,可轻轻压迫胸骨上部的气管,当其咯痰后用无菌棉棒采集标本。

(完整版)临床常见微生物标本的采集与运送

临床常见微生物标本的采集与运送 唐玉英 正确的标本采集,运送,保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要,为了准确检出病原菌,避免漏检与误诊,临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择,采集,运送,保存及处理的一般原则。 一标本采集的一般原则 1.早期采集采集时间最好在病程早期,急性期,且必须在使用抗菌药 物之前采集,确保病原菌的检出。 2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正 常菌群的污染,使病原菌与正常菌群混淆,造成临床误诊。采集的标本 应存放在无菌容器内,容器不能使用消毒剂处理,标本中也不能添加防 腐剂,以免降低病原菌的检出。 3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。 4.适当的采集方法对于厌氧菌,需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不 同的,用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物,室温保存, 不能冷藏和冷冻。 5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌,防漏,应带有螺旋盖的容 器内。 二标本的运送 1.标本采集后立即送检,若有延迟也应在2小时内送到实验室,否则会 影响病原菌的检出,一般性的细菌培养标本若需延迟送检时,应置于4 度冰箱保存,且不能超过24小时。 2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量,少量液体(小于1ml)或组织

(小于1cm3)应在15~30分钟内送到实验室,较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时,厌氧培养标本原则上是床边接种,如延迟送检,需保存在厌氧运送培养基中,室温保存,不得超过24小时。 三不同标本的采集,运送 (一)血液标本采集,运送 1.血培养指针当患者出现:发热(大于38度)或低温(小于36度),寒战,白细胞增多,皮肤黏膜出血,休克,多器官衰竭,血压降低,c反应蛋白升高及呼吸加快,血液病患者出现粒细胞减少,血小板减少等,具备上述一种或几种体征时,临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养,对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前,及时做血培养。 2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者,在考虑使用抗菌药物之前,应立即采集血培养标本。必须同时或间隔短时间内采集2套以上血培养标本。成年患者:推荐同时采集2-3套(不同部位)血培养标本(即双瓶双臂同时采集血培养标本),采血量每瓶不少于5ml;婴幼儿患者:推荐同时采集2次(不同部位)血培养标本,采血量每瓶不少于2ml。(少于病人总血容量的1%).在采取血培养后的2—5天内,无需重复采取血培养。两个例外:细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。 3. 血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。检出率与采血量成比例增长,每增加1ml的血液,病原菌的检出率就会相应增加。儿童患者血液中病原菌浓度较高,血培养量无需等同于成人。采用一对(需氧瓶+厌氧瓶)组合,比采用二个需氧瓶的组合可检出更多的葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌。采血量不能满足推荐的量时,应首先满足需氧瓶的

临床微生物标本和医院环境卫生学监测标本采集培训试题

临床微生物标本和医院环境卫生学监测标本采集培训试题一填空(15分,每空格1分) 1、采集血培养要从不同的部位获得__套血培养,一套血培养包括一个____ _和_____,“双侧双套”是指_______________。 2、从静脉取血不宜从静脉导管或静脉留置口取血,除非怀疑_____;若从导 管取血,必需同时从__取血。 3、尿液标本尽量采集晨起第一次尿,且应在膀胱内停留__小时以上,所以夜间 最好_饮水。尿液培养标本宜立即送检,_小时内接种。 4、抽血培养时的皮肤消毒程序:首先____擦拭静脉穿刺部位30秒,再用__ 30秒或__60秒;最后用__脱碘并待干。 5、婴幼儿采血量不能超过全血量的()不能少于()ML. 6、空气细菌培养(自然沉降法) (1)、采样时间:选择后与进行之前采样。 (2)、采样高度:与地面垂直高度米(洁净手术室等除外)。 (3)、布点方法(洁净手术室除外) (3、1)、室内面积,设一条对角线取三点,即中间一点,两端各距墙1米处各取一点。 (3、2)、室内面积,设两条对角线,于东、西、南、北、中取五点,其中东、西、南、北距墙均1米。 (4)、采样方法及培养时间:用直径普通琼脂平皿放置各采样点,打开后盖面朝__斜扣到底盘,在采样点准确暴露规定时间后盖上平皿盖,及时送检。 (5)、要求标准: (5、1)门诊手术室、美容科手术室、宫腔镜室、介入科、新生儿室、烧伤病房、重症监护病房、血液病病区空气中的细菌菌落总数。 (5、2)儿科病房、母婴同室、妇产科检查室、人流室、注射室、治疗室、换药室、输血科、消毒供应中心、血液透析室、急诊室、化验室、各类普通病室、感染疾病科门诊及其病房等,空气中的细菌菌落总数。 7、物体表面细菌培养 (7、1)、采样时间:在后或有关时进行采样。

病原微生物标本采集、运送

病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确的标本采集,运送,保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要,为了准确检出病原菌,避免漏检与误诊,临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择,采集,运送,保存及处理的一般原则。 一、标本采集的一般原则 1.早期采集 采集时间最好在病程早期,急性期,且必须在使用抗菌药物之前采集,确保病原菌的检出。 2.无菌操作 采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染,使病原菌与正常菌群混淆,造成临床误诊。采集的标本应存放在无菌容器内,容器不能使用消毒剂处理,标本中也不能添加防腐剂,以免降低病原菌的检出。3.适量的标本 标本量过少可能导致假阴性结果。 4.适当的采集方法 对于厌氧菌,需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的,用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物,室温保存,不能冷藏和冷冻。 5.盛放标本的容器 采集标本应存放在无菌,防漏,应带有螺旋盖的容器内。 二、标本的运送 1.标本采集后立即送检,若有延迟也应在2小时内送到实验室,否则会影响病原菌的检出,一般性的细菌培养标本若需延迟送检时,应置于4度冰箱保存,且不能超过24小时。 2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量,少量液体(小于1ml)或组织(小于1cm3)应在15~30分钟内送到实验室,较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时,厌氧培养标本原则上是床边接种,如延迟送检,需保存在厌氧运送培养基中,室温保存,不得超过24小时。 三、不同标本的采集,运送 (一)血液标本采集,运送

1.血培养指针征 当患者出现:发热(大于38度)或低温(小于36度),寒战,白细胞增多,皮肤黏膜出血,休克,多器官衰竭,血压降低,c反应蛋白升高及呼吸加快,血液病患者出现粒细胞减少,血小板减少等,具备上述一种或几种体征时,临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养,对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前,及时做血培养。 2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者,在考虑使用抗菌药物之前,应立即采集血培养标本。必须同时或间隔短时间内采集2套以上血培养标本。成年患者:推荐同时采集2-3套(不同部位)血培养标本(即双瓶双臂同时采集血培养标本),采血量每瓶不少于5ml;婴幼儿患者:推荐同时采集2次(不同部位)血培养标本,采血量每瓶不少于2ml。(少于病人总血容量的1%).在采取血培养后的2—5天内,无需重复采取血培养。两个例外:细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。 3.血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。 检出率与采血量成比例增长,每增加1ml的血液,病原菌的检出率就会相应增加。儿童患者血液中病原菌浓度较高,血培养量无需等同于成人。采用一对(需氧瓶+厌氧瓶)组合,比采用二个需氧瓶的组合可检出更多的葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌。采血量不能满足推荐的量时,应首先满足需氧瓶的需要。 推荐从外周静脉采集血液标本,不推荐静脉留置导管,因其常伴有高污染率。如果必须从留置导管内采血,也应同时从外周静脉采集另外一个血培养标本以帮助阳性结果的判读。 4.血标本采集的注意事项 在采血之前,血培养瓶的橡皮塞需使用75%酒精消毒并干燥。然后再进行穿刺部位的皮肤消毒。严格按照“酒精、含碘消毒剂、酒精”的消毒步骤操作,并等待足够的消毒时间。严格无菌操作,不允许在皮肤消毒后用手接触静脉,除非带有无菌手套.不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头;采集后的血培养瓶应在1小时之内送往实验室,血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏或冷冻。 (二)痰培养标本采集,运送 1.痰培养指征 上呼吸道感染包括咽炎,喉炎,会咽炎等都可采集鼻,鼻咽,口咽拭子标本

标本采集方法及注意事项

临床常用检验标本的采集方法及注意事项 医学检验又称临床检验,是指通过感官观察,试剂反应,仪器分析等,对离体标本如体液,分泌物,排泄物和脱落物进行的检验。它为临床诊断,病情判定,疗效观察,预后评估等提出实验数据。 检验结果的准确与否,与病人采样前的状态,准备,取样方法和标本携带等因素有关。临床护士必须掌握各种检验标本采集的方法,时间,饮食的要求,药物的影响,标本的存放温度及采集标本时的体位等状况。为此,护士要有对病人负责的精神,科学的工作态度,严谨的工作作风,一丝不苟地做好临床标本的采集工作,并根据本地区或本医院所提供的正常参考值及临床表现进行结果判断,为治疗护理提供参考依据。 各种标本采集的注意事项的重要意义 护士承担着大多数标本的采集任务,由于标本的来源,性质,采集方式不同,将直接影响临床检验结果的准确性。因此,护士必须熟悉自己所在单位有关实验室的情况,明确采集标本的要求,以保证标本质量,为临床诊断提供可靠依据。 1 血标本采集方法及注意事项 采血时机:提前向病人讲解抽血化验检查的目的,方法和采集标本的时机,解除病人的恐惧或焦虑,安慰病人,使之处于安定状态,避免因精神-体液变化影响检验的结果。根据检验的不同要求,采血的时间也不同: 空腹抽血适宜作血糖,血脂,肝功能,肾功能,电解质等生化检验。禁食时间约12小时,时间过长易引起低血糖虚脱。 餐后2小时,上午8-9时抽血,可做血液内激素测定及餐后血糖测定。 急性心肌梗死发病后,16-24小时天门冬氨酸氨基转移酶(AST),肌酸激酶(CK)达峰值;30-60小时乳酸脱氢酶(LDH)达峰值,维持3-6d。 急性胰腺炎发作后2-12小时血清淀粉酶开始上升,12-72小时达高峰,4小时左右恢复正常。留取血细菌培养标本时,应在病人体温达38.5度以上时抽取血标本,阳性率较高。 采血部位 动脉采血:常用采血部位股动脉,桡动脉,足背动脉等。由于动脉压力高,危险性较大,故采血后按压穿刺点5-10分钟。 静脉采血:是最常用的采血方法,可选择的表浅静脉多,要求护士必须严格无菌操作,避免感染,可选择较大的静脉穿刺,争取一次操作成功。 毛细血管采血:只需很小量标本,多在手指,足趾或足跟等部位采血,如全血细胞计数,快速血糖,血脂等检验,或婴幼儿。 采血器材:a,注射器,瓶塞,玻璃或塑料试管,防腐剂,抗凝剂,标签等。B,真空采血器:以不同彩色标记各种试管盖,用于不同实验。(我院常用的真空采血管规格及标志) 添加剂:一般分防腐剂和抗凝剂二类。常用抗凝剂有乙二胺四乙酸(EDTA)二甲抗凝,枸橼酸盐,草酸钠(钾)均系与钙作用而抗凝;肝素则抑制凝血酶活性而有抗凝作用,用于血PH,血气,内分泌激素,氨基酸,药物浓度,6-磷酸葡萄糖,染色体等检查。用抗凝试管时,每管的抗凝剂与采血最大量有关,要求与血液充分混匀,不够可致血液凝固。 标本的类型:血标本有三类:即全血,血浆,血清。 全血:用抗凝剂。 血清:不用抗凝剂。常用于多种生化分析,如蛋白质,脂类,无机盐,酶,肝功能,肾功能检查。 血浆:有多种抗凝剂。用于红细胞积数,红细胞比容,血沉,血型鉴定,血红蛋白电泳,交

微生物标本采集大全

微生物标本采集大全 日期:2015-12-17 20:44:38 来源:中华检验医学网点击:21 次 正确采集临床微生物标本,直接影响到微生物培养鉴定结果。可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗,为临床科学用药和成功的感染控制提供依据,是正确、合理使用抗菌药物,延缓细菌耐药,减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步,也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、采集方法 (1)75%酒精清洁局部皮肤。 (2)待皮肤干后,再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒,范围不应小于5cm(直径),且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 (3)皮肤碘酒干后(约1min),穿刺采集血液,采血量成人5-10ml,婴幼儿1-5ml。(4)采血后立即在床旁接种培养瓶,并迅速轻摇,充分混匀防止凝固,但又不可剧震以防溶血。 2、注意事项 (1)怀疑菌血症应尽早采血,体温上升(38.5℃)采血可提高阳性率,但也要防止因等待而延误时机。 (2)对已经使用抗菌药物,而又不能停药者,也应在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本,也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 (3)培养基与血液之比以10:1为宜,以稀释血液中的抗生素,抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人,培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。 (4)近年研究表明,将血液注入血培养基前,更换针头反而易导致污染。 (5)每例至少采血两次,间隔0.5-1h,以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 (6)疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人,以肘动脉或股动脉采血为宜,除在发热期采血外,并要多次采血(24h 3-4次)和增加采血量(可增加10ml)。 (7)采血后立即送检,如不能立即送检可置室温,而不能放置冰箱。 (8)如临床表现很似败血症,而血培养多次阴性者,提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、骨髓的采集

试题微生物标本采集与运送

《微生物标本采集与运送规范》培训试卷科室姓名职业得分 一、单选题50分(每题5分) 1. 微生物实验室误差最大的影响因素为: ( ) A. 实验前误差 B. 实验误差 C 验后误差 D. 随机误差 2. 血培养必须在( )内送检 A. 30min B. 1h C. 2h D. 4h 3 血培养的阳性检出率与( )成正比例的关系 A. 温度和时间 B. 采血量和采血时间 C. 采血量和采血套数 D. 采集方法和采血量 4. 某患者采血培养1套,培养结果为“表皮葡萄球菌”,判断这是污染菌还是致病菌,需要( ) A. 增加消毒次数 B. 增加采血量 C. 增加采血套数 D. 延长培养时间 5. 血培养瓶接种前和接种后,放置的最佳温度为( ) A. 0℃ B. 4℃ C. 室温(15~25℃) D. 35℃ 6. 下呼吸道感染患者最佳的送检标本为( ) A. 痰液 B. 支气管肺泡灌洗液(BALF) C. 咽拭子 D.唾液(口水) 7. 下呼吸道感染患者,除了做痰培养以外,还应该做( ) A. 血培养 B. 咽拭子 C. 厌氧菌 D. 分泌物 8. 下列申请单中标本采集部位不确定,检验目的不明确,属于不合格申请单的是( ) A. 中段尿培养 B. 痰培养 C. 分泌物培养 D. 脑脊液培养 9. 中段尿标本最常见的影响因素是( ) A. 容易受污染 B. 喝水过量 C.喝水过少 D. 无影响 10. 下列尿液标本中适合做厌氧菌培养是( ) A. 清洁中段尿 B. 留置尿管导尿 C. 耻骨上膀胱穿刺 D. 24h尿 二、多选题25分(每题5分) 1. 下列标本类型中, ( )属于有价值的标本,有重要的临床意义,鼓励送检 A. 血液 B. 骨髓 C. 胸腹水 D.脑脊液 E. 关节液 2 常用的拭子标本不适合作为送检标本的原因有( ) A. 使用方便 B. 标本量太少 C. 容易干燥 D. 不易接种到培养基中 E. 木(竹)签中含有抑菌物质 3. 下列关于痰液标本采集和运送的做法正确的有( ) A. 采样前应刷牙(不用牙膏)或用冷开水漱口,以避免口腔正常菌群污染 B. 采取晨痰第一口痰最佳,咳痰时应咳取深部痰液 C. 做结核分支杆菌检查时,痰液量应增加 D. 肺部感染患者中有25%~50%可能会有菌血症,因此应同时做血培养 4. 下列关于血培养标本采集和运送的做法正确的有( ) A. 在使用抗菌药物治疗前采集 B. 如患者已经使用抗菌药物的,应在下次使用抗菌药物之前采集 C. 应在患者寒战开始时,或发热初起时采集 D. 血培养标本应按“套”采集,采集套数为2~3套,不能采集单一瓶数 E. 必须严格执行无菌操作,避免污染,采集后应快送检,如未能及时送检,应放置4℃冰箱保存 5.下列痰培养标本属于不合格标本,应予拒收的有( ) A. 24h内重复采集的痰样本 B. 唾液(口水) C. 咽拭子 D.. 痰液做厌氧菌培养 三、简答题25分 简述微生物样本采样基本原则

【VIP专享】临床微生物标本采集与送检规范(试行)

临床微生物标本采集与送检规范(试行)临床微生物标本采集与送检是目前临床实验室诊断质量保证中 较为薄弱的环节,严重影响临床微生物学实验室对感染样本中致病 菌的分离培养的阳性率和医院感染病原体监控,也影响临床诊断, 合理选用抗菌药物,降低耐药菌的产生和提高感染的治愈率,而且 对预测或及时发现医院感染的暴发流行、杜绝感染蔓延、研究医院 感染的发病机制和环节、制定有效的医院感染控制措施等,均具有 十分重要的意义。严格实施正确的微生物标本送检和检验方法,是 做好医院感染病原体监测的关键。鉴此,希望临床各科能按照本操 作规范采样送检。 一、医院感染标本的采集和运送基本原则 1.发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查,我院总的医院微生物标本送检率应不低于40%。 2.尽量在抗菌药物使用前采集标本。 3.标本采集时应严格执行无菌操作,减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。 4.标本采集后立即送至实验室,床旁接种可提高病原菌检出率。5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子,应立即送检。 6.盛标本容器须经灭菌处理,但不得使用消毒剂。 7.送检标本应注明来源和检验目的,使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境,必要时应注明选用何种抗菌药物。

二、常见医院感染标本送检方法 1.血液与骨髓 ①通常采血部位为肘静脉。疑似细菌性心内膜炎时,以肘动脉或股动脉采血为宜。切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处采取血标本。 ②采血部位的局部皮肤应严格消毒。将采集的血液注入血培养基前,应更换针头或过火消毒针头。血培养瓶应在避光室温中保存,不必 置冰箱保存。 ③每次采血量成人5~10ml,婴幼儿l~5ml,培养基与血液之比以lO:1为宜,以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。 ④怀疑菌血症应尽早采血,体温上升阶段采血可提高阳性率,但要防止因等待而延误时机。对已用抗菌药物而又不能停药者,可在下 次用药前采血。 ⑤每例病人至少采血两次,间隔0.5~lh,以利于提高阳性率和 区分感染菌与皮肤污染菌。 ⑥对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人,在病灶部位或髂前(后)上棘处严格消毒后抽取骨髓lml作增菌培养。 2.尿液 ①中段尿:女性采样前应先用肥皂水或0.1%高锰酸钾溶液冲洗 外阴部及尿道口;男性须翻转包皮冲洗,用O.1%新洁尔灭消毒尿 道口.灭菌纱布擦干后收集标本。 ②导尿管导尿采样可减少污染。对留置导尿者,可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁,用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。或消毒后解开

微生物标本采集及保存要求

微生物标本采集及保存要求 一、总则:用于培养的标本在收集时应注意严格无菌操作和及时送检,检测后标本应妥善保存。 二、临床标本的采集 (一)下呼吸道分泌物(痰液) 令患者早上起床后用清水濑口,不要刷牙,立即从下部呼吸道咳出第一口痰,吐在无菌塑料痰盒中,及时送检。 (二)、尿液(中段尿) 护理人员协助采取中段尿约3ml入无菌试管中,及时送检。 (三)、粪便:取有粘液、脓血部分的粪便置玻璃大便专用管中,如为稀水便,可直接收集于玻璃管中,及时送检。 (四)、眼、耳、鼻、喉拭子:将棉拭子沾取少许无菌生理盐水(如沾取的太多,可在无菌生理盐水瓶壁上挤去多余的水份),然后采取可疑部位的分泌物,倒悬于无菌试管内,及时送检。 (五)、脓液:用沾有生理盐水的棉拭子沾取脓液,要尽量多取一些,然后将棉拭置于无菌试管中,及时送检。 (六)、: 1、凡怀疑菌血症和败血病的患者,采血培养时,应尽量在未使用抗菌素前采血,如已使用抗菌素,应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血,应在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。当然在病人发热或寒颤时采集也可。 2、成人每次采血5—10ml,小儿采血2—3ml; 3、严格消毒病人采血部位和血培养瓶口,抽一定量血液后,无菌注入血培养瓶内,轻轻摇匀, 4、从抽血到接种入瓶,动作要快,防止血液凝固,同时要及时送检。 (七)、穿刺液:胸腹水、心包液、关节腔液、鞘膜积液: 严格无菌抽取后,注入含肝素抗凝的无菌试管中,轻轻颠倒试管10余次,使肝素与穿刺液混匀达到抗凝的目的,或直接无菌注入血培养瓶内及时送检。 (八)、胆汁:由专科医生以无菌方法取引流液10ml注入无菌试管。 (九)、脑脊液:以无菌方法取脑脊液3-5ml,置无菌试管内,常温保存送检,如只做培养可直接无菌注入血培养瓶内,及时送检。 (十)、生殖器官标本:阴道、子宫颈及前列腺等分泌物应由医师采集,收集于无菌试管内送检。如疑为淋病奈瑟菌感染,做培养检查时,采集的标本应床旁接种并及时放入孵箱培养。(十一)、烧伤标本:以无菌棉拭子直接采取多个部位创面的脓汁分泌物放入无菌试管中. (十二)、支原体(解脲、人型)培养+药敏的标本采集 1、支原体对干、热抵抗力差,标本采集后应尽快接种支原体运送培养基送检。 2、男性:用细的无菌棉拭子沾取无菌盐水少许深入尿道口内2.5-3cm。 三、临床标本的保存 细菌室标本原则上要求及时送检、及时处理,不得保存。

血标本采集及注意事项

血标本采集及注意事项 开头: 一直以来我们临床护士能发现关于血液标本的很多问题,经常会接到检验科来电哪个哪个标本需要重新抽取。虽然说标本从抽取到送检到完成检验过程中有很多环节可能造成血液标本问题的出现,但是从我们临床护理本身来讲,我们能做到的就是严格控制我们自身操作来减少不合格标本的产生。这样一来减少我们临床护理反复留取标本带来的工作量,二来减少病人反复穿刺带来的痛苦,甚至减少不必要的沟通隐患。 4. 这是前一时期,我院检验科连续三个月汇总的不合格标本原因分析,大家看溶血、凝血和乳糜血总共占了全部不合格标本的79% ,并且这三种发生的几率也比较接近。还有一小部分的如条码重复打印,信息与申请不符,空管等等。。。 6. 溶血的标本红细胞内容物逸出,导致生化检测有很多项目都异常,从这个实验结果我们可以看出除了LDH 、K+ 、GLU 有轻度的下降外,其他项目均有不同程度的升高,因此,为保证检验结果的准确性,检验科一旦发现标本溶血,是会让我们重新留取标本的。因此,为避免不必要的麻烦,我们在送走标本之前,若发现标本溶血,最好,自己再重新采一次血,那么什么样的标本算溶血标本呢? 7.

溶血分为轻度溶血与重度溶血,轻度溶血表现为:重度溶血表现为:,我们一旦发现标本呈现以上两种的任意一种,就需要重新留取标本了。为了避免标本反复溶血,减轻我们的工作量,我们总结了一些经验,希望能对大家有所帮助。 8. 其中体内的溶血除了患者本身的疾病因素外,例如溶血性疾病(如AB0 溶血)黄疸性疾病、菌血症、DIC 、严重外伤等有一部分是我们操作的原因,我们是可以进行干预的。 9. 使用止血带的目的是为了增加浅表静脉的充盈程度但止血带使用时间达到 1min 后,侧枝循环开放,充盈度开始下降,2min 后,浅表静脉淤血中的红细胞由于无氧代谢的原因会发生老化,脆性增加,发生溶血,同时血液本身的乳酸ph 值等多项生化指标也会出现偏差,影响化验结果。有研究显示使用止血带全程采血且超过1min 组与穿刺成功后即撤除止血带组,无论溶血率还是化验值均有显著性差异。10. 静脉充盈度不够的时候,护士抽血成功率是显著降低的,为此一些护士喜欢在绑好止血带后拍打抽血部位的血管,提高充盈程度,这样做会造成红细胞在血管内的溶血。 11. 负压过大会使血液流动过快,红细胞的动量过大这样制动的冲量也会 过大,在反应时间不变的前提下,红细胞破碎几率增加。举一个例子我们的

临床微生物标本采集与运送

临床微生物标本采集与 运送 LG GROUP system office room 【LGA16H-LGYY-LGUA8Q8-LGA162】

临床微生物标本采集与运送 一、血培养标本采集、运送与报告标准操作规程 一、血培养指征 患者出现寒战,体温超过38℃或低体温,怀疑血流感染时,尤其存在以下情况时,应抽血做细菌和真菌培养:医院内肺炎;留置中心静脉导管超过72 h;感染性心内膜炎;骨髓炎;有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状;临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。 二、采血时机 一旦怀疑有血流感染可能,应立即采血做血培养,最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24 h后,以寒战、发热时采集为宜。 三、采血流程 (一)消毒 1.培养瓶消毒程序:用消毒液消毒培养瓶橡皮塞,待干燥后使用。 2.皮肤消毒程序:用消毒液从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达5 cm 以上,待消毒液挥发干燥后(常需30 s以上)穿刺采血。 (二)静脉穿刺和培养瓶接种 成人用注射器无菌穿刺取血后,排尽针头内空气,直接注入血培养瓶,勿换针头(如果行第二次穿刺或用头皮针取血时,应换针头),先注于厌氧培养瓶,避免注入空气,然后注入需氧培养瓶,轻轻混匀以防血液凝固。近年来,临床普遍采用负压血培养瓶,将血从患者静脉直接吸入血培养瓶,减少污染环节。 (三)注意事项 1.检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。 2.采血部位通常为肘静脉,疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜,切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀疑有导管相关的血流感染,否则不应从留置静脉或动脉导管取血,因为导管易被皮肤正常菌群污染。 3.采血次数:对于成年患者,应该同时分别在两个部位采集血标本,在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。

临床微生物检验标本的正确采集及注意事项.

标本质量的好坏直接影响诊断结果的正误, 不当标本可导致假阴性。假阳性结果的出现。因此正确采集临床微生物标本, 直接影响到微生物培养鉴定结果。可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗,为临床科学用药和成功的感染控制提供依据,是正确、合理使用抗菌药物, 延缓细菌耐药, 减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步, 也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、皮肤消毒程序:a.75%酒精清洁局部皮肤 30s 以上。 b. 待皮肤干后, 再用1%-2.%碘酊作用 30s 或 10%碘伏作用 90s 以上,从穿刺点中心部位向外画圈消毒,范围不应小于 3cm (直径 , 且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 c. 皮肤碘酒干后 (约 1min , 穿刺采集血液, 采血量成人 10-20ml ,婴幼儿 1-2ml 。儿童 3-5ml 。 d. 培养瓶消毒程序:70%酒精擦拭血培养橡皮塞,作用 60s ;用无菌棉签清除橡皮塞表面残余酒精。用注射器无菌采血后立即在床旁接种培养瓶,并迅速轻摇,充分混匀防止凝固,但又不可剧震以防溶血。立即送检,切勿冷藏。一般情况下可把血培养瓶放 20-22℃。不放冰箱。 2、注意事项:a. 怀疑菌血症应尽早采血,体温上升(38.5℃采血可提高阳性率, 但也要防止因等待而延误时机。 b. 对已经使用抗菌药物,而又不能停药者,也应在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本, 也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 c. 培养基与血液之比以 10:1为宜,以稀释血液中的抗生素,抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人, 培养基与采血量之比可为 20:1或大于这个比例。 d. 近年研究表明, 将血液注入血培养基前, 更换针头反而易导致污染。 e. 每例至少采血两次,间隔 0.5-1h , 以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 f. 疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人,以肘动脉或股动脉采血为宜,除在发热期采血外,并要多次采血(24h3-4次和增加采血量(可增加 10ml 。 g 采血后立即送检,如不能立即送检可置室温,而不能放置冰箱。 h 如临床表现很似败血症,而血培养多次阴性者,提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、呼吸道痰标本

血标本采集方法及注意事项

血标本采集方法及注意事项 外科王爽 血标本采集分为静脉血标本和动脉血标本. 静脉血标的采集法 【目的】 1、采全血标本测定血液中某些物质的含量,如肌酐、肌酸、尿素氮,血糖等。 2、采血清标本测定血清酶,电解质、肝功能、脂类等。 3、采血培养标本培养血液中的致病菌。 【用物准备】 基础消毒盘、无菌注射器、采血针、标本容器、止血带、垫巾。 【操作方法】 1、核对床号、姓名等。 2、向病人解释,以取得合作。 3、选择合适静脉,铺垫巾,穿刺处上部约6cm处系止血带,消毒 皮肤。 4、左手拇指绷紧静脉下端皮肤,右手持注射器针头斜面向上,与皮 肤成20℃角进针,刺入静脉,见回血后抽出适量血液。 5、松开止血带,以干棉签置穿刺点处迅速拔出针头,按压局部片刻。 6、根据检查目的不同将标本置于不同容器中。 7、采全血标本时,取下针头,慢慢注入抗凝管中,轻轻转动试管防 止血液凝固

8 、取血清标本时,取下针头,缓慢注入干燥试管中,勿将泡沫 注入;避免震荡,防止红细胞破裂。 9、采血培养标本时,先将密封瓶纸撕开,取血后将取血口棉塞取 出,讯速在酒精灯上火焰上消毒瓶口,将血液注入培养瓶中轻轻摇匀,再将瓶塞在火焰上消毒后塞好。 10、清理用品,标本连同化验单及时送检。 【注意事项】 1、如一次穿刺失败,重新穿刺需要换部位及注射器。 2、需空腹采血时,应提前通知病人。 3、根据检查目的不同选择适宜容器。 4、严禁在输液、输血针头处抽取血标本。 5、如同时抽取不同种类的血标本,应先注入血培养瓶再注入抗凝 管,最后注入干燥试管。 动脉血标本采集法 【目的】 1、动脉血气分析。 2、采血做细菌培养。 【用物准备】 基础消毒盘、0.5ml肝素,5ml注射器、橡胶塞各1个,无菌纱布。【操作方法】 1、查对床号、姓各等。 2、向病人解释,以取得合作。

动脉血标本采集流程及注意事项

动脉血气标本采集流程及注意事项血气分析结果直接影响到对患者呼吸功能及酸碱平衡紊乱的诊断和治疗,因此动脉 采血流程要规范化、标准化。 (一)动脉血气标本采集流程: 一、动脉采血前准备: 1 患者评估和准备:动脉采血前准确核对患者身份,身体状况,评估穿刺部位皮肤及动脉搏动情况。采血前向患者解释动脉采血目的及穿刺方法,减少患者紧张,取得患者配合。 2 采血物品准备:专业安全型动脉采血器一支,碘伏消毒棉签或异丙醇棉球,无菌干棉签或无菌纱布,弯盘等。 二、动脉穿刺部位的选择: 1最常用和首选桡动脉,因为其有丰富的侧支循环,动脉表浅,穿刺方便,易于固定和穿刺后按压止血。其他可选择的部位依次是肱动脉、股动脉、足背动脉。 2 改良案例Allen实验呈阳性。 三、采血: 1 采集动脉血气标本要用专业安全型动脉血气采血器,先把3ML的动脉血气针的针栓推到底然后再拉回到处,让抗凝剂在管壁均匀分布,减少凝血机会。 2 根据患者病情取平卧位或半卧位,手掌向上伸展手臂,腕部外展30度绷紧,手指自然放松。必要时可以使用毛巾卷或小枕头以帮助腕部保持过伸和定位。 3 操作者左手食指、中指,定位桡动脉搏动最明显部位。 4 常规消毒穿刺区皮肤和操作者的食指和中指,消毒区域以穿刺点为中心直径应在5CM以上。 5 以斜刺或直刺方法进行动脉穿刺,见血后固定针头,待动脉血自动充盈针管至位置后拔针。 6 拔针后,局部立即用无菌棉签或纱布按压穿刺部位3-5分钟,股动脉按压10-15分钟以上。松开后立即检查穿刺部位,如未能止血需重复此步骤直至完全止血。 四、采血后要求: 1采血成功后,在按压止血的同时,立即单手启动采血器上的安全卡扣,防止针刺伤的发生。 2将针头旋下换上安全帽,观察标本中有无气泡,如有气泡立即排除。 3把标本垂直颠倒5次,平行揉搓5秒钟以上,保证样本充分抗凝。 五、样本的运输和送检: 以手持方式运送标本,标本应在15分钟内立即送检,不能立即送检的可暂时保存在冰箱冷藏层中,15-30分钟内送检。 ※注意事项: 1 送检时请在《执行项目附加单》背面注明患者采血时间、用氧方式、用氧浓度、体温等患者情况。 2 使用呼吸机者,患者需稳定20-30分钟以后再进行动脉采血。 3 血气针采集过程中或充盈不足时严禁拉动针栓,以免气泡产生。 4 尽量采集血标本,以保证最佳的抗凝效果。 4 为保证离子检测数值的准确性不建议用血气标本检测离子值。 5 确认为动脉血方可送检,如怀疑为静脉血应重采血标本。 6 如动脉血标本采集过程不顺利,应考虑重采血标本。

临床微生物标本采集与运送标准操作规程

3872 h 24 h () 1 25 cm (30 s ) () () () 1 2 3 424 h 330 min 2 5101810 ml 2 ml 1 2 h 临床微生物标本采集与运送标准操作规程 血培养标本采集、运送与报告标准操作规程 一、血培养指征 患者出现寒战,体温超过℃或低体温,怀疑血流感染时,尤其存在以下情况时,应抽血做细菌和真菌培养:医院内肺炎;留置中心静脉导管超过;感染性心内膜炎;骨髓炎;有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状;临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。 二、采血时机 一旦怀疑有血流感染可能,应立即采血做血培养,最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物后,以寒战、发热时采集为宜。 三、采血流程 一消毒 .培养瓶消毒程序:用消毒液消毒培养瓶橡皮塞,待干燥后使用。 .皮肤消毒程序:用消毒液从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达以上,待消毒液挥发干燥后常需以上穿刺采血。二静脉穿刺和培养瓶接种 成人用注射器无菌穿刺取血后,排尽针头内空气,直接注入血培养瓶,勿换针头如果行第二次穿刺或用头皮针取血时,应换针头,先注于厌氧培养瓶,避免注入空气,然后注入需氧培养瓶,轻轻混匀以防血液凝固。近年来,临床普遍采用负压血培养瓶,将血从患者静脉直接吸入血培养瓶,减少污染环节。 三注意事项 .检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。 .采血部位通常为肘静脉,疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜,切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀疑有导管相关的血流感染,否则不应从留置静脉或动脉导管取血,因为导管易被皮肤正常菌群污染。 .采血次数:对于成年患者,应该同时分别在两个部位采集血标本,在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。 .细菌性心内膜炎:在内取血次,每次间隔不少于;必要时次日再做血培养次。 .采血量:以培养基与血液之比:为宜,以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。采血量过少会明显降低阳性率。成人每次每培养瓶采血~,婴幼儿每次每培养瓶采血。 四、运送要求 .所有标本采集后都应立即送往实验室,最好在内。如果不能及

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