鼠类动物的固定(固定器)和灌胃操作说明书

灌胃法

分两步操作（以大小鼠为例）：

（1）固定：（小鼠）右手抓住其尾，放在鼠笼铁纱网上，然后用左手拇指及食指沿其背向前抓住其颈部，并以左手的小拇指和掌部夹住其尾固定在手上；（大鼠）实验者应戴帆布手套，用右手将鼠尾抓住提起，放在粗糙的台面或鼠笼上，抓住鼠尾向后轻拉，左手抓紧两耳和头颈部皮肤，余下三指紧捏鼠背部皮肤，如果大鼠后肢挣扎厉害，可将鼠尾放在小指和无名指之间夹住，将整个鼠固定在左手中；

（2）灌胃：左手固定好动物以后，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口腔插入，压迫鼠的头部，使口腔与食道成一直线,将灌胃针沿咽后壁慢慢插入食道，可感到轻微的阻力，此时可略改变一下灌胃针方向，以刺激引起吞咽动作，顺势将药液注入。一般灌胃针插入小鼠深度为3～4cm，大鼠或豚鼠为4～6cm。常用灌胃量小鼠为0.2～1ml，大鼠1～4ml，豚鼠1～5ml。

图3 大小鼠的灌胃方法

鼠类动物固定方法（固定器）

以大鼠为例（固定小鼠的操作和大鼠一样）：

第一步：准备好固定器

第二步：将固定器和大鼠平放，动物很容易进入固定器

第三步：动物进入固定器以后，将后端盖上

第四步：将前端盖上，以免大鼠往前跑

第五步：将前端盖往后推，锁紧，固定动物完毕。

第六步：大鼠固定后，可进行尾静脉注射、血压测量等

注意事项：

（1）勿将动物垂直放入，否则动物会抓固定器（如下图所示）

（2）固定鼻锥时保证动物舒适，呼吸顺畅，不会大幅度移动；不能使头部向旁侧弯曲，也不能使动物身体紧贴固定器尾部窗口受到挤压；整个过程保证动物舒适、轻松。

实验动物的给药方法

3.4 实验动物的给药方法 3.4.1 经口投药法 (1) 口服法．口服法是将能溶于水并且在水溶液中较稳定的药物放入动物饮水中，不溶于水的药物混于动物饲料内，由动物自行摄入。该方法技术简单，给药时动物接近自然状态，不会引起动物应激反应，适用于多数动物慢性药物干预实验，如抗高血压药物的药效、药物毒性测试等。其缺点是动物饮水和进食过程中，总有部分药物损失，药物摄入量计算不准确，而且由于动物本身状态、饮水量和摄食不同，药物摄入量不易保证，影响药物作用分析的准确性。 (2) 灌服法灌服法是将动物适当固定，强迫动物摄入药物。这种方法能准确把握给药时间和剂量，及时观察动物的反应，适合于急性和慢性动物实验，但经常强制性操作易引起动物不良生理反应，甚至操作不当引起动物死亡。故应熟练掌握该项技术。强制性给药方法主要有两种： ①固体药物口服一人操作时用左手从背部抓住动物头部，同时以拇、食指压迫动物口角部位使其张口，右手用镊子夹住药片放于动物舌根部位，然后让动物闭口吞咽下药物。 ②液体药物灌服小白鼠与大白鼠一般由一人操作，左手捏持小白鼠头、颈、背部皮肤，或握住大白鼠以固定动物，使动物腹部朝向术者，右手将连接注射器的硬质胃管由口角处插入口腔，用胃管将动物头部稍向背侧压迫，使口腔与食管成一直线，将胃管沿上颚壁轻轻插入食道，小白鼠一般用3 cm，大白鼠一般用5 cm的胃管(图3.4-1)。插管时应注意动物反应，如插入顺利，动物安静，呼吸正常，可注入药物；如动物剧烈挣扎或插入有阻力，应拔出胃管重插，如将药物灌入气管，可致动物立即死亡。给家兔灌服时宜用兔固定箱或由两人操作。助手取坐位，用两腿夹住动物腰腹部，左手抓免双耳，右手握持前肢，以固定动物；术者将木制开口器横插入兔口内并压住舌头，将胃管经开口器中央小孔沿上腭壁插入食道约15 cm，将胃管外口置一杯水中，看是否有气泡冒出，检测是否插入气管，确定胃管不在气管后，即可注入药物(图3.4-2)。 3.4.2 注射给药

导致狗狗拉稀罪魁祸首之肠胃炎,狗狗肠胃不好该怎么办

导致狗狗拉稀罪魁祸首之肠胃炎,狗狗肠胃不好该怎么办导致狗狗拉稀罪魁祸首之肠胃炎当狗狗患肠胃炎时，主要表现为： 1.初期，狗狗经常腹卧于凉的地面或以肘及胸骨支于地面后躯高起作“祈祷姿势”，精神沉郁，食欲减少、消化不良，伴有呕吐、拉稀或粪便带有黏液等。 2.后期，病情加重，表现为行走不稳，偶尔排出恶臭血便，体温升高，甚至有流涎、白沫和痉挛，最后会出现严重脱水而危及生命。 1.加强护理是关键：狗狗需安置在温度适宜的地方；待呕吐有所缓解后，适当的喂给糖盐水；腹部施行温敷；多喂无刺激的食物，如流食等。 2.清理肠胃：对于胃肠胀满且拉稀便的狗狗，应禁食，必要时用植物油等缓泻剂清肠。 3.镇定止吐：呕吐会加重对狗狗肠胃的损伤，且会引起狗狗脱水引起其他一系列的并发症。对于严重呕吐者，需给予止吐药物。 4.消炎止泻很重要：通过注射消炎药，或口服止泻药，对症

治疗。 1.合理饲喂，避免饥饱不均。狗狗过度饥饿后，会导致暴食，出现消化不良，更容易出现肠胃炎。 2.加强营养，增强抵抗力。当狗狗抵抗力下降后，其胃肠屏障机能也相应减弱，导致肠道致病菌大量繁殖，最终引起肠胃炎。 3.忌滥用抗生素。抗生素的使用会造成肠道的菌群失调，从而引起二重感染，引发肠胃炎。 4.加强管理。防止爱犬因吃不洁净食物引发肠胃炎。柴犬关于狗拉稀吃什么药这个问题，很多朋友都有一定的经验了，个人经过饲养狗狗也积累了一些关于狗狗的知识，下面和大家分享一下。第一先治疗狗狗食欲的问题。对于拉稀的狗狗，最好先看看它的食欲，如果食欲不好不想吃东西，主人们最好给狗狗吃一些开胃的东西，每次我家的狗狗拉稀没有食欲时，我都会给狗狗吃一些营养膏，保证狗狗能摄入足够的营养。当狗狗拉稀的时候，不要给狗狗和奶粉或者给它吃泡过的狗粮，都会加重狗狗拉稀的情况的，最好让它少吃东西并观察状况。第二在进食观察期间，给狗狗和清水，并观察狗狗的状况如何，还会拉稀吗等。如果狗狗经过禁食之后不拉稀了，那么狗狗之前的拉稀可能就是由于食用不干净的东西造成的，同时也不排

实验1实验动物的捉持法和给药法

实验1 实验动物的捉持法和给药法一、常用实验动物的捉持法 1．蛙和蟾蜍通常以左手握持，用食指和中指夹住左前肢，拇指压住右前肢，右手将下肢拉直，左手用无名指及小指夹住（图1）。图1 蟾蜍捉持法 2．小鼠（1）双手法：右手提鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉鼠尾，使小鼠前肢固定在粗糙面上。迅速用左手拇指和食指捏其双耳间颈背部皮肤，无名指、小指和掌心夹其背部皮肤和尾部，便可将小鼠牢固捉持（图2）。图2 小鼠双手捉持法

（2）单手法：小鼠置于笼盖上，先用左手食指和拇指抓住鼠尾，后手掌尺侧和小指夹住鼠尾，然后左手拇指与食指捏住颈部皮肤（图3）。图3 小鼠单手捉持法 3. 大鼠大鼠容易激怒咬人，捉持时应戴防护手套。先用右手抓住鼠尾，再用左手拇指和食指握住头部，其余手指与掌部握住背部和腹部。注意不要捏其颈部，以防用力过大、过久，窒息死亡。 4．家兔一只手抓住兔颈背部皮肤，将兔轻轻提起，另一只手托住臀部，使兔呈蹲坐姿势（图4）。切不可用手握持双耳提起兔子。图4 家兔捉持法 5．豚鼠豚鼠性情温和，不咬人，用手轻轻握住身体即可抓起。

6. 猫应戴好防护手套。轻声呼唤，慢慢将手伸入猫笼，轻抚猫头、颈和背部，一只手抓住颈背部皮肤，另一只手抓住腰背部。性情凶暴的猫可用布袋或网套捉持，操作中应防其利爪和牙齿伤人。 7. 狗驯服的狗可戴上特制嘴套，用绳带固定于耳后颈部；凶暴的狗可用长柄捕狗夹钳住狗的颈部，然后套上嘴套。狗嘴也可用绳带固定，操作时先将绳带绕过狗嘴的下颌打结，再绕到颈后部打结，以防绳带滑落。狗麻醉后四肢固定于手术台上，取下嘴套或绳带，将一金属棒经两侧嘴角，穿过口腔压于舌上，再用绳带绕过金属棒绑缚狗嘴，并固定于手术台上。应将狗舌拉出口腔，以防窒息。二、常用实验动物给药法 1. 经口给药法此法有口服与灌胃两种方法。适用于小鼠、大鼠、豚鼠、兔、犬等动物。口服法可将药物放入饲料或溶于饮水中令动物自由摄取。若为保证剂量准确，可应用灌胃法。（1）灌胃法小鼠：左手捉持小鼠，腹部朝上，右手持灌胃管经口角插入口腔，使灌胃管与食管成一直线，再沿上颚壁缓慢插入食管，稍感有阻力时(大约灌胃管插入1／2)，如动物安静，呼吸无异常，即可注入药液。如遇阻力应抽出灌胃管重新插入，若药液误注气管，小鼠可立即死亡。一次灌注药量0.1－0.3ml／10g体重。操作宜轻柔，防止损伤食管（图5）。灌胃管可用粗大的注射针头制作，磨钝针尖制成，管长4-5cm，直径1mm，连接于1-2ml 注射器上即成。图5 小鼠灌胃法

人和动物给药剂量换算

请注意最后一行，这个就是我们通常用到的。把人的临床剂量转换为实验动物的剂量。试着换算一个。如：人的临床剂量为X mg/kg , 换算成大鼠的剂量：大鼠的剂量＝X mg/kg×70kg×200g＝X mg/kg×70kg×0.2kg＝X mg/kg. 这也就是说，按单位体重的剂量来算，大鼠的等效剂量相当于人的倍。在这里，我们要看到每种动物的体重（包括人），在上表中以蓝色显示的。还要注意到折算系数，也就是表中以红色所示的。将人的剂量转换成哪种动物的，就在相应的动物那一列下找到与人的相交的地方的折算系数，将剂量乘以折算系数，再乘上人的体重与那种动物体重的比值。注意体重的单位要化成一致。这个折算系数是以上表中蓝色所示的标准体重计算得来的。依此类推，我们可以算出小鼠、豚鼠等其它动物剂量与人的比值。各常用实验动物折算系数的验证如下：小鼠体型系数：标准体重：20g=0.02kg 小鼠的折算系数＝（体型系数小鼠*W小鼠2/3）/（体型系数人*W人2/3）＝（* 2/3 ）/*70 2/3）* 70*X / ＝＝大鼠体型系数：标准体重：200g=0.2kg 大鼠的折算系数＝（体型系数大鼠*W大鼠2/3）/（体型系数人*W人2/3）＝（* 2/3 ）/*70 2/3）* 70*X /

＝＝豚鼠体型系数：标准体重：400g=0.4kg 豚鼠的折算系数＝（体型系数豚鼠*W豚鼠2/3）/（体型系数人*W人2/3）＝（* 2/3 ）/*70 2/3）* 70*X / ＝＝兔体型系数：标准体重：1.5kg 兔的折算系数＝（体型系数兔*W兔2/3）/（体型系数人*W人2/3）＝（* 2/3 ）/*70 2/3）＝＝猫体型系数：标准体重：2.0kg 猫的折算系数＝（体型系数猫*W猫2/3）/（体型系数人*W人2/3）＝（* 2/3 ）/*70 2/3）＝＝狗体型系数：标准体重：12kg 狗的折算系数＝（体型系数狗*W狗2/3）/（体型系数人*W人2/3）＝（*12 2/3 ）/*70 2/3）＝

猫咪肠胃炎用药的一些简介

猫咪肠胃炎用药的一些简介导读：在肠道感染中９９％都是由杆菌引起的，对付杆菌最好的选择是硫磺庆大霉素、卡那霉素等药。其中由于庆大霉素的分子量比较大，口服不会被内脏吸收，是猫咪处理肠道炎症的首选药物。猫咪的肠胃炎是很常见的猫咪疾病，表现为：呕吐、拉稀和精神不阵。最常见的原因是由于消化不良引起的，在用药上要注意以下几点—— 1、调节消化系统建议用药：乳酶生、多酶片、乳酸菌片、动物用咪可乐、丽珠肠乐、整肠生等活菌类药物。帮助猫咪调节消化道菌群。 2、消炎调节消化系统三天没有大的作用可以考虑为猫咪消除肠道炎症。这里有一个消炎药选择的问题：在肠道感染中99%都是由杆菌引起的，对付杆菌最好的选择是硫磺庆大霉素、卡那霉素等药。其中由于庆大霉素的分子量比较大，口服不会被内脏吸收，是猫咪处理肠道炎症的首选药物。需要注意的是，在服用消炎类药物半个小时后，需要给猫咪喂些活菌类的助消化药，如乳酶生、妈咪爱等，帮助猫咪恢复消化能力。猫猫肠胃炎治疗幼猫比较容易得肠胃炎，因为幼猫的胃很浅，又不太会控制食量，再加上主人喂食不当，很容易造成肠胃炎。主要症状有腹泻（稀便便为黄褐色）、呕吐（吐出物黄色或绿色）、发热等。治疗方法：皮下注射安苄西林钠0.5ML（幼猫）或0.7-0.8ML（成猫），第二次注射的剂量应该比第一次稍小；口服乳酶生，一天两次，一次三至四片，如果有呕吐的话再口服胃复安一片，一天两次；或者皮下注射胃复安，第一次半支，第二天再注射一支，分上、下午两次打完。在注射过安苄西林钠之后，一般第二天就有好转。治疗期间应该停食但不断水，可在水中增加一点点盐，以防脱水。如果有食欲的话，幼猫可以喂婴儿米粉来调理肠胃，象牛奶和蛋黄这样的食物是绝对不能给猫吃的。

胃蛋白酶原二项检测的临床意义

胃蛋白酶原二项检测的临床意义临床检验科胃蛋白酶原（PG）是由胃粘膜分泌的胃蛋白酶的无活性前体，属于门冬氨酸蛋白酶家族，人胃粘膜有7组胃蛋白酶原同工酶原，按其生化性质和免疫原性不同，可分为两个亚群，即胃蛋白酶原I（PGI，1～5组）和胃蛋白酶原II（PGII，6～7组）。 PGI主要由胃底腺细胞分泌；PGII除由胃底腺细胞分泌外，贲门腺细胞、幽门腺细胞、十二指肠上段的Brunner腺也可分泌PGII。胃几乎是PG的唯一来源，且没有日内变化和季节变化，不受饮食影响，个体有较稳定的值。血清PGI和PGII反映了胃粘膜不同部位的分泌功能，胃液和血液PG水平与活组织病理变化结果常一致。 PG主要用于胃粘膜萎缩和胃癌高风险性筛查，以PGI结果及PGI/ PGII比值降低作为阳性度界限判断标准；通常情况下，PGI结果及PGI/ PGII比值升高为胃粘膜受攻击时的反应。一、参考区间 PGI: 70～200ng/mL PGII: <25 ng/mL PGI/ PGII: >3 二、PG阳性度是预警早期胃癌的重要指标胃粘膜萎缩同胃早期癌变高度正相关。正常体检人群有15%PG阳性。表1 血清PG结果及判断

三、PG结果解释及建议 1. 大批体检时，近70% PGI结果在40～70ng/mL范围内，而90%以上PGI/ PGII>3。这是因为国人绝大多数有慢性浅表性胃炎，属正常生理性胃酸分泌不足。 2. PG阳性仅代表胃癌风险，不一定是胃癌。PG适用于体检，代替X光及B 超筛查早期胃癌，意义不在诊断，而在于早发现早预防。正常体检人群有15% PG 阳性，当年无胃癌者，经追踪五年后胃癌发病率仅2%左右。 3. PG检测结果应综合分析，PGI/ PGII比值很重要。因胃粘膜分泌PGI受炎症攻击时，分泌变动幅度很大（70～800ng/mL），PGII分泌相对恒定。当 PGI<70ng/mL时，PGI/ PGII >3，根据PGI增高程度确定胃病种类，必须结合临床分析；PGI/ PGII<3时，建议胃镜检查或病理确证（见表2）。

实验动物地给药方法

实验动物的给药方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起的变化，常需要将药物注入动物体内。给药的途径和方法多种多样，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型、剂量等情况确定。（一）注射给药法 1. 皮下注射注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射。 ①小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部； ②豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位； ③兔在背部或耳根部注射； ④蛙可在脊背部淋巴囊注射； ⑤狗多在大腿外侧注射，拔针时，轻按针孔片刻，防药液逸出。 2. 皮内注射此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应。如将一定量的放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一。方法是：将动物注射部位的毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液。注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。 3. 肌肉注射当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时，常采用肌肉注射。肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位，多选臀部。注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可注射。给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射。 4. 腹腔注射先将动物固定，腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约0.5厘米，再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。此法大小鼠用的较多。 5. 静脉注射

是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液分布全身，迅速奏效。但排泄较快，作用时间较短。 ①小鼠、大鼠的静脉注射：常采用尾静脉注射。鼠尾静脉共有3根，左右两侧和背侧各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。操作时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替)，用75％酒精棉球反复擦试使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，注射时针头尽量采取与尾部平行的角度进针。开始注射时宜少量缓注，如无阻力，表示针头已进入静脉，这时用左手指将针和尾一起固定起来，解除对尾根部的压迫后，便可进行注射。如有白色皮丘出现，说明未穿刺入血管，应重新向尾部方向移动针头再次穿刺。注射完毕后把尾部向注射侧弯曲以止血。如需反复注射，尽量从尾的末端开始。一次的注射量为每10g体重0.1～0.2ml。 ②豚鼠的静脉注射：一般采用前肢皮下头静脉。鼠的静脉管壁较脆，注射时应特别注意。 ③兔的静脉注射：一般采用外耳缘静脉，因其表浅易固定。注射部位除毛，用75％的酒精消毒，手指轻弹兔耳，使静脉充盈，左手食指和中指夹住静脉的近心端，拇指绷紧静脉的远心端，无名指及小指垫在下面，右手持注射器，尽量从静脉的远端刺入血管，移动拇指于针头上以固定，放开食、中指，将药液注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻以止血。 ④狗的静脉注射：狗的静脉注射多采用前肢外侧静脉或后肢外侧的小隐静脉。注射部位除毛后，在静脉血管的近心端用橡皮带扎紧，使血管充盈，从静脉的远心端将注射针头平行血管刺入，回抽注射器针栓，如有回血，即可放开像皮带，将药液缓缓注入。 6. 淋巴囊注射蛙类常采用此法，其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收。腹部淋巴囊和头部淋巴囊常作为蛙类给药途径。一般多选用腹部淋巴囊给药。注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液。（二）经口给药法 1. 口服法：

肠胃炎的注意事项

胃肠炎的调理一、饮食方面要做到下面几点： 1.少吃油炸食物：因为这类食物不容易消化，会加重消化道负担，多吃会引起消化不良，还会使血脂增高，对健康不利。 2.少吃腌制食物：这些食物中含有较多的盐分及某些可致癌物，不宜多吃。 3.少吃生冷食物刺激性食物：！生冷和刺激性强的食物对消化道黏膜具有较强的刺激作用，容易引起腹泻或消化道炎症。 4.规律饮食：研究表明，有规律地进餐，定时定量，可形成条件反射，有助于消化腺的分泌，更利于消化。 5.定时定量：要做到每餐食量适度，每日3餐定时，到了规定时间，不管肚子饿不饿，都应主动进食，避免过饥或过饱。 6.温度适宜：饮食的温度应以“不烫不凉”为度。 7.细嚼慢咽：以减轻胃肠负担。对食物充分咀嚼次数愈多，随之分泌的唾液也愈多，对胃黏膜有保护作用。 8.饮水择时：最佳的饮水时间是晨起空腹时及每次进餐前1小时，餐后立即饮水会稀释胃液，用汤泡饭也会影响食物的消化。 9.注意防寒：胃部受凉后会使胃的功能受损，故要注意胃部保暖不要受寒。 10.避免刺激：不吸烟，因为吸烟使胃部血管收缩，影响胃壁细胞的血液供应，使胃黏膜抵抗力降低而诱发胃病。应少饮酒，少吃辣椒、胡椒等辛辣食物。 11.补充维生素C：维生素C对胃有保护作用，胃液中保持正常的维生素C的含量，能有效发挥胃的功能，保护胃部和增强胃的抗病能力。因此，要多吃富含维生素C的蔬菜和水果。 12.含有维生素C的食物樱桃番石榴红椒黄椒柿子青花菜草莓橘子芥蓝菜花猕猴桃拓展：有些营养素和维生素C搭配可以互相补充，对身体的良好影响大大加强 1.维生素E、β胡萝卜素和维生素C同被列为强力抗酸化的维生素E，可以预防体内酸化、皮肤病和不当生活习惯引起的慢性疾病，如高血压等，用维生素E、β胡萝卜素再搭配上维生素C，更能提高效果。富含维生素E的食物：卷心菜、胡萝卜、茄子、鸡肝、葵花籽等。富含β胡萝卜素的食物：油菜、荠菜、苋菜、胡萝卜、花椰菜、甘薯、南瓜、黄玉米等。

常用实验动物的给药途径和方法

常用实验动物的给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态的变化，常需将药物注入动物体内。由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。一经口给药法 (一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法。 1、白鼠灌胃法：抓起小鼠，以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指和掌心夹注尾巴，使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。灌胃量0.2～0.5ml/10g。胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。 2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。灌胃量10～20ml/kg 3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。 4、猪的胃内灌注法：给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10－12号的导尿管，F14号以上的导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃的灌胃方法。具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。此种操作较为简便。 5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后插入食管。不要象其它动物灌胃时插的太深，如动物不挣扎，插针头又很顺利，即可将药液经口或食管上端罐入胃内。罐入速度要慢。

一例犬胃肠炎的诊断与治疗(1)

犬胃肠炎的诊断与治疗保定职业技术学院班级：兽医1413 学号：02 姓名：马嘉

【摘要】胃肠道炎症严重时会发生呕吐、脱水和腹泻等症状。该病犬表现为精神抑郁，呕吐，腹泻，脱水，同时，我们要区分犬瘟热、犬细小与犬胃肠炎，这三种病的症状都是差不多，我们可以根据犬瘟热、犬细小测试板来排除，根据流行病学调查、临床症状和实验室诊断确诊为犬胃肠炎。治疗时主要是以保护胃肠黏膜、补充能量、维护心脏机能、调节酸碱与水盐代谢。【关键词】犬；胃肠炎；诊断；治疗引言随着人们生活水平的不断提高，饲养宠物的人也越来越多，但往往由于存在饲养管理方面的疏忽，一些疾病难免会发生，尤以消化系统最为多见。胃肠炎即是宠物的常见疾病之一，可发生于各种宠物。犬胃肠炎是胃肠表层黏膜及其深层组织的重剧炎症过程，是犬多发病之一。

一、临床介绍 2013年4月，我们医院收治了一只小比熊犬，性别是公，4个月大，体重2.5千克，根据症状、免疫史，结合实验室检查以及犬瘟、细小的抗原性测试板显示，于是制定了相应的临床治疗病案予以处理，4天后，病犬痊愈。

二、诊断方法： 1、以胃炎为主的病犬表现精神沉郁、呕吐和腹痛等症状，初期吐出的主要是食糜，以后则为泡沫样粘，液和胃液。以肠炎为主的症状在病初即可见到，粪便呈现，液体样，具有恶臭，后期常混有粘液、血液和泡沫等，病犬有轻微或中等发热表现，若继发感染时体温有，的可达39.0~39.5℃以上，随着病情的发展，病犬可出，现脱水和酸中毒等症状。 2、试纸快速诊断。使用犬细小病毒抗原检测结果为阴性，使用犬瘟病毒抗原性检测结果为阴性。此法经济简便、快速适用，有极高的准确率,为犬细小病毒，犬瘟热病毒的快速诊断提供了极为便利的条件犬细小病毒病的试剂盒诊断：将病犬的粪便与稀释液混匀加入试纸板的小孔中，等待数分钟后显双线（C线，T线）结果为阳性，显单线（C线）结果为阴性。犬瘟热的试剂盒诊断：将病犬的眼泪、鼻液、口腔粘液、再加该宠物的一滴血液与稀释液混匀加入试纸板的小孔中，等待数分钟后显双线（C线，T线）结果为阳性，显单线（C线）结果为阴性。三、防治措施；食饵疗法，一般需要给患犬禁食24小时，只给少量饮水．之后可喂给糖盐米汤（即每100毫升米汤加入食盐1克，多种维生素葡萄糖10克）或饲喂高糖低脂低蛋白，易消化的流质食物，数天后，患犬可逐步恢复正常饮食。镇静止吐．清理胃肠，当病犬呕吐严重、有脱水危险时应给予镇静止呕，可使用盐酸氯丙嗪或硫酸阿托品进行肌肉注射。清理胃肠，可适当应用缓泻剂如硫酸钠人工盐等适量内服。消炎止泻可选用胃肠道抗菌消炎药物，对于非细菌性肠炎，当积粪已基本排除，粪便已无酸臭味，但仍剧泻不止的病犬，应给以收敛药物加以止泻，如活性炭0.5~2.0克、鞣酸蛋白0.5~2.0克、次硝酸铋0.3~1.0克内服。补充体液纠正酸碱平衡，由于呕吐和腹泻，机体容易脱水，需要通过饮用，静脉输液、灌服或补充水分和电解质。如5％葡萄糖氯化钠等渗溶液，静脉注射，如果加入适量维生素B1维生素C可以加快机体的恢复。静脉输液速度应掌握，大犬每分钟90滴，小型犬每分钟50滴，待症状改善后，改成减半速度输注，为了防止内毒素血症。严重胃肠炎病犬静脉输液时，液体中可加入盐酸地塞米松0.5~1.0毫克／千克体重，每天1~2次。病犬呕吐和腹泻停止后，可以喂给少量的易消化吸收或低过敏性的食物，每天喂食2~3次，做到少喂多餐，减少食物中的粗纤维及蛋白质的含量，给予，刺激性小，适口性好易消化营养价值高的食物，在食物中可适当补充B族维生素，再经过3~5天，才能给予正常的饮食。四、治疗

实验动物的给药途径和方法及药量计算方法

K2MG-E《专业技术人员绩效管理与业务能力提升》练习与答案一．经口给药法 (一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的·种常用给药法。 1．鼠类：鼠类的灌胃器由特殊的灌胃针构成。左手固定鼠，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的右U角中，插入口中，沿咽后壁慢慢插入食道，使其前端到达膈肌位置，灌胃針插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，以免损伤、穿破食道或误入气管。 2．兔、犬等：灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间。然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。 (二)口服法口服给药是把药物混入饲料或溶干饮水中让动物自由摄取。此法优点是简单方便，缺点是剂量不能保证准确，且动物个体间服药量差异较大。大动物在给予片剂、丸剂、胶囊剂时，可将药物用镊子或手指送到舌根部，迅速关闭口腔，将头部稍稍抬高，使其自然吞咽。二、注射给药法 (一)皮下注射皮卜注射一般选取皮下组织疏松的部位，大鼠、小鼠和豚鼠可在颈后肩胛问、腹部两侧作皮下注射；家兔可在背部或耳根部作皮卜注射；猫、犬则在大腿外侧作皮下注射。皮下注射用左手拇指和食指轻轻提起动物皮肤，

右手持注射器，使针头水平刺入皮下。推送药液时注射部位隆起。拨针时，以手指捏住针刺部位，可防止药液外漏。 (二)肌肉注射肌肉注射一般选肌肉发达，无大血管通过的部位。大鼠、小鼠、豚鼠可注射大腿外侧肌肉；家兔可在腰椎旁的肌肉、臀部或股部肌肉注射；犬等大型动物选臀部注射。注射时针头宜斜刺迅速人肌肉，回抽针栓如无回血，即可注射。 (三)腹腔注射给大鼠、小鼠进行腹腔注射时，以左手固定动物，使腹部向上，为避免伤及内脏，应尽量使动物头处于低位，使内脏移向上腹，右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前，再将注射器沿45角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。免、犬等动物腹腔注射时，可由助手固定动物，使其腹部朝上，实验者即可进行操作。注射位置为：家兔下腹部近腹白线左右两侧1cm处，犬脐后腹白线两侧边1—2cm处进行腹腔注射。 (四)静脉注射 1、大鼠和小鼠：常采用尾静脉注射。注射时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内，尾部用45—50℃的温水浸润几分钟或用75％酒精棉球反复擦拭使血管扩张，并使表皮角质软化。以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，用中指从下面托起鼠，右手持注射器，使针头尽量采取与尾部平行的角度进针，从尾末端处刺入，注入药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，注射后把尾部向注射侧弯曲，或拔针后随即以干棉球按住注射部位以止血。 2、豚鼠：可采用前肢皮下头静脉、后肢小隐静脉注射或耳缘静脉注射。

实验动物的给药方法

实验动物地给药方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起地变化，常需要将药物注入动物体内.给药地途径和方法多种多样，可根据实验目地、实验动物种类和药物剂型、剂量等情况确定. （一）注射给药法 . 皮下注射注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射. ①小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部； ②豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少地部位； ③兔在背部或耳根部注射； ④蛙可在脊背部淋巴囊注射； ⑤狗多在大腿外侧注射，拔针时，轻按针孔片刻，防药液逸出. . 皮内注射此法用于观察皮肤血管地通透性变化或观察皮内反应. 如将一定量地放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一. 方法是：将动物注射部位地毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液.注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘. . 肌肉注射当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中地药物时，常采用肌肉注射.肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过地部位，多选臀部. 注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可注射.给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射. . 腹腔注射先将动物固定，腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约厘米，再使针头与皮肤呈度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液.此法大小鼠用地较多. . 静脉注射

是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液分布全身，迅速奏效.但排泄较快，作用时间较短. ①小鼠、大鼠地静脉注射：常采用尾静脉注射.鼠尾静脉共有根，左右两侧和背侧各根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用.操作时，先将动物固定在暴露尾部地固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替)，用％酒精棉球反复擦试使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，注射时针头尽量采取与尾部平行地角度进针.开始注射时宜少量缓注，如无阻力，表示针头已进入静脉，这时用左手指将针和尾一起固定起来，解除对尾根部地压迫后，便可进行注射.如有白色皮丘出现，说明未穿刺入血管，应重新向尾部方向移动针头再次穿刺.注射完毕后把尾部向注射侧弯曲以止血.如需反复注射，尽量从尾地末端开始.一次地注射量为每体重～. ②豚鼠地静脉注射：一般采用前肢皮下头静脉.鼠地静脉管壁较脆，注射时应特别注意. ③兔地静脉注射：一般采用外耳缘静脉，因其表浅易固定.注射部位除毛，用％地酒精消毒，手指轻弹兔耳，使静脉充盈，左手食指和中指夹住静脉地近心端，拇指绷紧静脉地远心端，无名指及小指垫在下面，右手持注射器，尽量从静脉地远端刺入血管，移动拇指于针头上以固定，放开食、中指，将药液注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻以止血. ④狗地静脉注射：狗地静脉注射多采用前肢外侧静脉或后肢外侧地小隐静脉.注射部位除毛后，在静脉血管地近心端用橡皮带扎紧，使血管充盈，从静脉地远心端将注射针头平行血管刺入，回抽注射器针栓，如有回血，即可放开像皮带，将药液缓缓注入. . 淋巴囊注射蛙类常采用此法，其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收.腹部淋巴囊和头部淋巴囊常作为蛙类给药途径.一般多选用腹部淋巴囊给药.注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液. （二）经口给药法 . 口服法：

实验动物的给药方法

实验动物得给药方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起得变化，常需要将药物注入动物体内。给药得途径与方法多种多样，可根据实验目得、实验动物种类与药物剂型、剂量等情况确定。（一）注射给药法 1、皮下注射注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射。 ①小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部； ②豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少得部位； ③兔在背部或耳根部注射； ④蛙可在脊背部淋巴囊注射； ⑤狗多在大腿外侧注射，拔针时，轻按针孔片刻，防药液逸出。 2、皮内注射此法用于观察皮肤血管得通透性变化或观察皮内反应。如将一定量得放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内，观察其消失速度与局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一。方法就是：将动物注射部位得毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液。注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。 3、肌肉注射当给动物注射不溶于水而混悬于油或其她溶剂中得药物时，常采用肌肉注射。肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过得部位，多选臀部。注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可注射。给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射。 4、腹腔注射先将动物固定，腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约0、5厘米，再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。此法大小鼠用得较多。 5、静脉注射

就是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液分布全身，迅速奏效。但排泄较快，作用时间较短。 ①小鼠、大鼠得静脉注射：常采用尾静脉注射。鼠尾静脉共有3根，左右两侧与背侧各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。操作时，先将动物固定在暴露尾部得固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替)，用75％酒精棉球反复擦试使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指与食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，注射时针头尽量采取与尾部平行得角度进针。开始注射时宜少量缓注，如无阻力，表示针头已进入静脉，这时用左手指将针与尾一起固定起来，解除对尾根部得压迫后，便可进行注射。如有白色皮丘出现，说明未穿刺入血管，应重新向尾部方向移动针头再次穿刺。注射完毕后把尾部向注射侧弯曲以止血。如需反复注射，尽量从尾得末端开始。一次得注射量为每10g体重0、1～0、2ml。 ②豚鼠得静脉注射：一般采用前肢皮下头静脉。鼠得静脉管壁较脆，注射时应特别注意。 ③兔得静脉注射：一般采用外耳缘静脉，因其表浅易固定。注射部位除毛，用75％得酒精消毒，手指轻弹兔耳，使静脉充盈，左手食指与中指夹住静脉得近心端，拇指绷紧静脉得远心端，无名指及小指垫在下面，右手持注射器，尽量从静脉得远端刺入血管，移动拇指于针头上以固定，放开食、中指，将药液注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻以止血。 ④狗得静脉注射：狗得静脉注射多采用前肢外侧静脉或后肢外侧得小隐静脉。注射部位除毛后，在静脉血管得近心端用橡皮带扎紧，使血管充盈，从静脉得远心端将注射针头平行血管刺入，回抽注射器针栓，如有回血，即可放开像皮带，将药液缓缓注入。 6、淋巴囊注射蛙类常采用此法，其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收。腹部淋巴囊与头部淋巴囊常作为蛙类给药途径。一般多选用腹部淋巴囊给药。注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液。（二）经口给药法 1、口服法：

胃蛋白酶原III在普查中的意义

胃蛋白酶原I，II在早期胃癌普查中的意义胃蛋白酶原I，II在早期胃癌普查中的意义? ? ? 陈智周范振符? 中国协和医科大学? 肿瘤学院? 中国医学科学院? 肿瘤研究所? 北京 ?

幽门螺杆菌(Helicobacter Pylori，HP)感染和萎缩性胃炎是与胃癌密切相关的两种病变，HP感染是萎缩性胃炎的主要病因之一，而萎缩性胃炎已被普遍认为是胃癌的癌前病变．在由HP感染---萎缩性胃炎---胃癌的发展连锁中，均伴随着胃蛋白酶原(PG)的变化，而且后者已成为前面三种病变的良好诊断指标,以及治疗和预防干预过程中的监测指标。利用血清胃蛋白酶原的测定进行胃癌早期诊断的普查以及胃癌的预防干预计划已在日本，芬兰，挪威等国家实行，日本在“老年保健法”的指导下开展了“日本胃癌检测计划”，利用PGI，II，在大面积的人群普查中使胃癌的早诊率提高到了90％。我国也是胃癌高发的国家之一，胃癌的大面积普查应当摆在重要的地位。鉴于HP感染，萎缩性胃炎，胃癌三者的密切关系，我们要进行胃癌的普查，首先必须了解胃蛋白酶原在HP感染和萎缩性胃炎时的变化规律．人的胃粘膜主要含有两种门冬氨酸蛋白酶，胃蛋白酶原-I(pepsinogen-I，PGA，PGI)和胃蛋白酶原 -II(pepsinogen-II，PGC，PG-II)，为分子量42，000Da的单链肽链，它由胃主细胞合成和分泌并转化成有分解蛋白能力的胃蛋白酶(pepsin)。一．PGI、PGII与HP感染的关系． HP感染已被普遍认为是慢性萎缩性胃炎的病因，其组织病理特点为急性，慢性炎症和腺体萎缩，它和胃癌的发生有很强的相关性，血清HP阳性者在1-24年中发生胃癌的危险性比阴性者高三倍(Parsonnet l991)。HP胃炎经多年后可发展成萎缩性胃炎，据某些作者估计，有60％的胃癌可归因于原始的HP感染；若早期HP感染得到控制胃癌的发生可以避免。HP感染显着的影响血清PG水平，起初是PGI，PGll均升高，PGI／PGII下降。0derda(1989)观察到血清HP阳性的儿童胃溃疡患者的血清PGI和抗HPlgG升高,PG1指标的灵敏度，特异度均为87％．Karnes(1991)检测了血清HP阳性的萎缩性胃体炎患者，发现PGII升高，PGI／PGII显着下降．1997 年Takahisa F(1)以血清PG在HP根治前后的变化作为新方法来判别根治的成功与否。将根治前的血清PGI／PGII比值分为三个等级，PGI／PGII 小于3，PG1／PGII在3-5之间，PGI／PGII不小于5; 根治的界值对上述三组分别为，根治后PGI/PGII上升40％，25％，10％．此界值诊断HP根治的灵敏度，特异度，及正确度分别为100％, ％，和％，此界值对处于胃溃疡或十二指肠溃疡状态的患者均可适用。血清PG被认为是胃癌危险度和胃粘膜状态的指征, Kikuchi S. (2)研究了长时间HP 感染及其感染灶的大小对血清PG的影响，观察了2584例，时段为1989—1996，从1996年的PG1／PGII减去1989年的PGI／PGII被定为δPGI／PGII，实验观察了HP阳性对δPGI／PGII的影响．结果发现，在HP阳性组δPGI

小型实验动物灌胃给药技术方法介绍

常用小型实验动物灌胃给药技术方法介绍随着生命科学技术的发展，动物实验已成为医学实验研究的基本方法。根据实验研究目的、实验动物的种类及药物剂型、剂量的不同，要求对实验动物实施不同的给药方法。尤其对于药物的毒理、药效的研究和药物剂量的确定，经口灌胃给药方法是一种重要的途径。在国内文献上却很少见到具体的描述。在此，作者将在实践中摸索出的一套实用于小鼠、大鼠、豚鼠、家兔经口灌胃给药的方法介绍如下。一、灌胃器具制作 1.1小鼠、大鼠、豚鼠灌胃器的制作小鼠、大鼠灌胃器的来源有两个，一是从市面上购买特制的I2～l6号灌胃针。二是自制。自制方法为：取l2号普通注射针头，首先将针头尖部去掉，然后用细锉刀把去掉部分锉平、锉光，再用沙纸磨光滑，有条件时可在针尖处点焊成球型。加工成有20度弧度的灌胃针，连接1ml 或5ml的注射器，即成为大小鼠的灌胃器。在打磨针头或加工弧度时用力一定要均匀，否则就会将针管弄扁，影响针管畅通。豚鼠灌胃器，可采用大鼠灌胃器。 1.2家兔灌胃器的制作取12号腰椎穿刺针。加工方法同小鼠、大鼠灌胃器的制作，针体长约9cm，并连接10ml或20ml注射器，即家兔灌胃器。二、灌胃操作方法

2.1小鼠经口灌胃给药方法先保定动物,即用右手将小鼠尾巴提起，置于鼠笼或粗糙的平面上，当小鼠向前挣扎时，用左手的拇指和食指捏住小鼠两耳后颈背皮肤，翻转小鼠置于掌心，拉直后肢，以小指压住小鼠尾巴即可。在保定小鼠过程中，不要用力过大，勿握其颈部，以免窒息死亡。以灌胃器轻轻压其头部，使口腔与食道成一条直线，再将灌胃针沿上腭壁轻轻进入食道，当灌胃针进入约3cm左右时即达胃内。如果灌胃针的位置插入正确，小鼠可自行吞服药，灌胃针插入位置不正确，小鼠会强烈挣扎，必须拔出重插，否则可能将药物灌入气管，造成小鼠死亡。注完药液后轻轻抽出灌胃针。小鼠一次最大灌胃量为：0.4ml/10g.w。 2.2大鼠经口灌胃给药方法大鼠的捕捉方法与小鼠基本相同。根据长期的实践经验，我们发现如用一块湿的纱布盖在大鼠身上，既可以防滑，又可以给初学者一种安全感。为了防止大鼠咬伤，应戴上帆布手套。大鼠体型较大，所以不能象保定小鼠那样可以把尾巴压住。同样在保定大鼠时不能用力过大和握其颈部，尤其在采取抓握保定大鼠时，要特别注意。大鼠灌胃的关键是左手把大鼠头部固定好，使其头不能随意摆动。其他操作方法与小鼠基本相同。灌胃针进入深度为5cm左右。大鼠一次灌胃最大容量 2ml/100g.w。 2.3豚鼠经口灌胃给药方法把豚鼠放在实验台上，用一块干纱布罩住其头，将豚鼠固定在左手

实验动物的给药途径和方法及药量计算方法

实验动物的给药途径和方法及药量计算方法标准化管理部编码-[99968T-6889628-J68568-1689N]

一．经口给药法 (一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将直接灌到动物胃内的·种常用给药法。1．鼠类：鼠类的灌胃器由特殊的灌胃针构成。左手固定鼠，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的右U角中，插入口中，沿咽后壁慢慢插入食道，使其前端到达膈肌位置，灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，以免损伤、穿破食道或误入气管。 2．兔、犬等：灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间。然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。 (二)口服法口服给药是把混入饲料或溶干饮水中让动物自由摄取。此法优点是简单方便，缺点是剂量不能保证准确，且动物个体间服药量差异较大。大动物在给予片剂、丸剂、胶囊剂时，可将用镊子或手指送到舌根部，迅速关闭口腔，将头部稍稍抬高，使其自然吞咽。二、注射给药法

(一)皮下注射皮卜注射一般选取皮下组织疏松的部位，大鼠、小鼠和豚鼠可在颈后肩胛问、腹部两侧作皮下注射；家兔可在背部或耳根部作皮卜注射；猫、犬则在大腿外侧作皮下注射。皮下注射用左手拇指和食指轻轻提起动物皮肤，右手持注射器，使针头水平刺入皮下。推送药液时注射部位隆起。拨针时，以手指捏住针刺部位，可防止药液外漏。 (二)肌肉注射肌肉注射一般选肌肉发达，无大血管通过的部位。大鼠、小鼠、豚鼠可注射大腿外侧肌肉；家兔可在腰椎旁的肌肉、臀部或股部肌肉注射；犬等大型动物选臀部注射。注射时针头宜斜刺迅速人肌肉，回抽针栓如无回血，即可注射。(三)腹腔注射给大鼠、小鼠进行腹腔注射时，以左手固定动物，使腹部向上，为避免伤及内脏，应尽量使动物头处于低位，使内脏移向上腹，右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前，再将注射器沿45角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。免、犬等动物腹腔注射时，可由助手固定动物，使其腹部朝上，者即可进行操作。注射位置为：家兔下腹部近腹白线左右两侧1cm处，犬脐后腹白线两侧边1—2cm处进行腹腔注射。(四)静脉注射

试验动物给药途径和方法

第三节实验动物给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。一、皮下注射注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有5（1/2）号针头的注射器刺入皮下。皮下注射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚鼠在后大腿的内侧或小腹部；大白鼠可在侧下腹部。兔在背部或耳根部注射。蛙可在脊背部淋巴腔注射。二、皮内注射皮内注射时需将注射的局部脱去被毛，消毒后，用左手拇指和食指按住皮肤并使之绷紧，在两指之间，用结核菌素注射器连4(1/2)细针头，紧贴皮肤表层刺入皮内，然后再向上挑起并再稍刺入，即可注射药液，此时可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。三、肌肉注射肌肉注射应选肌肉发达，无大血管通过的部位，一般多选臀部。注射时垂直迅速刺入肌肉，回抽针栓如无回血，即可进行注射。给小白鼠、大白鼠等小动物作肌肉注射时，用左手抓住鼠两耳和头部皮肤，右手取连有5（1/2）针头的注射器，将针头刺入大腿外侧肌肉，将药液注入。四、腹腔注射用大、小白鼠做实验时，以左手抓住动物，使腹部向上，右手将注射针头于左（或右）下腹部刺入皮下，使针头向前推 0.5～1.0cm，再以45度角穿过腹肌，固定针头，缓缓注入药液（图2-5），为避免伤及内脏，可使动物处于头低位，使内脏移向上腹。若实验动物为家兔，进针部位为下腹部的腹白线离开1cm处。图2-5小鼠腹腔注射方法五、静脉注射（一）兔兔耳部血管分布清晰。兔耳中央为动脉，耳外缘为静脉。内缘静脉深不易固定，故不用。外缘静脉表浅易固定，常用。先拔去注射部位的被毛，用手指弹动或轻揉兔耳，使静脉充盈，左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持注射器连6号针头尽量从静脉的远端刺入，移动拇指于针头上以固定针头，放开食指