植物组织培养14179复习过程

植物组织培养14179

植物组织培养：是指在无菌和人工控制的环境条件下，利用人工培养基，对离体的植物胚胎、器官、组织、细胞及原生质体进行培养，使其再生细胞或完整植株的技术。又称为植物离体培养

离体生态学：是指研究离体培养环境条件控制的科学，其研究对象是培养基、植物材料和人工环境条件外植体：用于离体培养的那部分植物器官、组织或细胞

愈伤组织（callus）：是指外植体因受伤或在离体培养时，其细胞进行活跃的分裂增殖而形成的一种无特定结构和功能的组织

植物组织培养的特点

1.组培技术是无菌操作技术。

2.组培材料处于完全的异养状态。

3.组培材料可以是离体状态的器官、组织、细胞或原生质体。

4.组织培养物可以形成克隆（clone，无性繁殖系），也可以进行茎芽增殖或生根

5.组培容器内的气体和环境气体可通过封口材料进行交换，相对湿度通常是几乎100％，因此，组培苗叶片表面一般都无角质层或蜡质层，且气孔保卫细胞功能缺乏，气孔始终都是张开的。

6.组培的环境温度、光照强度和时间都是人为设定的，其参数可调

植物组织培养的研究类型

组织培养

器官培养

胚胎培养

细胞培养

原生质体培养

植物组织培养的研究任务

研究离体培养条件下，细胞、组织或器官所需营养条件和环境条件，细胞、组织或器官的形态发生和代谢规律，植物脱毒方法和机理，植物特别是一些难繁植物的大量快速繁殖方法，细胞融合方法和机理，再生个体的遗传和变异，种质资源的离体保存机理和方法等

德国植物学家Schleiden和动物学家Schwann于1838-1839年提出的细胞学说

德国植物学家Haberlandt于1902年提出了植物细胞具有全能性

李继侗和沈同1933年成功培养了银杏的胚。

1952年， Morel和Martin提出了植物脱毒（virus free）技术

Guha和Maheshwari等——花药培养

Cocking等-原生质体培养

Carlson等——原生质体融合

植物组织培养的应用

快繁和脱毒

育种

次生代谢物生产

种质保存

在遗传、生理、生化、病理等研究上的应用

离体快繁（试管苗和人工种子）

试管苗特点

繁殖系数大、速度快，苗木整齐一致，周年生产

人工种子

指植物离体培养中产生的胚状体或不定芽，被包裹在含有养分和保护功能的人工胚乳和人工种皮中，从而形成能发芽出苗的颗粒体。

具有试管苗的优点外，还具有以下优点：

1）便于贮藏和运输、可直接播种和机械化操作；

2）可在人工种子中加入抗生素、菌肥、农药等成分，提高种子活力和品质

培育新品种或创制新物种

单倍体育种

离体选择突变体

培育远源杂种

基因工程育种

单倍体育种

手段：花药和花粉培养

优点：所有基因均能表现，基因型可快速纯合

成果：已育成大面积种植的品种

离体选择突变体

手段：愈伤组织、悬浮培养细胞易变异、细胞数量大，有利于突变体筛选

优点：多用于抗性筛选

成果：已选出一些抗病、抗盐、高赖氨酸、高蛋白的突变体，有些已用于生产

培育远源杂种

胚培养可克服受精后障碍导致的远源杂交不孕，产生远源杂交后代，育成新物种.苹果,梨,大白菜和甘蓝、栽培棉和野生棉

原生质体融合可克服有性杂交不亲和性，获得体细胞杂种.马铃薯和番茄、烟草和龙葵

基因工程育种

农杆菌介导法、基因枪法均基于植物组织培养技术。

抗除草剂、抗虫、抗病、抗逆性、品质改良

次生代谢物生产:利用组织和细胞的大规模培养，可以生产人类需要的一些天然有机化合物

植物种质资源的离体保存

优点：节约人力、物力和土地，防止有害病虫的传播，便于种质资源的交换和转移

培养基的成分

水

矿质元素

碳水化合物

生理活性物质

生长调节剂

附加物

天然添加物

水

水质软化装置

离子交换

反向渗透蒸馏

矿质元素

大量--氮、磷、钾、钙、镁、硫

微量--铁、锰、硼、锌、铜、钼

碳水化合物

作用：提供碳源、维持渗透压

通常碳源用蔗糖

低浓度（1.5～2.5％）的糖有利于木质部的生长；

高浓度（3～4％）有利于韧皮部

生理活性物质

维生素-----作用：辅酶

肌醇-----作用：帮助活性物质发挥作用，使培养物快速生长，促进胚状体及芽的形成氨基酸及其酰胺类-----有机氮源、缓冲作用、调节体内平衡

单核苷酸

植物生长调节剂

六大类植物激素

生长素

细胞分裂素

赤霉素

脱落酸

乙烯

油菜素内酯

生长素/细胞分裂素相互作用

生长素－细胞分裂素比率关系，用于组培中决定芽和/或根的形成

细胞分裂素对生长素的浓度比值高时，倾向于形成芽

生长素细胞分裂素的浓度比值高时，倾向于形成根

两种激素的比值处于中间水平时增强愈伤组织的形成

附加物:

胶凝剂

螯合剂

渗透剂

活性炭

其他

天然添加物

椰乳,水解酪蛋白,酵母提取液

作用：提供天然微量营养成分、生理活性物质和生长调节剂等

缺点：成分不确定，影响实验重复性

母液（贮备液）注意事项

各种药品要充分溶解后才能混合。

混合时要注意先后顺序，避免相互结合生成沉淀。

铁盐单独配制，一般用硫酸亚铁和EDTA-Na2通过加热形成稳定的螯合铁贮存。

生长素类先用少量95％乙醇或1mol/L NaOH加热助溶后，用水定容。

细胞分裂素类先用少量1mol/L盐酸溶解，再用水定容

培养基制备

加一定量水，依次加入需要量的母液。

加入需要量的蔗糖，溶解，定容。

调节pH值。

加入需要量的琼脂，加热溶解（要不断搅拌）。

分装：在琼脂未凝时（40℃左右凝固）分装，量一般为容器的1/4～1/3，注意不要沾到容器口。

封口。

灭菌。

存放。

注意事项

不能高压灭菌的物质，在灭菌后温度下降但琼脂尚未凝固时，在无菌条件下，用过滤除菌法加入。

配好的培养基一般应在两周内用完

外植体:从需要培养的母株分离的一小块植物材料

接种体:已经培养的植物材料用于继代培养

外植体的选择

地上部比地下部清洁。

外植体越小，克服特殊植物病理问题的机会越大，但同时也降低了存活率。内部的组织比外部的不易受到污染。

不同外植体反应不总是相同

外植体的灭菌

1.根据培养容器大小将材料切割成适当大小；

2.流水（自来水）冲洗植物表面；

3.在酒精中晃动几秒钟；

4.HgCL2（0.1～1%）＋吐温（润湿剂）2滴/100ml：3～5min；

5.用经过高压灭菌的蒸馏水冲洗；

6.商业漂白剂7~15%＋吐温2滴/100ml：10～30min；

7.再用经过高压灭菌的蒸馏水冲洗几次

培养条件

温度

光照:光周期和光强

湿度

气相条件

顶部空间气体成分对植物生长发育的影响

矮化或白化

玻璃化

软腐

自养/混合营养

乙烯伤害

矮化或白化

有限的气体交换对组培的效应

组培容器尽可能密闭，以防止污染。然而，在一个完全密闭的容器中可能出现气体的堆积，对植物生长造成不利，如产量减少、白化病或坏疽

玻璃化

产生原因

外植体：种类，继代次数；切割方法；在培养基上的放置情况。

培养基:凝胶的浓度和类型,细胞分裂素的种类及水平；盐浓度。

容器：气体组成和气体浓度

环境：温度；光强和光质，湿度；空气流动

植物细胞全能性：是指任何携带完整遗传信息的植物活细胞都具有表达其所有遗传信息的能力，能够发育成完整的植株

全能性是一种可能性，变为现实必须满足两个条件：

解除抑制和给予刺激。

细胞需经过脱分化和再分化过程才能表现其全能性

脱分化：成熟细胞或分化细胞转变为分生状态（即形成愈伤组织）的过程。

再分化：成熟细胞或分化细胞脱分化转变为愈伤组织后重新分化成异质细胞的过程。

愈伤组织的形成

愈伤组织起源于母体组织增殖细胞。在培养时，通过把全植株的一小部分（外植体）在无菌条件下放到支持生长的培养基上来产生愈伤组织。激素改变了细胞的代谢使之从静止转变为具有活性

培养条件

固体培养基

暗培养

液体培养基的缺点

污染损失大

不利于气体交换，影响愈伤组织形成

愈伤组织的生长

诱导期后，外植体外层细胞开始分裂，在组织受伤表面形成一种创伤形成层，愈伤组织的细胞数目迅速增加

特点：细胞分裂速率大大超过细胞伸长速率，单个细胞的平均重量下降，体积变小

愈伤组织类型

质地：松脆、致密

高生长素：致密变松脆。

低或无生长素或高细胞分裂素：松脆变致密。

愈伤组织的保持

一段时间后，由于基本培养物的损耗、凝胶的干燥以及代谢物的积累，需要将愈伤组织转到新鲜的培养基上进行继代培养

要点：愈伤组织继代培养时要有适当的大小，以保证在新鲜培养基上可以重建生长

愈伤组织再分化途径

器官发生途径：愈伤组织先产生芽（或根），再在另一种培养基上产生根（或芽），然后形成完整植株。

胚状体发生途径：愈伤组织形成胚状体，再在另一种培养基上同时发展成带有根的苗。也叫无性胚胎发生（无性系）。

胚状体----指愈伤组织中形成的与种子中胚相似的具有苗端和根端的双极性结构。也叫体细胞胚

体细胞胚胎的特征

1.体胚最根本的特征是具有两极性

2.体胚的维管组织与外植体的该组织无解剖结构上的联系，而不定芽或不定根往住总与愈伤组织的维管组织联系

3.体胚的维管组织的分布是独立的Y字形，而不定芽的维管组织则无此现象

体胚发生的方式

直接发生和间接发生

直接发生是指体胚直接从原外植体的胚性细胞不经愈伤组织阶段发育而成

间接发生是体胚从愈伤组织或悬浮细胞、有时也从已形成的体胚的一组细胞中发育而成

多数体胚是间接发生

胚性细胞-----与分生组织细胞类似，通常较小，近圆形，具有较大的核和核仁并能高度染色，胞质浓厚，可直接发育成体细胞胚胎

胚胎发生丛（EC）:EC是愈伤组织中一种液泡小、胞质浓的小细胞聚集成的丛状结构

人工种子

海藻酸钠作为人工种子的包埋剂。也发展了用新的自裂胶珠的方法

植物组织培养的基本程序

1.无菌外植体的获得

2.初代培养物的建立

3.形态发生和植株再生

4.培养产物的观察记载

无菌外植体的获得

利用各种灭菌剂进行外植体的灭菌。

不同器官的灭菌方法

1.茎尖、茎段、叶片

清水冲洗

70％酒精浸数秒，再在10％次氯酸钙浸泡5～20min

无菌水冲洗3～5次，吸干

适当切块，接种

2.根、块茎、鳞茎

带土，易损伤。

仔细刷洗，切除损伤部位，增加灭菌时间或浓度。

70％酒精浸数秒，再在6～10％次氯酸钙浸泡5～20min。

3.花蕾

花蕾中的花药处于无菌状态，采摘后可直接灭菌

70％酒精浸10～30s， 0.1％氯化汞浸泡3～10min

4.果实、种子

有些表面具茸毛或蜡质，需加吐温-80。

果实：70％酒精浸数秒，2％次氯酸钙10～20min。

种子： 0.1～0.2％氯化汞浸泡5～10min

培养产物的观察记载

愈伤组织诱导率

胚状体诱导率

芽分化率

发根率

植物器官培养-----是指对植物某一器官的全部或部分或器官原基进行离体培养的技术

植物器官培养

根的培养

茎段和茎尖培养

叶的培养

根的培养意义

根系生理代谢研究的良好实验体系；

研究器官分化、形态建成的良好体系；

建立根无性系，用于制药；

诱变育种。

离体根的培养方法

固体培养法：平放

液体培养法：振荡

固体－液体双层培养法：根段形态学上端插入固体培养基，下端朝上浸露在液体培养基中。

其他特殊方法

离体根所用培养基

White

MS、B5等大量元素减半或减2/3

影响离体根生长因素

基因型

营养条件：氮源、碳源、微量元素、维生素B1

激素：生长素

pH

光照和温度：一般黑暗有利于根的形成

植物茎段培养-----是指对植物的带有一个以上定芽或不定芽的外植体（包括块茎、球茎、鳞茎在内的幼茎切段）进行离体培养的技术。

茎段培养的目的

进行植物的离体快速繁殖。

研究茎细胞的分裂潜力和全能性。

诱导细胞变异和突变体的获得

茎段培养的特点和优点

特点：以芽生芽的方法进行增殖。

优点：容易成功、变异小、性状均一、繁殖速度快。

茎段培养产物

单苗

丛生苗

完整植物

愈伤组织

影响因素

基因型

激素配比：生长素、细胞分裂素

茎尖培养---是指对植物顶端的原分生组织和它衍生的分生组织的培养

类型

茎尖分生组织培养

普通茎尖培养

茎尖培养注意事项

取材大小：脱毒小于1mm，快繁可数毫米。茎尖微小趋向于形成愈伤组织。

培养基：多为MS，避免2,4-D（促使外植体愈伤组织化）。

普通茎尖培养与繁殖技术

无菌物的建立

芽的增殖

中间繁殖体的增殖

诱导生根

移栽

生长状态及原因

1.生长太慢：茎尖不见明显增大，但颜色转绿

进入休眠

生长素太低

温度低

2.生长过旺：茎尖明显增大，基部产生愈伤组织，茎尖难于伸长，色泽较淡

生长素偏高

用了2,4-D

光照太弱

温度过高

3.生长正常

茎尖逐渐转绿，基部逐渐膨大，有时形成少量愈伤组织，茎尖逐渐伸长，最终形成小枝。

影响茎尖微繁的因素

基因型

外植体的大小

供试植株的生理状态

芽的着生部位

褐变

玻璃化

极性

后生变化

形态发生能力

遗传稳定

叶的培养

意义：

研究叶形态建成、

光合作用、

叶绿体形成等；

叶细胞全能性；

原生质体融合；

无性繁殖系；

诱变育种

影响叶组织培养的因素

基因型

细胞分裂素

细胞分裂素和生长素的组合供试植株的发育时间和叶龄叶脉

极性

损伤

离体叶组织发育途径

直接产生不定芽