实验动物学实验报告(大鼠,小鼠),小鼠的基本实验操作,大鼠的基本实验操作
实验一小鼠的基本实验操作
一、实验目的:通过实际操作，掌握小鼠的一般操作方法，包括小鼠的抓拿、标记、给
药（灌胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射）、取血（眶后静脉丛，摘眼球）、脊椎脱臼法处死、大体解剖。
二、实验动物：昆明小鼠2只（1雌1雄）
三、实验步骤
1、抓取和固定，标记
2、去毛
3、给药：消化道、腹腔注射、尾静脉注射
4、取血：眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法
5、麻醉：氯胺酮腹腔麻醉
6、处死：脊椎脱臼法
7、解剖：
雄性：睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺（在膀胱下方，胶质状，透明）
雌性：双角子宫、卵巢
肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺
四、实验结果
1、抓取和固定标记：
抓取：抓小鼠的尾根部
固定：抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇
指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。并标记：2、灌胃法：左手抓取小鼠固定后，右手持特制灌胃针，沿一侧口角进针，紧贴咽后壁，头后仰以便伸直消化道，进针2/3后灌生理盐水
3、注射给药：
腹腔注射：
从下腹部的两侧进针，进针时针与腹部成45°。进针后稍微晃动针，如无粘滞感则可注射药物
尾静脉注射：一人固定小鼠，另一人用左手中指和拇指将尾拉直，食指托住尾部，在尾动脉位置进针注射生理盐水。注射完毕拔出针头，用无菌棉球压迫止血。
4、采血
从眼角内侧处进针
眼球摘除法：左手抓取用固定小鼠，右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除，头朝下，眼眶内血迅速流出。
5、麻醉：
%氯胺酮腹腔麻醉：本小鼠重22g，按100mg/kg的药量给药，2分钟麻醉成功
6、处死：
脊椎脱臼法：按住头部，将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死
7、解剖：
雄性：寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺
雌性：双角子宫、卵巢肾上腺：米粒大小
胰腺：位于胃下方，类似于脂肪组织，浑浊状，胆囊：芝麻大小，浅绿色，半透
明，甲状腺：紧贴环状软骨，另可解剖出胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏。
五、实验讨论
1、小鼠抓取的感受：
小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作，如进行解剖实验则必须先行无痛处死后再进行。
2、小鼠尾静脉注射感受：
首先，注射前尾巴用稍热的水浸泡几分钟，有利于注射；其次，先远后尽，不要一开始就从尾根部，那样失败了不好办；再次，进血管后注意保持稳定，针尖很容易刺穿血管的。
尾静脉就在尾巴的正左右两边，先用酒精用力擦，可以去掉部分角质，然后按住近心端让充血，就很容易看到了。进针大概1～2厘米是最合适的。
尾静脉注射时，可用45~50度的温水浸润半分钟或用酒精擦拭，可使血管扩张，同时也可软化表皮角质。以左手拇指和食指夹住鼠尾，使静脉充盈，中指帮助无名指和小指捏住鼠尾末梢，右手持注射器（连5号细针头），针头与静脉夹角一般小于30度，从距尾尖2 - 3厘米处进针，此处皮薄易进入，先抽回血，见到血后再缓慢注入少量药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，可继续注入。一般推注速度为 - 秒，一次注入量为 - 10g 体重。如反复注入，应尽可能从尾末端开始，以后向尾根部方向移动注射。
实验二大鼠的基本实验操作
二、实验目的:通过实际操作，掌握大鼠的一般操作方法，包括大鼠的抓拿、标记、给
药（灌胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射）、取血（眶后静脉丛，摘眼球）、脊椎脱臼法处死、大体解剖。
二、实验动物：大鼠2只（1雌1雄）
三、实验步骤
1、抓取和固定，标记
2、去毛
3、给药：消化道、腹腔注射、尾静脉注射
4、取血：眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法
5、麻醉：氯胺酮腹腔麻醉
6、处死：脊椎脱臼法
7、解剖：
雄性：睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺（在膀胱下方，胶质状，透明）
雌性：双角子宫、卵巢
肾上腺、胰腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏颅部。
四、实验结果
1、抓取和固定标记：
抓取：抓大鼠的尾根部
固定：抓住大鼠的尾根部，让大鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇
指和食指抓住大鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。并标记：2、灌胃法：左手抓取大鼠固定后，右手持特制灌胃针，沿一侧口角进针，紧贴咽后壁，头后仰以便伸直消化道，进针2/3后灌生理盐水
3、注射给药：
腹腔注射：
从下腹部的两侧进针，进针时针与腹部成45°。进针后稍微晃动针，如无粘滞感则可注射药物
尾静脉注射：一人固定大鼠，另一人用左手中指和拇指将尾拉直，食指托住尾部，在尾动脉位置进针注射生理盐水。注射完毕拔出针头，用无菌棉球压迫止血。
4、采血
从眼角内侧处进针
眼球摘除法：左手抓取用固定大鼠，右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除，头朝下，眼眶内血迅速流出。
5、麻醉：
%氯胺酮腹腔麻醉：本大鼠重320g，按100mg/kg的药量给药，5分钟麻醉成功
6、处死：
脊椎脱臼法：按住头部，将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死
7、解剖：
雄性：寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺
雌性：双角子宫、卵巢肾上腺：米粒大小
胰腺：位于胃下方，类似于脂肪组织，浑浊状，胆囊：芝麻大小，浅绿色，半透明，甲状腺：紧贴环状软骨。颅部：视交叉：将大鼠过量麻醉致死后，剪开颅顶部皮肤，暴露颅骨，用镊子咬除颅顶部骨，充分暴露大脑半球。用镊子从额部将脑组织翻至枕后，可见位于颅底的视交叉、视神经和视束（白色纤维）。垂体：夹断视神经，充分暴露颅底，可见位于垂体窝中的垂体，色白，米粒大小。另可解剖出胃、肝脏、脾、肺、肾、
心脏。
五、实验讨论
大鼠牙齿和爪子锐利，个头大，抓取时要小心，不要被其抓伤或咬伤。初学者为确保安全，可佩戴棉纱手套。提尾部时应靠近尾根部提取，以防大鼠身体摇晃，或扭头过来咬人。一手不容易固定时，可另请另一人协助操作。健康雄性大鼠的体重明显超过同龄雌性大鼠。如进针不顺，须暂停操作，以免激若大鼠，妨碍实验顺利进行。注射：腹腔注射：注意妥善固定，最好一人固定头部和上肢，另请一人固定双下肢和尾部，以免进针时大鼠挣扎妨碍操作。肌肉注射：要选择肌肉丰满耳无大血管通过的大腿外侧进针。
尾静脉注射：尾静脉鳞片厚，虽然肉眼可见血管，但成功率低，一般少用。
实验动物学重点题库
复习题 1、简述动物实验中3R原则内容及其意义。 Replacement 替代1.尽量使动物一体多用2、用低等动物代替高等动物3、尽量使用高质量动物4、使用恰当的试验设计和统计学方法 Reduction 减少1、用有生命的物体代替动物进行研究2、用数理化方法模拟动物进行研究Refinement 优化1、改善实验设施条件，提高动物实验质量2、改善控制技术，减少对机体的干扰 3R研究的意义 1、作为提升突破技术壁垒能力的载体和具体体现“标尺”，在经济发展和国际贸易中发挥不可替代的重要作用。 2、为科学发展提供了新思路和新方法。 3、体现时代发展、社会进步 2、简述免疫缺陷动物的概念以及生物学特性（主要是裸鼠和联合免疫缺陷鼠）。 指由于先天性遗传突变或用人工方法造成一种或多种免疫系统组成成分缺陷的动物。 一、T淋巴细胞功能缺陷动物：1、裸小鼠（nude mice）：1）被毛生长异常，呈裸体外表。2）无胸腺，仅有胸腺残迹或异常胸腺上皮，不能使T-cell正常分化，导致细胞免疫力低下。幼龄鼠有残存的未分化的上皮细胞。3）B细胞功能正常，NK细胞活力增强。4）繁育能力差，乳腺发育缺损，以雄性纯合子与雌性杂合子繁育。5）T细胞缺陷可通过移植成熟T细胞、胸腺细胞或正常胸腺上皮得到校正。2、裸大鼠(nude rat)：基因符号为rnu，一般特征似裸小鼠。1）发育迟缓，体重为正常大鼠的70%。2）裸大鼠较裸小鼠对多种传染病更敏感。3）比裸小鼠更强壮、寿命更长。4）体型较大，对大范围的外科手术方法较有利。二、联合免疫缺陷动物1、严重联合免疫缺陷小鼠(SCID mice)：突变基因scid位于16号染色体。1）该突变基因造成编码Ig重链和TCR的基因重排异常，抑制B-cell和T-cell前体的正常分化。2）C.B-17Icr为携带来自C57BL/ka小鼠的免疫球蛋白重链Igh-1b等位基因的 BALB/cAnIcr的同源近交系。3）纯合子血清中无免疫球蛋白，淋巴结、胸腺变小，缺乏体液、细胞免疫功能。饲养于SPF环境中。4）通过移植人免疫组织或免疫细胞，可使SCID 小鼠具有人类部分免疫系统，称为SCID-hu小鼠。
实验报告-大鼠
姓名：薛桂凤学号：132015200300 实验报告（二） 一、实验目的： 1.掌握大鼠的抓取和固定。 2.掌握大鼠的编号与标记方法。 3.掌握大鼠的常用实验方法。 4.掌握大鼠的常用麻醉方法。 5.掌握大鼠的安死术。 6.掌握大鼠的釆血方法。 7.了解小鼠的采尿、粪的方法。 8.了解小鼠各种脏器标本的采集方法。 二、实验器材：SD大鼠、电子称、手套、实验托盘、固定板、烧杯、注射器（3支）、 剪刀、镊子、灌胃针头、毛细管、酒精棉球、5%水合氯醛、生理盐水 三、实验内容 1.抓取：两种方法。第一种方法：右手食指和中指夹住大鼠颈部，使其头部固定，右 手拇指及无名指分别在大鼠前爪下抓住大鼠身体。第二种方法类似单手抓取小鼠的 方法，用右手拇指及其余四指并捏住大鼠颈部背部皮肤。 2.称重：小鼠放在烧杯中称重（去除烧杯重量），记录小鼠体重210g。 3.鉴别大鼠性别：观察生殖器雄性大鼠的阴囊非常明显。 4.编号：染色法：逆毛方向涂上有色斑点，顺序由左到右，由上向下，用两种颜色 可标记99只动物。 5.给药： （1）皮下注射小于1ml/100g（俯卧固定，左手拇指和食指捏住皮肤提起，右手持针沿纵轴方向刺入皮肤，阻力消失后回抽无血注入药物，拔针）（2）皮内注射小于0.1ml （麻醉后进行，先备皮）（俯卧固定，与皮肤平行刺入捏起的皮肤，阻力大，注射药物局部有皮丘后停留片刻后拔针）（3）腹腔注射0.01-0.02ml/g（仰面固定，在腹正中线两侧腹股沟平行的位置30-45°进针，挑起皮肤和肌肉，回抽无血，注药） （4）灌胃1-2ml/100g （大鼠固定身体呈一条直线，灌胃针头顺着上颚插入咽部，先少量注药证明未入气管后继续给药） 6.釆血：尾尖釆血法、眼眶静脉丛釆血法、心脏釆血法(麻醉后) 。 7.大鼠的采尿、粪的方法 （1）少量采集：在抓取固定时受到刺激排出少量尿液和粪便 （2）长期大量采集：使用代谢笼 8.麻醉：根据大鼠体重计算麻醉药物用量5%水合氯醛按300mg/kg，给药，计算药 量为 1.26ml，ip 麻醉小鼠，观察小鼠麻醉期。 (1)全身麻醉的第一期（随意兴奋期）：出现运动和运动失调；35秒 (2)全身麻醉的第二期（不随意兴奋期）：是由意识完全丧失至深而规则的自动 呼吸开始时止;2分30秒 (3)全身麻醉的第三期：角膜反射由迟钝渐趋消失，翻正反射消失，疼痛反射 消失； 9.安死术：颈椎脱臼法：用左手按住动物的头部于实验台上，右手抓住尾根部，快速、 不间断地向后、略向上使劲拉，以致脊椎脱臼，脊髓与脑干断离而死亡。 10.解剖：观察大鼠的脏器解剖结构
实验动物学实验论文
实验动物学实验论文 实验名称：切断大鼠迷走神经的肺水肿模型制备设计班级：2013级生物技术班 设计人员：陈建文罗晓明叶东芹卿晓玲 设计日期：2015年11月 切断大鼠迷走神经的肺水肿模型制备（陈建文罗晓明叶东芹卿晓玲）
【摘要】[目的]：肺水肿是一种常见的疾病，通过切断大鼠迷走神经，模拟人类肺水肿探究制备大鼠肺水肿模型的方法，提供一种较好符合临床肺水肿病理生理特征的实验性肺水肿动物模型。[方法]：将实验大鼠随机分为对照组（假手术），夹闭一侧迷走神经组和双侧夹闭组，夹闭迷走神经，观察动物的体征变化，确定大鼠肺水肿动物模型。[结论]：三组大鼠肺系数之间并无明显差异。 【Abstract】Objective]: pulmonary edema is a common disease, cut through the vagus nerve in rats, simulation human pulmonary edema inquiry system for preparation of the rat model of pulmonary edema, providing a consistent clinical pulmonary edema pathophysiological characteristics of experimental animal model of pulmonary edema. Methods: rats were randomly divided into control group (sham operation). The rats were divided into control group and bilateral occlusion group. [Conclusion] there is no significant difference between the three groups in the lung coefficient. 【关键词】肺水肿切断迷走神经术大鼠动物模型 肺水肿是指由于某种原因引起肺内组织液的生成和回流平衡失调，使大量组织液在很短时间内不能被肺淋巴和肺静脉系统吸收，从肺毛细血管内外渗，积聚在肺泡、肺间质和细小支气管内，从而造成肺通气与换气功能严重障碍。在临床上表现为极度的呼吸困难，端坐呼吸，发绀，大汗淋漓，阵发性咳嗽伴大量白色或粉红色泡沫痰，双肺布满对称性湿啰音。肺水肿为内科危急重症，临床症状凶险，病情发展急剧，易并发呼吸、循环衰竭，病死率极高，如果不及时诊治，会引发严重的后果。目前，国内外复制实验性肺水肿的模型很多，如油酸诱导，注射生理盐水，吸入光气等方法，都有很明显的现象。我们采用切断迷走神经的方法，对大鼠肺系数等指标进行观察，观察肺水肿模型是否建立。 1 材料与方法 1.1实验动物：SD大鼠24只，体重 200-290g，雌雄随意，由成都医学院实 验动物中心提供。 1.2实验药品与试剂：3.6%水合氯酸。 1.3实验仪器与器械：电子天平，注射器，烧杯，手术器械（解剖刀，解剖盘，解剖剪刀，手术线眼科镊等）、滤纸，计时器等。 2 方法 将实验动物随机分为3个组，A组B组C 组各8只大鼠。A组为假手术组，将大鼠称重，麻醉（用 3.6%水合氯酸麻醉，按100g/1mL的量）后，仅找出迷走神经，不做任何处理；B组为实验组，将大鼠称重麻醉（用3.6%水合氯酸麻醉，按100g/1mL的量）后，找出一侧迷走神经，用手术剪剪断；C组也为实验组，将大鼠称重麻醉（用3.6%水合氯酸麻醉，按100g/1mL的量）后，找出两侧的迷走神经剪断。手术处理后，观察大鼠有无呼吸频率改变、湿啰音、咳血、身体抽搐等体征变化，0.5小时后处死所有大鼠。在解剖时，先结扎气管以免液体外溢，然后将肺和心脏一同取出，剪去心脏和表面的脂肪组织，并用滤纸吸干表面的液体，最后分别将各组大鼠肺称重，计算肺系数（肺系数=肺重量（g）/大鼠体重（kg））。
实验报告-大鼠
姓名：薛桂凤学号： 实验报告（二） 一、实验目的： 1.掌握大鼠的抓取和固定。 2.掌握大鼠的编号与标记方法。 3.掌握大鼠的常用实验方法。 4.掌握大鼠的常用麻醉方法。 5.掌握大鼠的安死术。 6.掌握大鼠的釆血方法。 7.了解小鼠的采尿、粪的方法。 8.了解小鼠各种脏器标本的采集方法。 二、实验器材：SD大鼠、电子称、手套、实验托盘、固定板、烧杯、注射器（3支）、 剪刀、镊子、灌胃针头、毛细管、酒精棉球、5%水合氯醛、生理盐水 三、实验内容 1.抓取：两种方法。第一种方法：右手食指和中指夹住大鼠颈部，使其头部固定，右 手拇指及无名指分别在大鼠前爪下抓住大鼠身体。第二种方法类似单手抓取小鼠的 方法，用右手拇指及其余四指并捏住大鼠颈部背部皮肤。 2.称重：小鼠放在烧杯中称重（去除烧杯重量），记录小鼠体重210g。 3.鉴别大鼠性别：观察生殖器雄性大鼠的阴囊非常明显。 4.编号：染色法：逆毛方向涂上有色斑点，顺序由左到右，由上向下，用两种颜色 可标记99只动物。 5.给药： （1）皮下注射小于1ml/100g（俯卧固定，左手拇指和食指捏住皮肤提起，右手持针沿纵轴方向刺入皮肤，阻力消失后回抽无血注入药物，拔针）（2）皮内注射小于（麻醉后进行，先备皮）（俯卧固定，与皮肤平行刺入捏起的皮肤，阻力大，注射药物局部有皮丘后停留片刻后拔针） （3）腹腔注射（仰面固定，在腹正中线两侧腹股沟平行的位置30-45°进针，挑起皮肤和肌肉，回抽无血，注药） （4）灌胃1-2ml/100g （大鼠固定身体呈一条直线，灌胃针头顺着上颚插入咽部，先少量注药证明未入气管后继续给药） 6.釆血：尾尖釆血法、眼眶静脉丛釆血法、心脏釆血法(麻醉后) 。 7.大鼠的采尿、粪的方法 （1）少量采集：在抓取固定时受到刺激排出少量尿液和粪便 （2）长期大量采集：使用代谢笼 8.麻醉：根据大鼠体重计算麻醉药物用量5%水合氯醛按300mg/kg，给药，计算药 量为，ip 麻醉小鼠，观察小鼠麻醉期。 (1)全身麻醉的第一期（随意兴奋期）：出现运动和运动失调；35秒 (2)全身麻醉的第二期（不随意兴奋期）：是由意识完全丧失至深而规则的自动 呼吸开始时止;2分30秒 (3)全身麻醉的第三期：角膜反射由迟钝渐趋消失，翻正反射消失，疼痛反射 消失； 9.安死术：颈椎脱臼法：用左手按住动物的头部于实验台上，右手抓住尾根部，快速、 不间断地向后、略向上使劲拉，以致脊椎脱臼，脊髓与脑干断离而死亡。 10.解剖：观察大鼠的脏器解剖结构
动物论文
实验动物学期末作业 班级：20111641 姓名：肖海琼 学号：2011164102
药物对动物血压的作用 摘要目的观察肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素及乙酰胆碱等药物对家兔血压的作用，并以阻断药为工具分析各药对于受体的作用。方法采用动脉血压的直接测量法，用血压换能器测定不同药物作用后的血压变化情况结果静脉注射0.02g/L肾上腺素0.1ml/kg后家兔平均动脉压由84.93mmHg上升到102.06mmHg；静脉注射0.02g/L 去甲肾上腺素0.1ml/kg后家兔平均动脉压由84.83mmHg上升到109.77mmHg；静脉注射0.02g/L异丙肾上腺素0.1ml/kg后家兔平均动脉压由84.83mmHg下降到54.08mmHg；静脉注射10g/L酚妥拉明1mg/kg后：静脉注射0.02g/L肾上腺素0.1ml/kg后家兔平均动脉压由67.08mmHg下降到54.40mmHg；静脉注射0.02g/L去甲肾上腺素0.1ml/kg后家兔平均动脉压由67.06mmHg上升到76.90mmHg；静脉注射0.02g/L异丙肾上腺素0.1ml/kg后家兔平均动脉压由67.04mmHg 下降到55.37mmHg；静脉注射2.5g/L普萘洛尔0.5mg/kg后：静脉注射0.02g/L盐酸肾上腺素0.1ml/kg后家兔平均动脉压由84.61mmHg 上升到98.42mmHg；静脉注射0.02g/L去甲肾上腺素0.1ml/kg后家兔平均动脉压由84.43mmHg上升到99.09mmHg；静脉注射0.02g/L异丙肾上腺素0.1ml/kg后家兔平均动脉压由84.33mmHg变为78.93mmHg；静脉注射0.01g/乙酰胆碱0.1ml/kg后家兔平均动脉压由84.63mmHg下降到59.32mmHg；静脉注射1g/L阿托品后：静脉注射0.01g/乙酰胆碱0.1ml/kg后家兔平均动脉压由84.43mmHg下降到75.84mmHg；静脉注射10g/乙酰胆碱0.1ml/kg后家兔平均动脉压由
病理生理实验报告
实验一组织晶体渗透压改变在水肿发 生中的作用（水肿） 实验目的：通过实验了解组织晶体渗透压的改变在水肿发生中的意义，加深对水肿发生机理的理解。 实验动物：蟾蜍2只，要求体重、大小相仿。 器材与药品： 200克电子天平1台，盛水玻璃缸2个，2m1注射器连4号针头2支，脱脂棉球、纱布块适量。0.65％氯化钠液和20％氯化钠液各10ml。实验方法： 1. 取蟾蜍2只分别称重，注意观察背部外形。 2. 向一只蟾蜍背部淋巴囊内注入0．65％氯化钠液(即蛙生理盐水)2 m1，向另一只蟾蜍背部淋巴囊内注入20％氯化钠液2ml(蟾蜍皮下淋巴囊分布见图2－1)，然后分别放入装有水的玻璃缸内。 3．1小时后由水中取出蟾蜍，擦掉体表浮水后分别称重，同时仔细观察背部外形改变。 4. 解剖蟾蜍：由椎骨孔破坏神经系统。重点观察背部淋巴囊的变化。解剖观察其它脏器和解剖结构。 实验结果：将观测到的各种实验结果记入下表内 注前体重注前背部外 形注后体重注后背部外 形 注0.65％氯 化钠 141.2g 正常平坦146.3g 正常平坦
注20％氯化 141.8g 正常平坦169.5g 变肥 钠 结果分析：实验中这两只蟾蜍分别注射了不同浓度的氯化钠溶液，组织晶体渗透压升高，两只都有一定的吸水能力，注射低浓度氯化钠溶液的青蛙吸水较少，体重只有轻微的增长，体型无明显变化；注射高浓度氯化钠溶液的青蛙吸水较多，体重有大幅度的增长，体型出现明显变化。结果表明晶体在体内的浓度越高，吸水性越强。 心得：
实验二缺氧 实验目的：通过复制外呼吸性缺氧、血液性缺氧及组织中毒性缺氧的动物模型。 实验动物：成年小白鼠4只． 器材与药品： 1．外呼吸性缺氧：带有橡皮塞的250毫升广口瓶1只(见图3—1)，搪瓷盘1只、镊子、剪子各2把，100g电子天平1台。钠石灰(NaOH.CaO)10g，凡士林1瓶。 2．血液性缺氧：带有管道瓶塞的250m1广口瓶和三角烧瓶各2只，酒精灯1盏，三角架3个，充满一氧化碳的皮球胆1只，弹簧夹4个，lml注射器1支。甲酸、浓硫酸各300ml，2％亚硝酸钠溶液10ml 3．组织中毒性缺氧：1 m1注射器1支。0.04％氰化钾溶液。 实验方法： 一、外呼吸性缺氧 1.取小白鼠重只称重后放入广口瓶内，瓶内预先加入钠石灰5g。观察动物一般状况，如呼吸频率、呼吸状态，皮肤、粘膜色彩、精神状态等。 2.旋紧瓶塞，用弹簧夹夹闭通气胶管，防止漏气。记录时间，观察上述各项指标的变化，直至动物死亡。待本次实验内容全部完成之后，一起剖检动物，对比观察血液颜色的改变和其它变化（以下皆同)。 二、血液性缺氧 (一)一氧化碳中毒
实验动物论文
学校代码编号 上海农林职业技术学院 《实验动物》论文 题目：实验动物饲养管理 学院上海农林职业技术学院 专业（方向）环境监测与治理技术 班级 学号 姓名 指导教师 2012年12月26日
摘要 (1) 关键词 (1) 1 常用实验动物饲料 (2) 1.1啮齿类实验动物的营养需要 (2) 1.2饲料的种类 (2) 1.3饲料的质量要求 (2) 1.4饲料营养素对动物实验结果的影响 (3) 2 常用实验动物管理 (3) 2.1实验小鼠的饲养管理要点 (3) 2.2实验大鼠的饲养管理要点 (3) 2.3实验豚鼠的饲养管理要点 (4) 2.4实验兔的饲养管理要点 (4) 2.5实验犬的饲养管理要点 (4) 参考文献……………………………………………………………4、5
本文从常用实验动物饲料与管理两个方面讨论了实验动物的饲养与管理方法。饲料营养与动物生活环境因素影响着动物的健康与生活。本文说明了部分实验动物的饲养与管理办法，并结合学习实际,加深了对问题的理解。 关键词：饲料管理实验动物
实验动物饲养管理 1 常用实验动物饲料 1.1啮齿类实验动物的营养需要 大鼠、小鼠饲料蛋白质占18%-20%左右，粗纤维5%，粗脂肪4%。维生素A需求量为每公斤饲料含7000-14000IU，通常以加入1%的清鱼肝油来满足。应适当补充维生素E，每公斤饲料含60-120IU，以提高受孕率。 金黄地鼠饲料蛋白质占21%~24%，动物性蛋白尚应含相当比例，主要来源于鱼粉和鸡蛋。植物性蛋白主要来源于黄豆和豆粉。此外, 应喂饲一些白菜、萝卜、黄瓜等青饲料。 豚鼠饲料蛋白质占17%-20%左右，尤其对精氨酸的需要量较高。由于它的盲肠较发达，因而对纤维素亦有较高需要，应占饲料总量的10%-15%左右。豚鼠体内不能合成维生素C，因此要在饲料中添加。一般每公斤饲料含维生素C 1500mg，妊娠豚鼠每公斤饲料含维生素C 1800mg。实际喂养时，主要可喂饲苜蓿草粉、干草粉和(或)绿色蔬菜等。 兔,新生家兔一般要哺乳一个月左右才能开始吃饲料。家兔饲料中蛋白质应占14%-17%，粗脂肪占3%，粗纤维占10%-15%以上。饲料中应含大量干草,以补足其对粗纤维的基本需要量，从而可防止家兔因粗纤维摄入不足而导致腹泻。 犬，为肉食性动物，其饲料中应含20~24%蛋白质，4.5%-6.5%粗脂肪，3%
病理生理实验报告
实验一组织晶体渗透压改变在水肿发生中 的作用（水肿） 实验目的：通过实验了解组织晶体渗透压的改变在水肿发生中的意义，加深对水肿发生机理的理解。 实验动物：蟾蜍2只，要求体重、大小相仿。 器材与药品： 200克电子天平1台，盛水玻璃缸2个，2m1注射器连4号针头2支，脱脂棉球、纱布块适量。0.65％氯化钠液和20％氯化钠液各10ml。 实验方法： 1. 取蟾蜍2只分别称重，注意观察背部外形。 2. 向一只蟾蜍背部淋巴囊内注入0．65％氯化钠液(即蛙生理盐水)2 m1，向另一只蟾蜍背部淋巴囊内注入20％氯化钠液2ml(蟾蜍皮下淋巴囊分布见图2－1)，然后分别放入装有水的玻璃缸内。 3．1小时后由水中取出蟾蜍，擦掉体表浮水后分别称重，同时仔细观察背部外形改变。 4. 解剖蟾蜍：由椎骨孔破坏神经系统。重点观察背部淋巴囊的变化。解剖观察其它脏器和解剖结构。 实验结果：将观测到的各种实验结果记入下表内 注前体重注前背部外 形注后体重注后背部外 形 注0.65％氯 化钠 141.2g 正常平坦146.3g 正常平坦
注20％氯化 141.8g 正常平坦169.5g 变肥 钠 结果分析：实验中这两只蟾蜍分别注射了不同浓度的氯化钠溶液，组织晶体渗透压升高，两只都有一定的吸水能力，注射低浓度氯化钠溶液的青蛙吸水较少，体重只有轻微的增长，体型无明显变化；注射高浓度氯化钠溶液的青蛙吸水较多，体重有大幅度的增长，体型出现明显变化。结果表明晶体在体内的浓度越高，吸水性越强。 心得：
实验二缺氧 实验目的：通过复制外呼吸性缺氧、血液性缺氧及组织中毒性缺氧的动物模型。 实验动物：成年小白鼠4只． 器材与药品： 1．外呼吸性缺氧：带有橡皮塞的250毫升广口瓶1只(见图3—1)，搪瓷盘1只、镊子、剪子各2把，100g电子天平1台。钠石灰(NaOH.CaO)10g，凡士林1瓶。 2．血液性缺氧：带有管道瓶塞的250m1广口瓶和三角烧瓶各2只，酒精灯1盏，三角架3个，充满一氧化碳的皮球胆1只，弹簧夹4个，lml注射器1支。甲酸、浓硫酸各300ml，2％亚硝酸钠溶液10ml 3．组织中毒性缺氧：1 m1注射器1支。0.04％氰化钾溶液。 实验方法： 一、外呼吸性缺氧 1.取小白鼠重只称重后放入广口瓶内，瓶内预先加入钠石灰5g。观察动物一般状况，如呼吸频率、呼吸状态，皮肤、粘膜色彩、精神状态等。 2.旋紧瓶塞，用弹簧夹夹闭通气胶管，防止漏气。记录时间，观察上述各项指标的变化，直至动物死亡。待本次实验内容全部完成之后，一起剖检动物，对比观察血液颜色的改变和其它变化（以下皆同)。 二、血液性缺氧 (一)一氧化碳中毒
实验动物学论文
实验动物在生物医学等各领域的应用 摘要：实验动物是指用于科研、教学、生产、检测、鉴定及其他科学实验的动物，其人工饲育的遗传背景明确、来源清楚，并严格控制其所携带的微生物。实验动物是生命科学的基础和重要的条件，它的重要性在于一方面它是生物医学研究的重要手段，直接影响着许多领域研究课题成果的确立和水平的高低。另一方面，它的提高和发展又会把许多领域课题的研究引入新的境地，推动生物医学的发展。 关键词：实验动物重要应用地位前景 正文： 1.实验动物在生物医学发展中的重要作用 回顾生物医学发展的历史不难发现，许多具有里程碑式的划时代研究成果，往往与实验动物及动物实验密切相关。 1628 年，英国科学家哈维通过对蛙、狗、蛇、鱼、等动物的解剖与生理研究，发现了血液循环是一个闭锁的系统，阐明了心脏在动物体内血液循环中的作用。1878 年，德国科学家科赫通过对牛、羊疾病的研究，发现了结核杆菌，指出了细菌与疾病的关系等科学突破。生物医学家巴甫洛夫指出，“没有对活动物进行实验和观察，人们就无法认识有机世界的各种规律，这是无可争辩的”。[1] 2.简述实验动物种类及其在现代生物医学研究领域的重要性 实验动物按传统的动物学分类：即啮齿类动物、畜类哺乳动物、禽类、鱼类、非人灵长类。按微生物等级分类：即无菌动物(BM)、无抗原动物、已知菌动物、无特定病原体动物(SPF)、普通动物(K)。我国将实验动按微生物等级分四级，即普通动物、清洁动物、无特定病原体动物(SPF)、无菌动物(BM)。按遗传学特性分类：将实验动物分为近交系动物、突变系动物、远交系动物、系统杂交动物和普通杂种动物五种类别。在生物医学研究领域里，进行实验研究的条件可概括为A EIR 四个基本要素。所谓A是指Animal（动物），E 是指Equipment（设备），I 是指Information（信息），R 代表Reagent（试剂）。[2]实验动物是实验研究中不可缺少的条件，由此可以看出实验动物是现代生物医学研究的重要支撑条件。 3.实验动物在相关领域广泛应用 3.1制药工业方面 实验动物在制药工业方面的应用非常广泛，新药的研制，必须通过安全性试验，其中包括动物的急性、亚急性及慢性毒性试验，三致试验（致癌、致畸、致突变），有的还要利用实验动物模型进行效果试验，证明对机体无毒性或安全可靠、有效后方能申请报批，否则可能会给人类造成不可挽回的恶果。如1962年西德某药厂生产一种反应停药物给孕妇使用，结果造成畸胎儿发生率增高，给子孙后代带来灾难。药品出厂前，每批都要用实验动物进行检测，以确保绝对安全。化工产品的毒副作用对生命的影响，都是从动物实验中获得的结果。因此，实验动物在医药、化工领域里被称为“有生命的试剂”，是各种药理、毒理实验工作的重要条件，成为衡量医药、化工科学技术水平的重要标准。[3] 3.2畜牧科学方面 疫苗的制备和鉴定、生理试验、胚胎学研究、营养饮料的分析、保持健康群体以及淘汰污染动物等工作，都要使用实验动物。特别是在畜禽传染病的研究工作中，常急需要有合格的实验动物进行实验。目前在兽医科学研究上，由于所用试验动物或鸡卵不合乎标准，质量很差，严重影响科研效果，甚至在某些疫病
动物实验报告
动物实验报告 This model paper was revised by the Standardization Office on December 10, 2020
实验动物学实验报告 学院： 学号： 姓名 时间： 实验一：小鼠实验 一、实验目的 1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法； 2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法； 3、掌握小鼠的标记方法； 4、掌握小鼠的基本采血技术； 5、掌握小鼠的常用给药方法； 6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置； 二、实验材料 1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠； 2、实验器械及试剂：鼠笼；小鼠固定器和小鼠固定板；眼科剪；眼科镊；解剖刀；1ml 注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液；2%水合氯醛；
三、实验内容及方法 1、小鼠的抓取和固定 抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。 2、小鼠的雌雄鉴别 雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌，远者为雄。另外，雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。 3、小鼠的标记方法 1）耳孔法 用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口，左耳为十位，右耳为个位。 2）剪趾法 适用于出生一周以内新生仔鼠； 3）染色法
用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位，注意逆着毛发生长方向刷。 4、小鼠的基本采血 1）剪尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。将鼠尾擦干，再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取～血，切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血，进行血常规检查。 2）眼眶后静脉丛取血 当需中等量的血液，而又需避免动物死亡时采用此法。用左手固定鼠，尽量捏紧头部皮肤，使头固定，并轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难，使眼球充分外突（示眼眶后静脉丛充血），右手持毛细玻璃管，沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入。刺
动物实验报告
动物实验（小鼠）的一般操作技术 实习日期：2007—11—13 一目的和要求： 通过实际操作，使学生掌握实验的一般操作方法，包括动物的抓去和固定、编号被毛的去除给药途径麻醉采血和处死等方法。 二实习内容： 1 实验动物的抓取 2 实验动物性别的鉴定 3 实验动物编号的标记方法 4实验动物被毛的去除 5 实验动物的给药途径和方法 6 实验动物的麻醉 7实验动物的采血 8 实验动物的处死方法 9 解剖 三实验的方法 1 小鼠的抓取：抓取时先用手将鼠尾提起，放在实验台上，轻轻拉尾，用左手拇指和食指抓住小鼠两耳和头颈部皮肤，将鼠置于左手中心，用左手无名指和小指按住尾巴和后肢，即可做其他实验操作作用。 2 小鼠性别的鉴定：抓取小鼠后，观察动物肛门与生殖器之间的距离。距离远的为雄性，距离近的为雌性。成熟的雄性小鼠可看到小鼠睾丸的轮廓。 3 小鼠编号的标记方法：用被毛染色法做小鼠编号。用苦味酸（黄色），一般左前肢为1，左侧腹部为2，左后肢为3，头颈部为4，背部为5，尾根部为6，右前肢为7，右腹部为8，右后肢为9。用两种颜色可以染到99。 4 小鼠被毛去除：有剪毛法，拔毛法，剃毛法，用硫化钠脱毛法。 5 给药途径和方法：给药途径有经口灌胃法，经呼吸道吸入，经皮肤吸入和注射给药法。用一支特制的灌胃针进行灌胃，小鼠一般给1.5ml以下。用注射器抽好液体，然后抓取小鼠，针头延侧角通过食管进入胃内，然后将液体注入。 6 小鼠的麻醉：麻药有挥发性的和非挥发性两种。给药途径有吸入性麻醉，注射给药。小鼠一般用腹部麻醉的方法。用水合氯醛300ml／kg，根据小鼠的体重给药0.25ml。抓取小鼠后，使针头和腹部成30度的角，刺入腹腔，回抽若无回血或者肠内容物可以注入。注入麻药5分钟后，小鼠失去知觉。 7 小鼠的采血的方法：有静脉采血法，尾部采血法，眼眶静脉采血法和心脏采血法。将小鼠装入固定盒中，露出尾部，用二甲苯图擦，使尾静脉充盈。用锋利的刀片切断一根尾静脉即可用毛细管采血，也可用细注射器从尾静脉采血。 8 小鼠的处死方法：用颈椎脱臼的方法或者注射过量的麻药使小鼠死亡。 9 解剖：从腹部开始，查看腹部脏器，以肝脏胃脾肾输尿管姨小肠大肠膀胱前列腺性腺顺序。然后再看胸部，看到肺脏心脏胸腺等器官，并在直视的情况下进行了心脏的采血。然后再看颈部的解剖。最后解剖头部。 四讨论和结论： 通过此次实验，我们学到了实验动物的一般操作技术，如抓取和固定、编号被毛的去除给药途径麻醉采血和处死等方法。为以后进入临床进行实验研究做好了初步的准备。
动物实验论文
田螺的解剖 姓名陈旭 中北学院生物技术 摘要：田螺属于软体动物门腹足纲，为淡水习见螺类，生活于湖泊，河流，水库，池塘及稻田内，以宽大的肌肉质足在水底爬行，尤其喜栖息在水草茂盛的水域，在我国分布甚广，为世界性分布。 关键词：齿、心室、闭管式循环、神经索、脑神经节、组神经节、侧神经节、脾神经节 正文：该螺壳大，薄而坚，黄褐色到深褐色，表面较光滑，壳高40-60mm，宽25-40mm，螺层6-7层。最小的螺层位于顶部，最大的螺层位于底部，螺层与螺层之间的界限为缝合线。圆田螺缝合线较深，螺层明显。壳口近卵圆形，厣角质，薄片状，梨形，具有同心圆花纹。它的头，足，内脏团等均可藏于壳内，以厣封住壳口。活动时，仅头，足可自壳内伸出。 解剖时，取一活体圆田螺，可通过其生殖腺的颜色来辨别螺的性别。田螺的头部较发达，头前端有一突出的吻，吻腹侧中央为口。吻基部两侧就是一对较长的触角。雄性的右触角粗短，为交配器官，雄性生
殖孔位于顶端，据此可区分雌雄。用镊子自体螺层开始，依次轻轻敲破螺壳，用镊子将虽壳片移去，将软体部剥离并分离各器官。 将解剖剪沿出水管插入，沿膜下淡黄色的鳃和暗褐色的肠管剪开外套膜，进行观察。在外套腔的左侧紧贴着外套膜，可见一栉状鳃，由一排三角形的小片组成，表面具纤毛，内有血管。当水流经入水管进入外套腔，鳃从水中摄取氧，将二氧化碳排于水中，气体交换后，水从出水管排出。用镊子可大致推出出水管很长，这可以保证将带有排遗物和排泄物的水远离入水管的地方。 头部最前端有口，口后为膨大的咽，内有齿舌。齿舌为软体动物特有的器官，它是由许多角质齿有规则的排列而成，似锉刀，每一排角质齿有中央齿一个，侧齿一到数对，缘齿一对或多对，齿舌之下有支撑齿舌的软骨为齿担，田螺以水生植物和藻类为食，摄取食物即靠齿舌和齿担在多束肌肉的控制下，作前后伸缩运动，以刮取食物。其齿式为2.1.1.1.2。 咽后是细长的食道，食道后为膨大的胃，胃后为管状的肠和直肠，肠扭转180度，折向前行，最后以肛门开口于外套腔内，出水孔附近。唾液腺有一对，位于食道与胃之间，有管入咽。肝为褐色，位于胃的周围，扭曲盘旋于内脏团的顶端。肝很发达，由分支的管状腺组成，有肝管通入胃，能分泌糖酶和蛋白酶，是圆田螺的主要消化腺。 在鳃的末端，胃的前方有一薄膜状的围心腔，用剪刀小心地剪开，可以看到里面的肌肉质心室与一壁薄的心耳，心室向前端发出一主动脉，然后分为两支。一支为前大动脉，分支后分别通入头，足，外套
实验动物学实验报告大鼠,小鼠,小鼠的基本实验操作,大鼠的基本实验操作
实验一小鼠的基本实验操作 一、实验目的:通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓拿、标记、给药(灌 胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血(眶后静脉丛,摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。 二、实验动物:昆明小鼠2只(1雌1雄) 三、实验步骤 1、抓取与固定,标记 2、去毛 3、给药:消化道、腹腔注射、尾静脉注射 4、取血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法 5、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉 6、处死:脊椎脱臼法 7、解剖: 雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明) 雌性:双角子宫、卵巢 肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺 四、实验结果 1、抓取与固定标记: 抓取:抓小鼠的尾根部 固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇 指与食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指与无名指将尾巴固定在手掌面。并标记: 2、灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针,紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0、5ml 3、注射给药: 腹腔注射: 从下腹部的两侧进针 ,进针时针与腹部成45°。进针后稍微晃动针,如无粘滞感则可注射药物 尾静脉注射:一人固定小鼠,另一人用左手中指与拇指将尾拉直,食指托住尾部,在尾动脉位置进针注射0、5ml生理盐水。注射完毕拔出针头,用无菌棉球压迫止血。 4、采血 从眼角内侧0、5cm处进针 眼球摘除法:左手抓取用固定小鼠,右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除,头朝下,眼眶内血迅速流出。 5、麻醉: 0、5%氯胺酮腹腔麻醉:本小鼠重22g,按100mg/kg的药量给药,2分钟麻醉成功 6、处死: 脊椎脱臼法:按住头部,将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死 7、解剖: 雄性:寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺 雌性:双角子宫、卵巢 3、7、2 肾上腺:米粒大小 胰腺:位于胃下方,类似于脂肪组织,浑浊状 3、7、4 ,胆囊:芝麻大小,浅绿色,半透明,
实验动物学论文
关于实验动物学生物医学等领域的应用的研究 摘要：在医学生物学的发展过程中，实验动物的重要性已愈来愈被人们所认识。合理地应实验动物对达到预定的实验目的起着至关重要的作用。人类各种疾病的发展过程十分复杂,要深入探讨其疾病的发病及防治机制是不可能也不应该在病人身上进行的,但可以对动物各种疾病和生命现象的研究进而类推到人类,而实验动物又容易感染类似人类的一些疾病,对动物这些疾病的研究结果,可以应用于人类的类似疾病,也有利于其他动物类似疾病的预防和治疗。但另一方面，动物权利论—生态伦理学的一个流派,主张动物和人类一样,也拥有天赋的生存权和自由权。因此，医学工作者应以科学、认真、人道的态度来进行动物实验。 关键词：实验动物学；应用； 生命科学是21世纪的领衔学科群，目前从事这一行业的人是一群名副其实的21世纪追梦人，这群追梦人明天可能取得的成就无疑会造福于人类1中国科学院生物学部生命科学发展战略调研小组．迎接生命科学世纪的挑战口[J]、世界科技研究与发展．2001：23（I）：I-6。但生命的许多研究领域都依赖于实验动物借助于实验动物，可以开展有关生命现象及其本质的许多研究。通过动物实验，可以对化学药物和生物制品进行安全和效果评价，实验动物可以用作人类和动物疾病的模型．研究许多疾病的发生发展及其结构和机能上的变化，探索和评估诊疗方法。以实验动物为材料,开展医学实验研究,进行生命基本规律和病理发生机制的研究并通过推演、类比解决生命科学和医学中的重大问题[2[2施新猷,王四旺,顾为望,等·比较医学[M]·西安:陕西科学技术出版社, 2003·15-25· 因此，若没有优质的实验动物，虽有优秀的科研人员精密的仪器，也根本无法准确、全面、多方位、多层次地了解和回答生命科学．实验动物学是现代科学技术的重要组成部分,是生命科学的基础和重要支撑条件,是衡量现代生命科学研究水平的重要标志[3白晶.动物实验“3R”原则的伦理论证[J].中国医学伦理学,2007,20(5):48~50. 但是，近年来由于动物保护运动的兴起,保护动物权利的呼声愈来愈高涨,动物实验面临动物权利论的伦理挑战。鉴于以上本文对实验动物在生物医学上的应
呋塞米对大鼠的利尿作用(实验报告)【定稿材料】
呋塞米对大鼠的利尿作用 目的：利尿药是一种直接作用于肾脏，增加电解质和水的排出从而使尿量增加的药。其中呋塞米是这种药代表，也是一种强效的利尿药。在学习了利尿药的利尿机制之后，以本实验来验证性的观察呋塞米对麻醉大鼠以及清醒大鼠的利尿作用，从而加深对利尿药及其机制的理解，并掌握麻醉和清醒动物的利尿方法。 原理：呋塞米是一种高效的利尿药，其作用机制为：与肾小管髓袢升支粗短上皮上的Na+——K+——2Cl-同向转运体选择性的结合，从而抑制了其转运能力，因此，Na和Cl在肾小管处的重吸收就受到抑制，因此尿浓缩功能受到影响，从而排出大量几乎等渗的尿液。 同时，预先用1%NaCl对实验大鼠进行水负荷可以使实验现象更加明显。对清醒大鼠的利尿实验应采取代谢笼法。 一呋塞米对麻醉小鼠的利尿作用 1 材料与方法 1.1 实验动物：雄性大鼠 1.2 实验药品：乌拉坦麻醉药，1%呋塞米，生理盐水 1.3 实验器材：手术剪，止血钳，眼科剪，烧杯，刻度试管，导尿管，丝线，缝针，试验台，灌胃针。 2 实验方法： 1）取一只正常大白鼠，称重，然后用生理盐水按照20ml/kg
的比例进行灌胃处理。 2）腹腔注射乌拉坦1.2g/kg进行麻醉。麻醉好后将大鼠固定在大白鼠台上，取仰卧位，然后从颈部作一纵切口，分离出一侧颈外静脉，并做好静脉插管。 3）做腹部切口，暴露膀胱，并以荷包蛋缝合的方式对膀胱进行插管，并排空膀胱。 4）于颈静脉插管处注射生理盐水1ml/kg，并收集20分钟尿液流出量作为正常值。 5）同样方法注射呋塞米1ml/kg，并收集20分钟尿液。比较尿量的变化。 3 实验结果：如下。 分别注射生理盐水和呋塞米20分钟收集到的尿量 组号生理盐水呋塞米 1 0.45 2.5 2 0 1 3 0 0.28 4 0 2.1 5 1 3 均数0.29 1.776 标准差0.442 1.114 p值0.0151
动物学论文
四川农业大学成都校区 动物学论文 题目：狼来了——论狼的生活艺术姓名： 学院：动物医学院 专业：动物医学 班级： 学号： 指导教师： 完成时间： 2016.11.18 2016年11月18日
目录 摘要 (3) 关键词 (3) 引言 (3) 1.对狼的认识 (3) 1.1狼的分类学地位 (3) 1.2 狼的历史地位 (4) 2.狼的形态特征 (4) 2.1 狼的魅力 (4) 2.2 狼的优势 (4) 3.狼的社会生活 (5) 3.1 对狼的描绘 (5) 3.2 社会生活中的狼 (5) 4.狼的追猎与捕食 (5) 4.1出色的捕猎者 (5) 致谢 (6) 参考文献 (6)
狼来了 ——论狼的生活艺术（四川农业大学成都校区动物医学专业，四川成都） 摘要：本文概述了狼在分类学上的地位。狼的形态特征，展现了狼独具魅力的风姿，展 现了狼精彩独特的社会生活以及他作为出色捕猎者的机智骁勇。将狼的生活画卷描绘的栩栩如生。 关键词：狼地位形态社会生活 引言：对狼这一生物感兴趣的人很多，我也不例外，深深地被狼神秘的身影所吸引。狼在我们的文化生活中也占据了重要地位，所以希望能够探索狼的精彩世界。 1.对狼的认识 1.1 狼的分类学地位 中文学名灰狼 拉丁学名Canis lu 界动物界 门脊索动物门 亚门脊椎动物亚门 纲哺乳纲 亚纲真兽亚纲 目食肉目 科犬科 属犬属 种灰狼
保护等级Ⅱ 1.2狼的历史地位 一般来说，在西方人的心中，有三种不同类型的狼，他们正好构成一幅三联画：第一幅画中是《小红帽》中那只聪明却又不幸的大坏狼；第二只是《三只小猪中》那只沮丧的狼，叫伊其基尔；第三幅画环绕着光环，画中正是阿西西的圣方济各的朋友：狼兄弟。 2.狼的形态特征 2.1狼的魅力 狡黠的眼神、优雅谨慎的步伐、高贵独立的性格——都为狼这一生物笼上了一层神秘的面纱。这种大型犬科动物因其犀利的外表、天才的捕猎能力、超乎寻常的适应力和才能智慧赢得了人们的尊敬。 2.2狼的优势 犬科狼是高级犬科家族的食肉动物，是恒温脊椎动物，体表有毛覆盖，为幼小动物哺乳。狼是野生犬类中最大的动物，也是有着最好的身形比例的动物之一；身长在3英尺到4.6英尺之间，肩高在24到36英寸之间。一只成年雄性的野狼体重大约在110磅，而雌性狼只有20到30磅。那条粗粗的悬着的狼尾巴长度在12英寸到24英寸之间，它是狼用来进行身体语言交流的工具之一。 狼的颈部是如此强健似乎狼身上所有的力量都聚集在此。像所有脊椎动物一样，狼也有7枚颈椎骨。狼的动作敏捷神速，其肩胛骨比一般的狗要尖削很多，这带给他们行动上极大的便利。他们有着粗而平滑的鬃毛，一旦想威慑四座，其鬃毛必定笔直挺立。至于他们的“冬衣”——脸颊上的毛特别厚。这样的厚毛再加上他们的一双斜眼，构成了狼独特的面相。他们耳朵短，但头却宽大。狗头大约有7立方英寸，而狼头却有10立方英寸左右。 狼最出彩之处是他极具魅力的眼神。这些杰出的犬类，以他们琥珀色的、黄色的、橙色的眼睛，傲然在黑夜中扫射，发出非凡之光，使猎物无法逃脱。狼的这种眼光得归功于视网膜和巩膜之间的脉络膜层。狼的视野有100度，这种视野更适合观察大的动物而不是细微之处。 狼的下颌比狗的下颌张得大，并且是更坚硬的武器。强悍的颈脖、宽大的肩再加上狭小的胸腔这些使狼堪称力量型和耐力型奔跑者。他们快速有力地呼吸，修长而又结实的腿，无异于马拉松运动员，狼的前指关节微微向内，脚上有五个趾，有一个趾从未触过地。狼毛由三种不同的毛不规则构成：长而粗的毛、参差不齐的毛、绒毛。狼每次在春末脱一次毛，到了秋天，狼又穿上了新外套。
狗的解剖实验报告
狗的解剖实验报告 篇一：解剖母鸡实验报告 实验报告--母鸡的解剖 试验时间：XX年12月7日 一、解剖程序 把鸡处死，方法：在鸡的颈部靠近头处开口放血致死，然后进行解剖观察 二、观察内容 （一）消化系统 1. 口腔：无软腭，无唇齿，有上下喙，舌形态与喙相似。 2.嗉囊：食管的膨大部，位于叉骨之前，直接在皮下，偏右 2. 腺胃：纺锤形，粘膜层有胃腺 3. 肌胃：紧接腺胃，近圆形，呈暗红色，粘膜面被覆的角质膜又称鸡内金 4. 十二指肠：位于腹腔右侧，前端与肌胃相接，灰白色，管状
5. 空肠：前接十二指肠，后接回肠，灰白色，管状 6. 回肠：前接空肠，后接结直肠，夹在两条盲肠之间，灰白色，管状 7. 直肠：管腔较大，自回盲口直达泄殖腔 8.盲肠：一对相对很长的盲肠，壁内有丰富的淋巴组织，基部处集成盲肠扁桃体 9.泄殖腔：是消化泌尿生殖系统后端共同通道，由前向后分为粪道泄殖道肛道 10.胰腺：夹在十二指肠肠袢之间，淡黄色，长条形 11. 肝：位于腹腔前下部，暗褐色，分左右两叶，右叶内侧有一绿色胆囊 （二）呼吸系统 1.气管：较长而粗，半透明管状，位于皮下，偏右，进入胸腔在心基上方分为两个支气管 2. 鸣管：位于气管与支气管交叉处，分鸣骨和内外鸣膜，是发声器官 3. 肺：鲜红色，位于胸腔背侧，有很深的肋压迹。 4.气囊：肺内支气管粘膜突出形成，外被浆膜。
（三）心血管系统 心脏：位于胸腔前下方，心基朝向前方，椎体形 （四）生殖系统 1. 卵巢：位于左侧前半部的腹侧，上有大小不一的卵泡。 2. 输卵管：分为：漏斗部，壶腹部，峡部，子宫，阴道五部分 壶腹部：受精部位 壶腹部：卵白分泌部位 峡部：形成卵壳膜 子宫部：形成卵壳 阴道部：在蛋壳外面形成一层角质薄膜 （五）淋巴系统 1.腔上囊（法氏囊）：位于鸡的泄殖腔的背侧，是泄殖腔的一个盲囊 2.脾：位于腺胃和肌胃交界处背侧，深红色 （六）泌尿系统