胡萝卜组织培养系统实验

胡萝卜组织培养系统实验
胡萝卜组织培养系统实验

胡萝卜组织培养系统实

标准化工作室编码[XX968T-XX89628-XJ668-XT689N]

云南大学生命科学实验教学中心

实验报告

课程名称:细胞工程实验

院系:生命科学学院

2013级生物技术(国家生命科学与技

年级专业:

术基地班)

姓名:杨梦梅选课号:

学号:座号:A2

开课日期:学期:2015秋季学期

任课教师:吕琦、牛芸

云南大学生命科学实验教学中心制

胡萝卜愈伤组织的诱导、继代及细胞悬浮培养研究

第一作者:杨梦梅同组实验者:赵姗

(云南大学生命科学学院, 昆明 650504)

摘要: 以胡萝卜肉质根为外植体诱导出愈伤组织, 并建立细胞悬浮系. 实验结果表明: 胡萝卜肉质根是诱导愈伤组织和进行细胞悬浮培养的可行外植体; 诱导致密型愈伤组织的最佳激素浓度配比是 mg/ L 2, 4- D+ mg/ L KT;继代培养1代~ 2时,可得到高活性的悬浮细胞系;细胞悬浮培养细胞经过 14 天达到高峰期(生长平台)。

关键词: 胡萝卜; 组织培养; 细胞悬浮培养; 致密型愈伤组织;

The study about inducement, subculture and suspension

cell lines of Carrots’ callus

Abstract: Carrots’ flesh roots can induce callus as explants, and then it establishes suspension cell lines. The experimental results show that: Carrots’flesh roots really can induce callus and then make suspension cell lines. In order to induce high density callus, the best hormone ratio is mg/ L 2, 4- D+ mg/ L KT. Subculturing the cell line for 1 to 2 times, we

can obtain the suspension cell line with high activity. After 2 weeks, the cell line reaches to the peak of growth.

Keywords: Carrot; tissue culture experiments; suspension cell; callus in

high density

胡萝卜( Daucus carota L . ) , 属于十字花科植物, 是一种十分重要的蔬菜作物, 由于胡萝卜肉质根营养丰富,约含有88%的水、6%~8%糖、1%~2%植物纤维,0.7%~1.2%蛋白质、1%灰份及0~3%脂肪,及其适于生食、加工、烹调等多种用途, 在世界范围内广泛栽培。中国是农业大国, 胡萝卜作为蔬菜作物在人们生活中起着重要的作用。因此, 加快我国胡萝卜育种研究以成为迫切需要。近些年来, 随着生物技术与分子生物学技术的快速发展, 作为生物技术研究的理想材料, 许多国家对胡萝卜体细胞杂交技术、遗传转化与再生技术、分子标记与基因克隆技术进行了广泛深入的研究。我国科研工作者在胡萝卜的生物技术与分子生物学研究上也取得了一定进展, 特

别是在组织培养、原生质体融合、遗传转化及再生等方面。但是在胡萝卜细胞培养方

面并不是太多, 因此继续深入研究还是很有必要的。

本文对胡萝卜愈伤组织诱导的最佳培养基和细胞悬浮培养的条件进行探讨, 为其次

生代谢产物α- 胡萝卜素、β- 胡萝卜素(维生素A前体)的生产以及将来的工厂化和分子生物学研究打下基础。

1材料和方法

1. 1 材料来源

胡萝卜肉质根自农贸市场购买.

1. 2 方法

1. 2. 1 MS培养基的配制1000ml

1)用大烧杯取蒸馏水100-120ml

2)依次用移液管量取加入母液:100ml大量(10x)、100ml大量钙盐(10x)、

10ml微量I(100x)、1ml微量II(1000x)、10ml铁盐(100x)、10ml有机(100x)、100ml有机肌醇(10x)、以及适当含量植物激素。

3)称取30g蔗糖加入,搅拌直至全部溶解,作为1号溶液备用。

4)称取9g琼脂,用量筒量取500ml蒸馏水一起加入1000ml体积白瓷缸中,放

在电炉上一边加热一边搅拌,加热直至清澈无沉淀。将1号溶液加入,继续

加热搅拌,至将要沸腾,离火。

5)用pH试纸调pH至。

6)在白瓷缸中定容至1000ml,搅拌均匀。

7)分装至350ml培养瓶中每瓶约40~50ml。121℃高压灭菌20min。

探究实验:

( 1) 以胡萝卜肉质根形成层为外植体诱导。用自来水洗净胡萝卜肉质根, 用小刀切成长约6~7cm块段, 将其在 75% 的酒精中消毒 60s, 再用0. 1% 的升汞消毒 10min或用20%次氯酸钠水溶液消毒20min, 最后用无菌水漂洗三遍每遍5~10min..

(2)消毒好的胡萝卜根块, 切去形态学下端的5~10mm厚的一片, 留下部分用消毒好的小刀, 沿截面横切成厚度 3~5mm 左右的小圆片, 然后将小圆片的韧皮部和木质部切去, 留下形成层, 再切成长 3mm, 宽 1. 5mm, 高 3~5mm 的小长块, 分别接种在M1、M2、M3、M4的诱导培养基上.

(3)获得愈伤后进行继代培养, 培养环境条件与诱导培养相同.

1. 2. 3胡萝卜愈伤组织的继代

(1)从培养瓶中取出愈伤组织,置于无菌培养皿内,用解剖刀将愈伤组织坏死部分剔除并将愈伤组织切成黄豆大小颗粒,放在无激素的新鲜培养基表面,用镊子轻轻压实,每个培养瓶接种2~3个切块。用记号笔标注操作者、组别和日期。(2)3~4周后在相同培养基上继代培养1次。

1. 2. 4胡萝卜细胞无菌系的建立悬浮培养

(1)用镊子夹取在固体继代培养基上继代 10d 左右的胚性愈伤组织即分散性好、疏松的愈伤, 称取鲜重2g左右的胡萝卜愈伤组织,在灭过菌的培养皿中用无菌镊子尽量将其拨散。

(2)将散碎的愈伤组织转移入盛有20ml液体无激素MS培养基的三角瓶中。(3)置于80~120r/min摇床上25℃暗培养。

(4)每隔3天换液1次,用吸管吸去3/4旧培养液,再加入等量新鲜培养液。连续培养2 代~ 4 代后逐渐形成稳定的细胞系。

——胡萝卜愈伤组织的“器官分化”与“体细胞胚发生”

(1)在超净工作台上,用镊子去除继代培养1~2次的疏松愈伤组织,在无菌载台上分割成长 3mm, 宽 1. 5mm, 高 3~5mm 的小长块,去除黑色、灰色或棕色的坏死细胞部分。

(2)接种在M5、M6培养基上,每瓶1~3块,轻轻压实,以保证和培养基充分接触。

(3)标注清楚组别和日期。26℃,光照16h/d,4周后观察实验结果。

2实验结果

2. 1 实验结果记录:

我们组负责配置的是M1,M2,M3,M4每种各接种两瓶。

因实验培养时间问题,还未观察到具体结果。

预测实验结果为:如果愈伤组织脱分化以后进行再分化,则应当先时愈伤组织下部分化出根,在上部发育出芽,随着不断地生长,最终发育成完整的植株;如果是体细胞胚发生,则可以不经过愈伤组织阶段就可以发育为体细胞胚;但是体细胞胚比愈伤组织难生成得多,很多植物还无法进行体细胞胚的诱导生成,体细胞胚一旦形成,便可慢慢的分化为完整的植株。与愈伤组织发生相比,体细胞胚更不容易发生遗传变异,从而诱导分化发育成的植株更稳定。

实验结果图片

第一次培养

M1-1 M2-1 M2-2 M4-1 M3-1 培养成功

M4-2 霉菌

M1-2 细菌污染

M3-2 细菌污染烫伤

污染情况:接种8瓶,污染3瓶,5瓶未污染

第二次培养

1-2烫伤

2-1霉菌

1-1 愈伤组织

2-2愈伤组织

继代实验情况因未观察到,所以未附图。

3.分析讨论:

对实验现象、实验结果的分析及其结论

然后再在继代培养基上可以增殖得到更多更好的愈伤组织。

实验总结

4.展望拓展:

这次的实验总体来说还是失败的,第一次实验成功率低原因在于在做实验前没有好好了解实验流程,虽然老师在上课时做了相应的讲解,但一些细节上的操作和技巧还是没有弄明白,对于无菌操作的重要性还是没有深刻的意识。在第二次实验中我更加注意了这个问题,将无菌操作台上的物品按最合理的方式放置,既不影响操作,也方便拿取,操作过程不离实验台,仪器轻拿轻放,尽量不带起空气大幅度流动,将酒精灯移到空气滤膜附近,在整个过程都在酒精灯旁操作;另一方面,在以后的实验中自己一定要提前对实验内容有所了解,将课件及实验讲义上的知识吃透,理清实验思路。这是能做出成功实验的基础,否则,在老师讲解时听不懂,自己思路不清晰,这将使我们在做实验时的难度加大,浪费做实验的宝贵时间,实验也不易做成功。

经过这次的测试技术实验,我个人得到了不少的收获,一方面加深了我对课本理论的认识,另一方面也提高了实验操作能力。这次的实验跟我们以前做的实验不同,因为这次实验大部分是个人操作,我觉得这次我是真真正正的自己亲自去完成,所以是我觉得这次实验最宝贵,最深刻的。比较高兴的一点是我的愈伤组织成活率在同班同学里还是比较高的,在准备愈伤组织的扩大化培养中,大多数同学用的都是我的材料,心里感到很自豪。

在这次的实验中我也深深体会到课本上的纯理论知识对于实践的指导作用:弄懂实验原理,然后通过实验的操作的靠自己亲自动手,亲自开动脑筋,亲自去请教别人才能得到提高的。

临近期末,非常感谢牛芸老师和吕琦老师在本学期给予我们的细致生动的教学,也许以后不见得会再学习更多更加专业的后续课程,但是它对于我们拓展专业及相关知识面、温习所学的细胞工程内容、应用理论分析问题、解决问题的方面体现的思维方式却让我受益匪浅。特别是牛芸老师在指导我实验操作时说的那一句“这样来控制会比较省

力,可爱的孩子!”谢谢老师的悉心教导,在此,学生提前祝福老师新年快乐,身体健

康!

参考文献:

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艺,2012(06):103~105.

[2] 尹文兵;李丽娟;黄勤妮;李艳红. 胡萝卜愈伤组织的诱导及细胞悬浮培养研究[J].山西师范大学学报(自然科学版版),2004(06):71~76.

[3] 莫德鑫;郭玉华;孙静;耿惠莉. 胡萝卜组织培养[J]. 教学仪器与实

验,2010,7(26):42~43.

[4] 曾小美;王凌健;夏镇澳;沈允钢. 胡萝卜光自养型愈伤组织的诱导培养及其光合特性[J].实验生物学报, 2003,36(1):18~22.

[5] 胡蓉. 胡萝卜愈伤组织建立中的几个问题探讨[J]. 川北教育学院学报(自然科学版),1995(02):7~9.

[6] 吴石君;林忠平;马诚;王玉秀;赵玉锦;刘红军. 从胡萝卜愈伤组织分离的原生质体获得再生植株[J]. 遗传学报, 1977,4(04):363~365.

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[8] 李浚明;朱登云. 植物组织培养(第3版).中国农业大学出版

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[9] 潘瑞炽.植物组织培养(第三版). 广州:广东高等教育出版社,2003(01):243~247.

[10] 郭勇;崔堂兵;谢秀帧编着.植物细胞培养与应用.北京:科学出版

植物组织培养的一般流程

植物组织培养的一般流程 一个完整的植物组织培养过程一般包括以下几个步骤: (1)准备阶段 查阅相关文献,根据已成功培养的相近植物资料,结合实际制订出切实可行的培养方案。然后根据实验方案配制适当的化学消毒剂以及不同培养阶段所需的培养基,并经高压灭菌或过滤除菌后备用。 (2)外植体选择与消毒 选择合适的部位作为外植体,采回后经过适当的预处理,然后进行消毒处理。将消毒后的外植体在无菌条件下切割成一定大小的小块,或剥离出茎尖,挑出花药,接种到初代培养基上。(3)初代培养 接种后的材料置于培养室或光照培养箱中培养,促使外植体中已分化的细胞脱分化形成愈伤组织,或顶芽、腋芽直接萌发形成芽。然后将愈伤组织转移到分化培养基分化成不同的器官原基或形成胚状体,最后发育形成再生植株。 (4)继代培养 分化形成的芽、原球茎数量有限,采用适当的继代培养基经多次切割转接。当芽苗繁殖到一定数量后,再将一部分用于壮苗生根,另一部分保存或继续扩繁。进行脱毒苗培养的需提前进行病毒检测。 (5)生根培养 刚形成的芽苗往往比较弱小,多数无根,此时可降低细胞分裂素浓度或不加,提高生长素浓度,促进小苗生根,提高其健壮度。 (6)炼苗移栽 选择生长健壮的生根苗进行室外炼苗,待苗适应外部环境后,再移栽到疏松透气的基质中,注意保温、保湿、遮荫,防止病虫危害。当组培苗完全成活并生长一定大小后,即可移向大田用于生产。 二、单项选择题 1. 在衡量杂种优势(H )时,超中优势的计算方法为(P 1 、P 2 分别表示两亲本的性状平均值,F 1 为杂种一代的性状平均值):A. H =[F 1 -(P 1 +P 2 )/2]/(P 1 -P 2 )/2 B. H =(F 1 -P 1 )/P 1 C. H =[F 1 -(P 1 +P 2 )/2]/(P 1 +P 2 )/2 D. H = (F 1 -P 2 )/P 2 2. 根据植物梢端组织发生层学说,如果L II 层细胞发生突变,则下列器官或组织会发生变异的是: A .表皮B. 种子C. 不定根D. 中柱 3. 对于孢子体型自交不亲和而言,下列基因型的杂交组合能产生后代的是: A .S 1 S 2 ×S 1 S 2 B .S 1 S 2 ×S 1 S 3 C .S 1 S 2 ×S 2 S 3 D .S 1 S 2 ×S 3 S 4

胡萝卜素愈伤组织培养开题报告

胡萝卜素愈伤组织培养开题报告 1011421130 徐亮 1、本论文课题国内外概况和文献综述: 应用细胞的全能性(totipotency)理论,即已经分化的细胞仍然具有发育成完整个体的潜能,可以将成熟胡萝卜直根的部分组织培养成完整胡萝卜植株。国内外研究者在探讨胡萝卜愈伤组织的成因时,发现影响胡萝卜愈伤组织的发生频率主要有基因型、外植体、培养基、激素等因素。 胡萝卜的基因型是影响其离体培养再生能力的重要因素。 对于不同品种的胡萝卜种子,大多数研究者认为利用其刚萌发的无菌苗的下胚轴诱导愈伤组织,出愈率较高 [1-3] 。 同一基因型的不同外植体其愈伤组织的发生能力有明显差异,这与不同外植体的分化程度和脱分化能力不同有关。近年来的研究表明,以胡萝卜下胚轴为外植体出愈率要高于子叶和贮藏根 [1,3,4] 。此外,杨宁等(1999)选取胡萝卜贮藏 根的皮层、木质部及韧皮部为外植体,发现从韧皮部诱导出的愈伤组织有较好的生长效果 [5] 。 在胡萝卜愈伤组织诱导和分化中,基本培养基成分对胚性愈伤组织的诱导率和质量均有显著影响,一般认为MS 培养基对体细胞胚的发生更为有利。但也有认为B5基础培养基略优于MS 基础培养基 [1] 。 不同的激素种类、浓度及其组合对愈伤组织的诱导率有显著影响。已有的研究结果表明,在培养基中加入2,4-D,6-BA,BA,KT 等,会影响胚性愈伤组织的发生。2,4-D 的浓度从0.1~10.0 mg/L 不等,6-BA 的浓度从0.2~4.5mg/L 不等,BA 的浓度从0.5~1.0mg/L 不等,KT 的浓度从0.2~2.0mg/L 不等 [2,3,6] 。此外还 有研究结果表明,2,4-D/KT 比值是影响愈伤组织形成的关键因素,随着比值的增大,愈伤组织诱导率有逐渐升高的趋势[7] 。

植物组织培养实验基本步骤。。

植物组织培养实验基本步骤 一、母液的配置 1、MS大量元素母液的配制 将大量元素配制成10倍的母液,使用时再稀释10倍。按照配方表中用量依次分别称取扩大10倍的:NH4NO3 、KNO3 、KH2PO4 、 MgSO4·7H2O 、CaCl2·2H2O ,所有药品称取完毕后用蒸馏水逐个溶解,待全部溶解后,最后定容至500ml,转入500ml细口试剂瓶中,贴上标签,注明母液名称、放大倍数、配制日期、配制人姓名,置于4℃冰箱中保存备用。 2、MS微量元素母液的配制 将微量元素配制成100倍的母液,使用时再稀释100倍。按照配方表中用量分别依次称取:MnSO4· 4H2O 、ZnSO4·7H2O 、 H3BO3 、KI 、CuSO4·5H2O 、CoCl2·6H2O ,用蒸馏水逐个溶解,待全部溶解后,用容量瓶定容至500ml,转入500ml细口试剂瓶中,贴上标签,注明母液名称、放大倍数、配制日期、配制人姓名,置于4℃冰箱中保存备用。 3、MS铁盐母液配制 将铁盐配制成100倍的母液,使用时再稀释100倍。按照配方表中用量分别称取扩大100倍的:称

FeSO4·7H2O 和Na2·EDTA ,把FeSO4·7H2O和Na2·EDTA·2H2O分别置于200ml蒸馏水中,加热并不断搅拌使之溶解(磁力搅拌器,边加热,边搅拌)。保持加热,把FeSO4溶液慢慢倒入Na2·EDTA溶液中并不断搅拌,接近沸腾时停止加热,待溶液冷却后加蒸馏水到最终容积500ml,置于棕色细口瓶中,用力振荡1~2min,贴上标签,注明母液名称、放大倍数、配制日期、配制人姓名。在室温下避光保存一段时间令其充分反应后,再置于4℃冰箱中保存备用。 4、MS有机化合物母液的配制 将有机化合物配制成100倍的母液,使用时再稀释100倍。按照配方表中用量分别称取扩大100倍的:肌醇、维生素B1 、烟酸、甘氨酸、维生素B6 、蔗糖,用蒸馏水依次溶解并定容至500ml后,转入500ml 细口试剂瓶中,贴上标签,注明母液名称、配制日期、配制人姓名,置于4℃冰箱中保存备用。 二、植物激素的配置 常见激素:二氯苯氧乙酸(2,4-D)、萘乙酸(NAA)、吲哚乙酸(IAA)、吲哚-3-丁酸(IBA)、激动素(6-糠氨基嘌呤、 KT)、6-苄氨基嘌呤(6-BA)、赤霉素(GA3)、 1、生长素类: (1)、生长素类在组织培养中的主要作用是:诱导细胞的分裂和根的分化,诱导愈伤组织

胡萝卜组织培养系统实验

云南大学生命科学实验教学中心 实验报告 课程名称:细胞工程实验 院系:生命科学学院 年级专业:2013级生物技术(国家生命科学与技术姓名:杨梦梅选课号:2015107066 学号:20131070156座号:A2 开课日期:2015.09 学期:2015秋季学期 任课教师:吕琦、牛芸 云南大学生命科学实验教学中心制 胡萝卜愈伤组织的诱导、继代及细胞悬浮培养研究第一作者:杨梦梅同组实验者:赵姗 ( 云南大学生命科学学院,昆明650504) 摘要: 以胡萝卜肉质根为外植体诱导出愈伤组织, 并建立细胞悬浮系. 实验结果表 明: 胡萝卜肉质根是诱导愈伤组织和进行细胞悬浮培养的可行外植体; 诱导致密型 愈伤组织的最佳激素浓度配比是 0.5 mg/ L 2, 4- D+ 0.4 mg/ L KT;继代培 养 1代~ 2时,可得到高活性的悬浮细胞系;细胞悬浮培养细胞经过 14 天达到高 峰期(生长平台)。 关键词: 胡萝卜; 组织培养; 细胞悬浮培养; 致密型愈伤组织; The study about inducement, subculture and suspension cell lines of Carrots’ callus

Abstract: Carrots’ flesh roots can induce callus as explants, and then it establishes suspension cell lines. The experimental results show that: Carrots’flesh root s really can induce callus and then make suspension cell lines. In order to induce high density callus, the best hormone ratio is 0.5 mg/ L 2, 4- D+ 0.4 mg/ L KT. Subculturing the cell line for 1 to 2 times, we can obtain the suspension cell line with high activity. After 2 weeks, the cell line reaches to the peak of growth. Keywords: Carrot; tissue culture experiments; suspension cell; callus in high density 胡萝卜( Daucus carota L . ) , 属于十字花科植物, 是一种十分重要的蔬菜作物, 由于胡萝卜肉质根营养丰富,约含有88%的水、6%~8%糖、1%~2%植物纤维,0.7%~1.2%蛋白质、1%灰份及0~3%脂肪,及其适于生食、加工、烹调等多种用途, 在世界范围内广泛栽培。中国是农业大国, 胡萝卜作为蔬菜作物在人们生活中起着重要的作用。因此, 加快我国胡萝卜育种研究以成为迫切需要。近些年来, 随着生物技术与分子生物学技术的快速发展, 作为生物技术研究的理想材料, 许多国家对胡萝卜体细胞杂交技术、遗传转化与再生技术、分子标记与基因克隆技术进行了广泛深入的研究。我国科研工作者在胡萝卜的生物技术与分子生物学研究上也取得了一定进展, 特别是在组织培养、原生质体融合、遗传转化及再生等方面。但是在胡萝卜细胞培养方面并不是太多, 因此继续深入研究还是很有必要的。 本文对胡萝卜愈伤组织诱导的最佳培养基和细胞悬浮培养的条件进行探讨, 为其次生代谢产物α- 胡萝卜素、β- 胡萝卜素(维生素A前体)的生产以及将来的工厂化和分子生物学研究打下基础。 1 材料和方法 1. 1材料来源 胡萝卜肉质根自农贸市场购买. 1. 2 方法 1. 2. 1MS培养基的配制1000ml 1)用大烧杯取蒸馏水100-120ml 2)依次用移液管量取加入母液:100ml大量(10x)、100ml大量钙盐(10x)、10ml微量 I(100x)、1ml微量II(1000x)、10ml铁盐(100x)、10ml有机(100x)、100ml有机肌醇(10x)、以及适当含量植物激素。 3)称取30g蔗糖加入,搅拌直至全部溶解,作为1号溶液备用。 4)称取9g琼脂,用量筒量取500ml蒸馏水一起加入1000ml体积白瓷缸中,放在电炉上一 边加热一边搅拌,加热直至清澈无沉淀。将1号溶液加入,继续加热搅拌,至将要沸腾,离火。 5)用pH试纸调pH至5.8-6.0 。 6)在白瓷缸中定容至1000ml,搅拌均匀。 7)分装至350ml培养瓶中每瓶约40~50ml。121℃高压灭菌20min。

国内外植物组织培养技术的差距

国内外植物组织培养技术的差距 姓名:*** 学号:********* 指导教师:*** 专业班级:生物工程2009级1班 完成日期:2012-06-05

摘要 植物组织培养技术是农业生物技术中最早实现产业化并取得显著经济效益和社会效益的领域,在理论研究和生产实践中具有广泛的应用价值。通过对国内外植物组培的发展概况以及技术差距的分析,指出了我国植物组织培养技术的发展现状、目前存在的主要问题和应采取的措施,并对植物组织培养技术的发展作了展望。 关键词:组织培养概况差距展望 Abstract The plant tissue culture technology is agricultural biotechnology as the first realized industrialization and get a remarkable economic and social benefits of the field, in the theoretical research and production practice has wide application value. Through the domestic and international plant tissue and the development situation of the technology gap analysis, and pointed out the plant tissue culture technology's development present situation, the existing problems and the measures should be taken, and the development of plant tissue culture technology are discussed. Key words:Tissue culture situation gap looking

植物组织培养步骤

植物组织培养概念(广义)乂叫离体培养,指从植物体分离出符合需要的组织.器官或细胞,原生质体等,通过无菌操作,在人工控制条件下进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其他产品的技术。植物组织培养概念(狭义)指用植物各部分组织,如形成层.薄壁组织.叶肉组织.胚乳等进行培养获得再生植株,也指在培养过程中从各器官上产生愈伤组织的培养,愈伤组织再经过再分化形成再生植物。 组织培养的步骤 一、培养基配制 配制培养基有两种方法可以选择,一是购买培养基中所有化学药品, 按照需要自己配制;二是购买商品的混合好的培养基基本成分粉剂,如MS B5等。 自己配制可以节约费用,但浪费时间、人力、且有时由丁药品的质量问题,给实验带来麻烦。就目前国内的情况看,大部分还是自己配制。为了方便起见,现以MS 培养基为例介绍配置培养基的主要过程。 1、配制几种母液 (1) 配制MSfc!元素母液 一般将大量元素分别配制成100倍的母液,使用时再分别稀释100倍。 分别称取 NH4NO3 165g KH2PO4 17g KNO3 190g CaCl2? 2H2O 44g MgSO4 7H2O 37g 各自配成1L的母液。倒入1L试剂瓶中,存放丁冰箱中。 (2) 配制MSa量元素母液 一般将微量元素配制成100倍母液。 依次称取 KI 0.083g Na2MoO4 - 2H2O 0. 025g H3BO3 0.62g CuSO4 5H2O 0.0025g MnSO4 H2O 1.69g CoCl2 - 6H2O 0.0025g ZnSO4 7H2O 0.86g 配成1L母液,倒入1L试剂瓶中,存放丁冰箱中。 CuSO4 5H2O和CoCl2?6H2。由丁称取量很小,如果天平精确度没有 达到万分之一,可先配成调整液。 分别称取 CuSO4 5H2O 0.05g CoCl2 - 6H2O 0.05g 各自配成100ml的调整液,然后取5ml就还有0.0025g的量。

植物组织培养步骤

植物组织培养概念(广义)又叫离体培养,指从植物体分离出符合需要的组织.器官或细胞,原生质体等,通过无菌操作,在人工控制条件下进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其他产品的技术。植物组织培养概念(狭义)指用植物各部分组织,如形成层.薄壁组织.叶肉组织.胚乳等进行培养获得再生植株,也指在培养过程中从各器官上产生愈伤组织的培养,愈伤组织再经过再分化形成再生植物。 组织培养的步骤 一、培养基配制 配制培养基有两种方法可以选择,一是购买培养基中所有化学药品,按照需要自己配制;二是购买商品的混合好的培养基基本成分粉剂,如MS、B5等。 自己配制可以节约费用,但浪费时间、人力、且有时由于药品的质量问题,给实验带来麻烦。就目前国内的情况看,大部分还是自己配制。为了方便起见,现以MS培养基为例介绍配置培养基的主要过程。 1、配制几种母液 (1)配制MS大量元素母液 一般将大量元素分别配制成100倍的母液,使用时再分别稀释100倍。 分别称取 NH4NO3 165g KH2PO4 17g KNO3 190g CaCl2·2H2O 44g MgSO4·7H2O 37g 各自配成1L的母液。倒入1L试剂瓶中,存放于冰箱中。 (2)配制MS微量元素母液 一般将微量元素配制成100倍母液。 依次称取 KI 0.083g Na2MoO4·2H2O 0.025g H3BO3 0.62g CuSO4·5H2O 0.0025g MnSO4·H2O 1.69g CoCl2·6H2O 0.0025g ZnSO4·7H2O 0.86g 配成1L母液,倒入1L试剂瓶中,存放于冰箱中。 CuSO4·5H2O和CoCl2·6H2O 由于称取量很小,如果天平精确度没有达到万分之一,可先配成调整液。 分别称取 CuSO4·5H2O 0.05g CoCl2·6H2O 0.05g 各自配成100ml的调整液,然后取5ml就还有0.0025g的量。 (3)配制MS有机母液

胡萝卜愈伤组织培养

验名称 胡萝卜的愈伤组织诱导培养 实验时间 4月至6月 小组合作: 是○√ 否○ 一、实验预习 1、实验目的: 1.1通过本次实验,能够熟练准确配制培养基,并能根据实验目的设计适合的培养基配方。 1.2熟练掌握外植体的表面消毒技术和无菌操作技术,同时能设计和配制胡萝卜伤组织增殖培养基。 1.3熟练掌握愈伤组织继代培养的基本操作技术,进一步熟悉、规范无菌操作技术;设计和配制胡萝卜细胞悬浮培养的培养基。 2、实验准备: 2.1 MS 母液培养基的配置 主要实验用具和仪器: 电子天平、烧杯、容量瓶、细口瓶、药勺、玻璃棒、电炉。 药品: NH 4NO 3、KNO 3、CaCl 2·2H 2O 、 MgSO 4·7H 2O 、KH 2PO 4、KI 、H 3BO 3、MnSO 4·4H 2O 、 ZnSO 4·7H 2O 、Na 2MoO 4·2H 2O 、 CuSO 4·5H 2O 、CoCl 2·6H 2O 、FeSO 4·7H 2O 、 Na 2-EDTA ·2H 2O 、肌醇、烟酸、盐酸吡哆醇(维生素B6)、盐酸硫胺素 (维生素B1)、甘氨酸。 2.2胡萝卜愈伤组织诱导培养培养基的配置 主要实验用具和仪器: 冰箱、普通天平、三角瓶、移液管、量筒、烧杯、容量瓶、玻璃棒、医用口杯、精密pH 试纸(pH5.4~7.0)、药勺、称量纸、标签纸、封口膜、橡皮筋、电炉、高压蒸汽灭菌锅等。 药品和试剂: MS 培养基母液、琼脂、蔗糖、生长调节物质、蒸馏水、1mol ·L-1HCl 、1mol ·L-1NaOH 2.3胡萝卜愈伤组织诱导 主要实验用具和仪器: 100ml 三角瓶、500ml 搪瓷杯、25ml 量筒、10ml 和5ml 吸管、pH 试纸(5.4~7.0)、封口膜、扎口用棉线、药勺、称量纸、酒精棉球、小块纱布、已灭菌滤纸、枪状镊子、手术剪、解剖刀、已灭菌培养皿、酒精灯等。

植物组织培养试题库


植物组织培养试题库 一、名词 外植体:在植物组织培养过程中,由植物体上切取的根、茎、叶、花、果、种子 等器官以及各种组织、细胞或原生质体等统称为外植体。 热处理脱毒:利用病毒和植物细胞对高温忍耐性不同,选择适当的高温处理染病 植株,使植株体内的病毒部分或全部失活,而植株本身仍然存活。 平板培养法:是把单细胞悬浮液与融化的琼脂培养基均匀混合,平铺一薄层在培 养基底上的培养方法。 消毒:指杀死、消除或充分抑制部分微生物,使之不再发生危害作用。 玻璃化现象:在长期的离体培养繁殖时,有些试管苗的嫩茎、叶片呈现半透明水
渍状,这种现象称为玻璃化。 脱毒苗:是指不含该种植物的主要危害病毒,即经检测主要病毒在植物内的存在 表现阴性反应的苗木。 灭菌:是指用物理或化学的方法,杀死物体表面和孔隙内的一切微生物或生物体,
即把所有生命的物质全部杀死。 褐变:是指外植体在培养中体内的多酚氧化酶被激活,使细胞里的酚类物质氧化
成棕褐色的醌类物质,有时使整个培养基变褐,从而抑制其他酶的活性,影响 材料的培养。 微尖嫁接:指在人工培养基上培养实生砧木,嫁接无病毒茎尖以培养脱毒苗的技 术。主要程序:无菌砧木培养—茎尖准备—嫁接—嫁接苗培养—移栽。 植物细胞全能性:一个生活的植物细胞,只要有完整的膜系统和细胞核,它就会 有一整套发育成一个完整植株的遗传基础,在适当的条件下可以通过分裂、分化 再生成一个完整的植株。 人工种子:将组织培养产生的体细胞胚或不定牙包裹在能提供养分的胶囊里,再 在胶囊的外面包上一层具有保护功能和防止机械损伤的外膜,形成一种类似自然 种子的结构。 试管苗驯化:植物组织培养中获得的小植株,长期生长在试管或三角瓶内,体表 几乎没有保护组织,生长势弱,适应性差,要露地移栽成活,完成由“异养”到 “自养”的转变,需要一个逐渐适应的驯化过程。 器官培养:植物的根、茎、叶、花器(包括花药、子房)和幼小果实的无菌培 养。 微体嫁接:指将 0.1-0.2mm 的茎尖作为接穗,嫁接到由试管中培养出来的无菌 实生砧木上,继续进行试管培养,愈合成为完整的的植株。 快速繁殖(微繁殖): 用组织培养的方法,使植物的部分器官,组织迅速扩大培养, 并移植到温室或农田繁殖出大量幼苗的繁殖方法. 脱分化:将已分化组织的已停止分裂的细胞从植物体的抑制性影响下解脱出来, 恢复细胞的分裂活性.一个成熟的细胞转变为分生状态的过程叫脱分化. 原生质体融合(体细胞杂交):就是使分离下来的不同亲本的原生质体,在离体条 件下通过诱导发生的质膜融合进而细胞核融合,像性细胞受精作用那样互相融合 成一体的现象. 愈伤组织培养:是指将母体植株上的外植体,接种到无菌的培养基上,进行愈伤组 织诱导,生长和发育的一门技术
。1

植物组织培养技术

第2章植物组织培养技术 第二节植物组织培养概述 一、授课章节 第二节植物组织培养概述。 二、学时安排 2学时。 三、教学目标 1.掌握植物组织培养的含义。 2.了解植物组织培养的类型划分。 3.理解植物组织培养的应用原理。 4.掌握植物组织培养的特点和应用。 四、教学重点、难点分析 重点: 植物组织培养的含义、特点和应用。 难点: 植物组织培养的应用原理。 五、教具 电化教学设备,植物组织培养试管苗。 六、教学方法 讲授法,多媒体课件。 七、教学过程 Ⅰ.导入 前面我们学习了有关植物育种的一些知识,今天,请看我给同学们看一样东西(教师拿出试管苗),问同学们这是什么呢?这就是我们要学的植物组织培养。 II.新课

一、植物组织培养的含义 植物组织培养是指在无菌条件下,将离体的植物器官、组织、细胞以及原生质体培养在人工培养基上,给予适宜的培养条件,使其长成完整植株的过程。由于培养物脱离母株在试管内培养,故又称离体培养、试管培养。 二、植物组织培养的类型 植物组织培养由于分类依据不同可划分为不同的类型。 三、植物组织培养的应用原理 (一)植物细胞全能性 植物细胞全能性,是指植物体上每个具有完整细胞核的植物细胞,都具有该植物体的全部遗传信息和产生完整植株的能力。植物的体细胞一旦脱离所在器官或组织的束缚成为离体状态时,在一定的营养、激素和外界条件作用下,就可能表现出全能性,而生长发育成为完整的植株。

(二)细胞的分化和形态建成 (三)植物的再生功能 四、植物组织培养的特点 (一)研究材料来源单一,无性系遗传信息相同 (二)试验经济,管理方便,工作效率高 (三)培养条件人为控制,可周年连续进行试验或生产 (四)生长快,周期短,繁殖率高 五、植物组织培养的应用 (一)优良品种的快速繁殖 (二)脱毒及脱毒苗的再繁育 (三)植物新品种的培育 (四)种质资源的保存和交换 (五)有用次生代谢产物的生产 III.作业 1.简述植物组织培养的概念和培养类型。 2.植物组织培养技术有哪些特点? 3.植物组织培养在生产上有哪些方面的应用? 4.通过学习,你对植物组织培养技术是怎样理解的? 第二节植物组织培养厂房的设计与构建一、授课章节 第二节植物组织培养厂房的设计与构建。 二、学时安排 2学时。

植物组织培养教学设计说明

课题1 菊花的组织培养 ★课题目标 (一)知识与技能 1、熟悉植物组织培养的基本过程 2、理解细胞分化的概念及离体植物细胞的脱分化和再分化 3、通过联系农业生产实际,培养学生活学活用,理论联系实际的能力[来源:学|科|网] (二)过程与方法 归纳MS培养基的配制方法,并设计表格比较微生物培养基与MS培养基的配方的异同。 (三)情感、态度与价值观 通过阅读植物组织培养技术的发展史,课下查阅植物组织培养技术在生产实践中应用的资料,关注学生科学态度的教育,拓展学生视野,感受科学技术在生产实践中的重要价值。★课题重点 植物组织培养过程中使用的无菌技术 ★课题难点 植物组织培养过程中使用的无菌技术 ★教学方法 启发式教学 ★教学工具 多媒体课件 ★教学过程 (一)引入新课 上节课我们探讨学习了如何从土壤中分离出尿素分解菌和纤维素分解微生物及其计数方法。这节课我们来学习研究植物的组织培养技术。

(二)进行新课 1.基础知识 知识回顾:联系“植物细胞工程”,回答下列问题: 1.1具有某种生物全套遗传信息的任何一个活细胞,都具有发育成完整个体的能力,即每个生物细胞都具有全能性。但在生物体的生长发育过程中并不表现出来,这是因为在特定的时间和空间条件下,通过基因的选择性表达,构成不同组织和器官。 1.2植物组织培养技术的应用有:实现优良品种的快速繁殖;培育脱毒作物;制作人工种子;培育作物新品种以及细胞产物的工厂化生产等。 活动1:阅读“植物组织培养的基本过程”,讨论并完成以下问题: 1.3细胞分化:个体发育中细胞在形态、结构和生理功能上出现稳定性差异的过程。 〖思考1〗细胞分化是一种持久性的变化,它有什么生理意义? 使多细胞生物体中细胞结构和功能趋向专门化,有利于提高各种生理功能的效率。 1.4愈伤组织是通过细胞分裂形成的,其细胞排列疏松而无规则,高度液泡化呈无定形状态的薄壁细胞。 〖思考2〗填表比较根尖分生组织和愈伤组织的异同: 1.5植物组织培养的过程可简单表示为: 活动2:阅读“影响植物组织培养的条件”,讨论并完成以下问题: 1.6材料:植物的种类、材料的年龄和保存时间的长短等都会影响实验结果。菊花组织培养一般选择未开化植物的茎上部新萌生的侧枝作材料。

植物组织培养全过程

蝴蝶兰植物组织培养全过程 一实验目的: 1 掌握植物细胞组织培养的原理和方法; 2了解植物组织培养的方法; 3 学习植物组织培养的原理; 4 了解不同浓度BA对蝴蝶兰生根的影响; 5了解炼苗的作用; 6掌握训化的方法步骤; 7观察蝴蝶兰组织培养到种植的全过程,并注意其中出现的问题。 二实验原理: 蝴蝶兰为兰科蝴蝶兰属植物,因花型奇特、色彩艳丽、花期长久而享有“洋兰皇后”的美誉。蝴蝶兰原产于缅甸、菲律宾、台湾、马来西亚、印度尼西亚等热带亚洲地区,具有极高的观赏和经济价值,是国际上最具商业价值的四大观赏热带兰之一。蝴蝶兰属单茎性气生兰,再生能力弱,很难进行分株繁殖,且种子无胚乳,自然条件下难以萌发,增殖系数低,难以满足日益增长的市场需求。应用植物组织培养技术进行蝴蝶兰快速繁殖可以缩短繁育周期,获得大量成株,并可以保持优良性状,维护种质资源,是蝴蝶兰快速繁殖的有效途径。在以蝴蝶兰根尖、茎尖、叶片和花梗芽为外植体诱导原球茎时,由于根尖的诱导率低,摘取茎尖会损失母株等原因,因此在蝴蝶兰组织培养中根和茎都不是诱导原球茎的理想材料。而蝴蝶兰叶片和花梗芽作为外植体诱导圆球茎时,其诱导率较高、对母株伤害不大,是较为理想的外植体材料。 三材料与用具: 蝴蝶兰的茎尖、1/ 2MS +BA2. 5 mg/L + NAA0. 2 mg/L花梗腋芽诱导培养基、1/ 2 MS + BA3. 5 mg/L + KT1. 0 mg/L + NAA0. 5 mg/L + 椰乳10 %增殖培养基、母液、量筒、烧杯、玻璃棒、移液管、无菌水、高压灭菌器、容量瓶、pH试纸、75%酒精、2%次氯酸钠、镊子、解剖刀、超净工作台、95%酒精、穴盘等。 四方法与步骤 (1)母液的配制 根据需要的母液量配制母液,配好后要贴好标签,以防弄错。标签上要注明是什么母液和母液的稀释倍数。将配好的母液进行储藏,要用的时候可以方便使用。 配制培养液时应注意:

胡萝卜组织培养

. 研究背景 1.1 胡萝卜 胡萝卜(Daucus carota L.)为伞形科植物,是世界上最重要的蔬菜作物之一,占蔬菜生产总量的3%,达13.5百万吨(Hole,1996)。胡萝卜块根营养丰富,约含有88%的水、6%~8%糖、1%~2%植物纤维,0.7%~1.2%蛋白质、1%灰份及0~3%脂肪[1] 。由于其富含维生素A前体类胡萝b素和植物纤维,因而是一种重要的营养保健品。其适于生食、加工、烹调等多种用途。中国是农业大国,胡萝卜作为蔬菜作物在人们生活中起着重要的作用。 因此继续深入研究胡萝卜细胞培养还是很有必要的。 1.2 组织培养 植物组织培养是在含有营养物质及植物生长物质的培养基中,培养离体植物组织(器官或细胞)并诱导使其长成完整植株的技术[2]。其理论基础是植物细胞具有全能性,即一个完整的植物细胞拥有形成一个完整植株所必需的全部遗传信息,具有发育成完整植株的潜能,在适宜的条件下能够发育成一个完整的植株。进行离体培养时,植物的组织或器官通过脱分化形成愈伤组织。 胡萝卜价格比较便宜,材料易得,而且在组织培养方面容易诱导发生,我们可以通过这个实验熟悉植物组培。

2. 材料与方法 2.1 材料 培养皿、锥形瓶、无菌纸、镊子、解剖刀、烧杯、量筒、玻璃棒、酒精灯、无菌操作台、高压灭菌锅、微波炉、PH试纸。 MS培养基、2,4-D、6-BA、活性炭、无菌水、蔗糖、琼脂粉、75%酒精、1% (体积比)浓度的次氯酸钙溶液、胡萝卜块根(2012-2-21-怡购,2012-2-24-水果摊,2012-3-13-水果摊,2012-3-21-珠影,2012-3-29-荣一) 2.2 方法 2.2.1 MS培养基的配制200ml ◆用大烧杯取无菌水100-120ml ◆依次用移液管量取加入母液:20ml大量(10x)、2ml微量(100x)、 2ml铁盐(100x)、4ml有机(50x)、2mg/L2,4-D。 ◆称取6g蔗糖加入,搅拌直至全部溶解。 ◆用量筒定容至20ml。 ◆用pH试纸调pH至6.0-6.2 ◆称取1.6g琼脂加入,搅拌。 ◆放入微波炉内加热直至清澈无沉淀。 ◆分装后高压灭菌3h。 探究实验1激素为1.0mg/L2,4-D,1.0mg/L6-BA[3] 探究实验2激素为2.2mg/L2,4-D[3 4]

胡萝卜组织培养教学设计培训讲学

胡萝卜组织培养教学设计 小组成员:何家会、宋亚伟、冯海艳、尹化、黄洁、牛伟坤 一、教学目标 1、知识目标: 说明植物组织培养的基本原理,学习植物组织培养的基本技术,进行胡萝卜的组织培养。 2、能力目标: 掌握培养基制备、外植体消毒、接种、培养、移栽以及栽培等基本操作技术。 3、情感目标: 关注植物组织培养技术在实践生活中的运用,养成严谨的科学素养。 二、实验目的 1、掌握植物组织培养过程中的愈伤组织诱导和生根培养技术。 2、掌握植物组织培养过程中使用的无菌技术。 三、实验原理 植物组织培养: 指通过无菌操作分离植物体的一部分(外植体explant),接种到培养基上,在人工控制的条件下(包括营养、激素、温度、光照、湿度)进行培养,使其产生完整植株的过程。 植物细胞全能性:任何具有完整细胞核的植物细胞,都拥有形成一个完整植株所必须的全部遗传信息和发育成完整植株的能力。 ?外植体:从植物体上分离下来的用于离体培养的那部分材料。 ?愈伤组织:原指植物在受伤之后于伤口表面形成的一团薄壁细胞,在组培中则指在离体培养过程中形成的具有分生能力的一团不规则薄壁 细胞,多在植物体切面上产生。 ?脱分化:已分化好的组织细胞在人工诱导条件下,恢复分生能力,回复到分生组织状态的过程。或者说是由高度分化的植物组织或器官产生 愈伤组织的过程。

?再分化:脱分化后具有分生能力的细胞再经过与原来相同的分化过程,重新形成各类组织和器官的过程。或者说是由愈伤组织再生出小植株的过程。 ?植物体的任何一个细胞都具有全能性。分化了的植物根、茎、叶等组织器官在一定的条件下进行离体培养,给于一定的营养和激素,可以脱分化为愈伤组织。愈伤组织在不同的营养和激素的作用下,又可以再生出完整的小植株。植物的脱分化和再分化培养,证明分化了的植物细胞仍具有形成完整植株所需要的全套基因。 四、实验材料与方法 实验材料 ?胡萝卜(新鲜幼嫩) ?MS培养基+2mg/L 2,4-D+0.5mg/L 6-BA ?70%酒精2.5%NaCLO无菌水超净工作台、光照培养架、高压蒸汽灭菌锅、恒温振荡器、打孔器、小刀、培养皿、解剖刀、镊子、植物组培试剂盒。 实验方法 ?培养基的配制。 ?小麦籽粒用无菌水浸泡10小时。 ?取材、消毒和接种。 五、实验过程 胡萝卜愈伤组织的诱导 1、外植体消毒 用清水洗干净胡萝卜直根,用小刀给其削去表皮,并切成小段放入烧杯中。先用70%酒精对胡萝卜直根消毒5min,用无菌吸水纸吸干,再用10%的次氯酸钠溶液消毒10min(或用0.1%的升汞消毒10min,接着用无菌水漂洗一遍,再用无菌水浸泡30min),放入无菌水中漂洗2~3次,用无菌吸水纸吸干待用。 2、外植体接种 把消毒好的胡萝卜直根放入无菌培养皿中,用消毒好的小刀沿截面将其横切成厚度1mm左右的小圆片,然后将小圆片的韧皮部和木质部切去,留下形成层,

植物组织培养复习题 (标准)

植物组织培养复习题 一、填空题: 1.植物脱病毒一般采用茎尖培养脱毒和热处理两种方法。 2.最典型的培养基是1962年发表的的一种适合于烟草愈伤组织快速生长的改良培养基,该培养基后来被称为MS培养基,现已广泛用于植物组织培养。 3.胚状体发育顺次经过原胚期、球形胚期、心形胚期、鱼雷形胚期和子叶期。 4.具有防止褐变作用的维生素是Vc。 5.植物组织培养按培养对象分为愈伤组织培养、器官培养、胚培养、细胞和原生质体培 养等几种类型。 6.在通过微茎尖培养脱毒时,外植体的大小应以成苗率和脱毒率综合确定,一般以0.3~0.5mm、带1~3个叶原基为好。 7.对植物组织培养的培养基灭菌时,一般情况采用的条件是121温度,保持时间是15~ 20分钟。 8.在幼胚培养基中,蔗糖的主要作用是维持渗透压、提供碳源和能源和防止幼胚早熟萌 发。 9.植物组织培养中,微量元素铁的用量较大,由于在较高pH下,易形成Fe(OH)3沉淀,难以被吸收,所以多用硫酸亚铁(FeSO4·7H20)和乙二胺四乙酸(Na2-EDTA)形成的螯合物,并且单独配制。 10.种质保存大致分为原地保存和异地保寸两种方式。 11.外植体选择的原则是:选择优良的种质、选择健壮的植株、选择最适时期、选取适宜 的大小。 12.细胞悬浮培养的方法有成批培养和连续培养等。 13.植物原生质体分离的方法有酶解法和机械法。 14.植板率是指已形成细胞团的单细胞与接种总细胞数的百分数。 15.花粉分离的方法有挤压法、磁搅拌法、漂浮释放法。 16.植物组织培养发展可分为三个时期:萌芽阶段、奠基阶段、快速发展和应用阶段。 17.一个年产4-20万株苗的商业性组织培养实验室,其总面积不应少于60平方米,可划 分为准备室、缓冲室、无菌操作室和培养室。 18.盐酸硫胺素VB1是脱羧酶辅酶,吡哆醛VB6是转氨酶辅酶。 19.愈伤组织形成大致经历三个时期,即:诱导期、分裂期、分化期。

植物组织培养的基本步骤

植物组织培养的基本步骤 成熟细胞离体——(脱分化)——分生细胞——(分裂)——愈伤组织——(再分化)——形态建成————完整植株。 培养基的主要成分 【水分】 【无机盐】1.大量元素:N,P,K,Ca,Mg,S(由相关的无机盐提供) 2.微量元素:Fe,B,Cu,Mn,Mn,Zn,Co 【有机营养成分】1.糖类 2.维生素 3.氨基酸 4.肌醇 5.天然有机物【植物生长调节剂】1.生长素 2.细胞分裂素 3.其他生长调节剂 【凝固剂】琼脂 【其他物质】1.活性炭 2.抗生素 3.抗氧化物质 4.硝酸银 培养基和组织培养用具的灭菌方式 【培养基,无菌水】高压蒸汽灭菌,0.105MPa灭菌15~30分钟 【移栽基质】曝晒,甲醛熏蒸或高压蒸汽灭菌0.14MMPa灭菌1~2h 【接种室,缓冲室】紫外线灯照射30min,或气雾消毒剂 【超净工作台】紫外线灯30min,之后打开风机过滤除菌 【外植体】不同的化学消毒剂浸泡消毒 【接种工具】70%乙醇浸泡或擦拭,之后用火焰灼烧灭菌 【培养室】3%来苏尔喷雾,或甲醛,气雾消毒熏蒸 【皮肤】先用肥皂洗手,接种前用70%乙醇擦拭 【瓶口,管口】70%乙醇擦拭,用火焰封口

【培养瓶表面】70%乙醇擦拭 【台面,桌面】70%乙醇擦拭或喷雾消毒 植物外植体的灭菌方式 【茎尖,茎段,叶片】1. 用70%乙醇浸泡30秒,再用无菌水冲洗1次。 2.用2%次氯酸钠浸泡15min或0.1%升汞浸泡5~10min。 3.若材料有绒毛,最好在消毒液中加入几滴吐温。 4.消毒时要不断震荡,使植物材料与消毒剂充分接触。 5.最后用无菌水冲洗3~5次。 【果实】1.用乙醇迅速漂洗一下,再用无菌水冲。 2.用2%次氯酸钠浸泡10min,用无菌水冲洗2~3次。 【种子】用10%次氯酸钠浸泡20~30min,或0.1%升汞消毒5~10min,然后再用无菌水冲洗3~5次。 【花蕾】1.用70%乙醇浸泡10~15秒,无菌水冲洗一次。 2.在漂白粉中浸泡10min,用无菌水冲洗2~3次。 【根及地下部器官】用0.1%升汞浸泡5~10min 或用次氯酸钠浸泡10~15min,再用无菌水冲洗3~5次。 【消毒后的外植体应及时按照无菌操作技术接种在适宜的培养基上】

胡萝卜组织培养论文

植物组织培养论文 摘要:在胡萝卜组培试验,用胡萝卜做外植体,在培养基上接种诱导形成愈伤组织,由于接种时对外植体消毒不彻底,接种操作不规范,导致培养基全部污染,实验失败 胡萝卜 胡萝卜(Daucus carrot),又称甘荀,是伞形科胡萝卜属二年生草本植物。以肉质根作蔬菜食用。原产亚洲西南部,阿富汗为最早演化中心,栽培历史在2000年以上。名为Daucus carota,通常为一年生,根可食。常见品种中,根呈球状或锥状,橘黄色、白色、黄色或紫色。原产阿富汗及邻近国家。野胡萝卜已成为分布于欧洲、美国和其他温带国家的杂草。地中海地区早在西元前就已栽培胡萝卜,在 中国和西北欧不迟于14世纪,现栽培于整个温带地区。 组织培养发展简史 Haberlandt(1902)首次提出细胞培养的概念,也是第一个用人工培养基对分离的植物细胞进行培养的人。与rechinger不同,Haberlandt相信切块大小不会影响细胞增殖,但由于Haberlandt使用的培养液成分简单,培养的细胞是高度分化的细胞,又没采取消毒技术,所以实验失败,培养的细胞虽然存活了几个月但没能分裂。Haberlandt 转而对损伤修复发生兴趣,提出激素作用的概念(leptohormone),与维管组织特别是韧皮部有关;另一类是创伤激素(woundhomone),与细胞损伤有关,为后来激素理论的建立和在组织培养中的广泛应用奠定了基础。但自Haberlandt的实验之后直到1934年White培养番茄离体根尖的成功,其间的30多年里,植物组织培养技术几乎没有什么进展。分析其原因,主要就是培养基的成分和实验所选取的材料不够合适。 20世纪60年代,在植物组织培养方面的另外两项成就就是划分小孢子培养和原生质体培养的成功。Guha和Maheshwari(1966,1967),Rourgin和Nitsch(1967)先后利用烟草和胡萝卜的小孢子培养获得单倍体植株,并成功地实现了染色体的加倍,使这种同源二倍体植株在5个月内收获到种子。Cocking等用纯化的纤维素酶和果胶酶处理烟草细胞,获得原生质体,通过调节渗透压的方法控制原生质体膨胀,使培养获得成功,得到了再生植株。自20世纪60年代始,植物组织与细胞培养逐渐走向了工厂化和商品化阶段。 材料与方法

胡萝卜组织培养系统实验

胡萝卜组织培养系统实 验 标准化工作室编码[XX968T-XX89628-XJ668-XT689N]

云南大学生命科学实验教学中心 实验报告 课程名称:细胞工程实验 院系:生命科学学院 2013级生物技术(国家生命科学与技 年级专业: 术基地班) 姓名:杨梦梅选课号: 学号:座号:A2 开课日期:学期:2015秋季学期 任课教师:吕琦、牛芸 云南大学生命科学实验教学中心制 胡萝卜愈伤组织的诱导、继代及细胞悬浮培养研究 第一作者:杨梦梅同组实验者:赵姗 (云南大学生命科学学院, 昆明 650504) 摘要: 以胡萝卜肉质根为外植体诱导出愈伤组织, 并建立细胞悬浮系. 实验结果表明: 胡萝卜肉质根是诱导愈伤组织和进行细胞悬浮培养的可行外植体; 诱导致密型愈伤组织的最佳激素浓度配比是 mg/ L 2, 4- D+ mg/ L KT;继代培养1代~ 2时,可得到高活性的悬浮细胞系;细胞悬浮培养细胞经过 14 天达到高峰期(生长平台)。 关键词: 胡萝卜; 组织培养; 细胞悬浮培养; 致密型愈伤组织; The study about inducement, subculture and suspension cell lines of Carrots’ callus

Abstract: Carrots’ flesh roots can induce callus as explants, and then it establishes suspension cell lines. The experimental results show that: Carrots’flesh roots really can induce callus and then make suspension cell lines. In order to induce high density callus, the best hormone ratio is mg/ L 2, 4- D+ mg/ L KT. Subculturing the cell line for 1 to 2 times, we can obtain the suspension cell line with high activity. After 2 weeks, the cell line reaches to the peak of growth. Keywords: Carrot; tissue culture experiments; suspension cell; callus in high density 胡萝卜( Daucus carota L . ) , 属于十字花科植物, 是一种十分重要的蔬菜作物, 由于胡萝卜肉质根营养丰富,约含有88%的水、6%~8%糖、1%~2%植物纤维,0.7%~1.2%蛋白质、1%灰份及0~3%脂肪,及其适于生食、加工、烹调等多种用途, 在世界范围内广泛栽培。中国是农业大国, 胡萝卜作为蔬菜作物在人们生活中起着重要的作用。因此, 加快我国胡萝卜育种研究以成为迫切需要。近些年来, 随着生物技术与分子生物学技术的快速发展, 作为生物技术研究的理想材料, 许多国家对胡萝卜体细胞杂交技术、遗传转化与再生技术、分子标记与基因克隆技术进行了广泛深入的研究。我国科研工作者在胡萝卜的生物技术与分子生物学研究上也取得了一定进展, 特 别是在组织培养、原生质体融合、遗传转化及再生等方面。但是在胡萝卜细胞培养方 面并不是太多, 因此继续深入研究还是很有必要的。 本文对胡萝卜愈伤组织诱导的最佳培养基和细胞悬浮培养的条件进行探讨, 为其次 生代谢产物α- 胡萝卜素、β- 胡萝卜素(维生素A前体)的生产以及将来的工厂化和分子生物学研究打下基础。 1材料和方法 1. 1 材料来源 胡萝卜肉质根自农贸市场购买. 1. 2 方法 1. 2. 1 MS培养基的配制1000ml 1)用大烧杯取蒸馏水100-120ml 2)依次用移液管量取加入母液:100ml大量(10x)、100ml大量钙盐(10x)、 10ml微量I(100x)、1ml微量II(1000x)、10ml铁盐(100x)、10ml有机(100x)、100ml有机肌醇(10x)、以及适当含量植物激素。 3)称取30g蔗糖加入,搅拌直至全部溶解,作为1号溶液备用。 4)称取9g琼脂,用量筒量取500ml蒸馏水一起加入1000ml体积白瓷缸中,放 在电炉上一边加热一边搅拌,加热直至清澈无沉淀。将1号溶液加入,继续

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