血管平滑肌细胞及内皮细胞的体外培养

血管平滑肌细胞及内皮细胞的体外培养
血管平滑肌细胞及内皮细胞的体外培养

高尿酸血症对内皮细胞损伤及血管平滑肌细胞增殖的影响(体外培养部分)

背景:关于高尿酸血症致肾脏损害的机制,既往的研究认为:当体内pH<5.5或脱水时,可引起尿酸盐结晶沉积在肾小管间质部位,通过经典途径或替代途径激活补体、血小板、炎性细胞和巨噬细胞,引起细胞因子、转化生长因子(TGF-β)和活性氧的表达增多,刺激纤维母细胞向肌纤维细胞转化,激活胶原交联,最终导致纤维化或肾功能衰竭。新近国外的研究发现高尿酸血症导致肾脏损伤的原因有:①内皮细胞的损伤作用:Sanchez-Lozada等发现,尿酸可通过抑制NO(一氧化氮)产生和刺激内皮细胞增殖而导致内皮细胞损伤。中度的高尿酸血症就可以抑制NO的产生。②高尿酸血症诱导产生严重的肾小球血管病变,并且这种病变并非继发于高血压。高尿酸血症能直接刺激血小板衍生因子(PDGF)的表达和血管平滑肌的增殖,诱导产生严重的肾小球血管病变,而且这种病变并非继发于高血压,即在血压控制良好的情况下,高尿酸血症大鼠出现肾小球入球小动脉增厚,肾皮质血管收缩,肾小球内高压和肾小球肥大,最终导致肾小球硬化。因可溶性尿酸刺激单核细胞产生IL-2β、IL-6、IL-18及TNFa,因此推测尿酸对血管平滑肌的损伤作用可能是通过炎症样反应完成的。尿酸诱导大鼠平滑肌细胞炎症途径是经由有机离子转运系统进入血管平滑肌细胞,增加单核细胞趋化蛋白-1(MCP-1)和环氧化酶2(COX2)的表达而实现的。MCP-1是一种非常重要的血管疾病和粥样硬化的化学趋化因子,而COX2是可导致炎症反应的重要蛋白之一。上述两种物质加重肾小球纤维化,肾小球肥厚,导致高血压、蛋白尿和肾功能恶化。目的:通过细胞体外培养,从

高尿酸血症对血管内皮细胞功能受损及血管平滑肌损伤的影响,阐明高尿酸血症在肾脏疾病中的发病机制,控制高尿酸的肾脏保护作用。方法:取通过传代培养3—8代的内皮细胞及血管平滑肌细胞进行实验,加入不同浓度的尿酸在培养基内,分别用分光光度法测定NO,用放射免疫法检测ET-1,用ELISA方法检测PDGF、COX2的表达情况。

具体操作如下:

将购回的细胞进行分装,留取一定数量的细胞冻存,防止实验途中细胞受到污染难以挽救时备用,传代(传3-8代)后进行实验。

一胰蛋白酶消化;

1.加入消化液:小心吸出旧培养液,用PBS清洗(冲洗),加入适量消化液(0.25%胰蛋白酶液),注意消化液的量以盖住细最好,最佳消化温度是37℃。

2. 显微镜下观察细胞:倒臵显微镜下观察消化细胞,若胞质回缩,细胞之间不再连接成片,表明此时细胞消化适度。

3.吸弃消化液加入培养液:弃去胰蛋白酶液,注意更换吸管,加入新鲜的培养液。

二.吹打分散细胞:

1.吹打制悬:用滴管将已经消化细胞吹打成细胞悬液。

2.吸细胞悬液入离心管:将细胞悬液吸入10ml离心管中。

3.平衡离心:平衡后将离心管放入台式离心机中,以1000转/分钟离心6-8分钟。

4.弃上清液,加入新培养液:弃去上清液,加入2ml培养液,用滴管轻轻吹打细胞制成细胞悬液。

三.分装稀释细胞:

1.分装:将细胞悬液吸出分装至2-3个培养瓶中,加入适量培养基旋紧瓶盖。

2.显微镜下观察细胞:倒臵显微镜下观察细胞量,必要是计数。注意密度过小会影响传代细胞的生长,传代细胞的密度应该不低于5×105/ml。最后要做好标记。

五.继续培养:

用酒精棉球擦拭培养瓶,适当旋松瓶盖,放入CO2培养箱中继续培养。传代细胞2小时后开始贴附在瓶壁上。当生长细胞铺展面积占培养瓶底面积25%时为一个+,占50%为++,占75%时为+++。

四.细胞计数:

1.盖好盖玻片:取一套血球计数板,将特制的盖玻片盖在血球计数槽上。

2.制备计数用的细胞悬液:用吸管吸5滴细胞悬液到一离心管中,加入5滴台盼蓝染液(0.4%)或苯胺黑,活细胞不会被染色,加入染液后就可以在显微镜下区别活细胞和死细胞。

3.将细胞悬液滴入计数板:将待测细胞悬液吹均匀,然后吸取少量悬液沿盖片边缘缓缓滴入,要保证盖片下充满悬液,注意盖片下不要有气泡,也不能让悬液流入旁边槽中。

4.统计四个大格的细胞数:将血球计数板放于显微镜的低倍镜下观察,并移动计数板,当看到镜中出现计数方格后,数出四角的四个大铬(每个大格含有16个中铬)中没有被染液染上色的细胞数目。

5.计算原细胞悬液的细胞数:按照下面公式计算细胞密度:(细胞悬液的细胞数)/ml=(四个大格子细胞数/4) ×2×104

五.绘制细胞生长曲线

取生长状态良好的细胞 , 以3 ×104 /ml浓度接种24孔板, 1m l/孔, 每组设臵10个复孔, 37℃、50 ml/L CO2条件下培养,分别于培养1—11 d进行台盼兰染色, 计数活细胞数, 绘制生长曲线。

六.不同浓度尿酸对血管平滑肌细胞增殖的影响

取生长状态良好的细胞, 以1 ×104 /ml浓度接种96 孔板, 200 微升/孔, 每组设臵5 个复孔, 待细胞完全贴壁后, 无血清培养液驯化24 h, 使细胞周期同步化, 实验组分别加入含20 mg/L, 40 mg/L, 60mg/L 尿酸的0. 5% 血清培养液, 对照组加入等量0.5% 血清培养液, 37℃、50 ml/L CO2条件下继续培养, 48 h后, 每孔加入20微升MTT, 37℃、50 ml/L

CO2条件下孵育, 4 h 后小心吸弃培养液, 每孔加入150微升二甲基亚砜(DMSO), 震荡器震荡10 min, 酶联免疫检测仪(A=490 nm波长处光吸收值 ) 测定各孔的A 值。重复4次。(MTT法又称MTT比色法,是一种检测细胞存活和生长的方法。其检测原理为活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性MTT还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒(Formazan)并沉积在细胞中,而死细胞无此功能。二甲基亚砜(DMSO)能溶解细胞中的甲瓒,用酶联免疫检测仪在490nm波长处测定其光吸收值,可间接反映活细胞数量。)

七:不同浓度尿酸对内皮细胞及血管平滑肌细胞刺激后部分细胞因子及炎性介质表达情况

取生长状态良好的细胞, 以1 ×104 /ml浓度接种96 孔板, 200 微升/孔, 每组设臵5 个复孔, 待细胞完全贴壁后, 无血清培养液驯化24 h, 使细胞周期同步化, 实验组分别加入含20 mg/L, 40 mg/L, 60mg/L 尿酸的0. 5% 血清培养液, 对照组加入等量0.5% 血清培养液, 37℃、50 ml/L CO2条件下继续培养, 分别用分光光度法测定培养基中NO,用放射免疫法检测培养基中的ET-1,用ELISA方法检测培养基中PDGF、COX2的表达情况。(内皮细胞:检测NO、ET-1,血管平滑肌细胞:检测PDGF、COX2)

小鼠脑动脉血管平滑肌细胞使用说明

小鼠脑动脉血管平滑肌细胞 小鼠脑动脉血管平滑肌细胞产品说明: 为使能尽快开展实验,派瑞金发货的原代细胞均处于对数生长期,且每次发货为汇合率达到70%的细胞,收到细胞后即可开展实验。 派瑞金提供的小鼠脑动脉血管平滑肌细胞取自新鲜的组织,按照标准操作流程分离培养。研发的小鼠脑动脉血管平滑肌细胞完全培养基能提供细胞最佳的生长条件,降低杂细胞污染,保证不同批次间细胞质量的稳定。 同时,派瑞金还建立了严格的细胞鉴定流程,所提供的原代细胞均需经过细胞类型特异性标记物、细胞形态学等检测,保证细胞纯度在90%以上;同时也需经过微生物检测,保证不含有HIV、HBV、HCV、支原体、真菌及其他类型的细菌。 小鼠脑动脉血管平滑肌细胞注意事项: 1. 收到细胞后首先观察细胞瓶是否完好,培养液是否有漏液、浑浊等现象,若有上述现象发生请及时和我们联系。 2. 仔细阅读细胞说明书,了解细胞相关信息,如细胞形态、所用培养基、血清比例、所需细胞因子等。 3. 请用相同条件的培养基用于细胞培养。培养瓶内多余的培养基可收集备用,细胞传代时可以一定比例和自备的培养基混合,使细胞逐渐适应培养条件;建议使用派瑞金的完全培养基。 4. 建议收到细胞后前3天各拍几张细胞照片,记录细胞状态。 5. 该细胞只能用于科研,不得用于临床应用。 小鼠脑动脉血管平滑肌细胞其他相关小鼠原代细胞: 小鼠小肠粘膜上皮细胞小鼠大隐静脉平滑肌细胞 小鼠肺微血管内皮细胞小鼠冠状动脉平滑肌细胞 小鼠肺血管平滑肌细胞小鼠大隐静脉内皮细胞 小鼠Ⅱ型肺泡上皮细胞小鼠冠状动脉内皮细胞 小鼠气管上皮细胞小鼠骨细胞 小鼠气管平滑肌细胞小鼠滑膜细胞 小鼠肺成纤维细胞小鼠骨骼肌细胞 小鼠支气管上皮细胞小鼠表皮细胞 小鼠支气管成纤维细胞小鼠真皮成纤维细胞 小鼠肺大静脉平滑肌细胞小鼠破骨细胞 小鼠肺大动脉平滑肌细胞小鼠皮肤肥大细胞

血管内皮细胞体外培养(赵)

血管内皮细胞体外培养 1.概述血管内皮细胞(endothelial cell, EC)是衬于心,血管和淋巴管腔内表面的一种单层扁平上皮细胞。EC极薄,厚度约为0.1~1μm,长约25~50μm,宽约10~15μm,在体内呈梭形,相邻细胞之间借少量粘合质彼此嵌合,细胞长轴与血流方向平行。其超微结构特点是在胞质中含有的特殊颗粒,称Weibel-palade小体(内含有与凝血有关的第Ⅷ因子相关抗原);细胞间有紧密连接的缝隙相连。EC除了能保持血管壁内表面的光滑和通透性外,还有多种生物学功能:维持正常的血液流动性,分泌多种生物活性物质,在调节细胞生长,改变脂质代谢,维持血管壁的完整性,调节血管张力和选择性通透性以及免疫调节方面起到重要作用。EC功能的异常,与血栓形成、动脉粥样硬化、高血压等心血管疾病及肿瘤扩散,免疫疾病都有密切关系。体外培养中的EC形态呈"鹅卵石样"镶嵌排列,细胞长满后呈接触抑制现象。 2.培养方法EC生长在血管内表面,由于其所处的独特位置不利于观察和研究,所以体外培养EC显得特别重要,目前已有多种种属(人、牛、猪、兔、大鼠等),多种组织(脐带动脉、静脉、肺动脉、主动脉、脑毛细血管、心脏毛细血管等)的EC能在体外培养成功。人们将培养器皿预先用明胶或纤连蛋白或胶原等粘附蛋白包被后,形成人工的EC下基质层,可促进EC的粘附与生长。 2.1 方法原理用酶消化法,酶消化+机械刮脱法或单纯刮脱法将EC分离下来,在适宜的条件下可贴壁并长成致密单层。 2.2 介绍几种主要EC的分离 2.2.1 酶消化法大血管内皮细胞的分离 2.2.1.1 人脐带动、静脉(或其它大血管) a.在37℃水浴中,预热培养用的所有无菌溶液,备用。 b.在无菌条件下,取健康产妇分娩后新鲜的婴儿脐带(25cm左右,不超过6h),选择无夹痕、无扭曲、无凝血阻塞的部分,放入含有100 U/ml的青霉素和100 μg/ml链霉素的D-Hanks液中,在脐静脉或脐动脉的两端插入磨平的注射器针头用丝线扎紧,用注射器从一端注入D-Hanks液冲洗血管,直到流出的液体无血迹。 c.注入0.1%胶原酶(1型)溶液,待血管内残留的D-Hanks液流尽后,用注射器封注另一端针头,继续注入胶原酶溶液,致血管充盈,放入37℃无菌的D-Hanks液中,消化15min 后取出。 d.收集血管内酶溶液,并且注入含20%小牛血清的M199培养液(pH 7.2)冲洗血管收集合并于同一容器内,以1000r/min离心7~10min。 e.去上清液,加入20%小牛血清的M199培养液重新悬浮细胞备用。 f.其它大血管如牛主动脉,猪主动脉等,可在无菌下分离,然后用线结扎血管各分支,再依上述步骤分离EC。 2.2.2 酶消化法小血管内皮细胞的分离 2.2.2.1 兔主动脉,大鼠主动脉因血管较小,分支极细,不能采用上述方法消化。 a.将动物主动脉取出后放D-Hanks中,将血管外的脂肪细组织分离干净,用丝线结扎血管一端,然后用探针顶住该端,将整条血管翻转,使内膜翻在外面。将另一端折入腔内0.5cm,并用丝线结扎紧,以防外膜外露及避免酶液进入外膜腔内。 b.用D-Hanks液清洗干净外翻的内膜面,然后血管浸泡在含0.1%胶原酶溶液的小瓶内,盖上瓶盖在37℃水浴中轻轻摇荡消化,使EC离散下来,消化15~20min后,见酶液稍有混

血管平滑肌细胞表型转换的机制

血管平滑肌细胞表型转换的机制 基础医学院07级临床一班陈依然90701114 摘要 由血管平滑肌异常增殖导致的血管重构是PCI术后再狭窄的重要原因之一。血管平滑肌细胞增殖能力与其表型转换密切相关。本文讨论了血管平滑肌细胞表型转换的特点、机制和相关信号传导途径。 关键词 血管平滑肌细胞表型转换信号传导途径 正文 自1977年冠心病介入治疗技术问世以来,其术后再狭窄(RS)一直是一个影响其远期疗效的重要问题。虽然RS的具体机制尚不明确,但目前已经公认血管平滑肌细胞(Vascular Smooth Muscle Cell, VSMC)异常增殖、迁移及大量合成细胞外基质是其主要原因。而VSMC增殖的首要条件就是表型转换。 VSMC的表型可分为分化程度较高的收缩型(分化型)和分化程度较低的分泌型(未分化型或去分化型),我将就其特点和两者之间相互转换的相关信号传导途径进行探讨。 1. 表型转换的特点 VSMC来自胚胎发育时期的中胚层,逐渐分化为不同的细胞群并获得具有成年特征的分化表型,即收缩型。但与骨骼肌、心肌细胞不同的是,VSMC在分化成熟后仍可在某些因素的刺激下去分化成为分化程度较低的分泌型。有报告称,这两种表型可能代表了共存于血管壁内一系列不同表现型的两个极端类型,且表

达不同的基因和蛋白。正常成人动脉血管的VSMC以收缩型为主,其主要功能是维持血管的弹性和收缩血管。收缩型VSMC增殖、迁移能力差或无,胞体呈梭形或带状,含大量肌丝和结构蛋白含,合成细胞器如粗面内质网、高尔基复合体含量较少,合成基质的能力差或无,体积较小。分泌型VSMC主要存在于胚胎中期血管和病理血管中,其主要功能是增殖、迁移入内膜以及合成细胞外基质蛋白。形态上类似成纤维细胞,肌丝和结构蛋白含量较少,合成细胞器增多,合成和分泌基质蛋白的能力较强,体积较收缩型大。 根据VSMC两种表型表达蛋白的不同可以找到表型转换时相应的标志物。其中α平滑肌肌动蛋白(α-smooth muscle actin, α-SMA)在收缩型细胞中优势表达而在分泌型细胞中表达甚微,它是VSMC分化的早期特异性标志物,也是应用最多的收缩型标志蛋白。而骨桥蛋白(osteopontin, OPN)则作为应用较多的合成型标志物。有实验显示OPN mRNA在正常的动脉中并不存在,而在动脉粥样硬化中的表达程度则随粥样硬化程度的增加而增加。 下表列VSMC表型转换的主要标志物。

小鼠血管平滑肌细胞原代培养方法的改良解读

小鼠血管平滑肌细胞原代培养方法的改良 [ 08-10-30 13:48:00 ] 作者:吴建芳编辑:studa20 【摘要】目的建立一种简单方便但高效的血管平滑肌细胞原代培养方法。方法改良酶消化法。结果用该法培养细胞传代生长快,细胞纯度达98% 以上,足以满足各种细胞试验需求。结论与传统方法相比该法简单经济,试验成功率高,节省材料和时间,而且可获得更多纯度较高的细胞。吴建芳(1972~),女,汉族,青海籍,副教授,硕士 【关键词】小鼠动脉血管平滑肌细胞原代培养 Abstract Objective To create a simple and effective primary culture methods for mouse vascular smooth muscle cells (VSMC). Methods Reformed enzymatic digestion. Results VSMC was grown well and fast, the purity is more than 98% which can meet various cell tests. Conclusion Comparing with traditional methods , this approaches can save much time and more materials, also have better cell quantities and purity. Key words Mouse Aorta VSMC Primary cult 在心血管疾病的基础研究中,对血管平滑肌细胞生物特性的研究是极其重要的一部分,其对揭示血管病变机理至为关键。体外培养平滑肌细胞是常用试验模型,近年来随着细胞培养技术的发展,原代培养的成功率有所提高,但仍然存在许多问题,经验不足者往往要花费大量时间、精力去摸索,不但影响试验进程而且浪费材料,而有些组织材料是极为昂贵且很难获得的,所以为了提高平滑肌细胞原代培养的成功率,并在有限的材料下获得好的结果,我们大胆采用了酶消化法(常规采用组织块培养法),从取材方法及消化步骤等方面进行了改良,试验结果证实该法简单经济,成功率高,细胞生长快,纯度高,现介绍如下。 1 材料与试剂 1.1 组织来源:C57BL/6J小鼠(鼠龄8周以后)主动脉。 1.2 试剂:鼠抗SMC-α -actin ,Cy2 conjugated affinity purified anti-mouse IgG[H/L],戊巴比妥钠注射液。 1.3 培养基:在DMEM 培养基中添加15%胎牛血清、1%青霉素、链霉素、1%谷氨酰胺,过滤除菌备用(不要超过四4周)。 1.4 酶消化液:Collagenase TypeⅡ 7 mg 溶于5 ml DMEM 培养基中(无血清),过滤除菌即用。

血管内皮细胞培养

血管内皮细胞(endothelial cell, EC)体外培养 1.概述血管内皮细胞(endothelial cell, EC)是衬于心,血管和淋巴管腔内表面的一种单层扁平上皮细胞。EC极薄,厚度约为0.1~1μm,长约25~50μm,宽约10~15μm,在体内呈梭形,相邻细胞之间借少量粘合质彼此嵌合,细胞长轴与血流方向平行。其超微结构特点是在胞质中含有的特殊颗粒,称Weibel-palade小体(内含有与凝血有关的第Ⅷ因子相关抗原);细胞间有紧密连接的缝隙相连。EC除了能保持血管壁内表面的光滑和通透性外,还有多种生物学功能:维持正常的血液流动性,分泌多种生物活性物质,在调节细胞生长,改变脂质代谢,维持血管壁的完整性,调节血管张力和选择性通透性以及免疫调节方面起到重要作用。EC功能的异常,与血栓形成、动脉粥样硬化、高血压等心血管疾病及肿瘤扩散,免疫疾病都有密切关系。体外培养中的EC形态呈“鹅卵石样”镶嵌排列,细胞长满后呈接触抑制现象。 2.培养方法EC生长在血管内表面,由于其所处的独特位置不利于观察和研究,所以体外培养EC显得特别重要,目前已有多种种属(人、牛、猪、兔、大鼠等),多种组织(脐带动脉、静脉、肺动脉、主动脉、脑毛细血管、心脏毛细血管等)的EC能在体外培养成功。人们将培养器皿预先用明胶或纤连蛋白或胶原等粘附蛋白包被后,形成人工的EC下基质层,可促进EC的粘附与生长。 2.1 方法原理用酶消化法,酶消化+机械刮脱法或单纯刮脱法将EC分离下来,在适宜的条件下可贴壁并长成致密单层。 2.2 介绍几种主要EC的分离 2.2.1 酶消化法大血管内皮细胞的分离 2.2.1.1 人脐带动、静脉(或其它大血管) a.在37℃水浴中,预热培养用的所有无菌溶液,备用。 b.在无菌条件下,取健康产妇分娩后新鲜的婴儿脐带(25cm左右,不超过6h),选择无夹痕、无扭曲、无凝血阻塞的部分,放入含有100 U/ml的青霉素和100 μg/ml链霉素的D-Hanks液中,在脐静脉或脐动脉的两端插入磨平的注射器针头用丝线扎紧,用注射器从一端注入D-Hanks液冲洗血管,直到流出的液体无血迹。

人脑血管平滑肌细胞培养

1100 Human Brain Vascular Smooth Muscle Cells 人脑血管平滑肌细胞 血管平滑肌细胞是许多动脉疾病的细胞水平的根源。血管平滑肌细胞的加速生长潜能是血管疾病进展的关键因素。最新研究表明血管平滑肌细胞表达的ICAM-1 和VCAM-1能促进血管壁的炎症反应,并且与血管疾病的发展及稳定性有关.人血管平滑肌细胞的体外培养是血管研究中的重要模型,并将对血管疾病的药理学和治疗研究提供大量信息. 细胞培养说明 注意:冷冻保存的细胞非常脆弱。将小瓶置于37°C水浴,然后尽快移入培养物中,尽量减少操作。 经过以下步骤后开始培养细胞 1.准备多聚赖氨酸包被的培养瓶(2μg/cm2,推荐用T-75的培养瓶)。向T-75瓶内加入10ml 无菌水,然后加入15μl多聚赖氨酸原液(10mg/ml,ScienCell cat. no. 0413).将培养瓶放入培养箱中过夜(至少在37°C中过一小时) 2.准备完全培养基:用70%的酒精为培养基和添加物的外表面消毒,然后放到无菌的地方。在无菌环境下打开每一个添加物小管并用吸管加入到基本培养基中。用培养基冲洗每一个小管以保证添加物全部加入基本培养基中。 3.用无菌水冲洗多聚赖氨酸包被的培养瓶两次并向瓶内加入20 ml完全培养基。将培养瓶放入超净台中,然后融化细胞。 4. .将小瓶放入37°C水浴中,轻轻地握住并旋转小瓶直到完全融化。将小瓶立刻移出水浴,擦干,用70%的酒精冲洗小瓶,然后放到无菌环境中。小心地打开盖子,注意手指不要碰到里面。用1ml eppendorf吸管轻轻重悬管内容物。 5.将管中内含物放入均匀的,多聚赖氨酸包被的培养瓶中。推荐接种密度为5,000 cells/cm2。注意:细胞融化后不推荐稀释和离心,因为这些操作比培养基中DMSO残留物对细胞的伤害大。血管平滑肌细胞接种在多聚赖氨酸包被的培养瓶中能促进细胞帖壁。 6.盖好盖子,轻轻地摇晃培养瓶以使细胞分布均匀,如需气体交换则打开瓶盖。 7.将培养容器放入培养箱中。 8.为了得到良好的结果,在培养开始后至少16个小时内不要动培养物。第天天更换培养基以去除残留的DMSO和未贴壁的细胞,然后每隔一天进行如上操作。培养良好的细胞将呈现纺锤体形,通常细胞呈均匀的丛状或板状而不是单个分散的细胞,并且细胞数量在培养2-3天后会加倍。 维持培养

小鼠肺血管平滑肌细胞使用说明

小鼠肺血管平滑肌细胞 小鼠肺血管平滑肌细胞产品说明: 为使客户能尽快开展实验,派瑞金发货的原代细胞均处于对数生长期,且每次发货为汇合率达到70%的细胞,收到细胞后即可开展实验。 派瑞金提供的小鼠肺血管平滑肌细胞取自新鲜的组织,按照标准操作流程分离培养。研发的小鼠肺血管平滑肌细胞完全培养基能提供细胞最佳的生长条件,降低杂细胞污染,保证不同批次间细胞质量的稳定。 同时,派瑞金还建立了严格的细胞鉴定流程,所提供的原代细胞均需经过细胞类型特异性标记物、细胞形态学等检测,保证细胞纯度在90%以上;同时也需经过微生物检测,保证不含有HIV、HBV、HCV、支原体、真菌及其他类型的细菌。 小鼠肺血管平滑肌细胞注意事项: 1. 收到细胞后首先观察细胞瓶是否完好,培养液是否有漏液、浑浊等现象,若有上述现象发生请及时和我们联系。 2. 仔细阅读细胞说明书,了解细胞相关信息,如细胞形态、所用培养基、血清比例、所需细胞因子等。 3. 请客户用相同条件的培养基用于细胞培养。培养瓶内多余的培养基可收集备用,细胞传代时可以一定比例和客户自备的培养基混合,使细胞逐渐适应培养条件;建议使用派瑞金的完全培养基。 4. 建议客户收到细胞后前3天各拍几张细胞照片,记录细胞状态。 5. 该细胞只能用于科研,不得用于临床应用。 小鼠肺血管平滑肌细胞其他相关小鼠原代细胞: 小鼠小肠粘膜上皮细胞小鼠大隐静脉平滑肌细胞 小鼠肺微血管内皮细胞小鼠冠状动脉平滑肌细胞 小鼠肺血管平滑肌细胞小鼠大隐静脉内皮细胞 小鼠Ⅱ型肺泡上皮细胞小鼠冠状动脉内皮细胞 小鼠气管上皮细胞小鼠骨细胞 小鼠气管平滑肌细胞小鼠滑膜细胞 小鼠肺成纤维细胞小鼠骨骼肌细胞 小鼠支气管上皮细胞小鼠表皮细胞 小鼠支气管成纤维细胞小鼠真皮成纤维细胞 小鼠肺大静脉平滑肌细胞小鼠破骨细胞 小鼠肺大动脉平滑肌细胞小鼠皮肤肥大细胞

血管平滑肌细胞表型转换的机制

血管平滑肌细胞表型转换的机制 基础医学院 07级临床一班陈依然 90701114 摘要 由血管平滑肌异常增殖导致的血管重构是PCI术后再狭窄的重要原因之一。血管平滑肌细胞增殖能力与其表型转换密切相关。本文讨论了血管平滑肌细胞表型转换的特点、机制和相关信号传导途径。 关键词 血管平滑肌细胞表型转换信号传导途径 正文 自1977年冠心病介入治疗技术问世以来,其术后再狭窄(RS)一直是一个影响其远期疗效的重要问题。虽然RS的具体机制尚不明确,但目前已经公认血管平滑肌细胞(Vascular Smooth Muscle Cell, VSMC)异常增殖、迁移及大量合成细胞外基质是其主要原因。而VSMC增殖的首要条件就是表型转换。 VSMC的表型可分为分化程度较高的收缩型(分化型)和分化程度较低的分泌型(未分化型或去分化型),我将就其特点和两者之间相互转换的相关信号传导途径进行探讨。 1. 表型转换的特点 VSMC来自胚胎发育时期的中胚层,逐渐分化为不同的细胞群并获得具有成年特征的分化表型,即收缩型。但与骨骼肌、心肌细胞不同的是,VSMC在分化成熟后仍可在某些因素的刺激下去分化成为分化程度较低的分泌型。有报告称,这两种表型可能代表了共存于血管壁内一系列不同表现型的两个极端类型,且表达不同的基因和蛋白。正常成人动脉血管的VSMC以收缩型为主,其主要功能是维持血管的弹性和收缩血管。收缩型VSMC增殖、迁移能力差或无,胞体呈梭形或带状,含大量肌丝和结构蛋白含,合成细胞器如粗面内质网、高尔基复合体含量较少,合成基质的能力差或无,体积较小。分泌型VSMC主要存在于胚胎中期血管和病理血管中,其主要功能是增殖、迁移入内膜以及合成细胞外基质蛋白。形态上类似成纤维细胞,肌丝和结构蛋白含量较少,合成细胞器增多,合成和分泌基质蛋白的能力较强,体积较收缩型大。

血管平滑肌细胞及内皮细胞的体外培养

高尿酸血症对内皮细胞损伤及血管平滑肌细胞增殖的影响(体外培养部分) 背景:关于高尿酸血症致肾脏损害的机制,既往的研究认为:当体内pH<5.5或脱水时,可引起尿酸盐结晶沉积在肾小管间质部位,通过经典途径或替代途径激活补体、血小板、炎性细胞和巨噬细胞,引起细胞因子、转化生长因子(TGF-β)和活性氧的表达增多,刺激纤维母细胞向肌纤维细胞转化,激活胶原交联,最终导致纤维化或肾功能衰竭。新近国外的研究发现高尿酸血症导致肾脏损伤的原因有:①内皮细胞的损伤作用:Sanchez-Lozada等发现,尿酸可通过抑制NO(一氧化氮)产生和刺激内皮细胞增殖而导致内皮细胞损伤。中度的高尿酸血症就可以抑制NO的产生。②高尿酸血症诱导产生严重的肾小球血管病变,并且这种病变并非继发于高血压。高尿酸血症能直接刺激血小板衍生因子(PDGF)的表达和血管平滑肌的增殖,诱导产生严重的肾小球血管病变,而且这种病变并非继发于高血压,即在血压控制良好的情况下,高尿酸血症大鼠出现肾小球入球小动脉增厚,肾皮质血管收缩,肾小球内高压和肾小球肥大,最终导致肾小球硬化。因可溶性尿酸刺激单核细胞产生IL-2β、IL-6、IL-18及TNFa,因此推测尿酸对血管平滑肌的损伤作用可能是通过炎症样反应完成的。尿酸诱导大鼠平滑肌细胞炎症途径是经由有机离子转运系统进入血管平滑肌细胞,增加单核细胞趋化蛋白-1(MCP-1)和环氧化酶2(COX2)的表达而实现的。MCP-1是一种非常重要的血管疾病和粥样硬化的化学趋化因子,而COX2是可导致炎症反应的重要蛋白之一。上述两种物质加重肾小球纤维化,肾小球肥厚,导致高血压、蛋白尿和肾功能恶化。目的:通过细胞体外培养,从

内皮细胞的培养

内皮细胞的培养 内皮细胞,用高倍镜观察肠系膜上的毛细血管,可见到内皮细胞,内皮细胞较间皮细胞小,排列紧密。内皮细胞或血管内皮是一薄层的专门上皮细胞,由一层扁平细胞所组成,呈多边形,细胞的边缘呈锯齿状,相互嵌合。血管内皮细胞(EC)位于血液与血管组织之间,它不仅能完成血液和组织液的代谢交换,并且能合成和分泌多种生物活性物质,以保证血管正常的收缩和舒张,起到维持血管张力,调节血压以及凝血与抗凝平衡等特殊功能,进而保持血液的正常流动和血管的长期通畅。抗凝血材料表面内皮细胞化,可以减少血栓的形成和血小板激活。 下面以脐带静脉为例介绍内皮细胞的培养: 一、试剂准备: (1)脐带保存液:生理盐水、葡萄糖100 mmoL/L、100 U/ml青霉素一100 U/m1链霉素。(2)组织消化液:0.1%I型胶原酶和0.05%胰酶-0.02%乙二胺四乙酸二钠盐(EDTA)溶液。 (3)内皮细胞培养液:含20%胎牛血清、ECGS、肝素,100 U/m1青霉素-100 U/m1链霉素的M199培养基。 (4)器皿:0.2%明胶包被:用PBS配制。 二、原代提取 (1)脐带处理:在无菌条件下取新生胎儿脐带,长度>20 cm。剪去脐带两端和脐带上有夹痕及血肿部分,尽量挤干净脐带内血液。用生理盐水冲洗脐带表面至无血色。 (2)脐静脉处理:用输血器内接有穿刺器的软管,找到脐静脉,将软管针头一端插入脐静脉,用止水夹固定,另一端接20 m1注射器,吸取PBS反复冲洗脐静脉直至无血色液体流出为止。 (3)组织消化:将脐带另一端用止血钳夹闭,向脐静脉中灌入0.1%I型胶原酶溶液,使之充盈,夹闭软管,37℃水浴中孵育20 min,其间轻轻挤压并旋转脐带,以使酶溶液充分接触血管内壁,然后将细胞一酶溶液收集于预先装有温培养液小三角瓶中。 (4)收集细胞:用2倍于消化液的温PBS冲洗脐静脉,一并收集于小三角瓶中,将细胞悬液装入10 ml离心管, (5)离心培养:1 000 r/min离心10 min,弃上清,吹打悬浮,再次离心10 min,重悬细胞并接种于铺有明胶的25 cm2培养瓶中,置于37℃5%C02饱和湿度培养箱中培养,24 h 后更换培养液,以后每隔2 d换液1次。

脐动脉血管平滑肌细胞的分离与培养

脐动脉血管平滑肌细胞的分离与培养 材料 1) 培养基和维持平滑肌细胞生长的溶液 a) 培养基: DMEM /F12 b) 基本培养基的添加剂(final concentrations): 100 U/mL penicillin, 100 μg/mL streptomycin 10% (v/v) FBS. 通常消毒冷冻储备。完全培养基4°C可达1 个月,常规细胞培养使用前预温到37°C。分离过程用无FBS 的培养基。 c) Hanks’平衡盐溶液(HBSS, Sigma):用于组织标本的收集培养基。下面的添加剂在使用之前加入储备液 中(final concentrations): 100 μg/mL Gentamicin 0.025 M HEPES 20 mM bicarbonate 0.001% phenol red HBSS 可分装储存于4°C最多2周。 d) Bicarbonate (4.4%, 0.52 M)-Phenol red (0.03%) solution: 44 g NaHCO3 +30 mg phenol red in 1000 mL组织培养级的去离子水, 高压灭菌消毒10 min at 115°C. 15 mL分装4°C储存可达6 mo,2 aliquots used in 400 mL of medium. 2)Penicillin and streptomycin stock solution (80X concentrate): 480 mg penicillin+1.5g streptomycin sulfate in 200 mL组织培养级的去离子水 0.5 μm滤膜预过滤,0.22 μm滤膜过滤消毒。 5 mL分装,–20°C储存,1 aliquot used in 400 mL of medium. 3)Gentamicin solution (80X concentrate): 750 mg gentamicin sulfate in 100 mL组织培养级的去离子水 0.22 μm滤膜过滤消毒。 5 mL分装,–20°C储存,1 aliquot used in 400 mL of HBSS. 4)HEPES solution (1 M): 47.6 g of HEPES in 200 mL组织培养级的去离子水 0.22 μm滤膜过滤消毒。 5 mL分装,–20°C储存,2 aliquots used in 400 mL of HBSS. 5)胰蛋白酶溶液(2.5 %): Trypsin from porcine pancreas (Sigma) is dissolved (2.5 g/100 ml) in PBS-A 0.22 μm滤膜过滤消毒。 10 mL分装,–20°C储存 6)乙二胺四乙酸(EDTA) solution (1%): EDTA disodium salt is dissolved (500mg/ 50 mL) in 组织培养级的去离子水

大鼠肺微血管内皮细胞培养及鉴定

大鼠肺微血管内皮细胞培养及鉴定* 谢 崧 杨晓静 钱桂生 王关嵩 (第三军医大学新桥医院, 重庆 630037) 摘要 取大鼠周边肺组织进行肺微血管内皮细胞培养。将肺组织切成小块,用含有20%新生牛血清、肝素90L g/ ml、L-谷胺酰胺4mmol、青霉素100U/ml和链霉素100L g/m l的R PM I-1640培养基培养。血细胞立即从肺组织周围游出。继而是肺微血管内皮细胞。成纤维细胞及其他细胞72h才游出。培养60h后取出肺组织块,培养瓶中只有微血管内皮细胞和血细胞。后者可通过传代除去。获得的肺微血管内皮细胞具有规律的鹅卵石样形态和对异植物血凝素结合试验及八因子相关抗原免疫荧光染色均阳性。 关键词 大鼠 肺循环 微循环 内皮细胞 细胞培养  肺微血管在生理和病理情况下都起着重要作用,如与成人呼吸窘迫综合征、肺动脉高压[1]等的发生有关。目前仅限于肺动脉内皮细胞的研究,而肺微血管和大血管之间据文献报道在表型和功能有着显著的不同[2]。故有培养和研究肺微血管内皮细胞的必要。 虽然肺有大量的血管内皮细胞,但同时存在40多种类型的细胞尤其成纤维细胞和平滑肌等细胞的迅速生长,使内皮细胞生长受抑制。分离和培养纯的肺微血管内皮细胞较为困难。国内未见肺微血管内皮细胞培养的报道。本文采用简单的方法成功地分离和培养出大鼠肺微血管内皮细胞。 1 材料和方法 1.1 主要试剂 RPM I-1640培养基为美国Gibco 公司产品。新生牛血清由华西医科大学公共卫生学院生产。兔抗人八因子相关抗原抗血清为DAKO公司产品,华美分装。荧光标记异植物血凝素为Sigm a 公司产品。荧光标记羊抗兔1gG由卫生部上海生物制品研究所生产。抗菌素为青霉素钠盐和硫酸链霉素。L-谷氨酰胺为第二军医大学分装。胰蛋白酶和肝素钠均为上海生化试剂商店提供。大鼠肺动脉内皮细胞按本研究所建立的方法[3]培养。 1.2 取材 选重200-300g健康雄性Wistar大鼠,10%乌拉坦(10L l/mg)腹腔麻醉。颈动脉放血后,将整个大鼠泡于75%酒精中2-3s,以后用组织剪逐层剪开胸腔。切下心肺放入盛有含青霉素200U/m、链霉素200L g/ml和Hanks液的三角烧瓶内备用。 1.3 大鼠肺微血管内皮细胞培养 大鼠肺微血管内皮细胞原代培养:将盛有心肺组织的无菌三角烧瓶置于超净台,抗生素Hanks液冲洗心肺组织的血迹。眼科剪剪去肺组织表面的脏层胸膜,剪取胸膜下肺组织(厚度不应大于1.5mm)。并将肺组织用锋利的手术刀切成1.5×1×1mm3大小的组织块。贴入无菌的25cm2培养瓶(1%明胶预置过夜,4℃,用前2h移入CO2培养箱,培养液冲洗)中进行培养。每瓶贴10块,置培养箱固化2h后,加入含20%新生牛血清、肝素90U/m l、L-谷氨酰胺4mm ol、青霉素100U/ml和链霉素100L g/ml的RPM I-1640培养基3m l,放入培养箱中培养。60h后将肺组织块取出。继续培养7-10d,细胞汇合成单层细胞。肺组织贴瓶后3d换液,以后每两天换液一次,每次均换1/2。 大鼠肺微血管内皮细胞传代培养: 将长成单层的原代细胞用0.08%胰蛋白酶进行消化,每瓶加入1ml,置常温5m in左右。镜下观察,当细胞间连接疏松时立即倒出消化液,加入培养基3ml,用吸管吹打使细胞脱落并充分混匀,吸出0.1m l计数,得出细胞总数后,将含细胞的培养液稀释成(2.5-3.0)×105个细胞/ml的接种浓度。每25cm2培养瓶接种3ml细胞悬液,与肺微血管内皮细胞相混的血细胞就通过传代除去了。 1.4 肺微血管内皮细胞的鉴定 制片: 如同细胞传代将细胞消化成细胞悬液。再以800rpm离心5min除去含血清的培养液。向沉降的细胞中加少许Hanks液,用吸管轻轻吹打漂洗后,取少许细胞悬液薄涂于玻片上。用吸水纸吸干后甲醇固定5-10min取出备用。 189 中国应用生理学杂志1997;13(2) X1996-9-20收稿 1997-2-6修回

人脑微血管内皮细胞培养

Human Brain Microvascular Endothelial Cells 人脑微血管内皮细胞 人脑微血管内皮细胞是血脑屏障的主要组成成分,并使其能够限制可溶性和细胞样物质从血液进入大脑。大脑微血管内皮细胞与外周内皮细胞相比具有一些特性:如1)脑微血管内皮细胞有许多细胞间紧密连接,这些连接造成很高的跨内皮阻抗,并能延迟细胞旁的通量;2)脑微血管内皮细胞缺乏内皮细胞窗孔结构并且其液相物质胞饮水平低;3)脑微血管内皮细胞具有不对称定位的酶和载体介导的转运系统,从而造成“两极分化”的表现型。与外周内皮细胞相同,大脑微血管内皮细胞表面表达细胞粘附分子以调控白细胞进入大脑。由于微血管内皮细胞的器官特异性,内皮细胞应来源于拟研究的疾病的相关组织。 细胞培养说明 注意:冷冻保存的细胞非常脆弱。将小瓶置于37°C水浴融化细胞,然后尽快移入培养物(液)中,尽量减少操作。 经过以下步骤后开始培养细胞 1.准备纤维连接蛋白包被的培养瓶(2 μg /cm2,推荐用T-75的培养瓶)。向培养瓶中加入10 ml 无菌Dulbecco's磷酸盐缓冲液(DPBS),然后加入150 μl 纤维连接蛋白原液(1 mg/ml, Sigma cat. no. F1141)。将培养瓶放入培养箱中孵育过夜。 2.准备完全培养基:用70%的酒精消毒培养基和添加物的外表面,然后放到无菌的地方。在无菌环境下打开每一个添加物管并用吸管将其加入到基本培养基中。以保证添加物全部加入基本培养基中。 3.吸出纤维连接蛋白溶液并向瓶内加入20 ml完全培养基。将培养瓶放入超净台中,然后准备融化细胞。纤维连接蛋白溶液可以使用两次。 4.将小瓶放入37°C水浴中,握住并轻轻旋转小瓶直到其内细胞完全融化。将小瓶立刻移出水浴,擦干,用70%的酒精冲洗小瓶,然后放到无菌环境中。小心地打开盖子,注意手指不要碰到里面的螺纹。eppendorf吸管轻轻重悬管内容物。 5.将管内容物均匀的放入纤维连接蛋白包被的培养瓶中。推荐的接种密度为7,500 cells/cm2。注意:不推荐在细胞融化后进行稀释和离心,因为这些操作比培养基中的DMSO残留物对细胞的伤害更大。需要注意的是,内皮细胞接种在纤维连接蛋白包被的培养瓶中能够促进细胞的帖壁。 6.盖好培养瓶的盖子,轻轻地摇动培养瓶以使细胞分布均匀,如需气体交换则适当放松瓶盖。 7.将培养瓶放入培养箱中。 8.为了得到良好的结果,在培养开始后至少16个小时内不要动培养物。第二天更换培养基以去除残留的DMSO和未贴壁的细胞,然后每隔一天进行如上操作。培养良好的细胞将呈现鹅卵石形或纺锤体形,细胞质无颗粒且细胞数量在培养2-3天后会倍增。

大鼠胸主动脉血管平滑肌细胞的培养与鉴定

大鼠胸主动脉血管平滑肌细胞的培养与鉴定徐索文肖平喜陈健文乐康沈晓燕黄河清刘培庆 【摘要】目的建立大鼠胸主动脉血管平滑肌细胞的培养模型,为体外研究动脉粥样硬化的发病机制提供重要的实验手段。方法采用改良的植块贴壁法,成功建立大鼠胸主动脉血管平滑肌细胞的培养模型;分别用倒置显微镜和SABC试剂盒对培养细胞进行形态学观察、免疫组织化学和免疫荧光鉴定(平滑肌细胞特异性的α- SM - actin)。结果原代培养的血管平滑肌细胞在接种后3天开始从组织块周围游出,光镜下培养细胞呈梭形,放射状生长和典型的“峰谷”状生长;免疫组化和荧光染色显示胞浆内α平滑肌肌动蛋白阳性表达,证实培养的细胞为血管平滑肌细胞。结论本法简便、可靠、经济、短期内可获大量高纯度、功能良好的血管平滑肌细胞,可作为研究动脉粥样硬化和移植血管再狭窄机制的有效模型。 【关键词】大鼠;胸主动脉;植块法;血管平滑肌细胞 [Abstract]ObjectiveTo establish the culture model of rat aorta vascular smooth muscle cells (VSMCs) to provide important experimental method for the pathogenesis research of atherosclerosis in vitro. MethodsEmploying the explants technique, the primary and sub-culture were completed by

modified tissue-piece inoculation and trypsin digestion respectively. The cultured cells were identified by phase contrast microscopy and immunohistochemical and immunofluorescent staining.ResultsAfter 3 days of inoculation of tissue-pieces, VSMCs migrated from the vessel pieces. The cultured cells showed the typical “hills and valleys”morphological features under the microscope. Immunohistochemical and immunofluorescent staining with monoclonal antibody against mouse α-SM- actin demonstrated these cells were positive. ConculsionIt is a simple and reliable method for obtaining highly purified and satisfactory VSMCs in short term, providing a favorable experimental platform for research into the mechanism of vascular proliferous diseases such as atherosclerosis and restenosis. [Key words]rat;thoracic aorta;explants method;vascular smooth muscle cells 血管平滑肌细胞(vascular smooth muscle cells, VSMCs)的异常增殖、迁移、泡沫化及凋亡与冠状动脉旁路移植术(CABG)和经皮冠脉腔内血管成形术(PTCA)术后血管再狭窄、颈动脉球囊损伤术致新生内膜形成(neointima formation)及动脉粥样硬化

表型血管平滑肌细胞平滑肌22αα-平滑肌肌动蛋白论文

表型血管平滑肌细胞平滑肌22αα-平滑肌肌动蛋白论文 【提示】本文仅提供摘要、关键词、篇名、目录等题录内容。为中国学术资源库知识代理,不涉版权。作者如有疑义,请联系版权单位或学校。 【摘要】目的:既往研究发现平滑肌22α(smooth muscle22alpha,SM22a)及α-平滑肌肌动蛋白(α-smooth muscle actin,a-SMA)特异性的表达于血管平滑肌细胞(vascular smooth muscle cell. VSMC)胞质中,是VSMC发生细胞表型转化的重要标志,在维持细胞正常形态及收缩运动中具有重要的作用。本次研究的目的是检测下肢静脉曲张组织中SM22a及α-SMA的表达情况,并探讨其在下肢静脉曲张发生发展中的作用。方法:(1)应用逆转录聚合酶链反应(reverse transcription polymerase chain reaction)检测SM22a mRNA在曲张静脉组织及正常静脉组织标本中的表达。(2)应用免疫组织化学技术检测SM22a和α-SMA蛋白在曲张静脉组织及正常静脉组织标本中的表达。(3)应用电镜观察免疫组化片子中曲张静脉组织及正常静脉组织在组织形态结构上的改变。结果:(1) RT-PCR结果显示:密度扫描半定量示SM22a mRNA在静脉曲张组织和正常静脉组织中分别为0.2614±0.1168和0.5114±0.1554,差异有统计学意义 (t=5.020P<0.01)。(2)免疫组组织化学法化结果显示:SM22α和a-SM A均主要表达于血管平滑肌细胞质中。图像分析软件测阳性蛋白染色的累计吸光度(integrated opticaldensity. IOD)值示SM22α阳性蛋白IOD值在静脉曲张组织和正常静脉组织中分别为10054.79±3584.07和16226.05±3378.16,具有显著统计学差异 (t=4.991P<0.01),与RT-PCR结果基本一致。α-SMA阳性蛋白IOD值

内皮细胞培养图片汇总

作者:mousehui 【原创】ECV-304(脐静脉内皮细胞株) 1.细胞种类:ECV-304(脐静脉内皮细胞株); 2.培养的天数:3d; 3.放大倍速:倒置显微镜X100; 4.培养基种类:1640+10%胎牛血清; 5.细胞状态与特征简述:细胞呈梭形,贴壁生长 作者:同上 ECV-304细胞做的微核,不知园子里有没有做的。是钴60伽玛射线处理,2Gy,2Gy/mim

作者:wokankan 【原创】内皮祖细胞 2.培养的天数:6天 3.放大倍速:倒置显微镜X100; 4.培养基种类:EGM-2; 5.细胞状态与特征简述:细胞呈梭形贴壁生长,排列成直线

低密度接种是集落出现极少的,我的内皮祖细胞鉴定是DiI-LDL摄入试验(红)和UEA-1(绿)流式检测CD34 CD133 KDR 钙黏素,跟成熟内皮细胞一样出现融合细胞有养出来过,在二十几天的时候,不过我一般没养那么久,一两周之后就重新分离。这个是融合细胞的图:作者:wokankan 作者:wzliqiang 人脐静脉内皮细胞株 1.细胞种类:人脐静脉内皮细胞株 2.培养的天数:2d; 3.放大倍速:倒置显微镜X10; 4.培养基种类:1640+10%胎牛血清; 5.细胞状态与特征简述:细胞呈梭形,贴壁生长 zhangma 【原创】脐血来源的内皮祖细胞 2.培养的天数:3W 3.放大倍速:倒置显微镜X100; 4.培养基种类:EGM-2; 5.细胞状态与特征简述:细胞呈梭形贴壁生长,已融合

作者:comerkeke 【原创】人脐静脉血管内皮细胞: 1.细胞种类:原代内皮细胞; 2.培养的天数:2d;细胞倍增时间--24h左右;2-3代 3.放大倍速:倒置显微镜,20倍; 4.培养基种类:M200; 5.细胞状态与特征简述:细胞贴壁生长; 6.图片目的:鉴定抗VIII-factor阳性。

平滑肌细胞培养实验步骤

原代平滑肌细胞培养Protocol 实验准备: 器材:注射器(10mL),玻璃吸管,胶头(用于细脚吸管,吹匀组织块用),枪头(蓝色、黄色),移液器(1000μL,100μL),电动移液器,玻璃培养皿(2-3个),小烧杯(10 mL或5 mL),青霉素瓶(配鼠尾胶原),剪刀(大,小,弯)多把,镊子(大,小,弯)多把,纱布,六孔板(真空包装),托盘(放老鼠),酒精棉球,乳胶手套 试剂:平滑肌细胞专用培养基,生理盐水,D-hank’s 液,鼠尾胶原,戊巴比妥钠(麻醉用),75%酒精 步骤: 1. 高压灭菌实验所需器材,超净台紫外照射30mins,吹风; 2. 配制鼠尾胶原应用液,一般1:15-1:19稀释,六孔板中每孔加入1mL稀释液待用(可省去); 3. 大鼠(200g左右,一百五六十克较好)腹腔注射一定体积戊巴比妥钠(0.5mL/100g)麻醉,麻醉好后将大鼠全身(尤其是胸腹部)用酒精棉球擦拭干净,放入托盘置于超净台中紫外照射15mins左右,开始试验; 4. 用已消毒的剪刀将大鼠腹部表皮剪开,充分暴露出整个胸部,再换用干净的剪刀打开胸腔。将肝脏及肺脏等组织拨开(小心操作以避免伤到血管)。用小弯镊及小直镊分离胸主动脉外壁贴附的结缔组织及外膜等。分离干净后,用眼科剪小心剪断血管,去除血管中的血,置于干净玻璃培养皿中; 5. 用生理盐水多次冲洗分离出来的血管。冲洗干净后,将血管剪开,小心刮除血管内膜,去掉内皮细胞; 6. 将处理好的血管放入平滑肌细胞专用培养基(约200μL)中,用眼科剪将组织尽量剪碎成1mm3大小的小块,用细脚吸管吹匀后,均匀种入加了鼠尾胶原的六孔板中; 7. 用黄枪头小心吸弃多余的液体(避免将组织块吸起来),然后将六孔板盖好颠倒放在培养箱中约2h(待组织块粘牢培养板底)后,再加入培养基; 8. 过3-4d后拿出细胞在显微镜下观察,看其是否已长出。

人脐静脉血管内皮细胞体外培养的方研究

人脐静脉血管内皮细胞体外培养的方法研究 蔡维霞1Δ?梁亮2Δ?计鹏1?张万福1?张战凤1?张彦刚1? 肖西峰3?白晓智1?朱华宇1?胡大海1?韩骅2 【摘?要】 目的?建立人脐静脉血管内皮细胞(human?umbilical?vein?endothelial?cells,HUVECs)体外高效稳定培养的方法,为组织工程及相关医学基础研究提供稳定的细胞来源。?方法?取自愿捐赠足月妊娠分娩的新生儿脐带,用自制空针软管静脉注入0.1%Ⅱ型胶原酶,置于37℃培养箱中,消化收集,采用含5%?FBS及1%内皮细胞生长因子(endothelial?cell?growth?factor,ECGS)的内皮细胞专用培养基进行培养。将消化前后的脐带标本行HE染色,观察HUVECs脱壁情况;流式细胞仪检测原代细胞纯度;细胞培养期间于倒置相差显微镜下观察细胞形态;取第3代HUVECs 行免疫细胞化学染色观察、MTT检测细胞增殖情况,并将细胞接种于细胞外基质胶Matrigel上培养24?h,观察细胞管腔形成情况。?结果?经Ⅱ型胶原酶消化后的脐带内HUVECs大量脱落,细胞消化完全。经Ⅱ型胶原酶37℃培养箱中消化15?min后,可获得纯度为?99.56%?的HUVECs;原代HUVECs培养后2~3?d生长最快,呈典型的铺路石或鹅卵石样排列,4~6?d融合成片。?MTT?法检测显示第3代HUVECs培养后3~4?d细胞生长最快,5?d?左右融合;免疫细胞化学染色显示内皮细胞Ⅷ因子相关抗原表达阳性,培养24?h后在细胞外基质胶Matrigel上可见类似于毛细血管的完整闭合管腔形成。?结论?经自制空针软管静脉注入0.1%Ⅱ型胶原酶,使静脉充分充盈,内皮消化完全,采用含5%FBS和1%ECGS 的内皮细胞专用培养基,可迅速获取大量高纯度、高存活率的HUVECs。 【关键词】 组织工程 种子细胞 人脐静脉血管内皮细胞 细胞培养? EXPERIMENTAL STUDY ON CULTURE METHOD OF HUMAN UMBILICAL VEIN ENDOTHELIAL CELLS/CAI Weixia1, LIANG Liang2, JI Peng2, ZHANG Wanfu2, ZHANG Zhanfeng1, ZHANG Yangang1, XIAO Xifeng3, BAI Xiaozhi1, ZHU Huayu1, HU Dahai1, HAN Hua2. 1Burns Center of Chinese PLA, Xijing Hospital, the Fourth Military Medical University, Xi’an Shaanxi, 710032, P.R.China; 2Department of Medical Genetics and Developmental Biology, the Fourth Military Medical University; 3Department of Gynecology and Obstetrics, Tangdu Hospital, the Fourth Military Medical University. Corresponding author: HAN Hua, E-mail: huahan@https://www.360docs.net/doc/6c10680208.html,; HU Dahai, E-mail: burns@https://www.360docs.net/doc/6c10680208.html, 【Abstract】Objective To establish an efficient and stable culture method of human umbilical vein endothelial cells(HUVECs) in vitro so as to provide good source of seed cells for tissue engineered vascular grafts and for precl inical research.Methods The umbilical cords were harvested from full-term normal delivered neonates,which were perfused with ℃ 0.1%collagenase II by self-made needle and were digested at37 and5%CO2humidified incubator.The HUVECs were cultured in endothelial culture medium(ECM)containing5%fetal bovine serum(FBS)and1%endothelial cell growth factor(ECGS). HE staining of the umbilical cords before and after digestion was used to observe the detachment of HUVECs,flow cytometry to detect the purity of primary HUVECs,and inverted phase contrast microscope to observe the morphology of the cultured HUVECs.The growth of the3rd passage cells was measured by MTT assay;immunocytochemical technique and matrigel-based capillary-like tube formation assay were carried out to identify the function of HUVECs.Results After digestion of0.1%collagenase II,marked HUVECs detachment was observed with complete digestion.The purity of the HUVECs was ℃ 99.56%by digestion of0.1%collagenase II at37 and5%CO2humidified incubator for15minutes.Primary HUVECs showed a cobblestone or pitching stone-like appearance in vitro,forming a confluent monolayer cells after2-3days of culture.MTT assay demonstrated that HUVECs showed the fastest growth speed at3to4days,and showed growth of cell fusion at about5days. Immunocytochemistry showed that HUVECs highly expressed endothelial marker factor VIII.Matrigel based capillary-like tube formation assay showed that it could form endothelial-like tube structures after24hours of culture.Conclusion Using improved method and ECM could obtain high quantity and high quality primary HUVECs,which might be a kind of promising seed cells for tissue engineering and preclinical research. 作者单位:1?第四军医大学西京医院全军烧伤中心(西安,710032);2?第四军医大学医学遗传学与发育生物学教研室;3?第四军医大学唐都医院妇产科 △为共同第一作者 通讯作者:韩骅,教授,博士生导师,研究方向:血管发生的分子机制,E-mail: huahan@https://www.360docs.net/doc/6c10680208.html,;胡大海,教授,博士生导师,研究方向:创面愈合与组织修复,E-mail: burns@https://www.360docs.net/doc/6c10680208.html, 网络出版时间:2011-1-6 16:22:41;网络出版地址:https://www.360docs.net/doc/6c10680208.html,/kcms/detail/51.1372.R.20110106.1622.201102.6_001.html

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