试剂盒提取详细步骤
美国MOBIO土壤RNA提取试剂盒
(RNA PowerSoil? Total RNA Isolation Kit)
Detailed Protocol (Describes what is happening at each step) Wear RNase-Free gloves (1555) at all times and remove RNase from the work area using Lab Cleaner (12095) for RNase Removal. Both of these products are available from MO BIO. Please see “Other Quality Products Available” section at the end of this manual.
1. Add up to 2 g of soil to the 15 ml Bead Tube (provided). Note: Please refer to Hints and Troubleshooting Guide for information regarding the amount of soil to process. 1、加2g土壤到15ml磁珠管中。
注意：请参照提示和纠错指南确定加入土壤的量。
2. Add 2.5 ml of Bead Solution to the Bead Tube and vortex to mix.
2、加2.5ml Bead Solution到磁珠管中并漩涡混合。
3. Add 0.25 ml of Solution SR1 to the Bead Tube and vortex to mix.
What’s happening: The Bead Solution is a buffer used to disperse cells and soil particles. Solution SR1 contains SDS and other disruption agents which aid in complete cell lysis. In addition to aiding in cell lysis, SDS is an anionic detergent that breaks down fatty acids and lipids associated with the cell membrane of several organisms. Note: If it gets cold, it will form a white precipitate. Heating to 60oC will dissolve the SDS and will not harm the other disruption agents.
3、加0.25ml SR1到磁珠管并漩涡混合。
发生的反应：Bead Solution是一种缓冲液可用来打散细胞和土壤颗粒。
SR1 包括SDS和其他的能帮助细胞裂解的破碎剂。除了帮助细胞破碎外，SDS是阴离子洗涤剂，可以破坏脂肪酸和几种微生物细胞膜相关的脂类。
注意：如果天气冷了，可能会形成白色沉淀。加热到60℃溶解SDS，且不会影响其他裂解试剂的作用。
4. Add 0.8 ml of Solution SR2 and place the Bead Tube on the Vortex Adapter (MO BIO Catalog # 13000-V1-15 for Vortex Genie 2 or 13000-LV2-15 for Labnet Vortex) and vortex at maximum speed for 5 minutes.
What’s happening: Solution SR2 is a precipitation reagent used to remove non-DNA organic and inorganic material including humic substances, cell debris, and proteins. Contaminating organic and inorganic matter may reduce DNA purity and inhibit downstream DNA applications. Vortexing is critical for homogenization and cell lysis.
4、加0.8ml SR2到磁珠管，最大转速旋转5min。
反应：SR2是一种沉淀试剂，用来去除非DNA有机物和无机物包括腐殖质，细胞碎片以及蛋白质。污染有机物和无机物质可能会降低DNA纯度和抑制后续的DNA利用。漩涡对细胞均化和细胞裂解至关重要。
5. Remove the Bead Tube from the Vortex Adapter and add 3.5 ml of phenol: chloroform:isoamyl alcohol (pH
6.5 – 8.0, [User supplied]) and vortex to mix until the biphasic layer disappears.
5、加3.5ml酚/氯仿/异戊醇（pH6.5-8.0），漩涡混合直到分层消失。
6. Place the Bead Tube on the Vortex Adapter and vortex at maximum speed for 10 minutes.
最大转速漩涡混合10min。
What’s happening: Cells are lysed by combination of chemi cal agents from steps 1-5 and the mechanical shaking introduced by vortexing. Phenol:chloroform:Isoamyl alcohol is added to maximize lysing efficiency and yield. Lysed cell components are trapped in the solvent and proteins are denatured leaving the nucleic acid in solution.
反应：从1到5步的化学试剂和漩涡混合使细胞裂解，酚/氯仿/异戊醇使其最大程度裂解。溶解的细胞和试剂混合在一起，蛋白质降解只剩下核酸在溶液中。
The MO BIO Vortex Adapter is designed to be a simple cost effective platform to facilitate the homogenization and cell lysis of samples. An alternative to the MO BIO Vortex Adapter would be to attach your tubes to your platform with tape. Note that tape can become loose and may result in uneven shaking and lysis efficiency resulting in inconsistent results or lower yields. 7. Remove the Bead Tube from the Vortex Adapter and centrifuge at 2500 x g for 10 minutes at room temperature.
What’s happening: Centrifugation results in phase separation of the sample mixture. Three phases will be visible after centrifugation. The lower organic phase containing proteins and cellular debris, the interphase containing humics and other organic and non-organic material, and the upper aqueous phase containing total nucleic acid. Note: The thickness of the interphase will depend on the sample type. Samples high in organic content will have a thicker interphase.
7、室温2500g离心10min。
反应：离心导致混合样品相分离。离心后能观察到三相，底下的有机相包括蛋白质和细胞碎片，中间相包括腐殖质和其他有机及无机物质，上层相包括所有的核酸。
注意：中间相的厚度和样品类型有关，样品有机物含量越高，中间相越厚。
8. Remove the Bead Tube from the centrifuge and carefully transfer the upper aqueous phase (avoiding the interphase and lower phenol layer) to a clean 15 ml Collection Tube (provided). The thickness of the interphase will vary depending on the type of soil used. Discard the phenol:chloroform:isoamyl alcohol in an approved waste receptacle. Note: The biphasic layer will be thick and firm in soils high in organic matter and may need to be pierced to remove the bottom phenol layer for disposal.
8、小心地移取上层水相到一15ml收集管中。
注意：有机物含量高两相层可能会较厚较坚固，可能需要移取底层的酚相来处理。What’s happening: The upper aqueous phase containing the total nucleic acids from the sample is transferred to a new tube. Cellular debris, proteins, and organic material are left behind. Note: Take care not to transfer material from the lower phase or the interphase.
反应：包括样品总核酸上层水相转移到新收集管中。丢弃细胞碎片，蛋白质和有机物。
注意：不要碰到中间相和下层酚相。
9. Add 1.5 ml of Solution SR3 to the aqueous phase and vortex to mix. Incubate at 4°C for 10 minutes.
What’s happening: Solutio n SR3 is a secondary precipitation step to further remove proteins and cellular debris.
9、加1.5mlSR3到水相中，漩涡混合。4℃静置10min。
反应：加SR3是二次沉淀步骤，进一步去除其中的蛋白质和细胞碎片。
10. Centrifuge at 2500 x g for 10 minutes at room temperature.
10、室温2500g离心10min。
11. Transfer the supernatant, without disturbing the pellet, to a new 15 ml Collection Tube(provided).
What’s happening: The supernatant containing nucleic acids are transferred to a new 15 ml tube. Nonnucleic acid material is left behind.
11、将上清液转移到15ml收集管中（不要碰到下面的沉淀物）。
反应：包括核酸的上清液转移到新的收集管中，剩下非核酸物质。
12. Add 5 ml of Solution SR4 to the Collection Tube containing the supernatant, invert or vortex to mix, and incubate at -20°C for 30 minutes.
Note: For samples with high salt content, incubation in Solution SR4 at room temperature will result in higher RNA yields.
12、加5mlSR4到收集管中，倒置混合，-20℃静置30min。
注意：对于含盐量高的样品，室温条件下加SR4静置将得到高RNA产量。
13. Centrifuge at 2500 x g for 30 minutes at room temperature.
13.、室温2500g离心30min。
14. Decant the supernatant and invert the 15 ml Collection Tube on a paper towel for 5 minutes.
Note: Depending on soil type, the pellet may be large and/or dark in color.
What’s happening: Solution SR4 is 100% Isopropanol. Nucleic acid is precipitated and the Isopropanol is discarded.
14、倒出上清液，将收集管倒置在纸巾上5min。
注意：依据土壤类型的不同，沉淀可能较大或颜色上较深。
反应：SR4是纯异戊醇。沉淀核酸，丢弃上清液。
15. Shake Solution SR5 to mix. Add 1 ml of Solution SR5 to the 15 ml Collection Tube and resuspend the pellet completely. (Note: Depending on the soil type, the pellet may be difficult to resuspend. Resuspension may be aided by placing the tubes in a heat block or water bath at 45°C for 10 minutes, followed by vortexing. Repeat until the pellet is resuspended.)
What’s happening: Solution SR5 is a proprietary salt solution used to res uspend the precipitated nucleic acids from step 14. It is also used to equilibrate the RNA capture column in step 16 and to wash and prep the column for the elution of RNA in step 20 below.
15、摇晃SR5使其混合，加1mlSR5到收集管中，使沉淀再完全悬浮。
注意：土壤样品不同，沉淀有可能不易悬浮，可能需要将收集管放到45℃的水浴池中10min再悬浮,再漩涡混合，重复这样直到沉淀重悬浮。
16. Prepare one RNA Capture Column (provided) for each RNA Isolation Sample:
a. Remove the cap of a 15 ml Collection Tube (provided) and place the RNA Capture Column inside the 15 ml Collection Tube. The column will hang in the 15 ml Collection Tube.
b. Add 2 ml of Solution SR5 to the RNA Capture Column and allow it to gravity flow through the column and collect in the 15 ml Collection Tube. Allow Solution SR5 to completely flow through the column (Optional: The Collection Tube may be emptied after Solution SR5 has completely flowed through the column. Note: DO NOT ALLOW
THE COLUMN TO DRY OUT PRIOR TO LOADING THE RNA ISOLATION SAMPLE.)
16、为每个RNA样品准备一个捕集柱。
a.将捕集柱悬挂到收集管上。
b. 加2mlSR5到捕集柱上，使其重力流。允许SR5完全流过捕集柱。
注意：在加RNA样品前不要让捕集柱流干。
17. Add the RNA Isolation Sample from Step 15 onto the RNA Capture Column and allow it to gravity flow through the column. Collect the flow through in the 15 ml Collection Tube.
17、将15步的RNA分离样加到捕集柱中，使其流过捕集柱。
18. Wash the column with 1 ml of Solution SR5. Allow it to gravity flow and collect the flow through in the 15 ml Collection Tube.
What’s happening: The sample is added to the RNA Capture Column and the nucleic acids are bound to the column matrix. The Capture Column is then washed with a second volume of Solution SR5 to ensure unbound contaminants are removed from the sample and column prior to the elution of RNA.
18、用1mlSR5洗涤捕集柱，流出液收集在收集管中。
反应：样品加到捕集柱上，核酸结合到柱基质上。捕集柱用SR5洗涤确保没结合的污染物被去除掉。
19. Transfer the RNA Capture Column to a new 15 ml Collection Tube (provided). Shake Solution SR6 and then add 1 ml of Solution SR6 to the RNA Capture Column to elute the bound RNA into the 15 ml Collection Tube. Allow Solution SR6 to gravity flow into the 15 ml Collection Tube.
What’s happening: The Solution SR6 RNA elution buffer is a proprietary salt solution that allows for the preferential release of RNA from the RNA Capture Column leaving DNA, residual debris, and inhibiting substances in the column. Note: a new kit is available for DNA elution. See DNA Elution Procedure in the Hints and Troubleshooting Guide or
c ontact MO BIO for details at technical@https://www.360docs.net/doc/7311327817.html,
19、将捕集柱转移到新收集管中，摇晃SR6，然后加1mlSR6到捕集柱中使其流过捕集柱，洗提RNA。
反应：SR6 RNA洗提缓冲液是专有的盐溶液，它能使RNA流出而DNA、剩下的细胞碎片和抑制剂依然留在捕集柱上。
20. Transfer the eluted RNA to a 2.2 ml Collection Tube (provided) and add 1 ml of Solution SR4. Invert at least once to mix and incubate at -20°C for 10 minutes.
20、将洗提的RNA转移到2.2ml的收集管中，并加1mlSR4，至少倒置混合一次，-20℃静置10min。
21. Centrifuge the 2.2 ml Collection Tube at 13,000 x g for 15 minutes at room temperature to pellet the RNA.
21、室温下2.2ml收集管13000g离心15min。
22. Decant the supernatant and invert the 2.2 ml Collection Tube onto a paper towel for 10 minutes to air dry the pellet.
What’s happening: Solution SR4 is 100% Isopropanol. Eluted RNA from the Capture Column is precipitated, centrifuged, and allowed to air dry prior to resuspending and concentrating. 22、移去上清液，纸巾上倒置2.2ml收集管10min，风干颗粒物。
23. Resuspend the RNA pellet in 100 μl of Solution SR7.
23、加100μιSR7使RNA颗粒再悬浮。
What’s happening: Solution SR7 i s RNase/DNase-Free water used to resuspend the pelleted DNA. Solution SR7 contains no EDTA. DNA is now ready for any downstream application. For long term storage of samples 10 mM Tris pH 8.0 or TE buffer may be used to resuspend the pelleted RNA.
反应：SR7是不含RNA酶和DNA酶的水，用来悬浮DNA。溶液SR7不含EDTA。DNA可用于后续的使用。长期保存可用10Mm Tris pH 8.0或TE缓冲液可用来再悬浮RNA。
(Note: Although DNA carryover does not occur with the majority of soil types, certain soils high in organic matter may present unique carryover situations. In situations where the absence of DNA contamination is critical, the purified RNA should be tested for potential DNA carryover by performing PCR with qualified primers on the isolated RNA without performing prior reverse transcription amplification. The absence of a detectable amplification fragment by agarose electrophoresis indicates the absence of detectable carryover DNA. In the event DNA is detected, DNase treatment
of the isolated RNA is recommended; see Additional Information Section for instruction).
注意：虽然大多数样品不会发生DNA交叉污染，有些有机质含量高的土壤可能罕见的交叉污染情况，这种情况下，DNA污染物的去除很重要，纯化的RNA应该直接用PCR检测。琼脂糖电泳缺乏检测复制片段表明缺乏检测到的交叉污染DNA。如果检测到DNA，推荐使用DNA酶处理分离的RNA。
详细步骤
实验过程中要一直带手套，实验工作区要去除RNA酶。1、加2克土壤到15ml磁珠管中。
P.S：
高纯度质粒小量快速提取试剂盒操作方法及步骤说明书
杭州昊鑫生物科技股份有限公司 htpp://https://www.360docs.net/doc/7311327817.html, HighPure Plasmid Mini Kit 高纯质粒小量快速提取试剂盒 目录号：PL03 试剂盒组成、储存、稳定性： 试剂盒组成保存 50次 （PL0301） 100次 （PL0302） 200次 （PL0303） 平衡液室温5ml 10ml 20ml RNaseA（10mg/ml）-20℃150μl 250μl 500μl 溶液P1 4℃15 ml 25 ml 50 ml 溶液P2 室温15 ml 25 ml 50 ml 溶液P3 室温20 ml 35 ml 70 ml 去蛋白液PE 室温16ml 31.5 ml 63 ml 第一次使用前按说明加指定量乙醇 漂洗液WB 室温15 ml 25ml 50ml 第一次使用前按说明加指定量乙醇 洗脱缓冲液EB 室温10ml 15ml 20ml 吸附柱AC 室温50个100个200个 收集管（2ml）室温50个100个200个 本试剂盒在室温储存12个月不影响使用效果。 储存事项: 1.第一次使用时，将试剂盒所带的全部RNase A加入溶液P1后（终浓度100ug/ml） 置于2-8℃保存。如果溶液P1中RNase A失活，提取的质粒可能会有微量RNA 残留，在溶液P1中补加RNase A即可。 2.环境温度低时溶液P2中SDS可能会析出浑浊或者沉淀，可在37℃水浴加热几分 钟，即可恢复澄清，不要剧烈摇晃，以免形成过量的泡沫。 3.避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、pH值变化，各溶液使用后应及时 盖紧盖子。 产品介绍：
本试剂盒采用改进SDS-碱裂解法裂解细胞，离心吸附柱内的硅基质膜在高盐、低pH值状态下选择性地结合溶液中的质粒DNA，再通过去蛋白液和漂洗液将杂质和其它细菌成分去除，最后低盐、高pH值的洗脱缓冲液将纯净质粒DNA从硅基质膜上洗脱。 产品特点： 1.离心吸附柱内硅基质膜全部采用进口世界著名公司特制吸附膜，柱与柱之间吸附 量差异极小，可重复性好。克服了国产试剂盒膜质量不稳定的弊端。 2.独有的去蛋白液配方，可以高效去除残留的核酸酶，即使是核酸酶含量丰富的菌 株如JM系列、HB101也可以轻松去除。有效防止了质粒被核酸酶降解。 3.快速、方便，不需要使用有毒的苯酚、氯仿等试剂，也不需要乙醇沉淀。获得的 质粒产量高、纯度好，可以直接用于酶切、转化、PCR、体外转录、测序等各种分子生物学实验。 注意事项 1. 所有的离心步骤均在室温完成，使用转速可以达到13,000rpm的传统台式离心机， 如Eppendorf 5415C 或者类似离心机。 2. 提取质粒的量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。一般高拷贝质粒，建议 接种单菌落于1.5-4.5 ml加合适抗生素的LB培养基，过夜培养14-16个小时，可提取出多达20μg的纯净质粒。如果所提质粒为低拷贝质粒或大于10kb的大质粒，应适当加大菌体使用量，使用5-10 ml过夜培养物，同时按比例增加P1、P2、P3的用量，其它步骤相同。 3. 得到的质粒DNA可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。OD260 值为1相当于大约50μg/ml DNA。电泳可能为单一条带，也可能为2条或者多条DNA条带，这主要是不同程度的超螺旋构象质粒泳动位置不一造成，与提取物培养时间长短、提取时操作剧烈程度等有关。本公司产品正常操作情况下基本超螺旋可以超过90%。 4. 质粒DNA确切分子大小，必须酶切线性化后，对比DNA分子量Marker才可以知 道。处于环状或者超螺旋状态的的质粒，泳动位置不确定，无法通过电泳知道其确切大小。 5. 洗脱液EB不含有螯合剂EDTA，不影响下游酶切、连接等反应。也可以使用水洗 脱，但应该确保pH大于7.5，pH过低影响洗脱效率。用水洗脱质粒应该保存在－
BIOG核酸提取试剂盒操作步骤说明
BIOG 游离DNA 提取试剂盒操作步骤 说明 运输条件：常温运输 货 号：51019:50次反应 51020:100次反应 储存条件：室温（15-25℃），消化液、DNA Carrier 请于-20℃存放 产品特点 试剂盒组成 组分 50次 100次 吸附柱和收集管 各50个 各100个 裂解液 18mL 36 mL 洗涤液A 21mL 42 mL 洗涤液B 9 mL 18 mL 洗脱液 3mL 6 mL 消化液 1.2 mL 2.4 mL DNA Carrier 0.24 mL 0.48 mL 说明书 1份 1份 产品介绍 BIOG cfDNA Easy Kit 是常州百代生物科技股份有限公司研制的专门用于提取血清、血浆等游离DNA 的试剂盒。BIOG cfDNA Easy Kit 采用了最新的优质进口离子膜，裂解液和洗脱液经过多次优化，能高效地分离DNA 。提取得到的DNA 较其它品牌的同类试剂盒产量更大，纯度更高，最大限度地去除了蛋白、色素、脂类等杂质污染，可以直接应用于PCR 、荧光定量PCR 和各种酶切试验等。 操作步骤 1. 请自行准备：无水乙醇、1.5mL 离心管。 2. 取出洗涤液，按以下操作： a) 洗涤液A ：21mL 加入9mL 无水乙醇；42mL 加入18mL 无水乙醇。 b) 洗涤液B ：9mL 加入21mL 无水乙醇；18mL 加入42mL 无水乙醇。 c) 配制好的洗涤液如出现沉淀，可在37℃溶解，摇匀后使用。 3. 取1.5mL 离心管，加入200μL 样本，4μL DNA Carrier 混合均匀，加入300μL 裂解液及20μL 消化液，振荡混匀，56℃水浴10 分钟。 4. 加入1000μL 无水乙醇，轻轻颠倒混匀，如有半透明悬浮物，不影响DNA 的提取与后续实验。 5. 将吸附柱放入收集管内，将760μL 上述溶液转入吸附柱内，静置2 分钟，12,000 rpm 4℃离心1 分钟，弃收集管内废液； 6. 将吸附柱放回收集管内，将剩余760μL 溶液转移至吸附柱内，重复步骤5。 7. 将吸附柱放回收集管内，加500μL 洗涤液A 至吸附柱内，12,000 rpm 4℃离心1 分钟，弃收集管内废液。 8. 将吸附柱放回收集管内，加500μL 洗涤液B 至吸附柱内，12,000 rpm 4℃离心1 分钟，弃收集管内废液。 9. 将吸附柱放回收集管内，12,000 rpm 4℃离心2 分钟，离去残留的洗涤液。 10. 取出吸附柱，放入新的1.5 mL 离心管内，加入30-50 μL 洗脱液，静置3 分钟，12,000 rpm 4℃ 离心2 分钟，收集DNA 溶液。提取的 DNA 即可用于下一步实验或-20℃保存。 注意事项： 裂解液、洗涤液含有刺激性化学物质，操作过程请做好防护措施，避免直接接触皮肤，防止吸入口鼻。如不慎沾染皮肤或眼睛， 请立即用清水或生理盐水冲洗，必要时请就医。 储存、运输和有效期 本试剂盒可常温运输，室温（15-25℃）保存，有效期为12个月，消化液、DNA Carrier 请于-20℃存放，避免反复冻融。 质量控制 本产品经严格的质量检验证明，无生物污染 注意 ：本产品仅用于科研 BIOG 游离RNA 提取试剂盒操作步骤说明 运输条件：常温运输 ◎操作简便快速，可在半小时内获得理想的DNA ； ◎提取DNA 纯度高，无抑制剂，A260/A280为1.7-1.9； ◎产量更高，较国内同类产品高出20%； ◎可用于血清、血浆等游离样本中DNA 的提取； ◎不含苯酚和氯仿等有毒溶剂，安全无毒。
质粒DNA的提取及检测实验报告
题目：质粒DNA的提取及检测 一．实验目的: 1.学习碱裂解法提取质粒的原理和方法； 2.学习DNA琼脂糖凝胶电泳的原理和方法。 二．实验原理 1. 质粒 (Plasmid)： 一种染色体外的稳定遗传因子，大小从1-200kb不等，为双链、闭环的DNA分子，并以超螺旋状态存在于宿主细胞中。主要发现于细菌、放线菌和真菌细胞中，常常编码一些对宿主有利的酶的基因，这些基因的表型包括抗生素抗性，产生抗生素、限制酶、修饰酶等。 2.载体(Vector)： 要把一个有用的外源基因通过基因工程手段，转化到细胞中去进行繁殖和表达，需要运载工具，携带外源基因进入受体细胞的这种工具就叫载体。目前除了大肠杆菌中的质粒、λ噬菌体、M13噬菌体、噬菌粒外，还有酵母人工染色体载体以及动、植物病毒载体等。 3.分离质粒DNA： （1）培养细菌使质粒扩增； （2）收集和碱裂解细菌； （3）分离和纯化质粒DNA。 4.碱裂解法 （1）溶液Ⅰ：50mmol/L葡萄糖，10mmol/EDTA-Na，25mmol/LTris-HCl 作用：分散细胞，螯合金属离子使酶失活，防止DNA的降解
（2）溶液Ⅱ：L NaOH，2% SDS，临用前1：1配制 作用：细胞在NaOH和SDS溶液中裂解时，蛋白质与染色体DNA发生变性 （3）溶液Ⅲ：5mol/L 醋酸钾60ml，冰醋酸，双蒸水 作用：酸性条件上质粒DNA复性，留在上清液。大肠杆菌DNA和蛋白质-SDS复合物等发生沉淀。 5.电泳 带电荷的物质，在电场中的趋向运动称为电泳。DNA的琼脂糖凝胶电泳可以分离长度为200bp至近50kb的DNA分子。DNA的迁移率（U）的对数与凝胶浓度（T）之间存在反平行线 性关系。因此，要有效地分离不同大小的DNA片段，选用适当的琼脂糖凝胶浓度是非常重要的。 6.提取质粒 在质粒提取的过程中，由于操作原因，提取的质粒可能有三种：线性DNA、开环DNA 、 闭环超螺旋DNA 。当提取的质粒DNA电泳时,同一质粒 DNA泳动速度：闭环超螺旋〉线状〉 开环。但有时也有也会出现相反情况，因为与琼脂糖浓度、电流强度、离子强度及核酸染料 含量有关。 三．实验材料及设备 1.实验材料： （1）含质粒pUC18大肠杆菌，塑料离心管，EP管架，微量取液器和取液器吸头，常用玻璃器皿（如三角瓶、量筒、试剂瓶等）； （2）提取的pUC18，琼脂糖，锥形瓶，一次性手套，胶铲，封口膜，剪刀，取液器吸头。实验设备：
质粒提取试剂盒-说明书-翻译
精品文档 。 1欢迎下载 E.Z.N.A.? 质粒小提试剂盒操作规程（英文版译文） （适用于No. D6942, D6943 & D6944） 1. 自新鲜划痕选择培养板中分离单菌落，接种含适当选择性抗生素的1-5ml 的LB 培 养基进行培养。37℃强力摇动（~300rpm ）孵育12-16h 。使用10-20ml 培养管或容量至少4倍于培养容积的培养瓶。强烈推荐使用endA 阴性大肠杆菌菌株进行常规质粒分离。此类菌株包括DH5α和JM109。 2. 将1.5-5.0ml 细菌室温10,000 x g 离心1min 。轻轻倒出或吸走培养基并丢弃。 3. 加入250μl 的溶液I/Rnase A 重悬沉淀，涡旋或用移液器反复吹打。充分重悬沉 淀对于获得高质量的DNA 非常重要。 4. 加入250μl 溶液II ，倒置、转动试管数次使之轻轻混匀，得到透明的裂解产物。 可能需要孵育2min 。不要用力混合，以免使染色体DNA 断裂，减低质粒的纯度。该步反应不要超过5min 。溶液II 不用时要拧紧瓶盖，以免试剂被空气中的CO2酸化。 5. 加入350μl 溶液III ，立即倒置试管数次混匀，直至白色絮状沉淀物形成。为避免 形成局部沉淀，加入溶液III 后应立即、充分混匀溶液。 6. 室温≥10,000 x g 离心10分钟。白色沉淀物形成，立即进行下一步操作。 7. 小心翼翼．．．． 的吸取上清液，加入装配在2ml 收集管中的小量纯化柱I 中。确保离心沉淀未受扰动，确保没有细胞碎片加入到柱子中。室温下10,000 x g 离心1分钟，使裂解液完全通过柱子。 8. 丢弃滤过液，重新使用2ml 收集管；加入500μl HB 缓冲液清洗柱子，室温10,000 x g 离心1分钟，使溶液完成通过柱子。该步操作需确保残余的蛋白质污染被去除，以保证获得高品质的DNA 以适合于下游的应用。 9. 丢弃滤过液，重新使用2ml 收集管；加入700μl 用无水乙醇稀释的DNA 清洗液清 洗柱子，室温10,000 x g 离心1分钟，使溶液完全通过柱子，丢弃滤过液。 注意：DNA 清洗液的浓缩液使用前必须用无水乙醇稀释（5倍稀释），如果DNA 清洗液稀 释液经过冷藏，则使用之前必须置于室温。 10. 可选步骤：重复清洗，加入另外的700μl 用无水乙醇稀释的DNA 清洗液。 11. 将空柱子≥13,000 x g 离心2min ，使柱子的基质干燥。此步骤为关键操作，不可 遗漏。 12. 将柱子放入干净的1.5ml 微量离心管中。将30-50μl （取决于终产物的期望浓度） 洗脱液或无菌去离子水直接加入柱子基质上，使之于室温下静置1-2min 。≥13,000 x g 离心1min 洗脱DNA 。可以进行二次洗脱，以收集残存的DNA 。 13. DNA 的产量和质量：分别在波长260nm 和280nm 处测定样品适当稀释液的吸光度。DNA 的浓度计算如下： DNA 浓度=A 260×50×（稀释倍数）μg/ml A 260/A 280的比率可以反映核酸的纯度。比值大于1.8表明核算的纯度在90%以上。或者，DNA 的产量（及质量）有时可以通过琼脂糖胶/溴乙锭电泳与已知浓度的DNA 样品相比较更好的予以确定。通常情况下洗脱的大部分DNA 是超螺旋单体形式，但也可能存在串联体形式。 张小强 翻译
质粒DNA的提取和纯化实验报告
质粒DNA的提取和纯化实验报告
实验一、质粒DNA的提取和纯化 一、实验目的： 1、学习并掌握碱裂解法小量制备质粒DNA的方法。 2、初步了解DNA纯化的原理。 二、实验原理 1、细菌质粒是一类双链、闭环的DNA，大小范围从1kb至200kb以上不等。各种质粒都是存在于细胞质中、独立于细胞染色体之外的自主复制的遗传成份，通常情况下可持续稳定地处于染色体外的游离状态，但在一定条件下也会可逆地整合到寄主染色体上，随着染色体的复制而复制，并通过细胞分裂传递到后代。 2、质粒已成为目前最常用的基因克隆的载体分子，重要的条件是可获得大量纯化的质粒DNA分子。目前已有许多方法可用于质粒DNA的提取，本实验采用碱裂解法提取质粒DNA。 3、碱裂解法是一种应用最为广泛的制备质粒DNA的方法，其基本原理为：当菌体在NaOH和SDS溶液中裂解时，蛋白质与DNA发生变性，当加入中和液后，质粒DNA分子能够迅速复性，呈溶解状态，离心时留在上清中；蛋白质与染色体DNA不变性而呈絮状，离心时可沉淀下来。 4、纯化质粒DNA的方法通常是利用了质粒DNA相对较小及共价闭环两个性质。例如，氯化铯-溴化乙锭梯度平衡离心、离子交换层析、凝胶过滤层析、聚乙二醇分级沉淀等方法，但这些方法相对昂贵或费时。对于小量制备的质粒DNA，经过苯酚、氯仿抽提，RNA酶消化和乙醇沉淀等简单步骤去除残余蛋白质和RNA，所得纯化的质粒DNA已可满足细菌转化、DNA片段的分离和酶切、常规亚克隆及探针标记等要求，故在分子生物学实验室中常用。 三、实验步骤 1、挑取单菌落接种到含Amp的LB液体培养基试管内（3.5ml/管） 2、将试管放入恒温震荡培养箱中，37℃，200r/min培养12-16h。 3、将菌落转入1.5ml离心管中（尽量倒满）1200r/min，离心30s（沉淀菌体） 4、重复一次第三步的过程 5、弃掉上清液并扣干，加入预冷的Solution1 100微升，剧烈震荡打散菌体
omga质粒提取试剂盒_说明书_翻译
omgaE.Z.N.A.质粒试剂盒操作规程说明书（译版） 1. 自新鲜划痕选择培养板中分离单菌落，接种含适当选择性抗生素的2-5ml的LB或YT培养基进行培养。37℃强力摇动（~300rpm）孵育20-24h。使用10-20ml培养管或容量至少4倍于培养容积的培养瓶。强烈推荐使用endA阴性大肠杆菌菌株进行常规质粒分离。此类菌株包括DH5α和JM109。 2. 将1.5-5.0ml细菌菌液室温13,000 g离心3min。轻轻倒出或吸走培养基并丢弃。 3. 加入200μl 的溶液Buffer T 1/Rnase A重悬沉淀，涡旋或用移液器反复吹打。充分重悬沉淀对于获得高质量的DNA非常重要。 4. 加入200μl溶液Buffer T 2，倒置、转动试管5-10次使之轻轻混匀，得到透明的裂解产物。室温孵育5min。不要用力混合，以免使染色体DNA断裂，减低质粒的纯度。该步反应不要超过5min。溶液II不用时要拧紧瓶盖，以免试剂被空气中的CO2酸化。 5. 加入200μl溶液Buffer T 3，立即倒置试管15-20次混匀，直至白色絮状沉淀物形成。冰上孵育5min。为避免形成局部沉淀，加入溶液III后应立即、充分混匀溶液。 6. 4℃13,000 g离心10分钟。白色沉淀物形成，立即进行下一步操作。 7. 小心翼翼的吸取上清液，加入到新的1.5ml离心管（不是试剂盒提供的）中。加入200ul 用异丙醇稀释的BAC 结合液（缓冲液），颠倒3-5次充分混匀。BAC 结合液使用前必须用96%-100%的异丙醇稀释，详细的说明见瓶壁或第三页说明书 8.加入样本DNA（HiBind DNA MicroElute）到提供的2ml收集管中。 9. 室温8000g离心30s，丢弃收集管，将离心柱放入新的收集管中。 10. 将收集柱放回收集管并加入750ul SPM buffer（用乙醇稀释），室温8000g离心30s，丢弃收集管，将离心柱放入新的收集管中。 11. 将空柱子以最大速度离心2min，使柱子的基质干燥。此步骤为关键操作，不可遗漏。 12. 将柱子放入干净的1.5ml微量离心管中。将20-50μl（取决于终产物的期望浓度）洗脱液（Elution Buffer）或无菌去离子水直接加入柱子基质上，使之于室温下静置5min。 13.最大速度离心2min洗脱DNA。可以进行二次洗脱，以收集残存的DNA。 14. -20℃保存洗脱的DNA。 15. DNA的产量和质量：分别在波长260nm和280nm处测定样品适当稀释液的吸光度。DNA的浓度计算如下： DNA浓度=A260×50×（稀释倍数）μg/ml A260/A280的比率可以反映核酸的纯度。比值大于1.8表明核算的纯度在90%以上。或者，DNA的产量（及质量）有时可以通过琼脂糖胶/溴乙锭电泳与已知浓度的DNA样品相比较更好的予以确定。通常情况下洗脱的大部分DNA是超螺旋单体形式，但也可能存在串联体形式。 适用于BACs，PACs，P1s和质粒分离步骤（标准）（D2156-00，D2156-01，D2156-02）彭伟翻译
高纯度质粒小提试剂盒使用说明书
高纯度质粒小提试剂盒 Pure Mini Plasmid Kit (目录号：HS0103) 产品包装 试剂盒成分 50 preps Buffer P1 15 ml Buffer P2 15 ml Buffer P3 20 ml Buffer PD 30 ml RNase A(10 mg/ml) 150 ul Buffer PW 60 ml Buffer EB 10 ml Spin Columns PA 50个 Collection Tubes (2 ml) 50个 （注意：使用前将全部RNase A 溶液加到Buffer P1中混合均匀，2 ~ 8℃保存） 保存条件 本试剂盒在室温(15 ~ 25℃)干燥条件下，可保存12个月；更长时间的保存可置于2 ~ 8℃。若溶液产生沉淀，应在使用前置于37℃下溶解沉淀。单独包装的RNase A 在室温可稳定保存12个月。加入RNase A 后的Buffer P1应置于2 ~ 8℃保存，可稳定保存6个月。 产品简介 本试剂盒用于高纯度质粒DNA 的小量制备与纯化。菌体经碱裂解、高盐、低pH 处理，质粒可从菌体中释放出来，并特异、高效地被离心柱硅胶膜（Spin Columns PA ）吸附。通过去蛋白液（Buffer PD ）和漂洗液（Buffer PW ）的清洗可去除蛋白及其他杂质，在低盐、高pH 条件下洗脱，最后得到高纯度的质粒DNA 。 北京厚生博泰科技有限公司 Beijing Hooseen Biotech Co., Ltd.
使用本试剂盒可从1 ~ 5 ml过夜培养的菌液中纯化得到高达20 ug的高纯度质粒DNA，可在30 min之内完成提取任务。所得质粒可直接用于酶切、转化、PCR、测序、低敏感细胞株的转染等各种常规分子生物学操作。 产品特点 1. 快速：步骤少，操作简便，节约时间。 2. 简便：离心吸附柱不需要预平衡，漂洗液Buffer PW 和去蛋白液Buffer PD不需要另加乙醇，即开即用。 3. 纯度高：所得质粒可直接用于酶切、转化、PCR、测序、低敏感细胞株的转染等各种常规分子生物学操作。 操作步骤 1. 取1 ~ 5 ml过夜培养的菌液，室温12,000 rpm离心1 min，尽量将上清去除干净。 （注意：根据菌液的浓度决定取液量，浓度高时取1 ml菌液离心即可，浓度低时可多收集一次） 2. 加入250 ul Buffer P1，用枪头充分吹打使菌体重悬均匀。 （注意：是否将RNase A溶液加到Buffer P1中并混合均匀；菌体沉淀是否悬浮充分，如有未彻底悬浮的菌块会影响裂解，导致提取的质粒浓度及纯度降低） 3. 加入250 ul Buffer P2，温和颠倒混匀6 ~ 8次，直到溶液变得清亮粘稠。 （注意：不可剧烈震荡，以免造成基因组DNA片段的污染，所用时间不要超过5 min，以免质粒受到破坏，如未完全变得清亮，可能是菌体太多，可增加Buffer P2的用量，在后续的操作中Buffer P3的用量也要相应增加） 4. 加入350 ul Buffer P3，立即温和颠倒混匀6 ~ 8次，可见白色沉淀物产生，室温静置2 min，然后12,000 rpm离心3 ~ 5 min。 （注意：Buffer P3加入后应立即混合，避免产生局部沉淀，如果上清中还有微小白色沉淀，可再次离心后取上清） 5. 小心将上清液转移到离心吸附柱Spin Columns PA中，静置2 min，让质粒DNA与吸附柱中的硅胶膜充分结合。12,000 rpm离心0.5 ~ 1 min，弃收集管中的废液。 6. 向吸附柱中加入500 ul去蛋白液，12,000 rpm离心1 min，弃收集管中废液。 （注意：如果宿主菌是endA-，如DH5α若TOP10，此步骤可省略。如果宿主菌是endA+，如TG1、BL21、HB101、JM101等，此步骤不可省略，因这些宿主菌含有大量的核酸酶，易降解质粒。如果提取低拷贝质粒
OMEGA小提试剂盒提取质粒步骤(无内毒)
OMEGA小提试剂盒提取质粒步骤(中文翻译版) 1、将携带目的质粒的大肠杆菌接种于含10~15ul基础培养基/氨苄西林培养介质的50ml培养瓶中。 2、室温下500×g离心10min。 3、弃去上清，剩余沉淀物中加入500ul的SolutionⅠ/RNase A，彻底混匀。 4、将混悬液移至新的2ml离心管中，加入500ul SolutionⅡ，轻柔彻底混匀，可得清亮的细菌裂解物，室温下孵育2min（混匀时用力过大，可破碎出染色体DNA，使目的质粒纯度下降）。 5、向4中液体加入250ul预冷的Buffer N3，轻柔、彻底混匀，直到出现白色絮状沉淀，4℃≥12000×g离心10min（可室温，最好4℃）（Buffer应彻底混匀，若混合物粘稠呈棕色或呈球状，应多混匀几次以中和溶液，溶液的彻底中和对于获得好的产出是必要的）。 6、小心吸取并将上清液转移进新的1.5ml离心管1：0.1的比例向上清液中加入ETR Solution 混匀溶液并于冰上孵育10min，孵育过程中颠倒几次以混匀（加入ETR Solution后，细菌裂解物将出现浑浊，但冰上孵育后将变澄清）（勿用2ml离心管收集上清，因为2ml离心管中有太多液体时，ETR Solution将悬浮于溶液中）。 7、将6中液体于42℃孵育5min，溶液将再次变浑。室温下12000×g离心3min，ETR Solution 将于离心管底部形成蓝色层。 8、将上层水相转移入新的2ml离心管中，按1：0.5的比例加入无水乙醇（室温，96~100％），轻柔混匀，室温下孵育1~2min。 9、将8中的溶液取700ul到柱子中，组装收集管，室温下1000×g离心1min，弃去收集管中通过柱子的液体，柱子和收集管重复利用。 10、重复9中步骤，直到收集的细菌裂解物全部用完。 11、将500ul Buffer HB加入柱子中，室温下1000×g离心1min，弃去收集管中废液（目的：将残存的蛋白污染物除去，是获得高质量DNA所必需的）。 12、向柱子中加入混有乙醇的700ulDNA Wash Buffer，室温下1000×g离心1min，弃去收集管中液体。 13、重复12中的步骤。 14、弃去收集管中液体，空管在最大转速（≥13000×g）离心3min以干燥柱子（对于移除柱子中残留的乙醇是必须的）。 15、将柱子放入新的 1.5ml离心管中，直接向柱子中的白色网状物上加入Endotoxin-Free Elution Buffer 80~100ul（依终产物浓度而定，可每次30ul×2次），室温下放置2min，≥13000×g离心1min，以洗提DNA（将提取约70~85％柱子中收集的DNA，可再重复一次以提取完全，但因再次加入洗提液，会使终产物浓度下降）。 声明：文档为自己翻译后逐字打出来的，有不妥之处望各位同行不吝赐教，以方便大家实验参考，谢谢。
20170915XXXX游离核酸提取试剂盒(货号：LS-R-N-004-05-3-0)测试报告
******外周血游离核酸提取试剂盒 货号：LS-R-N-004-05-3-0 测试报告 测试人员： 测试时间： 一、主要内容： 测试广东南芯医疗外周血游离核酸提取试剂盒游离核酸提取得率和质量。 实验过程中使用的是两个样本。 对实验过程中的cfDNA纯化产物进行质控（浓度及4200目的条带）。 二、实验结论 1、Qubit测定1号样本、2号样本浓度均低于0.5ng/mL。溶解体系为50μL，1号样本、2号样本均无法计算cfDNA的提取量。 2、4200检测：HSD1000， 1号样本在185bp处有主峰，2号样本在182bp处有主峰。 3、实验过程遇到的问题及解决方法 （1）问题：试剂盒说明书上适用于3mL的血浆，本次实验使用1mL血浆进行，并且蛋白酶K、BufferBEO用量根据倍数减少。 疑问： 1mL血浆的蛋白酶K用量为20uL，对裂解效果是否有影响？ 建议联系该试剂盒技术支持进行咨询，关于提取条带中500bp以上条带的来源。 除上述问题外，其余实验步骤完全依照试剂盒要求进行。 三、实验结果 1、测试样本2个，实验步骤完全依照试剂盒要求进行，具体信息见下表：
样本名称样本编号cDNA浓度 李万才1＜0.5ng/mL 陈秀英2＜0.5ng/mL 4200检测图谱如下 1号样本的图谱： 2号样本的图谱： 结果分析：
Qubit测定1号样本、2号样本浓度均低于0.5ng/mL。溶解体系为50μL，1号样本、2号样本均无法计算cfDNA的提取量。 1号样本在185bp处有主峰，2号样本在182bp处有主峰。 四、实验方案 cfDNA的提取： 1、实验前准备：往BufferBEE中加入异丙醇；往BufferBEZ1和Buffer BEZ2中加入无水乙醇；加入体积参照试剂瓶上的标签。 2、准备血浆样品：从-80℃冰箱中取出样品1号李万才和样品2号陈秀英，置于室温水槽中溶解。 3、选择10ml的离心管，依次加入20μLProteinase K、1mL血浆。 4、再加入0.8mL Buffer BEO，涡旋震荡混匀30s。 5、在60℃孵育30min。 6、向裂解物中加入1.8mL Buffer BEE，涡旋震荡混匀15-30s。 7、冰上孵育5min。 8、取出吸附柱，做好标志。分多次将步骤7得到的裂解物加到吸附柱上，10000rpm，1min离心，去除废液。直至裂解物完全过柱。 9、向吸附柱中加入600μL Buffer BEZ1，12000rpm离心1min，倒掉废液，将吸附柱放回收集管上。 10、向吸附柱中加入750μL Buffer BEZ2，12000rpm离心1min，倒掉废液，将吸附柱放回收集管上。 11、向吸附柱中加入750μL无水乙醇，12000rpm离心1min，倒掉废液，将吸附柱放回收集管上。 12、12000rpm离心2miin，以去除吸附柱中残余液体。
质粒DNA提取方法与原理
质粒提取的原理、操作步骤、各溶液的作用 细菌质粒是一类双链、闭环的DNA，大小范围从1kb至200kb以上不等。各种质粒都是存在于细胞质中、独立于细胞染色体之外的自主复制的遗传成份，通常情况下可持续稳定地处于染色体外的游离状态，但在一定条件下也会可逆地整合到寄主染色体上，随着染色体的复制而复制，并通过细胞分裂传递到后代。 质粒已成为目前最常用的基因克隆的载体分子，重要的条件是可获得大量纯化的质粒DNA分子。目前已有许多方法可用于质粒DNA的提取，本实验采用碱裂解法提取质粒DNA。 碱裂解法是一种应用最为广泛的制备质粒DNA的方法，其基本原理为：当菌体在NaOH和 SDS溶液中裂解时，蛋白质与DNA 发生变性，当加入中和液后，质粒DNA分子能够迅速复性，呈溶解状态，离心时留在上清中；蛋白质与染色体DNA不变性而呈絮状，离心时可沉淀下来。 纯化质粒DNA的方法通常是利用了质粒DNA相对较小及共价闭环两个性质。例如，氯化铯-溴化乙锭梯度平衡离心、离子交换层析、凝胶过滤层析、聚乙二醇分级沉淀等方法，但这些方法相对昂贵或费时。对于小量制备的质粒DNA，经过苯酚、氯仿抽提，RNA酶消化和乙醇沉淀等简单步骤去除残余蛋白质和RNA，所得纯化的质粒DNA已可满足细菌转化、DNA片段的分离和酶切、常规亚克隆及探针标记等要求，故在分子生物学实验室中常用。 一、试剂准备 1. 溶液Ⅰ: 50mM葡萄糖，25mM Tris-HCl(pH 8.0)，10mM EDTA(pH 8.0）。1M Tris-HCl (pH 8.0）1 2.5ml，0.5M EDTA（pH 8.0）10ml，葡萄糖4.730g，加ddH2O至500ml。在10 lbf/in2高压灭菌15min ，贮存于4℃。 任何生物化学反应，首先要控制好溶液的pH，因此用适当浓度的和适当pH值的Tris-Cl溶液。50 mM葡萄糖最大的好处只是悬浮后的大肠杆菌不会快速沉积到管子的底部。因此，如果溶液I中缺了葡萄糖其实对质粒的抽提本身而言，几乎没有任何影响。所以说溶液I中葡萄糖是可缺的。EDTA呢？大家知道EDTA是Ca2+和Mg2+等二价金属离子的螯合剂，配在分子生物学试剂中的主要作用是：抑制DNase的活性，和抑制微生物生长。在溶液I中加入高达 10 mM 的EDTA，无非就是要把大肠杆菌细胞中的所有二价金属离子都螯合掉。如果不加EDTA，其实也没什么大不了的，只要不磨洋工，只要是在不太长的时间里完成质粒抽提，就不用怕DNA会迅速被降解，因为最终溶解质粒的TE缓冲液中有EDTA。如果哪天你手上正好缺了溶液I，可不可以抽提质粒呢？实话告诉你，只要用等体积的水，或LB培养基来悬浮菌体就可以了。 NaOH也使DNA变性，但只是个副产物，在溶液3加入后其中的醋酸和NaOH中和，质粒DNA恢复活性 2. 溶液Ⅱ：0.2N NaOH，1% SDS。2N NaOH 1ml，10%SDS 1ml，加ddH2O至10ml。使用前临时配置。 这是用新鲜的0.4 N的NaOH和2％的SDS等体积混合后使用的。要新从浓NaOH稀释制备0.4N的NaOH，无非是为了保证NaOH没有吸收空气中的CO2而减弱了碱性。很多人不知道其实破细胞的主要是碱，而不是SDS，所以才叫碱法抽提。事实上NaOH是最佳的溶解细胞的试剂，不管是大肠杆菌还是哺乳动物细胞，碰到了碱都会几乎在瞬间就溶解，这是由于细胞膜发生了从bilayer（双层膜）结构向 micelle（微囊）结构的相变化所导致。用了不新鲜的0.4 N NaOH，即便是有SDS 也无法有效溶解大肠杆菌（不妨可以自己试一下），自然就难高效率抽提得到质粒。如果只用SDS当然也能抽提得到少量质粒，因为 SDS也是碱性的，只是弱了点而已。很多人对NaOH的作用误以为是为了让基因组DNA变性，以便沉淀，这是由于没有正确理解一些书上的有关DNA变性复性的描述所导致。有人不禁要问，既然是NaOH溶解的细胞，那为什么要加SDS 呢？那是为下一步操作做的铺垫。这一步要记住两点：第一，时间不能过长，千万不要这时候去接电话，因为在这样的碱性条件下基因组DNA片断会慢慢断裂；第二，必须温柔混合（象对待女孩子一样），不然基因组DNA也会断裂。基因组 DNA 的断裂会带来麻烦。 3.溶液Ⅲ：醋酸钾（KAc）缓冲液，pH 4.8。5M KAc 300ml，冰醋酸 57.5ml，加ddH2O至500ml。4℃保存备用。 溶液III加入后就会有大量的沉淀，但大部分人却不明白这沉淀的本质。最容易产生的误解是，当SDS碰到酸性后发生的沉淀。如果你这样怀疑，往1%的 SDS溶液中加如2M的醋酸溶液看看就知道不是这么回事了。大量沉淀的出现，显然与SDS的加入有关系。如果在溶液II中不加SDS会怎样呢，也会有少量的沉淀，但量上要少得多，显然是盐析和酸变性沉淀出来的蛋白质。既然SDS不是遇酸发生的沉淀，那会不会是遇盐发生的沉淀呢？在1％的SDS溶液中慢慢加入5 N的NaCl，你会发现SDS在高盐浓度下是会产生沉淀的。因此高浓度的盐导致了SDS的沉淀。但如果你加入的不是NaCl而是KCl，你会发现沉淀的量要多的多。这其实是十二烷基硫酸钠（sodium dodecylsulfate）遇到钾离子后变成了十二烷基硫酸钾（potassium dodecylsulfate, PDS），而PDS是水不溶的，因此发生了沉淀。如此看来，溶液III加入后的沉淀实际上是
质粒提取试剂盒说明书
质粒提取试剂盒说明书 质粒提取的质量和得率受多种因素影响，既和质粒本身的性质以及拷贝有关，也和菌液的状态及实验操作有关，因此在质粒提取中的一些实验要点显得就极为重要了。质粒提取这看似简单的实验，却暗藏杀机，下面我们来看一下在质粒提取过程中那些习以为常的实验操作中的“误会“。 通常我们会认为越多的菌液或是越浓的菌液提取的质粒会越多，但实际实验中结果并非如此。 良好菌液的标准： 按1：1000的比例将菌液接种至培养基中，摇菌时间在8-12个小时，不超过16个小时。 菌液均匀悬浮于培养基中，无凝块、无沉淀，菌液的OD600吸光值在0.8-1.0之间，不超过1.2。 在提取质粒后进行凝胶电泳，如果在在超螺旋质粒的下方出现弥散条带，则是由于忘记加入RNaseA或RNaseA消化不充分，不完全降解的RNA与质粒共同被提取出来。
加入RNaseA的两个阶段： 在使用试剂盒提取质粒时，菌液重悬时在P1溶液中加入RNaseA 提取质粒后，在质粒溶液中加入RNaseA（试剂盒或溶液法） RNaseA的使用方法： RNaseA在质粒中的使用终浓度为20μg/ml 经RNaseA孵育的质粒，需要进行纯化去除残留的RNaseA 如何判断我们所使用的菌体量是否合适呢？在裂解时经几次颠倒混匀后，裂解液仍然为浑浊状态，说明未被裂解的菌体仍然悬浮在裂解液中，而充分裂解的菌体，溶液于裂解液中，裂解液呈现为澄清，质粒充分释放。 质粒小提试剂盒适合1-5 ml菌体的提取 小提中量试剂盒适合5-15 ml菌液的提取
中量提取试剂盒适合50-100 ml菌液的提取 大量提取试剂盒适合100-200 ml菌液的提取 如果我们想要增加提取的菌体量，也要相应提高所加入的裂解液体积。
OMEGA小提试剂盒提取质粒步骤(中文翻译版)
质粒提取（小提，mini kit） 1、将携带目的质粒的大肠杆菌接种于含10~15ul基础培养基/氨苄西林培养介质的50ml培养瓶中。 2、室温下5000×g离心10min。 3、弃去上清，剩余沉淀物中加入500ul的SolutionⅠ/RNase A，彻底混匀。 4、将混悬液移至新的2ml离心管中，加入500ul SolutionⅡ，轻柔彻底混匀，可得清亮的细菌裂解物，室温下孵育2min（混匀时用力过大，可破碎出染色体DNA，使目的质粒纯度下降）。 5、向4中液体加入250ul预冷的Buffer N3，轻柔、彻底混匀，直到出现白色絮状沉淀，4℃≥12000×g离心10min（可室温，最好4℃）（Buffer应彻底混匀，若混合物粘稠呈棕色或呈球状，应多混匀几次以中和溶液，溶液的彻底中和对于获得好的产出是必要的）。 6、小心吸取并将上清液转移进新的1.5ml离心管1：0.1的比例向上清液中加入ETR Solution 混匀溶液并于冰上孵育10min，孵育过程中颠倒几次以混匀（加入ETR Solution后，细菌裂解物将出现浑浊，但冰上孵育后将变澄清）（勿用2ml离心管收集上清，因为2ml离心管中有太多液体时，ETR Solution将悬浮于溶液中）。 7、将6中液体于42℃孵育5min，溶液将再次变浑。室温下12000×g离心3min，ETR Solution将于离心管底部形成蓝色层。 8、将上层水相转移入新的2ml离心管中，按1：0.5的比例加入无水
乙醇（室温，96~100％），轻柔混匀，室温下孵育1~2min。 9、将8中的溶液取700ul到柱子中，组装收集管，室温下1000×g 离心1min，弃去收集管中通过柱子的液体，柱子和收集管重复利用。 10、重复9中步骤，直到收集的细菌裂解物全部用完。 11、将500ul Buffer HB加入柱子中，室温下10000×g离心1min，弃去收集管中废液（目的：将残存的蛋白污染物除去，是获得高质量DNA所必需的）。 12、向柱子中加入混有乙醇的700ulDNA Wash Buffer，室温下10000×g离心1min，弃去收集管中液体。 13、重复12中的步骤。 14、弃去收集管中液体，空管在最大转速（≥13000×g）离心3min 以干燥柱子（对于移除柱子中残留的乙醇是必须的）。 15、将柱子放入新的1.5ml离心管中，直接向柱子中的白色网状物上加入Endotoxin-Free Elution Buffer 80~100ul（依终产物浓度而定，可每次30ul×2次），室温下放置2min，≥13000×g离心1min，以洗提DNA（将提取约70~85％柱子中收集的DNA，可再重复一次以提取完全，但因再次加入洗提液，会使终产物浓度下降）。 声明：文档为自己翻译后逐字打出来的，有不妥之处望各位同行不吝赐教，以方便大家实验参考，谢谢。
质粒提取试剂盒说明书
质粒抽提： 质粒抽提方法即去除RNA，将质粒与细菌基因组DNA分开，去除蛋白质及其它杂质，以得到相对纯净的质粒。 实验原理： 提取质粒DNA的方法有很多种，从提取产量上分可分为微量提取、中量提取、大量提取，从使用仪器上分可分为一般提取和试剂盒方法提取，从具体操作方法分可以分为碱裂解法、煮沸法、牙签法等，各种不同的方法各有其优缺点，根据不同的实验目的可以采用合适的提取方法。详细内容请参考《分子克隆实验指南》。另外，复旦大学生化与分子生物学实验室一篇文章，提供了质粒提取机理的详细解说。 碱裂解法 人们使用碱与SDS裂解法从E. coli（大肠杆菌）中分离制备质粒DNA已有30多年的历史。将细菌悬浮液暴露于高pH值的强阴离子洗涤剂中，会使细胞壁破裂，染色体DNA和蛋白质变性，将质粒DNA释放到上清中。 尽管碱性溶剂使碱基配对完全破坏，闭环的质粒DNA双链仍不会彼此分离，这因为它们在拓扑学上是相互缠绕的。只要OH-处理的强度和时间不要太过，当pH值恢复到中性时，DNA双链就会再次形成。在裂解过程中，细菌蛋白质、破裂的细胞壁和变性的染色体DNA会相互缠绕成大型复合物，后者被十二烷基硫酸盐包盖。当用
K+取代Na+时，复合物会从溶液中有效地沉淀下来，离心除去变性剂后，就可以从上清中回收复性的质粒DNA。 在SDS存在的条件下，碱水解是一项非常灵活的技术，它对E. coli的所有菌株都适用，并且其细菌培养物的体积可以从1-500mL 以上。 煮沸法 煮沸法是将细菌悬浮于含有Triton X-100和能消化细胞壁的溶菌酶的缓冲液中，然后加热到100℃使其裂解。加热除了破坏细菌外壁，还有助于解开DNA链的碱基配对，并使蛋白质和染色体DNA 变性。但是。闭环质粒DNA链彼此不会分离，这是因为它们的磷酸二酯骨架具有互相缠绕的拓扑结构。当温度下降后，闭环DNA的碱基又各就各位，形成超螺旋分子，离心除去变性的染色体DNA和蛋白质，就可从上清中回收质粒DNA。煮沸裂解法对于小于15kb的小质粒很有效，可用于提取少至lmL（小量制备），多至250mL（大量制备）菌液的质粒，并且对大多数的大肠杆菌菌株都适用。但对于那些经变性剂、溶菌酶及加热处理后能释放大量碳水化合物的大肠杆菌菌株，则不推荐使用该法。这是因为碳水化合物很难除去，会抑制限制酶和聚合酶活性。若碳水化合物的量很大，在CsCl-溴化乙锭梯度离心中会使超螺旋质粒DNA带变得模糊不清。大肠杆菌菌株HBl01及其衍生菌株（其中包括TGl）能产生大量的碳水化合物，不适于用煮沸法裂解。 质粒小提试剂盒
promegaDNA组织提取试剂盒
PromegaDNA提取试剂盒的使用方法 一、使用前的准备工作 Proteinase k solution:用无核酸酶的水把蛋白酶K稀释成20mg/ml，按照自己的每次平均使用量分装，储存在-20℃，融化时要在冰上融化，反复冻融会降低Proteinase K的活性 消化液配制：在tube中混合下面各种反应物，使用前放在冰上。 Wizard SV Wash solution（洗脱液）的配制：按照瓶子标签上要求的量，添加95%的乙醇到Wizard sv solution 中，做上标记，室温保存。 PromegaDNA提取试剂盒的使用方法步骤（离心机法） 0、将Nuclease-Free Water 放在65℃的水浴锅中 1、剪取动物组织20mg，分成相同的2份，放在1.5ml的离心管中， 样品中决不能含有软骨组织，否则会阻塞柱子
2、每份样品中添加275ul先前准备的消化液，确保消化液能够完 全覆盖样品，如果不能覆盖，将样品再剪得小点 3、把样品放到55℃的水浴锅或加热块中孵育16-18小时（过夜）， 蛋白酶K消化过夜后2000g离心，取上清液到1.5ml的离心管 中。 4、向样品中添加250ul的Wizard SV Lysis Buffer,漩涡混匀 5、处理后的产物尽快进行下面的操作，如果不能进行下面的操作， 应该把它放在-70℃下保存，使用时应该冻融或者放在55℃温 和解冻 6、将收集管做上标记，将柱子放在收集管上，把整个1.5ml离心 管内的溶解产物转移到柱子中。13000g离心3分钟，目的是让 基因组吸附在柱子中，如果仍有残留液体，可以重新13000g 离心一分钟 7、倒掉收集管中的液体，把柱子重新放回收集管上 8、检查一下乙醇是否已经添加到Wizard SV Wash Solution中 9、每个样品中添加650ul的Wizard SV Wash Solution（真空抽 滤要加800ul），13000离心1分钟 10、去除溶液，将柱子重新放置在集合管中 11、重复9-10步3次，（一共需要洗4次） 12、洗剂结束后，清空收集管中的水13000g离心2分钟 13、去掉收集管，取相同数量的1.5ml的离心管做上标记，将柱子 将在 1.5ml的离心管上，添加250ul65℃的Nuclease-Free