大小鼠各种采血方法与最大采血量
大小鼠各种采血方法与最大采血量
1剪尾采血小鼠每次采血量0.1ml ，大鼠每次采血量0.3-0.5ml
左手拇指和食指从背部抓住鼠颈部皮肤，将鼠头朝下，鼠保定后将其尾巴置
于50C热水中浸泡数分钟，使尾部血管充盈。擦干尾部，再用剪刀或刀片剪去尾尖1-2mm用试管接流出的血液，同时自尾根部向尾尖按摩。取血后用棉球压迫止血并用6%液体火棉胶涂在伤口处止血。
2摘除眼球采血小鼠采血量0.6-1ml
左手抓住小鼠颈部皮肤，轻压在实验台上，取侧卧位，左手食指尽量将小鼠眼周皮肤往颈后压，使眼球突出。用眼科弯镊迅速夹去眼球，将鼠倒立，用器皿接住流出的血液。采血完毕立即用纱布压迫止血。大鼠少用。
3心脏采血小鼠采血量0.5-0.6ml ，大鼠采血量1-1.5ml
鼠仰卧位固定，剪去胸前区被毛，皮肤消毒后，用左手食指在左侧第3-4 肋间触摸到心搏处，右手持带有4-5 号针头的注射器，选择心搏最强处穿刺，当刺中心脏时，血液会自动进入注射器。
4断头采血小鼠采血0.8-1.2ml ，大鼠采血量5-10ml
左手拇指和食指从背部抓住鼠颈部皮肤，将鼠头朝下，右手用剪刀剪断鼠
颈部约1/2-4/5 ，让血液流入试管。
5眼眶静脉丛采血小鼠采血量为0.2-0.3ml ，大鼠采血量为0.4-0.6ml 取内径为1.0-1.5mm的玻璃毛细管，临用前折断成1〜1.5cm长的毛细管段，
浸入1％肝素溶液中，干燥后用。取血时左手抓住鼠两耳之间的颈背部皮肤以固定头部，轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难使眼眶静脉丛充血，右手持毛细管由内眦部插入结膜，再轻轻向眼底部方向推进，轻轻旋转毛细管以划破静脉丛，让血液顺毛细管流出，接收入事先准备的容器中。采血后纱布轻压眼部止血。小鼠、大鼠、豚鼠及家兔均可采取此法取血。刺入深度小鼠为2-3mm，
可采血0.2-0.3ml ;大鼠为4-5mm 可采血0.4-0.6ml 。
大小鼠各种采血方法与最大采血量
大小鼠各种采血方法与最大采血量 1剪尾采血小鼠每次采血量0.1ml ，大鼠每次采血量0.3-0.5ml 左手拇指和食指从背部抓住鼠颈部皮肤，将鼠头朝下，鼠保定后将其尾巴置 于50C热水中浸泡数分钟，使尾部血管充盈。擦干尾部，再用剪刀或刀片剪去尾尖1-2mm用试管接流出的血液，同时自尾根部向尾尖按摩。取血后用棉球压迫止血并用6%液体火棉胶涂在伤口处止血。 2摘除眼球采血小鼠采血量0.6-1ml 左手抓住小鼠颈部皮肤，轻压在实验台上，取侧卧位，左手食指尽量将小鼠眼周皮肤往颈后压，使眼球突出。用眼科弯镊迅速夹去眼球，将鼠倒立，用器皿接住流出的血液。采血完毕立即用纱布压迫止血。大鼠少用。 3心脏采血小鼠采血量0.5-0.6ml ，大鼠采血量1-1.5ml 鼠仰卧位固定，剪去胸前区被毛，皮肤消毒后，用左手食指在左侧第3-4 肋间触摸到心搏处，右手持带有4-5 号针头的注射器，选择心搏最强处穿刺，当刺中心脏时，血液会自动进入注射器。 4断头采血小鼠采血0.8-1.2ml ，大鼠采血量5-10ml 左手拇指和食指从背部抓住鼠颈部皮肤，将鼠头朝下，右手用剪刀剪断鼠 颈部约1/2-4/5 ，让血液流入试管。 5眼眶静脉丛采血小鼠采血量为0.2-0.3ml ，大鼠采血量为0.4-0.6ml 取内径为1.0-1.5mm的玻璃毛细管，临用前折断成1〜1.5cm长的毛细管段， 浸入1％肝素溶液中，干燥后用。取血时左手抓住鼠两耳之间的颈背部皮肤以固定头部，轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难使眼眶静脉丛充血，右手持毛细管由内眦部插入结膜，再轻轻向眼底部方向推进，轻轻旋转毛细管以划破静脉丛，让血液顺毛细管流出，接收入事先准备的容器中。采血后纱布轻压眼部止血。小鼠、大鼠、豚鼠及家兔均可采取此法取血。刺入深度小鼠为2-3mm，
大鼠取血方法
大鼠取血方法 1. 割（剪）尾采血：当所需血量很少时采用本法。 每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取 血0.1ml ,大鼠0.3?0.5ml。 1.4見尖采血才法 将大杖囲進好?阳50乜左右SL水根池城部妁2 mm1??- 充IftG,ffl?消Sr擦干??（Wifi?≠术旳的去尾尖3 ■ 10 mm. 从用根那向尼尖檢忙血Fl朋尖M?.此法町采L5 -2 BlL血液? 2. 鼠尾刺血法：大鼠用血量不多时（仅做白细胞计数或血红蛋白检查），可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉, 拔出针头时即有血滴出，一次可采集10?50mm3。如果长期反复取血，应先靠近鼠尾 末端 穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。 3. 眼眶静脉丛采血：体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml ;体重200-300g大鼠每次可采 血0.5-1.0ml ,可适用于某些生物化学项目的检验。 将Λ∣N∣?i?庄实验台边SSr左手抓囂大K?M?肤Bl定头 部,井轻轻向下压迫!RliJ*?Λ1□用導先稚备好的W 号舍JM甘头顶蝎（怦尖斛閒朝内人垂i?插人内就并向眼底方向转?IUffl切开押体丛「血敕便会连缨不Ilft地溝人采血UQ用此法大约可?3*5 mLΛι?β取血宪毕?立刻用压迫Ih 环境材料 氏时闫揉屮???BM 宽?≠]?J÷ ft J步驟同时操作] 0.9rπm X 10Onflm J背牛人习櫃便用T ??骨—断.3?nmm,弁去屮阀段= EP 曲虻人0.1% IH-比钠< >150U∕myJ OJ rrL.均匀涧湿? 50V?下I輻 适帀ImL伞Iil的抗甌?μi?V< 取血则感须熒InJ衿住骨的质昂?h??≠ll. 逓当劣备. ：D ??T.?: '1 ΓB???'"; * ■ ■ ■ ■ ■ ■ ■ ■ ■ ■ ■ ■ ■ I ■ cm ■ ■ ■ ■ ■ ■ ■ ■■ ■琴 LC≡E^J iAjaw f??i 1 Ml ■. ■■ IV ■■■. >■ -κ?■
采血方法
查看文章 实验动物的取血方法 2007-11-10 11:01 采血方法 （1）小鼠和大鼠 ①尾尖取血 将动物装在固定筒内，露出尾巴。将尾共剪掉1～2mm(小鼠)或5cm(大鼠)，然后自尾根向尖端按摩，血自尾尖流出。亦可先将鼠尾泡于500C热水中，揩干后剪去尾尖，取血后用棉球压迫止血。此法可反复多次取血，小每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。 ②眶动脉和眶静脉取血 将动物头部按住并压迫眼球使突出充血后，以止血钳迅速钳取眼球后。眼眶内很快流出血液，将血滴入玻璃器皿内，达到所需采用量后用棉球压迫眼眶止血。此法所取血量较多，小鼠每次可采血0.2～0.3ml，大鼠每次可采血0.5～lml，动物可存活。间隔数日后可自另一侧眼眶取血。 ③眼眶后静脉丛取血 用一长约7～lOcm的玻璃毛细管(内径约1mm)，另端渐扩大呈喇叭形，将其尖端折断。折断端锋利，预先将玻璃管浸入l％肝素溶液，取出干燥。取血时左手抓住鼠两耳间头部皮肤，使头固定，并轻轻向下压迫颈部两侧，使眼球充分外突，眼眶后静脉丛充血。右手持毛细管，将其尖端插入眼睑与眼球之间并向眼底方向移动，稍加吸引，血液即流入玻璃管中。取血完毕拔出毛细管，左手放松出血即停止。毛细管就叫“玻璃毛细管”，是硬质中性玻璃，内径：0.9--1.1mm, 壁厚0.1--0.15mm 管长120mm。 ④股静脉(或股动脉)取血 麻醉动物背位固定，切开左或右腹股沟的皮肤，作股静脉或股动脉分离手术。注射针穿刺股动脉或股静脉抽血，也可在颈静脉或颈动脉处穿刺取血。此法小鼠可采血0.2～0.8ml，大鼠约0.4～0.6ml。 ⑤断头取血 用剪刀剪掉鼠头，立即将鼠头向下，提起动物，将血滴入容器内。小鼠可采用0．8～1.2ml，大鼠5～lOml。 （2）豚鼠
动物的采血方法
动物的采血方法 动物的采血方法 一、小鼠、大鼠的采血 1.眼眶后静脉丛采血 左手拇指及食指抓住鼠两耳之间的皮肤使鼠固定，并轻轻压迫颈部两侧，阻碍静脉回流，使眼球充分外凸。右手持玻璃采血管，将其尖端插入内眼角与眼球之间，轻轻向眼底方向刺入，小鼠刺入2~3mm，大鼠刺入4~5mm，当感觉有阻力时即停止刺入，放置取血管以切开静脉丛，血流即流入取血管。采血结束后，拔出取血管，放松左手，出血即停止。本方法在短期内可重复采血。小鼠一次可采血0.2~0.3ml，大鼠一次可采血0.5~1.01ml。为防止血液在取血管中凝固，可将取血管进入1%肝素溶液，干燥后使用。 2.摘眼球采血 此方法用于鼠类大量采血。采血时，用左手固定动物，压迫眼球，尽量使眼球凸出，右手用弯头镊子摘除眼球，眼眶内很快流出血液。 二、兔的采血 1.耳中央动脉、耳沿静脉采血 左手固定兔，并用酒精棉球消毒采血部位，右手持注射器，在兔耳血管的末端，沿着与血管平行的向心方向刺入血管，即可见血液流入针管，注意固定好针头。采血结束后，拔出注射器，用棉球压迫止血2~3min。 2.颈静脉采血 将兔麻醉后，仰卧在固定台上固定，剪去一侧颈部被毛，用碘酒、酒精棉球消毒皮肤，手术刀轻轻划破皮肤，钝性分离静脉，颈静脉暴露后，用注射器针头沿血管平行的远心方向刺入，采血结束后，拔出注射器，缝合切口。 三、狗的采血 1.前、后肢皮下静脉血 此方法一次可取较多的血，操作可参照相应的静脉注射。如需采
少量血。则可用5.5号针头直接刺入静脉。如需采一定量的血，最好用静脉滴注针头与注射器连接，以防狗挣扎时针头刺破血管。 2.股动脉采血 将狗仰卧后固定，伸展后肢向外拉直，暴露腹股沟，在腹股沟三角区动脉搏动的部位剪去被毛，用碘酒、酒精消毒。左手中指、食指探摸股动脉搏动部位并固定好血管，右手区静脉滴注针，针头由动脉搏动处慢慢刺入，当血液流入针头后的朔料管时，固定好针头，连接好注射器可抽到大量血液。 3.心脏采血 将狗仰卧固定，前肢向背侧方向固定，暴露胸部，剪去左侧第3~5肋间的被毛，用碘酒、酒精消毒皮肤。左手触摸心脏部位，选择心跳最明显处穿刺。一般在胸骨左缘外1cm第四肋间处，用连有6.5号针头的注射器，从心跳最明显处垂直刺入心脏。当针头正确刺入心脏时，血液即进入注射器，便可抽取大量血液。如采不到血，可调整刺入方向和深度，调整方向时，要将针头上提后再刺入，不能让针头在胸腔内乱晃。
小鼠取血方法
小鼠取血方法-CAL-FENGHAI.-(YICAI)-Company One1
1.割(剪)尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。再将尾擦干，用锐器(刀或剪刀)割去尾尖，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉，收集血液的方法同上。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血，大鼠～。 2.鼠尾刺血法大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查)，可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集10～50mm3。如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。 3.眼眶静脉丛采血采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套)，应防止动物窒息。当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧，使眶后静脉丛充血。右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈(3～4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内径，使采血器与鼠面成45℃的夹角，由眼内角刺入，针头斜面先向眼球，刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。刺入浓度，小鼠约2～3mm，大鼠约4～5mm。当感到有阻力时即停止推进，同时，将针退出约，边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管中，当得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，同时，将采血器拔出，以防止术后穿刺孔出血。若技术熟练，用本法短期内可重复采血均无多大困难。左右两眼轮换更好。体重20-25g的小鼠每次可采血；体重200-300g大鼠每次可采血，可适用于某些生物化学项目的检验。 4.断头取血采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤，并作动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2-4/5的颈部前剪断，让血自由滴入盛器。小鼠可采用约～;大鼠约5-10ml。 5.心脏采血鼠类的心脏较小，且心率较快，心脏采血比较困难，故少用。活体采血方法与豚鼠相同。若做开胸一次死亡采血，先将动物作深麻醉，打开胸腔，暴露心脏，用针头刺入右心室，吸取血液。小鼠约；大鼠约。 6.颈动静脉采血先将动物仰位固定，切开颈部皮肤，分离皮下结缔组织，使颈静脉充分暴露，可用注射器吸出血液。在气管两侧分离出颈动脉，离心端结扎，向心端剪口将血滴入试管内。 7.腹主动脉采血最好先将动物麻醉，仰卧固定在手术架上，从腹正中线皮肤切开腹腔，使腹主动脉清楚暴露。用注射器吸出血液，防止溶血。或用无齿镊子剥离结缔组织，夹住动脉近心端，用尖头手术剪刀，剪断动脉，使血液喷入盛器。 8.股动(静)脉采血先由助手握住动物，采血者左手拉直动物下肢，使静脉充盈。或者以搏动为指标，右手用注射器刺入血管。体重15-20g 小鼠采血约，大鼠约。 2
实验动物给药和采血方法
实验动物给药和采血方法 1.割(剪）尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后 消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。再将尾 擦干，用锐器（刀或剪刀）割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器 或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。也可在尾 部作一横切口，割破尾动脉或静脉，收集血液的方法同上。每鼠一般 可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。 2.鼠尾刺血法 大鼠用血量不多时（仅做白细胞计数或血红蛋白检查），可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。用7号或8 号注射针头，刺入鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集1 0～50mm3。如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐 向近心端穿刺。 3.眼眶静脉丛采血采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大 鼠的颈部（大鼠采血需带上纱手套），应防止动物窒息。当取血时左 手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧，使眶后静脉丛充血。右手持 续接7号针头的1ml注射器或长颈（3～4cm）硬质玻璃滴管（毛细管内 径0.5-1.0mm），使采血器与鼠面成45℃的夹角，由眼内角刺入，针头 斜面先向眼球，刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。刺入浓度，小 鼠约2～3mm，大鼠约4～5mm。当感到有阻力时即停止推进，同时，将
针退出约0.1-0.5mm，边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管中，当得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，同时，将采血器拔出，以防止术后穿刺孔出血。 若技术熟练，用本法短期内可重复采血均无多大困难。左右两眼轮换 更好。体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml；体重200-300g大鼠每 次可采血0.5-1.0ml，可适用于某些生物化学项目的检验。 4.断头取血 采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大（小）鼠的颈部皮肤， 并作动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2-4/5的颈部前 剪断，让血自由滴入盛器。小鼠可采用约0.8～1.2ml;大鼠约5-10ml。 5.心脏采血 鼠类的心脏较小，且心率较快，心脏采血比较困难，故少用。活体采 血方法与豚鼠相同。若做开胸一次死亡采血，先将动物作深麻醉，打 开胸腔，暴露心脏，用针头刺入右心室，吸取血液。小鼠约0.5-0.6ml；大鼠约0.8-1.2ml。 6.颈动静脉采血 先将动物仰位固定，切开颈部皮肤，分离皮下结缔组织，使颈静脉充 分暴露，可用注射器吸出血液。在气管两侧分离出颈动脉，离心端结扎，向心端剪口将血滴入试管内。
关于动物取血问题
关于动物取血问题 1、关于小鼠血液量的问题： 小鼠循环血量占体重的6%，或50-70ml/kg，采血占全血量的10%不会对机体造成严重的不良影响。3-4周后可以重新采集一次。特别注意的是：老年小鼠血量降低。疾病会加重不良反应，所以必须考虑这些影响因素。采血后应补充响应体积的液体，如果需要很短时间反复采血，比如每天一次，每次的采血量不应超过全血的1%。 2、关于取血方法的问题： （1）尾尖取血：当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用二甲苯等化学药物涂擦，使局新血管扩张。将鼠尾擦干，剪去尾尖，血自尾尖流出，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取。如需间隔一定时间，多次采取鼠尾尖部血液，每次采血时，将鼠尾剪去很小一段，取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2～0.3ml血，切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血，进行血常规检查。 （2）眼眶后静脉丛取血：当需中等量的血液，而又需避免动物死亡时采用此法。用左手固定鼠，尽量捏紧头部皮肤，使头固定，并轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难，使眼球充分外突（示眼眶后静脉丛充血），右手持毛细玻璃管，沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入。刺入深度小鼠2～3mm，大鼠4～5mm。当感到有阻力时再稍后退，保持水平位，稍加吸引，由于血压的关系，血液即流人玻璃管中。得到所需的血量后，拨出毛细管。若手法恰当，小鼠约可采血0.2～0.3ml，大鼠约可采血0.4～0.6ml。 （3）断头取血：当需要较大量的血液，而又不需继续保存动物生命时采用此法。左手捉持动物，使其头略向下倾，右手持剪刀猛力剪掉鼠头，让血液滴入盛器。小鼠可采血0.8～1.0ml，大鼠可采用5～
小鼠取血方法
1。割(剪)尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。再将尾擦干，用锐器（刀或剪刀）割去尾尖0。3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束,伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口,割破尾动脉或静脉，收集血液的方法同上.每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0。1ml，大鼠0。3～0.5ml。 2.鼠尾刺血法大鼠用血量不多时（仅做白细胞计数或血红蛋白检查)，可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血.用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉,拔出针头时即有血滴出，一次可采集10～50mm3。如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。 3。眼眶静脉丛采血采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套),应防止动物窒息。当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧，使眶后静脉丛充血.右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈（3～4cm)硬质玻璃滴管（毛细管内径0.5-1。0mm),使采血器与鼠面成45℃的夹角，由眼内角刺入,针头斜面先向眼球，刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。刺入浓度,小鼠约2~3mm,大鼠约4～5mm。当感到有阻力时即停止推进,同时，将针退出约0。1—0.5mm，边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管中，当得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，同时，将采血器拔出，以防止术后穿刺孔出血。若技术熟练，用本法短期内可重复采血均无多大困难。左右两眼轮换更好。体重20—25g的小鼠每次可采血0。2—0。3ml；体重200-300g大鼠每次可采血0.5—1。0ml,可适用于某些生物化学项目的检验。 4。断头取血采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大（小)鼠的颈部皮肤，并作动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2-4/5的颈部前剪断，让血自由滴入盛器。小鼠可采用约0。8～1。2ml;大鼠约5-10ml。 5.心脏采血鼠类的心脏较小，且心率较快，心脏采血比较困难，故少用.活体采血方法与豚鼠相同。若做开胸一次死亡采血，先将动物作深麻醉，打开胸腔,暴露心脏，用针头刺入右心室，吸取血液。小鼠约0.5—0.6ml；大鼠约0。8—1.2ml。 6。颈动静脉采血先将动物仰位固定，切开颈部皮肤，分离皮下结缔组织，使颈静脉充分暴露，可用注射器吸出血液.在气管两侧分离出颈动脉，离心端结扎，向心端剪口将血滴入试管内. 7.腹主动脉采血最好先将动物麻醉，仰卧固定在手术架上,从腹正中线皮肤切开腹腔，使腹主动脉清楚暴露。用注射器吸出血液，防止溶血。或用无齿镊子剥离结缔组织，夹住动脉近心端,用尖头手术剪刀,剪断动脉,使血液喷入盛器. 8.股动（静）脉采血先由助手握住动物，采血者左手拉直动物下肢，使静脉充盈.或者以搏动为指标，右手用注射器刺入血管.体重15-20g 小鼠采血约0.2-0。8ml，大鼠约0。4—0。6ml。
小鼠取血方法
1.割(剪）尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。再将尾擦干，用锐器（刀或剪刀)割去尾尖0。3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口,割破尾动脉或静脉，收集血液的方法同上。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0。1ml,大鼠0。3～0.5ml.2。鼠尾刺血法大鼠用血量不多时（仅做白细胞计数或血红蛋白检查)，可采用本法.先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血.用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集10～50mm3。如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。3.眼眶静脉丛采血采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套）,应防止动物窒息。当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧,使眶后静脉丛充血。右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈(3～4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内径0.5—1。0mm），使采血器与鼠面成45℃的夹角，由眼内角刺入，针头斜面先向眼球，刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。刺入浓度,小鼠约2～3mm，大鼠约4~5mm。当感到有阻力时即停止推进，同时,将针退出约0。1—0.5mm，边退边抽.若穿刺适当血液能自然流入毛细管中，当得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力,同时，将采血器拔出,以防止术后穿刺孔出血。若技术熟练，用本法短期内可重复采血均无多大困难。左右两眼轮换更好。体重20-25g的小鼠每次可采血0。2—0。3ml;体重200—300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml，可适用于某些生物化学项目的检验。4.断头取血采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤，并作动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2-4/5的颈部前剪断，让血自由滴入盛器。小鼠可采用约0.8~1.2ml；大鼠约5-10ml。5。心脏采血鼠类的心脏较小，且心率较快,心脏采血比较困难,故少用。活体采血方法与豚鼠相同。若做开胸一次死亡采血，先将动物作深麻醉，打开胸腔,暴露心脏,用针头刺入右心室,吸取血液。小鼠约0。5-0。6ml；大鼠约0。8—1。2ml。6.颈动静脉采血先将动物仰位固定，切开颈部皮肤,分离皮下结缔组织，使颈静脉充分暴露,可用注射器吸出血液。在气管两侧分离出颈动脉，离心端结扎，向心端剪口将血滴入试管内.7。腹主动脉采血最好先将动物麻醉,仰卧固定在手术架上，从腹正中线皮肤切开腹腔,使腹主动脉清楚暴露。用注射器吸出血液，防止溶血。或用无齿镊子剥离结缔组织，夹住动脉近心端，用尖头手术剪刀，剪断动脉,使血液喷入盛器。8.股动(静)脉采血先由助手握住动物,采血者左手拉直动物下肢，使静脉充盈.或者以搏动为指标,右手用注射器刺入血管.体重15—20g 小鼠采血约0.2-0。8ml，大鼠约0.4-0.6ml。
大鼠取血方法
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大鼠取血方法 1.割(剪)尾采血：当所需血量很少时采用本法。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。 2.鼠尾刺血法：大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查)，可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集10～50mm3。如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。 3.眼眶静脉丛采血：体重20-25g的小鼠每次可采血 0.2-0.3ml；体重 200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml，可适用于某些生物化学项目的检验。 4.断头取血：采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤，并作动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2-4/5的颈部前剪断，让血自由滴入盛器。小鼠可采用约0.8～1.2ml;大鼠约5-10ml。 5.心脏采血：鼠类的心脏较小，且心率较快，心脏采血比较困难，故少用。若做开胸一次死亡采血，先将动物作深麻醉，打开胸腔，暴露心脏，用针头刺入右心室，吸取血液。小鼠约0.5-0.6ml；大鼠约0.8-1.2ml。 1.浅麻醉大鼠 2.四肢展开固定在平板上 3.按常规碘酒、酒精消毒后 4.用食指感觉心博最动处 5.大约在胸骨下缘1/3处、稍偏左0.2-0.5左右的地方垂直进针（1/4号） 6.针头抵心脏有明显的搏动感，再稍进针，有空虚感，血液跳跃而上针腔 7.从血液的颜色很容易判断在心室还是心房，一般都在心室 8.多次同一大鼠的心脏采血，切记初次进针的位置及深度，不要随意更换固定姿势！
常用实验动物的采血方法
常用实验动物的采血方法 一小鼠和大鼠的采血方法 1、剪尾采血:需血量较少时常用此法。先将动物固定，将鼠尾浸在50℃左右温水中浸泡几分钟或用酒精棉球或二甲苯涂擦鼠尾，使尾部血管充盈，剪去尾尖1～2mm(小鼠)或3～5mm(大鼠)，便血液顺血管壁自由流入试管或用血红蛋白吸管吸取。采血结束时，伤口消毒并用棉球压迫止血。此法每只鼠一般可采血10次以上，小鼠每次可取血0.1mL左右，大鼠可取血0.3～0.5ml。 2、眶后静脉丛采血:操作者一手固定小鼠或大鼠，拇指和食指尽量将鼠头部皮肤捏 紧，或轻轻压迫颈部两侧，使鼠眼球突出，眶后静脉丛充血，另一只手持毛细采血管，以45°从内眼角刺入，并向下旋转，感觉刺入静脉丛后，再向外边退边吸，当得到所需血量后，放松加于颈部的压力，并拔出采血器，以防穿刺孔出血。假设技术熟练，此方法在短斯内可重复采血，小鼠一次可采血0.2～0.3ml，大鼠可采血约0.5ml。如只进行一次取血，可采用摘眼球法，右手取一眼科弯镊，在鼠右或左侧眼球根部将眼球摘去，并将鼠倒置；头向下，抽取血液。 3、鼠装进固定器，漏出尾巴，同1，使尾部血管充盈，作好尾部消毒，用1 ml针筒接好4号针头，穿刺尾静脉，抽取血液。 4、腋下采血：将麻醉后的小鼠仰卧固定，剪开腋下皮肤，钝性别离腋下的胸肌等组织，暴露腋下血管，剪断腋下静脉，用注射器或吸管吸血。 5、断头采血：用剪刀迅速剪掉动物头部，立即将动物头朝下，提起动物，血液可流入试管中。 6、心脏采血：切开动物胸膛，直接从见到的心脏内采血，也可剪破心脏直接用注射器或吸管吸血。
7、股动脉采血:大量取血时常用此法。需手术别离股动脉，用注射器套上针头刺入血管取血或剪断股动脉用吸管吸取血样，小鼠的一次采血量可达0.5ml，大鼠可达2.0ml，操作时防止喷血。 二豚鼠、家兔的采血方法 1、家兔耳缘静脉采血 穿刺采血法：是家兔最常用的采血方法。具体方法同耳缘静脉注射给药。此法一次可采血5～lOml，可屡次重复使用。针头不可连接注射器，直接让血液滴在有抗凝剂的试管内。 切割采血法：当兔耳部血管被充分扩张后，可用刀片割破耳缘静脉，或用注射针刺破耳缘静脉，让血液自然流出。采血穿刺和注射穿刺方向不同。采血穿刺逆血流方向行针，采血量越大，越要靠近根部行针。 2、兔耳中央动脉采血：经兔耳中央的一条较粗、颜色鲜红的动脉采血，可采到约15 ml/次血。操作方法根本与静脉采血同。由动脉末端，朝向心方向进针，取血完毕后注意止血。 3、豚鼠耳缘切割采血法:方法同兔相同。 4、心脏采血法:对豚鼠、兔、猫、狗都适用。 采血前，将动物麻醉并仰卧固定置实验台上。心前区皮肤脱毛，常规消毒。于左侧第3、4肋间心尖博动最强处将针头垂直刺入心脏，由于心脏的搏动，血液可自动迸入注射器。如无血液流出，拔出针头后重新穿刺，不能左右来回斜穿，以免造成气胸而导致动物很快死亡。经6～7天后可重复穿刺采血。 5、体表静脉采血 〔1〕兔后肢胫部皮下静脉采血 将兔仰卧固定，拔去胫部被毛，在胫部上端股部扎以橡皮管，可在胫部外侧皮下，见到皮下静脉。用左手拇指、食指固定好血管，右手持，与皮下静脉平行进针，抽血有回血即可采血。采血完毕后用棉球压迫止血，因为此处不易止血，止血时间应稍长。
动物血液采集
动物血液采集 采血方法选择 选择什么采血部位与使用何种采血方法，需视动物种类、检测目的、实验方法及所需血量而定。 一、取少量血 •尾静脉：大鼠、小鼠 •耳静脉：兔、狗、猫、猪、山羊、绵羊 •眼眶静脉丛：兔、大鼠、小鼠 •舌下静脉：兔 •腹壁静脉：青蛙、蟾蜍 •冠/脚蹼皮下静脉：鸡、鸭、鹅 二、取中量血 •后肢外侧皮下小隐静脉：狗、猴、猫 •前肢内侧皮下头静脉：狗、猴、猫 •耳中央动脉：兔 •颈静脉：狗、猫、兔 •心脏：豚鼠、大鼠、小鼠 •断头：大鼠、小鼠 •翼下静脉：鸡、鸭、鸽、鹅
•颈动脉：鸡、鸭、鸽、鹅 三、取大量血 •股动脉、颈动脉：狗、猴、猫、兔 •心脏：狗、猴、猫、兔 •颈静脉：马、牛、山羊、绵羊 •摘眼球：大鼠、小鼠 割尾采血 固定动物并露出鼠尾，剪去尾部毛后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部静脉充分充血后擦干，用锐器（刀或剪刀）割
去尾尖0.3～0.5cm，或在尾部作一横切口，让血液自由滴入容器或用血红蛋白吸管吸取，采血后消毒伤口并压迫止血。 小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。 摘眼球采血 左手抓住鼠，拇指和食指尽量将鼠头部皮肤捏紧，使鼠眼球突出。右手取一无钩弯小镊，在鼠右侧眼球根部将眼球摘去，并将鼠倒置，头向下，此法由于采血过程中动物未死，心脏不断在跳动，因此取血量比断头法多，一般约可取出45%鼠体重的血液量。
眼眶静脉丛采血 左手拇指和食指从背部较紧地握住大（小）鼠的颈部（注意防止动物窒息，大鼠采血需带上纱手套），取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧，使眶后静脉丛充血。将消毒的吸管用抗凝剂湿润其内壁，从内侧眼角将吸管转向前，并轻压刺入，小鼠刺入约2～3mm，大鼠约4～5mm。当感到有阻力时即停止推进，同时将针退出约0.1～0.5mm，边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管中，得到所需的血量即除去加于颈部的压力，同时将采血器拔出，以防止术后穿刺孔出血。