Photoluminescence of ZnS Mn quantum dot by hydrothermal method(水热法制备ZnSMn量子点及其光学性能)

Photoluminescence of ZnS Mn quantum dot by hydrothermal method(水热法制备ZnSMn量子点及其光学性能)
Photoluminescence of ZnS Mn quantum dot by hydrothermal method(水热法制备ZnSMn量子点及其光学性能)

Photoluminescence of ZnS: Mn quantum dot by hydrothermal method Yun Hu, Zhaorong Wei, Bo Wu, Bing Shen, Qun Dai, and Pengxian Feng

Citation: AIP Advances8, 015014 (2018);

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Published by the American Institute of Physics

Photoluminescence of ZnS:Mn quantum

dot by hydrothermal method

Yun Hu,a Zhaorong Wei,Bo Wu,Bing Shen,Qun Dai,and Pengxian Feng

College of Optoelectronic Technology,Chengdu University of Information Technology,

Chengdu,P.R.China,610225

(Received27October2017;accepted4January2018;published online12January2018)

ZnS:Mn quantum dots(QDs)with the average grain size from4.2to7.2nm were

synthesized by a hydrothermal method.All samples were cubic zinc blende structure

(β-ZnS)measured using X-ray diffraction(XRD).And the main diffraction peaks

of ZnS:Mn shifted slightly towards higher angle in comparison with the intrin-

sic ZnS because of the substitution of Mn2+for Zn2+.Due to the small grain size

(4-7nm)effect,the poor dispersion and serious reunion phenomenon for the sam-

ples were observed from transmission electron microscopy(TEM).ZnS:Mn QDs

had four peaks centered at466,495,522,and554nm,respectively,in the pho-

toluminescence(PL)spectra,in which the band at554nm absent in the intrinsic

ZnS:Mn is attributed to the doping of Mn2+in the lattice sites.As the concen-

tration of Mn2+increasing from0%to0.6at%,the intensity of the PL emission

also increased.But the concentration reached0.9at%,quenching of PL emission

occurred.The peak in ZnS:Mn QDs observed at490cm-1was originated from the

stretching vibration of the Mn–O bonds in the Fourier transform infrared(FTIR)

spectra.And the small changes about this peak compared with the previous reports

at500cm-1can be attributed to the formation of quantum dots.This method we uti-

lized to synthesize ZnS:Mn QDs is very simple,low cost,and applicable for other

semiconductor QD materials.?2018Author(s).All article content,except where

otherwise noted,is licensed under a Creative Commons Attribution(CC BY)license

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I.INTRODUCTION

II–VI compound semiconductor has attracted a great deal of attention because of its potential candidates for electronic and optoelectronic applications.1–6Zinc sul?de as a direct wide band gap binary II–VI semiconductor,with two stable crystal structures,the hexagonal wurtzite(3.77eV) at high temperature and the cubic zinc blende(3.72eV)at low temperature,3has high absorption coef?cient,high refractive index,and high transmittance in the visible region.4Compared with bulk counterparts,ZnS nanostructure has a lot of unique nonlinear and electro-optic characteristics due to its quantum size effect.4–6Fang et al.4,5have made a very meticulous and profound research on ZnS nanostructure,including various preparation methods for different types of nano-ZnS,the in?uence of different synthesis conditions on its grain size,surface morphology,structure of three kinds(0D,1D,and2D)of ZnS,and its potential applications in?elds emitters,?eld effect tran-sistors,photodetectors,catalyzators,UV-light sensors,chemical sensors,biosensors and nanogen-erators.3

As a new type of functional nanoscale materials,ZnS QDs have also attracted much attention due to the quantum con?nement effect.6,7Because of its wide band gap,ZnS is suitable as a matrix material for various types of doping atoms very well.8Especially ZnS:Mn QDs not only has high luminous ef?ciency,but also has no toxicity.Therefore,ZnS:Mn QDs prepared by different techniques have been investigated.Kumar et al.9prepared ZnS:Mn QDs by chemical precipitation method using

a Corresponding author.huyun@https://www.360docs.net/doc/7513746250.html,

tetraethyl orthosilicate as a capping agent and concluded that silica capped ZnS:Mn QDs were suitable materials for speci?c kind of tunable optoelectronic devices.Chen et al.10found doping concentration of Mn2+,reaction temperature and time,pH value of mixture were key factors for controlling the dopant emission intensity in ZnS:Mn QDs by growth doping https://www.360docs.net/doc/7513746250.html,ing colloidal synthesis method,Subha et al.11obtained ef?cient PL ZnS:Mn QDs excited by two-photon absorption in the second near-infrared window.Qian et al.12observed a much stronger emission centered at590nm due to the4T1-6A1transition of Mn2+in the ZnS/CdS:Mn/ZnS QDs by the reverse micelle process, and this yellow emission intensity increased from9%to45%compared to CdS:Mn/ZnS core/shell QDs.As mentioned above,the luminescence properties of ZnS:Mn QDs synthesized by different methods have a good correlation with the synthetic conditions.13

So far,few work on the hydrothermal method for high quality ZnS:Mn QDs has been reported. In this paper,we prepared ZnS:Mn QDs by the hydrothermal method,investigated the effects of dopant concentrations on the structural and optical properties of QDs,and found a new luminescent center that has not been reported yet in the ZnS:Mn QDs.

II.EXPERIMENTAL

The ZnS:Mn nanoparticles was carried out by the hydrothermal method.The principle is the reaction of metal ions and sulfur ions in the hydrothermal solution.First,dehydrate zinc acetate, sodium sul?de,sixteen alkyl three methyl ammonium bromide,manganese sulfate according to a certain amount were dissolved in the mixed medium of deionized water and stirring for0.5h.Then pour the mixture into autoclave with?lling degree of75%.It was then heated to150?C and maintained the temperature for8h under thermostatic drying chamber.After repeatedly washed with deionized water and methanol6times and then dried under thermostatic drying chamber.At last,the system was cooled down to room temperature.In contrast,we performed4group experiments.The concentrations of manganese in the samples are shown in Table I.

The structure of the samples was measured by XRD(DX2700)with Cu Ka radiation (k=0.154nm)at35kV and25mA.Morphologies of the sample were examined by S-4800SEM operated at15kV.The sizes and microstructure of the QDs were observed by a G2F20S-TWIN transmission electron microscopy operated at200kV.The PL measurements were performed at room temperature under the325nm UV?uorescent light excitation using RF-5301(Shimadzu)?u-orescence spectrophotometer with a Xe lamp.The vibrational properties of the sample was detected by FTIR using IR Prestige-21(Shimadzu).

III.RESULTS AND DISCUSSION

Figure1shows the XRD patterns of all the samples.We found three apparent peaks of all samples corresponding to(111),(220),and(311)planes ofβ-ZnS,which well matched with the standard card (PDF#99-0097).In addition,the diffraction peak of manganese impurity was not detected.Obviously, the broadened peaks of the samples suggest that the size of samples is on the nanoscale.The average crystal size of the sample was calculated from the half maximum width of the XRD lines with2θvalues being of the three lattice planes(111),(220),and(311)by means of the Debye–Scherer formula,

D=kλ/βcosθ(1)

TABLE I.Average grain size of ZnS:Mn(0at%-0.9at%)QDs.

doping concentration of Mn2+average grain size 0at% 4.2nm

0.3at% 4.8nm

0.6at% 5.9nm

0.9at%7.2nm

FIG.1.X-ray diffraction patterns of the ZnS:Mn with different concentrations of Mn2+.

Where D represents crystalline size,k the geometric factor(~0.94),βthe full-width at half maximum at the double Bragg angleθ.Table I shows the calculated grain size of the undoped ZnS and Mn-doped ZnS QDs.From Table I,one can see the similar average grain size for the samples with the Mn2+ concentrations from0.0-0.6at%,but as the Mn2+concentrations increased at0.9at%,the average grain size increased from~4to~7nm.

The diffraction peaks of(111),(220),and(311)planes of ZnS:Mn(0.3%,0.6%,0.9%)showed a slight red shift compared with the undoped ZnS.β-ZnS belongs to ionic coordination polyhedron [ZnS4],in which the radius of Mn ion(0.067nm)is smaller than that of Zn ion(0.074nm).Once Mn ions replace Zn ions,crystal lattice constant will decrease,thus,the diffraction peak shifts towards a

high angle.

The morphology of the synthesized ZnS:Mn QDs was examined by SEM.In Fig.2,it reveals that all the particle size distribution is very uniform and the average particle size is about20nm.The particle sizes shown from SEM images are different from the results of XRD.In general,the primary particle size is not equal to the grain size that calculated by Debye–Scherer formula,large particle size observed from SEM should be the aggregate of many grains.

Fig.3shows the TEM images of ZnS:Mn QDs.From Fig.3a,we can see that the undoped ZnS QDs are spherical with an average diameter of about5nm.In Fig.3b,ZnS:Mn(0.3at%)QDs are almost unchanged in average diameter compared with undoped ZnS QDs.Fig.3c shows the distant image of ZnS:Mn(0.6at%)QDs,the diameter of which is around6nm.The ZnS:Mn(0.9at%) QDs have the same nano features with an average diameter of about7nm as shown in Fig.3d.All the TEM images indicate that the nanospheres have a uniform distribution of particle size,and the particle size is in good agreement with the XRD results.We also found that the samples were poor dispersion and serious reunion phenomenon occurred.While the smaller grain size is,the larger speci?c surface area is,and thus it is easier to agglomerate.All these show that all the grains are round in shape with a nearly uniform size distribution.This is also consistent with the polymers conglomerate by much more grains observed from SEM.

PL spectrum of ZnS QDs is intricate because it is sensitive to the synthesis conditions,crystal sizes and shapes.Broad and asymmetric emission spectra indicate that they may be superposition of more than one peak.The PL spectra for ZnS:Mn QDs are made up of four peaks,which were located at about466,495,522,and554nm respectively(Fig.4(a),Table II).The blue emission located at~466nm(2.66eV)is attributed to defect-related emission of the ZnS host.14The second band(blue emission)which centered at495nm(2.50eV)may be caused by the transition from the conduction band to the zinc vacancies V Zn level.15As shown in Fig.4(a),the peak position of this blue emission(495nm)does not change with the increase of the Mn2+concentration,which indicates that the energy level of zinc vacancy relative to the conduction band nearly keeps constant.

FIG.4.(a)PL emission spectra of ZnS with different Mn concentrations,and(b)dopant position of Mn ion for emission peak centered(I)at600nm,(II)at578nm,and(III)at554nm.

TABLE II.Average particle size of ZnS:Mn(0at%-0.9at%)nanoparticles sample.

The position of the emission spectra

Doping concentration of Mn2+I II III IV 0at%466nm495nm522nm-0.3at%465nm496nm521nm554nm 0.6at%465nm497nm522nm553nm 0.9at%466nm495nm522nm554nm

Generally,the reported PL spectra for Mn-doped ZnS are totally different by individual authors16–20 due to the different quantum particle sizes,surfaces or impurity defect energy levels by the differ-ent synthetic techniques.18,19The emission centered at522nm is not clear.20But Liu et al.21also observed this green emission in sphalerite ZnS and attributed it to some self-activated centers.Dif-ferent locations of Mn2+in the ZnS host lattice resulted in different luminescence properties.22–24 It is well-known that the yellow emission located at around586nm is assigned to the4T1-6A1 transition due to the doping of Mn2+into ZnS nanostructure.11The formation of the different lumi-nescent centers(557,578,600nm)implies the different doping mechanisms for Mn2+in the ZnS lattice.Bacherikov et al.25reported that the emission centered at600nm is because of Mn2+as the interstitial ions in ZnS.The emission located at578nm is due to Mn2+doping in the point defects or dislocations.The peak centered at557nm is ascribed to the substitution of Mn ions for zinc ions in the lattice sites ofβ ZnS.In this work,we observe the band at554nm,which is also attributed to Mn Zn.It is consistent with our previous XRD results that the diffraction peaks of ZnS:Mn generated a red shift because of the substitution doping.The dopant position diagram is shown in Fig.4(b).And evidently,the emission located at554nm is absent in the ZnS QDs,indicating that the Mn2+ions have been successfully incorporated into the ZnS host lattice.These emission ?rst increases and then decreases with the doping amount of the Mn2+.When the concentration of Mn2+is up to0.6at%,the emission intensity reach the maximum,and it quench when the doping concentration of Mn2+increased to0.9at%.This is because when the intensity of luminescence reached the maximum,further increasing the concentration of Mn2+led to accumulation of impuri-ties,and the energy transferred between the center of Mn2+,resulting in the decrease of the emission intensity.

Figure5shows FTIR spectra of ZnS:Mn(0-0.9%)QDs in the range of3,000–500cm-1.Bands positioned at1,617cm-1and1,403cm-1may be formed by the microstructure of the sample.The band at1,105cm-1demonstrate that the doped Mn2+impurity affected partial structure of ZnS.24 A very strong band at622cm-1is attributed to Zn–S stretching modes.9The band positioned at 490cm-1is due to the Mn–O stretch vibration.26The possible reason is that some of the Mn2+

combining with O2-to form MnO in the thermal solution.Band at490cm-1is slightly smaller than

FIG.5.FTIR spectra of ZnS with different Mn concentrations(a)0%,(b)0.3at%(c)0.6at%,(d)0.9at%.

The band located at490cm-1is also absent in the ZnS QDs.In summary,the FTIR results con?rm the Mn ions were successfully doped in the lattice of the ZnS host.

IV.CONCLUSIONS

ZnS:Mn QDs were deposited by a hydrothermal technique.The samples are of cubic zinc blend structure with the average crystalline size from4.2to7.2nm.The diffraction peaks of(111),(220), and(311)planes of ZnS:Mn(0.3%,0.6%,0.9%)shift slightly towards a high angle due to the radius of Mn2+smaller than that of Zn2+,resulting in the decrease of crystal lattice constant.All the samples are poor dispersion and reunion phenomenon were serious,because the grain size of the sample is smaller than7nm,leading to the agglomeration.The PL spectra for the ZnS:Mn nanoparticles consist of four peaks,which are centered at466,495,522and554nm respectively.The peaks at 466nm is attributed to defect-related emission of the ZnS host,the peaks at495nm is caused by the zinc vacancies V Zn level,and the emission band at554nm is attributed to the Mn2+in the lattice sites,which is not present in the undoped ZnS nanometer quantum dot.These emission?rst increases and then decreases with the doping amount of the Mn2+.As the concentration of Mn2+is at0.6at%, the emission intensity reach the maximum,and it quench once the doping concentration of Mn2+ increased to0.9at%.The FTIR spectra observed at490cm-1is assigned to the Mn–O stretching modes.And the small changes about this peak compared with the previous reports at500cm-1can be attributed to the formation of nano phase.This study demonstrates that the method we adopt is practical and easy to prepare semiconductor QDs.

1S.C.Han,Y.C.Pu,L.X.Zheng,L.F.Hu,J.Z.Zhang,and X.S.Fang,J.Mater.Chem.A4,1078(2016).

2N.Tang,Q.M.Hu,A.B.Ren,W.Li,C.Liu,J.Q.Zhang,L.L.Wu,B.Li,G.G.Zeng,and S.B.Hu,Sol.Energy157, 707(2017).

3X.S.Fang,T.Y.Zhai,U.K.Gautam,L.Li,L.M.Wu,Y.Bando,and D.Golberg,Prog.Mater.Sci.56,175(2011).

4A.I.Cadis,L.E.Muresan,I.Perhaita,V.Munteanu,Y.Karabulut,J.G.Guinea,A.Canimoglu,M.Ayvacikli,and N.Can, Opt.Mater.72,533(2017).

5C.H.Ye,X.S.Fang,M.Wang,and L.D.Zhang,J.Appl.Phys.99,063504(2006).

6A.K.Kole,C.S.Tiwary,and P.Kumbhakar,J.Lumin.155,359(2014).

7M.Geszkea,M.Murias,L.Balan,G.Medjahdi,J.Korczynski,M.Moritzb,J.Lulek,and R.Schneider,Acta Biomater.7, 1327(2011).

8T.P.Nguyen,A.D.Leb,T.B.Vu,and https://www.360docs.net/doc/7513746250.html,mb,Journal of Luminescence192,166(2017).

9S.Kumar,H.C.Jeon,T.W.Kang,R.Singh,K.Sharma,and R.K.Choubey,J Mater Sci:Mater Electron26,3939(2015). 10X.L.Chen,W.Liu,G.W.Zhang,N.Wu,L.Shi,and S.Q.Pan,Adv.Mater.Sci.Eng.8,412476(2015).

11R.Subha,V.Nalla,J.H.Yu,S.W.Jun,K.Shin,T.Hyeon,C.Vijayan,and W.Ji,J.Phys.Chem.C.117,20905(2013). 12L.Qian,D.Bera,and P.Holloway,Appl.Phys.Lett.92,093103(2008).

13M.Y.Shahid,M.Asghar,H.M.Arbi,M.Zafar,and S.Z.Ilyas,AIP Advances6,025019(2016).

14B.Y.Geng,L.D.Zhang,G.Z.Wang,T.Xie,Y.G.Zhang,and G.W.Meng,Appl.Phys.Lett.84,2157(2004).

16W.H.Zhang,J.L.Shi,H.R.Chen,Z.L.Hua,and D.S.Yan,Chem.Mater.13,648(2001).

17P.Hu,Y.Liu,L.Fu,L.Cao,and D.Zhu,J.Phys.Chem.B108,936(2004).

18W.T.Yao,S.H.Yu,L.Pan,J.Li,Q.Wu,L.Zhang,and J.Jiang,Small1,320(2005).

19T.Khalid,A.Rasoul,N.Abbas,and Z.J.Shanan,Int.J.Electrochem Sci.8,5594(2013).

20Z.X.Yang,W.Zhong,Y.Deng,C.T.Au,and Y.W.Du,Nanoscale Res Lett.5,1124(2010).

21X.Z.Liu,J.H.Cui,L.P.Zhang,W.C.Yu,F.Guo,and Y.T.Qian,Mater.Lett.60,2465(2006).

22M.F.Bulanyi,B.A.Polezhaev,T.A.Prokof’ev,and I.M.Chernenko,J.Appl.Spectrosc.67,282(2000).

23A.Jain,S.Panwar,T.W.Kang,H.C.Jeon,S.Kumar,and R.K.Choubey,J Mater Sci:Mater Electron25,1716(2014). 24S.Nazerdeylami,E.Saievar-Iranizad,Z.Dehghani,and M.Molaei,Physica B406,108(2011).

25Y.Y.Bacherikov,N.P.Baran,I.P.V orona,A.V.Gilchuk,A.G.Zhuk,Y.O.Polishchuk,https://www.360docs.net/doc/7513746250.html,vorik,V.P.Kladko, S.V.Kozitskii,E.F.Venger,and N.E.Korsunska,J Mater Sci:Mater Electron28,8569(2017).

26A.K.Thottoli and A.K.A.Unni,J.Nanostruct.Chem.3,56(2013).

紫外吸收光谱的基本原理

紫外吸收光谱的基本原理,应用与其特点 紫外吸收光谱的基本原理 吸收光谱的产生 许多无色透明的有机化合物,虽不吸收可见光,但往往能吸收紫外光。如果用一束具有连续波长的紫外光照射有机化合物,这时紫外光中某些波长的光辐射就可以被该化合物的分子所吸收,若将不同波长的吸收光度记录下来,就可获的该化合物的紫外吸收光谱 紫外光谱的表示方法 通常以波长入为横轴、吸光度 A (百分透光率T% )为纵轴作图,就可获的该化合物的紫外吸收光谱图。 吸光度A,表示单色光通过某一样品时被吸收的程度A=log(l0/I1), 10 入射光强度, 11透过光强度; 透光率也称透射率T,为透过光强度I1与入射光强度I0之比值,T= I1/I0 透光率T与吸光度A 的关系为A=log(1/T) 根据朗伯-比尔定律,吸光度A与溶液浓度c成正比A= b e &为摩尔吸光系数,它是浓度为 1mol/L的溶液在1em的吸收池中,在一定波长下测得的吸光度,它表示物质对光能的吸收强度,是各种物质在一定波长下的特征常数,因而是检定化合物的重要数据;e为物质的浓度,单位为mol/L ; b为液层厚度,单位为cm。 在紫外吸收光谱中常以吸收带最大吸收处波长加ax和该波长下的摩尔吸收系数 max来表征化合物吸收特征。吸收光谱反映了物质分子对不同波长紫外光的吸收能力。吸收带的许多无色透明的有机化合物,虽不吸收可见光,但往往能吸收紫外光。如果用一束具 有连续波长的紫外光照射有机化合物,这时紫外光中某些波长的光辐射就可以被该化合物的 分子所吸收,若将不同波长的吸收光度记录下来,就可获的该化合物的紫外吸收光谱?通常以波长入为横轴、吸光度 A (百分透光率T% )为纵轴作图,就可获的该化合物的紫外吸收光谱图。 吸光度A,表示单色光通过某一样品时被吸收的程度A=log(I0/I1), I0 入射光强度, I1透过光强度; 透光率也称透射率T,为透过光强度I1与入射光强度I0之比值,T= I1/I0 透光率T与吸光度A 的关系为A=log(1/T) 根据朗伯-比尔定律,吸光度A与溶液浓度e成正比A= b e &为摩尔吸光系数,它是浓度为 1mol/L的溶液在1em的吸收池中,在一定波长下测得的吸光度,它表示物质对光能的吸收强度,是各种物质在一定波长下的特征常数,因而是检定化合物的重要数据;e为物质的浓度,单位为mol/L ;b为液层厚度,单位为em。 在紫外吸收光谱中常以吸收带最大吸收处波长加ax和该波长下的摩尔吸收系数 max来表征化合物吸收特征。吸收光谱反映了物质分子对不同波长紫外光的吸收能力。吸收带的形状、?max和max与吸光分子的结构有密切的关系。各种有机化合形状、?max 和max与吸光分子的结构有密切的关系。各种有机化合物的?max和max都有定值, 同类化合物的e max比较接近,处于一个范围。 紫外吸收光谱是由分子中价电子能级跃迁所产生的。由于电子能级跃迁往往要引起分子 中核的运动状态的变化,因此在电子跃迁的同时,总是伴随着分子的振动能级和转动能级的跃迁。考虑跃迁前的基态分子并不是全是处于最低振动和转动能级,而是分布在若干不同的

日本蜡烛图技术

日 本 蜡 烛 图 技 术 整 理

日本蜡烛图技术 反转形态 一.锤子线和上吊线 图形说明:这两种蜡烛线既可能是看涨的,也可能是看跌的。本身颜色并不重要,但如果实体是白色的,看涨意味更强;如果实体是黑色的,看跌意味更强。 识别标准: 1.实体处于整个价格区间的上端。而实体本身的颜色是无所谓的。 2.下影线的长度至少达到实体高度的2倍。 3.在这类蜡烛线中,应当没有上影线,即使有上影线,其长度也是极短的。 注意事项: 1.如果上吊线的实体是黑色的,看跌意味更强 2.当上吊线出现时,一定要等待其他看跌信号的证实:上吊线的实体与上吊线次日的开 市价之间的向下的缺口越大,那么上吊线就越有可能构成市场的顶部。 3.上吊线下影线的长度并不是非得达到实体高度的2倍不可,才足以构成反转信号。一 般来说,在这类形态中,下影线越长,形态越完美。 二.吞没形态(抱线形态)

图形说明:吞没形态属于主要反转形态,是由两根颜色相反的蜡烛实体所构成的。 识别标准: 1.在吞没形态之前,市场必须处在清晰可辨的上升趋势或下降趋势中,哪怕这个趋势只 是短期的。 2.吞没形态必须由2跟蜡烛线组成。其中第二根蜡烛线的实体必须覆盖第一根蜡烛线的 实体(但是不一定需要吞没前者的上下影线)。 3.吞没形态的第二个实体必须与第一个实体的颜色相反。(例外的情况:第一条蜡烛线的 实体必须非常小,小得几乎构成了一根十字线,或者就是一条十字线)。 注意事项:如果吞没形态伴随以下特征出现,构成重要反转信号的可能性将大大地增强: 1.在吞没形态中,第一天的实体非常小,而第二天的实体非常大。这种情况可能说明原 有趋势的驱动力正在消退,而新趋势的潜在力量正在壮大。 2.吞没形态出现在超长期的或非常急剧的市场运动之后。如果存在超长期的上升趋势, 则增加了以下这种可能性:潜在的买家已经入市买进,持有多头。在这种情况下,市 场可能缺少足够的新的多头头寸的供应,无力继续推动市场上升。如果存在非常急剧 的市场运动,则市场可能已经朝一个方向走得太远,容易遭受获利平仓头寸的打击。 3.在吞没形态中,第二个实体伴有超额的交易量。这种情形可能属于胀爆现象。 4.在吞没形态中,第二天的实体向前吞没的实体不止一个。 三.乌云盖顶形态(乌云线形态)

紫外可见吸收光谱习题集及答案

五、紫外可见分子吸收光谱法(277题) 一、选择题( 共85题) 1。 2 分(1010) 在紫外-可见光度分析中极性溶剂会使被测物吸收峰( ) (1)消失(2) 精细结构更明显 (3)位移(4)分裂 2. 2分(1019) 用比色法测定邻菲罗啉-亚铁配合物时,配合物的吸收曲线如图1所示,今有a、b、 ) c、d、e滤光片可供选用,它们的透光曲线如图2所示,你认为应选的滤光片为( 欲测某有色物的吸收光谱,下列方法中可以采用的是( )(1)比色法(2)示差分光光度法 (3)光度滴定法(4)分光光度法 4. 2 分(1021) 按一般光度法用空白溶液作参比溶液,测得某试液的透射比为10%,如果更改参 比溶液,用一般分光光度法测得透射比为20% 的标准溶液作参比溶液,则试液的透 光率应等于() (1) 8% (2) 40% (3) 50%(4)80% 5。1分(1027) 邻二氮菲亚铁配合物,其最大吸收为510nm,如用光电比色计测定应选用哪一种 滤光片?() (1) 红色(2)黄色(3)绿色(4) 蓝色 6。2分(1074) 下列化合物中,同时有n→π*,π→π*,σ→σ*跃迁的化合物是( ) (1)一氯甲烷(2)丙酮(3) 1,3—丁二烯(4)甲醇 7。 2 分(1081) 双波长分光光度计的输出信号是() (1) 试样吸收与参比吸收之差(2)试样在λ1和λ2处吸收之差 (3) 试样在λ1和λ2处吸收之和(4) 试样在λ1的吸收与参比在λ2的吸收之差 8. 2 分(1082) 在吸收光谱曲线中,吸光度的最大值是偶数阶导数光谱曲线的() (1)极大值(2) 极小值(3) 零(4) 极大或极小值 9。2分(1101) 双光束分光光度计与单光束分光光度计相比,其突出优点是( ) (1) 可以扩大波长的应用范围(2) 可以采用快速响应的检测系统 (3) 可以抵消吸收池所带来的误差(4) 可以抵消因光源的变化而产生的误差

晶胞计算习题答案

创作编号: GB8878185555334563BT9125XW 创作者:凤呜大王* 1、【答案】(1)mol-1(2)①8 4 ②48③ 【解析】(1)铜晶胞为面心立方最密堆积,1个晶胞能分摊到4个Cu原子;1个晶胞的体积为a3cm3;一个晶胞的质量为a3ρ g;由=a3ρ g,得N A=mol -1。 (2) ①每个Ca2+周围吸引8个F-,每个F-周围吸收4个Ca2+,所以Ca2+的配位数为8,F-的配位数为4。②F-位于晶胞内部,所以每个晶胞中含有F-8个。含有Ca2+为×8+×6=4个。 ③ρ===a g·cm-3, V=。 2、【解析】 试题分析:本考查学生对知识综合利用能力,要求对晶胞知识能够融会贯通。依题意画出侧面图,设正立方体边长为a,则体积为a3。,AC=4r, 故原子半径,根据均摊法得,每个正立方体包括金属原子 8×1/8+6×1/2=4(个),球体体积共

4×空间利用率为:. 考点:均摊法计算 点评:本题考查相对综合,是学生能力提升的较好选择。 3、(1)34.0% (2)2.36 g/cm3 【解析】(1)该晶胞中Si原子个数=4+8×1/8+6×1/2=8,设Si原子半径为xcm,该晶胞中硅原子总体积=,根据硬球接触模型可知,体对角线四分之一处的原子与顶点上的原子紧贴,设晶胞边长为a,所以,解得a=,晶胞体积=()3,因此空间利用率=×100%=34.0%。(2)根据以上分析可知边长=,所以密度==2.36g/cm3。 4、【答案】(1)4(2)金属原子间相接触,即相切 (3)2d3(4) 【解析】利用均摊法解题,8个顶点上每个金原子有属于该晶胞,6个面上每个金原子有属于该晶胞,故每个晶胞中金原子个数=8×+6×=4。假设金原子间相接 触,则有正方形的对角线为2d。正方形边长为d。所以V晶= (d)3=2d3,V m=N A=d3N A,所以ρ==。 5、【答案】(1)YBa2Cu3O7(2)价n(Cu2+)∶n(Cu3+)=2∶1 【解析】(1)由题图所示晶胞可知:一个晶胞中有1个Y3+,2个Ba2+。晶胞最上方、最下方分别有4个Cu x+,它们分别被8个晶胞所共用;晶胞中间立方体的8个顶点各有一个Cu x+,它们分别被4个晶胞共用,因此该晶胞中的Cu x+为n(Cu x+)=(个)。晶胞最上方、最下方平面的棱边上共有4个氧离子,分别被4个晶胞共用;又在晶胞上的立方体的竖直棱边上和晶胞下方的立方体的竖直棱

omga质粒提取试剂盒_说明书_翻译

omgaE.Z.N.A.质粒试剂盒操作规程说明书(译版) 1. 自新鲜划痕选择培养板中分离单菌落,接种含适当选择性抗生素的2-5ml的LB或YT培养基进行培养。37℃强力摇动(~300rpm)孵育20-24h。使用10-20ml培养管或容量至少4倍于培养容积的培养瓶。强烈推荐使用endA阴性大肠杆菌菌株进行常规质粒分离。此类菌株包括DH5α和JM109。 2. 将1.5-5.0ml细菌菌液室温13,000 g离心3min。轻轻倒出或吸走培养基并丢弃。 3. 加入200μl 的溶液Buffer T 1/Rnase A重悬沉淀,涡旋或用移液器反复吹打。充分重悬沉淀对于获得高质量的DNA非常重要。 4. 加入200μl溶液Buffer T 2,倒置、转动试管5-10次使之轻轻混匀,得到透明的裂解产物。室温孵育5min。不要用力混合,以免使染色体DNA断裂,减低质粒的纯度。该步反应不要超过5min。溶液II不用时要拧紧瓶盖,以免试剂被空气中的CO2酸化。 5. 加入200μl溶液Buffer T 3,立即倒置试管15-20次混匀,直至白色絮状沉淀物形成。冰上孵育5min。为避免形成局部沉淀,加入溶液III后应立即、充分混匀溶液。 6. 4℃13,000 g离心10分钟。白色沉淀物形成,立即进行下一步操作。 7. 小心翼翼的吸取上清液,加入到新的1.5ml离心管(不是试剂盒提供的)中。加入200ul 用异丙醇稀释的BAC 结合液(缓冲液),颠倒3-5次充分混匀。BAC 结合液使用前必须用96%-100%的异丙醇稀释,详细的说明见瓶壁或第三页说明书 8.加入样本DNA(HiBind DNA MicroElute)到提供的2ml收集管中。 9. 室温8000g离心30s,丢弃收集管,将离心柱放入新的收集管中。 10. 将收集柱放回收集管并加入750ul SPM buffer(用乙醇稀释),室温8000g离心30s,丢弃收集管,将离心柱放入新的收集管中。 11. 将空柱子以最大速度离心2min,使柱子的基质干燥。此步骤为关键操作,不可遗漏。 12. 将柱子放入干净的1.5ml微量离心管中。将20-50μl(取决于终产物的期望浓度)洗脱液(Elution Buffer)或无菌去离子水直接加入柱子基质上,使之于室温下静置5min。 13.最大速度离心2min洗脱DNA。可以进行二次洗脱,以收集残存的DNA。 14. -20℃保存洗脱的DNA。 15. DNA的产量和质量:分别在波长260nm和280nm处测定样品适当稀释液的吸光度。DNA的浓度计算如下: DNA浓度=A260×50×(稀释倍数)μg/ml A260/A280的比率可以反映核酸的纯度。比值大于1.8表明核算的纯度在90%以上。或者,DNA的产量(及质量)有时可以通过琼脂糖胶/溴乙锭电泳与已知浓度的DNA样品相比较更好的予以确定。通常情况下洗脱的大部分DNA是超螺旋单体形式,但也可能存在串联体形式。 适用于BACs,PACs,P1s和质粒分离步骤(标准)(D2156-00,D2156-01,D2156-02)彭伟翻译

质粒提取试剂盒-说明书-翻译

精品文档 。 1欢迎下载 E.Z.N.A.? 质粒小提试剂盒操作规程(英文版译文) (适用于No. D6942, D6943 & D6944) 1. 自新鲜划痕选择培养板中分离单菌落,接种含适当选择性抗生素的1-5ml 的LB 培 养基进行培养。37℃强力摇动(~300rpm )孵育12-16h 。使用10-20ml 培养管或容量至少4倍于培养容积的培养瓶。强烈推荐使用endA 阴性大肠杆菌菌株进行常规质粒分离。此类菌株包括DH5α和JM109。 2. 将1.5-5.0ml 细菌室温10,000 x g 离心1min 。轻轻倒出或吸走培养基并丢弃。 3. 加入250μl 的溶液I/Rnase A 重悬沉淀,涡旋或用移液器反复吹打。充分重悬沉 淀对于获得高质量的DNA 非常重要。 4. 加入250μl 溶液II ,倒置、转动试管数次使之轻轻混匀,得到透明的裂解产物。 可能需要孵育2min 。不要用力混合,以免使染色体DNA 断裂,减低质粒的纯度。该步反应不要超过5min 。溶液II 不用时要拧紧瓶盖,以免试剂被空气中的CO2酸化。 5. 加入350μl 溶液III ,立即倒置试管数次混匀,直至白色絮状沉淀物形成。为避免 形成局部沉淀,加入溶液III 后应立即、充分混匀溶液。 6. 室温≥10,000 x g 离心10分钟。白色沉淀物形成,立即进行下一步操作。 7. 小心翼翼.... 的吸取上清液,加入装配在2ml 收集管中的小量纯化柱I 中。确保离心沉淀未受扰动,确保没有细胞碎片加入到柱子中。室温下10,000 x g 离心1分钟,使裂解液完全通过柱子。 8. 丢弃滤过液,重新使用2ml 收集管;加入500μl HB 缓冲液清洗柱子,室温10,000 x g 离心1分钟,使溶液完成通过柱子。该步操作需确保残余的蛋白质污染被去除,以保证获得高品质的DNA 以适合于下游的应用。 9. 丢弃滤过液,重新使用2ml 收集管;加入700μl 用无水乙醇稀释的DNA 清洗液清 洗柱子,室温10,000 x g 离心1分钟,使溶液完全通过柱子,丢弃滤过液。 注意:DNA 清洗液的浓缩液使用前必须用无水乙醇稀释(5倍稀释),如果DNA 清洗液稀 释液经过冷藏,则使用之前必须置于室温。 10. 可选步骤:重复清洗,加入另外的700μl 用无水乙醇稀释的DNA 清洗液。 11. 将空柱子≥13,000 x g 离心2min ,使柱子的基质干燥。此步骤为关键操作,不可 遗漏。 12. 将柱子放入干净的1.5ml 微量离心管中。将30-50μl (取决于终产物的期望浓度) 洗脱液或无菌去离子水直接加入柱子基质上,使之于室温下静置1-2min 。≥13,000 x g 离心1min 洗脱DNA 。可以进行二次洗脱,以收集残存的DNA 。 13. DNA 的产量和质量:分别在波长260nm 和280nm 处测定样品适当稀释液的吸光度。DNA 的浓度计算如下: DNA 浓度=A 260×50×(稀释倍数)μg/ml A 260/A 280的比率可以反映核酸的纯度。比值大于1.8表明核算的纯度在90%以上。或者,DNA 的产量(及质量)有时可以通过琼脂糖胶/溴乙锭电泳与已知浓度的DNA 样品相比较更好的予以确定。通常情况下洗脱的大部分DNA 是超螺旋单体形式,但也可能存在串联体形式。 张小强 翻译

紫外吸收光谱的应用

紫外吸收光谱的应用

第九章紫外吸收光谱分析ultraviolet spectro-photometry, UV 第三节紫外吸收光谱的应用applications of UV 一、定性、定量分析qualitative and quantitative analysis 1. 定性分析 εmax:化合物特性参数,可作为定性依据; 有机化合物紫外吸收光谱:反映结构中生色团和助色团的特性,不完全反映分子特性; 计算吸收峰波长,确定共扼体系等 甲苯与乙苯:谱图基本相同; 结构确定的辅助工具; εmax ,λmax都相同,可能是一个化合物; 标准谱图库:46000种化合物紫外光谱的标准谱图 ?The sadtler standard spectra ,Ultraviolet?2. 定量分析 依据:朗伯-比耳定律 吸光度:A= ε b c 透光度:-lg T = ε b c 灵敏度高:

εmax:104~105 L· mol-1 · cm -1;(比红外大) 测量误差与吸光度读数有关: A=0.434,读数相对误差最小; 二、有机化合物结构辅助解析structure determination of organic compounds 1. 可获得的结构信息 (1)200-400nm 无吸收峰。饱和化合物,单烯。(2)270-350 nm有吸收峰(ε=10-100)醛酮n →π* 跃迁产生的R带。 (3)250-300 nm 有中等强度的吸收峰(ε=200-2000),芳环的特征吸收(具有精细解构的B带)。 (4)200-250 nm有强吸收峰(ε≥104),表明含有一个共轭体系(K)带。共轭二烯:K带(~230 nm);?β,α不饱和醛酮:K带~230 nm ,R带~310-330 nm 260nm,300 nm,330 nm有强吸收峰,3,4,5个双键的共轭体系。 2.光谱解析注意事项 (1) 确认λmax,并算出㏒ε,初步估计属于何种吸收带;

晶胞计算习题

1、回答下列问题 (1)金属铜晶胞为面心立方最密堆积,边长为a cm。又知铜的密度为ρ g·cm-3,阿伏加德罗常数为_______。(2)下图是CaF2晶体的晶胞示意图,回答下列问题: ①Ca2+的配位数是______,F-的配位数是_______。②该晶胞中含有的Ca2+数目是____,F-数目是_____,③CaF2晶体的密度为a g·cm-3,则晶胞的体积是_______(只要求列出算式)。 2、某些金属晶体(Cu、Ag、Au)的原子按面心立方的形式紧密堆积,即在晶体结构中可以划出一块正立方体的结构单元,金属原子处于正立方体的八个顶点和六个侧面上,试计算这类金属晶体中原子的空间利用率。(2)(3) 3、单晶硅的晶体结构与金刚石一种晶体结构相似,都属立方晶系晶胞,如图: (1)将键联的原子看成是紧靠着的球体,试计算晶体硅的空间利用率(计算结果保留三位有效数字,下同)。(2)已知Si—Si键的键长为234 pm,试计算单晶硅的密度是多少g/cm3。 4、金晶体的最小重复单元(也称晶胞)是面心立方体,如图所示,即在立方体的8个顶点各有一个金原子,各个面的中心有一个金原子,每个金原子被相邻的晶胞所共有。金原子的直径为d,用N A表示阿伏加德罗常数,M表示金的摩尔质量。请回答下列问题: (1)金属晶体每个晶胞中含有________个金原子。 (2)欲计算一个晶胞的体积,除假定金原子是刚性小球外,还应假定_______________。 (3)一个晶胞的体积是____________。(4)金晶体的密度是____________。 5、1986年,在瑞士苏黎世工作的两位科学家发现一种性能良好的金属氧化物超导体,使超导工作取得突破性进展,为此两位科学家获得了1987年的诺贝尔物理学奖,实验测定表明,其晶胞结构如图所示。 (4)(5)(6) (1)根据所示晶胞结构,推算晶体中Y、Cu、Ba和O的原子个数比,确定其化学式。(2)根据(1)所推出的化合物的组成,计算其中Cu原子的平均化合价(该化合物中各元

质粒提取试剂盒说明书

质粒提取试剂盒说明书 质粒提取的质量和得率受多种因素影响,既和质粒本身的性质以及拷贝有关,也和菌液的状态及实验操作有关,因此在质粒提取中的一些实验要点显得就极为重要了。质粒提取这看似简单的实验,却暗藏杀机,下面我们来看一下在质粒提取过程中那些习以为常的实验操作中的“误会“。 通常我们会认为越多的菌液或是越浓的菌液提取的质粒会越多,但实际实验中结果并非如此。 良好菌液的标准: 按1:1000的比例将菌液接种至培养基中,摇菌时间在8-12个小时,不超过16个小时。 菌液均匀悬浮于培养基中,无凝块、无沉淀,菌液的OD600吸光值在0.8-1.0之间,不超过1.2。 在提取质粒后进行凝胶电泳,如果在在超螺旋质粒的下方出现弥散条带,则是由于忘记加入RNaseA或RNaseA消化不充分,不完全降解的RNA与质粒共同被提取出来。

加入RNaseA的两个阶段: 在使用试剂盒提取质粒时,菌液重悬时在P1溶液中加入RNaseA 提取质粒后,在质粒溶液中加入RNaseA(试剂盒或溶液法) RNaseA的使用方法: RNaseA在质粒中的使用终浓度为20μg/ml 经RNaseA孵育的质粒,需要进行纯化去除残留的RNaseA 如何判断我们所使用的菌体量是否合适呢?在裂解时经几次颠倒混匀后,裂解液仍然为浑浊状态,说明未被裂解的菌体仍然悬浮在裂解液中,而充分裂解的菌体,溶液于裂解液中,裂解液呈现为澄清,质粒充分释放。 质粒小提试剂盒适合1-5 ml菌体的提取 小提中量试剂盒适合5-15 ml菌液的提取

中量提取试剂盒适合50-100 ml菌液的提取 大量提取试剂盒适合100-200 ml菌液的提取 如果我们想要增加提取的菌体量,也要相应提高所加入的裂解液体积。

《日本蜡烛图技术》形态整理版1

《日本蜡烛图技术》形态整理版锤子线和上吊线 吞没形态(抱线形态) 乌云盖顶形态(乌云线形态) 刺进形态(斩回线态)

在市场形成了上述三类形态的情况下,只要价格再次下跌到其中的白色蜡烛线的最低点以下,交易商就应当明日,卖出的好机会来了(请注意,图 4.32所示的插入线形态如果处在下跌行情中,是看跌的,但是,如果它处在上升行情中倒应该视为看涨信号。另外,在下跌行情中,如果市场在数天之内接连形成了两个插入线形态,那么,这种情况也属于看涨信号)。 第五章星线 本章要讨论另一群有趣的反转形态,它们的共同点是都包含星蜡烛线。如图5.1所示,星蜡烛线(简称星线)的实体较小,并且在它的实体与它前面的较大的蜡烛线的实体之间形成了价格跳空。只要星线的实体与前一个实体没有任何重叠,那么这个星蜡烛线就是成立的。 当星线,尤其是十字星线出现时,就是一个警告信号,表明当前的趋势或许好景不长了。星线的较小的实体显示,熊方和牛方的较量已经转入僵持状态。在强劲的上升趋势中,牛方一直占握主导地位。如果在一根长长的白色蜡烛线之后出现了一根星线,则构成了警告信号:因为市场原来受买方的控制,现在转变为买方与卖方势均力敌的僵持状态。这一僵局的发生,既可能是由于买方力量的衰减所造成的,也可能是由于卖方力量的增长所造成的。但不论出于哪一个原因,星线都能告诉我们,当前上升趋势的驱动力已经瓦解,市场容易遭到卖方的攻击而向下回落。 在下列4种反转形态中,星线都是其中的一项重要组成成分。这四种反转形态分别是:

1、黄昏星形态; 2、启明星形态; 3、十字星形态; 4、流星形态。 在这4种星形态中,星线实体的颜色都是无关紧要的,既可以是白色的,也可以是黑色的。 启明星形态 。在理想的启明星形态中,中间蜡烛线(即星线)的实体,与 它前、后两个实体之间均有价格跳空。后面的那个价格跳空较为少 见,不过,即使没有后面这个价格跳空,似乎也不会削减启明星形 态的技术效力。 黄昏星形态 、 十字启明星形态和十字黄昏星形态 如果在十字星线之后,是一根向上跳空的白色蜡烛线,那么这根十字星线的疲弱性质就不再成立了。这一点就是为什么在十字星线出现后,我们必须等待下面一、二个时间单位的验证信号的原因。

晶胞结构及计算

晶胞结构及计算 一、键数与配位数的判断 1.下列说法中正确的是() A.金刚石晶体中的最小碳原子环由6个碳原子构成 B.晶体中只要有阳离子,就有阴离子 C.1 mol SiO2晶体中含2 mol Si—O键 D.金刚石化学性质稳定,即使在高温下也不会和O2反应 2.下列叙述正确的是() A.分子晶体中的每个分子内一定含有共价键 B.原子晶体中的相邻原子间只存在非极性共价键 C.离子晶体中可能含有共价键 D.金属晶体的熔点和沸点都很高 3.(2015·湖北黄石9月调研)晶体硼的结构如右图所示。已知晶体硼结构单元是由硼原子组成的正二十面体,其中有20个等边三角形的面和一定数目的顶点,每个顶点上各有1个B原子。下列有关说法不正确的是() A.每个硼分子含有12个硼原子 B.晶体硼是空间网状结构 C.晶体硼中键角是60° D.每个硼分子含有30个硼硼单键 4.冰晶石(Na 3AlF6)是离子化合物,由两种微粒构成,冰晶石晶胞结构如图所示,“”位于大立方体顶点和面心,“”位于大立方体的12条棱的中点和8个小立方体的体心,那么大立方体的体心处“”所代表的微粒是________(填具体的微粒符号)。

5.某离子晶体的晶胞结构如图所示。 试回答下列问题: (1)晶体中每一个Y同时吸引着________个X,每个X同时吸引着________个Y,该晶体的化学式是________________。 (2)晶体中在每个X周围与它最接近且距离相等的X共有________个。 (3)晶体中距离最近的2个X与一个Y形成的夹角(∠XYX)为__________。 二、晶胞中的综合计算 6.(2017·成都七中高三上10月阶段测试)已知单质钒的晶胞为,则V 原子的配位数是__________,假设晶胞的边长为d cm,密度为ρg·cm-3,则钒的相对原子质量为______________。 7.(2017·临汾一中高三上学期期中)K2S的晶胞结构如图所示。其中K+的配位数为________,S2-的配位数为________;若晶胞中距离最近的两个S2-核间距为a cm,则K2S晶体的密度为________ g·cm-3(列出计算式,不必计算出结果)。

BAC-PAC大型质粒提取试剂盒操作方法及步骤说明书

杭州昊鑫生物科技股份有限公司 htpp://https://www.360docs.net/doc/7513746250.html, BAC/PAC DNA Kit BAC/PAC大型质粒提取试剂盒 目录号:PL2001 适用范围: 适用于BAC/PAC/P1/Cosmid等大型质粒制备 试剂盒组成、储存、稳定性: 试剂盒组成保存20次 RNaseA -20℃ 1.3ml (10mg/ml) 溶液P1 4℃130ml 溶液P2 室温100 ml 溶液PⅢ室温110 ml 杂质清除剂A 室温 3 ml 杂质清除剂B 室温30 ml 内毒素清除剂-20℃10 ml 本试剂盒在室温储存12个月不影响使用效果。 储存事项: 1.第一次使用时,将试剂盒所带全部的RNase A加入溶液P1后(终浓度100μg /ml) 置于4℃保存。如果溶液P1中RNase A失活,提取的质粒可能会混杂有微量RNA 残留,在溶液P1中补加RNase A即可。 2.内毒素清除剂在4℃可保存一个月,如果要长期保存,建议保存在-20℃! 3.环境温度低时溶液P2中SDS可能会析出出现浑浊或者沉淀,可在37℃水浴加热 几分钟,即可恢复澄清,不要剧烈摇晃,以免形成过量的泡沫。 4.避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、pH值变化,各溶液使用后应及时 盖紧盖子。 产品介绍:

常规的离心柱型质粒抽提试剂盒并不适用于BAC/PAC/P1/Cosmid等大型质粒DNA的抽提。这主要是因为大型质粒DNA分子量很大,常常会超过100kb而且一般拷贝数低产量低,使用常规的离心柱吸附膜吸附效率和产量很低而且过膜会打断这些大分子量的质粒DNA。本试剂盒采用改进碱裂解法从培养菌中提取质粒DNA,采用独特的溶液配方和内毒素清除试剂,只需要几次简单离心去除蛋白质、多糖、内毒素、RNA等杂质,获得高质量的质粒DNA。纯化DNA的OD260/280通常在1.8左右,得到的质粒可直接应用于细胞转染甚至动物体内实验等对DNA纯度要求很高的工作中。纯化后期过程均在1.5ml离心管中操作,方法简单,不需特殊设备,无需过柱,不用酚氯仿抽提;基本可完全回收细菌裂解释放出的质粒,不必担心质粒DNA的丢失。本方法提取纯化质粒DNA,对质粒损伤小,即使是100kb甚至200kb以上的大型质粒或超大型BAC/PAC质粒,只要碱裂解法能够提取,就可以有效纯化。此外溶液型的试剂可以按照比例放大缩小进行小提/中提/大提,最后可选择任意小体积溶解质粒,浓度可高达3μg/μl。 产品特点: 1.不需要使用有毒的苯酚,氯仿等试剂,也不需要乙醇沉淀。快速、方便、从150 ml大肠杆菌LB((Luria-Bertani)培养液中,可快速提取典型产量30-50μg高纯度BAC质粒DNA,提取率达80-90 %。 2.获得的质粒产量高,超螺旋比例高,纯度好,可直接用于转染、测序、文库等各 种分子生物学实验。 3.内毒素含量极低(< 0.1 EU/μg DNA),可直接应用于细胞转染。 注意事项 1.提取的质粒量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。如果所提质粒为低拷贝 质粒或大于10kb 的大质粒,应加大菌体使用量,同时按比例增加P1、P2、PⅢ的用量。 2.提取大质粒时操作动作要轻柔,应该使用剪大了开口的吸头,防止机械剪切对 DNA的损坏。 3.DNA沉淀液沉淀离心后,可能看不到明显沉淀。如未见沉淀,担心DNA丢失, 可保留上清液,待完成全部操作后电泳鉴定,以确定是否获得终产物(数百微克DNA离心沉淀在管的侧壁上,可能无法看到明显团块)。 4.得到的质粒DNA可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。OD260

日本蜡烛图技术术语及示意图小词典(1)

日本蜡烛图技术术语及示意图小词典 一、线 1、捉腰带线Belt-hold line—既有看涨的捉腰带线,也有看跌的捉腰带线。看涨捉腰带线是一根高高的白色蜡烛线,它的开市价位于它的最低点。这种形态也称作开市秃“脚”大阳线。当它处于底价区时,构成看涨信号。看跌捉腰带线是一根长长的黑色蜡烛线,它的开始价位于最高点。本形态也称作开市秃“头”大阴线。当它处于高价位时,构成一个看跌信号。 2、反击线Counterattack line——也称“约会线”。在下降趋势(或上升趋势)中在一根黑色蜡烛线(或白色蜡烛线之后,市场在开市时急剧地向下跳空,在收市时市场却与前一天的收市价处于同一水平,这就形成了一个反击线形态。本形态的出现,反映出牛、熊双方处于胶着状态,一时难分雌雄。 2、十字(蜡烛)线Doji——在某根蜡烛线上,如果开始价和收市价处于相同的水平(或几乎同一个水平),则构成了一根十字线。十字线具有各种形态,(比如墓碑十字线,或者长腿十字线),这取决于开始价和收市价相对与当日整个价格范围的位置。十字线,居于最重要的单蜡烛线形态之列。同时,它也是一些重要的蜡烛图形态的一个组成部分。 3、十字星(蜡烛)线Doji star——当一根十字线从前一根长长的白色蜡烛线向上跳空,或者从前一根长长的黑色蜡烛线向下跳空时,就构成了一根十字线,如果它的信号在下一日得到了验证,则构成反转形态。 4、墓碑十字线Gravestone doji—也称为“灵位十字线”这是一种特别的十字线,其开市价和收市价均处于当日的最低点。本形态属于顶部反转信号。有时候,也可能构成底部反转信号,但是条件是,必须的到下一日的验证。 6、锤子(蜡烛)线Hammer——是一种底部反转信号。锤子线与上吊线的形态是一致的,它具备一个小小的实体(既可以是白色的,也可以是黑色的),并且该实体位于当日价格范围

OMEGA小提试剂盒提取质粒步骤(中文翻译版)

质粒提取(小提,mini kit) 1、将携带目的质粒的大肠杆菌接种于含10~15ul基础培养基/氨苄西林培养介质的50ml培养瓶中。 2、室温下5000×g离心10min。 3、弃去上清,剩余沉淀物中加入500ul的SolutionⅠ/RNase A,彻底混匀。 4、将混悬液移至新的2ml离心管中,加入500ul SolutionⅡ,轻柔彻底混匀,可得清亮的细菌裂解物,室温下孵育2min(混匀时用力过大,可破碎出染色体DNA,使目的质粒纯度下降)。 5、向4中液体加入250ul预冷的Buffer N3,轻柔、彻底混匀,直到出现白色絮状沉淀,4℃≥12000×g离心10min(可室温,最好4℃)(Buffer应彻底混匀,若混合物粘稠呈棕色或呈球状,应多混匀几次以中和溶液,溶液的彻底中和对于获得好的产出是必要的)。 6、小心吸取并将上清液转移进新的1.5ml离心管1:0.1的比例向上清液中加入ETR Solution 混匀溶液并于冰上孵育10min,孵育过程中颠倒几次以混匀(加入ETR Solution后,细菌裂解物将出现浑浊,但冰上孵育后将变澄清)(勿用2ml离心管收集上清,因为2ml离心管中有太多液体时,ETR Solution将悬浮于溶液中)。 7、将6中液体于42℃孵育5min,溶液将再次变浑。室温下12000×g离心3min,ETR Solution将于离心管底部形成蓝色层。 8、将上层水相转移入新的2ml离心管中,按1:0.5的比例加入无水

乙醇(室温,96~100%),轻柔混匀,室温下孵育1~2min。 9、将8中的溶液取700ul到柱子中,组装收集管,室温下1000×g 离心1min,弃去收集管中通过柱子的液体,柱子和收集管重复利用。 10、重复9中步骤,直到收集的细菌裂解物全部用完。 11、将500ul Buffer HB加入柱子中,室温下10000×g离心1min,弃去收集管中废液(目的:将残存的蛋白污染物除去,是获得高质量DNA所必需的)。 12、向柱子中加入混有乙醇的700ulDNA Wash Buffer,室温下10000×g离心1min,弃去收集管中液体。 13、重复12中的步骤。 14、弃去收集管中液体,空管在最大转速(≥13000×g)离心3min 以干燥柱子(对于移除柱子中残留的乙醇是必须的)。 15、将柱子放入新的1.5ml离心管中,直接向柱子中的白色网状物上加入Endotoxin-Free Elution Buffer 80~100ul(依终产物浓度而定,可每次30ul×2次),室温下放置2min,≥13000×g离心1min,以洗提DNA(将提取约70~85%柱子中收集的DNA,可再重复一次以提取完全,但因再次加入洗提液,会使终产物浓度下降)。 声明:文档为自己翻译后逐字打出来的,有不妥之处望各位同行不吝赐教,以方便大家实验参考,谢谢。

无内毒素质粒大量提取试剂盒使用说明

无内毒素质粒大量提取试剂盒使用说明 货号:D1150 规格:10T 保存:常温干燥保存,复检期为一年。 试剂盒内容: 试剂盒组成D1150-10T RNase A1ml 内毒素清除剂100ml 溶液P140ml 溶液P240ml 溶液P340ml 结合液120ml 漂洗液15×2ml 洗脱液30ml 吸附柱10个 收集管10个 说明书1份 产品说明: 本试剂盒采用碱裂解法裂解细胞,根据离心吸附柱在高盐状态下特异性地结合溶液中的DNA的原理特异性提取质粒DNA。离心吸附柱中采用的硅基质材料能高效、专一地吸附DNA,可最大限度去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物。内毒素清除剂可最大限度地除去内毒

素。从50-100ml大肠杆菌LB培养液中,可快速提取200-300μg高纯度高拷贝的质粒DNA,提取率达85-90%。使用本试剂盒提取的质粒DNA纯度高,可直接用于细胞转染等要求较高的实验,以及其他各种常规操作,包括酶切、PCR、测序、连接和转化等试验。 使用前请先在漂洗液中加入无水乙醇,加入体积请参照瓶体上的标签。溶液P1在使用前先加入RNaseA(将试剂盒中提供的RNaseA全部加入),混匀,置于2-8℃保存。如非指明,所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。 操作步骤: 1、取50-100ml细菌培养物,11000rpm离心1min,尽量吸除上清(菌液较多时可以通过多次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中)。 2、向留有菌体沉淀的离心管中加入4ml溶液P1(请先检查是否已加入RNaseA),使用移液器或旋涡振荡器彻底悬浮细菌细胞沉淀。注意:如果菌块未彻底混匀,会影响裂解导致质粒提取量和纯度偏低。 3、向离心管中加入4ml溶液P2,温和地上下翻转6-8次使菌体充分裂解。注意:混匀一定要温和,以免污染细菌基因组DNA,此时菌液应变得清亮粘稠,作用时间不要超过5 min,以免质粒受到破坏。 4、向离心管中加入4ml溶液P3,立即温和地上下翻转6-8次,充分混匀,此时会出现白色絮状沉淀。11000rpm离心10min,用移液器小心地将上清转移到另一个干净的离心管中,尽量不要吸出沉淀。注意:溶液P3加入后应立即混合,避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白色沉淀,可再次离心后取上清。 5、加入上清1/5体积的冰上预冷的内毒素清除剂,振荡混匀,溶液变浑浊,冰浴2min 至溶液变清亮。 6、37℃水浴5min,不时振荡,溶液又变浑浊。11000rpm室温离心5min,溶液应分为两相,上层水相含质粒DNA,下层油相含内毒素。

紫外可见吸收光谱习题集和答案

五、紫外可见分子吸收光谱法(277题) 一、选择题 ( 共85题 ) 1. 2 分 (1010) 在紫外-可见光度分析中极性溶剂会使被测物吸收峰 ( ) (1) 消失 (2) 精细结构更明显 (3) 位移 (4) 分裂 2. 2 分 (1019) 用比色法测定邻菲罗啉-亚铁配合物时,配合物的吸收曲线如图1所示,今有a、b、 c、d、e滤光片可供选用,它们的透光曲线如图2所示,你认为应选的滤光片为 ( ) 3. 2 分 (1020) 欲测某有色物的吸收光谱.下列方法中可以采用的是 ( ) (1) 比色法 (2) 示差分光光度法 (3) 光度滴定法 (4) 分光光度法 4. 2 分 (1021) 按一般光度法用空白溶液作参比溶液.测得某试液的透射比为 10%.如果更改参 比溶液.用一般分光光度法测得透射比为 20% 的标准溶液作参比溶液.则试液的透 光率应等于 ( ) (1) 8% (2) 40% (3) 50% (4) 80% 5. 1 分 (1027) 邻二氮菲亚铁配合物.其最大吸收为 510 nm.如用光电比色计测定应选用哪一种 滤光片? ( ) (1) 红色 (2) 黄色 (3) 绿色 (4) 蓝色 6. 2 分 (1074) 下列化合物中.同时有 n→*.→*.→*跃迁的化合物是( ) (1) 一氯甲烷 (2) 丙酮 (3) 1,3-丁二烯 (4) 甲醇 7. 2 分 (1081) 双波长分光光度计的输出信号是 ( ) (1) 试样吸收与参比吸收之差 (2) 试样在1和2处吸收之差 (3) 试样在1和2处吸收之和 (4) 试样在1的吸收与参比在2的吸收之差8. 2 分 (1082) 在吸收光谱曲线中.吸光度的最大值是偶数阶导数光谱曲线的 ( ) (1) 极大值 (2) 极小值 (3) 零 (4) 极大或极小值 9. 2 分 (1101) 双光束分光光度计与单光束分光光度计相比.其突出优点是 ( ) (1) 可以扩大波长的应用范围 (2) 可以采用快速响应的检测系统 (3) 可以抵消吸收池所带来的误差 (4) 可以抵消因光源的变化而产生的误差

质粒提取试剂盒 说明书 翻译

E.Z.N.A.?质粒小提试剂盒操作规程(英文版译文) (适用于No. D6942, D6943 & D6944) 1. 自新鲜划痕选择培养板中分离单菌落,接种含适当选择性抗生素的1-5ml的LB培养基进行培养。37℃强力摇动(~300rpm)孵育12-16h。使用10-20ml培养管或容量至少4倍于培养容积的培养瓶。强烈推荐使用endA阴性大肠杆菌菌株进行常规质粒分离。此类菌株包括DH5α和JM109。 2. 将1.5-5.0ml细菌室温10,000 x g离心1min。轻轻倒出或吸走培养基并丢弃。 3. 加入250μl 的溶液I/Rnase A重悬沉淀,涡旋或用移液器反复吹打。充分重悬沉淀对于获得高质量的DNA非常重要。 4. 加入250μl溶液II,倒置、转动试管数次使之轻轻混匀,得到透明的裂解产物。可能需要孵育2min。不要用力混合,以免使染色体DNA断裂,减低质粒的纯度。该步反应不要超过5min。溶液II不用时要拧紧瓶盖,以免试剂被空气中的CO2酸化。 5. 加入350μl溶液III,立即倒置试管数次混匀,直至白色絮状沉淀物形成。为避免形成局部沉淀,加入溶液III后应立即、充分混匀溶液。 6. 室温≥10,000 x g离心10分钟。白色沉淀物形成,立即进行下一步操作。 7. 小心翼翼 ....的吸取上清液,加入装配在2ml收集管中的小量纯化柱I中。确保离心沉淀未受扰动,确保没有细胞碎片加入到柱子中。室温下10,000 x g离心1分钟,使裂解液完全通过柱子。 8. 丢弃滤过液,重新使用2ml收集管;加入500μl HB缓冲液清洗柱子,室温10,000 x g离心1分钟,使溶液完成通过柱子。该步操作需确保残余的蛋白质污染被去除,以保证获得高品质的DNA以适合于下游的应用。 9. 丢弃滤过液,重新使用2ml收集管;加入700μl用无水乙醇稀释的DNA清洗液清洗柱子,室温10,000 x g离心1分钟,使溶液完全通过柱子,丢弃滤过液。 注意:DNA清洗液的浓缩液使用前必须用无水乙醇稀释(5倍稀释),如果DNA清洗液稀释液经过冷藏,则使用之前必须置于室温。 10. 可选步骤:重复清洗,加入另外的700μl用无水乙醇稀释的DNA清洗液。 11. 将空柱子≥13,000 x g离心2min,使柱子的基质干燥。此步骤为关键操作,不可遗漏。 12. 将柱子放入干净的1.5ml微量离心管中。将30-50μl(取决于终产物的期望浓度)洗脱液或无菌去离子水直接加入柱子基质上,使之于室温下静置1-2min。≥13,000 x g离心1min洗脱DNA。可以进行二次洗脱,以收集残存的DNA。 13. DNA的产量和质量:分别在波长260nm和280nm处测定样品适当稀释液的吸光度。DNA的浓度计算如下: DNA浓度=A260×50×(稀释倍数)μg/ml A260/A280的比率可以反映核酸的纯度。比值大于1.8表明核算的纯度在90%以上。或者,DNA的产量(及质量)有时可以通过琼脂糖胶/溴乙锭电泳与已知浓度的DNA样品相比较更好的予以确定。通常情况下洗脱的大部分DNA是超螺旋单体形式,但也可能存在串联体形式。 张小强翻译

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