现场样品采集,保存,运输

现场样品采集,保存,运输
现场样品采集,保存,运输

现场样品采集、保存和运输

在现场调查中,很重要的—项工作是正确采集、妥善保存、和尽快送检样品,以及随后对样品检测结果进行正确的判读和分析。

(一)样品采集的目的、作用和原则

现场调查的目的主要可分为两大类:一是查明突发公共卫生事件或疾病暴发流行的原因,二是进行卫生质量监测和评价。应该遵循如下总原则:

1.注意生物安全:需要采取的具体措施包括如下两方面:①个人防护:采样时要戴手套,接触不同患者时不能重复使用一副手套,以免交叉感染,并注意手套是否有小的破损;采样中尽可能穿防护服;采样后消毒要穿戴防护服和厚橡胶手套,对污染区表面和溢出物进行消毒;如怀疑有高度传染力的病原,需使用护目镜、呼吸面罩等;为了防止意外,确保安全,采样应备有急救包。②恰当处理污染废弃物:污染的可废弃设备和材料应先消毒后废弃;用过的针头妥善收集消毒,并按规定销毁或损毁;在暴发疫点使用过的防护服、设备、材料等使用化学消毒剂消毒后再清洗,特殊情况也可在现场建简易焚烧炉焚烧。

2.注意采样的代表性或针对性:以卫生质量评价为目的的样品采集,影响采样代表性的因素包括采样量、采样部位、采样时间、采样的随机性和均匀性,以及按批号抽样。以查明突发公共卫生事件或疾病暴发流行的原因为目的的样品采集,不要求样品的代表性,强调针对性,尽可能采集病原微生物含量最多的部位和足够检测用的样本。

3.注意采样时间和种类:以分离培养细菌为目的,则应尽量在急性发病期和使用抗生素之前采集标本,如果已使用抗生素,采样和分离培养最好加入相应的中和剂(中和样品中残存的抑菌物质)或进行其他处理。作病毒分离和病毒抗原检测的标本,应在发病初期和急性期采样,最好在发病1~2天内采取。

4.注意避免采样引入新的污染或者对微生物的杀灭因子:所有采样用具、容器需严格灭菌,并以无菌操作采样。对微生物样品,应避免采样时对微生物的杀灭作用和引入新的抑菌物质,如容器是否有消毒剂的残留,或使用刚烧灼未冷却的采样工具。

5.注意对样品的详细标记:用于卫生质量评价的样品,应标明样品名称、编号、采样时间、采样量、采样者、检测项目等。

(二)样品采集的方法和注意事项

1.用于微生物分离培养或抗原检测的生物性样品

(1)咽拭子、洗漱液或痰液标本:

①咽拭子的采集:让患者仰头张口,用压舌板压舌,用无菌棉拭子在咽部涂抹数次后,放入含2ml Hank液的试管中,棉拭子接触手的部分应及时折断或剪断去掉,然后盖紧试管。

②洗漱液的采集:用生理盐水或自配淡盐水约15ml作为洗漱液,让患者咳嗽后,倒

入灭菌生理盐水或自配淡盐水约15ml,反复洗漱咽部1分钟,直接将洗漱液吐入灭菌容器内。

③痰液标本:肺部感染应采取痰标本,以清晨第一口痰为最佳。采取标本的时间一般在发病的第一日采集,最迟不得超过3日,最好选择体温在38℃以上时采集。

(2)粪便标本:对黏液脓血便应挑取黏液或脓血部分,液状粪便采集水样便或含絮状物的液状粪便2~5ml;成形粪便至少取蚕豆大小粪便1块(约5g)放于灭菌容器内,最好加有保存液或增菌液。若无法获得粪便时,可用保存液或增菌液湿润过的棉拭子插入肛门4~5cm深处(小儿2~3cm)轻轻转动一圈,取直肠表面的黏液后取出,盛入运送培养基或保存液中送检,为保证多个检验项目的开展,同一患者应至少采集2支肛拭。运送时间不得超过2小时,否则应保存在4~8℃条件下送检。

(3)血液标本:作血液病原培养时,严格无菌采静脉血,一般成人采血10~15ml,儿童2~5ml,婴儿0.5~2ml,放入无菌的加入抗凝剂的有螺口容器或培养瓶(见下图)中送检。作血片、暗视野检查可采耳垂血或指尖血。

(4)尿液标本:主要采用中段尿采集法,先用肥皂水清洗外阴部,再以无菌水洗净,一般取首次晨尿的中段尿10~20ml于无菌容器内。结核分枝杆菌集菌检查时,以一清洁容器留取24小时尿,取沉渣10~15ml送检。最好在2~3小时内送到实验室检测,否则应在4~8℃条件下保存运送样品。

(5)脑脊液:在无菌条件下由腰椎穿刺抽取3~5ml,放于无菌试管或厌氧瓶内。用于细菌培养时标本采集后应立即送检;用于病毒培养时在4~8℃最多可维持48小时,否则需在-70℃保存。

(6)皮肤标本:如怀疑皮肤炭疽或淋巴腺鼠疫时可从病变皮肤取样做细菌学培养。出现囊疱疹或脓疱疹时可直接从囊疱或脓疱采集液体用于镜检或培养。

(7)尸体标本:如需要采血则需进行心脏穿刺。采脑组织样本时,如不开颅,可用穿刺长针由鼻孔插入,一直刺到脑干和间脑部位吸出脑组织少许。剖检森林脑炎尸体时,可采取丘脑和小脑部分,其他型别脑炎可采海马回部位的脑组织块。如取脏器组织,先用灼热的金属压舌板接触一下采样部位,瞬时烙焦表面,清除杂菌,用剪刀剪取深部组织块。供分离病毒的组织要在死后5小时内取样。尸体如已腐烂,可锯一段带骨髓的股骨送检。至少取1~2g感染部位标本,放入单独的装有相应液体或培养基的无菌容器中。装样本的容器封口后,表面用碘酒涂擦消毒后送检。为了避免尸体和解剖时的污染物成为传染源,解剖后尸体最好火化;不能火化则应离村庄和交通要道1Km以外,深挖2m以上土坑,坑内和尸体周围撒生石灰,先填入可能被污染的土,后用净土填平;所用器材和隔离衣,凡耐热者均煮沸消毒40分钟,橡胶和塑料制品用1%~5%含氯消毒剂浸泡6小时以上。

2.用于病原体抗体检测的标本:通常包括血液和脑脊液。采集血清样本可将1Oml静脉血移入无抗凝剂的无菌螺口管,室温静置30分钟使之凝集,然后置4~8℃至少1~2

小时,离心收集血清。如能立即检测,采集的血液应在室温下尽快分离血清。如用于微量法试验,可用三棱针刺手指或耳垂部,再用毛细管采集,一般不少于0.3ml。用于检测IgM 的血清一般采于发病1个月内;用于检测IgG的血液应于发病初期(1~3天)和恢复期(第

一次采血后3~4周)各采集1次。一般于出现神经症状时采集,查IgM、需采1份脑脊液,而查IgG则需收集2次。

3.环境样品:

(1)空气样品:一般需要用空气采样器(见下图)采集,用于检测微生物或化学因子,包括毒物。空气中细菌和真菌还可使用平板沉降法。平板沉降法采样方法是将琼脂平板置于各采样点,打开平皿盖,扣放于平皿旁,暴皿于规定时间后立即盖好盖送检;注意根据房间面积确定采样布点,室内面积<30m2时,设内、中、外对角线3点,距墙壁1m,距地面高1.5m;>30m2者,设4角及中央5点,距墙壁1m,采样高度距地面高1.5m处。

(2)水样:采样器具有用于手工采样的采样瓶和自动采样器。手工采样是将水样瓶用铁架固定,塞住瓶口,待瓶沉入到一定深度时拉开瓶塞,让水样进入。自动采样是用自动采样器在一定间隔时间中或连续采集样品,分别放入样品瓶或合并于一个样品瓶中成为混合样。疫区传染病病原污染的上述水体,采集时最好采非日光直射处的表层水。采集自来水样品时,先用酒精灯将水龙头烧灼消毒,然后将龙头打开,放水5~10分钟,再采集水样。采样量因工作条件和样品处理方法不同而不同,如直接用于增菌可采250~1000ml;先作絮凝或离心浓缩处理时,以每个采样点取100~200ml为宜。

(3)土壤样本:按对角交叉(五点法)取样;用灭菌工具先除去地表枯枝落叶,再铲除1cm左右表层土;用烧灼过的勺或铲取土样约200~300g,装于灭菌容器内,并注意保留适当空间,混合后,标明采样地点、深度、日期后送检。

4.产品样本:包括食品、化妆品、涉水产品、消毒及卫生用品等,主要用于卫生理化和卫生微生物指标检测。

5.用于调查中毒的样品:调查中毒的样品既包括食品、水、空气和食品接触的相关人员的样品,又包括中毒者的呕吐物、排泄物、血液等临床标本,而中毒的原因样品往往只能一次性提供。分述如下:

(1)胃内容物:是确定中毒的最好样本之一。在采集时要注意避免污染,洗胃液最好采集最初抽出的。在收集尸检材料中的胃内容物时,要注意胃的底部胃液的收集。采集的胃内容物量较大时,可取出后倾倒入一较大的玻璃漏斗内,漏斗的出口先塞住,混杂在胃内容物中的结晶和粉末将沉淀在漏斗底部,然后将上层液体和下层固体分别收集。在尸检中,对中毒迁延一段时间后才死亡的患者或生前已经进行洗胃的患者,要注意收集肠内容物。所采集的样本可用玻璃、聚乙烯或聚四氟乙烯器皿盛装,避免使用金属器皿。采集量最好达到1OOg(ml)以上。

(2)血液:是确诊中毒最主要的样本。血液采集方法同前,应注意:①根据不同毒物在血液中的半减期决定采样时机;②选择恰当的盛装血样的容器,如疑为百草枯中毒患者的血液不能用玻璃试管,因为玻璃可以使百草枯钝化,钝化后的百草枯实验室不能检出;

③注意密封,如疑为一氧化碳中毒者应尽早抽血5~15ml装满玻璃试管,必须用密封玻璃塞塞紧,避免瓶中残留空气;④尽量不加防腐剂和抗凝剂。

(3)尿液:尿液可直接收集、导出或注射器抽取,无尿者也可取膀胱冲洗液。尿液一般每次采集100ml,用玻璃或塑料瓶盛装,不加防腐剂;注意采集时间,一些毒物在中毒初期尿检阴性,如百草枯一般要在口服后2小时采集。

(4)食物中毒的标本:其他食物中毒标本有:

①可疑食品和水样,采样时将残余食物或水样用灭菌镊子或匙采取后置于灭菌容器中;体积较大的鱼、肉应在表面消毒后取内部检样;要注意取样量,通常50~200g。

②从业人员相关标本:可采集从业人员以及直接或间接接触食品有关人员的肛拭子,或化脓性疾病的病灶,方法同前,相关人员的手用棉拭涂擦采样。

③食物中毒环境的标本:炊事用具如锅、碗、刀等用棉拭涂擦采样,抹布剪小片放入稀释液,菜墩用刀刮取表面后,将刮取物放入灭菌容器中送检。

④其他:可疑有毒动植物样本要保持完整,最好能够收集到完整的个体或整株植物,可疑有毒的部位(如种子、花等)采集的量要充分;可疑的蘑菇在采集时要注意不要碰掉容易脱落的菌环等,尽量保持其完整形态,以利种类鉴定。

(三)样品的保存和运输

1.检测病原体样品的保存:原则是尽量保护待检微生物和注意生物安全。一般低温可

增加微生物的存活和抑制杂菌的过度生长。有的样品要使用运送培养基。分离病毒的组织块可放于50%甘油缓冲液中,在5℃条件下保存数周,也可用由0.5%水解蛋白,2%小牛血清,青、链霉素各500U/ml,制霉菌素50U/ml组成的溶液保存。分离鼠疫菌等革兰染色阴性菌多用卡-布半固体培养基运送,用经1/15mol/L pH8.1磷酸盐缓冲液处理过的棉棒采样后,插入培养基的底部,拧紧管口螺旋盖运送。怀疑厌氧菌感染或需要进行厌氧菌检验的检样,必要时应使用运送培养基,保持在厌氧条件下运送。分离培养细菌或病毒的标本,若在48小时内检测,保存于4℃;若在48小时后检测,保存于-70℃,但原则是尽快检测,分离病毒的组织块冻存,应该加入防冻剂如甘油。寄生虫样本的保存,每份粪便中加入10%福尔马林和PVA存于4℃。

2.化学因子或毒物样品的保存:各类样本要分别盛装于容器中,包装固定,及时冷藏保存。样本不要加防腐剂,若为防止腐败必须加用时,可加乙醇,并附一瓶所用乙醇样品作对照。福尔马林是用于固定样本以便病理检查,不能用于毒物鉴定分析的样本中。

3.含病原体样品的运送:运送标本时最安全的方式是用由三个包装层对包装物进行三层包装。原始的容器要求能防漏,可盛容量不大于500ml。在原始容器与第二层包装之间应放置足以吸附可能的漏液的吸附材料,并辅以第二层防漏包装。如果在一个第二层包装中安放了几个易碎的原始容器,那么,这些容器应该进行独立包装或分开以防互相碰撞。第三层外包装必须符合标准,如果要空运,一个完整的包装其整个外部最小尺寸不能小于10cm,每个包装中标本量不超过4kg或4L。每个包装标本中所含的感染物不应超过50g

或50ml。运输标本的外包装必须有明确的标签,标明寄送人和接收人的详细联系方式、包装日期和运输日期等。地面运送标本时注意将装有标本的箱子牢牢固定在交通工具上,车上还应备有吸水材料、消毒剂、手套、口罩、护目镜、密封防水的废弃物容器等防护用品。为避免路途颠簸引起标本溶血,可在运送前分离血清。

4.化学因子或毒物样品的运送:大多数样本都可以常温下运送,对需要特殊条件运送的样本要专门标出,需要冷藏的可以根据冷藏温度和运送所需时间决定用冷藏箱、车载冷柜等方式。运送毒性高的环境样本,除在保障运送途中完整外,要严防泄漏,污染环境。为防止在运输过程中的意外情况,要制定应急预案,对剧毒化学品要专人押运。

(四)样品检测结果的判读原则

对检测结果进行正确判读应注意如下几点:①流行病学调查资料的可靠性;②样品采集时间是否恰当,样品量是否足够用于检测,样品保存和运送条件是否恰当;③检验方法的灵敏度和特异性如何?应详细了解检测过程和结果,尽量得到原始数据或图谱,对有结论性质的报告,分析其合理性和可靠性。

(完整版)食品微生物检验教案第三章食品检验样品的采集和处理

第三章食品检验样品的采集和处理 一、样品的采集与处理 食品检验样品采集的原则: 1、所采样品应具有代表性 每批食品应随机抽取一定数量的样品,再生产过程中,再不同时间内各取少量样品予以混合。固体或半固体的食品应从表层、中层和底层、中间和四周等不同部位取样。 2、采样必须符合无菌操作的要求,防止一切外来污染 一件用具只能用于一个样品,防止交叉污染。 3、再保存和运送过程中应保证样品中微生物的状态不发生变化 采集的非冷冻食品一般在0—5度冷藏,不能冷藏的食品立即检验。一般在36h内进行检验。 4、采样标签应完整、清楚 每件样品的标签须标记清楚,尽可能提供详尽的资料。 在食品的检验中,所采集的样品必须具有代表性,即所取样品能够代表食物的所有部分。如果采集的样品没有代表性,即使一系列检验工作非常精密、准确,其结果也毫无价值,甚至会出现错误的结论。食品因加工的批号、原料情况(来源、种类、地区、季节等)加工方法、保藏条件、运输、销售中的各环节及销售人员的责任心和卫生认识水平等无不影响着食品的卫生质量,因此要根据一小份样品的检验结果去说明一大批食品的质量或一起食物中毒的性质,就必须周密考虑,设计出一种科学的取样和样品制备方法。而采用什么样的取样方案主要取决于检验的目的,目的不同,取样的方案也不同。检验的目的可以是判定一批食品合格与否,也可以是查找食物中毒病原微生物,还可以是鉴定畜禽产品是否有人畜共患的病原体。目前国内外使用的取样方案多种多样,如一批产品按百分比抽样,才若干个样后混合在一起检验;按食品的危害程度不同抽样等。不管采取何种方案,对抽样代表性的要求是一致的。最好对整批产品的单位包装进行编号,实行随机抽样。 (一)样品的种类 样品可分为大样、中样、小样三种。大样指一整批;中样是从样品各部分取的混合样,一般为200g;小样又称为检样,一般以25g为准,用于检验分析。 (二)样品的采集 采样必须在无菌操作下进行。 采样的工具,如探子、铲子、匙、采样器、试管、广口瓶、剪子和开罐器等,必须是无

血液样本的采集 运输 处理 保存

艾滋病筛查实验室标准操作规程血液样本的采集、编号、运 输、处理、保存 sop 版 本号:第五版 标准操作规程(SOP) 编号:DZJY/ZY450-01 题目:血液样本的采集、编号、运输、处理、保存 版本:第五版 作者:曲文才 日期:2010/05/20 页数:3 联系人:曲文才 SOP 1 版本号:第五版 艾滋病筛查实验室标准操作规程血液样本的采集、编号、运 输、处理、保存sop

版本号:第五版 一、目的 确保样品的采集、运输、处置、保存得到有效的管理, 保证样品的良好、完整、不被 污染、且不污染环境, 样品在检测前保存完好、完整, 编号清晰。保证分析数据、血样 的准确性和具有可追溯性。 二、范围 适用于 HIV实验室样品的采集、运输、处置、保存。 三、责任 操作人员严格按要求执行。 四、定义 无 五、背景 本 SOP 是为配合 HIV实验室检测,现场样品从采集到检测前的工作而制定的, 以确保 检测样品良好、完整、不被污染、且不污染环境。 六、程序 1、采集 (1) 所需材料 : 乳胶手套, 工作服, 帽子, 口罩, 注射器, 止血带, 医用酒精棉球, 无菌棉签, 医用酒精, 碘伏, 采血枕, 一次性纸垫, 试管及试管架。 (2) 采血方法 : ●采血员洗手, 戴手套, 帽子, 口罩。 ●70% 酒精清洁采血工作台面, 铺上一次性纸垫。 ●在采血枕上铺上一次性纸垫。 ●让调查对象坐在凳子上, 露出一只胳膊直至上臂, 袖口不可过紧。 ●将胳膊放在采血枕上, 掌心向上, 用止血带在上臂扎紧, 肘部应低于心脏水平线。 ●在肘前区寻找鼓起的静脉,并且该静脉与周围组织固定良好,触摸该静脉,确认是静 脉。 ●用碘伏成同心圆状向外消毒, 不得用手接触己消毒部位。 ●用酒精成同心圆状向外消毒。 ●待酒精彻底干燥后, 让调查对象用力握拳。 ●沿血流方向, 以与前臂成 150°将针头插入静脉内。 ●血液流入采血管, 松开止血带, 让调查对象慢慢松开拳头, 待血液到达采血量要求 后, 将采血针头拔出的同时用无菌棉球按住采血伤口。 ●采血管编号后直立、按顺序插入试管架内。 ●嘱咐调查对象按住棉球 5 分钟以上, 抬起胳膊使之高于心脏水平 ; 将针头弃入金 属制容器桶, 一次性纸垫等放入垃圾桶。 (3) 血清采集 ●取静脉血3ml,室温放置2小时,待血液凝固、血块收缩后,3000rpm离心15分钟, 吸出血清备用,编号登记。 ●抗凝血样品采集:用注射器抽取静脉血,转移至加有抗凝剂的试管内,反复 SOP 2 版本号:第五版

实验样品采集运输保存方法

1.R N A实验样品采集、保存方法 使用范围及样品量 类别:Microarray Service;Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 样本量: 样本样本量 哺乳动物培养细胞样品(悬浮细胞)1*107个 哺乳动物培养细胞样品(贴壁细胞)15cm2 植物组织样品100mg-1g,根据植物不同部位的组织决定组 织需要量,尽可能多些,但不必超过1g 动物组织样品 新鲜组织样品 A. 使用RNAlater试剂 取新鲜组织(注:动物死亡后尽快在10min内取材),组织块以PBS或生理盐水清洗干净,所用组织必须切至厚度在一下,然后放入装有5倍体积RNAlater的离心管(或冻存管)中。 4度孵育过夜,此时样品管需要横置以便组织块充分接触到RNAlater,然后转入-20中保存,样品在-20不会冻结,但溶液中可能会有一些晶体出现,这并不影响后续的RNA抽提。 B. 使用Trizol试剂 取新鲜组织(1min以内),组织块以PBS或生理盐水清洗干净,每50-100mg组织加入1ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品,最好冰上进行操作。

匀浆的裂解液4度短期保存(1month),-20或者-70度长期保存。 冻存组织 生物体死亡后尽快(10min以内)切取新鲜组织,并以PBS或生理盐水清洗干净切成小块;培养液倒入离心管中,离心沉淀细胞,弃去上清液。 细胞沉淀(1*107个)中加入1ml Trizol裂解液 反复吸打几次后,目视可见细胞层溶液完全 -70保存 贴壁细胞 从培养容器中吸出并弃去培养液 培养瓶直接加入Trizol试剂,Trizol用量与细胞贴壁面积有关,15cm2细胞贴壁面积加入1mlTrizol。 反复吸打几次后,目视可见细胞层溶解完全。 -70度保存。 植物组织样品 准确取得所需新鲜组织后,如有必要可用PBS清洗干净,将所用组织切碎,装入冻存管中或者用锡箔包裹好。 立即投入液氮中保存。 2.血液类样品采集、保存方法 适用范围及样品量 全血/血细胞:Microarray Service;Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 血清/血浆:Microarray Service;PCR Array& PCR Service

第二章--食品检验样品的采集与处理

第二章食品检验样品的采集与处理

(1学时)教学基本信息 教学进度计划

课堂教学计划(1学时)

第二章食品检验样品的采集与处理 食品微生物检验是根据一小部分样品的结构对整批食品作出判断的。 本单元讲述了无菌取样操作,在讨论无菌取样的原因和采集方法之前,必须要理解“无菌的”的这一术语,“无菌”一般用于取样中,意味着取样过程中,避免操作引起污染。一个无菌样品的采集,应该通过这样一种方式,即:在收集过程中,本身应避免污染,然后放入消毒容器中。 无菌样品的采集基本是为了支持、针对工厂的卫生条件状况的检查结果。 第一节食品检验样品采集的原则 一、检验前的准备工作: 1.包装无菌取样的工具: 拥有正确的采取产品或加工过程的无菌取样器械工具是至关重要的的。除非使用合适的采集工具,否则样品的完整性会被怀疑,甚至样品毫无意义。为了避免没有合适的取样工具,建议建立一个无菌取样的分析清单,来收集取样工具。如果可能盛样品的容器在最初进入加工区之前应当被预先标识,象样品号、取样日期、取样人等。这样可以使在不同的工厂条件下的样品取样更为方便一些。附加样品号码一般在样品采集中被正式确定下来,因此不用预先标明。 人员的工具设施,象工作服、发网或消毒处理过的清洁的鞋靴必须具备有助于证明采集者没有污染到食物产品或样品。 2.生产线样品In-Line Samples: 生产线样品一般是指原材料,原料生产用水、包装材料或其他任何使用在生产线的材料。 生产线样品的采集一般用来确定细菌污染源是否来自于原材料或加工序中的某些地方。 3.环境样品: 环境样品用细菌拭子,(注:细菌拭子样品不能给出/测出微生物的定时结果,因为样品非常小,显著微生物会经常丢失),棉拭子的取样部位一般来自于食品接触面,地板喷溅物。墙壁、顶部管道和检验中考察的其他潜在污染源程序,并且记录可能的联系,在环境样品来源和食物产品的污染方面,可以使样品具有意义,并且是提倡这样做的,例如: 地面喷溅水:工人从有地面污水的地方走过后又回到加工区域吗? 墙壁:墙壁上面和在制品上面有昆害虫吗? 天花板:冷凝物或喷漆有无掉落到产品上或被发现与产品相接触? 4.某些准备

实验一 食品样品的采集与保存

实验一食品样品的采集与保存 1.实验目的 掌握苹果、青菜、大米、大排等几种食品原料类型的采集和保存方法; 理解采样的注意事项。 2.实验原理 2.1采样原理 采样是指从整批被检食品中抽取一部分有代表性的样品,供分析化验用。采样是食品分析的首项工作和重要环节。同一类的食品成品由于品种、产地、成熟期、加工或保藏条件不同,其成分及其含量有相当大的差异。同一分析对象,不同部位的成分和含量也可能有较大差异。因此必须掌握科学的采样和保存技术。否则,即使以后的样品处理、检测等一系列环节非常精确、准确,其检测的结果亦毫无价值,以致导出错误的结论。 2.2采样原则 1. 代表性 在大多数情况下,待鉴定食品不可能全部进行检测,而只能抽取其中的一部分作为样品,通过对样品的检测来推断该食品总体的营养价值或卫生质量。因此,所采的样品应能够较好地代表待鉴定食品各方面的特性。若所采集的样品缺乏代表性,无论其后的检测过程和环节多么精确,其结果都难以反映总体的情况,常可导致错误的判断和结论。 2. 真实性 采样人员应亲临现场采样,以防止在采样过程中的作假或伪造食品。所有采样用具都应清洁、干燥、无异味、无污染食品的可能。应尽量避免使用对样品可能造成污染或影响检验结果的采样工具和采样容器。 3. 准确性 性质不同的样品必须分开包装,并应视为来自不同的总体;采样方法应符合要求,采样的数量应满足检验及留样的需要;可根据感官性状进行分类或分档采样;采样记录务必清楚地填写在采样单上,并紧附于样品。 4. 及时性 采样应及时,采样后也应及时送检。尤其是检测样品中水分、微生物等易受环境因素影响的指标,或样品中含有挥发性物质或易分解破坏的物质时,应及时赴现场采样并尽可能缩短从采样到送检的时间。 2.3四分法采样

样品的采集及注意事项

样品的采集及注意事项 一、采样前准备工作 1、文件类:委托书、文件、抽样目录; 2、现场用品:抽样员证、三种表格、公章、印泥、所用类目抽样细则单独列出; 3、办公设备:电脑、打印机、插线板、白纸; 4、其他:抽样号、封签、现金。 二、与当地食药部门沟通 出示委托书、文件、抽样目录。 嘉峪关:市场监督管理局510,联系人:何科长、李科长; 酒泉:市局综合科谢科长、李科长出函,再去相应县(市、区)局沟通; 三、样品的采集 概念:从大量的分析对象中抽取具有代表性的一部分样品作为分析化验样品,这项工作即称为样品的采集或采样。 遵循的原则:第一,采集的样品要均匀一致,有代表性,能够反映被分析食品的整体组成、质量和卫生状况;第二,在采样过程中,要设法保持原有的理化指标,防止成分逸散或带入杂质。 1、抽样前向负责人出示抽样员证,并索要其单位营业执照及许可证; - 1 -

2、抽样时注意所选物品生产许可证中间4位是否与所抽类目要求一致,按照细则要求抽取相应数量,散装食品根据比例分成检验和留样两包。还要注意生产日期与保质期,临近过期的物品不应抽取,应至少有三个月的有效期。抽取的样品应是同一批次; 3、分类并贴抽样号,每种预留一个抽样号; 4、电脑系统登记、打出抽样单,签字、盖公章。注意登记清楚被抽样单位信息和样品信息; 5、填写三类表格,填好盖章后,请被抽样单位负责人分别在表格、抽样单及封样签相应位置签名盖章,无公章可按手印。 6、封样。将每种样品分成检验和留样两包,比例基本为2:1,在留样外包装上粘贴前面预留的抽样号,并在封口处粘贴封样签。 7、拍照。货架、营业执照、许可证以及负责人和抽样人员在封好的样品旁进行拍照。 四、样品的保存及运输 易变质食品应尽可能当天寄出,最好提前准备好冰块或冰袋,在每批运送的箱子上做好标记,便于下一步工作的顺利进行。 五、需要注意的事项 1、抽检前须先了解抽取样品的有关规定。每种产品均有其不同的执行标准,不同的产品执行标准,样品抽取的工序和要求 - 2 -

《样品采集、保存和管理作业指导书》

样品采集和保存 一样品采集和保存 ①氨氮:水样采集在聚乙烯瓶或玻璃瓶内,要尽快分析。如需保存,每升样品中应加1ml 浓硫酸,并在4下贮存,用酸保存的样品,测定时用氢氧化钠将PH值调至7左右。 ②溶解氧:样品应采集在细口瓶中,测定就在瓶内进行。试样充满全部细口瓶。不得有气 泡。 ③化学需氧量:水样采集于玻璃瓶中,应尽快分析。如不能立即分析时,应加入硫酸至PH <2,置4℃保存,时间不能多余5天。采集水样的体积不得少于100ml。 ④悬浮物:所用聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶要用洗涤剂洗净。在采样之前,再用即将采集的水 样清洗三次。然后采集水样500—1000ml,盖严瓶塞。 ⑤总磷:采集500ml水样后加入1ml硫酸调节样品的PH值,使之低于或等于1,或不加 任何试剂于冷处保存。 ⑥PH值:最好现场测定。否则应在采样后把样品保持在0—4℃,并在采样后6小时内进 行测定。 ⑦水温:最好现场测定。否则,应在采样后把样品保持在0~4,并在采样后6h之内进行测 定 ⑧氯化物:采集代表性水样,放在干净且化学性质稳定的玻璃瓶或聚乙烯瓶内。保存时不 必加入特别的防腐剂 ⑨色度:所用于样品接触的玻璃器皿都要用盐酸或表面活性剂溶液加以清洗,最后用蒸馏 水或去离子水洗净、沥干。样品采集在容积至少为1L的玻璃瓶内,在采样后尽快进行测定。 ⑩总氮:将采集好的样品储存在聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶中,用浓硫酸调节PH值至1~2,常温下可保存7天。储存在聚乙烯瓶中,-20℃冷冻,可保存一个月。 ⑾五日生化需氧量:采集的样品应充满并密封于棕色玻璃瓶中,样品量不小于1000ml,在0~4℃的暗处运输和保存,并与24小时内尽快分析。24小时不能分析可冷冻保存。 ⑿粪大肠菌群:采样瓶使用500ml已灭菌的磨口玻璃塞广口瓶,采集水样时应避免瓶盖及瓶子颈部受杂菌污染。灭菌后的采样瓶2周内未使用需重新灭菌 采集好的水样需放置约4℃冷藏设备内保存运输,一般要求在采集4小时内测定。

血液样本的采集与保存

实用帖血液样本的采集与保存 在脊椎动物中,外周血一直被认为是侵害性较小、富有价值的检测样本。在许多生物样 本库中,由于血液样本的常规收集、处理及保存方法简便、成本低且富含可利用成分和生物分子,因此是进行多种项目分析的理想实验材料。然鹅,科研僧们历经千辛万苦最后发现获 得的血液样本RNA降解了。。。。额,这就很惆怅了。 所以呢,在样本采集、处理及储存过程中必须格外注意,从根本上确保获得高质量的 RNA 今天小编和大家一起来聊一聊在进行RNA实验时血液样本如何进行收集与保存。 血液的组成 首先来熟悉一下血液的组成。 人类的血液由血浆和血细胞组成。其中血浆约占血液的55%是水,糖,脂肪,蛋白质, 钾盐和钙盐等的混合物。血细胞约占血液的45%主要分为红细胞、白细胞和血小板。而哺 乳动物成熟的红细胞和血小板是无核的。

11^ 血浆和血清 血浆是离开血管的全血经抗凝处理后,通过离心沉淀,所获得的不含细胞成分的液体, 其中含有纤维蛋白原,不含游离的 Ca 2+ ,若向血浆中加入 ,血浆会发生再凝固。 血清是离体的血液凝固之后, 经血凝块聚缩释出的液体, 其中已无纤维蛋白原, 游离的Ca 2+ ,血清中少了很多的凝血因子但多了很多的凝血产物。 不加卿赛 mm BW. 血囲 其他有形咸分 但含有 血浆 有形成分

采血管的选择 采血管,大家都不陌生,去医院抽个血,一定会用到采血管,那么问题来鸟,这么多颜 色的采血管,有什么区别呢?下面小编来给大家介绍一下采血管的分类及不同颜色试管帽代 表的含义。 1. 蓝色头盖管(含有柠檬酸钠抗凝剂的采血管) 2. 黑色头盖管(含有0.109mol/L 柠檬酸钠) 3. 紫色头盖管(含有乙二胺四乙酸以及其盐的采血管 ) 4. 绿色头盖管(肝素抗凝管) 5. 灰色头盖管(含有草酸钾/氟化钠) 6. 橘红色头盖管(促凝管) 7. 金黄色头盖管(含有惰性分离胶及促凝剂的采血管) 8.红色头盖管(无添加剂的干燥真空管) f l m ■ M M ■ ■ 机 ■ 忡-M M

样品采集保存和运输

基因芯片样品的采集、保存和运输 基因芯片实验、microRNA芯片实验、 PCR芯片实验和实时定量PCR实验的样品准备 一、动物组织样品保存与运输(每张芯片需50-100mg组织) 1、新鲜组织样品的保存与运输 A、使用RNA later试剂 →取新鲜组织(注:生物体死亡后尽快在10分钟内取材),组织块以PBS或生理盐水清洗干净,所用组织必须切至厚度在 0.5 cm以下(长宽不限),然后放入装有5倍体积RNA later的离心管(或冻存管)中。 →4℃孵育过夜,此时样品管需要横置以便组织块充分接触到RNA later,然后转入- 20℃中保存。样品在- 20℃不会冻结,但是溶液中可能有一些晶体出现,这并不影响后续的RNA抽提。冻存样品也可以反复冻溶,其RNA含量和完整性不受影响。 →RNAlater处理的标本可用常规冰袋4℃低温运输(无需使用干冰- 70℃运输)。 B、使用Trizol试剂 Trizol试剂可抑制RNA酶活性,破坏细胞膜结构以裂解细胞释放出RNA。 →取新鲜组织(注:生物体死亡后1分钟内取材料并保存好),组织块以PBS或生理盐水清洗干净,每50~100 mg组织加1 ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品,操作最好在冰上进行。 →匀浆的裂解液4℃短期保存(1个月),-20度或- 70℃长期保存。干冰运输,短期(5天以内)冷藏(4℃)运输亦可。 2、冻存组织的保存与运输 生物体死亡后尽快(最好在10分钟内)切取新鲜组织,以PBS或生理盐水清洗干净切为小块,立刻放入液氮中冷冻2-3小时后可转入-70℃冰箱保存或着一直保存在液氮中。冻存组织可放入干冰中直接运输,或者以Trizol 4℃下匀浆:冻存的组织块以液氮研磨后加Trizol或直接加Trizol以电动匀浆器匀浆,匀浆的裂解液干冰运输或短期(5天以内)冷藏(4℃)运输。 二、哺乳动物培养细胞样品采集、保存与运输——使用Trizol试剂(不建议使用RNAlater) 1、悬浮细胞 →悬浮细胞培养液倒入离心管中,离心沉淀细胞,弃去上清液。 →细胞沉淀(1×107个细胞)中加入1 ml的Trizol裂解液。 →反复吸打几次后,目视可见细胞层溶解完全。- 70℃保存或干冰运输。注:Trizol处理的标本冷藏(4℃)运输,短期(5天以内)亦可。 2、贴壁细胞 →从培养容器中吸出并弃去培养液。 →培养瓶中直接加入Trizol试剂,Trizol用量与细胞贴壁面积有关,约15 cm2细胞贴壁面积加入1 ml Trizol。 →反复吸打几次后,目视可见细胞层溶解完全。- 70℃保存或干冰运输。注:Trizol处理的标本冷藏(4℃)运输,短期(5天以内)亦可。 注: 1、上海市内细胞样品也可以直接常温运送,运送时在培养瓶中装满培养液并以封口膜封口,然而某些实验条件中包含时间限制,建议以Trizol处理。 2、所使用的1.5 ml冻存管或离心管、枪头等必须高温灭菌,装好样品后管口需要以封口膜封好。 3、如需干冰,快递运输所用干冰量至少为8公斤,且运输用泡沫箱需用封箱带密封。

实验样品采集运输保存方法修订版

实验样品采集运输保存 方法修订版 IBMT standardization office【IBMT5AB-IBMT08-IBMT2C-ZZT18】

1. RNA实验样品采集、保存方法 1.1 使用范围及样品量 类别:Microarray Service;Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 样本量: 样本样本量 1*107个 哺乳动物培养细胞样品(悬浮细 胞) 15cm2 哺乳动物培养细胞样品(贴壁细 胞) 植物组织样品100mg-1g,根据植物不同部位的组织 决定组织需要量,尽可能多些,但不必超过 1g 1.2 动物组织样品 1.2.1 新鲜组织样品

A. 使用RNAlater试剂 取新鲜组织(注:动物死亡后尽快在10min内取材),组织块以PBS或生理盐水清洗干净,所用组织必须切至厚度在0.5cm一下,然后放入装有5倍体积RNAlater的离心管(或冻存管)中。 4度孵育过夜,此时样品管需要横置以便组织块充分接触到RNAlater,然后转入-20中保存,样品在-20不会冻结,但溶液中可能会有一些晶体出现,这并不影响后续的RNA 抽提。 B. 使用Trizol试剂 取新鲜组织(1min以内),组织块以PBS或生理盐水清洗干净,每50-100mg组织加入1ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品,最好冰上进行操作。 匀浆的裂解液4度短期保存(1month),-20或者-70度长期保存。 1.2.2 冻存组织 生物体死亡后尽快(10min以内)切取新鲜组织,并以PBS或生理盐水清洗干净切成小块;培养液倒入离心管中,离心沉淀细胞,弃去上清液。 细胞沉淀(1*107个)中加入1ml Trizol裂解液 反复吸打几次后,目视可见细胞层溶液完全 -70保存 1.3 贴壁细胞

食品样品的采样步骤

. 食品样品的采样 现场采样所需的物品准备: 样品种类、采样方法、采样数量、采样标签、送检 一、现场采样所需的物品准备: 1、采样工具:酒精灯、酒精棉球、灭菌棉拭子、消毒纱布、镊子、长柄勺、吸管、吸耳球、捡到、火柴、皮筋、记号笔、标签纸等; 2、样品容器:无菌塑料袋、广口瓶、运送培养基试管、灭菌平皿、一次性小试管、样品冷藏设施等; 3、防护用品:白色工作服或隔离衣、医用手套、口罩、帽子等; 4、取证工具:照相机、摄像机、录音机,采样前需要查看的其他相关专业参考资料。 二、样品的种类:食品样品依包装形式的不同,可分为预包装食品和散包装食品,预包装食品,经预先定量包装,或装入灌入容器中,向消费者直接提供的食品;散装食品,凉菜(含沙拉、果盘、糕点、热加工、冷加工、裱花蛋糕、生食半生食海产品)、冷冻饮品、鲜榨果蔬汁饮料、盒饭等; 三、采集方法:在食品样品采集的全过程中,应该按照国家标准中规定的方式方法和要求进行,其内容详见: 1、GB/T4789.1-2003(食品卫生微生物检验) 2、GB/T5009.1-2003(食品卫生检验方法理化部分) 3、GB14934-94(食<饮>具消毒卫生标准) 采样要无菌操作,以防止外界微生物的污染和病原菌扩散 无菌采样基本步骤: 1、工作人员采样前应对手进行消毒,然后对采样样品开口处及周围消毒后,方可将容器打开; 2、使用灭菌工具和无菌采样容器采样; 3、盛有样品的采样容器要在火焰下燃烧瓶口,加盖封口。 四、采集的数量:采样的数量应能反映该食品的质量和满足检验项目对样品量的需要,兼顾考虑理化检验和生物检验两个方面,所采样品应一式三份,分别供检验、复查、备查和仲裁使用,每份样品不小于检验需要量的两倍,以供检验、备查之用 五、样品标签:采样后每件样品必须贴上标签,明确表明品名、来源、数量、采样地点、采样人及采样时间等内容。 六、样品送检:采样结束,应按规定合理保存和运送样品,样品送到微生物检验室,应越快越好,一般要求4小时内送检到实验室,如果路途遥远,可将不须冷冻样品保持在1-5度环境,如冰壶,如需保持冷冻状态,则需保存在泡沫或冷冻箱内,箱内放有干冰,送检时必须认真填写申请单,以供检验人员参考, 如有侵权请联系告知删除,感谢你们的配合! 精品

水质采样及样品保存资料

水质采样及样品保存

水质采样作业指导 容器清洗 Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ表示四种洗涤方法。如下: Ⅰ:洗涤剂洗一次,自来水洗三次,蒸馏水洗一次。对于采集微生物和生物的采样容器,须经160℃干热灭菌2 h。经灭菌的微生物和生物采样容器必须在两周内使用,否则应重新灭菌。经121℃高压蒸汽灭菌15 min的采样容器,如不立即使用,应于60℃将瓶内冷凝水烘干,两周内使用。细菌检测项目采样时不能用水样冲洗采样容器,不能采混合水样,应单独采样2 h后送实验室分析。Ⅱ:洗涤剂洗一次,自来水洗二次,(1+3)HNO3荡洗一次,自来水洗三次,蒸馏水洗一次。 Ⅲ:洗涤剂洗一次,自来水洗二次,(1+3)HNO3荡洗一次,自来水洗三次,去离子水洗一次。 Ⅳ:铬酸洗液洗一次,自来水洗三次,蒸馏水洗一次。如果采集污水样品可省去用蒸馏水、去离子水清洗的步骤。 水质采样 水质 pH 采集容器:聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存:最好现场测定。最少采集250mL,0~4℃冷藏,可保存6h。 水质色度、浊度、电导率 采集容器:聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存:最少采集250mL,可保存12h。尽量现场测定。

水质悬浮物(SS) 采集容器:聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存:最少采集500mL,4℃暗处冷藏,最长不得超过7d。 注:漂浮或浸没的不均匀固体物质不属于悬浮物质,应从水中除去。不能加入任何保护剂,以防破坏物质在固、液间的分配平衡。 水质酸度、碱度 采集容器:聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存:最少采集500mL,1~5℃暗处冷藏,酸度样品可保存30d,碱度样品可保存12h。 水质化学需氧量(COD Cr) 采集容器:硬质玻璃瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存:最少采集500mL,用H2SO4酸化,pH≤2。可保存2d。聚乙烯瓶-20℃冷冻可保存1个月,最长六个月。 水质高锰酸盐指数(COD Mn) 采集容器:硬质玻璃瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存:最少采集500mL,1~5℃暗处冷藏,可保存2d。聚乙烯瓶-20℃冷冻可保存1个月。尽快分析。 水质五日生化需氧量(BOD5) 采集容器:溶解氧瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存:最少采集250mL, 1~5℃暗处冷藏,可保存12h。聚乙烯瓶-20℃冷冻可保存1个月。 水质溶解氧

样品的采集与处理

样品的采集与处理 样品的采集 样品可分为检样、原始样品、平均样品、试验样品。 由组批或货批中所抽取的样品称为检样。 将许多份检样综合在一起称为原始样品。 将原始样品按照规定方法经过混合平均,均匀地分出一部分,称为平均样品。平均样品一般不少于1kg。 平均样品经过混合分样,根据需要从中称取一部分作为试验用的样品,称为试验样品,简称试样。 对于粮食、油料等固体颗粒状物品,由原始样品充分混合均匀,进而分取平均样品或试样的过程,称为分样。 ⑴采样的要求及注意事项 采样时必须注意样品的生产日期、批号、代表性和均匀性,一式3份供检验、复验与备查用,每一份不少于0.5kg,具体规定如下。 ①外地调入的食品应结合运货单、兽医卫生人员证明、商品检验机关或卫生部门的化验单,了解起运日期、来源地点、数量、品质及包装情况。 ②液体、半流体食品,若用大桶或大罐盛装着,应先行充分混匀后再采样。样品应分别盛装在3个干净的容器中,盛装样品的容器不得含有待测物质及干扰物质。 ③粮食及固体食品应自每批食品的上、中、下三层中的不同部位分别采取部分样品混合后按四分法对角取样,再进行几次混合,最后取有代表性的样品。 ④肉类、水产等食品应按分析项目要求分别采取不同部位的样品或混合后样品。 ⑤罐头、瓶装食品或其他小包装食品应根据批号随机取样。 ⑥要认真填写采样记录。写明采样单位、地址、日期、样品批号、采样条件、包装情况、采样数量、检验项目及采样人。 ⑦样品应按不同检验项目妥善包装、运输、保管,送实验室后,应立即检验。 样品的处理 样品制备的目的是为了保证样品的均匀性,使平均样品在拣取任何部分进行检验时都能代表全部样品的成分,以求得正确的结果。 制备时应注意以下几点: ①对于食品类原料,应先去除去可食部分,然后在进行处理。 ②制备过程中注意不要使物料组分发生变化。 ③防止外来物质对物流的污染。 ④防止鲜活物质中因酶的作用而导致物料组分的变化。 ⑤制备好的样品应尽快地进行检验。 样品预处理的常用方法分为以下几种。 ①有机物破坏法,又分为干法灰化法和湿法灰化法。选择的原则应是: a.方法简便,使用试剂越少越好。 b.方法耗时间越短,有机质破坏越彻底越 好。c.被测元素不受损失,破坏后的溶液容易处理,不影响以后的测定步骤。

现场样品采集,保存,运输

现场样品采集、保存和运输 在现场调查中,很重要的—项工作是正确采集、妥善保存、和尽快送检样品,以及随后对样品检测结果进行正确的判读和分析。 (一)样品采集的目的、作用和原则 现场调查的目的主要可分为两大类:一是查明突发公共卫生事件或疾病暴发流行的原因,二是进行卫生质量监测和评价。应该遵循如下总原则: 1.注意生物安全:需要采取的具体措施包括如下两方面:①个人防护:采样时要戴手套,接触不同患者时不能重复使用一副手套,以免交叉感染,并注意手套是否有小的破损;采样中尽可能穿防护服;采样后消毒要穿戴防护服和厚橡胶手套,对污染区表面和溢出物进行消毒;如怀疑有高度传染力的病原,需使用护目镜、呼吸面罩等;为了防止意外,确保安全,采样应备有急救包。②恰当处理污染废弃物:污染的可废弃设备和材料应先消毒后废弃;用过的针头妥善收集消毒,并按规定销毁或损毁;在暴发疫点使用过的防护服、设备、材料等使用化学消毒剂消毒后再清洗,特殊情况也可在现场建简易焚烧炉焚烧。 2.注意采样的代表性或针对性:以卫生质量评价为目的的样品采集,影响采样代表性的因素包括采样量、采样部位、采样时间、采样的随机性和均匀性,以及按批号抽样。以查明突发公共卫生事件或疾病暴发流行的原因为目的的样品采集,不要求样品的代表性,强调针对性,尽可能采集病原微生物含量最多的部位和足够检测用的样本。 3.注意采样时间和种类:以分离培养细菌为目的,则应尽量在急性发病期和使用抗生素之前采集标本,如果已使用抗生素,采样和分离培养最好加入相应的中和剂(中和样品中残存的抑菌物质)或进行其他处理。作病毒分离和病毒抗原检测的标本,应在发病初期和急性期采样,最好在发病1~2天内采取。 4.注意避免采样引入新的污染或者对微生物的杀灭因子:所有采样用具、容器需严格灭菌,并以无菌操作采样。对微生物样品,应避免采样时对微生物的杀灭作用和引入新的抑菌物质,如容器是否有消毒剂的残留,或使用刚烧灼未冷却的采样工具。 5.注意对样品的详细标记:用于卫生质量评价的样品,应标明样品名称、编号、采样时间、采样量、采样者、检测项目等。 (二)样品采集的方法和注意事项 1.用于微生物分离培养或抗原检测的生物性样品 (1)咽拭子、洗漱液或痰液标本: ①咽拭子的采集:让患者仰头张口,用压舌板压舌,用无菌棉拭子在咽部涂抹数次后,放入含2ml Hank液的试管中,棉拭子接触手的部分应及时折断或剪断去掉,然后盖紧试管。 ②洗漱液的采集:用生理盐水或自配淡盐水约15ml作为洗漱液,让患者咳嗽后,倒

第二章、食品样品的采集与处理

第二章样品的采集、制备及保存(2学时) 教学内容: 样品的采集原则和方法,样品的制备与预处理方法,样品的保存。 教学要求: 1、掌握正确采样的意义、正确采样的原则、采样的一般方法。 2、理解样品制备与预处理目的和方法。 3、了解样品的保存的目的和方法。 重点: 样品的采集,样品制备与预处理。 难点: 样品制备与预处理。 第一节样品的采集 一、采样的目的意义 样品的采集简称采样(又称检样,取样,抽样等),是为检验而从大量物料中抽取的一定数量具有代表性的样品。 分析结果必须能代表全部样品,因此必须采取具有足够代表性的“平均样品”,并将其制备成分析样品,如果采集的样品不具有代表性,那么即使分析方法再正确,也得不到正确的结论。因此,正确的采样在分析工作中是十分重要的。 首先正确采样,必须遵守两个原则:第一,采集的样品要均匀,有代表性,能反应全部被测食品的组份,质量和卫生状况;第二,采样过程中要设法保持原有的理化指标,防止成分逸散或带入杂质。 其次食品采样检验的目的在于检验式样感官性质上有无变化,食品的一般成分有无缺陷,加入的添加剂等外来物质是否符合国家的标准,食品的成分有无搀假现象,食品在生产运输和储藏过程中有无重金属,有害物质和各种微生物的污染以及有无变化和腐败现象。 二、样品的分类 按照样品采集的过程,依次得到检样、原始样品和平均样品三类。 检样:由组批或货批中所抽取的样品称为检样。检样的多少,按该产品标准中检验规则所规定的抽样方法和数量执行。 原始样品:将许多份检样综合在一起称为原始样品。原始样品的数量是根据受检物品的特点、数量和满足检验的要求而定。 平均样品:将原始样品按照规定方法经混合平均,均匀地分出一部分,称为平均样品。从平均样品中分出3份,一份用于全部项目检验;一份用于在对检验结果有争议或分歧时作复检用,称做复检样品;另一份作为保留样品,需封存保留一段时间(通常是1个月),以备有争议时再作验证,但易变质食品不作保留。 三、采样的一般方法 样品的采集一般分为随机抽样和代表性取样两类。 随机抽样,即按照随机原则,从大批物料中抽取部分样品。操作时,应使所有物料的各个部分

样品采集与运输管理程序

样品采集与运输管理程序 1 目的 对检验申请、患者的准备、临床标本的采集与运输以及样品在实验室内的传输过程进行控制,以保证检验前样品的质量。 2 范围 适用于检验科受理的标本。 3 职责 3.1 临床医师负责检验的申请,申请单的格式由技术管理层和医院医教科共同 制定。 3.2 检验科主任负责组织人员编写检验标本采集手册。 3.3 医护人员和检验人员均负责指导患者如何正确留取标本。 3.4 门诊抽血人员和病房护理人员负责临床标本的采集,特殊标本由临床医生采集。 3.5 检验科标本收集人员负责定时到临床各科室收集标本和运输;急诊检验标本和值班时采集的标本由临床科室护理人员直接送检验科。 3.6 相关检验人员负责样品在实验室内的传输。 4 工作程序 4.1 检验申请 4.1.1 检验项目选择 临床医师根据病人病情需要和检验项目的敏感度、特异性来正确选择检验项目。检验科人员可为其提供检验项目的咨询,监督实验室服务对象选择的检验项目是否明确,实验室检验项目能否满足实验室服务对象的要求。 4.1.2 检验申请表 检验申请表属于合同性文件,实验室应事先将所开展的检验项目和完成时间等事宜和医院医教科协商一致,并制成表格供实验室服务对象参考。只要满足要求,电子检验申请表也适用。检验申请表应定期进行评审。本实验室的检验申请表包括以下内容:

a)患者的唯一性标识,如门诊病人的诊疗卡号、住院病人的住院号; b)患者的姓名、性别、出生日期; c)患者就诊或住院的科别、床号; d) 样品的类型和原始解剖部位,如静脉抗凝血等; e)申请的检验项目或项目的组合; f)临床标本采集日期和时间; g)实验室收到样品的日期和时间; h) 申请者姓名; i) 申请日期。 4.2 病人的准备 为了使检验结果有效地用于临床,临床医护人员和检验人员应了解标本收集前影响结果的非病理性因素,如饮食、标本采集时间、体位和体力活动、病人用药等对标本采集的影响。提出要求病人予以配合和服从的内容,采取切实措施,保证采集的标本符合疾病的实际情况。 a)饮食对标本采集的影响:多数实验尤其是血液化学的测定,采血前应禁食 12h,因脂肪食物被吸收后可能形成脂血而造成光学干扰;同时食物成分 也可改变血液成分,影响测定结果的准确性; b) 标本采集时间的影响:血液中不少有机物、无机物存在周期性变化。因 此应该掌握标本采集时间,才能对每次结果进行比较。最好在同一时间采集标本,以减少由于不同时间采集标本所造成的结果波动; c)体力活动对检测结果的影响:运动会引起血液成分的改变。因此,必须嘱 咐患者在安静状态下或正常活动状态下收集标本; d) 药物影响:药物对血、尿等成分的影响是一个十分复杂的问题。某些药 物可使体内某物质发生变化,有些药物则干扰实验,因此为了得到正确 结果,必须事先停止服用某些影响实验结果的药物。临床医师在选择与 解释结果是必须考虑到药物的影响。 4.3 检验标本采集手册

食品营养与卫生实验一-食品样品的采集与制备

实习一食品样品的采集与制备 样品(sample)是指从某一总体中抽出的一部分,食品采样(sampling)是指从较大批量食品中抽取能较好地代表其总体样品的方法。食品卫生监督部门或食品企业自身为了解和判断食品的营养与卫生质量,或查明食品在生产过程中的卫生状况,可使用采样检验的方法。根据抽样检验的结果,结合感官检查,可对食品的营养价值和卫生质量作出评价,或协助企业找出某些生产环节中存在的主要卫生问题。食品采样是食品检测结果准确与否的关键,也是营养食品卫生专业人员必须掌握的一项基本技能。 (一)采样目的 食品采样的主要目的是鉴定食品的营养价值和卫生质量,包括食品中营养成分的种类、含量和营养价值;食品及其原料、添加剂、设备、容器、包装材料中是否存在有毒有害物质及其种类、性质、来源、含量、危害等。食品采样是进行营养指导、开发营养保健食品和新资源食品、强化食品的卫生监督管理、制定国家食品卫生质量标准以及进行营养与食品卫生学研究的基本手段和重要依据。 (二)采样原则 1. 代表性在大多数情况下,待鉴定食品不可能全部进行检测,而只能抽取其中的一部分作为样品,通过对样品的检测来推断该食品总体的营养价值或卫生质量。因此,所采的样品应能够较好地代表待鉴定食品各方面的特性。若所采集的样品缺乏代表性,无论其后的检测过程和环节多么精确,其结果都难以反映总体的情况,常可导致错误的判断和结论。 2. 真实性采样人员应亲临现场采样,以防止在采样过程中的作假或伪造食品。所有采样用具都应清洁、干燥、无异味、无污染食品的可能。应尽量避免使用对样品可能造成污染或影响检验结果的采样工具和采样容器。 3. 准确性性质不同的样品必须分开包装,并应视为来自不同的总体;采样方法应符合要求,采样的数量应满足检验及留样的需要;可根据感官性状进行分类或分档采样;采样记录务必清楚地填写在采样单上,并紧附于样品。 4. 及时性采样应及时,采样后也应及时送检。尤其是检测样品中水分、微生物等易受环境因素影响的指标,或样品中含有挥发性物质或易分解破坏的物质时,应及时赴现场采样并尽可能缩短从采样到送检的时间。

样品的采集和处理

第一章样品的采集和处理 1 范围 本章规定了用于人免疫缺陷病毒(HIV)检测的全血、血清、血浆、细胞、唾液、尿液以及滤纸干血斑(DBS)样品的采集和处理方法,适用于HIV抗体检测、抗原检测、核酸检测、耐药检测,CD4+和CD8+T淋巴细胞测定和HIV分离培养。 2 规范性引用文件 《艾滋病和艾滋病病毒感染诊断标准》中华人民共和国卫生行业标准 WS 293-2008 《艾滋病病毒感染者及艾滋病患者CD4+T淋巴细胞检测质量保证指南(试行)》(中国疾病预防控制中心,2006年2月) 《HIV-1病毒载量测定及质量保证指南(试行)》(中国疾病预防控制中心,2008年2月)Guidelines for Using HIV Testing Technologies in Surveillance WHO/CDS/CSR/EDC/2008 《可感染人类的高致病性病原微生物菌(毒)种或样本运输管理规定》,卫生部第45号令2006年2月1日 3 样品种类及相应的用途 3.1 全血、血清、血浆、唾液、尿液以及DBS样品可用于HIV抗体检测。 3.2 抗凝全血可用于CD4+和CD8+T淋巴细胞测定。 3.3 血浆可用于HIV-1病毒载量、基因型及耐药检测。DBS样品可用于HIV-1基因型及耐药检测。 3.4 全血、血浆、淋巴细胞富集液、外周血淋巴细胞(PBMC)及DBS样品可用于HIV核酸的定性检测。 3.5 PBMC、全血、淋巴细胞富集液等可用于HIV-1分离培养。 4 操作步骤 4.1 采样前准备 根据检测项目的具体要求,确定采集样品的种类、处理、保存及运输的时限和方法,按照临床采血技术规范的要求操作,遵守生物安全要求(参见本规范第八章实验室生物安全)。 要检查所需物品是否已备齐,是否在有效期内,有无破损,是否足量,特别应检查受检者信息与样品容器表面的标记是否一致,并注明样品采集时间。选择合适的室内(外)采血空间,受检者坐(卧)于合适的位置,准备采血用具、皮肤消毒用品、采血管及试管架、硬质废弃物容器等。 4.1.1 样品的编码和记录 4.1.2 应制定样品编码的标准操作程序(SOP),规定样品编码的原则和方法,为样品制定唯一性编码(编号),保证其唯一性。 4.1.3 采血前,先对装有样品的离心管或滤纸进行标记,核对后编码。要将标签贴在试管的侧面,最好使用预先印制好的、专门用于冷冻储存的耐低温标签。 4.1.4 应使用专门的样品记录本或登记表记录样品,同时录入电脑保存。 4.2 采集和处理样品 4.2.1 血液 4.2.1.1 抗凝全血:消毒局部皮肤,用加有抗凝剂(EDTA钠盐或钾盐、枸橼酸钠、肝素钠)的真空采血管抽取适量静脉血,或用一次性注射器抽取静脉血,转移至加有抗凝剂的试管中,轻轻颠倒混匀6~8次,备用。

食品样品的采集

食品样品的采集、制备与保存 (一)、采样要求 进行食品检验,是在整批被检食品中抽取一部分作为检验样品,而对样品进行检验的结果用来说明整批食品的性状。因此,采样时必须注意样品的代表性和均匀性。要认真填写采样记录。写明样品的生产日期、批号、采样条件、包装情况等,外地调入的食品应结合运货单、兽医卫生人员证明、商品检验机关或卫生部门的化验单、厂方化验单了解起运日期、来源地点、数量、品质情况,并填写检验项目及采样人。 (二)、采样数量和方法 采样数量应能反映该食品的卫生质量和满足检验项目对试样量的需要,一式三份,供检验、复验、备查或仲裁,一般散装样品每份不少于0.5Kg。 鉴于采样的数量和规则各有不同,一般可按下述方法进行。 (1)液体、半流体饮食品。如植物油、鲜乳、酒或其它饮料,如用大桶或大罐盛装者,应先行充分混匀后采样。样品应分别盛放在三个干净的容器中,盛放样品的容器不得含有待测物质及干扰物质。 (2)粮食及固体食品应自每批食品的上、中、下三层中的不同部位分别采取部分样品混合后按四分法对角取样,再进行几次混合,最后取有代表性样品。 (3)肉类、水产等食品应按分析项目要求分别采取不同部位的样品或混合后采样。 (4)罐头、瓶装食品或其它小包装食品,应根据批号随机取样。同一批号取样件数,250g以上的包装不得少于6个,250g以下的包装不得少于10个。掺伪食品和食物中毒的样品采集,要具有典型性。 由于食品数量较大,而且目前的检测方法大多数具有破坏作用,故不能对全部食品进行校验,必须从整批食品中采取一定比例的样品进行校验。从大量的分析对象中抽取具有代表性的一部分样品作为分析化验样品,这项工作即称为样品的收集或采样。食品的种类繁多,成分复杂。同一种类的食品,其成分及其含量也会因品种、产地、成熟期、加工或保藏条件不同而存在相当大的差异;同一分析对象的不同部位,其成分和含量也可能有较大差异。从大量的、组成成分不均匀的被检物质中采集能代表全部被检物质的分析样品(平均样品),必须采用正确的采样方法。如果采取的样品不足以代表全部物料的组成成分,即使以后的样品处理、检测等一系列环节非常精密、准确,其检测的结果亦毫无价值,甚至导出错误的结论。可见,采样是食品分析工作非常重要的环节。 正确采样,必须遵循以下两个原则:第一,采集的样品要均匀一致、有代表性,能够反映被分析食品的整体组成、质量和卫生状况;第二,在采样过程中,要设法保持原有的理化指标,防止成分逸散或带入杂质。 1.采样步骤 样品通常可分为检样、原始样品和平均样品。采集样品的步骤一般分五步,依次如下。 (1)获得检样由分析的整批物料的各个部分采集的少量物料成为检样。 (2)形成原始样品许多份检验综合在一起称为原始样品。如果采得的检验互不一致,则不能把它们放在一起做成一份原始样品,而只能把质量相同的检样混在一起,作成若干份原始样品。 (3)得到平均样品原始样品经过技术处理后,再抽取其中一部分供分析检验用的样品称为平均样品。

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