植物组织培养实验及实习指导
植物组织培养实验及实习指导
杨玲编
西南林学院生物技术教研室
目录
实验一、母液的配制和保存 (2)
实验二、培养基的配制与灭菌 (5)
实验三、外植体消毒与初代培养的建立 (7)
实验四、继代与增殖培养 (9)
实验五、生根培养 (1)
1
实验六、植物茎尖脱毒培养 (1)
3
实习试管苗的炼苗与移栽 (1)
5
实验一、母液的配制和保存
一、实验目的
通过配制MS培养基母液，掌握贮备液的配制和保存方法。
二、原理
配制培养基时，为了使用方便和用量准确，通常采用母液法进行配制，即按培养基配方中各试剂的用量，扩大若干倍后再准确称量，分别先配制成一系列的母液置于冰箱中保存。使用时按比例吸取母液进行稀释配制即可。
以MS培养基为例，所需配制的母液为：大量元素母液（母液Ⅰ，浓缩20倍）、微量元素母液（母液Ⅱ，浓缩200倍）、铁盐母液（母液Ⅲ，浓缩200倍）和有机化合物母液（母液Ⅳ，浓缩200倍）等。
三、实验材料、试剂和仪器设备
1．试剂
NH
4NO
3
, KNO
3
, CaCl
2
·2H
2
O, MgSO
4
·7H
2
O, KH
2
PO
4
, KI, H
2
BO
3
， MnSO
4
·4H
2
O, ZnSO
4·7H
2
O, Na
2
·MoO
4
·2H
2
O, CuSO
4
·5H
2
O, CoCl
2
·6H
2
O, Na
2
?EDTA?2
H 2O，FeSO
4
·7H
2
O，烟酸，甘氨酸, 盐酸硫胺素, 肌醇, 盐酸吡哆醇, 蒸馏水
2．仪器设备
冰箱，天平，酸度计或pH试纸，烧杯（50ml，100ml，500ml，1000ml），量筒(1 000ml，100ml，25ml)，容量瓶(1000ml，500ml，100ml)，磨口试剂瓶(500ml，1 000ml)，药勺、称量纸、酸度计或pH试纸，滴管、玻璃棒，电炉，微波炉
四、实验方法
1.大量元素母液的配制
配制时先用量筒量取蒸馏水大约800ml，放入1000ml的烧杯中，按照配方表中
用量依次分别称取：NH
4NO
3
,KNO
3
,KH
2
PO
4
,MgSO
4
.7H
2
O ,CaCl
2
.2H
2
O，待第一种化
合物溶解后再加入第二种化合物，当最后一种化合物完全溶解后，将溶液倒入1 000ml的容量瓶中，用蒸馏水定容至1000ml，然后，倒入细口试剂瓶中，贴上标签，注明母液名称、放大倍数、配制日期、配制人姓名，置于4℃冰箱中保存备用。
2.微量元素母液的配制
按照配方表中用量用电子天平分别依次称取MnSO
4?4H
2
O， ZnSO
4
?7H
2
O ，H
2
BO
3
，
KI ，NaMoO
4?2H
2
O， CuSO
4
?5H
2
O， CoCl
2
?6H
2
O，按制备母液Ⅰ的方法逐个溶解。
（钼酸钠难溶解，可在室温下用蒸馏水溶解后再加入到微量元素母液中。）定容至1000ml，转入细口试剂瓶中，贴上标签，注明母液名称、放大倍数、配制日期、配制人姓名，置于4℃冰箱中保存备用。
3.铁盐母液配制
把FeSO
4?7H
2
O和 Na
2
?EDTA?2H
2
O分别置于450ml蒸馏水中，加热并不断搅拌使之
溶解。保持加热，把FeSO
4溶液慢慢倒入Na
2
?EDTA溶液中并不断搅拌，接近沸腾
时停止加热，待溶液冷却后把pH值调到5.5，加蒸馏水到最终容积1000ml，置于棕色细口瓶中，用力振荡1～2min，贴上标签，注明母液名称、放大倍数、配制日期、配制人姓名。在室温下避光保存一段时间令其充分反应后，再置于4℃冰箱中保存备用。
4.有机化合物母液的配制
按配方表中用量依次称取：维生素B
1，烟酸，甘氨酸，维生素B
6
，用蒸馏水依次
溶解并定容后，装入1000ml细口试剂瓶中，贴上标签，注明母液名称、放大倍数、配制日期、配制人姓名，置于4℃冰箱中保存备用。
5.植物生长物质母液的配制
NAA母液：准确称量10mg，先用少量1mol/LNaOH溶液完全溶解后，加蒸馏水定容至100ml，即配制成浓度为0.1mg/ml的NAA母液，转入细口试剂瓶中，贴上标签，注明母液名称、浓度、配制日期、配制人姓名，置于4℃冰箱中保存备用。
6-BA母液的配制方法相似，母液浓度为2mg/ml。请注意细胞分裂素的溶解方法。
五、实验报告
按照实验报告格式要求及各组在实验中的配制溶液情况，完成报告撰写。
附：MS培养基母液配方
实验二、培养基的配制与灭菌
一、实验目的
学习用母液法配制培养基以及掌握培养基灭菌的方法。
二、原理
组织培养所用的培养基含有植物细胞生长所必需的各类营养物质，同时也是微生物繁殖的极好场所，因此必需对培养基进行灭菌处理，以确保无菌操作的顺利进行。
三、实验材料、试剂和仪器设备
1．试剂
琼脂，蔗糖，蒸馏水，NAA，6-BA，1mol/LHCl，1mol/LNaOH
2．仪器设备
天平，烧杯（50ml，100ml，500ml，1000ml），量筒(1000ml，100ml，25ml)，移液管（10ml，5ml，2ml，1ml，0.5ml），药勺，称量纸，玻璃棒，吸耳球，滴瓶，酸度计或pH试纸，培养瓶，封口膜，耐热橡皮筋，线绳，高压灭菌锅，微波炉，电炉，标签纸，记号笔
四、实验步骤
1.培养基的配制
培养基组成：MS+6-BA2mg/L+NAA0.1mg/L+3%蔗糖+0.8%琼脂(pH5.8)
①将所需的各种母液按顺序放好，将洁净的各种玻璃器皿等放在指定位置。
本实验需配制的培养基所需吸取的各种母液的用量如表1所示：
②取50ml烧杯一个，用量筒量取大量元素母液，然后用各母液专用移液管分别吸取微量元素母液，有机母液、铁盐母液和生长物质母液，置于烧杯中备用。
③取500ml烧杯一个，加入300ml蒸馏水，称量琼脂4g倒入烧杯中，将烧杯置于电炉上或微波炉内加热，待琼脂完全溶化后，加入15g蔗糖，充分溶解后，将准备好的大量元素、微量元素、铁盐、有机物和激素母液混合液倒入烧杯中，用蒸馏水将装过母液混合液的烧杯洗三遍，一并倒入500ml烧杯中，并加蒸馏水定容。
④充分混合后，用1mol/LNaOH和1mol/LHCl调节培养基的pH为5.8。
⑤把培养基分装到广口瓶中，每瓶约50ml。用封口膜封好瓶口。贴上标签，注明培养基名称，配制者姓名和配制日期，待灭菌。
2.培养基灭菌（灭菌条件：121℃，15分钟）
①检查灭菌锅外层锅内水位，水量过少时应加水。把分装好的培养基放入灭菌锅的消毒桶内。
②盖上锅盖，注意按照说明操作并确定已盖好，设置好温度和时间参数，开启电源加热灭菌。
③灭菌时间到后，先切断电源，让灭菌锅内温度自然下降，待灭菌锅压力表指针降到0时，打开排气阀，旋松螺栓，开启锅盖，取出已灭菌的培养基。
④刚灭过菌的培养基成液体状，取出时不要用力摇动，否则会导致部分培养基沾附在瓶壁。放置在水平桌面上自然冷却。在室温下放置1-2天，观察有无微生物生长，以确定培养基是否彻底灭菌。经检查没有杂菌生长的方可使用。
要求：每人准备培养基2瓶。
提前准备实验三所需的无菌材料。
五、实验报告
附：稀酸和稀碱的配制方法
1mol/LHCl
取浓盐酸8.25ml，加蒸馏水至100ml，即为1mol/LHCl。
1mol/LNaOH
称取氢氧化钠4g，加入蒸馏水100ml，即为1mol/LNaOH。
实验三、外植体的消毒与初代培养的建立
一、实验目的
通过实验，初步掌握外植体材料消毒、接种的无菌操作技术以及外植体初代培养的方法。
二、原理
植物组织培养是在无菌条件下对离体的植物器官或组织的培养。而植株各部分的表面携带着各种不同的微生物，所以在接种前就必须选择合适的消毒剂对外植体进行消毒，获得无菌材料进行组织培养，这是取得组织培养成功的前提和重要保证。离体器官或组织受到适当刺激，便可进行器官分化，从而实现细胞的全能性。
三、实验材料、试剂和仪器设备
1．实验材料：月季当年生枝条
2．试剂：升汞，吐温-80
3.仪器设备（以各组所需为例）
无菌器材：
8瓶培养基
4个不锈钢托碟+吸水纸
1升无菌水
大号、中号镊子各2把
2把解剖刀、1把剪刀
2个500ml烧杯
非无菌材料：
0.1%升汞消毒液200ml
1个250ml消毒缸
2盏酒精灯及火机1个
1000ml搪瓷缸 (装废液用)
1个锥形瓶（250ml），内装75%酒精150ml
1个广口瓶(500ml)，内装75%酒精及棉球
1把大号镊子、1把枝剪、1把解剖刀、1把旧牙刷
橡皮筋若干、标签纸、记号笔、洗衣粉、毛巾、洗衣粉、喷雾器、鞋套、肥皂
四、实验步骤
1．实验二制备的培养基即是本实验所用培养基。
2．接种前，用75%酒精棉球擦拭超净工作台台面，将培养基及接种用具放入超净工作台。房间用酒精喷雾降尘后打开超净工作台紫外灯及房间的紫外灯，照射约30mins；然后关闭紫外灯，打开房间换气扇以及超净工作台的风机，并微启超净工作台的玻璃挡板，通风20min后，即可进行无菌操作。
3．选取生长健壮的枝条，用饱满又未萌发的侧芽作为外植体（取中部的芽较好）。将外植体用手术刀切去叶片，并剥去附在茎上的叶柄及皮刺，用毛刷沾洗衣粉刷洗并在自来水下冲洗干净。吸干水份后切成约2-3cm的茎段，每段至少有1个侧芽。将处理好的外植体转入洁净的消毒缸中，用加了数滴吐温-80的0.1%的升汞
溶液浸泡10min。在表面灭菌过程，应不停摇动消毒缸使消毒液与外植体充分接触。
3．准备进入接种间，用肥皂水清洗双手至手肘部位并在自来水下冲洗干净，进入缓冲室后套上鞋套。
4．把浸泡在消毒液中的外植体转移到超净工作台中。消毒时间结束后在酒精灯火焰旁用无菌镊子将已完成表面灭菌的外植体转移到烧杯中，用无菌水清洗5次，每次不少于1分钟，洗时不断摇动烧杯以确保完全除去消毒剂。最后一次清洗后将外植体转移到无菌托碟上，吸干水分备用。
5．将消毒后的外植体按极性方向接种到培养基上，每瓶可接入3～4段月季茎段。将培养瓶放置在21±2℃，光强800～1200lx，光周期为12h的环境下培养。约30天长成具5～8片叶的无根试管苗。
6．各组的每位同学操作完后将镊子等器械浸入75%酒精中，由下一位同学在使用前灭菌。方法是将浸于酒精中的器械取出后置于酒精灯火焰上充分灼烧，待冷却后方可使用。
五、实验报告
1.接种2天后观察污染情况，计算污染率。
污染率=污染的材料数/总接种材料数×100%
2.每周观察并记录外植体萌动的情况，包括外植体基部是否有愈伤组织出现及其出现时间，侧芽萌发时间及芽的生长状况（萌芽数及芽平均长度）等，并计算萌发率。并注意观察是否有芽玻璃化等异常情况出现。
萌发率=侧芽萌发的茎段数/总接种材料数×100%
六、思考题
为什么常在消毒液中加入1～2滴表面活性剂如吐温-80？
实验四、继代与增殖培养
一、实验目的
通过实验，掌握运用植物生长调节物质调控植物器官分化的方法。
二、原理
以植物的茎、叶等作为外植体进行离体培养，可以直接诱导器官分化，产生芽、根，形成新的植物体；也可以诱导其改变原来的分化状态脱分化形成愈伤组织。这种愈伤组织在一定条件下，又能“再分化”出根和芽等器官。在该过程中，植物生长调节物质起着决定作用，调控着培养细胞再生完整植株的不同方式。
三、实验材料、试剂和仪器设备
1．实验材料，实验三获得的月季无菌枝条
2．试剂
MS母液，各种植物生长物质
3．仪器设备
无菌器材：
8瓶培养基
3～4瓶4－6周龄月季无菌枝条
4个不锈钢托碟+吸水纸
大号、中号镊子各2把
2把解剖刀
非无菌材料：
1个广口瓶(500ml)，内装75%酒精及棉球
1个锥形瓶（250ml），内装75%酒精150ml
2盏酒精灯及火机1个
橡皮筋若干、标签纸、记号笔、喷雾器、鞋套、肥皂
1把大号镊子
四、实验步骤
1.培养基准备。增殖培养基，①MS+6-BA0.5mg/L+KT0.2mg/L+NAA0.05mg/L；②M S+6-BA1.0mg/L+KT0.2mg/L+NAA0.05mg/L。
2.接种室的灭菌见实验三。
3.继代，将实验三的培养瓶转移到接种室，在将瓶放入超净工作台前用75%的酒精棉球擦拭瓶外表面，减少附在瓶外壁上的灰尘与微生物。然后在酒精灯火焰旁进行无菌操作，将无菌芽从原茎段上切下，切成1～2cm的带腋芽茎段转接到继代增殖培养基上，促使嫩茎长出更多的侧芽。
4.培养，培养温度同于初代培养，将光强增至2000lx，光周期延长为16h/天，以免试管苗生长细弱。
五、实验报告
1.观察并记录月季茎段在增殖培养基上的生长和增殖情况，并计算增殖率（继代接种时的茎段数目与继代培养后所产生的茎芽数之比）。
2.根据在两种培养基上的生长情况，确定最适增殖培养基。
实验五、生根培养一、实验目的
同实验四。
二、原理
同实验四。
三、实验材料、试剂与仪器设备
1．实验材料，实验四获得的月季试管苗
2．试剂
MS母液，各种植物生长物质
3．仪器设备
无菌器材：
8瓶生根培养基
3～4瓶8～10周龄月季试管苗
4个不锈钢托碟+吸水纸
大号、中号镊子各2把
2把解剖刀
非无菌材料：
1个广口瓶(500ml)，内装75%酒精及棉球
1个锥形瓶（250ml），内装75%酒精150ml
2盏酒精灯及火机1个
橡皮筋若干、标签纸、记号笔、喷雾器、鞋套
1把大号镊子
四、实验步骤
1.培养基准备。生根培养基，①1/2MS+IBA0.5mg/L；②1/2MS+NAA0.5mg/L；③1 /2MS+IBA0.5mg/L+NAA0.2mg/L。
2.接种室灭菌。
3.接种培养，在超净工作台上进行无菌操作。选取生长粗壮的无根苗，切成2～3cm的茎段，分别转入①②③三种生根培养基中，于温度23±2℃，光强2000lx，光周期为12h的环境下培养。当幼苗基部伤口愈合，并出现白色根尖突出物时即可进炼苗和移栽管理。
五、实验报告
1.观察并记录月季无根苗在生根培养基上培养3～4周后的不定根发生情况，并计算生根率。
生根率（%）=生根无根苗数/接种无根苗总苗数×100%
2.比较3种生根培养基的诱导效果。
六、思考题
植物芽和根的分化与植物生长调节物质有何关系？
实验六、植物茎尖脱毒培养
一、实验目的
熟练掌握外植体表面消毒技术及茎尖剥离和培养的基本方法。
二、原理
病毒在植物体内的分布是不均匀的。在受侵染的植株中，成熟的组织和器官病毒含量较高，而幼嫩的和未成熟的组织和器官病毒含量较低，生长点则几乎不含或含量很少。
三、实验材料、试剂与仪器设备
1.实验材料,盆栽菊花,万寿菊或矮牵牛种子
2．试剂
MS母液，各种植物生长物质
诱导培养基：MS+6-BA2mg/L+NAA0.2mg/L+3%糖+0.7%琼脂，pH5.8
增殖培养基：MS+6-BA2mg/L+NAA0.5mg/L+3%糖+0.7%琼脂，pH5.8
生根培养基：1/2MS+NAA0.1mg/L+珍珠岩
3．仪器设备
无菌器材：
4瓶诱导培养基
4个培养皿+吸水纸
中号、小号镊子各2把
2把解剖刀、2把解剖针
非无菌材料：
1个广口瓶(500ml)，内装75%酒精及棉球
1个锥形瓶（250ml），内装75%酒精150ml
2盏酒精灯及火机1个
橡皮筋若干、标签纸、记号笔、喷雾器、鞋套
旧牙刷、金刚砂、珍珠岩、小花盆（10cm）
研钵1个、镊子2把、解剖刀1把、解剖镜1台
四、实验步骤
1.母株病毒的鉴定（汁液感染法），取母株叶片放于等体积（W/V）的缓冲液（0. 1mol/L磷酸钠）中，研磨成汁液，接种于万寿菊/矮牵牛鉴别寄主上。接种后，放置在18～25℃的防虫室中观察1个月，记载症状反应。
2.取带顶芽茎段，长约3～5cm，除去叶，保留护芽的叶柄，用洗涤液充分清洗尤其是叶柄处，用软毛刷充分涮洗并在自来水下反复冲洗干净后，先用70%酒精处理30s，再用0.1%升汞消毒6分钟，并不时轻轻搅动。灭菌结束后用无菌水清洗5～6次，吸干水份，转入无菌三角瓶中备用。
3.将已灭过菌的材料放入无菌培养皿中，在解剖镜下用解剖针剥去顶芽外面的幼叶，直至看到表面光滑呈圆锥形的生长点，只剩下1～2个叶原基，切取约0.3m m和0.5mm两个不同长度的茎尖，接种到培养基中培养。最好是放在培养基凝固时产生的冷凝水表面上，防止茎尖脱水，且正放。温度23±2℃，光强1000～3 000lx，光周期12～16h培养。
4.约3天后茎尖开始萌动，颜色逐渐变绿，基部逐渐膨大，4～6周后形成丛芽。将诱导出的芽切下，转接到增殖培养基或生根培养基上进行培养。该步可根据具体条件进行。
5.等组培苗长至2.5～3.5cm高时，具2～3片叶时，可从瓶中取出苗，用自来水冲洗干净基部附着的培养基后，整株放在研钵中磨成汁液。按1所述方法接种鉴别寄主和培养，观察组培苗是否脱去相应病毒。
五、实验报告
1.观察并记录茎尖在培养基上的生长情况，是否出现愈伤组织，芽的分化数及形态，生长长度，并统计茎尖的繁殖系数。
2.比较两种不同接种长度的茎尖接种成功率。
3.统计脱毒率。比较两种长度的脱毒效果。
实习试管苗的炼苗与移栽
一、实验目的
通过月季试管苗的炼苗与移栽管理，掌握组培苗炼苗与移栽的基本方法与过程。
二、原理
试管苗生长在恒温、高湿、弱光、无菌和有完全营养供应的特殊条件下，这样的试管苗若未经充分锻炼，一旦被移出培养瓶后难以适应自然环境的变化，则很快失水萎蔫至死亡。通过炼苗，逐步改变试管苗的生长环境，促使气孔逐渐建立开闭机制，促使叶片逐渐启动光合功能等，提高试管苗的适应能力，为移苗成功打下基础。
三、实验材料、试剂和仪器设备
1.实验材料，实验五所获得的月季生根苗
2.试剂及仪器设备
MS培养液，蛭石，河沙，园土，泥炭土，甲醛，高锰酸钾，多菌灵，育苗盘，喷雾器，塑料薄膜，温室
四、实验步骤
1.炼苗，将培养瓶放在温室自然光照下培养，同时昼夜有明显温差，5～7天后再打开封口膜使瓶中空气湿度降低，通气加强，2～3天后可移苗。
2.移栽基质的准备，①蛭石；②河沙：园土：泥炭土（1：1：2），拌和均匀。用甲醛和高锰酸钾进行熏蒸消毒。移栽基质要用能密封的器具盛装，然后在土中间放一小烧杯，将称量好的高锰酸钾倒入烧杯中，再把已量取的甲醛溶液慢慢倒
入烧杯中，完毕，密封好器具。3天后打开器具取出基质在阳光下曝晒再装入育苗盘中。
3.幼苗出瓶后，先洗去沾附的培养基，用0.1%多菌灵溶液浸泡后移栽于基质中，种植密度为2～3cm×4～6cm/株。移栽完后，一次性浇透水，并用0.1%多菌灵喷雾。当叶表面水珠消失后盖好保湿薄膜，保持温度15～25℃，湿度在85%以上，同时注意通风，控制光照在50%左右。每7～10天喷一次杀菌剂，待小苗成活并开始长新梢后可施稀薄的MS培养液作追肥。逐渐增强通风直至约2周后打开保湿薄膜。当叶片呈现深绿色、生长健壮，根长至，约50天后即可盆栽管理。
五、实习报告
详细记录试管苗的炼苗及移栽管理过程，报告生长现象及移栽成活率。
植物组织培养实验基本步骤。。
植物组织培养实验基本步骤 一、母液的配置 1、MS大量元素母液的配制 将大量元素配制成10倍的母液，使用时再稀释10倍。按照配方表中用量依次分别称取扩大10倍的：NH4NO3 、KNO3 、KH2PO4 、 MgSO4·7H2O 、CaCl2·2H2O ，所有药品称取完毕后用蒸馏水逐个溶解，待全部溶解后，最后定容至500ml，转入500ml细口试剂瓶中，贴上标签，注明母液名称、放大倍数、配制日期、配制人姓名，置于4℃冰箱中保存备用。 2、MS微量元素母液的配制 将微量元素配制成100倍的母液，使用时再稀释100倍。按照配方表中用量分别依次称取：MnSO4· 4H2O 、ZnSO4·7H2O 、 H3BO3 、KI 、CuSO4·5H2O 、CoCl2·6H2O ，用蒸馏水逐个溶解，待全部溶解后，用容量瓶定容至500ml，转入500ml细口试剂瓶中，贴上标签，注明母液名称、放大倍数、配制日期、配制人姓名，置于4℃冰箱中保存备用。 3、MS铁盐母液配制 将铁盐配制成100倍的母液，使用时再稀释100倍。按照配方表中用量分别称取扩大100倍的：称
FeSO4·7H2O 和Na2·EDTA ，把FeSO4·7H2O和Na2·EDTA·2H2O分别置于200ml蒸馏水中，加热并不断搅拌使之溶解（磁力搅拌器，边加热，边搅拌）。保持加热，把FeSO4溶液慢慢倒入Na2·EDTA溶液中并不断搅拌，接近沸腾时停止加热，待溶液冷却后加蒸馏水到最终容积500ml，置于棕色细口瓶中，用力振荡1～2min，贴上标签，注明母液名称、放大倍数、配制日期、配制人姓名。在室温下避光保存一段时间令其充分反应后，再置于4℃冰箱中保存备用。 4、MS有机化合物母液的配制 将有机化合物配制成100倍的母液，使用时再稀释100倍。按照配方表中用量分别称取扩大100倍的：肌醇、维生素B1 、烟酸、甘氨酸、维生素B6 、蔗糖，用蒸馏水依次溶解并定容至500ml后，转入500ml 细口试剂瓶中，贴上标签，注明母液名称、配制日期、配制人姓名，置于4℃冰箱中保存备用。 二、植物激素的配置 常见激素：二氯苯氧乙酸（2，4－D）、萘乙酸（NAA）、吲哚乙酸（IAA）、吲哚－3－丁酸（IBA）、激动素（6-糠氨基嘌呤、 KT）、6－苄氨基嘌呤（6－BA）、赤霉素（GA3）、 1、生长素类： （1）、生长素类在组织培养中的主要作用是：诱导细胞的分裂和根的分化，诱导愈伤组织
园林实训方案
萍乡市武功山职业中专 园林专业实训基地建设方案 实训、实习基地是学校办学条件的重要组成部分，是提高学生实践技术能力、创新能力，提高教学质量的基础条件，其建设水平在一定程度上反映着学校的教学、科研和管理水平。 按照学校“十二五”发展规划的总体要求，本着“整合资源，调整布局，突出职业优势，提高投资效益”的原则，特制定本计划。 一、实训、实习基地现状分析 1. 校内实训基地 园艺专业现有５个专用实训室，1个２００亩的综合实训基地，１个１０亩的植物园。近三年投入资金５０万元，主要用于园林树木护理。在实训室规划和建设上，将实训室功能划分为三个层次。第一个层次完成学生的基础技能训练，使学生具有一定的基础技能和职业意识；第二个层次完成学生的专业核心技能训练，三门主干专业课程《果树栽培》、《蔬菜栽培》、《花卉栽培》充分运用现代化教学手段和实物教学手段，实施理实一体化教学，打破传统的先上理论再进行实践的教学组织方式，理论实践融会贯通，知识和技能同步形成；第三个层次完成学生的职业岗位能力训练，根据学生就业的职业岗位进行强化训练。 校内实训基地基本情况一览表
2. 校外实训基地 在校外，建有实训基地5个，供教师实践锻炼和毕业生生产实习，实现教学与生产同步，与生产紧密结合。校外实训基地详见表２。
2.主要问题 经过近10年的建设，目前初具规模。已有植物生理生态实训室（观赏植物实训室）、植物组织培养实训室、切花保鲜实训室（在建）、温室等，目前缺花艺设计室、花艺作品陈列室、园林设计模型室等。植物生理生态实训室（观赏植物实训室）设备落后。 二、实训、实习基地建设的目标和主要任务 未来3年主要建设花艺设计实训室、花艺作品展示室，植物与病虫害标本室，园林设计含模型室，以及温室、植物组织培养实训室功能完善等。 （一）教学团队建设 1.鼓励专任教师进入企业学习和锻炼，提高实践教学能力。每位教师每年至少在企业实践1个月。鼓励和支持专任教师主持或参与精品课程、示范性基地专业、示范性基地建设以及各级各类教学研究课题。双师素质教师比例提高至100％。 2．鼓励专任教师通过学历进修、短期培训、参加学术会议，提高职称与学历，提升教学研究和科学研究能力。争取有1～2名教师获得博士学位，1～2名教师晋升副教授职称。 3.不断选聘行业企业中的技术能手与能工巧匠进入教学团队，聘请他们担任实践性较强的课程的教学工作。兼职教师比例达到100％，并且进行动态调整，优中选优。 （二）实训、实习基地建设年度实施计划 2009～2011年城市园艺实训中心建设年度实施计划
(医疗药品)药用植物组织培养实验指导
甘肃农业大学农学院 药用植物组织培养实验指导 柳福智编 农学院中草药栽培与鉴定教研室 2007年8月 前言 药用植物组织培养实验是根据中草药栽培与鉴定专业的培养要求，为学生开设的一门实验课程。药用植物组织培养实验的任务是使学生加深对药用植物组织培养基本理论的理解，掌握药用植物组织培养实验的基本操作技能，学习药用植物组织培养实验的基本知识，养成严格、认真和实事求是的科学态度，提高观察、分析和解决问题的能力，为将来参加工作打下良好的基础。 编者 2007年8月 学生实验守则 1、实验前认真预习，领会实验原理，明确本次实验的目的和要求，了解实验步骤和注意事项。
2、实验时要严格按照规范操作进行，仔细观察实验现象，认真记录有关数据。 3、要认真写好实验报告，实验报告要清楚、简练、整洁。 4、学生进入实验室必须严格遵守实验室规则，服从带教老师的指导。 5、爱护实验室的仪器设备，不准将实验室的仪器设备私自带出室外。 6、严格遵守操作规程及实验时应注意的事项，在使用不熟悉其性能的仪器和药品之前，应查阅有关资料或请教指导教师，不要随意进行实验，以免损坏仪器，浪费试剂，使实验失败，更重要的是预防发生意外事故。 7、实验过程中应注意防火灾、防爆炸、防腐蚀、防污染工作，牢固树立“安全第一”意识。 8、实验结束后，一切仪器试剂应放回原处，玻璃仪器要清洗干净，一些有毒、有腐蚀性的废液应倒入废液缸内。 9、实验台面要擦试干净，由值日生负责安全卫生工作，包括清理实验室，检查水、电的开关，清除垃圾和污物，关好门窗后方可离开实验室。 药用植物组织培养实验报告一般包括以下内容和要求： （1）实验名称、实验日期。 （2）实验目的写明通过本实验要达到的训练目的。
《植物组织培养》课程标准
《植物组织培养》课程标准 课程名称：《园林植物植物组织培养》 课程性质：职业能力必修课 学分：3分 计划学时：45 适用专业：园艺技术、园林技术、种子生产与经营专业 1.前言 1.1课程定位 《植物组织培养技术》是一门园艺技术、园林技术等专业的基础课，也是一门实践性很强的课程。通过本门课程学习，主要培养学生将来能从事相关工作，如能够独立设计组培方案、具备培养基制备、进行无菌操作、快繁、控制污染、褐化、玻璃化等不良现象发生和分析解决问题的能力，还能够独立从事植物组织培养经营管理的工作。该课程以化学、植物学、植物生理学、遗传学等学科为基础建立起来的，为适应时代发展，结合当前高职教育改革实际，压缩理论课时，精选教学内容，增加单位时间内的知识传授量，增加实验实训课的课时。培养技能型、应用型人才，使课程教学朝着高职院校校企合作的办学模式，工学结合的人才培养模式，教学做合一的教学模式方向发展。 1.2设计思路 本课程理论课时48学时。根据植物组织培养岗位对从业人员知识、能力和素质要求，以“应用”为主旨和特征，构建课程内容模块体系。课程内容打破传统的“老三段”模式，打破学科特性，理论知识要求“必需、够用”，实践教学突出能力培养，注重知识的应用性、实践性和针对性，并以此来构建组培课结构和内容体系。在实践教学上，以“项目教学法”为主导，强化实训项目的实用性。本课程一般按照“实验室设计与培养条件要求―培养基制备―无菌操作技术―器官培养―个体植物组织培养与园艺植物栽培”的顺序进行。 2．课程目标 2.1总体目标 通过理论学习和实践锻炼，掌握植物组织培养的基本理论，能识别常见的污染、褐变、玻璃化等现象，掌握组培培养方案设计程序和器官培养要求，掌握组培各流程环节与技术要求。通过参观组培实验室，掌握组培实验室的场地选择和厂房设计的原理和方法；通过配制母液、培养基的制作、使用无菌操作技术，能熟练掌握培养基母液和激素母液的配制，并且能够独立完成培养基的制作和高压灭菌锅的使用，还要掌握不通植物材料无菌接种技术。通过个体植物组织培养的
植物学实验指导最终版1
植物生物学实验指导中国海洋大学水产学院
目录 绪论 (1) 实验一普通光学显微镜的构造和使用方法 (3) 实验二生物绘图 (6) 实验三植物细胞基本结构的观察 (9) 实验四植物细胞的有丝分裂显微观察 (12) 实验五植物体各种组织的显微观察 (14) 实验六根的形态和结构观察 (17) 实验七茎的形态和结构观察 (21) 实验八低等植物（藻类、菌类和地衣植物） (25)
绪论 一、实验课教学的目的及意义 本课程以验证课堂理论、掌握研究方法和操作技能为宗旨，培养学生独立开展以植物生物学为基础的科学研究和实际工作能力。通过实验教学，要求学生掌握植物生物学实验的基本理论、基本知识，以及研究植物的一些基本方法和基本技能，并运用这些方法和技能去研究植物个体发育中植物器官的形态建成与结构；学习植物系统发育过程中植物界各大类群植物的主要的形态特征、代表植物、它们在植物界中的地位和演化规律，认识一些常见的与人类关系密切的植物;理论与实践统一，使学生加深对课堂讲授的内容的认识与理解。更重要的是培养学生进行科学探索与实验的能力与素质，以适应新经济时代对科技人才的基本要求。 二、实验室规则 1. 学生应提前5-10分钟进入实验室,做好实验前的准备工作。 2. 按号使用显微镜和解剖镜，使用前要检查,使用后要擦试整理，并放回原处.如果发现损坏或发生故障,要及时报告指导教师。 3. 爱护仪器、标本及其他公共设施,节约药品和水电。损坏物品时应主动向指导教师报告并及时登记。 4. 保持实验室安静、整洁。实验时不得随意走动和谈笑。室内禁止吸烟，不准随地吐痰和乱扔纸屑、杂物。每次实验后，各实验小组要清理实验桌面，并轮流打扫实验室。 5. 最后离开实验室的学生要负责检查水、电、门、窗等是否关严。 三、实验课课程的进行方式及对学生的要求 1. 实验前必须预习每次实验课内容，写出简单的实验提纲，并把个人准备好的实验必备物品带到实验室。 2. 必须仔细听取教师对实验课的要求、操作中的重点、难点和应注意问题的讲解。 3. 实验时,学生应根据实验教材独立操作，仔细观察,随时做好记录。遇到问题，应积极思考分析原因，排出故障。对于经自己努力解决不了的问题，应请指导教师帮助。 4. 积极开展第二课堂的教学活动,学生除了在实验室学习外，还应以整个校园、植物园、各大公园等作为课堂，理论联系实际进行学习。
扬州市植物组织培养实验室建设指导方案
扬州市植物组织培养实验室建设指导方案 （试行） 一、建设目的 植物组织培养是20世纪30年代初期发展起来的一项生物技术。在快速繁育、种苗脱毒、远缘杂交、突变育种、基因工程和生物制品等方面都得到了应用。植物组织培养技术涉及到多项高中生命科学课程中的基础知识，例如：细胞全能性原理、细胞增殖、细胞分化、植物激素及生命的基本元素和物质等。在生物选修一《生物技术》教材中，组织培养已经作为一个专题实验，成为高中升学考试的一个考点。组织培养作为一项生物技术，它对学生的动手能力和科学素养都提出新的要求，使学生能够在知识层面、能力层面和情感层面上达到了全面的拓展。 二、建设要求 组织培养实验室面积一般为96-120平方米，学生实验依据无菌间超净工作台的多少分组进行，原则上6~8人一组。 组织培养实验基于对无菌条件的严格要求，由准备室、缓冲间、无菌室、培养室和炼苗室四部分组成。 1、准备室 功能：进行一切与实验有关的准备工作。完成所使用的各种药品的贮备、称量、溶解、器皿洗涤、培养基配制与分装、培养基和培养器皿的灭菌、培养材料的预处理等。 设备：准备室应具备实验边台、药品柜、水池、仪器、药品、天平、纯水机（制作组织培养基用水）、酸度计、烘干箱、高压灭菌锅、超声波清洗器及常用的培养基配制用玻璃仪器等。 2、缓冲间 功能：是进入无菌室前的一个缓冲场地，减少人体从外界带入的尘埃等污染物。 要求：缓冲间需5～8平方米，保持清洁无菌。缓冲间需安装紫外线灭菌灯，用以照射灭菌。 3、无菌间 功能：也叫接种室，主要用于植物材料的消毒、接种、培养物的转移、试管苗的继代、原生质体的制备以及一切需要进行无菌操作的技术程序，是植物离体培养研究或生产中最关键的一步。
植物组织培养实验报告
植物组织培养实验报告 Modified by JACK on the afternoon of December 26, 2020
院(系、部) 化学与生物工程学院专业生物技术（师范）年级13级学号 姓名组别第二组课程名称植物细胞工程学实验日期 指导老师实验名称植物组织培养综合实验 一、实验目的 1.熟悉MS培养基的组成，掌握贮备液的配制方法 2.学习、掌握植物组织固体培养基的配制和灭菌方法； 3.掌握超净工作台上的接种方法与注意事项，了解接种室的灭菌方法； 4.了解组织培养的基本程序； 5.掌握接种的方法和材料的培养过程； 6.掌握无菌操作技术，包括外植体除菌和接种技术； 7.观察外植体的生长状况、染菌状况，剔除染菌外植体； 8.了解MS培养基和1/2MS培养基的区别 二、实验原理 1.植物细胞的全能性 一切植物都由细胞构成，细胞是构成植物体的基本结构与功能单位。 植物细胞含有全套遗传信息，具有形成完整植物的潜能。 2.植物细胞表现出全能性的条件 1.离体状态； 2.有一定的营养物质，激素和其他外界条件（无菌、温度、pH）； 3.选择性能优良、细胞全能性表达充分的基因型 3.无菌条件
把植物的组织、器官等，使其在人工控制的无菌条件下，使植物在人工培养基上繁殖。用于进行组织培养的组织、器官和细胞称为外植体。在组培中外植体都死带菌的，在接种前必须进行表面消毒，这时取得培养成功的最基本和重要的前体。组织培养的主要过程都是在无菌条件下进行的，所以所有的器材、植物体、接种室都应是无菌的。 4.脱分化与愈伤组织 已有特定结构与功能的植物组织，在一定条件下，其细胞被诱导改变原来的发育途径，逐步逆转其原有的分化形态，转变为具有分生能力的胚细胞的过程称为脱分化。脱分化所用的化学物质与MS培养基的区别是需要激素诱导。所以脱分化培养需在MS培养基上添加激素进行愈伤组织诱导。 5.培养基 植物组织培养常用的培养基为MS培养基。常用的凝固剂是琼脂,它的主要作用是使液体培养基凝固，琼脂本身并不提供任何营养，它只是一种高分予的碳水物从海藻中提取出来，仅溶解于热水，成为溶胶，冷却后(40℃以下)即凝固为固体状凝胶。琼脂的用量一般在4—10克／升之间。琼脂的凝固能力除与原料、厂家的加工方式等有关外，还与高压灭菌时的温度、时间、pH值等因素有关，长时间的高温会使凝固能力下降，过酸过碱加之高温会使琼脂发生水解而丧失凝固能力，存放时间过久，琼脂变褐，也会逐失去凝固能力。MS培养基属于富盐平衡培养基，特点是：无机盐浓度较高，元素间的比例适当，离子平衡性好，具有较强的缓冲性，因而在培养的过程中可维持较好的稳定性；营养丰富，在一般培养中无须额外加
植物野外实习总结报告
植物野外实习总结报告 植物野外实习汇报 植物学的发展：(前人所做的努力) 我国中医药的发展已有数千年。祖先通过他们的勇毅同智慧发现了各种草药的药理性，寒热性。进而治疗各种病人的病症，痛苦。这就是在我国的草本植物的发展。当今已是21世纪，让中医药继续发扬光大是各科学家，医生药师的重任。 在19世纪前国外发展得较我国慢，但当代发展地十分迅速。特别是近代与当代，植物学发展一日千里，新的代表植物分子生物学，植物细胞生物学，引领植物学向更微观世纪进军。植物组织培养，植物pcr技术等在国外是较成熟的。 前人留下的问习题： 草本植物与木本植物的异同;植物体内的营养;草本植物为何高级于木本植物; 选“草本植物”的缘由： 草本植物，我们第一联想到草，草有很多用处。猪牛马羊等各类家畜也都吃草。竹子在日常生活处处可见，在我们中国还有竹子造的房屋。大自然中的野草不止是动物的食物，还能制造大量氧气，防止水土流失。 植物资源是极其丰富的，它的开发利用，能给人类带来物质财富;但若违反自然规律地滥采滥用，则会破坏资源，毁灭资源，给人
类生存造成威胁。因此，正确认识植物资源的特点，是合理利用植物资源的出发点。 意义与目的： 1培养学生初步掌握生物学的形态的鉴定技术和分类方法，培养学生具备生命科学的专业基础,以利于更好地学习和从生物学研究;为开拓,发展生态学，环境学等边缘学科研究打下良好基础。 2掌握一般的植物分类的理论基础。能认识30-50科植物。掌握重要植物标本采集的基本方法。认识(海岸)草本植物的特征。 3一般掌握大鹏半岛生物群落的植物分布类型。牢固掌握生物生态学和生物群落学的理论及其内容。 材料与方法： 植物专用钳，尖头钳，镐子，塑料袋，大编织袋，“红白蓝”大麻袋。 采集方法： 一个同学用小镐子，铲那些地上长的成株的植物;一个同学手持尖头剪或植物剪，剪下一些路边的树枝条(应该尽量带有花和果);一个同学带着大编织袋，把同组同学采集下来的植物放入袋中。 辨别技巧： 辨别植物所属科目时：应该注意植株的各种形态上的区别：根状茎，块茎;贮藏根，寄生根;单叶，复叶;轮生，对生，互生叶...... 注意：以上的特征就可以辨别大部分的植物的科目了。 花的基本构成：花萼，花被，花瓣，萼片，花冠，雄蕊群，雌
植物学实验守则
植物学实验室守则 1.保持实验室的整洁和安静,实验要严肃认真,专心观察,不得高声喧哗,切忌任意谈笑,原则上得穿实验服。爱护环境卫生,在实验室内不准随地吐痰、吸烟及乱扔纸屑。 2.爱护一切仪器及设备,节约水、电和一切消耗物品。遵守操作规程,不听从老师指导和不按实验室操作规程而造成的仪器设备损坏按学校有关规定赔偿,视其情节轻重给予处分。 3.学生实验时要服从教师的指导和安排,不遵守规章制度者,应 给予批评教育。经教育不改者,指导教师有权取消其做实验资格。 4.学生做实验必须准时进入实验室,做实验之前必须按实验指导书的要求预习实验内容,做好实验准备工作,将写好的预习报告放在 相应的位置上以备指导教师检查。 5.熟悉和掌握实验原理、方法、步骤,明确实验目的和要求,了解仪器的性能,操作规程和使用时的注意事项。实验中做好实验记录, 不得抄袭,按时上交实验报告。 6.实验过程中,学生应根据实验指导独立操作,仔细观察,随时作好记录。遇到问题,应积极思考,分析原因,排除障碍。对于经自己努力解决不了的问题,应请指导教师或其他同学帮助。 7.实验完毕,按照已安排好的值日小组将实验室的卫生打扫干净;清查各种仪器、用具并擦拭干净。将实验用具摆放整齐,整理好自己的物品,经指导教师同意后,方可离开实验室。 8.实验时同学要带上实验指导书、课堂笔记、教科书、实验报告册、绘图铅笔,橡皮、直尺等。 实验报告书写内容说明 (一)实验报告的目的和意义
《植物学》是生物科学专业的一门基础课程,植物学实验是植物学教学的一个非常重要的组成部分,要求掌握实验的基本方法与技能,贯彻理论联系实际,培养独立工作能力,养成严谨的科学态度与工作作风。通过植物学实验课程实践操作,掌握植物学的基本理论、基本知识,以及研究植物学研究的一些基本方法和基本技能,并运用这些方法和技能去研究植物个体发育中植物器官的形态建成与结构;认识和了解植物的基本结构特点及与功能间的关系;植物系统演化及类群多样性概况。 (二)实验报告的内容 1.实验名称 用简练而精确的语言反映实验的内容。 2.实验目的 植物学实验要求掌握实验的基本方法与技能,贯彻理论联系实际,加强对基本知识和基本理论的理解。通过自己动手亲身实践,培养独立工作能力,养成严谨的科学态度。 3.实验内容 观察切片标本时注意切面与整体的关系,通过显微镜下一块组织一个薄片建立立体结构的概念。观察制片标本时要注意结合观察植物体的外形,了解取材部位,联系解剖结构与生理功能,运用对比法对比各种结构的异同、特点,达到深入认识和理解。学生通过课堂自己动手操作,掌握必要的植物系统分类学直观及实践的基础知识和能力,为生物学的后继课程奠定良好基础。 4.实验材料及用品 根据各个实验内容的不同写明所需用的实验工具及药品。 5.实验步骤 详细的书写各个实验的主要操作步骤或用流程图来表示,不可照
植物组织培养实验室 组培室 规划设计
植物组织培养实验室组培室规划设计 一、实验室要求理想的组织培养实验室应该建立在安静、清洁、远离污染 源的地方，最好在常年主风向的上风方向，尽量减少污染。规模化生产的组织 培养实验室最好建在交通方便的地方，便于培养产品的运送。实验室的建设均 需考虑两个方面的问题：一是所从事的实验的性质，即是生产性的还是研究性的，是基本层次的还是较高层次的；二是实验室的规模，规模主要取决于经费 和实验性质。无论实验室的性质和规模如何，实验室设置的基本原则是：科学、高效、经济和实用。一个组织培养实验室必须满足3个基本的需要：实验准备(培养基制备、器皿洗涤、培养基和培养器皿灭菌)、无菌操作和控制培养。此外，还可根据从事的实验要求来考虑辅助实验室及其各种附加设施，使实验室 更加完善。在进行植物组织培养工作之前，首先应对工作中需要哪些最基本的 设备条件有个全面的了解，以便因地制宜地利用现有房屋，或新建、改建实验室。实验室的大小取决于工作的目的和规模。以工厂化生产为目的，实验室规 模太小，则会限制生产，影响效率。在设计组织培养实验室时，应按组织培养 程序来没计，避免某些环节倒排，引起日后工作混乱。植物组织培养是在严格 无菌的条件下进行的。要做到无菌的条件，需要一定的设备、器材和用具，同 时还需要人工控制温度、光照、湿度等培养条件。二、实验室组成(一)基本实 验室基本实验室包括准备室、洗涤灭菌室、无菌操作室、培养室、缓冲间，是 组织培养实验所必须具备的基本条件。如进行工厂化生产，年产4万-20万， 需3-4间实验用房，总面积60平方米。1、准备室(化学实验室)功能：又叫化 学实验室，进行一切与实验有关的准备工作：完成所使用的各种药品的贮备、 称量、溶解、器皿洗涤、培养基配制与分装、培养基和培养器皿的灭菌、培养 材料的预处理等。要求：最好有20平方米左右。要求宽敞明亮、以便于放置多个实验台和相关设备，方便多人同时工作；同时要求通风条件好，便于气体交换；实验室地面应便于清洁，并应进行防滑处理。分类：分体式-研究性质实验室，分开的若干房间将准备室分解为药品贮藏室、培养基配制与洗涤室和灭菌 室等，功能明确，便于管理，但不适于大规模生产。通间式-规模化实验室，准备室一般设计成大的通间，使试验操作的各个环节在同一房间内按程序完成。 准备试验的过程在同一空间进行，便于程序化操作与管理，试验中减少各环节 间的衔接时间，从而提高工作效率。此外还便于培养基配制、分装和灭菌的自
植物实习报告(完整版)
报告编号：YT-FS-3980-51 植物实习报告(完整版) After Completing The T ask According To The Original Plan, A Report Will Be Formed T o Reflect The Basic Situation Encountered, Reveal The Existing Problems And Put Forward Future Ideas. 互惠互利共同繁荣 Mutual Benefit And Common Prosperity
植物实习报告(完整版) 备注：该报告书文本主要按照原定计划完成任务后形成报告，并反映遇到的基本情况、实际取得的成功和过程中取得的经验教训、揭露存在的问题以及提出今后设想。文档可根据实际情况进行修改和使用。 植物野外实习报告 6－1组员： 实习日期：XX.7.19－7.22 报告编写日期: XX年9月6日 带队教师：雷安平，仙湖植物园老师（校外） 我国中医药的发展已有数千年。祖先通过他们的勇毅同智慧发现了各种草药的药理性，寒热性。进而治疗各种病人的病症，痛苦。这就是在我国的草本植物的发展。当今已是21世纪，让中医药继续发扬光大是各科学家，医生药师的重任。 在19世纪前国外发展得较我国慢，但当代发展地十分迅速。特别是近代与当代，植物学发展一日千里，新的代表植物分子生物学，植物细胞生物学，引领植
物学向更微观世纪进军。植物组织培养，植物pcr技术等在国外是较成熟的。 草本植物与木本植物的异同；植物体内的营养；草本植物为何高级于木本植物； 草本植物，我们第一联想到草，草有很多用处。猪牛马羊等各类家畜也都吃草。竹子在日常生活处处可见，在我们中国还有竹子造的房屋。大自然中的野草不止是动物的食物，还能制造大量氧气，防止水土流失。 植物资源是极其丰富的，它的开发利用，能给人类带来物质财富；但若违反自然规律地滥采滥用，则会破坏资源，毁灭资源，给人类生存造成威胁。因此，正确认识植物资源的特点，是合理利用植物资源的出发点。 一个同学用小镐子，铲那些地上长的成株的植物；一个同学手持尖头剪或植物剪，剪下一些路边的树枝条（应该尽量带有花和果）；一个同学带着大编织袋，把同组同学采集下来的植物放入袋中。
(完整版)植物学实验
植物学实验——南瓜茎纵切片导管观察 生科院10级1班09100103 卞磊 图1 (南瓜茎纵切片螺纹导管） 图2（南瓜茎纵切片网纹导管） 图3（南瓜茎纵切片环纹导管） （在几个装片中没有找到梯纹导管） 根据导管发育先后及其侧壁次生增厚和木化方式不同，可将导管分为五种类型：环纹导管(annular vessel)，每隔一定距离有一环状的木化增厚次生壁；螺纹导管(spiral vessel)，侧壁呈螺旋带状木化增厚；梯纹导管(scalariform vessel)，侧壁呈几乎平行的横条状木化增厚，与未增厚的初生壁相间排列，呈梯形；网纹导管(spiral vessel)，侧壁呈网状木化增厚，“网眼”为未增厚的初生壁；孔纹导管(spiral vessel)，侧壁大部分木化增厚，未增厚部分形成孔纹。 上述五种导管类型中，前两种导管出现较早，常发生于生长初期的器官中，导管直径较小，
输水能力较弱，未增厚的初生壁还可随器官伸长而延伸；后三种导管多在器官生长后期分化形成，导管直径大，每个导管分子较短，输导效率高。有时在一个导管上可见到一部分是环纹加厚，另一部分是螺纹加厚；有时梯纹和网纹之间的差别十分微小；也有网纹和孔纹结合而成网孔纹的过渡类型。导管的长度从几厘米到几米不等。 导管普遍存在于被子植物的木质部，向上运输根从土壤中吸收的水分和无机盐。它们是由许多管状的、细胞壁木质化的死细胞纵向连接成的一种输导组织。组成导管的每一个细胞称为导管分子(vessel element)。 在导管分子的发育初期，其细胞内含有丰富的微管、内质网、高尔基体等细胞器。随着细胞的生长、液泡的分化和继后的细胞程序性死亡过程，导管分子的侧壁形成各种纹饰的次生加厚，端壁逐渐解体消失，形成不同形式的穿孔（单穿孔或数个小孔组成的复穿孔）。具有穿孔的端壁称为穿孔板(perforation plate)。穿孔的形成及原生质体消失使导管成为中空的连续长管，有利于水分及无机盐的纵向运输。导管还可通过侧壁上的纹孔或未增厚的部分与毗邻的细胞进行横向运输。根据导管的发育先后和侧壁木质化增厚方式，可将其分为环纹导管、螺纹导管、梯纹导管、网纹导管和孔纹导管五种类型。 环纹导管（annular vessel）和螺纹导管（spiral vessel）这类导管是在器官的初生生长早期形成的，位于初生木质部中的原生木质部，其导管分子细长而腔小（尤其是环纹导管），且其侧壁分别呈环状或螺旋状木质化加厚，输水能力弱，有时同一条导管的不同部分可出现环纹与螺纹增厚。由于其增厚的部分不多，未增厚的管壁部分仍可适应于器官的生长而伸延，但易被拉断。 梯纹导管（scalariform vessel）、网纹导管（reticulated vessel）和孔纹导管（pitted vessel）这类导管是在器官的初生生长中后期和次生生长过程中形成的，位于初生木质部中的后生木质部和次生木质部，其导管分子短粗而腔大，输水效率高（尤其是孔纹导管）。梯纹导管和网纹导管的侧壁分别呈梯状和网状增厚，孔纹导管的侧壁则大部分木质化增厚，未加厚的部分则形成纹孔。
植物组织培养实验报告
如对你有帮助，请购买下载打赏，谢谢！ 院(系、部) 化学与生物工程学院专业生物技术（师范）年级13级学号姓名组别第二组课程名称植物细胞工程学实验日期2016.3-6 指导老师实验名称植物组织培养综合实验 一、实验目的 1.熟悉MS培养基的组成，掌握贮备液的配制方法 2.学习、掌握植物组织固体培养基的配制和灭菌方法； 3.掌握超净工作台上的接种方法与注意事项，了解接种室的灭菌方法； 4.了解组织培养的基本程序； 5.掌握接种的方法和材料的培养过程； 6.掌握无菌操作技术，包括外植体除菌和接种技术； 7.观察外植体的生长状况、染菌状况，剔除染菌外植体； 8.了解MS培养基和1/2MS培养基的区别 二、实验原理 1.植物细胞的全能性 一切植物都由细胞构成，细胞是构成植物体的基本结构与功能单位。植物细胞含有全套遗传信息，具有形成完整植物的潜能。 2.植物细胞表现出全能性的条件 1.离体状态； 2.有一定的营养物质，激素和其他外界条件（无菌、温度、pH）； 3.选择性能优良、细胞全能性表达充分的基因型 3.无菌条件 把植物的组织、器官等，使其在人工控制的无菌条件下，使植物在人工培养基上繁殖。用于进行组织培养的组织、器官和细胞称为外植体。在组培中外植体都死带菌的，在接种前必须进行表面消毒，这时取得培养成功的最基本和重要的前体。组织培养的主要过程都是在无菌条件下进行的，所以所有的器材、植物体、接种室都应是无菌的。 4.脱分化与愈伤组织 已有特定结构与功能的植物组织，在一定条件下，其细胞被诱导改变原来的发育途径，逐步逆转其原有的分化形态，转变为具有分生能力的胚细胞的过程称为脱分化。脱分化所用的化学物质与MS培养基的区别是需要激素诱导。所以脱分化培养需在MS培养基上添加激素进行愈伤组织诱导。 5.培养基 植物组织培养常用的培养基为MS培养基。常用的凝固剂是琼脂,它的主要作用是使液体培养基凝固，琼脂本身并不提供任何营养，它只是一种高分予的碳水物从海藻中提取出来，仅溶解于热水，成为溶胶，冷却后(40℃以下)即凝固为固体状凝胶。琼脂的用量一般在4—10克／升之间。琼脂的凝固能力除与原料、厂家的加工方式等有关外，还与高压灭菌时的温度、时间、pH值等因素有关，长时间的高温会使凝固能力下降，过酸过碱加之高温会使琼脂发生水解而丧失凝固能力，存放时间过久，琼脂变褐，也会逐失去凝固能力。MS培养基属于富盐平衡培养基，特点是：无机盐浓度较高，元素间的比例适当，离子平衡性好，具有较强的缓冲性，因而在培养的过程中可维持较好的稳定性；营养丰富，在一般培养中无须额外加入复杂的有机成分；微量元素种类全，浓度高。这类培养基是目前使用最广泛的培养基。 6.生长调节物质 包括天然植物激素额人工激素类似物。植物激素是一类植物自身合成、同时对其生长发育具有重要调节作用的有机化合物。生长调节物质对于离题培养中的细胞分裂分
万家欢蓝莓庄园实习报告
云南大学本科学生毕业实习报告表 学院生命科学学院 专业园艺 学号20101070202 姓名陈灵剑 实习地点（单位）万家欢蓝莓庄园太阳魂葡萄酒庄云南省林科院云南农业大学蜂蜜研究所云南食用菌研究所云南省花卉研究所昆明制药厂医学生物所 实习时间2013 年7 月17 日至2013 年7 月25 日 2013 年10 月21 日
实习内容： 一、万家欢蓝莓庄园（2013年7月17日） 1、概况： 万家欢集团模式：果树种植—旅游—度假 近期以鲜果采摘，同时发展旅游为主；长远来说，以发展商品农业为主（对蓝莓进行深加工处理）。另外还发展养殖，只要为龟向山羊。 2、特色： 蓝莓庄园：品种以灿烂、WJH-CL-8-A为主 北美红杉大道、云南樱花、棕榈园也是一大特色 果园中红梨、苹果间作，与草木间作为景 3、介绍： 蓝莓：灌木，果实为浆果，产于北美，引进后早期在北方种植，适宜土壤PH为4.5-5.5，最适宜PH为5，需有机质较多，通透性要求较高，根系为短根系，种植时多为1m的株距，2m的行距。由于蓝莓中含有花青素、维机酸等物质，有利于人体健康，常年服用蓝莓有抗癌作用。万家欢采用容器苗，有大容器苗、中容器苗、小容器苗等，使用滴灌技术，育苗方面采用扦插育苗、组织培养，主要为扦插育苗。 北美红杉：是一种杉科北美红杉属落叶乔木，原产美国加利福尼亚州海岸，特大乔木，原产地高达110米，胸径达8米，常绿性；叶有鳞状叶与线形叶二型，球花雌雄同株；雄球花单生枝顶或叶腋；雄蕊多数；雌球花单生枝顶，下有多数鳞状叶；北美红杉树姿雄伟，枝叶密生，生长迅速。适用于湖畔、水边、草坪中孤植或群植，景观秀丽，也可沿园路两边列植，气势非凡。
植物组织培养实验室(组培室)规划设计
植物组织培养实验室 (组培室规划设计 2009年 05月 31日星期日 10:18一、实验室要求 理想的组织培养实验室应该建立在安静、清洁、远离污染源的地方, 最好在常年主风向的上风方向, 尽量减少污染。规模化生产的组织培养实验室最好建在交通方便的地方, 便于培养产品的运送。 实验室的建设均需考虑两个方面的问题:一是所从事的实验的性质, 即是生产性的还是研究性的, 是基本层次的还是较高层次的; 二是实验室的规模, 规模主要取决于经费和实验性质。 无论实验室的性质和规模如何,实验室设置的基本原则是:科学、高效、经济和实用。一个组织培养实验室必须满足 3个基本的需要:实验准备 (培养基制备、器皿洗涤、培养基和培养器皿灭菌、无菌操作和控制培养。此外,还可根据从事的实验要求来考虑辅助实验室及其各种附加设施,使实验室更加完善。 在进行植物组织培养工作之前,首先应对工作中需要哪些最基本的设备条件有个全面的了解, 以便因地制宜地利用现有房屋, 或新建、改建实验室。实验室的大小取决于工作的目的和规模。以工厂化生产为目的,实验室规模太小,则会限制生产,影响效率。在设计组织培养实验室时, 应按组织培养程序来没计, 避免某些环节倒排, 引起日后工作混乱。植物组织培养是在严格无菌的条件下进行的。要做到无菌的条件, 需要一定的设备、器材和用具, 同时还需要人工控制温度、光照、湿度等培养条件。 二、实验室组成 (一基本实验室 基本实验室包括准备室、洗涤灭菌室、无菌操作室、培养室、缓冲间,是组织培养实验所必须具备的基本条件。如进行工厂化生产,年产 4万 -20万, 需 3-4间实验用房,总面积 60平方米。
《植物组织培养》课程标准
《园林植物组织培养》课程标准 适用专业：园林技术、烟草栽培技术 第一部分前言 植物组织培养是在无菌条件下，将离体的植物材料（器官、组织、细胞、原生质体等）培养在人工控制的条件下，使其再生形成完整植株的技术。进入21世纪，生物技术发展迅猛，在植物生产中的应用愈来愈多，植物组织培养也成为生产中不可或缺的一种手段。基于工作过程的《植物组织培养》课程开发与设计，坚持以服务为宗旨，以就业为导向，直接面向生产实践，构建学校与企业供需和谐的技术平台，通过分解组培工作过程能力，将组培企业生产环节模块化，工作过程项目化、任务化，采用多种教学方法与手段，培养具有敬业精神和协作能力的专业技术人才。 一、课程性质 《植物组织培养》是园林技术、烟草栽培技术专业学习领域中的专业核心技术课程，是基于植物组织培养生产过程，突出培养学生组织培养操作技能应用的一门工学结合的课程。 本课程重视实践能力的培养，强调通过项目实战、理论与实训一体等方法，激励学生主动思考和大胆实践，进而形成积极的职业态度和和熟练的职业能力。 该课程以《植物及植物生理》、《植物生长与环境》等为前导课程，学习完本课程，学生直接进入顶岗实习阶段，在园林技术专业职业能力培养中起到了明显的支撑作用。 二、课程设计思路 围绕“工学结合，能力为本”的理念，通过校企合作，共同开发，根据组培具体工作岗位的典型工作任务，依照岗位对组培工作的职业能力要求，兼顾学生未来的可持续发展，运用项目引导教学、现场教学、企业实景教学等多种教学方法和手段，以培养学生组培职业工作能力为重点，选取教学内容。 1、面向职业岗位，注重素质结构 本课程是面向组培企业培养基制作工、组织培养接种工和组培苗驯化管理员3个岗位的需要，培养掌握组培核心职业能力的专业人才，提倡在全面素质结构基础上培养职业能力。 2、基于工作过程，建立职场环境 根据组培工作的内容，依照一般组培的工作流程，组织课程内容。依托“洋兰组培生产任务”、“铁皮石斛有机基质无土栽培技术研究”等课题，充分利用真实职业环境，组织参与真实职业活动，积累经验，锻炼学生的心智，培养学生合作共事能力，并使学生熟练掌握职业所需的主要知识、技能、态度和关键能力。 3、采用项目途径，开展体验参与 本课程构建“教、学、做一体”教学模式，以项目为载体，让学生在教师的指导下，通过实践、参与和合作等方式，实现项目目标，感受成功。在学习过程中进行情感和策略调整，以形成积极的学习态度，促进职业能力的提高。 4、注重过程评价，促进学生发展 建立能激励学生学习兴趣和自主学习能力发展的评价体系。注重学生学习的积极性和自信心。评价要有利于促进学生综合能力和健康人格的发展，促进教师不断提高教育教学水平，促进本课程的不断发展与完善。
植物组织培养实验参考答案9
植物组织培养实验复习题 一、名词解释 1、大量元素:指含量占生物总重量万分之一以上的元素，包括C、H、O、N、P、S、K、C、Mg等。 2、微量元素:含量占生物总重量万分之一以下的元素。 3、植物生长调节剂:人工合成的对植物的生长发育有调节作用的化学物质。 4、外植体：把由活植物体上切取下来以进行培养的那部分组织或器官 5、细胞全能性：植物体的每个细胞都含有该植物全部的遗传信息。 6、基础培养基：根据植物营养原理和植物组织离体培养的要求而人工配置的营养基质。 7、愈伤组织:人工培养基上由外植体组织的增生细胞产生的一团不定形的疏松排列的薄壁细胞。 8、褐变:植物组织中多酚氧化酶被激活，使酚类物被氧化成醌类物，可抑制其他酶活性，毒害外植体。 9、茎尖脱毒:茎尖分生区的病毒传播速度很慢，利用茎尖组培获得无病毒苗，来达到脱毒的目的。 10、不定芽：凡从叶、根或芽节间或是离体培养的愈伤组织上等通常不形成芽的部位生出的芽。 11、污染率：污染数除以接种数，再乘以100%。 12、诱导率：愈伤数除以未污染数，再乘以100%。 13、成活率：成活数除以未污染数，再乘以100%。 14、接种：将表面消毒的外植体转接到无菌的培养基上的过程。 15、消毒：消灭材料上的病菌（不损伤植物材料）。 16、灭菌：利用物理或化学的方法，达到组织培养所学的无菌环境。 17、母液：欲配培养液的浓缩液。 18、无病毒苗：指不含该种植物的主要危害病毒，即经检测主要危害病毒在植物内的存在表现为阴性反应的苗木。 19、植物组织培养：在无菌条件下，将离体的植物器官、组织、细胞以及原生质体，培养在无菌培养基上和人工控制的环境中，使其生长、分化、增殖，甚至长出新的植株的过程和技术。 20快速繁殖：采取培养基配制，材料灭菌，无菌培养，幼苗转移到苗床，成苗转至大田栽种五步走的繁殖培养方式 21、继代培养：继代培养是指愈伤组织在培养基上生长一段时间后，营养物枯竭，水分散失，并已经积累了一些代谢产物，此时需要将这些组织转移到新的培养基上的培养方式。 22、生根培养：将长到一定长度的微枝（>10mm）转移到生根培养基上培养。 23、玻璃化现象：试管苗的茎叶变成透明水渍状，生长畸形，增殖系数明显下降，难以诱导生根，即使诱导生根，其根系质量极差，移栽成活率极低。 24、暗培养： 25、液体培养：将所需培养物的悬浮液在液体培养基中培养的方法。 26、脱分化：一个成熟细胞回复到分生状态或胚性细胞状态的现象。 27、分化：由于细胞的分工而导致的细胞结构和功能的改变或发育方式改变的过程。 28、热处理脱毒：利用高温下使植物组织中的病毒部分钝化或完全失去活性的方法。 1 / 6 29、微尖嫁接技术：把极小（<0.2mm）的茎尖作为接穗嫁接到实生砧木上（无菌种子培养获无菌
生物技术实习报告5篇
生物技术实习报告5篇 每一年都会有很多的实习生走出校门踏进社会进行他们的 人生的第一步。然而，每一位出来实习生都得写自己的实习总结。下面是为大家整理的几篇生物技术实习报告范文，希望对大家有所帮助，仅供参考! 生物技术实习报告1 1通过深入各实习岗位进行综合性的实习，将所学的基础理论、基础知识和基本技能运用于实践之中，将所学的知识转化为能力，培养实际工作能力、科研能力。 2掌握现代生物技术手段与运用能力，训练实际操作技能。 3了解校外科研机构的实际工作情况，尤其是与所学专业相关的学科如生物学、化学、医学、药学等学科的研究情况和前沿状况。 4从实际出发，检验自己在态度、知识、能力、技能等四项指标方面所达到的程度。 [实习时间] 20XX
[实习地点] 中国科学院__植物研究所 [实习内容] 1、植物组织培养技术---------组培室 2、标本的采集、制作、鉴定、保藏技术---------标本馆内 3、植物分类、引种、栽培、鉴定、管理---------植物园内的苗圃基地 4、植物化学方面的研究-------------植物化学实验室 5、专业讲座、科普训练、学术报告----------专家指导 [实习人员] ______化学与生物技术学院05级生物技术专业 [实习方式] 1以小组为单位轮转到各个点实习，根据指导教师的安排及要求完成各项实习任务。 2积极主动，充分发挥个人能动性和团队合作精神。 [正文]
实习,是一种期待,是对自己成长的期待,是对自己角色开始 转换的期待,更是对自己梦想的期待;实习,也有一份惶恐,有对自 己缺乏信心的不安,有对自己无法适应新环境的担忧,更有怕自己会无所适从的焦虑. 带着一份希望和一份茫然来到了来到隶属中国科学院的昆 明植物研究所，开始我的实习生涯。为期一个月的时间我们先后在植物所的苗圃、标本管、植化室、组培室进行了实习。这次实习让我见识了许多，也收获了许多，不仅仅感受在这的那份自豪与优越，而是感染他们的那份敬业、求实与无私精神以及实习给我带来的种种思考。 一：苗圃 苗圃主要负责花卉的培育，植物园的花都是在苗圃先培养到一定程度后，再拿到园内供游客观赏，如秋海棠、千日红、石榴花、一串红等等，都是在苗圃先通过各种方法培养。一般的步骤有：播种、移植、育苗。播种方法基本上都是相通的，无非是土，水，光照，温度的管理，根据种子的大小，还有自己的设施条件选择适合自己的。 (一)播种 花卉播种一般在保护地区进行，至少应遮雨或适当遮光降温等基础设施，才能达到各种品种出芽所需要的条件，保证其出芽