家兔失血性休克及救治实验设计 - 副本
家兔失血性休克及救治实验设计
【实验目的】
1、了解失血性休克动物模型的复制方法并复制失血性休克的动物模型；
2、观察失血性休克发生前后家兔的血压、心率、呼吸频率等生理指标的变化；
3、观察和了解休克发生、发展过程中，实验动物肠系膜微循环血液灌流的变化特点；
4、讨论实验指标变化的原因及其病理生理学意义；
5、了解失血性休克的治疗，探讨失血性休克的发病机理，根据该发病机理设计救治措施并实施，根据观察抢救后动物功能代谢变化、微循环改变及血气指标变化验证救治措施是否有效。
【实验原理】
休克是多种原因引起的，以机体急性微循环障碍为主要特征，并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。失血导致血容量减少，是休克常见的病因。
休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减（如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血）超过总血量的20%以上时，极易导致急性循环障碍，组织有效血液灌流量不足，即休克的发生。
根据休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（微循环缺血期或缺血性缺氧期）；休克期（微循环淤血期或淤血性缺氧期）；休克晚期（微循环衰竭期或弥散性血管内凝血期）。但依失血程度及快慢的不同，各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。
对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容量，以提高有效循环血量、心排血量，改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物，改善微循环状态。具体至本实验所用盐酸多巴胺而言，其主要激动α受体、β受体和多巴胺受体，中等剂量能增加心肌收缩力及心搏出量，收缩压升高而不易诱发心律失常。值得注意的是，由于组织灌注减少，促使发生无氧代谢，导致血液中乳酸含量增高引发代谢性酸中毒，故本实验需要静脉注射NaHCO3以纠正代谢性酸中毒
【实验对象】
家兔，体重2.0～2.5kg。
【实验器材】
PowerLab 10T 主机，曲臂显微镜，微循环生物信号处理系统，i-STAT血气分析仪，兔台，电子天平，酒精灯，石棉网，手术器械一套，动脉插管2个，钢针3枚，动脉夹2个，血气分析片3片，气管插管，静脉插管各一个，150ml烧杯2只，5ml、20ml、50ml注射器各3支。
陆眠宁，0.9%生理盐水（175ml），肝素钠（规格2ml：12500U），葡萄糖注射液（20ml，规格20ml：10g），盐酸多巴胺（20μl，规格2ml：20mg），5%碳酸氢钠溶液（20ml）。
【观察指标】
实验前后家兔的动脉血压
实验前后家兔的心率
实验前后家兔的呼吸频率及幅度
实验前后家兔的血气指标
【实验步骤】
1、 称重麻醉: 取成年家兔一只，称重，肌肉注射陆眠宁，首次0.1ml/kg肌肉注射，15分钟后注射首次剂量的1/2，之后每三十分钟注射首次剂量的1/3。（以家兔对疼痛刺激无反应、角膜反射消失且生命体征平稳为麻醉成功指标）
2、 固定备皮: 将动物仰卧固定于兔台上，颈前部和腹部等手术部位剪毛备皮。
3、 气管插管: 颈部剪毛，正中切口，切口长约5～7cm，逐层钝性分离组织，暴露出气管并在其下穿一根粗结扎线，在器官上剪一倒T形切口，插入气管插管并结扎固定。气管插管一端通过压力换能器与PowerLab 10T 系统连接。
4、 动脉插管: 逐层钝性分离颈前部组织，在胸锁乳突肌内侧下方分离出双侧颈总动脉，每侧颈总动脉分离的长度约2.5～3cm；动脉插管前，远心端必须先结扎，用动脉夹夹住近心端；然后在一侧颈总动脉远心端结扎部位用眼科剪刀剪开动脉，开口大小约为动脉壁的1/3。插入前端已剪成斜口的动脉插管，结扎固定插管。该动脉插管已充满肝素钠溶液，并经三通开关与血压的压力换能器相连接；记录一段正常呼吸，血压曲线；另一侧颈总动脉插管（方法同上），用于与放血装置相连接，备放血与回输血液之用。
5、 观察微循环: 在腹部剑突与耻骨之间的中央，沿腹白线作长约10cm的正中切口，打开腹腔；将曲臂显微镜移至切口最近处，固定曲臂，并在微循环观察水槽内注入加温生理盐水（生理盐水盛于烧杯中，垫于石棉网上，提前用酒精灯间接加热）；选一段游离度较大的小肠袢，轻轻将其拉出，放在微循环观察水槽内；打开光源调节钮，调整光亮度，在四倍物镜下，选择微循环血管丰富、血流情况良好并能观察清晰的部位后，用盖板固定肠系膜。
6、 心电图描述操作: 取针型电极3枚，分别在二前肢和一后肢远端刺入皮下。把心电图线的外屏蔽线接在下肢，另外两根导线分别接在上肢。在屏幕上观察到心电图中R波正立，波幅较高而干扰少，表示操作正确无误。调整测量阈值线，读出心率。
7、 肝素化: 完成上述操作后，家兔经耳缘静脉注射2～3ml/kg 肝素钠溶液，使之达到全身肝素化。
8、 第一次血气分析: 打开放血侧颈总动脉的动脉夹，弃去最先流出的2～3滴血液后，立即将插管口对准电极板芯片的注血口，注入全血到标准刻度，盖上小盖，插入i-STAT血气分析仪，进行血气分析。
【失血性休克及救治实验的操作与观察】
1、记录正常呼吸与血压： 放开血压换能器侧的颈总动脉夹，观察血压曲线，应当有适当的收缩压和舒张压的差幅波动，如果不明显，应检查导管的畅通性，考察导管有无曲折或导管内有无气泡等情况。记录一段正常的呼吸，血压，计数正常的呼吸频率。
2、微循环观察： 用四倍物镜观察屏幕上所显示的微循环状态，选取有微动脉或微静脉存在部位，并有毛细血管网或直接通路开放的区域，记录微循环血液的流态、红细胞聚集状态，并选择有代表的1～3条血管，记录该血管中血液流速情况。
3、输入标志符： 待完成以上操作时，在键输标志符“N0”记录正常状况的指标数据。经过适当时间记录后，再键入标志符“N1”，表示正常状况的记录结束，停止记录。
*若此时血压较低，血流欠佳，可经耳缘静脉快速注射25%葡萄糖溶液10～20ml左右使扩容（或经动脉缓慢推注），然后更改相应标志符“M0”“M1”等，重复“失血性休克实验的操作与观察步骤”的3操作，并稳定数分钟。
4、放血引起失血性休克：
（1）第一次放血：设置标志符“A1”，由颈动脉缓慢放血（<2ml/min）至平均血压降至原水平2/3，记录失血量和失血时间，作标志符“A2”。然后再稳定观察3min，记录体征及各各项指标的变化，观察微循环的血流变化及机体是否出现代偿性变化。
（2）对休克动物实施第一次救治措施：代偿变化观察结束后，设置标志符“A3”，静脉输入生理盐水，输液速度40～60滴/min，输液总量约为失血量的2倍，同时每输液50ml便观察并记录体征及各项指标的变化。生理盐水总量输液完毕后，作标志符“A4”，观察微循环的血流变化及机体是否出现代偿性变化。
（3）回输血：代偿变化观察结束后，设置标志符“A5”，将放出并存放于注射器中的血液经颈总动脉缓慢回输，结束后作标志符“A6”，观察记录各项生理指标及微循环的血流变化。
（4）第二次放血与第二次血气分析：设置标志符“B1”，由颈动脉快速放血至平均血压降至原水平2/3，记录失血量和失血时间，设置标志符“B2”。然后再稳定观察3min，记录体征及
各各项指标的变化，观察微循环的血流变化及机体是否出现代偿性变化，测定血气变化指标（同第一次血气分析）。
（5）对休克动物实施第二次救治措施与第三次血气分析：设置标志符“B3”，根据第二次放血量取等量生理盐水注射，注射后预再静脉点滴给药高剂量盐酸多巴胺（20μg/kg，规格2ml：20mg）,参照熊远珍的《实验动物与人用药量的新换算》，单次1min 内静脉注射盐酸多巴胺浓度为20μg/kg ×0.3=60μg/kg。设家兔体重m kg，则用药60m (μg)，即为3m/500 (ml)。将该体积的盐酸多巴胺溶液溶于15ml 生理盐水中静脉点滴给药，给药完成即为抢救即刻，设置标志符“B4”，记录体征及各项指标的变化，观察微循环血流变化。分别等待15min 和30min，记录两次体征及各项生理指标的变化，测定血气变化指标（同上述血气变化指标），观察微循环血流变化。
（6）纠正代谢性酸中毒与第四次血气分析：根据血气分析测得BE 值，通过计算所需补碱量进行治疗。NaHCO 3补充量（mmol）=BE 绝对值×体重（kg）×0.3（0.3是HCO 3—进入体内分布的间隙，即体重×30%）。5% NaHCO 3 1ml=0.6mmol。按照计算的5% NaHCO 3量经颈外浅静脉输入，进行纠正代谢性酸中毒治疗，测定血气变化指标（同第一次血气分析）。
5、数据分析
（1）按照以上操作中记录的标志符，从头开始，展开横轴，在每两个标志符间，选取一组或多组连续的记录号，为区段；对已入选的区段做标记；屏幕右方所纵列的数据为该区段各指标的均数值。
（2）标记的区段，应当包括正常状况（造病前）和各种造病中、造病后以及代偿与治疗的变化过程的全部数值。
（3）然后，按打印键，在打印机上获得结果，即实验观察过程中全部记录数值变化的曲线图和所标记的各区段均数值。
【注意事项】
1、劲总动脉位于气管食管沟内，结扎时应避开伴行的迷走神经。
2、暂时性阻断血流应使用动脉夹，忌用血管钳夹持血管。
3、血管换能器应处于家兔心脏同一水平。
操作步骤 标志符
放血前（作为正常对照） N0～N1
放血开始
放血结束 维持3min 后补液（用药）开始 补液（用药）结束 开始回输血 回输血结束 第1次放血、补液、回输血
A1 A2 A3 A4 A5 A6
第2次放血、用药 B1 B2 B3
B4
4、各管道系统内应避免气泡存在。
5、生物信号处理仪上各种旋钮、开关、切忌随意扳动；计算机上显示的各种参数，亦忌随
意切换更改。
6、多次放血与回输血液，所用50ml注射器体与柄两层玻璃间的少量血液黏性增高，可出
现无法抽吸的情况，所以，注射器使用两次后，应在回输血液后，在阻断连接的导管的情况下，
取下注射器，自来水清洗后再用生理盐水与少量稀肝素液清洗，再次安装使用。
7、后两次放血时，可能出现血压降低程度不明显，可能与血压换能器相连接的导管前端（在
动脉内）出现血栓形成与堵塞导管有关。如果从手术开始后的各项操作都能在较短时间内顺利完
成，可无此情况发生。如果各项工作的时间延长过于明显，常出现上述情况。如果出现，可请实
验室技术人员协助检查血压换能器的工作情况。
8、实验过程中的记录为连续的，若遇到图像变动使测速失误或调速失误时，及时作好标志
符和文字记录后，中断记录。待调整完毕后，重新标志，继续连续记录。
9、及时补充、更换微循环观察水槽里的生理盐水，注意水温。
【预期结果】
动脉血压 心率 呼吸频率 呼吸幅度 血液pH 放血休克期 进行性下降 加快 加快 加深 下降 输生理盐水 缓慢上升 下降 减缓 减弱 略有上升 回输血 进行性上升 下降 减缓 减弱 上升 注射盐酸多巴胺 进行性上升 下降 减缓 减弱 影响双向性 注射NaHCO3/NaCl溶液 缓慢下降至正常 逐渐恢复正常 减缓 减弱 显著上升
【思考讨论】
1、失血是否引起了休克的发生？
答： 失血可以引起休克，但休克不一定是失血引起的。休克按原理可划分为低血容量性休克，血管扩张性休克，心源性休克。
2、试述实验观察的各项指标与休克时主要功能代谢变化的关系。
答： 动脉血压：刚开始时，因为血容量降低，回心血量下降，心脏搏出量降低，血压降低。
代偿开始后，可能下降速度减缓，甚至有所恢复，代偿失效后，继续下降。
呼吸：休克早期，呼吸加深加快；大量失血后，组织缺氧，酸性物质大量产生，继续加深加快；代偿期结束后，呼吸变慢变浅
心率：先加快，后减慢。
3、失血性休克的发生及其严重程度与失血速度、失血量的相互关系是什么？
答： 失血量和失血速度决定了失血性休克的发生与否。当失血速度过快（如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血）或当失血量超过总血量的20%以上，极容易导致急性循环障碍，组织有效血液灌流量不足，发生休克。失血性休克的严重程度随失血速度和失血量的增加而增加，休克往往是在快速、大量（超过总血量的30%～35%）失血而又得不到及时补充的情况下发生的，当血容量不足超越代偿功能时，就会发生休克。
4、了解失血后的代偿情况和回输血反应，对临床治疗休克患者有什么指导意义？
答： 通过动物模型实验我们可了解失血后的主要征兆、症状从而制定针对不同症状的应对措施，本实验中着重对失血后机体的代偿情况和回输血反应进行研究对临床急救具有至关重要的作用。在临床表现上休克分休克代偿期和休克抑制期两阶段，若我们能在代偿早期注意到相关病理征状的发生（如心率加快、过度换气、尿量减少）则可及时控制休克的发生，避免疾病的发展。临床上对失血量的估算比较困难，但在实验中我们可以建立放血量和血压脉搏间的对应关系，直观观察失血性休克中失血量所带来影响。对于回输血反应的研究帮助临床上建立血容量的补充原则，使补液补血的时机得到精确有效的控制。
家兔失血性休克的药物急救实验(呼吸)
休克的药物急救—呼吸 实验目的 1.学会复制失血性休克的模型； 2.了解抢救休克时扩容及应用血管活性药物的意义。 实验原理 根据微循环学说，休克定义为各种原因引起有效循环血量减少，微循环灌流障碍，引起重要生命器官血液灌注不足，从而导致细胞功能紊乱的全身性病理过程。休克的病因有多种，本实验采用颈动脉放血的方法，直接减少有效循环血量，复制低血容量性休克模型。由于放血一定程度后可使循环血量不足，静脉回心血量减少，血压下降，通过压力感受器反射，引起交感神经兴奋，外周血管收缩，组织灌流量急剧减少，导致失血性休克。失血后呼吸加快。休克时，呼吸会停止。通过输液，补充血容量及药物，抢救休克。 器材药品 动物：家兔，生物呼吸实验系统，压力换能器，动物实验手术器械一套，动脉插管，静脉输液装置一套，气管插管，动脉夹，结扎线，纱布，注射器，兔台，秤。 20%乌拉坦溶液，生理盐水， 0.2%肝素生理盐水，去甲基肾上腺素，烧杯。 实验步骤 1.称重：从耳缘静脉缓慢注射20%乌拉坦5ml/kg. 2.固定 3.剪毛：手术部位是颈部和一侧腹股沟，把这两个部位的毛剪干净。剪毛的时候，用左手把皮肤绷紧，右手用粗剪刀贴近皮肤剪毛。 4分离血管： （1）颈外静脉--输血输液，作为抢救的通路颈外静脉位于颈部两侧皮下，很容易分辨。它的特点是壁薄，粗大，色暗，没有明显的搏动,分离尽量游离得长一些，下面穿两根线备用。 （2）颈动脉--放血。颈部做长4-6cm的皮肤切口，逐层钝性分离皮下组织，暴露出气管，分离气管，翻开肌肉层，就可以看到颈总动脉，颈总动脉的特点是搏动明显、粉红色、壁韧，很容易分辨。把颈总动脉小心分离出来，尽量游离得长一些，下面穿两根线备用。 5.插管： （1）气管插管，连张力换能器，记录呼吸. （2）静脉插管：颈外静脉插管，一定要避免进去气泡，防止发生气栓，所以静脉插管要事先通满生理盐水，排净里面的气泡。先夹闭近心端，再结扎远心端，。在靠近远心端剪口，插入静脉插管以后，可以松开动脉夹，向静脉内送入一段，然后结扎。 （3）动脉插管：颈总动脉插管提前用生理盐水充满。结扎远心端，动脉夹夹闭近心端，用眼科剪在靠近远心端处剪开一个"V"形斜口，动脉插管用生理盐水润滑一下，插入动脉插管。动脉结扎线提前要湿润一下，结扎一定要牢固。 6.肝素化：从耳缘静脉注射肝素5ml/kg。 7描述正常呼吸线 8.放血：动脉插管的管与50ml注射器连，打开管，设血从三通管流到注射器，一直到呼吸下降到趋近0
家兔失血性休克实验报告(20200525092434)
实验二十六家兔失血性休克 一：实验目的 复制失血性休克的家兔模型；观察失血性休克的发生发展过程中机体的变化，探讨其发生机制。 二：实验方法 通过对比同一只家兔正常时和大量失血时的角膜反射、血压、心跳频率、呼吸频率、呼吸幅度以及红细胞压积来观察失血性休克时机 体的变化。 三：实验步骤 1.取健康家兔一只称重、固定，用1％普鲁卡因溶液皮下浸润麻醉颈部和股三角区动脉搏动明显部位，分离颈总动脉和股动脉，在两动脉下穿双线备用 2.耳缘静脉注射1％肝素溶液 1.5ml/Kg 3.颈总动脉插管以及股动脉插管，股动脉近心端用动脉夹夹住，以备 放血用 4.观察正常时的各项指标，同时用比积管取一管血作为正常红细胞压 积测定 5.从股动脉大量放血，直至血压降至正常血压一半，观察各项指标的 变化。10min后再次从股动脉取血做红细胞压积测定，将两管置于离 心机，4000r/min，离心5min，读数。读数时注意取斜面最高点和最低点数值之和的一半。单位为ml％，读数结果乘以二才为最终结果6.大量放血后15min时观察各项指标
四：实验结果 正常时： 大量失血后即刻： 大量失血十五分钟后：
家兔失血性休克结果 正常大量放血后即刻15min 角膜反射反应迅速反应迅速反应迅速 血压（mmHg）31.30 18.20 20.67 心跳频率（次/min）260 285 166频率（次/min）80 98 94 呼吸 强度正常加深加深 红细胞压积（ml％）48 38（失血后10min）家兔失血性休克时，嘴唇发绀 五：讨论 1.为何大量放血后家兔血压会下降？之后血压又有所回升？ 在突然对家兔实施大量放血时，家兔血容量降低，回心血量急
家兔失血性休克及其抢救
家兔失血性休克及其抢救 【实验目的】复试家兔失血性休克。观察家兔在失血性休克时的表现及微循环变化，探讨失血性休克的发生机制。了解失血性休克的抢救。 【摘要】 目的：学习失血性休克动物模型的复制方法、观察休克各期的主要临床变化、了解其机制及通过药物及输液治疗，了解各种治疗的不同效果。 方法：家兔麻醉后，分离并进行左、右两侧颈总动脉、右侧颈外静脉插管，正确连接管道并用肝素冲洗，进入电脑程序，描记正常血压，快速放血，使血压维持60mmHg，血压稳定后，夹闭右颈总动脉，记录并观察血压变化。待血压稳定后，再放血，使血压降至40mmHg并维持，在维持期间的20min内记录并观察血压变化。 结果：放血后，家兔血压下降，大量放血后血压明显下降，输血后血压急剧上升，并最终达到正常水平。 结论：家兔少量放血后，家兔血压下降，但通过代偿反应可以在短时间内使血压回复到正常时或稍低。家兔大量放血后，家兔血压明显下降。输血、输液后血压急剧上升，并最终达到正常水平。 【关键词】失血性休克、抢救、输液治疗。 【实验对象】健康家兔一只 【实验器材和药品】 1、仪器：家兔手术台、常用手术器械一套、止血钳、眼科剪、支架、动脉插管、动脉夹、血压换能器、RM6240生物信号采集处理系统、照明灯、纱布、丝线、注射器。 2、试剂：生理盐水、氨基甲酸乙酯、肝素。 【实验步骤】 1、家兔称重，用5ml/kg氨基甲酸乙酯麻醉家兔，固定家兔，剪去颈部被毛，切开颈部皮肤 5~7cm，钝性分离颈部肌肉、暴露颈部气管和血管神经鞘。用玻璃分针分离2~3cm长两侧颈总动脉，各穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。用玻璃分针分离2~3cm长右侧颈外静脉，穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。 2、右侧颈总动脉进行动脉插管：将分离出的右侧颈总动脉远心端用线结扎，近心端用动脉夹将动脉夹住。在远心端结扎线下方用眼科剪在动脉上作一小“V”形切口，将动脉插管朝心脏方向插入动脉，确认插入动脉后用备用线将血管与插管结扎固定，再将结扎线固定于插管上，防止插管从血管中滑脱。为避免插管内血液凝固，静脉注射肝素。同样方法进行左侧颈总动脉插管。 3、右侧颈外静脉进行静脉插管：提起近心端的线，于血管充盈后结扎远心端，靠近结扎线处剪一小口，将已排完空气并与测中心静脉压和输液的装置相连的静脉插管插入右侧颈外静脉内5～7 cm，并结扎、固定，慢速度输液，以利于测中心静脉压和进行输液。 4、左侧颈总动脉进行动动脉插管，将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。记录动脉血压曲线，打开右侧颈总动脉动脉夹，少量放血（10ml），使血压降60mmHg，血压稳定后，夹闭右颈总动脉，记录并观察血压变化。待血压、呼吸稳定后，再大量放血，使血压降至40mmHg，在维持期间的20min内使血压维持在40mmHg，记录并观察血压变化。记录放血总量。 5、抢救，将注射器内的血液从颈外静脉输回原血。输血后，观察血压是否恢复正常。然后再输入生理盐水进行抢救，直至血压恢复正常。 【实验结果】
失血性休克及抢救
失血性休克及抢救 一、实验目的 1.学习动脉插管测量和记录动脉血压并观察神经体液因素对动脉血压的调节作用。 2.复制家兔失血性休克模型，观察兔在失血性休克时的表现及循环变化,探讨失血性休克的发病机理并分析学习实施抢救措施。 二、实验材料及方法 [动物]：家兔，雄性，体重2.73kg [药品]：20%乌拉坦、1%普鲁卡因、0.9%氯化钠注射液、125U/ml肝素溶液、7.5%高渗盐水、5%葡萄糖、低分子量右旋糖苷、氨茶碱、去甲肾上腺素、乙酰胆碱、地塞米松、多巴胺、酚妥拉明、肾上腺素、异丙肾上腺素、10%氯化钙溶液、4% NaHCO3。 [器材]：手术器械、注射器（1ml, 5ml,10ml）、动脉插管、血压换能器、试管、离心管、头皮针、针头（9号、16号）、兔手术台、细绳若干、听诊器、RM6240多道生理信号采集处理系统、WZ-50G恒量进样器、微循环观察装置。 [实验方法]： 1. 家兔称重，为 2.73kg。 2. 按5ml/kg经耳缘静脉先快后慢推注20%乌拉坦1 3.65ml。 3. 待家兔结膜、疼痛反射消失，确认麻醉完全并且呼吸心跳等体征正常时将其于仰卧位固定在兔手术台上，固定四肢，棉绳钩住门齿并拉紧固定于兔台铁柱上。 4. 手术局部剪毛，再进行局部麻醉（颈前正中注射1%普鲁卡因0.4ml），颈前正中切开皮肤并用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露左侧颈总动脉和迷走神经，用玻璃分针仔细分离血管与神经。 5. 在电脑软件中找到循环系统，进入系统实验信号记录状态，调节仪器参数。将压力换能器固定于铁支架上，使换能器的位置尽量与实验家兔的心脏在同一水平面上。然后将换能器输入至RM6240生物信号采集系统一通道。压力换能器的另一端与三通管相连。三通管的一个接头将与动脉插管相连。在将动脉插管插入左颈总动脉前，先用盛有肝素的注射器与三通管另一接头相连，旋动三通管上的开关，使动脉插管与注射器相通，推动注射器，排空动脉插管中的气体，使动脉插管内充满肝素溶液，然后关闭三通管。 6. 结扎左侧颈总动脉远心端，用动脉夹夹住近心端，在动脉下穿两根线备用，用眼科剪
家兔失血性休克及其实验性治疗
【实验题目】 家兔失血性休克及其实验性治疗 病例： 男，15岁，12天前由3米高处坠落，突发心慌，出汗1小时。 患者12天前上树玩耍，失手由3米高树坠下。臀部及左季肋部着地，除受伤部位疼痛外，可以行走。曾到医院检查：P84次/分，BP108/80mmHg，胸部X线透视未见异常，要求回家，医生同意随诊检查，嘱如有不适立即返院。1小时前大便时突感心慌出虚汗，立即来院。 查体：P120次/分，BP80/60mmHg，神尚清，口唇青紫，四肢发冷，尿量减少，心肺未见异常，全腹压痛，左上腹为著，伴有轻度肌紧张、反跳痛。移动性浊音（+）。肠鸣音8次/分。辅助检查：血红蛋白80g/L。 请做出临床诊断（诊断依据？），该病出于何种时期？ 初步诊断： 失血性休克，由脾破裂引发，腹部闭合性损伤。 诊断依据： （1）左季肋部的外伤史； （2）有心悸、出汗、脉搏加快、血压下降、口唇青紫等失血性休克的表现； （3）有腹腔积液（积血）的腹部体征； （4）血红蛋白下降。 该病处于休克期（微循环扩张期） 【实验目的】 1. 复制失血性休克的动物模型 2. 观察失血性休克时和抢救过程中动物的功能代谢变化及微循环改变 3. 了解失血性休克的抢救治疗方案 【实验原理】 休克是多种原因引起的，包括大出血、创伤、中毒、烧伤、窒息、感染、过敏、心脏泵功能衰竭等，以机体微循环功能紊乱为主要特征，并可导致多器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。失血导致血容量减少，是休克常见的病因。休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减，超过总血量的25%~30%，超出机体代偿的能力，即可引起心排血量和平均动脉压下降而发生休克。 根据失血性休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期、休克中期、休克晚期。但依失血程度及速度的不同，各期持续时间、机体的功能代谢变化及临床表现均有所不同。 对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容量，以提高有效循环血量、心排血量，
家兔失血性休克及其抢救
家兔失血性休克及其抢救 [摘要]目的：学习失血性休克动物模型的复制方法、观察休克各期的主要临床变化、了解其机制及通过药物及输液治疗，了解各种治疗的不同效果。方法：家兔麻醉后，分离并进行左、右两侧颈总动脉、右侧颈外静脉插管，正确连接管道并用肝素冲洗，进入电脑程序，描记正常血压，快速放血，使血压维持60mmHg，血压稳定后，夹闭右颈总动脉，记录并观察血压变化。待血压稳定后，再放血，使血压降至40mmHg并维持，在维持期间的20min内记录并观察血压变化。结果：放血后，家兔血压下降，大量放血后血压明显下降，输血后血压急剧上升，并最终达到正常水平。结论：家兔少量放血后，家兔血压下降，但通过代偿反应可以在短时间内使血压回复到正常时或稍低。家兔大量放血后，家兔血压明显下降。输血、输液后血压急剧上升，并最终达到正常水平。 [关键词]失血性休克、抢救、输液治疗。 1、实验材料与方法 1.1实验动物家兔 1.2主要试剂及仪器家兔手术台、常用手术器械一套、止血钳、眼科剪、支架、动脉插管、动脉夹、血压换能器、RM6240生物信号采集处理系统、照明灯、纱布、丝线、注射器、生理盐水、氨基甲酸乙酯、肝素。 1.3实验过程 1.3.1打开RM6240生物信号采集处理系统，接通压力传感器。从显示器的试验项目中找出“循环试验”的“家兔血压调节”，打开一通道，快速调零。 1.3.2家兔称重，用5ml/kg氨基甲酸乙酯麻醉家兔，固定家兔，剪去颈部被毛，切开颈部皮肤5~7cm，钝性分离颈部肌肉、暴露颈部气管和血管神经鞘。用玻璃分针分离2~3cm长两侧颈总动脉，各穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。用玻璃分针分离2~3cm长右侧颈外静脉，穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。 1.3.3右侧颈总动脉进行动动脉插管：将分离出的右侧颈总动脉远心端用线结扎，近心端用动脉夹将动脉夹住。在远心端结扎线下方用眼科剪在动脉上作一小“V”形切口，将动脉插管朝心脏方向插入动脉，确认插入动脉后用备用线将血管与插管结扎固定，再将结扎线固定于插
家兔失血性休克及抢救
家兔失血性休克及抢救 （一）实验目的 1.观察休克发展过程中机体的变化。 2.掌握急性失血性休克模型复制方法。 3.分析讨论急性失血性休克发病机制。 （二）实验原理 抗休克治疗的原则：纠酸、扩容、应用血管活性药物防治细胞损伤。 实验中所采用的药物主要的作用是： ●山莨菪碱大剂量时可解除小血管痉挛增加组织血流灌注量，改善微循环。 ●异丙肾上腺素主要作用有：①心输出量增强②血管舒张，外周阻力下降。③使收缩 压升高，舒张压降低，从而使脉压差升高，但大剂量时会使血压下降明显。在治疗休克的过程中，在补足血容量的基础上，异丙肾上腺素对中心静脉压高和心输出量低的休克有一定疗效。 ●去甲肾上腺素属于α受体激动药，①主要作用有激动血管α1受体，收缩血管，使 小动脉、小静脉收缩。②小剂量时兴奋心脏，使收缩压显著上升，舒张压上升，脉压差增大产生抗休克作用。大剂量时，会产生缩血管作用，使收缩压、舒张压均升高，但脉压差会下降，引起组织灌流量减少。 ●此外，生理盐水、中分子右旋糖酐、全血均用于扩充血容量。可以逐一试加看动脉 升高情况比较扩容升压效果。 （三）实验材料 1.实验对象：家兔。 2.实验器材及药品 静脉输液装置一套，三通开关，50 ml、20 ml、10 ml注射器各一个，肝素（500μ/ ml），1％普鲁卡因，生理盐水，动物手术器械一套，呼吸血压描记装置，低分子右旋糖苷，20％乌拉坦溶液、台氏液、去甲肾上腺素、山莨菪碱（654-2）。 （四）实验方法 1.家兔称重后，以25％乌拉坦4ml/kg，经耳缘静脉注射。麻醉后，将家兔仰卧背位固定于手术台上。 2.颈部手术：颈部剪毛，正中切口5～6cm，分离气管、左侧颈总动脉及右侧颈外静脉（表浅、色深，较粗，刺激时可见血管收缩变细）。穿两线，备用。 3.股部手术：一侧股三角区剪毛，触及股动脉搏动，辨明股动脉走向，沿动脉走向做长约3～5cm切口，在股三角区即可见股动脉、股静脉和股神经，分离股动脉。穿两线备用。 4.肠系膜微循环标本的制备（示教）：腹正中切口，沿左腹直肌旁作约6cm长的纵行切口，钝性分离。在腹腔内可见淡粉红色、肠壁较饱满的盲肠，紧贴前腹壁在左下腹侧，用卵圆钳钳出盲肠游离端阑尾后，将阑尾末端上8～12cm处的回肠袢轻轻拉出腹外。用止血钳夹住腹部切口，以防肠管外溢。用温生理盐水纱布保护平铺固定。将肠系膜放置在恒温微循环灌流盒内以38℃台氏液恒温灌流，并将兔系膜灌流盒固定于显微镜镜台上，在显微镜下观察肠系膜微循环。 （1）辨认微动脉（细，色浅）、微静脉（粗，色深） （2）观察肠系膜血流速度、血流量及血管内径。 5.左侧颈总动脉向心端方向插管，电传感器相连，插管前将电传感器用注射器注满肝素，注意不要留有气泡。描记血压。 6.右侧颈外静脉向心端方向插管，使导管与输液瓶相通，插管前注意将输液系统管内冲满液
家兔失血性休克及抢救实验报告
家兔失血性休克及抢救实验报告 篇一：休克实验报告 家兔失血性休克及其抢救 实验人员5人第2组班 一、实验目的 1. 复制家兔失血性休克模型，观察少量失血和大量失血对家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的影响。探讨其发生机制。 2. 用颈外静脉输血和输液的方法抢救失血性休克，观察抢救过程中家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的变化。 二、实验材料和方法 实验器械：兔手术台，常规手术器械，注射器，动脉夹，动脉插管，电刺激连线，血压换能器，三通 管，铁架台，棉线，纱布 实验仪器：电脑，RM6240生物信号采集系统
实验药品：20%氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水/10g 三、实验对象 家兔1只由浙江中医药大学动物实验中心提供 四、实验步骤 1、仪器调试： 首先打开电脑，选择MedLab生物信号处理系统；从第1、2、3通道中选择1个通道，记录动脉血压。 其次将血压换能器连接线与相应的通道相连，检查换能器是否正常,加肝素溶液排除空泡，先清零，血压0mmH 2、家兔称重、麻醉和固定 取家兔一只，称重：，用20%氨基甲酸乙酯以5ml /Kg（体重）, 耳缘静脉缓慢注射麻醉, 共注射14ml, 至呼吸深而慢、反射迟钝（角膜反射、夹肢反射）为止。把兔子以背位固定法固定。 3、麻醉起效后手术 颈部手术——左颈总动脉、右颈外静脉、右颈总动脉插管
（1）颈部备皮，作颈部，正中3～5cm切口，左右颈总动脉分离，穿线标记，备用。 （2）左颈总动脉插管术---测血压 动脉插管及换能器肝素化，左颈总动脉远心端结扎，近心端动脉夹夹闭，动脉前壁倒“V”切口动脉插管插入，结扎固定。放开动脉夹记录正常动脉血压。 （3）右颈外静脉插管术—输血输液 排掉输液管中的空气。右颈静脉近心端动脉夹夹闭，远心端结扎，静脉前壁倒“V”切口，输液管插入，固定。缓慢输液，保持通畅。 （4）. 右颈总动脉插管术——失血造模 用肝素抗凝剂排掉50ml注射器（其中保留少许肝素液）和动脉插管中空气，右颈总动脉远心端结扎，近心端动脉夹夹闭，动脉前壁倒“V”切口动脉插管插入，结扎固定。 复制失血性休克模型：右颈总动脉插管放血入50ml注射器
失血性休克实验设计
家兔失血性休克 【实验目的】 1.了解家兔失血性休克模型的复制方法。 2.观察休克不同时期呼吸的改变、微循环的改变和血液动力学的改变。 3.掌握家兔麻醉、颈动静脉插管、气管插管、肠系膜微循环观察与放血的方法。 4.掌握输尿管插管技术。 【实验原理】 动脉放血使循环血量减少，当少量失血时，有效循环血量减少可通过机体的一系列代偿措施（包括微循环的灌流量明显减少），使血压不出现明显的降低。但当快速失血量超过30%或大量失血时，有效循环血量急剧减少，超出机体的代偿能力，引起心输出量减少，血压降低和微循环严重和长时间缺血与缺氧，引起休克。 不同休克代偿阶段的临床表现及代偿机制如下图： 表一休克代偿期的临床表现和代偿机制
表二休克进展期临床表现和机制 表三休克晚期临床表现及机制 【实验动物】 家兔，1只，1.5~2.0kg 【药品与器材】 25％乌拉坦溶液，25％葡萄糖溶液，0.9％生理盐水，0.7%肝素。 兔手术台，电子称，微循环生物信号处理系统，手术器械一套，动脉插管，气管插管，5m1、20 ml、50ml注射器各2支。 【观察指标】 一般指标：皮肤黏膜状态、一般状态 血流动力学指标：血压、心率、脉压差 呼吸系统观察指标：呼吸频率、深度、节律 肠系膜微循环观察指标：血管口径、血液流速、毛细血管开放、细胞流态、白细胞粘附【实验内容】 1.家兔捉拿，称重。 2.麻醉：耳缘静脉缓慢注射25％乌拉坦溶液（以4ml/kg体重计算麻醉剂总量），作全身 麻醉。注射速度应缓慢，同时密切观察家兔的肌张力和反射等的变化估计合适的麻醉剂用量。一般地说，当出现耳朵下垂，角膜反射明显迟钝或消失，四肢瘫软时，即可停用麻醉剂。 3.动物固定将动物仰卧固定于兔手术台上，颈前部和腹部等手术部位剪毛备皮。
家兔休克实验自主设计
糖皮质激素及人参皂甙对治疗失血性休克的实验观察08级八年制一大班一小班第1小组，丁家骏、吴炜、项杨威、张赟翔、张嘉惠、王一卉 【实验目的】 1. 学会家兔失血性休克的造模方法。 2. 观察失血性休克各阶段家兔的各项生理指标变化，从而进一步了解休克发生发展的机制及对机体的影响。 3. 观察休克过程中家兔肠系膜微循环变化特点。 4. 探讨糖皮质激素氢化可的松对治疗失血性休克发生，以及人参皂甙在急救治疗中疗效观察。 【实验原理】 失血可使有效循环血量减少。失血的程度不同，对机体的影响也不同。少量失血可通过机体的一系列抗损伤措施，使血压不出现明显的降低；当机体快速失血过多、过快时，可超出机体的抗损伤能力，导致休克的发生。但积极的药物治疗措施和及时的补充循环血量可有效改善血流动力学变化和增强机体的抗休克能力。休克的淤血缺氧期时微循环血液减慢，毛细血管静水压增高，加之血管壁通透性增加，水与低分子物质大量漏出血管外，使血液浓缩，血液粘稠度增加，红细胞聚集趋向性增加。平衡盐溶液可补充血容量和稀释血液，使血流加速，从而改善微循环；同时，也能纠正酸中毒，有利于微循环改善和心功能的维持。糖皮质激素对细胞器有保护作用，还有利于增强应激能力，进而提高了抗休克的能力。人参皂甙（什么类型？）可抑制心肌膜的过氧化，抑制交感肾上腺髓质过度兴奋性，从而改善微循环，增强心肌收缩力，也能达到抗休克的目的。 【实验材料】 1．实验对象：家兔； 2．实验试剂：25％乌拉坦溶液，0.9％生理盐水，0.7%肝素，乳酸钠林格液1000ml，氢化可的松25mg（5ml），10%葡萄糖溶液，人参皂甙注射液10ml。（人参皂甙是什么类型？能否静脉注射？注射剂量，请在周一下午告诉我，以便购买。） 3．实验仪器：铁架台，电子秤，powerlab生物信号采集系统，i-STAT血气分析仪，微循环生物信号处理系统，心电图仪器，体温计1支，手术器械一套，兔手术台，50ml、10ml注射器各1支，5ml、2ml、1ml注射器各2支，及针头8个，血管插管，动脉夹2个，呼吸、血压换能器各1个，输液装置，棉线若干，纱布。 4．手术步骤和失血性实验前各观察指标的准备工作
家兔失血性休克及其抢救
家兔失血性休克及其抢救 （浙江中医药大学） 【摘要】：目的：复制家兔失血性休克模型。观察家兔在失血性休克时的血压表现，探讨失血性休克的发生机制。了解失血性休克的抢救。方法：用右颈总动脉间歇性放血，左颈总动脉用以测量血压，右颈总静脉输血、输液进行抢救。结果：放血10ml时，家兔血压降到60mmHg，但是在短时间内可回升；大量放血到40mmHg，血压仍会回升但自我恢复能力降低；进行输血输液等治疗措施后，大致恢复正常。结论：少量失血，机体的自身代偿作用可以使血压恢复正常；失血过多，机体会发生失代偿作用；经输血输液等治疗后，血压可恢复基本正常。 【关键词】失血性休克；抢救 休克是多种原因引起的急性循环障碍，使全身组织血液灌流量严重不足，导致细胞损伤，各重要生命器官发生严重障碍的全身性病理过程。失血导致血容量减少是休克常见的原因[1]。本实验将通过观察失血对家兔血压的影响及了解对失血性休克的抢救方法。 【实验材料】： （1）实验对象：家兔 （2）实验器械：血压换能器，RM6240 系统，1ml，10ml，50ml注射器， 止血钳，剪刀，眼科剪，动脉夹， 棉线 （3）实验试剂：氨基甲酸乙酯，生理 盐水，肝素 【实验方法】： 1、实验系统连接及参数设置：血压换能器固定在铁支柱上，高度与心脏同一平面。压力换能器输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。 2、手术准备 2.1、麻醉固定取家兔一只，称重2.5kg；用20%氨基甲酸乙酯按5ml/kg沿耳缘静脉缓慢注射，共注射12.5ml，至呼吸深而慢，皮肤夹捏反射迟钝为至。背位固定。 2.2 、颈部手术剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤5~7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管及气管平行的左、右血管神经鞘。用玻璃分针分离两侧颈总动脉，穿两根线备用。分离右侧颈外静脉，穿两根线备用。 2.3、颈总动脉插管 1）在左颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住，并在动脉下面穿线备用。用 眼科剪在靠近结扎处动脉壁上剪一 “V”字形切口，将动脉插管向心方向 插入颈总动脉内，扎紧固定。打开动脉 夹。 2）稍稍提起颈外静脉远心端的细线，用眼科剪朝心脏方向剪一“V”字形切口， 将插管向心方向插入颈静脉内，扎紧固 定，开始输液，控制在每分钟2滴的频 率。 3）右颈总动脉连接已肝素化的50ml注射器。 3、复制失血性休克模型 1）少量放血右颈总动脉缓慢放血10ml，使血压降至60mmHg,持续10min。 2）大量放血大量放血，使平均动脉压降至40mmHg左右，如血压回升，可再放 血，持续10min，共放血20ml。 4、失血性休克抢救将注射器内的30ml血液从颈外静脉输回原血，观察血压变化。然后再继续输入生理盐水。 【实验结果】： 我组实验结果如下图
家兔失血性休克实验报
病理生理实验报告—— 家兔失血性休克 ——2011302280083 潘晴【实验目的】 1、了解失血性休克动物模型的复制方法并复制失血性休克的动物模型； 2、观察失血性休克时和抢救休克时动物的功能代谢变化及微循环改变； 3、了解失血性休克的治疗，探讨失血性休克的发病机理及救治措施。 【实验原理】 休克是多种原因引起的，以机体急性微循环障碍为主要特征，并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。失血导致血容量减少，是休克常见的病因。 休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减（如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血）超过总血量的20%以上时，极易导致急性循环障碍，组织有效血液灌流量不足，即休克的发生。 根据休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（微循环缺血期或缺血性缺氧期）；休克期（微循环淤血期或淤血性缺氧期）；休克晚期（微循环衰竭期或DIC期）。但依失血程度及快慢的不同，各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。 对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容量，以提高有效循环血量、心排血量，改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物，改善微循环状态。 【实验对象】 家兔 【实验器材】 BL-420生物机能实验系统手术器械、输液装置、尿量测定装置、量筒、注射器、针头、20%乌拉坦、1%肝素、1%NA、生理盐水。 【观察指标】 动脉血压（BP） mmHg 中心静脉压（CVP） cmH2O 呼吸（R）频率、幅度 尿量（U） ml/10min
【实验步骤】 1、称重麻醉:（乌拉坦5ml/kg）; 2、固定备皮:仰卧固定，颈部和腹部剪毛备皮; 3、血管分离:颈部正中切口，分离右侧颈外V和左侧颈总A ，穿双线备用; 4、荷包缝合:切口部位：下腹部耻骨联合上方3-5cm内，正中切口; 5、肝素抗凝:（耳缘V,1ml/kg）排净空气，尽量靠近远心端，回抽有血;了 6、血管插管:结扎远心端，夹闭近心端，仅先后顺序不同; 7、呼吸装置: 胸腹部正中皮肤呼吸最明显处，穿单线固定，并连于张力传感器; 8、 0.01%AD（0.2ml）第一次记录 9、复制休克（40mmHg,30min）第二次记录 10、注射NA（耳缘注射,1ml/kg）第三次记录 11、静脉补液（40～60滴/分）第四次记录 【注意事项】 1、麻醉深浅要适度，麻醉过浅，动物疼痛，可致神经源性休克；过深则抑制呼吸。 2、牵拉肠袢要轻，以免引起创伤性休克。 3、动、静脉导管，事先用肝素充盈，排除空气。导管插入后，再推入少量的肝素抗凝，防止导管前端堵塞；静脉导管插入后可缓慢滴注生理盐水保持管道通畅。放血后也应及时往动脉导管内推注肝素。 4、血管插管时，结扎远心端，夹闭近心端，仅先后顺序不同：颈外V：先夹闭近心端，后结扎远心端，插入4-5cm；颈总A：先结扎远心端，后夹闭近心端，插入2-4cm。剪口部位尽量靠近远心端，成45度角朝向近心端剪开小口，约为管径的1/3-2/3，插管方向朝向近心端。 5、输液时应注意三通管的使用，输液装置只能单向与静脉导管相通，不能在输液的同时测中心静脉压。要观察中心静脉压时，需关闭输液通道，使换能器与静脉导管单向相通。 6、第一次实验记录：动物稳定10min后，记录正常状态下； 7、第二次实验记录：颈总A插管的三通开关处断续放血，血压维持于40mmHg 左右20-30min，建立失血性休克模型。每放血10ml即关闭开关，监测BP变化；血压维持于40mmHg 时，观察并记录上述指标变化（重点记录BP上升的最高值及变化时间）。 8、第三次实验记录：休克动物的抢救措施一：耳缘V缓注1% NA（1ml/kg），观察并记录上述指标变化（重点记录BP上升的最高值及变化时间）
实验四家兔失血性休克
实验四家兔失血性休克 【实验目的】 复制家兔失血性休克模型；观察失血性休克时的相关生理指标改变及输血救治过程中各项指标的变化；探讨失血性休克的发病机制。 【实验原理】 采用动脉放血的方法，造成家兔失血，使其组织血液灌流量急剧减少，导致微循环障碍，复制失血性休克。通过及时输血、补液，补充血容量，抢救休克。 【实验对象】 家兔。 【实验药品和器材】 2%的普鲁卡因，生理盐水，肝素，动脉插管，BL-410生物机能实验系统等。 【实验步骤】 1. 选取健康家兔一只，称重，固定于兔台上，剪去颈部、腿部的 兔毛，进行基础局部麻醉。 2. 分离颈动脉，穿线以备插管。 3. 分离股动脉，穿线以备插管。 4. 从耳缘静脉注射1%肝素1ml/kg。 5. 插管生理盐水排气，选择通道，进行电脑调零。
6. 结扎颈动脉和股动脉的远心端，止血夹夹住近心端，进行颈 动脉插管，股动脉插管。 7. 从股动脉取5ml血液，标记为①，以待测HCT 8. 观察血压、心率、呼吸、角膜反射，球结膜血管充盈度，HCT 9. 继续从股动脉放血（约30-40ml，加入混有生理盐水和肝素 的杯子中），直到血压下1/2。记录下此时的血压。 10. 10-15min之后，观察血压、呼吸、心率、角膜反射、球结 膜充盈度，取5ml血液标记为②，待测HCT 11. 将①②4000转离心五分钟，记录HCT勺数据。 12. 静脉快速回输血液救治，血压回升后再次观察上述各项指 标，记录下观察结果。 【实验结果】放血量：30ml
【实验讨论】 1. 机体一般失血多少可以引起休克？ 答：机体短时间内若失血超过总血量的25%-30%超出机体代偿的能力，即可引起心排出量和平均动脉压下降而发生休克。 2. 机体失血后为何导致相关生理指标的变化？ 答：①失血性休克时，刚开始血压降低，失血休克代偿期，血压有所恢复,心率加快。失血休克使得循环血量减少，中心静脉压降低，心排出量降低，平均动脉压降低，弓I起心血管反射，迷走神经抑制，交感神经兴奋，释放大量去甲肾上腺素，作用于心脏B1受体，兴奋心脏，使心肌收缩力增强，心率加快；作用于血管a 1受体使血管平滑肌收缩。血管收缩，恢复循环血量，一是肌性微静脉和小静脉收缩，肝脾储血库紧缩可迅速而短暂的减少血管床容积，增加回心血量，引起“自身输血”作用；二是微动脉、后微动脉和毛细血管前括约肌比微静脉对儿茶酚胺更为敏感，导致毛细血管前阻力大于后阻力，毛细血管中流体静压降低，促使组织液回流入血管，起“自身输液”作用。心率加快，心肌收缩力增强，循环血量恢复，促进血压回升。②失血性休克代偿期，呼吸呼吸加深加快。（1）休克早期，由于失血，刺激交感神经释放去甲肾上腺素，肺部微循环微动脉、后微动脉和毛细血管前括约肌收缩比微静脉强度更大，使肺毛细血管处于“少灌多流” 状态，使得血液与肺泡氧交换不充分，血氧分压降低，二氧化碳潴留，刺激外周化学感受器，使呼吸加深加快。（2）由于大量失血，造成组织缺氧，从而组织无氧酵解增加，产生大量酸性物质，使血液H+浓
家兔失血性休克实验报告
实验二十六家兔失血性休克 一：实验目得 复制失血性休克得家兔模型；观察失血性休克得发生发展过程中机体得变化，探讨其发生机制。 二：实验方法 通过对比同一只家兔正常时与大量失血时得角膜反射、血压、心跳频率、呼吸频率、呼吸幅度以及红细胞压积来观察失血性休克时机体得变化。 三：实验步骤 1.取健康家兔一只称重、固定，用1％普鲁卡因溶液皮下浸润麻醉颈部与股三角区动脉搏动明显部位，分离颈总动脉与股动脉，在两动脉下穿双线备用 2.耳缘静脉注射1％肝素溶液1、5ml/Kg 3.颈总动脉插管以及股动脉插管，股动脉近心端用动脉夹夹住，以备放血用 4.观察正常时得各项指标，同时用比积管取一管血作为正常红细胞压积测定 5.从股动脉大量放血，直至血压降至正常血压一半，观察各项指标得变化。10min后再次从股动脉取血做红细胞压积测定，将两管置于离心机，4000r/min，离心5min，读数。读数时注意取斜面最高点与最低点数值之与得一半。单位为ml％，读数结果乘以二才为最终结果 6.大量放血后15min时观察各项指标
四：实验结果 正常时： 大量失血后即刻： 大量失血十五分钟后：
家兔失血性休克结果 正常大量放血后即刻15min 角膜反射反应迅速反应迅速反应迅速 血压（mmHg）31、30 18、20 20、67 心跳频率（次/min）260 285 166 频率（次/min）80 98 94 呼吸 强度正常加深加深 红细胞压积（ml％）48 38（失血后10min）家兔失血性休克时，嘴唇发绀 五：讨论 1.为何大量放血后家兔血压会下降？之后血压又有所回升？ 在突然对家兔实施大量放血时，家兔血容量降低，回心血量急
家兔失血性休克及其实验性治疗-实验报告
家兔失血性休克及其实验性治疗 ——《医学机能实验学》实验报告 作者：Aspirin 实验日期：2013年12月18日 院系：第一临床医学院 专业：临床医学
【实验题目】 家兔失血性休克及其实验性治疗 【实验目的】 1.复制失血性休克的动物模型 2.观察失血性休克时和抢救过程中动物的功能代谢变化及微循环改变 3.了解失血性休克的抢救治疗方案 【实验原理】 休克是多种原因引起的，包括大出血、创伤、中毒、烧伤、窒息、感染、过敏、心脏泵功能衰竭等，以机体微循环功能紊乱为主要特征，并可导致多器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。失血导致血容量减少，是休克常见的病因。休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减，如外伤引起的出血、消化性溃疡出血、食管曲张静脉破裂、妇产科疾病所引起的出血等，超过总血量的25%~30%，超出机体代偿的能力，即可引起心排血量和平均动脉压下降而发生休克。 根据失血性休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（休克代偿期或微循环缺血性缺氧期）、休克中期（可逆性失代偿期或微循环瘀血性缺氧期）、休克晚期（不可逆性失代偿期或微循环衰竭期）。但依失血程度及速度的不同，各期持续时间、机体的功能代谢变化及临床表现均有所不同。 对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容量，以提高有效循环血量、心排血量，改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物，改善微循环，必要是可予抗炎等治疗。 【材料与方法】 1.实验动物 家兔（体重2.0kg以上） 2.器材与药品 器材：兔手术台、婴儿秤、兔用器械1套、动脉导管、三通管、气管插管、体温计、注射器（1ml、10 ml 、50 ml）、输液装置、丝线（7#、1#）、 纱布、生物信号采集与处理系统 药品：25%乌拉坦溶液、肝素生理盐水、1%普鲁卡因 3.方法与步骤 ①麻醉固定 家兔称重后，25%乌拉坦溶液按4ml/kg剂量经耳缘静脉注射麻醉，仰卧位固定于兔手术台上，减去手术部位被毛。 ②颈部手术 从甲状软骨向下作5cm长的颈正中切口，分离右侧颈外静脉、左侧颈总动脉和气管，穿线备用。
机能自主设计实验
机能自主设计实验 乙醇对失血性休克的家兔凝血功能的影响 班级：2013级预防医学本科班 组别：第一大组第2小组 组长：蔡文卓 组员：孙雅琼马睿臧鹏雯 闫宇涵刘维贺
乙醇对失血性休克的 家兔凝血功能的影响 【摘要】目的探讨不同浓度乙醇对失血性休克家兔凝血功能的影响。方法本实验将3只家兔随机分成3组:耳缘静脉注射生理盐水为对照组,注射25%和60%乙醇溶液为实验组。通过颈总动脉放血建立失血性休克模型,并采用玻片法测量模型建立前后凝血时间的差值。结果生理盐水组的凝血时间加快(43±15.70)s,25%乙醇组的凝血时间延缓(16±13.80)s,较生理盐水组的凝血时间显著延长;60%乙醇组的凝血时间加快(60±13.08)s,较生理盐水组的凝血时间缩短。结论低浓度乙醇可延缓失血性休克家兔的血液凝固,而高浓度乙醇浓度可促进失血性休克家兔的血液凝固。 【关键词】乙醇；失血性休克；凝血 【实验目的】探讨不同浓度乙醇对失血性休克家兔凝血功能的影响。 【实验原理】凝血过程是一系列酶促反应，每个凝血因子都被其前一个有关因子所激活，最后生成凝血酶和纤维蛋白。血液凝固可分为三条途径。外源性凝血途径(extrinsic pathway)是指从因子Ⅲ的释放到因子Ⅹ被激活的过程，包括因子Ⅲ、Ⅶ和Ca2+之间的相互作用。内源性凝血途径(intrinsic pathway)是指从因子Ⅺ激活到因子X被激活的过程，包括因子Ⅻ、Ⅺ、Ⅸ、Ⅷ、Ca2+、PK、HMWK之间的相互作用。共同凝血途径(common pathway)是指因子Ⅹ的激活到纤维蛋白形成的过程，包括因子Ⅹ、Ⅴ、Ⅱ、Ⅰ、ⅩⅢ、Ca2+之间的相互作用。内外凝血途径并非截然无关而是互有联系，可以相互促进。Ⅻa、Ⅸa 可促使因子Ⅶ活化；Ⅶa-Ca2+-Ⅲ复合物也能直接激活因子Ⅸ。 乙醇可影响PTL的聚集功能，从而对凝血功能具有一定的影响。血中低浓度乙醇主要通过抑制PTL表面粘附因子的活化，抑制钙离子内流来降低PTL的聚集率来降低PTL的聚集率。而高浓度的乙醇反而能激活PTL，增强聚集功能。【实验材料】
失血性休克及其抢救实验报告
【摘要】1.目的：复制兔失血性休克模型；观察兔在失血性休克时的表现及循环变化；探讨失血性休克的发生机制及救治方法；了解失血性休克抢救。2.方法：第二章微机生物信号采集处理系统，第四章动物实验技术。3.结果：少量放血时，家兔血压及呼吸下降，但是在短时间内回升；大量放血时（45ml），血压、呼吸下降较快且自我恢复能力降低；进行输血输液等治疗措施后，大致恢复正常。 4.结论：少量失血，机体的自身代偿作用可以使血压恢复正常；失血过多，机体会发生失代偿作用；经输血输液等治疗后，血压可恢复基本正常。 【关键词】休克；失血性休克；微循环 【Abstract】1. Purpose: copy rabbit uncontrolled hemorrhagic shock model; Observe the rabbit uncontrolled hemorrhagic shock performance and circulation of change; Discusses the uncontrolled hemorrhagic shock the pathogenesis and treatment methods; Understand the rescue uncontrolled hemorrhagic shock. 2. Methods: the second chapter microcomputer biological signal acquisition and processing system, the fourth chapter animal experiment technology. 3. The result: a few bloodletting, blood pressure and breath of decline, but in a short time, rebounded, A large bloodletting (45 ml), blood pressure, respiratory decline faster and self recover capacity reduction; Intravenous treatment measures for a blood transfusion, roughly returned to normal. 4. Conclusion: a small amount of blood, the body's own compensatory function can make blood pressure returned to normal; Excessive blood loss, the body will happen decompensated role; The blood transfusion intravenous treatment, blood pressure may restore basic normal. 【Key Word】Shock; Uncontrolled hemorrhagic shock; microcirculation 1实验材料 对象：家兔； 实验试剂：氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水； 实验仪器：铁架台，婴儿秤，RM6240生物信号采集系统，手术剪1把，止血钳，镊子，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血压换能器，输液装置，照明灯，棉线若干，纱布； 2实验方法 实验装置与连接：①将压力换能器固定于铁支架上，使换能器的位置尽量与实验动物的心脏在同一水平面上。然后将换能器输入至RM6240生物信号采集系统一通道。②压力换能器的另一端与三通管相连。三通管的一个接头将与动脉插管相连。在将动脉插管插入左颈总动脉前，先用盛有肝素的注射器与三通管另一接头相连，旋动三通管上的开关，使动脉插管与注射器相通，推动注射器，排空动脉插管中的气体，使动脉插管内充满肝素溶液，然后关闭三通管。 仪器调试：在菜单中选择“血压”。双击一通道，调节增益、采样参数，使基线归零，令图形位于屏幕中央，便于观察。 麻醉固定：家兔称重后，将氨基甲酸乙酯以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入，注意观察家兔的反应。待麻醉后，将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头。(以上步骤在做血压调节因素时已完成) 手术：剪去家兔颈部的被毛，切开颈部皮肤5～7cm,钝性分离颈部肌肉，暴露颈部气管和血管，用玻璃分针分离两侧颈总动脉和右侧颈外静脉，各穿两线备用。 动脉插管：在左颈总动脉的近心端夹一动脉夹，然后结扎其远心端(保留此结扎线头)，在动脉夹与结扎之间一般应相距2cm以上。在结扎端的下方用眼科剪作一“V”型斜口，向心脏方向插入动脉插管，用已穿好的丝线扎紧插入管尖嘴部分稍后处，并以远心端丝线将插管缚紧固定，以防插管从插入处滑出。此三通管用于连接电脑，进行血压的记录。 静脉插管：用一丝线将右侧颈外静脉远心端提起，用眼科剪在其下方做一“V”型斜口，向心脏方向插入