动物的采血方法

动物的采血方法

动物的采血方法

一、小鼠、大鼠的采血

1.眼眶后静脉丛采血

左手拇指及食指抓住鼠两耳之间的皮肤使鼠固定,并轻轻压迫颈部两侧,阻碍静脉回流,使眼球充分外凸。右手持玻璃采血管,将其尖端插入内眼角与眼球之间,轻轻向眼底方向刺入,小鼠刺入2~3mm,大鼠刺入4~5mm,当感觉有阻力时即停止刺入,放置取血管以切开静脉丛,血流即流入取血管。采血结束后,拔出取血管,放松左手,出血即停止。本方法在短期内可重复采血。小鼠一次可采血0.2~0.3ml,大鼠一次可采血0.5~1.01ml。为防止血液在取血管中凝固,可将取血管进入1%肝素溶液,干燥后使用。

2.摘眼球采血

此方法用于鼠类大量采血。采血时,用左手固定动物,压迫眼球,尽量使眼球凸出,右手用弯头镊子摘除眼球,眼眶内很快流出血液。

二、兔的采血

1.耳中央动脉、耳沿静脉采血

左手固定兔,并用酒精棉球消毒采血部位,右手持注射器,在兔耳血管的末端,沿着与血管平行的向心方向刺入血管,即可见血液流入针管,注意固定好针头。采血结束后,拔出注射器,用棉球压迫止血2~3min。

2.颈静脉采血

将兔麻醉后,仰卧在固定台上固定,剪去一侧颈部被毛,用碘酒、酒精棉球消毒皮肤,手术刀轻轻划破皮肤,钝性分离静脉,颈静脉暴露后,用注射器针头沿血管平行的远心方向刺入,采血结束后,拔出注射器,缝合切口。

三、狗的采血

1.前、后肢皮下静脉血

此方法一次可取较多的血,操作可参照相应的静脉注射。如需采

少量血。则可用5.5号针头直接刺入静脉。如需采一定量的血,最好用静脉滴注针头与注射器连接,以防狗挣扎时针头刺破血管。

2.股动脉采血

将狗仰卧后固定,伸展后肢向外拉直,暴露腹股沟,在腹股沟三角区动脉搏动的部位剪去被毛,用碘酒、酒精消毒。左手中指、食指探摸股动脉搏动部位并固定好血管,右手区静脉滴注针,针头由动脉搏动处慢慢刺入,当血液流入针头后的朔料管时,固定好针头,连接好注射器可抽到大量血液。

3.心脏采血

将狗仰卧固定,前肢向背侧方向固定,暴露胸部,剪去左侧第3~5肋间的被毛,用碘酒、酒精消毒皮肤。左手触摸心脏部位,选择心跳最明显处穿刺。一般在胸骨左缘外1cm第四肋间处,用连有6.5号针头的注射器,从心跳最明显处垂直刺入心脏。当针头正确刺入心脏时,血液即进入注射器,便可抽取大量血液。如采不到血,可调整刺入方向和深度,调整方向时,要将针头上提后再刺入,不能让针头在胸腔内乱晃。

采血方法

查看文章 实验动物的取血方法 2007-11-10 11:01 采血方法 (1)小鼠和大鼠 ①尾尖取血 将动物装在固定筒内,露出尾巴。将尾共剪掉1~2mm(小鼠)或5cm(大鼠),然后自尾根向尖端按摩,血自尾尖流出。亦可先将鼠尾泡于500C热水中,揩干后剪去尾尖,取血后用棉球压迫止血。此法可反复多次取血,小每次可取血0.1ml,大鼠0.3~0.5ml。 ②眶动脉和眶静脉取血 将动物头部按住并压迫眼球使突出充血后,以止血钳迅速钳取眼球后。眼眶内很快流出血液,将血滴入玻璃器皿内,达到所需采用量后用棉球压迫眼眶止血。此法所取血量较多,小鼠每次可采血0.2~0.3ml,大鼠每次可采血0.5~lml,动物可存活。间隔数日后可自另一侧眼眶取血。 ③眼眶后静脉丛取血 用一长约7~lOcm的玻璃毛细管(内径约1mm),另端渐扩大呈喇叭形,将其尖端折断。折断端锋利,预先将玻璃管浸入l%肝素溶液,取出干燥。取血时左手抓住鼠两耳间头部皮肤,使头固定,并轻轻向下压迫颈部两侧,使眼球充分外突,眼眶后静脉丛充血。右手持毛细管,将其尖端插入眼睑与眼球之间并向眼底方向移动,稍加吸引,血液即流入玻璃管中。取血完毕拔出毛细管,左手放松出血即停止。毛细管就叫“玻璃毛细管”,是硬质中性玻璃,内径:0.9--1.1mm, 壁厚0.1--0.15mm 管长120mm。 ④股静脉(或股动脉)取血 麻醉动物背位固定,切开左或右腹股沟的皮肤,作股静脉或股动脉分离手术。注射针穿刺股动脉或股静脉抽血,也可在颈静脉或颈动脉处穿刺取血。此法小鼠可采血0.2~0.8ml,大鼠约0.4~0.6ml。 ⑤断头取血 用剪刀剪掉鼠头,立即将鼠头向下,提起动物,将血滴入容器内。小鼠可采用0.8~1.2ml,大鼠5~lOml。 (2)豚鼠

禽类采血方法

1.常用采血方法有: 1.胫静脉采血法:在胫骨关节附近大腿中段找出 中静脉或侧静脉,而以中静脉最易找到。助手将鸡体侧卧或背卧,并 将鸡腿伸直,术者将该处鸡毛沾湿使血管外露即可采血。这种方法适 用于小样品采血,不容易形成血肿。 2.心脏采血法:采血时助手一手 将鸡的两翅膀抓住,另一手将鸡腿伸直,最好是平放于平台或桌面上, 术者先在左胸部摸到心脏跳动的最强点,左手在左侧将心脏固定住, 右手持带有7号针头的注射器进针,进针深度根据鸡的大小和营养 状况而定。如果针尖碰到心脏,针头就会随心脏跳动而跳动,只需稍 调整一下则血液户回会自动流进注射器。其优点是可以大量采血, 缺点是对供血动物潜伏着生命危险。 3.枕骨静脉窦采血法:此法可 用于禽或水禽,也可以经常采血和给大鹦鹉输血。动物的头务必与颈 保持90度角,术者用大拇指找到第一颈椎骨和颅骨形成的枕骨大孔, 针头与颈部呈30一45度角进针。枕骨静脉窦非常浅表,易于采血, 但该法对供血者也潜在一定危险。 2.禽血样的采集家禽包括鸡、鸭、鹅、鸽、鸟等禽类,常用翼下静 脉和心脏采血法,前者所采血量一般能够满足检测所需要的量,后 一种方法的技术要求比较高,因此禽类翼下静脉采血法是一种比较 常用的采血方法。禽类翼下静脉采血:由助手将禽固定好,并使 禽翅膀展开,露出腋窝部,拔去该部羽毛,即可见到由翼根进入腋 窝的一条较粗的静脉,这就是翼根静脉。其远心端有一条较细的静 脉,即翼下静脉。消毒后,术者用左手拇指压迫翼下静脉的近心端, 使血管怒张,右手持带6号或7号针头的采血器,由翼根的肌肉处 进针,向翅膀方向斜向刺入翼下静脉,即可抽取血液。抽血时,一 定要缓慢、轻柔,否则会使静脉瘪陷而采不出来。采血完毕,拔出 采血针,采血部位以酒精棉按压片刻即可,由于肌肉自身的收缩压 迫止血,一般不会出血或者是形成出血性水肿。此种方法克服了 传统由皮肤直接刺向血管,拔出针头后一般都会出血或形成皮下出 血性肿胀,这也是一直控绕基层兽医工作者和养殖户之间的难点问 题,养殖户普遍认为禽类采血的扑捉就已经造成应激,影响养殖的 经济效益,如果再造成出血或出血性水肿,对养殖造成的影响就更 大了。上面这种采血方法恰好可以克服出血或出血性水肿这些缺点, 使采血对禽类造成的影响降到最低点。 鸡采血方法 1.剪破鸡冠可采血数滴供作血片用。 2.静脉采血将鸡固定,伸展翅膀,在翅膀内侧选一粗大静脉,小心拔去羽毛,用碘酒和酒精棉球消毒,再用左手食指、拇指压迫静脉心脏端使该血管怒张,针头由翼根部向翅膀方向沿静脉平行刺入血管。采血完毕,用碘酒或酒精棉球压迫针刺处止血。一般可采血10~30ml。少量采血可从翅静脉采取,将翅静脉刺破以试管盛之,或用注射器采血,; 3.心脏采血将鸡侧位固定,右侧在下,头向左侧固定。找出从胸骨走向

动物的采血方法

动物的采血方法 动物的采血方法 一、小鼠、大鼠的采血 1.眼眶后静脉丛采血 左手拇指及食指抓住鼠两耳之间的皮肤使鼠固定,并轻轻压迫颈部两侧,阻碍静脉回流,使眼球充分外凸。右手持玻璃采血管,将其尖端插入内眼角与眼球之间,轻轻向眼底方向刺入,小鼠刺入2~3mm,大鼠刺入4~5mm,当感觉有阻力时即停止刺入,放置取血管以切开静脉丛,血流即流入取血管。采血结束后,拔出取血管,放松左手,出血即停止。本方法在短期内可重复采血。小鼠一次可采血0.2~0.3ml,大鼠一次可采血0.5~1.01ml。为防止血液在取血管中凝固,可将取血管进入1%肝素溶液,干燥后使用。 2.摘眼球采血 此方法用于鼠类大量采血。采血时,用左手固定动物,压迫眼球,尽量使眼球凸出,右手用弯头镊子摘除眼球,眼眶内很快流出血液。 二、兔的采血 1.耳中央动脉、耳沿静脉采血 左手固定兔,并用酒精棉球消毒采血部位,右手持注射器,在兔耳血管的末端,沿着与血管平行的向心方向刺入血管,即可见血液流入针管,注意固定好针头。采血结束后,拔出注射器,用棉球压迫止血2~3min。 2.颈静脉采血 将兔麻醉后,仰卧在固定台上固定,剪去一侧颈部被毛,用碘酒、酒精棉球消毒皮肤,手术刀轻轻划破皮肤,钝性分离静脉,颈静脉暴露后,用注射器针头沿血管平行的远心方向刺入,采血结束后,拔出注射器,缝合切口。 三、狗的采血 1.前、后肢皮下静脉血 此方法一次可取较多的血,操作可参照相应的静脉注射。如需采

少量血。则可用5.5号针头直接刺入静脉。如需采一定量的血,最好用静脉滴注针头与注射器连接,以防狗挣扎时针头刺破血管。 2.股动脉采血 将狗仰卧后固定,伸展后肢向外拉直,暴露腹股沟,在腹股沟三角区动脉搏动的部位剪去被毛,用碘酒、酒精消毒。左手中指、食指探摸股动脉搏动部位并固定好血管,右手区静脉滴注针,针头由动脉搏动处慢慢刺入,当血液流入针头后的朔料管时,固定好针头,连接好注射器可抽到大量血液。 3.心脏采血 将狗仰卧固定,前肢向背侧方向固定,暴露胸部,剪去左侧第3~5肋间的被毛,用碘酒、酒精消毒皮肤。左手触摸心脏部位,选择心跳最明显处穿刺。一般在胸骨左缘外1cm第四肋间处,用连有6.5号针头的注射器,从心跳最明显处垂直刺入心脏。当针头正确刺入心脏时,血液即进入注射器,便可抽取大量血液。如采不到血,可调整刺入方向和深度,调整方向时,要将针头上提后再刺入,不能让针头在胸腔内乱晃。

小白鼠采血三种方法的优缺点

小白鼠采血三种方法的优缺点 (1)眼眶后血管丛采血(2)摘除眼球采血(3)心脏采血 1.采血部位:眼眶采血 采血方法:将鼠固定在实验台边缘,左手抓紧鼠颈部皮肤固定头部,并轻轻向下压迫颈两侧,使眼球充血。用事先准备好的10号金属针头顶端(针尖斜面朝内)垂直插入内眦并向眼底方向转动以便切开静脉丛,血液便会连续不断地滴入采血管。用此法大约可取3~5mL 血液。取血完毕,立刻用脱脂棉压迫止血。 优点:眼眶后静脉丛采血法方法简单,便于掌握。血流较快,采血量多,能在较短时间内采到3~5mL血。伤口较小,愈合较快。成功率高,死亡率低。 缺点:不能避免组织液的混入,对于血样要求较高的研究应谨慎使用。另外,多次使用易引起大鼠的感染。对后续试验结果存在一定影响。 2.摘眼采血:鼠可以眼球取血,需要多多练习。一般来说,可以三人配合取血。取血前不需麻醉,用眼科剪剪掉大鼠的胡须(胡须过长,血液滴下的时候容易沾在胡须上,既浪费,又造成溶血,故应剪掉)。 所需器械:眼科小剪、眼科弯镊、止血钳。 一人抓大鼠并用眼科弯镊摘眼球,一人用止血钳夹住大鼠的嘴部以固定大鼠头部,另一个人拿试管接血。 大鼠在挣扎过程中,很容易导致血液丢失,因此固定头部很重要,否则只有眼看着血液乱飞,却不入试管。摘眼球也需要技巧,否则眼球摘下来了,而血液却不流出来,应多多练习 优缺点不太清楚啊,只知道我一个学长摘眼球的时候被咬了一口,挺残忍的 3.采血部位:心脏取血(其实这个一般用在家兔) 采血方法:将实验动物做仰卧有助手固定,术者在其左前肢腋下处剪毛及消毒。在胸部心脏跳动最明显处,用一寸长的12好针头直刺心脏,感到以针头跳动或有血液内流动时。即可抽血。一次可采血15-20ml 优点:抽血快,血液不易凝集,心区面积大, 进针准确性较高, 易一针见血, 且采血量能满足大量试验需要 缺点:心脏损伤较大,难以迅速愈合,不利于短期连续采血。 3‘.采血部位:心脏采血(剪开皮肤) 采血方法:从胸部正中剪开皮肤2.0~2.5cm。暴露肋骨和肌肉。左手拇指和食指从胸廓两则挤压,以确定心脏的位置,此时可触摸到心尖的搏动。然后拇指松开,右手持注射器(7号针头),在胸骨左侧(对操作者来说是右侧),离胸骨0.5cm的第三肋和第四肋之间进针,并使针头与肋骨侧成90°左右的夹角。进针的深度为2cm左右(根据动物大小而定)。进针时用左手拇指和食指夹住心脏博动的位置,使之固定,进针要快。若针头进入心室,由于压力的原因血液会自动进入针管,抽起来很容易。若进针过深,就一边回退一边抽。若进针过浅,可感觉到针头随心脏的博动而摇动,这时可再进深一些。 优点:采血量大,样本质量可靠。 缺点:不能保证完全是动脉血,因进针的方向或操作问题亦可采出静脉血。另外,应用本采血方法后,有部分鼠可造成死亡,因此不适合对动静脉血有严格要求的实验研究,亦不适用于试验中间过程的采样。 小鼠采血的几个问题: 1。最大安全采血量:小鼠循环血量占体重的6%,或50-70mi/kg

实验动物给药和采血方法

实验动物给药和采血方法 1.割(剪)尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后 消毒,然后浸在45℃左右的温水中数分钟,使尾部血管充盈。再将尾 擦干,用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3-0.5cm,让血液自由滴入盛器 或用血红蛋白吸管吸取,采血结束,伤口消毒并压迫止血。也可在尾 部作一横切口,割破尾动脉或静脉,收集血液的方法同上。每鼠一般 可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml,大鼠0.3~0.5ml。 2.鼠尾刺血法 大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查),可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭,再用酒精消毒和擦拭,使鼠尾充血。用7号或8 号注射针头,刺入鼠尾静脉,拔出针头时即有血滴出,一次可采集1 0~50mm3。如果长期反复取血,应先靠近鼠尾末端穿刺,以后再逐渐 向近心端穿刺。 3.眼眶静脉丛采血采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大 鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套),应防止动物窒息。当取血时左 手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧,使眶后静脉丛充血。右手持 续接7号针头的1ml注射器或长颈(3~4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内 径0.5-1.0mm),使采血器与鼠面成45℃的夹角,由眼内角刺入,针头 斜面先向眼球,刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。刺入浓度,小 鼠约2~3mm,大鼠约4~5mm。当感到有阻力时即停止推进,同时,将

针退出约0.1-0.5mm,边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管中,当得到所需的血量后,即除去加于颈部的压力,同时,将采血器拔出,以防止术后穿刺孔出血。 若技术熟练,用本法短期内可重复采血均无多大困难。左右两眼轮换 更好。体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml;体重200-300g大鼠每 次可采血0.5-1.0ml,可适用于某些生物化学项目的检验。 4.断头取血 采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤, 并作动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈,约1/2-4/5的颈部前 剪断,让血自由滴入盛器。小鼠可采用约0.8~1.2ml;大鼠约5-10ml。 5.心脏采血 鼠类的心脏较小,且心率较快,心脏采血比较困难,故少用。活体采 血方法与豚鼠相同。若做开胸一次死亡采血,先将动物作深麻醉,打 开胸腔,暴露心脏,用针头刺入右心室,吸取血液。小鼠约0.5-0.6ml;大鼠约0.8-1.2ml。 6.颈动静脉采血 先将动物仰位固定,切开颈部皮肤,分离皮下结缔组织,使颈静脉充 分暴露,可用注射器吸出血液。在气管两侧分离出颈动脉,离心端结扎,向心端剪口将血滴入试管内。

常用实验动物的采血方法

常用实验动物的采血方法 一小鼠和大鼠的采血方法 1、剪尾采血:需血量较少时常用此法。先将动物固定,将鼠尾浸在50℃左右温水中浸泡几分钟或用酒精棉球或二甲苯涂擦鼠尾,使尾部血管充盈,剪去尾尖1~2mm(小鼠)或3~5mm(大鼠),便血液顺血管壁自由流入试管或用血红蛋白吸管吸取。采血结束时,伤口消毒并用棉球压迫止血。此法每只鼠一般可采血10次以上,小鼠每次可取血0.1mL左右,大鼠可取血0.3~0.5ml。 2、眶后静脉丛采血:操作者一手固定小鼠或大鼠,拇指和食指尽量将鼠头部皮肤捏 紧,或轻轻压迫颈部两侧,使鼠眼球突出,眶后静脉丛充血,另一只手持毛细采血管,以45°从内眼角刺入,并向下旋转,感觉刺入静脉丛后,再向外边退边吸,当得到所需血量后,放松加于颈部的压力,并拔出采血器,以防穿刺孔出血。假设技术熟练,此方法在短斯内可重复采血,小鼠一次可采血0.2~0.3ml,大鼠可采血约0.5ml。如只进行一次取血,可采用摘眼球法,右手取一眼科弯镊,在鼠右或左侧眼球根部将眼球摘去,并将鼠倒置;头向下,抽取血液。 3、鼠装进固定器,漏出尾巴,同1,使尾部血管充盈,作好尾部消毒,用1 ml针筒接好4号针头,穿刺尾静脉,抽取血液。 4、腋下采血:将麻醉后的小鼠仰卧固定,剪开腋下皮肤,钝性别离腋下的胸肌等组织,暴露腋下血管,剪断腋下静脉,用注射器或吸管吸血。 5、断头采血:用剪刀迅速剪掉动物头部,立即将动物头朝下,提起动物,血液可流入试管中。 6、心脏采血:切开动物胸膛,直接从见到的心脏内采血,也可剪破心脏直接用注射器或吸管吸血。

7、股动脉采血:大量取血时常用此法。需手术别离股动脉,用注射器套上针头刺入血管取血或剪断股动脉用吸管吸取血样,小鼠的一次采血量可达0.5ml,大鼠可达2.0ml,操作时防止喷血。 二豚鼠、家兔的采血方法 1、家兔耳缘静脉采血 穿刺采血法:是家兔最常用的采血方法。具体方法同耳缘静脉注射给药。此法一次可采血5~lOml,可屡次重复使用。针头不可连接注射器,直接让血液滴在有抗凝剂的试管内。 切割采血法:当兔耳部血管被充分扩张后,可用刀片割破耳缘静脉,或用注射针刺破耳缘静脉,让血液自然流出。采血穿刺和注射穿刺方向不同。采血穿刺逆血流方向行针,采血量越大,越要靠近根部行针。 2、兔耳中央动脉采血:经兔耳中央的一条较粗、颜色鲜红的动脉采血,可采到约15 ml/次血。操作方法根本与静脉采血同。由动脉末端,朝向心方向进针,取血完毕后注意止血。 3、豚鼠耳缘切割采血法:方法同兔相同。 4、心脏采血法:对豚鼠、兔、猫、狗都适用。 采血前,将动物麻醉并仰卧固定置实验台上。心前区皮肤脱毛,常规消毒。于左侧第3、4肋间心尖博动最强处将针头垂直刺入心脏,由于心脏的搏动,血液可自动迸入注射器。如无血液流出,拔出针头后重新穿刺,不能左右来回斜穿,以免造成气胸而导致动物很快死亡。经6~7天后可重复穿刺采血。 5、体表静脉采血 〔1〕兔后肢胫部皮下静脉采血 将兔仰卧固定,拔去胫部被毛,在胫部上端股部扎以橡皮管,可在胫部外侧皮下,见到皮下静脉。用左手拇指、食指固定好血管,右手持,与皮下静脉平行进针,抽血有回血即可采血。采血完毕后用棉球压迫止血,因为此处不易止血,止血时间应稍长。

犬猫的采血方法

犬猫的采血方法通常是在其前肢的前臂头静脉和后肢的阴静脉进行采血。对于一些静脉采血比较苦难的犬猫或采血量比较大时,可以考虑心脏采血。 2.1.采血前的准备 采血前的准备主要是保定,见前面。另外采血前的准备还包括准备好消毒棉球、合适的止血带、剪毛剪、干燥无菌的注射器和头皮针头等等。 2.2.采血的操作 在做好采血前的准备后,采血者选择一个合适的腿,然后在近心端用合适的止血绷带(小型犬猫可以用橡皮筋代替)扎紧,前肢扎在肘关节后面,后肢扎在踝关节上面。然后在前肢的臂部或后肢的掌部要采血的部位用酒精棉球消毒,用拇指的掌面部感受怒张的血管,必要的时候可以沿者怒张的血管进行剪毛(如果血管怒张不明显,可以沿者前肢中间的一根明显的韧带或后肢掌面的正中部)。如果血管不太清楚时,可以用酒精棉球上的酒精将采血的局部打湿,以促进血管怒张,有时还可以先松开止血带,轻柔一下采血部位,然后在扎上止血带。 找到血管后开始进针。将头皮针接在注射上,固定牢结合处。第一次的进针点选择在血管的远心端。当血管怒张不是太明显,动物挣扎不是太厉害时,可以正对着血管进针;血管怒张比较明显,动物挣扎比较厉害时,可以从血管的侧面进针,使动物适应后,再进入血管。开始进针时,左手握在其掌部(前肢),使腕关节弯曲,右手拿针,使针与皮肤呈45度,进针后见到血将针放平,沿着血管的走向往前进针,在运针时会有一种比较轻松的感觉。然后用左手的拇指压住头皮针的针柄,右手松开止血带后用用手抽动注射器进行采血,或者有助手来抽动注射器采血,操作者用右手挤压进针点的近心端或调整头皮针以利于采血。采足够的血后,放松注射器,使其呈自然状态,然后用右手快速的抽出头皮针,并及时的用棉球压迫。 2.3.采血后的处理 抽出头皮针后,用酒精棉球及时按压。按压点在扎针点上靠后一点,直到不在出血为止。然后,将采血用的器具收拾干净。

实验动物体液和采血方法

实验动物体液和采血方法 一、常用的采血方法有割(剪)尾采血、眼眶静脉丛采血、断头采血、心脏采血、颈静脉(动脉)采血、股动脉(静脉)采血、耳静脉采血、前肢头静脉采血、后肢小静脉采血等。 小鼠摘眼球采血:左手抓住小鼠颈部皮肤,轻压在实验台上,取侧卧位,左手食指尽量将小鼠眼周皮肤往颈后压,使眼球突出。用眼科弯镊迅速夹去眼球,将鼠倒立,用器皿接住流出的血液。采血完毕立即用纱布压迫止血。每次采血量0.6-0.1ml。 兔心脏采血:兔仰卧位固定,剪去胸前区被毛,皮肤消毒后,用左手食指在左侧第3-4肋间触摸到心搏处,右手持带有4-5号针头的注射器,选择心搏最强处穿刺,当刺中心脏时,血液会自动进入注射器。每次采血量20-25ml。兔耳中动脉采血每次采血量15ml。 二、尿液的采集 1、用代谢笼采集尿液: 代谢笼用于收集实验动物自然排出的尿液,是一种特别设计的为采集实验动物各种排泄物的密封式饲养笼,有的代谢笼除可收集尿液外,又可收集粪便和动物呼出的CO2。一般简单的代谢笼主要用来收集尿液。防在代谢笼内饲养的实验动物,可通过其特殊装置收集尿液。 2、导尿法收集尿液: 施行导尿术,较适宜于犬、猴等大动物。一般不需要麻醉,导尿时将实验动物仰卧固定,用甘油润滑导尿管。对雄性动物,操作员用一只手握住阴茎,另一只手将阴茎包皮向下,暴露龟头,使尿道口张开,将导尿管缓慢插入,导尿管推进到尿道膜部时有抵抗感,此时注意动作轻柔,继续向膀胱推进导尿管,即有尿液流出。雌性动物尿道外口在阴道前庭,导尿时于阴道前庭腹侧将导尿管插入阴道外口,其后操作同雄性动物导尿术。

用导尿法导尿可采集到没有污染的尿液。如果严格执行无菌操作,可收集到无菌尿液。 3、输尿管插管采集尿液: 一般用于要求精确计量单位时间内实验动物排尿量的实验。剖腹后,将膀胱牵拉至腹腔外,暴露膀胱底两侧的输尿管。在两侧输尿管近膀胱处用线分别结扎,于输尿管结扎处上方剪一小口,向肾脏方向分别插入充满生理盐水的插管,用线结扎固定插管,即可见尿液从插管滴出,可以收集。采尿过程中要用38℃热生理盐水纱布遮盖切口及膀胱 三、胸水和腹水的采集 1、胸水的采集: 主要采用胸腔穿刺法收集实验动物的胸水,也可处死实验动物剖开胸腔采集胸水。 (1)穿刺点定位 (2)穿刺方法 2、腹水的采集 实验动物被固定于站立位。局部皮肤去毛、消毒、麻醉。用无菌止血钳小心提起皮肤,右手持小针头或穿刺套管针沿下腹部靠腹壁正中线处轻轻垂直刺入,注意不可刺入太深,以免损伤内脏,针头有落空感后。 四、泌液的采集 精液采集法 阴道栓采精法本法是将阴道栓涂片染色,镜检凝固的精液。阴道栓是雄性大、小鼠的精液和雌性阴道分泌物混合,在雌鼠阴道内凝结而成白色稍透明、圆锥形的栓状物,一般交配后2~4小时即可在雌鼠阴道口形成,并可在阴道停留12~24小时。 五、骨髓的采集

狗狗抽血操作方法

狗狗抽血操作方法 狗狗抽血是一种常见的检查方法,用于诊断狗狗身体健康状况。通常,狗狗抽血需要在兽医的指导下进行,以确保正确地获取样本和保障狗狗的安全和健康。下面,我们将为你介绍狗狗抽血的操作方法。 准备工作 在狗狗抽血开始之前,需要进行一系列的准备工作。 首先,需要确认狗狗的身体状况,以确保狗狗可以承受这个过程。如果狗狗出现了呼吸急促、体温异常、精神状态异常等情况,那么就不建议抽血。 其次,需要准备好抽血所需的器材。通常,我们需要准备抽血针、采血管、消毒液、棉签等工具。另外,还要准备好用来安抚狗狗的食物或者玩具,以便在抽血过程中进行操作。 抽血操作 当准备工作完成后,就可以开始进行抽血操作了。下面,我们将为你介绍抽血的具体过程。 1. 定位狗狗的静脉

在进行抽血操作之前,需要确认狗狗的静脉的位置。通常,我们可以使用手指在狗狗的前肢内侧找到狗狗的静脉。另外,还可以使用兽医常用的静脉查找器进行查找。这样,就可以尽可能减少对狗狗的伤害。 2. 消毒准备 在进行抽血之前,需要先对抽血针和采血管进行消毒。这可以有效地预防细菌感染。通常,我们可以将消毒液倒入干净的容器中,然后将抽血针和采血管放入消毒液中浸泡一段时间。 3. 开始抽血 当消毒完成后,就可以开始抽血了。在抽血之前,需要用一个松紧带将狗狗的前臂固定住,以帮助静脉膨胀。 接下来,需要拿起一根消毒过的抽血针,将其插入狗狗的静脉中。同时,需要使用另一只手控制采血管的位置,以便顺利采集血液。在采血时,我们需要注意一些技巧,如不能太用力、不能把针插进去得太深等。 4. 给予狗狗保护和奖励

在进行完抽血操作后,我们需要用棉球轻轻按压针眼的位置,以止血和缓解狗狗的不适感。此外,我们也可以给狗狗一些小食物或者玩具,以便让它感到舒适和安慰。这样,也可以在一定程度上缓解狗狗的紧张和恐惧。 总之,进行狗狗的抽血需要进行一系列慎重的准备工作,并在具备一定技巧和知识的人员的指导下进行操作。抽血操作对于狗狗的身体和心理健康都有一定的影响,所以我们需要在一定程度上减少对狗狗的伤害。在接下来的日子里,我们还需要对狗狗进行适当的照顾和护理,以保障其健康和幸福。

常见动物采血方法及注意事项

常见动物采血方法及注意事项 作者:况树斌孟建明 来源:《养殖与饲料》 2014年第1期 况树斌孟建明 陕西省南郑县圣水镇兽医站,陕西南郑723100做好重大动物疫病的监测和预警是有效防止疫病发生的措施之一,动物血清学检测是动物疫病监测的重要手段,制备有效合格的血清是动 物疫病监测的首要条件。笔者结合实际工作经验,就常见动物的采血方法及血清制备作了如下 总结,供同仁参考。 1 常见动物采血方法 1.1 猪血的采集 采血部位为前腔静脉(仔猪)或耳静脉(成年猪)。 1)前腔静脉采血。该法适用于35~70kg的猪,可采用仰卧或站立保定。助手将猪保定好后,采血者先用75%的酒精对猪的前腔静脉窝(位于肩胛内侧,手压有窝状感)进行消毒,再手持采 血器,以45~60°的倾斜度朝向心端刺入2~3cm;回抽采血器,在有血回流时,根据需要采 3~5mL即可。 2)耳静脉采血。该法适用于较大的猪(如成年母猪或种公猪)或采血较少时,可采用侧卧或 站立保定。助手保定好猪只后,采血者一只手拉直猪耳,另一只手先用75%酒精对耳静脉处进 行消毒,再持采血器从远心端平行耳静脉刺入;采血完毕时先松开握耳根的手,然后拔出采血器,再用干棉球按压采血处约1min(直至采血部位不出血)。 1.2 牛、羊血的采集 采血部位通常为颈静脉。 1)牛的颈静脉采血。采用站立保定(最好在六柱栏中保定),采血者沿颈静脉沟(对于种牛或种羊应适当剪毛)消毒,用一只手按压颈静脉下端,使其充盈怒张;另一只手持16号针头,垂直刺入颈静脉处1~2cm,血液即可流到采血器中;终止采血后,先松手,后拔针头,并用酒精棉球 按压采血部位约1min。 2)羊的颈静脉采血。采用骑式保定法保定,助手跨骑在羊背上,两手抓住羊角或羊耳;采血者对羊的颈静脉沟部位剪毛、消毒,一只手按压颈静脉下端,使其充盈怒张;另一只手将12号 针头平行于颈静脉朝远心端刺入0.5~1.0cm,血液即可流到采血器中;采血完毕后,先松手,后 拔针头,并用酒精棉球按压采血部位约1min。 1.3 鸡血的采集 采血部位为鸡翅静脉,保定方法为卧式保定。助手将鸡保定好后,采血者将鸡翅拉直呈30°倾斜,消毒翅静脉处,将采血器平行翅静脉朝远心端刺入;血液流出后,固定采血器,回抽活塞;采血完毕后,用干棉球压紧采血部位并拔出采血器,持续按压采血部位直至不出血。 2 血清的制备

实验动物采血方法

实验动物采血方法 实验动物采血是很常见的实验技术之一,用于获取动物全血或特定组 分的血液样本,用于检测、分析和研究各种生物学参数。在进行实验动物 采血时,需要遵循一定的操作规范和伦理原则,以确保动物的福利和实验 的准确性。本文将介绍一些常见的实验动物采血方法。 1.尾部血液采集法: 尾部血液采集是最常用的方法之一,适用于小鼠和大鼠等小型实验动物。操作步骤如下: -用70%酒精或其他消毒剂清洗尾部,以防止污染。 -轻轻按压尾部,使尾静脉膨胀。 -使用锋利的家养或无菌尾脉针,穿过皮肤和皮下脂肪组织刺入静脉。 -用注射器吸取所需血量,注意避免过度吸引致使尾静脉损伤。 -用干净的纱布或棉球轻轻按住针眼,以促进凝血并减少血液样本流动。 -将血液转移至试管或常规采血管。 2.瞬腹主动脉穿刺法: 瞬腹主动脉穿刺法适用于大鼠和兔子等体型较大的动物,可获得较大 量的血液样本。操作步骤如下: -将动物固定在手术台上,并进行充分的消毒和无菌操作。 -在下腹部中央找到主动脉的位置,用无菌针穿刺主动脉。

-可用注射器吸取所需血量。 -注意避免过度吸引致使主动脉破裂或伤害到其他内脏器官。 -采血后用无菌纱布轻轻按住穿刺点,促进凝血。 -将血液转移到试管或采血管。 3.静脉血液采集法: 对于大型实验动物如猪和狗等,静脉血液采集是较常用的方法。操作步骤如下: -将动物固定在侧卧位,并进行消毒和无菌操作。 -使用无菌针穿刺体表静脉,通常是耳静脉、颈静脉等。 -细心操作以避免伤害主要血管和其他组织。 -使用注射器吸取所需血量。 -采血后用无菌纱布轻轻按住穿刺点,促进凝血。 -将血液转移到试管或采血管。 4.心脏穿刺法: 心脏穿刺法是一种常用于小鼠和大鼠等实验动物的末梢动脉或心脏穿刺采血方法。操作步骤如下: -动物固定在手术台上,并进行充分的消毒和无菌操作。 -通过胸腔切口或皮肤刺穿心脏,注意避免伤害重要组织。 -使用无菌针穿刺心脏,吸取所需血量。

动物防疫检疫中常用的采血方法及注意事项

动物防疫检疫中常用的采血方法及注意事项 作者:武志辉黄红利高海峰 来源:《农民致富之友》 2021年第30期 武志辉1 黄红利2 高海峰1 本文主要结合实际工作经验,探讨动物防疫检疫中常用的采血方法,以及采血过程中 的几点注意事项,希望通过研究能够更好的推动动物防疫检疫工作的高效开展有一定帮助。 一、颈部静脉采血方法和注意事项 1、采血方法 颈部静脉采血方法适用于那些个体较为庞大的牲畜动物,常见的牲畜动物包括牛、羊、马等。在对该类动物进行采血处理过程中,首先应该明确具体的采血部位,通常情况下,采血部 位主要位于动物的静脉1/3处,采血之前应该对动物进行站立保定处理,避免查血过程中动物 随意扭动。有条件的地区在采血之前,应该将动物的头部进行固定处理或者偏向一侧,然后对 局部进行剪毛处理之后,使用碘伏进行擦拭消毒,再使用医用酒精进行脱碘消毒,找到血管之后,采样人员用左手手指对近心端的血管进行适当的按压处理,确保血管能够弩张,另一种手 持采样针头与动物皮肤呈现45度夹角刺入到血管当中,发现采样管当中有血回流之后,说明针头已经进入到血管当中,此时将针头逐渐倾斜与血管保持平行,然后向前插入1cm~2cm,将手 放开,确保血液能够回收到采样管道中,采血结束之后将采样针头迅速拔除,使用酒精棉签对 采样部位进行按压处理,避免出现淤血。 2、注意事项 在对个体较大的牛、羊、马等牲畜动物进行血样采集过程中,由于该类动物的个体较大, 在采样之前要对动物进行有效的保证处理,避免动物随意扭动,有条件的地区应该联合几个人 将动物的头部固定住,保证采样的稳定。当采集到适量的血液之后,选择使用消毒过的酒精棉 签按压到采血部位,然后将针头迅速拔出,对采血部位进行适当的按压处理,预防出血。在采 血过程中所使用到的各种仪器设备都需要执行严格的消毒处理,避免通过采样造成病原侵入机体,引发发病情况。 二、动物前腔静脉采血方法和注意事项 1、采血方法 动物前腔静脉采血主要是在猪血液采集过程中应用最为常见。由于该类采血方法的难度高,需要配置熟练的操作技术人员。该种采血方法能够获得充足的血液,并且血量相对较多。在采 血过程中一般选择动物的胸前窝部位,主要集中在胸骨的两段。但由于左侧比较靠近动物的迷 走神经,在采样过程中很容易刺激到神经组织,因此在实际的采血位置选择时,一般在右侧进针。在对猪群进行前腔静脉采血处理过程中,首先应该将动物进行仰卧保定处理。助手将猪的 前后两只紧紧握住,并将前后肢轻轻向后拉扯,确保采样动物的胸部能够全面露出。选择好采 样部位之后,先用碘酒进行消毒,然后用医用酒精进行脱碘消毒,在动物的胸前窝处刺入采血针,发现采样管当中有回血时,表明采血正确。上述采样方法适合于年龄较小的仔猪前腔静脉 采血。如果在进行个体较大的猪前腔静脉采血时,要确保猪群能够处于站立保定状态,并将猪 的上颌骨用固定器全面固定住,不能够随意扭动,并将猪的头部拉扯到和地面呈30度的夹角,

动物采血的技术方法

动物采血的技术方法 每年春防秋防,荔浦县各个乡镇兽医站都会组织防疫员给农户喂养的畜禽进行免疫工作。为检测春防秋防防畜禽的免疫效果,须采集畜禽的血液进行抗体水平的监测且免疫抗体须达到国家规定的70%以上。动物的采血是一项重要的常规性工作,快速的采血技术,能减少动物的应激,还可使监测结果更为可靠。笔者结合长期临床实践,对动物采血技术进行介绍。 一材料的准备 5毫升,10毫升一次性塑料注射器,试管,真空管,5%的碘酒,干棉球,75%的酒精,标签纸,记号笔及相关表格,鼻捻子等二场地选择 采血地点选择在地面,干燥,整洁,不易泥土飞扬,光线好,环境安静的地方进行操作。 三采血方法 为了确保样品质量,减少或避免不良问题,采血时必须掌握好如下技术方法: 1.羊的采血方法 一般选择右颈静脉,采前先捉住剪毛消毒,然后助手坐在羊背上两脚夹住羊的两侧,左右手握住羊角进行保定,采血着用左手拇指按羊颈静脉近端,使血管充血暴露,右手持注射器向血管扎针,拇指,食指握住注射器,中小指握住针筒往下拉即可采到血液。如果需要血量大时,用同样方法,右手持采血针向血管逆流扎针,回血时将采血针管的令一头插入真空管内,并固定扎针,短时间内采到足够量的血液。 2.鸡鸭的采血方法

最常用足翅内侧静脉采血,熟练者左脚踩住鸡两翅,右脚踩住鸡脚,术者用左手拨开羽毛,静脉消毒,右手持5号针血与皮肤方向顺血管缓缓进针,见回血时,缓缓吸入针筒内,即可采到血液。不熟练者请助手右手固定两只脚,左手固定两翅,采血者消毒后,右手持采血针于翅下静脉45°角轻轻进针,轻拉针筒,注意观察针筒内是否有血液被吸出,当发现有血液时,缓缓吸入针筒内,即可采到血液,采完血液后用干棉球压迫血管的伤口,一分钟左右止血。 3.猪的采血方法 一般先由助手用鼻捻子扭住猪的鼻盘作保定,术者先消毒,然后左手握住耳静脉近端,多次摩擦,使血管充血暴露,右手持针筒扎针,见血回流时,缓缓吸入针筒内,即采到血液。经过实践证实,猪的采血以前腔静脉较为容易。前腔静脉采血助手用鼻捻子扭住猪的鼻盘站立保定,使猪呈后退姿势,猪的头部稍高于后部,有利于采血者的操作。术者蹲于猪体右侧,用左手触摸胸骨柄最高点2厘米处,经消毒处理后,由下而上垂直进针,见回血,缓缓吸入针筒内即可采到血液。 四注意事项 采血时还要注意以下技术事项。 1.猪耳静脉和鸡翅内静脉采血,由于血管很薄,血管细小,扎针后见血液进入针筒时,必须保持注射器针头位置不动,防止针头刺破血管,血液流出血管外,造成血瘀的现象。 2.猪的前腔静脉采血时,用鼻捻子保定,猪发出痛苦的叫声,会引起同群猪对术者攻击,所以要注意采血人员的安全。 3.采血时消毒部位用碘酒,酒精时,用干棉球擦干后才能采血,以免造成溶血现象。

(完整版)各动物采血方法

各种动物采血方法及注意事项 1牛的静脉采血 1.1牛颈外静脉采血颈外静脉位于颈部肩骨乳突肌与胸头肌间凹窝处的颈静脉沟内。牛站立,助手保定好头部,使头部稍前伸上仰并稍偏向对侧,颈部稍有弯曲,颈静脉暴露出来,局部剪毛,消毒,术者稍弓腰蹲于颈静脉暴露的一侧,用左手拇指或食指与中指在颈静脉沟稍下方(近心端)压迫静脉管,使颈静脉充盈怒张,部分牛由于膘肥看不清,此时就要用左手食指和中指点击颈静脉沟,有跳动,再按压,用右手食指和中指探摸跳动的部位,有波动和弹性的管状物,颈为颈外静脉。右手拇指、食指、中指夹住16号针头,对准颈外静脉,并使针头与皮肤接近垂直(75°角),用腕力迅速将针头扎进皮肤,穿入血管,血液会喷射出来,即可采血,停止采血后先松左手,后拔针头,用消毒棉球压迫采血部位1min。 1.2牛尾静脉采血牛自然站立保定,术者站于牛的正后方,左手抓住牛尾中段用力抬起,使之与地面平行,右手触摸尾椎前段腹侧凹陷沟(大约在尾后下方4-5cm处),消毒后持12号针头与尾椎纵轴成垂直方向,依靠腕力快进针0.5-1cm后血液即喷射出来。 2马的静脉采血 马的颈静脉比较浅显,位于静脉沟内,术者用左手拇指或食指和中指横压颈下1/3与颈中1/3处的颈静脉沟,使脉管充盈怒张,右手持16号针头沿颈静脉在压迫点前方与皮肤成45°角用腕力迅速刺入皮肤血管内,感到空虚无阻力即见回血后,再沿脉管向前进针使针头

靠近皮肤靠近皮肤以减小其间的角度,近似平行地将针头再伸入血管内1-2cm,血液流出,即可采血。停止采血后,先松左手,后拔出针头,并用消毒棉球压迫采血点2min止血消毒。 3猪静脉采血 3.1耳静脉采血用捕猪器将猪站立保定,耳静脉局部常规消毒处理,助手用手指捏压耳根部静脉管处或用胶带于耳根部结扎,使静脉充盈,怒张,也可用酒精棉球反复擦静脉血管使之充血,血管怒张,或用手指弹叩引起血管充盈。术者用左手拇指和食指把持耳尖,将耳拉直托平,用中指、无名指和小指在耳下面向上托,使采血进针部位稍高,右手持一次性血样采集针沿静脉管使针头与皮肤呈30°角,向远心端刺入血管,有空虚感无阻力时即进入血管。回血,立即插入负压管采血。采血结束后,先松开握耳根的手,再拔针头,干棉球压迫采血处1min,伤口不出血为止。 3.2前腔静脉采血:前腔静脉由左右两侧的颈静脉与腋静脉在第一对肋骨的胸腔入口的气管腹侧面汇合而成。采血部位在第一肋骨与胸骨柄结合处的前方,由于左侧靠近膈神经,易损伤,故多于右侧进行采血,针头刺入方向呈近似垂直稍向中央及胸腔倾斜,刺入深度依猪体大小2-6cm,针头7-12号。站立保定时进针部位在右侧,于耳根至胸骨柄的连线上,距胸骨端1-3cm处,术者拿连接针头的注射器,稍斜向中央刺向第1肋骨间胸腔入口处,边刺边抽动注射器活塞,见回血即可采血,仰卧保定时胸骨柄向前突出,并于两侧第1肋骨结合处的直前侧方呈两个明显的凹陷窝称为前腔窝:是第1肋骨与胸骨柄

家畜家禽采血技术

家畜家禽采血技术 一、采血前的准备 1 物品准备 采样箱,5~30mL一次性注射器(或一次性负压采血器),9#采血针,16#(16*38)注射针头,75%酒精,碘酊,干棉球,10mL离心管,止血钳,动物保定器或保定绳,记号笔,不干胶标签,采样登记表,乳胶手套,防护服,防护帽,一次性手套,一次性鞋套,长筒胶鞋等物品。(注意:采样用的注射器、注射针头等易耗品按采样数的1.5倍以上准备。) 2 采血方式 猪:前腔静脉采血、耳静脉采血。其中,猪耳静脉采血法多用于中、大猪与种猪,猪前腔静脉采血法多用于仔猪。 牛:颈静脉采血、耳静脉采血、尾根静脉采血。 羊:前腔静脉采血、耳静脉采血、颈侧静脉采血。 禽类:翅内侧腋静脉采血、心脏采血、头部静脉窦采血。 3 采血注意事项 免疫抗体监测样品采集,需要在动物免疫后14-20天采集血液,猪口蹄疫疫苗免疫28天后采血。采血前动物最好空腹,鸡采血前30分钟请给予其充足饮水。若血清呈胶冻样,则可能原因有:凝血时间不够、采血前刚刚喂食(没有空腹)、脂肪血(营养过剩)。

二、各种动物采血技术 1 中大猪、公母猪前腔静脉采血 1.1站立式保定 让猪站立,助手面对猪的头部,用金属保定且套住猪的上颌骨,收紧金属保定圈环,向前方用力牵引,并将猪的上颌骨稍稍吊起,使猪两前肢刚好着地(在同一水平线上),猪呈后退姿势,从而保持安定的站立状态。 1.2找准采血部位

用右手触膜胸骨柄最高点至第一肋骨间1厘米处,在第一对肋骨间的胸腔入口处的气管腹侧面,由左右两侧颈静脉和腋静脉汇合形成。采血部位在第一对肋骨与胸骨柄结合处直前,但由于左侧靠近膈神经,故以右侧采血为宜。公母猪和20kg以上中大猪可选颈部最低凹处。 1.3进针抽血 公母猪宜选用16#50mm针头,30kg以上的中大猪,宜选用12#38mm针头。用酒精棉球消毒进针,由下而上且垂直方向进针,采血人员觉得有负压感且有回血,则标志已刺入血管,然后轻轻抽动采血针内芯,采取血液。一般采3毫升即可,采血完毕,拔出针头,采血部位用酒精棉球压迫片刻,采血即告完成。 2 小猪前腔静脉采血 2.1 仰卧式保定

给动物采血的小技巧

给动物采血的小技巧 1.选择合适的针头尺寸:针头的大小应根据动物的大小和血管的直径 来选择。过大的针头可能会破坏血细胞,过小的针头则可能导致血样太少。一般来说,对于小动物如小鼠和小鸟,使用26-30G的针头比较合适;对 于大动物如狗和猫,可以选择20-23G的针头。 2.寻找适合的采血部位:动物身体上有多个适合采血的部位,如颈部 的颈外静脉、前肢的尺动脉或股动脉等。选择采血部位时应避免静脉血栓 形成、血管损伤或出血过多等情况。在选择具体部位之前,应该根据实验 目的、动物种类和个体情况来决定。 3.确保采血部位清洁:在进行采血之前,应该先用适当的消毒剂清洁 采血部位,以减少细菌感染的风险。对于小鼠和小鸟等小动物,可以使用 酒精来清洁;对于大动物,可以使用碘酒或氯己定等消毒剂。 4.适当固定动物:为了确保采血过程中的安全性,可以使用适当的方 法来固定动物。这可以包括使用胶带、手指或专门的动物采血架等。固定 动物有助于提供一个稳定的采血部位,减少意外伤害的风险,并提高采血 的成功率。 5.使用适当的采血技术:采血的技术根据不同的动物种类和采血部位 会有所不同。例如,对于小鼠,可以通过尾部静脉或眼眶静脉来采集血液,而对于大动物,可以通过针刺静脉或冠状血管来采血。 6.控制采血的速度和压力:在进行采血时,应尽量减少血管破裂、血 栓形成和出血过多的风险。这可以通过控制采血的速度和压力来实现。一 般来说,采血的速度不应过快,以免血液溢出或血栓形成;同时,采血时 应控制采血针的进深度,避免穿透血管。

7.及时止血和处理采血部位:在完成采血后,应及时用纱布或棉球轻轻按压采血部位,以止血。对于较小的动物,可以将动物放置在适当大小的箱子里,以减少动物活动和创伤。同时,应及时处理采血部位的消毒和护理工作。 8.给动物提供适当的抚慰和补给:采血是一种压力性刺激,会给动物带来一定的疼痛和不适。为了缓解动物的不适,可以给动物提供适当的抚慰,如温暖和舒适的环境、适当的体温和水分补给等。 总之,给动物采血是一项技术含量较高的工作,需要掌握一定的技巧和经验。通过选择合适的针头尺寸、合理的采血部位和适当的采血技术,以及在采血过程中注意控制速度和压力,可以减轻动物的疼痛和不适。此外,及时的止血和处理采血部位,以及给动物提供适当的抚慰和补给,也是必不可少的环节。这些小技巧将帮助你更好地进行动物采血工作。

(整理)实验动物采血方法

(一)小鼠、大鼠采血法 1.割(剪)尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒,然后浸在45℃左右的温水中数分钟,使尾部血管充盈。再将尾擦干,用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3-0.5cm,让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取,采血结束,伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口,割破尾动脉或静脉,收集血液的方法同上。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml,大鼠0.3~0.5ml。 2.鼠尾刺血法 大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查),可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭,再用酒精消毒和擦拭,使鼠尾充血。用7号或8号注射针头,刺入鼠尾静脉,拔出针头时即有血滴出,一次可采集10~50mm3。如果长期反复取血,应先靠近鼠尾末端穿刺,以后再逐渐向近心端穿刺。 3.眼眶静脉丛采血采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套),应防止动物窒息。当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧,使眶后静脉丛充血。右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈(3~4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内径0.5-1.0mm),使采血器与鼠面成45℃的夹角,由眼内角刺入,针头斜面先向眼球,刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。刺入浓度,小鼠约2~3mm,大鼠约4~5mm。当感到有阻力时即停止推进,同时,将针退出约0.1-0.5mm,边退边抽。若穿刺适当血液能自然流

入毛细管中,当得到所需的血量后,即除去加于颈部的压力,同时,将采血器拔出,以防止术后穿刺孔出血。 若技术熟练,用本法短期内可重复采血均无多大困难。左右两眼轮换好。体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml;体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml,可适用于某些生物化学项目的检验。 4.断头取血 采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤,并作动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈,约1/2-4/5的颈部前剪断,让血自由滴入盛器。小鼠可采用约0.8~1.2ml;大鼠约5-10ml。 5.心脏采血 鼠类的心脏较小,且心率较快,心脏采血比较困难,故少用。活体采血方法与豚鼠相同。若做开胸一次死亡采血,先将动物作深麻醉,打开胸腔,暴露心脏,用针头刺入右心室,吸取血液。小鼠约0.5-0.6ml;大鼠约0.8-1.2ml。 6.颈动静脉采血 先将动物仰位固定,切开颈部皮肤,分离皮下结缔组织,使颈静脉充分暴露,可用注射器吸出血液。在气管两侧分离出颈动脉,离心端结扎,向心端剪口将血滴入试管内。 7.腹主动脉采血 最好先将动物麻醉,仰卧固定在手术架上,从腹正中线皮肤切开腹腔,使腹主动脉清楚暴露。用注射器吸出血液,防止溶血。或用无齿镊子剥离结缔组织,夹住动脉近心端,用尖头手术剪刀,剪断动脉,使血液喷入盛器。

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