微生物标本采集手册
微生物标本采集手册
目录
第一章血液及骨髓标本的微生物检验 (2)
第二章痰标本的微生物检验 (6)
第三章上呼吸道标本的微生物检验 (8)
第四章尿液标本的微生物检验 (9)
第五章粪便标本的微生物检验 (11)
第六章化脓和创伤标本的微生物检验 (13)
第七章脑脊液标本的微生物检验 (15)
第八章胆汁标本的微生物检验 (16)
第九章胸水标本的微生物检验 (18)
第十章腹水标本的微生物检验 (19)
第十一章心包液标本的微生物检验 (20)
第十二章关节液标本的微生物检验 (22)
第十三章鞘膜积液标本的微生物检验 (23)
第十四章生殖道标本的微生物检验 (24)
第十五章外眼部标本的微生物检验 (27)
第一章血液及骨髓标本的微生物检验
一、检查项目
血液、骨髓液的细菌培养
二、标本采集
【标本采集前的注意事项】
应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。
【标本送检指征】
病人出现以下临床表现，或同时具备以下几种临床表现时应采集血培养。
1 发热（≥38℃）或低温（≤36℃）
2 寒战
3 白细胞增多（＞10×109/L，特别有“核左移”时）
4 粒细胞减少（成熟的多形核白细胞＜1×109/L）
5 血小板减少
6 皮肤、粘膜出血
7 昏迷
8 多器官衰竭
9 血压降低
10 呼吸加快
几种特殊情况：
1 可疑新生儿败血症时，除发热或低温外，很少培养出细菌，应增加尿液和脑脊液培养。
2老年菌血症病人可能不发热或不低温，如伴有身体不适、肌痛或中风，可能是感染性心内膜炎，也应采取血培养。
骨髓培养与血液培养的送检指征是基本一致的，临床常规血液感染有指征时以抽取血培养为主。但当骨髓炎时或长期使用抗菌药物患者，抽取骨髓培养阳性率会远高于血培养。
【标本采集的容器】
法国梅里埃公司血培养仪配套血培养瓶(我院)或手工血培养瓶。
【标本的采集方法】
防止皮肤寄生菌或环境微生物引起的污染是血培养的关键问题，采血前严格执行消毒程序是十分重要的。
1 皮肤消毒程序：
严格按以下三步法进行：
(1) 75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上。
(2) 用一根碘酊或聚维酮碘（碘伏）棉签消毒皮肤，1～2％碘酊作用30s或聚维酮碘作用60s，从穿刺点向外以1.5～2cm直径画圈进行消毒。
(3) 75％酒精脱碘。
对碘过敏的病人只能用75%酒精消毒，消毒60s，待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。
2 培养瓶消毒程序
(1) 用75％酒精消毒血培养瓶橡皮塞子。
(2) 酒精作用60s。
(3) 在血液注入血培养瓶之前，用无菌纱布或棉签清除橡皮塞子表面剩余的酒精，然后注入血液。
3 培养瓶接种程序
抽取血液后，不要换针头，直接注入血培养瓶中，轻轻颠倒混匀，以防血液凝固。如果同时作需氧和厌氧培养，应先将标本接种到厌氧瓶中，然后再注入需氧瓶，严格防止将空气注入厌氧瓶中。
【标本采集注意事项】
1 血培养采集的时间和频率
(1) 采血培养应尽量在抗菌药物使用之前，在24h内采集2～3份血培养（一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份血培养），每次2瓶。因为研究已证实，2～3份血培养足以检测所有的菌血症和真菌血症。
(2) 入院前2周内接受抗菌药物治疗的患者，连续3天，每天采集2份，可选用能中和或吸附抗菌药物的培养基。
(3) 对间歇性寒战或发热的患者，应在寒战或体温高峰到来之前0.5～1h 采集血液，或于寒战或发热后1h采集。因为发热时血液中可能没有细菌。
(4) 可疑为急性原发性菌血症、真菌血症、脑膜炎、骨髓炎、关节炎或肺炎的患者，应在不同部位采集2～3份血培养。
(5) 不明原因发热，如隐性脓肿、伤寒热和波浪热，先采集2～3份血标本，24～36h后估计体温升高之前，再采集2份以上。
(6) 可疑为菌血症或真菌血症，但血培养持续阴性，应改变血培养方法，选择其它种类的培养瓶，如高渗培养瓶，中和抗生素培养瓶，结核菌培养瓶等，以获得罕见的或苛氧的微生物。
(7) 可疑为细菌性心内膜炎，在1～2h内多部位采集3份血标本，如果24h 阴性，再采取3份以上的血标本。
2 采血量
成人：推荐每个血培养瓶应加的血量为5～10ml，血液和肉汤比为1：5～10（体积：体积）。
儿童：因很难获得大量的血液，一般静脉采血1～5ml用于血培养。
血液量太多或太少都不利于细菌的检出，血液的培养量每增加1ml,阳性率增加3～5％。人体血液内包含各种抑制细菌生长的因子或抗生素，注入血液太多可能会抑制细菌的生长。
骨髓采血量一般为1～2ml。
【标本的送检地点】
检验科微生物室，非正常上班时间送检验科急诊化验室。
*标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。
【标本的保存】
含血样的培养瓶应立即送往实验室；如不能及时送检，应将其放在室温，切忌冰箱存放。因为某些苛氧菌可在冰箱温度中死亡，而使培养阳性率下降。
在运往实验室的途中如果天气寒冷，应采取一定的保温措施。
第二章痰标本的微生物检验
一、检查项目
痰液的细菌培养、真菌培养、结核菌培养、真菌涂片、结核菌涂片。
二、标本采集
【标本采集前的注意事项】
应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗
生素应用前采集。
【标本送检指征】
1 咳嗽、咳痰：痰液可为脓性、血性、铁锈色或红棕色胶胨样痰。
2 咯血：肺结核病人常痰中带血。
3 呼吸困难
4 发热
5 胸痛：当炎症病变累及壁层胸膜时，会发生胸痛。
*肺部感染的患者有25～50％可能发生菌血症，应同时作血培养。
【标本采集容器】
一次性无菌留痰盒。
【标本采集方法】
1 自然咳痰法：咳痰前，先用清水或漱口液反复漱口（为减少口腔正常菌群污染标本），然后用力自气管中咳出第一口痰于无菌容器内。
对于痰量少或无痰的患者可采用雾化吸入45℃10％NaCL水溶液，使痰液易于排出。
对咳痰少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，使其咳嗽。
2 气管镜采集法：用支气管镜在肺内病灶附近用导管吸引或用支气管刷直接取得标本。
3 胃内采痰法：无自觉症状的肺结核病人尤其婴幼儿不会咳嗽，有时将痰误咽入胃中，可采集胃内容物做结核分支杆菌培养。
4 管穿刺法：主要用于厌氧菌培养
小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，用棉拭子深入咽部，小儿受到刺激咳嗽时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上。
【标本采集注意事项】
1 采集时间：
（1）以晨痰为好。多数病人清晨痰较多，易于采集。且清晨痰含有的病理成分较多。会增加培养的阳性率。
（2）最好在应用抗菌药物之前采集标本。
2 送检
采集后应立即送检，以防止某些细菌在外环境中死亡。做结核分支杆菌和真菌培养的标本如不能及时送检，可放4℃保存，以免杂菌生长。
【标本的送检地点】
检验科微生物室
*标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。
第三章上呼吸道标本的微生物检验
一、检验项目
上呼吸道标本的细菌培养、真菌培养、结核菌培养、真菌涂片、结核菌涂片。
二、标本采集
【标本采集前的注意事项】
应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。
【标本送检指征】
1病毒性普通感冒伴有明显咽痛时，怀疑为咽部链球菌感染，应做细菌培养。
2细菌性咽－扁桃体炎：明显咽痛、畏寒、发热，体温可达39℃以上。
3 上呼吸道感染易并发鼻窦炎、中耳炎、气管－支气管炎，需送相应部位分泌物或痰液进行细菌培养。
【标本采集容器】
咽拭子或鼻咽拭子。
【标本的采集方法】
嘱患者用清水反复漱口，由检查者将舌向外拉，使腭垂尽可能向外牵引，用无菌棉拭子通过舌根到咽后壁或腭垂的后侧，涂抹数次，拭子要避免接触口腔和舌粘膜。
【标本采集注意事项】
1 采集时间：应于抗生素应用之前。时间上可无严格限制，但咽部是呼吸和食物的通路，也应晨起后采集为佳。
2送检：应立即送检。
【标本的送检地点】
检验科微生物室。
*标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。
第四章尿液标本的微生物检验
一、检查项目
尿液的细菌培养，真菌培养、结核菌培养、真菌涂片、结核菌涂片。
二、标本采集
【标本采集前的注意事项】
应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。
【标本送检指征】
1 有典型的尿路感染症状；
2 肉眼脓尿或血尿；
3 尿常规检查表现为白细胞和/或亚硝酸盐阳性；
4 不明原因的发热，无其他局部症状；
5 留臵导尿管的病人出现发热；
6 膀胱排空功能受损；
7 泌尿系统疾病手术前。
【标本采集容器】
无菌试管或无菌尿液标本留取容器。
【标本的采集方法】
1 清洁中段尿标本，嘱咐患者睡前少饮水，清晨起床后用肥皂水清洗会阴部，女性应用手分开大阴唇，男性应翻上包皮，仔细清洗，再用清水冲洗尿道口周围，开始排尿，将前段尿排去，插入性接取中段尿约10ml于无菌容器中，立即送检，于一小时内接种。该方法简单、易行，是最常用的尿培养标本收集方法，但很容易受到会阴部细菌污染，应由医护人员采集或在医护人员指导下由患者正确留取。
2 耻骨上膀胱穿刺：使用无菌注射器直接从耻骨上经皮穿入膀胱吸取尿液，是评估膀胱内细菌感染的“金标准”方法，但有一定的痛苦，病人难以接受。主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的婴儿尿标本的采集。
3 直接导尿：按常规方法对会阴部进行清洗消毒后，用导尿管直接经尿道插入膀胱，获取膀胱尿液。可减少尿液标本的污染，准确地反映膀胱感染情况。但有可能将下尿道的细菌引入膀胱，导致继发感染，一般不提倡使用。
4 小儿收集包：对于无控制能力的小儿可应用收集包收集尿液，这种装臵由于很难避免会阴部菌群污染产生假阳性，所以只有在检验结果为阴性时才有意义。如果检验结果为阳性，应结合临床进行分析，必要时可使用耻骨上膀胱穿刺或导尿法留取尿液进行复查。
5 留臵导尿管收集尿液：利用留臵导尿管采集标本时，应先消毒导尿管外部，按无菌操作方法用注射器穿刺导尿管吸取尿液，操作时应防止混入消毒剂，不能从收集袋中采集尿液。长期留臵导尿患者，应在更换新尿管时留取尿标本。
【标本采集注意事项】
一般于晨起第一次尿液送检。应选在抗菌药物应用之前。
【标本的送检地点】
检验科微生物室。
*标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。
第五章粪便标本的微生物检验
一、检验项目
粪便标本的细菌培养、真菌培养、结核菌培养、肠道菌群、真菌涂片、结核菌涂片。
二、标本采集
【标本采集前的注意事项】
应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。
【标本送检指征】
1 急性腹泻：大便次数明显增多，腹痛，里急后重，往往伴有发热，大便性状为粘液便或脓血便。
2 慢性腹泻：大便次数多，多为稀便，伴有全身乏力等症状。
3 无痛性大量水样便或米泔样稀便。
4 先吐后泻：恶心、呕吐、腹痛、腹泻。有集体发病史，多为细菌性食物中毒所致。
5 抗生素治疗后腹泻：常发生于长期抗生素治疗后，糊状便，排便次数增加。
6 高热惊厥：通常为中毒性痢疾，多见于婴幼儿和小儿。
【标本的采集容器】
一次性无菌便盒。
【标本的采集方法】
1 自然排便采集法：自然排便后，调取有脓血粘液部位的粪便2～3g，液状粪便取絮状物盛于无菌的容器内或臵于保存液或增菌液中送检。
2 直肠拭子法：如不易获得粪便时或排便困难的患者及幼儿，可采用直肠拭子方法采集，取出后臵于灭菌容器内送检。
【标本采集注意事项】
1 采集时间：应在急性期采样，以提高检出率，最好在用药前。
2 送检：应立即送检，如不能立即送检，放入Cary-Blair运送培养基或pH7.0
的磷酸盐甘油（0.033mol/L PBS与等体积的甘油混合）中运送和保存。
【标本的送检地点】
检验科微生物室。
*标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。
第六章化脓和创伤标本的微生物检验
一、检验项目
脓汁和创伤部位分泌物的细菌培养、真菌培养、结核菌培养、一般细菌涂片、真菌涂片、结核菌涂片。
二、标本采集
【标本采集前的注意事项】
应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。
【标本送检指征】
1 局部症状：红、肿、热、痛和功能障碍是化脓性感染的五个典型特征。但随病程迟早、病变范围、位臵深浅，五个症状不一定全部表现。病变范围小或位臵较深时，局部症状可不明显。
2 全身症状：轻重不一。感染较重者常有发热、头痛、全身不适、乏力食欲减退等，一般均有白细胞计数增加和核左移。病程较长时，可有水和电解质紊乱，血浆蛋白减少，肝糖原大量消耗，可出现营养不良、贫血、水肿等症状。全身性感染严重的病人可发生感染性休克。
3 疑为下列疾病时需送检：
①软组织的急性化脓性炎症：如疖、痈、急性蜂窝织炎、丹毒等。
②化脓性疾病：如甲沟炎、化脓性关节炎、化脓性骨髓炎、气性坏疽、细菌性结膜炎、鼻窦炎、化脓性扁桃体炎、急性化脓性中耳炎、急性化脓性乳突炎、急性乳房炎、急性胆囊炎、急性梗阻性化脓性胆管炎、心包炎、结核性腹膜炎。
③脓肿：扁桃体脓肿、咽部脓肿、咽旁脓肿、脑脓肿、肺脓肿、肝脓肿、脓胸、腹腔脓肿、肾皮质化脓性感染、肾周围炎和肾周脓肿、直肠肛管周围脓肿。
④创伤感染：术后切口感染、导管感染、脐带残端感染。
【标本采集容器】
无菌试管或无菌拭子。
【标本的采集方法】
1 开放性感染和已溃破的化脓灶：先用灭菌生理盐水冲洗表面的污染菌，用灭菌拭子采取脓液及病灶深部的分泌物。注意尽量取化脓组织与正常组织交界处的脓汁，因为脓汁中心的细菌大部分已死亡，交接处的活菌较多，会提高阳性率。
对于慢性感染，因污染严重，很难分离到致病菌，可取感染部位下的组织，研磨成组织匀浆接种于培养基。
2 闭锁性脓肿：一般采用穿刺或手术引流的方法采取.采集前先用2.5-3%的碘酊和75%的酒精消毒周围皮肤。
【标本采集注意事项】
1 采集时间：应在用药之前采取。
2 送检：应立即送检。如不能送检，应放4℃保存。培养淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌的标本除外。
【标本的送检地点】
检验科微生物室。
*标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。
第七章脑脊液标本的微生物检验
一、检验项目
脑脊液的细菌培养、真菌培养、结核菌培养、一般细菌涂片、真菌涂片、结核菌涂片、墨汁染色查新型隐球菌。
二、标本采集
【标本采集前的注意事项】
应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。
【标本送检指征】
成人：发热、头痛、恶心、呕吐、颈强直和反射增强等症状，怀疑为脑膜炎的患者。
儿童：因儿童和新生儿的临床表现不明确，因此对于婴儿不明原因发热，应怀疑为脑膜炎，采取脑脊液。
*作脑脊液培养的患者，建议同时做血培养。
【标本采集容器】
无菌试管或小瓶。
【标本的采集方法】
用腰穿的方法采集脑脊液，如果用于检测细菌或病毒，脑脊液量应大于或等于1ml，如果用于检测真菌或抗酸杆菌，脑脊液量应大于或等于2ml。
【标本采集注意事项】
1 采集时间：应立即采集，且最好于抗生素使用之前。
2 送检：收集标本后，常温下15分钟内送到实验室。脑脊液标本不可放冰箱保存，会使一些细菌死去（如脑膜炎奈瑟菌、肺炎链球菌和嗜血杆菌）。常温下可存放24小时。
【标本的送检地点】
检验科微生物室
*标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。
第八章胆汁标本的微生物检验
一、检验项目
胆汁标本的细菌培养、真菌培养、真菌涂片。
二、标本采集
【标本采集前的注意事项】
应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。
【标本送检指征】
1 腹痛：具有上腹部或右上腹部持续性腹痛伴阵发性加重。并向右肩部放射，有时出现剧烈胆绞痛或上腹部疼痛。
2 黄疸：90%左右急性重症胆管炎病人伴有不同程度的黄疸。
3 墨菲征阳性：右上腹压痛、肌紧张、胆囊区深吸气时有触痛。
4 伴随症状：常有恶心、呕吐和发热，尿少且黄。
5 中毒或休克：约有90%急性重症胆管炎患者表现为弛张高热，伴有寒战，少数严重病例体温不高，而在早期即发生感染性休克。
怀疑为下列疾病需送检：急性胆囊炎、急性重症胆管炎。
【标本采集容器】
无菌试管或无菌容器。
【标本的采集方法】
1 先用2%碘酊消毒穿刺要通过的皮肤
2 用针穿刺法或外科手术引流法采集标本，然后放入无菌试管或无菌容器内。
3 尽可能采取更多的液体，至少为1ml。
【标本采集注意事项】
1 采集时间：怀疑感染存在，应尽早采集，一般在患者使用抗菌药物之前或停止用药后1-2日采集。
2 送检：应在常温下15分钟内送到实验室。在常温下可保存24小时。如果
做真菌培养，只能放4℃保存。
【标本的送检地点】
检验科微生物室
*标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。
第九章胸水标本的微生物检验
一、检验项目
胸水的细菌培养、真菌培养、结核菌培养、一般细菌涂片、真菌涂片、结核菌涂片。
二、标本采集
【标本采集前的注意事项】
应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。
【标本送检指征】
多伴有胸痛及发热。怀疑为下列疾病：结核性胸膜炎、细菌性肺炎引起的胸膜炎、肺部真菌感染引起的胸腔积液。
【标本采集容器】
无菌试管或无菌容器。
【标本的采集方法】
1 首先用2%碘酊消毒穿刺要通过的皮肤。
2 用针穿刺法或外科手术引流法采集标本，然后放入无菌试管或小瓶内。为防止凝固，应在试管中先加入灭菌肝素。
3 尽可能采取更多的液体，至少为1ml。
【标本采集注意事项】
1 采集时间：怀疑感染存在，应尽早采集，一般在患者使用抗菌药物之前或停止用药后1-2日采集。
2 送检：应在常温下15分钟内送到实验室。在常温下可保存24小时。如果做真菌培养，只能放4℃保存。
【标本的送检地点】
检验科微生物室
*标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。
第十章腹水标本的微生物检验
一、检验项目
腹水的细菌培养、真菌培养、结核菌培养、一般细菌涂片、真菌涂片、结核菌涂片。
二、标本采集
【标本采集前的注意事项】
应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。
【标本送检指征】
1 腹痛：可局限于炎症局部也可遍布全腹。
2 呕吐：常为早期症状之一，较轻。如发生麻痹性肠梗阻会出现持续性呕吐。
3 腹部压痛、肌紧张、肠鸣音减弱或消失。
【标本采集容器】
无菌试管或无菌容器。
【标本的采集方法】
1 首先用2%碘酊消毒穿刺要通过的皮肤。
2 用针穿刺法或外科手术引流法采集标本，然后放入无菌试管或无菌容器内。为防止凝固，应在试管中先加入灭菌肝素。
3 尽可能采取更多的液体，至少为1ml。
【标本采集注意事项】
1采集时间：怀疑感染存在，应尽早采集，一般在患者使用抗菌药物之前或停止用药后1-2日采集。
2 送检：应在常温下15分钟内送到实验室。在常温下可保存24小时。如果做真菌培养，只能放4℃保存。
【标本的送检地点】
检验科微生物室
*标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。
第十一章心包液标本的微生物检验
一、检验项目
心包液的细菌培养、真菌培养、结核菌培养、一般细菌涂片、真菌涂片、结核菌涂片。
二、标本采集
【标本采集前的注意事项】
应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。
【标本送检指征】
1 全身症状：发冷、发热、心悸、出汗、乏力和精神症状。
2 心前区疼痛、心包摩擦音：见于纤维蛋白性心包炎阶段。
3 渗出性心包阶段：
①心浊音界向两侧增大，心尖搏动消失或远在心浊音界左缘内侧，心音明显减弱。收缩期血压降低，舒张期血压无变化，故脉压差减少。
②有大量渗液时，可因液体压迫左肺底部而在左下肩部出现浊音及支气管呼吸音等肺实变体征。
③心脏压塞征象：一般见于心包渗液产生迅速或有大量心包渗液时。
4 心电图：普通导联ST-T改变或肢导低血压。
【标本采集容器】
无菌试管或无菌容器。
【标本的采集方法】
1 首先用2%碘酊消毒穿刺要通过的皮肤。
2 用针穿刺法或外科手术引流法采集标本，然后放入无菌试管或无菌容器内。
3 尽可能采取更多的液体，至少为1ml。
【标本采集注意事项】
1 采集时间：怀疑感染存在，应尽早采集，一般在患者使用抗菌药物之前或
常见微生物标本的采集
常见微生物标本的采集、处理与检测 标本采集的基本原则：尽早采集、根据可疑的病原体，选择不同采集时机和标本种类、在抗生素应用前采集、遵守无菌操作、正确保存和运送。容器应密封不易碎，标本不得污染容器的口和外壁。 1.血液标本正常人的血液是无菌的。当细菌侵入时可引起严重的菌血症或败血症。 一般情况下在患者发热初期或发热高峰时采集；持续性菌血症可随时采集；间歇性菌血症，应预测其体温上升期进行采血。一般在使用抗生素前采集2~3次；多部位采集，如两侧肘静脉或动、静脉同时采取；对于已使用抗生素而无法停止的患者，也应在下次用药前采取。在感染局部的附近血管中采血，可提高阳性率。采血量成人一般5~10ml，婴幼儿1~2ml。 采集的血液标本注入培养瓶中先进行增菌培养，培养基和血液标本量的比例应>10：1，将血液中的各类杀（抑）菌物质充分稀释。需氧菌常用培养基有胰酪蛋白大豆胨肉汤和葡萄糖酚红肉汤等，常加入对氨基苯甲酸（PABA）50μg/ml中和磺胺类，青霉素酶2单位/ml破坏青霉素类，硫酸镁中和链霉素、四环素、土霉素、金霉素、新霉素及多粘菌素等抗生素。加入0.03~0.05%的聚茴香磺酸钠（sodium polyanethol sulfonate, SPS）可抑制血清中的抗菌物质，并对氨基糖苷类和多肽类抗生素有灭活效果。并加入Ⅹ、Ⅴ因子等生长因子。 培养瓶每天观察一次。如发现①培养瓶内液体浑浊；②血球层上面出现颗粒状的生长物，并且有自下而上的溶血；③有明显的凝块；④液体表面有菌膜，培养液清晰或浑浊等，表明有细菌生长。直接进行涂片染色初步报告。同时分别接种血平板、巧克力（色）平板，普通培养和5%CO2 35℃培养。也可直接进行体外药敏试验。无细菌生长迹象的培养瓶孵育至第7d，接种血平板、巧克力（色）平板，分别进行普通培养和5%CO2环境35℃孵育24h。为了提高检出的速度，在培养的第2~3d时应移种一次。 有厌氧菌感染时，同时注入需氧瓶和厌氧瓶，厌氧培养基通常用硫乙醇酸盐培养基、牛心脑浸液肉汤等；培养液中有刃天青，无氧时无色，有氧时呈红色。需氧瓶和厌氧瓶同时浑浊，或需氧瓶无生长而厌氧瓶液体浑浊，提示厌氧菌生长。分别接种血平板和厌氧血平板，置需氧和厌氧环境中，如果都只生长1种细菌，则为兼性厌氧菌；如果仅在厌氧环境中生长，可以直接报告“有厌氧菌检出”。 若长期应用抗细胞壁类抗生素，应考虑细菌L型存在，将血液接种高渗培养基中，分别进行需氧、厌氧和5%CO2环境培养。每周移种2~3次于高渗固体培养基上，观察有无细菌L型菌落生长。 2.呼吸道标本 正常上呼吸道有正常菌群。下呼吸道正常情况下无细菌或仅有少量细菌侵入
微生物标本采集 送检及处理原则
微生物标本采集、送检及处理原则 一、标本采集的一般原则： 1、病程早期、急性期或症状典型时，使用抗生素前。 2、无菌采集应无污染，严格进行无菌操作。 3、根据目的菌的特性用不同的方法采集适量标本，采集量不应过少。 4、注意在不同病程采集不同部位标本。 5、采集标本时要防止传播和自身感染。 二、标本的处理： 1、标本保存在4℃环境中，在2h之内送检。脑脊液则要在25 ℃保存，用于细菌培养的标本保存时间不应超过24h。对环境敏感的细菌应保温并立即送检。 2、标本中可能含有致病菌，必须注意安全防护。切勿污染环境。对于烈性传染病标本运送时更要由专人运送，严格按规定包装。 3、厌氧性标本应放在专门的运送瓶或试管内运送，有时可直接用抽取标本的注射器运送。 Ⅰ血液及骨髓标本： 血液标本的细菌培养是诊断菌血症或败血症的基本方法。如从患者血液中检出细菌，一般应视为病原菌。 常见的病原菌主要有金黄色或表皮葡萄球菌、链球菌（A、B群、肺炎链球菌等）、肠球菌、产单核细胞李斯特菌、脑膜炎奈瑟菌、伤
寒及副伤寒沙门菌和厌氧菌等。 1、采血时间及次数 2、抽血部位及抽血量 3、报告方式：培养5d无菌生长者报告“培养5d无菌生长”。 查见细菌报告菌名和药敏结果。 4、菌血症、败血症的诊断标准：1）两次培养均出现同一种细菌（可排除污染）； 2）发病星期后血中抗体滴度上升。 Ⅱ脑脊液标本： 脑脊液的细菌学检查对于细菌性脑膜炎的诊断有重要价值。正常人的脑脊液是无菌的，检出细菌提示有细菌性（急性化脓性、结核性等）脑膜炎。 常见的病原菌主要有脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、链球菌（A、B群和肺炎链球菌）、葡萄球菌、产单核细胞李斯特菌、结核分枝杆菌等。 1、涂片检查： (1) 一般细菌涂片检查：例如：革兰阴性、凹面相对的球菌，可能是脑膜炎奈瑟菌；链状排列的革兰阳性球菌；长丝状等多形态性的革兰阴性杆菌，可能是流感嗜血杆菌。 (2)结核分枝杆菌涂片检查 (3)新生隐球菌涂片检查
微生物标本采集规范(1)
微生物常见标本的采集规范 一、血液、骨髓、胸腹水标本的采集 1、最好用药前采集，在发热高峰前1h内或发热高峰时采血最为理想。 2、采血量在5-10ml为宜，成人必须左右手各一套瓶（需氧+厌氧）、并标明左右手，儿童左右手各一瓶需氧。 3、轻轻颠倒混匀以防凝固，立即送检（2小时之内），禁止4℃冷藏保存。 4、骨髓和胸腹水标本或其他穿刺液标本，抽取后将5-10ml直接打入一套血培养瓶内（需氧+厌氧），并注明标本种类。 二、尿液标本的采集 1、清洁中段尿的采集： 通常以晨起第一次尿液、未服用抗生素前送检以提高阳性率。留取标本后尽快送检，不得超过1小时。 女性患者应用清水和肥皂或清洁剂清洗外阴，男性应清洗龟头。排出前段尿后，打开无菌尿杯或无菌管留取中段尿。 2、插管尿的采集: 直接插管或称临时插管尿标本采集： 用夹子钳夹插管约30 分钟，以获取足够尿液。乙醇消毒插管的取样端口或导尿管的适当部位后，应用注射器抽吸留取尿标本，将获取的尿标本转至带盖的无菌管中。尿路插管不做培养，拒收！ 3、以下是不适于尿培养的尿标本： 1）自留置导尿管内获取的尿液标本可能有定值菌的污染。
2）集导尿袋内获取的尿液标本，可能有定值菌及环境微生物的污染。3）导管尖因为不可避免地受到尿道菌群的影响而不适合作为尿培养标本。 三、粪标本的采集： 1、直肠拭子法：先将肛门周围洗净，用无菌拭子蘸生理盐水，放入 直肠旋动取出放入拭子转运管送检。 2、自然排便法：清洁便盘内排便，挑取脓血或粘液部分，放入无菌 粪杯送检。 四、下呼吸道标本的采集（痰、肺泡灌洗液） 1、咳痰：患者清晨清水漱口3次后，深咳自下呼吸道痰液，量≥1ml， 避免不合格的口水痰。 2、诱导性痰：清洁口腔后用水漱口，用喷雾器吸入约25ml 3%-10%生理盐水诱导痰。 3、气管抽吸痰：病区医生采样。 4、支气管肺泡灌洗液：（做支气管镜检查）采集量10ml。 五、上呼吸道标本的采集 1、鼻：用无菌拭子生理盐水湿润后，插入鼻孔2cm，用力旋转 2、鼻咽：用无菌湿润拭子经鼻腔插入鼻咽后部（约2.5cm），旋转拭子5圈或停留10秒吸收分泌物。 3、咽部；采集前清水反复漱口，将舌向外拉，将棉拭子通过舌根到咽后壁或腭垂的后侧，涂抹数次，但拭子要避免接触口腔和舌粘膜。 4、常温2小时内送检
微生物检验标本的正确采集及注意事项
微生物检验标本的正确采集及注意事项 正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。据相关统计：微生物标本的检测误差来源：80%来源于分析前20%来源于分析中和分析后其它检验样本的检测误差来源：45%分析前10%分析中（仪器））45%分析后.检验标本采集质量控制的重要性,分析前的误差来源所占比例的这个数据是惊人的，在我们的大型医院都存在这个问题，而在我们医院应该不会低于这个数据。 可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、采集方法 （1）75%酒精清洁局部皮肤。 （2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm （直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 （3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。 （4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。 2、注意事项 （1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。 （2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，应在抗菌药物浓度最低时采集也即在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 （3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。 （4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。 （5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 （6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。 （7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。 （8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、呼吸道 1、痰标本 （1）采集方法 ①清晨起床后用凉开水漱口多次，以除去口腔内大量杂菌，用力咳出肺深部的脓痰，置于清洁干燥容器中或无菌管中送检。 ②痰量极少者可用45℃ 3%-10%的氯化钠溶液约25ml雾化。对于咯痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，当其咯痰后用无菌棉棒采集标本。
病原微生物标本采集、运送
病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。 一、标本采集的一般原则 1.早期采集 采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌的检出。 2.无菌操作 采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。采集的标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌的检出。3.适量的标本 标本量过少可能导致假阴性结果。 4.适当的采集方法 对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻。 5.盛放标本的容器 采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容器内。 二、标本的运送 1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4度冰箱保存，且不能超过24小时。 2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。 三、不同标本的采集，运送 （一）血液标本采集，运送
1.血培养指针征 当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。 2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时或间隔短时间内采集２套以上血培养标本。成年患者：推荐同时采集２－３套（不同部位）血培养标本（即双瓶双臂同时采集血培养标本），采血量每瓶不少于5ml;婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同部位）血培养标本,采血量每瓶不少于2ml。（少于病人总血容量的1%）.在采取血培养后的2—5天内，无需重复采取血培养。两个例外：细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。 3.血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。 检出率与采血量成比例增长，每增加1ml的血液，病原菌的检出率就会相应增加。儿童患者血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人。采用一对（需氧瓶+厌氧瓶）组合，比采用二个需氧瓶的组合可检出更多的葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌。采血量不能满足推荐的量时，应首先满足需氧瓶的需要。 推荐从外周静脉采集血液标本,不推荐静脉留置导管，因其常伴有高污染率。如果必须从留置导管内采血，也应同时从外周静脉采集另外一个血培养标本以帮助阳性结果的判读。 4.血标本采集的注意事项 在采血之前，血培养瓶的橡皮塞需使用75%酒精消毒并干燥。然后再进行穿刺部位的皮肤消毒。严格按照“酒精、含碘消毒剂、酒精”的消毒步骤操作，并等待足够的消毒时间。严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手接触静脉，除非带有无菌手套.不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头;采集后的血培养瓶应在1小时之内送往实验室,血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏或冷冻。 (二)痰培养标本采集，运送 1.痰培养指征 上呼吸道感染包括咽炎，喉炎，会咽炎等都可采集鼻，鼻咽，口咽拭子标本
微生物标本采集大全
微生物标本采集大全 日期:2015-12-17 20:44:38 来源:中华检验医学网点击:21 次 正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、采集方法 （1）75%酒精清洁局部皮肤。 （2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm（直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 （3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。 2、注意事项 （1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。 （2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，也应在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 （3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。 （4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。 （5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 （6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。 （7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。 （8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、骨髓的采集
常见标本采集指南
常见标本采集指南 起草日期：2013 年7月5 日生效日期2013年9 月1日批准人：丁正林 Ⅰ.目的：标本的采集是实验前质控的重要环节,直接影响到检验结果的可靠性和准确性,制定本采集指南是为了规范标本的正确采集,减少采集误差，有效提高检验质量。 Ⅱ.适用范围：适用于全检验科。 Ⅲ. 实施办法、程序： 一.静脉血采集 1.带上手套，并注意常规安全防护。 2.核对检验申请医嘱或检验申请单上的病人信息及检验项目是否吻合。 3.信息核对无误后绑定真空采血条码管，门诊病人可通过诊疗卡调出相应信息。 4. 受检者取坐位或卧位，前臂水平伸直置于抽血台枕垫上或病床上，选择容易固定、明显可见的肘前静脉或手背静脉，幼儿可用颈外静脉采血。 5.在穿刺点上方约6cm处系紧压脉带，嘱受检者紧握拳头，使静脉充盈显露。 6.用25g/l碘酊自所选静脉穿刺处从内向外、顺时针方向消毒皮肤，待碘酊挥发后，再用75%乙醇以相反方向脱碘，待干。 7.采血：拔除采血穿刺针的护套，以左手固定受检者前臂，右手拇指和十指持穿刺针，沿静脉走向使针头与皮肤成300角，快速刺入皮肤，然后成500角向前刺破静脉壁进入静脉腔，见回血后将刺塞针端（用橡胶管套上的）直接刺穿真空采血管盖中央的胶塞中，血液自动流入试管内，如需多管血样，将刺塞端拔除，刺入另一真空采血管中即可。达到采血量后，松压脉带，嘱受检者松拳，拔下刺塞端的采血试管，将消毒棉签压住穿刺孔，立即拔除穿刺针，嘱受检者继续按压针孔数分钟。抗凝血需立即轻轻颠倒混匀6-8次。 8. 将已使用过的针放入医疗硬器盒内。 附注: 1)采血部位通常选择肘前静脉，如此处静脉不明显，可采用手背、手腕、腘窝和外踝部静脉。幼儿可采用颈外静脉。 2) 压脉带捆扎时间不应超过1分钟，否则会使血液成分浓度发生改变。 3) 如果一次要求采血多管样本时，应按以下顺序采血：血培养蓝头管黑头管黄头管红头管橘黄头管绿头管紫头管灰头管 4)如采血时发生晕针，应立即拔出针头，让其平卧。必要时可用拇指压掐或针刺人中、合谷等穴位，或嗅吸芳香酊等药物，严重时立即送急诊室救治。 二、动脉血采集 1 填写血气检测申请单，并对病史、诊断和用药情况、抽血时体温、是否用氧及流量等进行填写。 2标本采集：选择股动脉、肱动脉或桡动脉穿刺点，经皮肤消毒后，用动脉采集专用针穿刺动脉血管，当动脉血压力推动空针活塞采集所需动脉血后。拨出针用小橡皮封针头，隔绝空气，立即将注射器放在手中双手来回搓动混匀防止凝固，并立即送检。 三、浆膜腔积液采集 由临床医生按相关操作规范采集。标本包括胸腔积液、腹腔积液、心包积液。 采集标本分三管留取，每管１-２ml。 第一管供细菌学检查，必须置于无菌管中，如浆膜腔积液培养。 第二管供化学及免疫学检查，如浆膜腔积液生化检查。 第三管供细胞学检查（置于帽为紫色的试管中抗凝），如浆膜腔积液常规检查。 四、脑脊液采集 由临床医生按相关操作规范采集。
试题微生物标本采集与运送
《微生物标本采集与运送规范》培训试卷科室姓名职业得分 一、单选题50分（每题5分） 1. 微生物实验室误差最大的影响因素为: ( ) A. 实验前误差 B. 实验误差 C 验后误差 D. 随机误差 2. 血培养必须在( )内送检 A. 30min B. 1h C. 2h D. 4h 3 血培养的阳性检出率与( )成正比例的关系 A. 温度和时间 B. 采血量和采血时间 C. 采血量和采血套数 D. 采集方法和采血量 4. 某患者采血培养1套,培养结果为“表皮葡萄球菌”,判断这是污染菌还是致病菌,需要( ) A. 增加消毒次数 B. 增加采血量 C. 增加采血套数 D. 延长培养时间 5. 血培养瓶接种前和接种后,放置的最佳温度为( ) A. 0℃ B. 4℃ C. 室温(15~25℃) D. 35℃ 6. 下呼吸道感染患者最佳的送检标本为( ) A. 痰液 B. 支气管肺泡灌洗液(BALF) C. 咽拭子 D.唾液(口水) 7. 下呼吸道感染患者,除了做痰培养以外,还应该做( ) A. 血培养 B. 咽拭子 C. 厌氧菌 D. 分泌物 8. 下列申请单中标本采集部位不确定,检验目的不明确,属于不合格申请单的是( ) A. 中段尿培养 B. 痰培养 C. 分泌物培养 D. 脑脊液培养 9. 中段尿标本最常见的影响因素是( ) A. 容易受污染 B. 喝水过量 C.喝水过少 D. 无影响 10. 下列尿液标本中适合做厌氧菌培养是( ) A. 清洁中段尿 B. 留置尿管导尿 C. 耻骨上膀胱穿刺 D. 24h尿 二、多选题25分（每题5分） 1. 下列标本类型中, ( )属于有价值的标本,有重要的临床意义,鼓励送检 A. 血液 B. 骨髓 C. 胸腹水 D.脑脊液 E. 关节液 2 常用的拭子标本不适合作为送检标本的原因有( ) A. 使用方便 B. 标本量太少 C. 容易干燥 D. 不易接种到培养基中 E. 木(竹)签中含有抑菌物质 3. 下列关于痰液标本采集和运送的做法正确的有( ) A. 采样前应刷牙（不用牙膏）或用冷开水漱口,以避免口腔正常菌群污染 B. 采取晨痰第一口痰最佳,咳痰时应咳取深部痰液 C. 做结核分支杆菌检查时,痰液量应增加 D. 肺部感染患者中有25%~50%可能会有菌血症,因此应同时做血培养 4. 下列关于血培养标本采集和运送的做法正确的有( ) A. 在使用抗菌药物治疗前采集 B. 如患者已经使用抗菌药物的,应在下次使用抗菌药物之前采集 C. 应在患者寒战开始时,或发热初起时采集 D. 血培养标本应按“套”采集,采集套数为2~3套,不能采集单一瓶数 E. 必须严格执行无菌操作,避免污染,采集后应快送检,如未能及时送检,应放置4℃冰箱保存 5.下列痰培养标本属于不合格标本,应予拒收的有( ) A. 24h内重复采集的痰样本 B. 唾液(口水) C. 咽拭子 D.. 痰液做厌氧菌培养 三、简答题25分 简述微生物样本采样基本原则
微生物标本采集及保存要求
微生物标本采集及保存要求 一、总则：用于培养的标本在收集时应注意严格无菌操作和及时送检，检测后标本应妥善保存。 二、临床标本的采集 （一）下呼吸道分泌物（痰液） 令患者早上起床后用清水濑口，不要刷牙，立即从下部呼吸道咳出第一口痰，吐在无菌塑料痰盒中，及时送检。 （二）、尿液（中段尿） 护理人员协助采取中段尿约3ml入无菌试管中，及时送检。 （三）、粪便：取有粘液、脓血部分的粪便置玻璃大便专用管中，如为稀水便，可直接收集于玻璃管中，及时送检。 （四）、眼、耳、鼻、喉拭子：将棉拭子沾取少许无菌生理盐水（如沾取的太多，可在无菌生理盐水瓶壁上挤去多余的水份），然后采取可疑部位的分泌物，倒悬于无菌试管内,及时送检。 （五）、脓液：用沾有生理盐水的棉拭子沾取脓液，要尽量多取一些，然后将棉拭置于无菌试管中，及时送检。 （六）、： 1、凡怀疑菌血症和败血病的患者，采血培养时，应尽量在未使用抗菌素前采血，如已使用抗菌素，应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血，应在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。当然在病人发热或寒颤时采集也可。 2、成人每次采血5—10ml，小儿采血2—3ml； 3、严格消毒病人采血部位和血培养瓶口，抽一定量血液后，无菌注入血培养瓶内，轻轻摇匀， 4、从抽血到接种入瓶，动作要快，防止血液凝固，同时要及时送检。 （七）、穿刺液：胸腹水、心包液、关节腔液、鞘膜积液： 严格无菌抽取后，注入含肝素抗凝的无菌试管中，轻轻颠倒试管10余次，使肝素与穿刺液混匀达到抗凝的目的，或直接无菌注入血培养瓶内及时送检。 （八）、胆汁：由专科医生以无菌方法取引流液10ml注入无菌试管。 （九）、脑脊液：以无菌方法取脑脊液3-5ml，置无菌试管内，常温保存送检，如只做培养可直接无菌注入血培养瓶内，及时送检。 （十）、生殖器官标本：阴道、子宫颈及前列腺等分泌物应由医师采集，收集于无菌试管内送检。如疑为淋病奈瑟菌感染，做培养检查时，采集的标本应床旁接种并及时放入孵箱培养。（十一）、烧伤标本：以无菌棉拭子直接采取多个部位创面的脓汁分泌物放入无菌试管中. （十二）、支原体（解脲、人型）培养+药敏的标本采集 1、支原体对干、热抵抗力差，标本采集后应尽快接种支原体运送培养基送检。 2、男性：用细的无菌棉拭子沾取无菌盐水少许深入尿道口内2.5-3cm。 三、临床标本的保存 细菌室标本原则上要求及时送检、及时处理，不得保存。
临床微生物标本的送检与采样指南
临床微生物标本的送检与采样指南 呼吸道标本采集及运输 一、上呼吸道标本 1、送检指征上呼吸道感染包括咽炎、喉炎、会厌炎等，凡具有以下情况任何一项者疑似患者。 1.1 病毒性普通感冒伴有明显咽痛时，怀疑为咽部链球菌感染，应做细菌培养。 1.2 细菌性咽-扁桃体炎：明显咽痛、咽部发红、畏寒、发热，体温可达39°C以上。 1.3 喉咙痛、咳嗽、喉部有脓样分泌物等临床症状。 1.4 上呼吸道感染易并发鼻窦炎、中耳炎、气管-支气管炎，需送相应部位分泌物或痰液进行细菌培养。 2、标本采集上呼吸道标本包括鼻、鼻咽、咽拭子标本。应根据临床表现和感染部位的不同有选择性的采集标本，以便更好地分离出病原菌。采集时应选择无菌、不含抑制剂的棉拭子，预先用无菌生理盐水或营养肉汤蘸湿拭子，并直取感染部位，减少污染。 2.1 鼻拭子的采集：最好使用扩鼻器，先用拭子拭去鼻黏膜表面的分泌物并丢弃，用第2个试子蘸取无菌生理盐水或营养肉汤，插入鼻孔采集病灶标本。 2.2 咽拭子的采集：采集标本时患者先用清水漱口，由检查者将舌向外拉，使腭垂尽可能向外牵引，用无菌的鼻咽拭子（一端弯曲的金属棉拭）由口腔进入，越过舌根到咽后壁或腭垂后侧，采集鼻咽红肿处标本，取材后小心将试子退出，立即放人无菌试管内。若咽部明显发红或有假膜存在时，应在局部擦拭取标本（最好拭子从膜底下擦拭）。采集标本可在咽部多点采集标本，以提高检出率。若无局部病变或做带菌者测试应于咽部或扁桃体上擦拭。 3、采集时间及频率 3.1 检查时间：应于抗菌药物应用之前。时间上无严格限制，但咽部是呼吸和食物的
通路，也应晨起后采集为佳。 3.2 采集频率：重复采集标本的频率一般每日最多1次。 4、标本的运输标本采集后应立即送检，室温运送时间小于2小时，如果不能立即接种，必须装在无菌运送培养基中，避免由于干燥而使某些细菌死亡。检测淋病奈瑟菌或脑膜炎奈瑟菌的拭子应放人含碳的转运培养基，采集后2小时内接种平板，以防细菌死亡。 5、注意事项 5.1应于抗菌药物治疗前采集鼻咽喉拭子标本。 5.2标本采集前数小时不得用消毒药物漱口或涂抹病灶局部。 5.3用拭子采集标本时应小心、准确地在采集部位采取，避免触及舌、口腔黏膜和唾液，以防污染。 5.4疑为白喉杆菌感染时，应在咽部深沉组织中采取标本，避免咽部表面正常菌群污染。 5.5采集扁桃体标本时，应以晨起后采集为宜。 5.6采集标本时应戴口罩和手套，以防传染。 5.7咽部是呼吸和食物的通路，应以晨起后采集为宜。 5.8最好采集2份拭子，以方便直接涂片染色镜检和接种培养。 5.9采集标本用的拭子最好含藻酸钙或涤纶纤维的小头拭子采集。人造丝或棉拭子不能用，因为其所含的脂肪酸对病原菌有害。 二、下呼吸道标本 1、送检指征凡是发热、咳嗽和咳痰，痰呈脓性、黏稠或血性，并伴有胸痛、气急，肺部闻及湿啰音，外周血白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高，X线检查提示有炎症性浸润或胸腔积液，甚至出现感染性休克和呼吸衰竭的患者，应采集痰液或下呼吸道的标本。 2、标本采集时间 2.1以晨痰为好。多数患者晨痰较多，即使对谈量少的患者，也以清晨采集最为容易。
临床微生物标本采集与运送
临床微生物标本采集与 运送 LG GROUP system office room 【LGA16H-LGYY-LGUA8Q8-LGA162】
临床微生物标本采集与运送 一、血培养标本采集、运送与报告标准操作规程 一、血培养指征 患者出现寒战，体温超过38℃或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过72 h；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。 二、采血时机 一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做血培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24 h后，以寒战、发热时采集为宜。 三、采血流程 (一)消毒 1．培养瓶消毒程序：用消毒液消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。 2．皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5 cm 以上，待消毒液挥发干燥后(常需30 s以上)穿刺采血。 (二)静脉穿刺和培养瓶接种 成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头(如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头)，先注于厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。 (三)注意事项 1．检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。 2．采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。 3．采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。
临床常见微生物标本的采集与运送
临床常见微生物标本的采集与运送 唐玉英 正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。 一标本采集的一般原则 1.早期采集采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药 物之前采集，确保病原菌的检出。 2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正 常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。采集的标本 应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防 腐剂，以免降低病原菌的检出。 3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。 4.适当的采集方法对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不 同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存， 不能冷藏和冷冻。 5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容 器内。 二标本的运送 1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会 影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4 度冰箱保存，且不能超过24小时。 2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织
（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。 三不同标本的采集，运送 （一）血液标本采集，运送 1.血培养指针当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。 2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时或间隔短时间内采集２套以上血培养标本。成年患者：推荐同时采集２－３套（不同部位）血培养标本（即双瓶双臂同时采集血培养标本），采血量每瓶不少于5ml;婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同部位）血培养标本,采血量每瓶不少于2ml。（少于病人总血容量的1%）.在采取血培养后的2—5天内，无需重复采取血培养。两个例外：细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。 3. 血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。检出率与采血量成比例增长，每增加1ml的血液，病原菌的检出率就会相应增加。儿童患者血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人。采用一对（需氧瓶+厌氧瓶）组合，比采用二个需氧瓶的组合可检出更多的葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌。采血量不能满足推荐的量时，应首先满足需氧瓶的
【VIP专享】临床微生物标本采集与送检规范(试行)
临床微生物标本采集与送检规范（试行）临床微生物标本采集与送检是目前临床实验室诊断质量保证中 较为薄弱的环节，严重影响临床微生物学实验室对感染样本中致病 菌的分离培养的阳性率和医院感染病原体监控，也影响临床诊断， 合理选用抗菌药物，降低耐药菌的产生和提高感染的治愈率，而且 对预测或及时发现医院感染的暴发流行、杜绝感染蔓延、研究医院 感染的发病机制和环节、制定有效的医院感染控制措施等，均具有 十分重要的意义。严格实施正确的微生物标本送检和检验方法，是 做好医院感染病原体监测的关键。鉴此，希望临床各科能按照本操 作规范采样送检。 一、医院感染标本的采集和运送基本原则 1．发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查，我院总的医院微生物标本送检率应不低于40％。 2．尽量在抗菌药物使用前采集标本。 3．标本采集时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。 4．标本采集后立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。5．以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子，应立即送检。 6．盛标本容器须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。 7．送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。
二、常见医院感染标本送检方法 1．血液与骨髓 ①通常采血部位为肘静脉。疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处采取血标本。 ②采血部位的局部皮肤应严格消毒。将采集的血液注入血培养基前，应更换针头或过火消毒针头。血培养瓶应在避光室温中保存，不必 置冰箱保存。 ③每次采血量成人5～10ml，婴幼儿l～5ml，培养基与血液之比以lO：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。 ④怀疑菌血症应尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机。对已用抗菌药物而又不能停药者，可在下 次用药前采血。 ⑤每例病人至少采血两次，间隔0．5～lh，以利于提高阳性率和 区分感染菌与皮肤污染菌。 ⑥对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人，在病灶部位或髂前(后)上棘处严格消毒后抽取骨髓lml作增菌培养。 2．尿液 ①中段尿：女性采样前应先用肥皂水或0．1％高锰酸钾溶液冲洗 外阴部及尿道口；男性须翻转包皮冲洗，用O．1％新洁尔灭消毒尿 道口．灭菌纱布擦干后收集标本。 ②导尿管导尿采样可减少污染。对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。或消毒后解开
微生物标本采集手册
微生物标本采集手册 目录 第一章血液及骨髓标本的微生物检验 (2) 第二章痰标本的微生物检验 (6) 第三章上呼吸道标本的微生物检验 (8) 第四章尿液标本的微生物检验 (9) 第五章粪便标本的微生物检验 (11) 第六章化脓和创伤标本的微生物检验 (13) 第七章脑脊液标本的微生物检验 (15) 第八章胆汁标本的微生物检验 (16) 第九章胸水标本的微生物检验 (18) 第十章腹水标本的微生物检验 (19) 第十一章心包液标本的微生物检验 (20) 第十二章关节液标本的微生物检验 (22) 第十三章鞘膜积液标本的微生物检验 (23) 第十四章生殖道标本的微生物检验 (24) 第十五章外眼部标本的微生物检验 (27)
第一章血液及骨髓标本的微生物检验 一、检查项目 血液、骨髓液的细菌培养 二、标本采集 【标本采集前的注意事项】 应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。 【标本送检指征】 病人出现以下临床表现，或同时具备以下几种临床表现时应采集血培养。 1 发热（≥38℃）或低温（≤36℃） 2 寒战 3 白细胞增多（＞10×109/L，特别有“核左移”时） 4 粒细胞减少（成熟的多形核白细胞＜1×109/L） 5 血小板减少 6 皮肤、粘膜出血 7 昏迷 8 多器官衰竭 9 血压降低 10 呼吸加快 几种特殊情况： 1 可疑新生儿败血症时，除发热或低温外，很少培养出细菌，应增加尿液和脑脊液培养。 2老年菌血症病人可能不发热或不低温，如伴有身体不适、肌痛或中风，可能是感染性心内膜炎，也应采取血培养。 骨髓培养与血液培养的送检指征是基本一致的，临床常规血液感染有指征时以抽取血培养为主。但当骨髓炎时或长期使用抗菌药物患者，抽取骨髓培养阳性率会远高于血培养。
微生物送检标本的采集指南
微生物送检标本的采集指南 微生物学检验标本的正确采集、运送及处理，与细菌的培养。鉴定结果有十分密切的关系，对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS、炭疽、肺鼠疫等）患者采集标本时，必须按国家规范化要求严格注意生物安全；医生、护士、检验人员均应重视微生物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣传和指导。 （一）微生物学检验标本采集、运送、验收和处理注意事项 1.标本采集 1）申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本采集、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等），以便实验室能够合理选择培养环境和培养基； 2）尽量在抗生素应用前采集标本，以提高阳性检出率和避免漏检； 3）标本采集应严格执行无菌操作； 4）咽拭、肛拭、伤口拭等拭子标本，应插入运送培养基送检；5）痰、尿液伤口拭子等混有正常菌群的标本，不可放入肉汤培养基内送检； 6）采集标本的容器必须经灭菌处理，但不可用消毒剂。 2.标本运送 1）标本采集后应尽快送到微生物实验室； 2）标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，可视为不合格标本。 3.标本验收 1）实验室只能接受和处理合格标本； 2）实验室对不合格标本退回必须说明原因，并应及时与临床联系。 4.注意事项 1）微生物检验样本必须按要求采集转运，否则将影响检查结果，并给评价其意义带来麻烦甚至误导； 2)微生物样本极易被污染，污染的样本杂菌大量繁殖抑制病菌生长，条件致病菌也是致病菌，如污染条件致病菌将误导临床，造成对患者的损害以及经济和时间的浪费。 3)某些标本离体极易死亡，应在床边采取和接种或立即保温送至
实验室检验。室温放置或延迟送检，可使检出的阳性率降低，不能使用冷藏的标本检验。 4)厌氧菌样本采取必须隔绝空气，混入空气的样本影响检验结果，不能使用。 （二）微生物学检验标本采集和处理 1.尿液标本采集和处理 通常留取晨起第一次尿液（此时尿液在膀胱内储存4h以上）；尿液采集后要及时送检，并保证2h内接种；不能及时送检和接种时，尿液应置4～8度冰箱保存；冷藏标本应于8h内接种；淋球菌培养的标本不能冷藏！怀疑沙门氏菌感染时，应于发病2w左右采集尿液，怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后2w采集尿液，上述世间此时阳性率高。尿液微生物学检验标本采集方法如下： （1）中段尿采集法：是临床上最多采用的方法，女性病人先以肥皂水或1：1000高锰酸钾水溶液冲洗外阴及阴道口；男性病人应翻转包皮冲洗，用1：1000新洁尔灭消毒尿道口，用无菌纱布擦干，让病人排尿，弃去前段尿，收集中段尿10—20ml，盛于无菌容器内，立即加盖送检。 （2）导尿法：是一种无菌采集法，主要适用于手术后患者，取10-15毫升尿液于无菌容器内送检，但留置导尿管易造成医院内感染。 (3）集尿法：尿液检查结核分枝杆菌时，可用一洁净容器，留取24h的尿液，取其沉淀部分200-250毫升盛于清洁瓶内送检。 （4)耻骨上膀胱穿刺法：将病人耻骨上皮肤消毒后，以无菌针筒作膀胱穿刺。此法主要用于尿液中厌氧菌的培养，故在取得尿液后，针头插于橡皮塞上送检。当儿童或婴儿采集中段尿困难或培养结果与患者病情有矛盾时，可考虑用此法采集尿液。 （5）肾盂尿采集法：为确定菌尿是否来自肾脏，可用导尿管采集肾盂尿。首先充分冲洗膀胱，以最后一次冲洗尿作对照，后用导尿管插入输尿管，分别标记左右侧，收集3次尿；如果输尿管菌数比对照尿菌数多或第3次尿中菌数比第1次多，该菌尿可能来自肾脏。反之，如果第1次尿菌数多于第3次尿菌数，则可能来自膀胱。肾盂尿采集法一般应该请泌尿科医师协助进行，并确实做好标记，以防左右侧搞错。
微生物标本采集考核试题
微生物标本采集解读 微生物标本采集时机 ? ? ?? 尽早采集：使用抗生素前 ?? 抗生素停止用药 ??天后 ? 抗生素下次用药前 ?? 抗生素血药浓度较低时采集。 微生物标本运送时机： ??要关注温度和时间。 ?? 通常应在留取标本后 小时内送达检验科 ? 对一些温度敏感的细菌（脑膜炎奈瑟军、淋病奈瑟菌、流感嗜血杆菌等）应保温立即送检。 ?不必过于强调晨痰晨尿，更重要的是确保用药前采集和 小时内送检。 微生物标本保存 （ ） ??如在 小时内不能送检，应将标本 度保存且不超过 ?小时（血培养室温保存） ?深部标本如需厌氧菌培养时，应床边接种或置于厌氧菌专用培养基运送。 ?检体来自无菌区域者：宜放室温或温箱保存；并加入营养的培养基中； ?检体来自有菌区域者：宜放冰箱保存；不可加入营养的培养基中； 血培养的规范采集的采血指征是什么 ??怀疑患者有血流感染 ??不明原因的发烧?＞ ?℃?或体温过低?＜ ?℃? ?白细胞增多（ ＞ ??????◆●），粒细胞减少（ ＜ ????◆●） ??休克，寒颤，僵直 ??严重的局部感染?脑膜炎，心内膜炎，肺炎，肾盂肾炎，腹部术后感染，…? ??心率异常加快，低血压或高血压，呼吸频率加快。 血流感染时血培养采血时机 ??尽可能在寒战或开始发热时采血 ??在接受抗生素治疗前 ??抗生素停止用药 ??天后 ?采血如已经应用抗菌药物进行治疗，应在下一次用药之前采血培养。 ??坚决不能从静脉滴注侧取
血； 应该采几套血液标本? ??每位患者每次采血最少 套， 套更好 ??儿童类似于成人，应在 ?小时内采 － 次血培养 ?初发患者，绝不能只采 套标本 ??越多越好 血培养标本须间隔多久采集? ??急性败血症或骨髓炎、脑膜炎、肺炎等需同时或短时间内采集 套血培养，因为体内巨噬细胞吞噬系统会在 ?～ ????内清除掉进入人体内的细菌。 ?可疑急性感染性心内膜炎患者要立即取血作血培养， ???内完成 套血培养的采集，采集后立即进行抗菌药的经验治疗。如果 ?小时内报告阴性，则继续采集 套血培养。 ?不明原因发热，可疑的亚急性心内膜炎或菌血症、真菌血症患者每间隔 ?分钟至 ?采集 套，连续采集 套标本。如果 ?小时内报告阴性，则继续采集 套血培养。 微生物标本 如何留取痰液 （???）??咳痰：咳痰前，患者用无菌生理盐水漱口。用力咳出深部痰，勿将唾液和鼻后分泌物当作痰咳出。 ?诱导痰：患者咳痰困难，可先清洁口腔黏膜、舌头和牙龈，再用无菌水或生理盐水漱口后，用超声雾化器，患者吸入 ?????●??的???●，用无菌容器收集送检。 ?痰标本留少于 ?●， ?内送检， ℃保存≤ ??。 ?痰标本至少留 ?●， ?内送检， ℃保存≤ ??。 下列哪项是合格的痰标本，可以做痰培养： （ ） 细胞数 低倍视野 分类 白细胞 扁平上皮细胞?????????????????????????????????????????? ? ??? ???
微生物标本采集与送检
微生物标本的采集与送检 一、血液培养 1、血液培养的送检指征： ⑴症状指征：发热（≥38℃）、皮疹、肝脾肿大、关节疼痛、神志不清、昏迷或休克。 ⑵疾病指征：化脓性病灶或损害、粘膜损伤性疾病、肝脏疾病、糖尿病、血液疾病及恶性肿瘤、艾滋病、呼吸道感染或呼吸衰竭、长期输液或导管介入疾病、血液透析患者。 2、采集流程： ⑴培养瓶消毒程序：75%酒精擦拭橡皮塞，作用60秒后，用无菌棉签清除橡皮塞表面残余酒精； ⑵皮肤消毒程序：75%酒精擦拭静脉穿刺部位，从穿刺点向外花圈消毒，至消毒区域直径3cm以上，作用60秒，待酒精挥发干燥后采血； ⑵静脉穿刺和培养瓶接种程序：用注射器无菌穿刺取血（成人：5-10ml，婴幼儿1-2ml），直接注入血培养瓶后，轻轻颠倒混匀并立即送检。 3、注意事项： ⑴血培养采血最好不要和其他检验项目采血同时进行，否则应先采血培养标本； ⑵切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血； ⑶不宜从静脉导管或静脉留置口取血； ⑷建议在患者出现寒战、体温升高前采血。如患者有明显的发热前期症状，在患者寒战前或寒战后1h内采血可提高阳性率； ⑸应同时在不同部位或在不同时间段内采集2次以上标本，只采集一瓶的血培养标本是不允许的，因为一瓶血培养标本的培养结果很难解释是致病菌还是污染菌。 ⑹一般情况下（怀疑为持续性菌血症者除外），在采血后的2-5天内，无需重复采血培养标本。 二、脑脊液培养 1、脑脊液培养的送检指征： ⑴症状指征：发热等感染性全身性症状、颅内压升高症状、脑膜刺激症状等。 ⑵疾病指征：化脓性、非化脓性脑膜炎。 2、采集方法：
检查和细胞计数、 ⑵经脑室导管采集：无菌操作采集脑部脓肿或活检标本的抽吸物，立即送检。 3、注意事项：⑴如果只采集了一管脑脊液，应首先送到细菌室；⑵做脑脊液培养的同时，建议同时做血培养。 三、胸腹水培养 1、胸水培养的送检指征： ⑴症状指征：多伴有胸痛、发热、胸腔积液。 ⑵疾病指征:细菌性肺炎引起的胸膜炎、真菌感染引起的胸腔积液。 2、腹水培养的送检指征： ⑴症状指征：腹部有积液伴腹痛、呕吐、肌紧张、肠鸣音弱或消失等。 ⑵疾病指征:原发性、继发性腹膜炎。 3、胸腹水标本采集流程：无菌操作穿刺抽取标本5-10ml，直接注入血培养瓶后，立即送检。 四、痰培养 1、痰培养的送检指征：凡是发热、咳嗽、咳痰，痰呈脓性、粘稠或血性，并伴有胸痛、气急，肺部闻及湿啰音，外周血白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高，X线检查提示肺部有炎症性浸润或胸腔积液，甚至出现感染性休克和呼吸衰竭患者，应采集痰液或下呼吸道标本。 2、采集方法： ⑴自然咳痰法：留取前刷牙，用清水漱口3次后，用力咳出呼吸道深部的痰液至无菌痰杯中，把盖子盖紧后尽快送检；患者痰液较深不易咳出时，可捶背协助排痰，采集痰液不应少于1ml。 ⑵经支气管镜抽吸法：纤维支气管镜检查可直接从肺部感染病灶获取支气管分泌物，操作较为安全。 ⑶小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，用棉拭子伸入咽部，小儿因压舌刺激咳嗽时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上，从而取得标本。 ⑶雾化蒸汽吸入法：无痰或痰量极少时可用3%-5%的NACL溶液5ml先雾化吸入5分钟，进行导痰。 3、注意事项:⑴最好在清晨采集痰标本；⑵痰标本采集前应进行口腔清洁。