实验样品采集运输保存方法
1. RNA实验样品采集、保存方法
1.1 使用范围及样品量
类别：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Array& PCR Service
样本量：
样本样本量
动物组织样品50-100mg
哺乳动物培养细胞样品（悬浮细胞）1*107个
哺乳动物培养细胞样品（贴壁细胞）15cm2
植物组织样品100mg-1g，根据植物不同部位的组织决定组
织需要量，尽可能多些，但不必超过1g
1.2 动物组织样品
1.2.1 新鲜组织样品
A. 使用RNAlater试剂
取新鲜组织（注：动物死亡后尽快在10min内取材），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，所用组织必须切至厚度在0.5cm一下，然后放入装有5倍体积RNAlater的离心管（或冻存管）中。
4度孵育过夜，此时样品管需要横臵以便组织块充分接触到RNAlater，然后转入-20中保存，样品在-20不会冻结，但溶液中可能会有一些晶体出现，这并不影响后续的RNA抽提。
B. 使用Trizol试剂
取新鲜组织（1min以内），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，每50-100mg组织加入1ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品，最好冰上进行操作。
匀浆的裂解液4度短期保存（1month），-20或者-70度长期保存。
1.2.2 冻存组织
生物体死亡后尽快（10min以内）切取新鲜组织，并以PBS或生理盐水清洗干净切成小块；培养液倒入离心管中，离心沉淀细胞，弃去上清液。
细胞沉淀（1*107个）中加入1ml Trizol裂解液
反复吸打几次后，目视可见细胞层溶液完全
-70保存
1.3 贴壁细胞
从培养容器中吸出并弃去培养液
培养瓶直接加入Trizol试剂，Trizol用量与细胞贴壁面积有关，15cm2细胞贴壁面积加入1mlTrizol。
反复吸打几次后，目视可见细胞层溶解完全。
-70度保存。
1.4 植物组织样品
准确取得所需新鲜组织后，如有必要可用PBS清洗干净，将所用组织切碎，装入冻存管中或者用锡箔包裹好。
立即投入液氮中保存。
2.血液类样品采集、保存方法
2.1 适用范围及样品量
全血/血细胞：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Array& PCR Service
血清/血浆：Microarray Service；PCR Array& PCR Service
样本量
样本样本量
全血1-2ml （即每份样品2-4管）
血浆1-2ml （即每份样品2-4管）
血清1-2ml （即每份样品2-4管）
在样品保存及转移过程中，应避免反复冻融样品
一般建议用新鲜的血液标本进行试验，如果标本已经保存较长时间，请先联系技术部门确认样本是否适合进行实验。
2.2 全血
采集好全血，转移至单独的冻存管中，按照每400-500ul/管分装。
短期保存可以再-20度或者-70度冰箱；长期保存放入液氮。
2.3 血浆
使用抗凝管采集全血，并尽快进行血浆分离：1000g 离心10min，分离血浆和细胞组分（抗凝剂一定不能是肝素）
将采集好的血浆转移至单独的冻存管中，按照每400-500ul/管分装。
短期保存可以再-20度或者-70度冰箱；长期保存放入液氮。
2.4 血清
使用凝血管采集全血，采血后两小时内分离血清；
采血后轻轻倒转采血管混合4-5次，直立臵于室温待血液完全凝固，1000g离心10min，分离血清。
将采集好的血清转移至单独的冻存管，按照每400-500ul/管分装。
短期保存可以再-20度或者-70度冰箱；长期保存放入液氮。
2.5从全血中提取白细胞
2.5.1 抗凝血收集
取无菌的15ml离心管一只，首先用EDTA或者柠檬酸钠溶液充分吹打管壁，使离心管壁完全接触到该溶液，而后在管底留下少许该溶液（200ul左右）收集5ml全血后迅速用枪混匀或用手指拨动离心管底部混匀。防止部分血液凝固。
2.5.2 全血白细胞分离（以3ml抗凝血为例说明）
向一只15ml离心管中加入3ml抗凝血，而后加入9ml红细胞裂解液。盖紧管盖，温柔的颠倒混匀数下，不要剧烈震荡
将离心管臵于室温放臵10min
将离心管以2500g 离心5min
弃上清，尽可能将上清吸净，勿吸到管底白色斑块细胞
弃去上清后在管底出现可见的白色斑块，此斑块为富集的白细胞。如果裂解不完全加入1mlPBS缓冲液重悬，然后重复第一步
充分裂解后，加入1mlPBS缓冲液清洗一次2500g离心5min
弃上清，可获得血液样品中全部白细胞的80%以上，而后可加入适量的Trizol，用移液枪充分吹打，混匀，直至出现清亮不粘稠的液体。
而后可以将以上的Trizol试剂存在生物冰（0-4度）寄送，或者直接干冰寄送。
3.DNA实验样品采集、保存方法
3.1 适用范围及样品量
适用范围：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Service
样品量
样本样本量
细胞1*107个
组织50-100mg
3.2 悬浮细胞
约1*107个细胞，低速离心收集，弃去培养液；
加入2-5ml PBS悬浮细胞，转入小离心管中；
低速离心沉淀细胞，弃去PBS；
放入-70度冰箱保存。
对于ChIP-chip实验为了获得理想结果，建议根据下述方法处理及保存悬浮细胞样品取107个悬浮细胞低速离心，用10ml培养基将细胞沉淀重悬于50ml离心管中；
加入270ul 37%的甲醛，轻轻混匀，室温孵育10min；该步骤最好在通风橱完成
加入1ml 1.25M的甘氨酸，轻轻混匀，室温孵育5min，中和甲醛；
2000g离心5min，弃上清，用预冷的PBS/EDTA 洗细胞两遍
2000g 离心5min，弃上清；
收集到的样品-80度冻存。
3.3 贴壁细胞
约1*107个贴壁细胞，胰酶消化；
加入PBS悬浮细胞，低速离心收集，弃去液体；
加入2-5 ml PBS 悬浮细胞，转入小离心管中；
低速离心沉淀细胞，弃去PBS
放入-70度冰箱保存。
对于ChIP-chip实验为了获得理想结果，建议根据下述方法处理及保存贴壁细胞样品3.4组织
采集新鲜组织（生物体死亡后10min内取材并保存好）
组织块以PBS或生理盐水清洗干净，切为小块
放入液氮或-70度冰箱保存
4.蛋白实验样品采集、保存方法
4.1 适用范围及样品量
适用范围：Microarray Service Other Service
样本量：
样本样本量
血清和血浆100-200ul
细胞107个
组织50-100mg
4.2 血清和血浆
采集新鲜血液，分离血清或血浆，放入-20度或者-70度冰箱保存
4.3悬浮细胞
约1*107个细胞，低速离心收集，弃去培养液；
加入2-5ml PBS悬浮细胞，转入小离心管中；
低速离心沉淀细胞，弃去PBS；
放入-70度冰箱保存。
4.4 贴壁细胞
约1*107个贴壁细胞，胰酶消化；
加入PBS悬浮细胞，低速离心收集，弃去液体；
加入2-5 ml PBS 悬浮细胞，转入小离心管中；
低速离心沉淀细胞，弃去PBS
放入-70度冰箱保存。
4.5 组织
采集新鲜组织（生物体死亡后10min内取材并保存好）
组织块以PBS或生理盐水清洗干净，切为小块
放入液氮或-70度冰箱保存
5. 样品保存和运输
5.1 注意事项
将收集的各类样品用冻存管或离心管装好，保存在低温冰箱或者液氮中。
所使用的1.5ml冻存管或离心管、枪头等必须高温灭菌处理，装好样品后管口需要以封
口膜封好。
注意已保存的样品不要反复冻融。
5.2 干冰运输
根据干冰量准备大小适当的泡沫盒，在其中放入干冰（需要10公斤，至少为8公斤）和标本（用塑料袋或者塑胶手套装好），盒子内的空隙用旧报纸塞满，以防干冰挥发后有液体流出。
泡沫盒须选择较厚的，以免在运输过程中破碎导致样品丢失，分别用封箱带密封。最后在外面套上一个纸盒子，也要用胶带密封。
5.3冰袋运输
保存在RNAlater中的组织样本；
保存于Trizol中的细胞样本或经过匀浆的组织样本在短期（5 day）可使用冰袋运输。
5.4 液氮运输
冻存组织需要干冰或液氮运输。液氮无法快递，适合市内运输。
5.5 常温运输
本市内细胞样品也可以直接常温运送，运送时在培养瓶中装满培养液并以封口膜封口，然而某些实验条件中包含时间限制，建议冻存后运输。
5.6样品运输注意事项
打包好的样品交于快递公司，不提及干冰等字样
快递寄出，将快递单号告知销售，以便跟踪快递进程
务必在周日、周一、周二寄出快递，以免到达上海的时间是周末，公司无法查收。
实验样品采集运输保存方法
1.R N A实验样品采集、保存方法 使用范围及样品量 类别：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 样本量： 样本样本量 哺乳动物培养细胞样品（悬浮细胞）1*107个 哺乳动物培养细胞样品（贴壁细胞）15cm2 植物组织样品100mg-1g，根据植物不同部位的组织决定组 织需要量，尽可能多些，但不必超过1g 动物组织样品 新鲜组织样品 A. 使用RNAlater试剂 取新鲜组织（注：动物死亡后尽快在10min内取材），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，所用组织必须切至厚度在一下，然后放入装有5倍体积RNAlater的离心管（或冻存管）中。 4度孵育过夜，此时样品管需要横置以便组织块充分接触到RNAlater，然后转入-20中保存，样品在-20不会冻结，但溶液中可能会有一些晶体出现，这并不影响后续的RNA抽提。 B. 使用Trizol试剂 取新鲜组织（1min以内），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，每50-100mg组织加入1ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品，最好冰上进行操作。
匀浆的裂解液4度短期保存（1month），-20或者-70度长期保存。 冻存组织 生物体死亡后尽快（10min以内）切取新鲜组织，并以PBS或生理盐水清洗干净切成小块；培养液倒入离心管中，离心沉淀细胞，弃去上清液。 细胞沉淀（1*107个）中加入1ml Trizol裂解液 反复吸打几次后，目视可见细胞层溶液完全 -70保存 贴壁细胞 从培养容器中吸出并弃去培养液 培养瓶直接加入Trizol试剂，Trizol用量与细胞贴壁面积有关，15cm2细胞贴壁面积加入1mlTrizol。 反复吸打几次后，目视可见细胞层溶解完全。 -70度保存。 植物组织样品 准确取得所需新鲜组织后，如有必要可用PBS清洗干净，将所用组织切碎，装入冻存管中或者用锡箔包裹好。 立即投入液氮中保存。 2.血液类样品采集、保存方法 适用范围及样品量 全血/血细胞：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 血清/血浆：Microarray Service；PCR Array& PCR Service
生物样品储存方法概述-冷冻保存
https://www.360docs.net/doc/b87555813.html, 生物样品储存方法概述-冷冻保存 将需要冷冻的样品冷冻（freezing,放于-20?C或-80?C）得当能有效的保证样品质量！下面给大家安利几种常见样品的冷冻储存方式： DNA及缓冲液：对于基因组材料来说，收到轻微的机械剪切力不是什么大事情；对于不稳定的缓冲液，如含有DTT的缓冲液，可直接冷冻储存，无需调整。 蛋白：需要添加防冻剂用于蛋白的冷冻储存。蔗糖或甘油是防冻剂很好的选择，但对于不同的蛋白，蔗糖或甘油所占的百分比须有所不同。可选择20％的蔗糖或10％的甘油。限制性内切酶可以储存在50％甘油中以保持稳定性。由于较低的冷冻温度，这种甘油的浓度可防止溶液完全冻结！ 微生物（细菌，酵母和真菌）：10-20％甘油效果很好。更高的百分比（即更接近20％）使平板划线更加容易。 高等真核细胞：常见的的冷冻过程为（仅供参考）： 1. 配制含10% DMSO或甘油、10～20%小牛血清的冻存培养液； 2. 取对数生长期的细胞，用胰蛋白酶把单层生长的细胞消化下来，悬浮生长的细胞则直接将细胞移至15ml离心管中；
3. 离心1000rpm，5min； 4. 去除胰蛋白酶及旧的培养液，加入适量配制好的冻存培养液，用吸管轻轻吹打使细胞均匀，计数，调节冻存液中细胞的最终密度为5×106/ml～1×107/ml； 5. 将细胞分装入冻存管中，每管1～1.5 ml； 6. 在冻存管上标明细胞的名称，冻存时间及操作者； 7. 冻存：标准的冻存程序为降温速率-1～-2℃/ min；当温度达-25℃以下时，可增至-5℃～-10℃/min；到-100℃时，则可迅速浸入液氮中。也可将装有细胞的冻存管放入-20℃冰箱2h ，然后放入-70℃冰箱中过夜，取出冻存管，移入液氮容器内。 8．从增殖期到形成致密的单层细胞以前的培养细胞都可以用于冻存，但最好为对数生长期细胞。在冻存前一天最好换一次培养液； 9．将冻存管放入液氮容器或从中取出时，要做好防护工作，以免冻伤； 10．冻存和复苏最好用新配制的培养液。 另外，反复冻融对样品损害很大，因此将样品分装成小规格保存是不错的选择。为了最大限度减少样品浪费，分装之前需要知道样品的浓度、后续实验每次的用量，以便分装成适当的体积。小贴士：对于分装成微小的体积，PCR条管是不错的选择。 此外，一些大分子在储存之前快速冷冻（flash-freezing）,能更好的保持功能。如何进行快速冷冻：穿上实验室外套，戴上护目镜、手套，将样品放入含有少量液氮的杜瓦瓶（dewar）中，有泡沫和烟雾产生（此操作需要在通风环境中进行）。一旦停止产生泡沫，迅速将样品取出，存储在-20?C或-80?C。 https://www.360docs.net/doc/b87555813.html,
水质采样-样品的保存和管理技术规定
中华人民共和国国家环境保护标准 HJ 493—2009 代替GB 12999—91 水质采样样品的保存和管理技术规定 Water quality sampling — technical regulation of the preservation and handling of samples (发布稿) 2009-09-27 发布；2009-11-01 实施 前言 为了贯彻《中华人民共和国环境保护法》和《中华人民共和国水污染防治法》,保护环境,保障人体健康,规范水质样品的保存和管理,制定本标准. 本标准规定了水样从容器的准备到添加保护剂等各环节的保存措施以及样品的标签设计,运输, 接收和保证样品保存质量的条款. 本标准对《水质采样样品的保存和管理技术规定》(GB 12999-91)进行了修订,原标准起草单位:中国环境监测总站,首次发布于:1991 年,本次是第一次修订. 主要修订内容: ——增加单项样品的最少采样量及量化部分保存剂的加入量. ——增加分析项目的容器洗涤方法.删除"分析地点"和"建议"合并为"备注" . ——增加待测项目,其中理化和化学指标33 项,如高锰酸盐指数,凯氏氮,总氮,甲醛,挥发性有机物,农药类,除草剂类,邻苯二甲酸酯类等:增加生物指标 4 项:增加放射学指标10 项. 自本标准实施之日起,原国家环境保护局1991 年 1 月25 日批准,发布的国家环境保护标准《水质采样样品的保存和管理技术规定》(GB 12999-91)废止. 本标准由环境保护部科技标准司组织制订. 本标准主要起草单位:中国环境监测总站,辽宁省环境监测中心站. 本标准环境保护部2009年9月27日批准. 本标准自2009年11月1日起实施. 本标准由环境保护部解释. I 水质采样 1 适用范围 样品的保存和管理技术规定
(整理)样品保存方法
精品文档 分析项目 固定剂名称 采样器皿 保存方法 保存时间 钙 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 铬 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 铅烟 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 铅尘 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 锰 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 钼 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 镍 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 钾 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 钠 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 锌 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 一氧化氮 吸收液 空气采样器，多孔玻板吸收管 封闭吸收管进出气口，置于清洁容器中 当天测定 二氧化氮 吸收液 空气采样器，多孔玻板吸收管 封闭吸收管进出气口，置于清洁容器中 当天测定 氨 吸收液 空气采样器，大型气泡吸收管 封闭吸收管进出气口，置于清洁容器中 当天测定 氰化氢 吸收液 空气采样器，小型气泡吸收管 封闭吸收管进出气口，置于清洁容器中 当天测定 氰化物 微孔滤膜 空气采样器 滤膜置于具塞刻度试管 室温下至少7天 磷酸 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可保存3天 二氧化硫 吸收液 空气采样器，多孔玻板吸收管 封闭吸收管进出气口，置于清洁容器中 室温下可保存15天 三氧化硫 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于具塞比色管 室温下可保存3天 硫酸 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于具塞比色管 室温下可保存3天 硫化氢 吸收液 空气采样器，多孔玻板吸收管 封闭吸收管进出气口，置于清洁容器中 至少可保存5天 氟化氢 微孔滤膜 空气采样器，多 封闭吸收管进出气 室温下可保存7天
环境监测样品采集与保存的质量控制
环境监测样品采集与保存的质量控制 发表时间：2018-03-21T15:12:45.437Z 来源：《防护工程》2017年第32期作者：张小英 [导读] 加强取样和保存的各个环节的质量控制，对我国大环境的污染治理和预防提供有力支持，改善水环境和对水环境保护有重要的意义。 深圳市环境监测中心站 摘要：水质样品取样和保存是个重要的过程，也是影响监测结果相对薄弱的环节。因此，对这个过程中的各个环节，如采样器材、采样操作规范、样品保存剂的添加、样品的保存、运输和交接等几个方面进行分析，根据多年的工作实践提出质量控制建议，供借鉴。 关键词：样品采集；保存；质量控制 前言 监测数据是体现水质结果的最终状态，为使监测数据能够准确反映水环境质量现状，要求监测数据要具有准确性、精密性、可比性和完整性。而水质环境监测工作中各个环境均会影响到监测结果，因此，对整个监测过程采取全程序质量控制措施，确保水质监测结果的准确性。当前水质环境监测质量保证工作比较注重实验室内部的质量控制，对于样品采集和保存过程尚不能严格控制，也是我们当前工作的薄弱部分。 一、水质样品采集和保存过程误差来源及质量控制 （一）采样器材的选择 采样器材主要有采样器和水样容器。采样器一般有聚乙烯塑料桶、单层采水瓶、直立式采水器和自动采样器。一般水质监测项目常用采样器为聚乙烯塑料桶，但特殊项目需用相应的采样器。例如油类采样需用直立式采水器，若采用聚乙烯塑料桶采样，则采集到的水样为表层样品，不符合在水面下300 mm采集柱状水样的要求，导致的误差将会使油类项目的分析数据失去意义。 水样容器主要有硬质玻璃瓶和聚乙烯瓶（桶）。一般的玻璃容器吸附金属，聚乙烯等塑料吸附有机物质、磷酸盐和油类，因此水质采样时，通常分析有机物的样品使用硬质玻璃瓶，分析无机物的样品使用聚乙烯塑料瓶（桶）。也有个别项目有特殊要求，如测定氟化物的水样不能用玻璃瓶盛装；用于测定农药或除草剂等项目的水样，一般使用棕色玻璃瓶盛装；测定BOD5和COD的水样，如果浓度较低，最好用玻璃瓶盛装。如果水样盛装容器对水样中待测项目有吸附或者容器解吸出待测物质，则会导致水样分析结果偏高或偏低。 选择好正确的采样器和水样容器后，在进行水质采样前，均要对采样器和水样容器进行清洗。如果使用新容器，则更应进行充分的清洗。盛装有机物、耗氧量和细菌类等样品的容器一般用洗涤剂洗1次，自来水洗3次，然后用蒸馏水冲洗1次；盛装金属类样品的容器用洗涤剂洗1次，自来水洗2次，HNO3荡洗1次，自来水洗3次，去离子水冲洗1次；盛装阴离子表面活性剂和磷酸盐样品的容器则需用铬酸洗液清洗1次，自来水洗3次，蒸馏水洗1次即可。测定农药或除草剂等项目的样品瓶按_般规则清洗后，在烘箱内180℃下烘干4 h，冷却后再用纯化过的己烷或石油醚冲洗数次。如果采集污水样品可省去用蒸馏水、去离子水清洗的步骤。采样器和水样容器清洗不干净或者采用错误的清洗方式，也会给样品分析结果带来误差，只有按规定的清洗方式将容器清洗干净，才能将这一环节的误差降到最低。 （二）采样操作规范 在地表水质监测中通常采集瞬时水样，采样量要考虑重复分析和质量控制的需要，并留有余地。采样时要保证采样点位的准确性，必要时用定位仪定位。采样时不可搅动水底的沉积物。测定溶解氧、生化需氧量和有机污染物等项目时，水样必须注满容器，上部不留空间，并有水封口。测定油类、BOD5、DO、硫化物、余氯、粪大肠菌群、悬浮物、放射性等项目时要单独采样。一般容器在采样前均需用水样进行荡洗，但测定油类的水样，应在水面下300 mm采集柱状水样，且样品不能用采集的水样冲洗。如果水样中含沉降性固体，则应分离除去。 水样采集好后，要将标签贴在水样容器上，标签内容包括采样时间、采样点位、监测项目、采样人员等。需要现场监测的项目要按规范进行现场监测，并填写水质采样记录表和现场监测表，字迹端正、清晰，内容完整。采样结束前，应仔细核对采样计划、记录与水样，如有错误或遗漏，立即补采或重采。 需要现场监测的项目一定要在现场完成，并且完成记录的规范填写。pH值、溶解氧、电导率等现场测试项目需要对监测仪器进行校准后方能使用，测试方法严格按照国家标准进行。 （三）样品保存剂的添加 引起水样水质变化的原因有生物作用、化学作用和物理作用。水样采集后，要尽快送到实验室分析，样品存放过程中某些组分的浓度可能会发生变化，这就要求加入保存剂来减小组分浓度的变化。测定金属离子的水样常通过加酸来控制溶液pH值，既可以防止重金属的水解沉淀，又可以防止金属在器壁表面上的吸附，同时还能抑制生物的活动。为了抑制生物作用，可在样品中加入抑制剂，如在测氨氮的水样中加氯化汞以抑制生物对铵盐的氧化还原作用。加入硝酸一重铬酸钾溶液可使汞维持在高氧化态，使其稳定性大为改善。测定硫化物的水样，加入抗坏血酸对保存有利。一般保存剂的添加需要在样品采集自然沉降30 min后进行，否则可能影响水样分析结果。张艳研究指出，测定总磷的水样使用不沉降一加酸方式测得的总磷浓度为标准规定方法的1.22～2.21倍，平均1.60倍；不沉降一不加酸测得的总磷浓度为标准规定方法的1.12～1.83倍，平均1.41倍；沉降一不加酸测得的总磷浓度为标准规定方法的0.93～1.00倍，平均0.96倍。由此可见，保存剂添加与否、添加方式都将影响监测数据的质量。 （四）样品的运输 样品的运输也是水质监测的重要步骤，如果样品在运输过程中受到污染或者受损，之前和之后的工作都会受到影响。水样运输前应将容器的盖子盖紧，装箱时应用泡沫塑料、报纸等材料分隔，以防运输途中破损。运输途中应有专门人员管理样品，并填写水样质量保证卡。水样运回实验室后，及时交给样品接收人员，完成相应的交接手续。 （五）样品的保存 待测组分不同的样品要根据各自性质来决定保存条件及时间。有机污染物、悬浮物、酸碱度、阴离子组分等样品一般需要进行低温（0～4℃）避光保存，其余样品在室温条件下保存即可。金属类样品一般可以保存14 d，有机污染物、氨氦等其他组分一般最多保存24 h。（六）样品交接 样品在进入实验室前最后一个环节是进行样品的交接。分析人员领取样品时要查看样品是否破损，样品数量是否正确，保存条件和时
《样品采集、保存和管理作业指导书》
样品采集和保存 一样品采集和保存 ①氨氮:水样采集在聚乙烯瓶或玻璃瓶内，要尽快分析。如需保存，每升样品中应加1ml 浓硫酸，并在4下贮存，用酸保存的样品，测定时用氢氧化钠将PH值调至7左右。 ②溶解氧：样品应采集在细口瓶中，测定就在瓶内进行。试样充满全部细口瓶。不得有气 泡。 ③化学需氧量：水样采集于玻璃瓶中，应尽快分析。如不能立即分析时，应加入硫酸至PH ＜2，置4℃保存，时间不能多余5天。采集水样的体积不得少于100ml。 ④悬浮物：所用聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶要用洗涤剂洗净。在采样之前，再用即将采集的水 样清洗三次。然后采集水样500—1000ml，盖严瓶塞。 ⑤总磷：采集500ml水样后加入1ml硫酸调节样品的PH值，使之低于或等于1，或不加 任何试剂于冷处保存。 ⑥PH值：最好现场测定。否则应在采样后把样品保持在0—4℃，并在采样后6小时内进 行测定。 ⑦水温：最好现场测定。否则，应在采样后把样品保持在0~4，并在采样后6h之内进行测 定 ⑧氯化物：采集代表性水样，放在干净且化学性质稳定的玻璃瓶或聚乙烯瓶内。保存时不 必加入特别的防腐剂 ⑨色度：所用于样品接触的玻璃器皿都要用盐酸或表面活性剂溶液加以清洗，最后用蒸馏 水或去离子水洗净、沥干。样品采集在容积至少为1L的玻璃瓶内，在采样后尽快进行测定。 ⑩总氮：将采集好的样品储存在聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶中，用浓硫酸调节PH值至1～2，常温下可保存7天。储存在聚乙烯瓶中，-20℃冷冻，可保存一个月。 ⑾五日生化需氧量：采集的样品应充满并密封于棕色玻璃瓶中，样品量不小于1000ml，在0～4℃的暗处运输和保存，并与24小时内尽快分析。24小时不能分析可冷冻保存。 ⑿粪大肠菌群：采样瓶使用500ml已灭菌的磨口玻璃塞广口瓶，采集水样时应避免瓶盖及瓶子颈部受杂菌污染。灭菌后的采样瓶2周内未使用需重新灭菌 采集好的水样需放置约4℃冷藏设备内保存运输，一般要求在采集4小时内测定。
血液样本的采集与保存
实用帖血液样本的采集与保存 在脊椎动物中，外周血一直被认为是侵害性较小、富有价值的检测样本。在许多生物样 本库中，由于血液样本的常规收集、处理及保存方法简便、成本低且富含可利用成分和生物分子，因此是进行多种项目分析的理想实验材料。然鹅，科研僧们历经千辛万苦最后发现获 得的血液样本RNA降解了。。。。额，这就很惆怅了。 所以呢，在样本采集、处理及储存过程中必须格外注意，从根本上确保获得高质量的 RNA 今天小编和大家一起来聊一聊在进行RNA实验时血液样本如何进行收集与保存。 血液的组成 首先来熟悉一下血液的组成。 人类的血液由血浆和血细胞组成。其中血浆约占血液的55%是水，糖，脂肪，蛋白质, 钾盐和钙盐等的混合物。血细胞约占血液的45%主要分为红细胞、白细胞和血小板。而哺 乳动物成熟的红细胞和血小板是无核的。
11^ 血浆和血清 血浆是离开血管的全血经抗凝处理后，通过离心沉淀，所获得的不含细胞成分的液体, 其中含有纤维蛋白原，不含游离的 Ca 2+ ，若向血浆中加入 ，血浆会发生再凝固。 血清是离体的血液凝固之后， 经血凝块聚缩释出的液体， 其中已无纤维蛋白原, 游离的Ca 2+ ，血清中少了很多的凝血因子但多了很多的凝血产物。 不加卿赛 mm BW. 血囲 其他有形咸分 但含有 血浆 有形成分
采血管的选择 采血管，大家都不陌生，去医院抽个血，一定会用到采血管，那么问题来鸟，这么多颜 色的采血管，有什么区别呢？下面小编来给大家介绍一下采血管的分类及不同颜色试管帽代 表的含义。 1. 蓝色头盖管（含有柠檬酸钠抗凝剂的采血管） 2. 黑色头盖管（含有0.109mol/L 柠檬酸钠） 3. 紫色头盖管（含有乙二胺四乙酸以及其盐的采血管 ） 4. 绿色头盖管（肝素抗凝管） 5. 灰色头盖管（含有草酸钾/氟化钠） 6. 橘红色头盖管（促凝管） 7. 金黄色头盖管（含有惰性分离胶及促凝剂的采血管） 8.红色头盖管（无添加剂的干燥真空管） f l m ■ M M ■ ■ 机 ■ 忡-M M
临床样本保存及处理方式
临床常见的标本有血清（浆）、全血、分泌物、棉拭子、脓液、体液、新鲜组织、石蜡切片等，这些临床标本的处理和保存方法各有不同。 临床标本的处理 血清（浆）标本 一些病原体，如乙肝病毒（HBV）、丙肝病毒（HCV）、人类免疫缺陷病毒（HIV）等的PCR检测常采用血清或血浆标本。 HBV： 标本通常由医护人员采集，应注意避免溶血，如为血浆标本注意抗凝剂的选择，一般用EDTA-Na2或枸橼酸纳，不可使用肝素。标本为全血时，及时分离出血浆，提取病毒DNA进行检测。 HCV： 检测RNA病毒。由于RNA极易降解，标本的制备和保存方式往往可以影响测定结果。若用血浆标本，应使用EDTA抗凝。严禁使用肝素，因其对PCR扩增有抑制作用,且无法在核酸提取过程中去除。抗凝后6小时内分离血浆。如用血清标本，则应尽快（2小时内）分离血清进行检测，或-20oC保存。 全血标本 通常用来提取外周血单个核细胞核酸： 如基因组DN A、线粒体DN A、总RNA等。 抗凝剂： 一般使用EDTA-Na 2、枸橼酸xx，不使用肝素。
1）加适量的红细胞裂解液（破膜液），裂解全血中的红细胞。 2）再加适量的细胞核裂液（破核液），裂解白细胞中的细胞核，使核内DNA释放出来。 3）然后再加SDS（十二烷基硫酸钠）等去污剂，溶解脂蛋白，解聚核蛋白。 SDS可与蛋白质结成复合物，使蛋白质变性沉淀，但SDS在以后的核酸提取过程中必须除去。 痰标本 痰属于分泌物，临床上常用作结核杆菌DNA测定样本，由于痰标本中含大量粘蛋白和杂质，故在核酸提取时，一定要对标本进行前处理，即用4%NaOH 液化，去除粘蛋白，然后用煮沸或蛋白酶、酚/氯仿等经典法提取DNA。 具体方法： 用无菌平皿取患者肺深部咳出的痰液1-3ml，↓加入4倍体积4%NaOH，摇匀，室温下放置30分钟左右液化↓取 1.5ml EP管，加 0.5ml液化痰液，再加 0.5ml 4%NaOH室温放10分钟↓ 12000 rpm，离心15分钟↓弃上清，加无菌生理盐水1 ml，混匀，12000rpm离心5分钟↓弃上清，沉淀物用于DNA提取 棉拭子 用PCR方法检测性病病原体时（衣原体、支原体、淋球菌、梅毒螺旋体、人乳头状瘤病毒等），临床标本一般为棉拭子。标本取材是关键，衣原体等病原体感染上皮细胞，因此取材一定要取到细胞。
实验样品采集运输保存方法修订版
实验样品采集运输保存 方法修订版 IBMT standardization office【IBMT5AB-IBMT08-IBMT2C-ZZT18】
1. RNA实验样品采集、保存方法 1.1 使用范围及样品量 类别：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 样本量： 样本样本量 1*107个 哺乳动物培养细胞样品（悬浮细 胞） 15cm2 哺乳动物培养细胞样品（贴壁细 胞） 植物组织样品100mg-1g，根据植物不同部位的组织 决定组织需要量，尽可能多些，但不必超过 1g 1.2 动物组织样品 1.2.1 新鲜组织样品
A. 使用RNAlater试剂 取新鲜组织（注：动物死亡后尽快在10min内取材），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，所用组织必须切至厚度在0.5cm一下，然后放入装有5倍体积RNAlater的离心管（或冻存管）中。 4度孵育过夜，此时样品管需要横置以便组织块充分接触到RNAlater，然后转入-20中保存，样品在-20不会冻结，但溶液中可能会有一些晶体出现，这并不影响后续的RNA 抽提。 B. 使用Trizol试剂 取新鲜组织（1min以内），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，每50-100mg组织加入1ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品，最好冰上进行操作。 匀浆的裂解液4度短期保存（1month），-20或者-70度长期保存。 1.2.2 冻存组织 生物体死亡后尽快（10min以内）切取新鲜组织，并以PBS或生理盐水清洗干净切成小块；培养液倒入离心管中，离心沉淀细胞，弃去上清液。 细胞沉淀（1*107个）中加入1ml Trizol裂解液 反复吸打几次后，目视可见细胞层溶液完全 -70保存 1.3 贴壁细胞
水质采样及样品保存资料
水质采样及样品保存
水质采样作业指导 容器清洗 Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ表示四种洗涤方法。如下： Ⅰ：洗涤剂洗一次，自来水洗三次，蒸馏水洗一次。对于采集微生物和生物的采样容器，须经160℃干热灭菌2 h。经灭菌的微生物和生物采样容器必须在两周内使用，否则应重新灭菌。经121℃高压蒸汽灭菌15 min的采样容器，如不立即使用，应于60℃将瓶内冷凝水烘干，两周内使用。细菌检测项目采样时不能用水样冲洗采样容器，不能采混合水样，应单独采样2 h后送实验室分析。Ⅱ：洗涤剂洗一次，自来水洗二次，（1+3）HNO3荡洗一次，自来水洗三次，蒸馏水洗一次。 Ⅲ：洗涤剂洗一次，自来水洗二次，（1+3）HNO3荡洗一次，自来水洗三次，去离子水洗一次。 Ⅳ：铬酸洗液洗一次，自来水洗三次，蒸馏水洗一次。如果采集污水样品可省去用蒸馏水、去离子水清洗的步骤。 水质采样 水质 pH 采集容器：聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存：最好现场测定。最少采集250mL，0～4℃冷藏，可保存6h。 水质色度、浊度、电导率 采集容器：聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存：最少采集250mL，可保存12h。尽量现场测定。
水质悬浮物（SS） 采集容器：聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存：最少采集500mL，4℃暗处冷藏，最长不得超过7d。 注：漂浮或浸没的不均匀固体物质不属于悬浮物质，应从水中除去。不能加入任何保护剂，以防破坏物质在固、液间的分配平衡。 水质酸度、碱度 采集容器：聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存：最少采集500mL，1～5℃暗处冷藏，酸度样品可保存30d，碱度样品可保存12h。 水质化学需氧量（COD Cr） 采集容器：硬质玻璃瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存：最少采集500mL，用H2SO4酸化，pH≤2。可保存2d。聚乙烯瓶-20℃冷冻可保存1个月，最长六个月。 水质高锰酸盐指数（COD Mn） 采集容器：硬质玻璃瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存：最少采集500mL，1～5℃暗处冷藏，可保存2d。聚乙烯瓶-20℃冷冻可保存1个月。尽快分析。 水质五日生化需氧量（BOD5） 采集容器：溶解氧瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存：最少采集250mL， 1～5℃暗处冷藏，可保存12h。聚乙烯瓶-20℃冷冻可保存1个月。 水质溶解氧
样品管理控制办法
样品管理规范 1.目的 确保样品/样件接收、提取、登记、评审和保存等活动得到有效控制。2.范围 2.1顾客提供给本公司的产品样品/样件和从市场得到的样品/样件。 2.2供应商为按本公司和顾客要求而提供的外协件、外购件、材料样品。 2.3本公司按照顾客设计规范而生产、装配的用于生产件批准提交的样品，以及 生产、装配作业中生产、装配和检验的比对的极限和不良样品。 3.术语 3.1极限样品：外观品质，无法以书面订定规格或容许与既定之标准有某些程度 公差之样品实物称之为限度样品； 3.2 标准样品: 客户提供的标准样品或者项目部和质量部签发的合格样品； 3.3 不良样品: 缺陷样品，具有一个或一个以上明显缺陷的产品。 4.职责 4.1质量部负责按照顾客提供有关设计/检验规范对供应商提供给本公司的样品 /样件和从市场得到的样品/样件进行检测并组织确认。 4.2质量部负责从本公司进货、生产、装配等阶段提取作生产、装配及检验之用 的比对样品。 4.3质量部是样品管理的归口部门，质量工程师负责所属项目样品建档，签发及
管理；
检验员负责所属样品的建档、使用、清洁和保管。 4.4项目部负责对顾客样品和本公司标准样品进行签发，并负责从本公司进货、 生产/装配中，提取本公司生产的样品作为向顾客提交的标准样品。 4.5 项目部负责新产品各相关工序的标准样品、极限样品、缺陷样品的封样。 4.6国内采购物流部及国际销售物流部负责与顾客联系样品、样件。 4.7国内采购物流部及国际销售物流部负责与供应商联系样品、样件。 5.工作程序 5.1顾客样品控制 5.1.1项目部负责对顾客签发的样品进行接收移交质量部管理并妥善保存，质量 部将样品资料登记于“样品一览表”并放置在样品柜。 5.1.2项目部负责对需确认的顾客样品进行审查，审查的内容如下: a)样品是否有缺陷或不明确之处； b)与图纸规范要求是否一致； c)本公司是否具备相应的生产能力等。 5.1.3审查后,若有问题应及时反馈国际销售物流部，由其与顾客及时联系直至解 决，并依照顾客图纸、样品及其它技术文件资料拟订相应的技术规范和 工艺标准。 5.2供应商样品控制 5.2.1供应商按照本公司提供的图纸、样品等技术资料而生产制造样品。若是小 批量试样，则该样品必须是取自供应商的正常生产过程中的代表性产品。
《地表水环境质量标准》109项采样及样品保存建议方案
. .. .. 《地表水环境质量标准》109项采样及样品保存建议方案 完成一次109项指标采样，共需13类保存剂，25个不同类型的采样瓶。保存剂和采样器的种类及数量如下： 1、常规和重金属采样需要的保存剂有：HCl、HNO3、H2SO4、NaOH、硫酸亚铁+磷酸+硫酸铜、氢氧化钠+抗坏血酸+EDTA+饱和醋酸钠；有机类采样需要的保存剂有：硫代硫酸钠或抗坏血酸、浓硫酸、1g/L硫酸铜、1% NaOH、HCl溶液、NaOH溶液、丙酮（农残纯）。出发前应根据分析指标，带足相应的保存剂，检查确认无误。 2、109项采样共需采样样品瓶25个。其中，常规和重金属采样需要的采样瓶种类及个数为：250mL硬质玻璃瓶2个、1000mL 硬质玻璃瓶2个、500mL灭菌磨口玻塞棕色广口瓶1个、1000mL 棕色玻璃瓶1个、500mL聚乙烯瓶8个；有机类采样需要的采样瓶种类及个数为：40mLVOC采样瓶1个、5L棕色磨口玻璃瓶3个、5L磨口玻璃瓶1个、250mL棕色磨口玻璃瓶3个、1000 mL磨口玻璃瓶1个、250mL具塞玻璃瓶或具聚四氟乙烯衬垫螺旋瓶盖的玻璃瓶1个、10L塑料桶1个。应对照附表，逐项清点样品瓶数量，汇总后，检查确认无误。 3、对照表使用说明：（1）若109项做全分析，按上述1、2点要求备足所有保存剂和采样瓶；（2）若只监测部分项目，应先找到对应项目，再按其后的要求做相应准备，分类记载、汇总，交由该次任务负责人复核。 . ... .c
附表： 地表水109项样品采集及保存准备表 . ... .c
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水环境样品的采集和保存
第2章水环境样品的采集和保存 2.1 水质采样方案设计 2.1.1 地表水 水质监测点位的布设关系到监测数据是否有代表性，是能否真实地反映水环境质量现状及污染发展趋势的关键问题。 1．地表水监测断面的设置原则 断面在总体和宏观上应能反映水系或区域的水环境质量状况；各断面的具体位置应能反映所在区域环境的污染特征；尽可能以最少的断面获取有足够代表性的环境信息；应考虑实际采样时的可行性和方便性。 根据上述总体原则，对水系可设背景断面、控制断面（若干）和入海断面。对行政区域可设背景断面（对水系源头）或入境断面（对过境河流）、控制断面（若干）和入海河口断面或出境断面。在各控制断面下游，如果河段有足够长度(至少10km)，还应设削减断面。 (1)监测断面的分类。 1)采样断面：指在河流采样中，实施水样采集的整个剖面。分背景断面、对照断面、控制断面、削减断面和管理断面等。 2)背景断面：指为评价某一完整水系的污染程度，未受入类生活和生产活动影响，提供水环境背景值的断面。 3)对照断面：指具体判断某一区域水环境污染程度时，位于该区域所有污染源上游处，提供这一水系区域本底值的断面。 4)控制断面：指为了解水环境受污染程度及其变化情况的断面。即受纳某城市或区域的全部工业和生活污水后的断面。 5)削减断面：指工业废水或生活污水在水体内流经一定距离而达到最大程度混合，污染物被稀释、降解，其主要污染物浓度有明显降低的断面。 6)管理断面：指为特定的环境管理需要而设置的断面。 (2)设置原则。环境管理除需要上述断面外，还有许多特殊需要，如了解饮用水源地、水源丰富区、主要风景游览区、自然保护区，与水质有关的地方病发病区，严重水土流失区及地球化学异常区等水质的断面。
样品的采集和处理
第一章样品的采集和处理 1范围 本章规定了用于人免疫缺陷病毒（HIV ）检测的全血、血清、血浆、细胞、唾液、尿液以及滤纸干血 斑（DBS ）样品的采集和处理方法，适用于 HIV 抗体检测、抗原检测、核酸检测、耐药检测 ，CD4+ 和CD8+T 淋巴细胞测定和HIV 分离培养。 2规范性引用文件 《艾滋病和艾滋病病毒感染诊断标准》中华人民共和国卫生行业标准 WS 293-2008 《艾滋病病毒感染者及艾滋病患者 CD4+T 淋巴细胞检测质量保证指南（试行）》（中国疾病预防控 制中心，2006年2月） 《HIV-1病毒载量测定及质量保证指南（试行）》（中国疾病预防控制中心， 2008年2月） Guideli nes for Usi ng HIV Test ing Tech no logies in Surveilla nee WHO/CDS/CSR/EDC/2008 《可感染人类的高致病性病原微生物菌（毒）种或样本运输管理规定》，卫生部第 45号令2006年 2月1日 3样品种类及相应的用途 3.1全血、血清、血浆、唾液、尿液以及 DBS 样品可用于HIV 抗体检测 3.5 PBMC 、全血、淋巴细胞富集液等可用于 HIV-1分离培养。 4操作步骤 4.1采样前准备 根据检测项目的具体要求，确定采集样品的种类、处理、保存及运输的时限和方法，按照临床采血技 术规范的要求操作，遵守生物安全要求（参见本规范第八章实验室生物安全）。 要检查所需物品是否已备齐，是否在有效期内，有无破损，是否足量，特别应检查受检者信息与样品 容器表面的标记是否一致，并注明样品采集时间。选择合适的室内（外）采血空间，受检者坐（卧） 于合适的位置，准备采血用具、皮肤消毒用品、采血管及试管架、硬质废弃物容器等。 4.1.1样品的编码和记录 4.1.2应制定样品编码的标准操作程序（SOP ），规定样品编码的原则和方法，为样品制定唯一性编 码（编号），保证其唯一性。 4.1.3采血前，先对装有样品的离心管或滤纸进行标记，核对后编码。要将标签贴在试管的侧面，最 好使用预先印制好的、专门用于冷冻储存的耐低温标签。 4.1.4应使用专门的样品记录本或登记表记录样品，同时录入电脑保存。 4.2采集和处理样品 4.2.1血液 4.2.1.1抗凝全血：消毒局部皮肤，用加有抗凝剂（ EDTA 钠盐或钾盐、枸橼酸钠、肝素钠）的真空 采血管抽取适量静脉血，或用一次性注射器抽取静脉血，转移至加有抗凝剂的试管中，轻轻颠倒混匀 6 ~ 8次，备用。 421.2末梢全血：消毒局部皮肤（成人和 1岁以上儿童可选择耳垂、中指、无名指或食指。 1岁以 3.2抗凝全血可用于CD4+和CD8+T 淋巴细胞测定 3.3血浆可用于HIV-1病毒载量、基因型及耐药检测＜ 3.4全血、血浆、淋巴细胞富集液、外周血淋巴细胞 （ 检测。 DBS 样品可用于HIV-1基因型及耐药检测。 PBMC ）及DBS 样品可用于HIV 核酸的定性
样本采集与处理
样本采集 样本采集要注意的重点就是,所采集的临床标本一定要正确与采集的时间合适,并注意采用正确的标本容器,采集的方法程序对有些临床标本非常重要。在疾病发展过程中,标本采集过早或过晚都可能会给出假阴性结果。 尽可能在最短的时间内完成样本的采集(应该保证30min内完成,不适当的处理时间将直 接影响与干扰研究的结果),应尽快降低所采集组织样本的温度。 肿瘤组织标本的采集与处理应遵循严格的生物安全处理规范,也可根据研究者所提出的 特殊要求,按照对方提供的操作模式进行相关处理。 (1)患者入院后进行生物安全性检查。检测HIV以及嗜肝病毒HBV及HCV感染情况。HIV 感染患者不列为采集对象。HBV及HCV感染者,须在样本上明确注明。 (3)组织标本取材时间肿瘤外科手术后,标本离体30min内。 (4)标本采集 每种肿瘤主要采集 3 类生物样本,并要保证这些样本的质量与数量能够用于DNA、RNA 与蛋白质提取及满足相关的实验分析。 1)新鲜组织(包括手术与活检组织) 实体组织样本采集包括外科手术切除的或活检与尸检得到的正常、良性与恶性肿瘤 组织。手术结束后,在临床肿瘤病理专家的指导下,在不影响病理诊断取材需要的前 提下,采集组织样本。 A。标本取材部位:肿瘤组织、癌旁组织(癌组织旁1cm)与正常组织(癌组织旁5cm以外或最远处)。 a) 临床诊断明确,未经放疗与化疗的手术切除标本,在病理医生指导下取材。 b) 尽量保证癌组织没有坏死(有坏死的标本很难提取高质量的RNA 与蛋白)。 c) 配对“癌旁组织”,选择距离癌灶边缘 3 cm 范围内的组织样本,配对“正常组织”, 要选择距癌灶边缘 5 CM 以上或距离癌灶边缘最远段(或手术切缘处)取组织样本,应注明距离。对于空腔器官,如食管、胃、肠、胆囊、膀胱等,“癌旁组织”“正常组织”应取相应部位的“粘膜组织”样本。 d) 在保障病理学检测所需标本的前提下,尽量提供足量的肿瘤与癌旁正常组织,一般不 少于200mg 或10E7 细胞。 e)手术切除的组织样本必须迅速置于液氮中,然后保存于液氮罐或-80℃冰箱,这一过程 尽量在手术标本离体后30 分钟内完成。 f) 其中一块组织可用OCT 处理后冻存,可用于形态学观察与显微切割。 (OCT(Optimal Cutting Temperature)包埋剂就是一种常用的固形剂。用其包埋组织进行速 冻后,能与组织固定成形,有利于保存组织结构完整性,便于其形态结构的分析) B。过程:使用数码相机拍摄标本外观后,将标本切成小块(直径0、5cm×0、5cm,厚度<0、5cm),为减少处理时间,标本不应切得太小,然后放入冻存管中,标记后放入标本盒中,盒盖上附有记录标本编号、采集时间及标本类型的标签。每例病人样本保存3-5份冻存管标本。每份 组织重量原则上不低于2g。 2) 石蜡包埋组织 a)中性福尔马林固定手术切除标本按病理学操作规范进行取材 b)取材部位包括癌灶,以及癌灶周围3cm 以内的癌旁组织,3~5cm 的近癌组织与5cm以 外的远癌组织或距癌灶边缘最远段分别取2-3 块。取材尽量以癌灶为中心水平向两侧 取材,尽量保证足够大的组织样本。取材应该以“远癌-近癌-癌灶”的顺序。癌灶处取材包括癌与正常组织的交界及肿瘤浸润最深处。所有取材的组织块应标明取材部位。
第三章 环境监测样品的采集和保存
第三章环境监测样品的采集和保存 重点：采样时间和频率，各种样品的采集和保存（水、大气、固废） 一、采样基础 1.1采样总体方案 由监测方案确定采样点、采样时间、采样频率和采样量 1.2采样时间和频率 ?采样时间 a 相应于监测对象的被测定参数随时间发生变化的周期。 如一条河流某水质参数可能以天、周、月、年为周期发生变化。变化：随机随时或有序随时间变化。需在变化周期内按采样频率多次采样分析。 b 某采样点上进行采样的约定时日和时刻 c 采样持续时间，如对空气中悬浮颗粒物做大流量采样时，采样持续时间为 24h ?采样频率 指在一个时段内的采样次数，如1天、1月或1年内的采样次数。取决于监测对象的被测参数的内在变异性和评价环境质量所需数据的精确程度。 要求越高则频率越高；连续自动采样能满足很高要求。 二、水样的采集和保存（以地表水的采集为例） 2.1水样类型 ?瞬间水样：适用于流量不固定、不连续流动、污染物最高值与最低值都变化的情况；如稳定的工厂废液有代表性； 如高峰期采集可间隔一定时间计算平均浓度。 ?混合水样：在同一采样点上的，以时间、流量或体积为基础，按照已知的比例（间隔或连续的）混合的水样。提供的数值为平均值，可人工也可自动采样。包括： 平均混合水样（隔相同时间采集等量废水样混合，适宜废水流量稳定情况） 平均比例混合水样（不同时间依照流量大小按比例采集的混合水样） ?综合水样：从不同采样点同时采得的瞬时水样混合为一个样品，为综合水样。 2.2采样布点 2.2.1合适的采样地段（断面）：水量大、水面宽、水深大、水流急的较大河流2.2.2所选地段上选择具体采样位置即采样点：对一般水量较小、水深不大、水 面宽度不超过10m的较小江河或水渠，可以单点采样，即通常在河流中心的主流线处布设一个采样点。 漓江2月6日上午的水位是一百四十點五米，水流量十三點二立方米/秒。
水质采样-样品的保存和管理技术规定(HJ493-2009)
水质采样-样品的保存和管理技术规定(HJ493-2009)
中华人民共和国国家环境保护标准 HJ 493—2009 代替 GB 12999—91 水质采样样品的保存和管理技术规定 Water quality sampling — technical regulation of the preservation and handling of samples (发布稿) 2009-09-27 发布；2009-11-01 实施 前言 为了贯彻《中华人民共和国环境保护法》和《中华人民共和国水污染防治法》,保护环境,保障人体健康,规范水质样品的保存和管理,制定本标准. 本标准规定了水样从容器的准备到添加保护剂等各环节的保存措施以及样品的标签设计,运输, 接收和保证样品保存质量的条款. 本标准对《水质采样样品的保存和管理技术规定》(GB 12999-91)进行了修订,原标准起草单位:中国环境监测总站,首次发布于:1991 年,本次是第一次修订. 主要修订内容: ——增加单项样品的最少采样量及量化部分保存剂的加入量. ——增加分析项目的容器洗涤方法.删除"分析地点"和"建议"合并为"备注" . ——增加待测项目,其中理化和化学指标33 项,如高锰酸盐指数,凯氏氮,总氮,甲醛,挥发性有机物,农药类,除草剂类,邻苯二甲酸酯类等:增加生物指标 4 项:增加放射学指标10 项. 自本标准实施之日起,原国家环境保护局1991 年 1 月25 日批准,发布的国家环境保护标准《水质采样样品的保存和管理技术规定》(GB 12999-91)废止. 本标准由环境保护部科技标准司组织制订. 本标准主要起草单位:中国环境监测总站,辽宁省环境监测中心站. 本标准环境保护部2009年9月27日批准. 本标准自2009年11月1日起实施. 本标准由环境保护部解释. I 水质采样 1 适用范围 样品的保存和管理技术规定