pcr试剂配置操作规程

pcr试剂配置操作规程

PCR(聚合酶链反应)试剂配置操作规程

一、实验条件准备:

1. 实验室必须具备PCR实验所需的通风良好和无尘环境。

2. 实验室台面、设备和试剂必须经过去污处理,避免污染PCR试剂。

3. 所有操作必须佩戴一次性手套和口罩,避免异物污染。

二、试剂准备:

1. 根据实验需求,按照PCR试剂配方准确称量试剂,以避免浓度误差。

2. 高度纯化的ddH2O用于试剂配置,并通过过滤器过滤以去除任何可能存在的污染物。

3. 所有试剂采用无菌技术进行操作和保存,避免任何微生物污染。

4. 根据实验需求,将试剂配置成适当的浓度,以确保PCR反应的准确性和可靠性。

三、PCR反应管的配置:

1. 使用高质量的PCR反应管,避免对PCR反应器造成污染。

2. 在干净的台面上,根据实验需求,将PCR反应管按照所需的样本数量排列整齐。

3. 分别将所需试剂按照实验配方加入每个PCR反应管中。

四、试剂加入顺序:

1. 首先,加入无菌ddH2O到每个PCR反应管中,填满至所需体积的80%。

2. 然后,将DNA 模板加入到PCR反应管中,确保加入的体积准确。

3. 接着,将引物添加到PCR反应管中,确保引物的浓度适当。

4. 最后,加入PCR酶,确保每个PCR反应管中酶的浓度一致。

五、试剂混合:

1. 使用专用移液器混合PCR反应管中的试剂,确保混合均匀透彻。

2. 在混合试剂的过程中要避免遮挡试剂视线,以确保每个PCR反应管中试剂的完全混合。

六、PCR反应管密封:

1. 使用高质量的PCR反应管盖密封每个PCR反应管,以避免试剂的蒸发和外部的污染。

2. 轻轻旋紧PCR反应管盖,确保密封紧密。

七、PCR实验设置:

1. 将密封好的PCR反应管放入PCR仪器的热循环模块中。

2. 根据实验需求,设置PCR仪器的程序,包括温度、时间和循环次数等参数。

八、PCR反应结束后的处理:

1. 在PCR反应结束后,及时将PCR反应管从PCR仪器中取出。

2. 将PCR反应管放在冰上,以停止反应。

3. 对PCR反应产物进行进一步分析或储存,如需储存,应根据实验要求进行保存。

九、实验器材和垃圾处理:

1. 实验结束后,彻底清洁实验台面、设备和试剂瓶,以避免PCR试剂的交叉污染。

2. 将使用过的PCR反应管、废弃物和其他废液放入相应的危险废物容器中,以确保安全处置。

总结:PCR试剂配置操作规程是PCR实验中非常重要的一步,正确操作和配置试剂可以保证PCR反应的准确性和重复性,避免污染和误差。在实验中应严格按照实验要求和标准操作,遵守安全操作规程,确保实验的成功进行。

1.PCR操作流程

PCR操作流程 1.从冰箱取出所需试剂、样品,放置在冰盒上,解冻试剂、样品,点动离心。 2.取所需数量小EP管(200 μl),按附录所示配制反应体系。 3.加完所有试剂和样品后,点动离心,去除管内气泡。 4.在PCR仪上设定合适参数,具体见仪器操作手册。参数设置完成后,将反 应管放入PCR仪内小EP管位,根据所用EP管调整热盖位置,盖紧上盖。 5.启动程序,做好记录。 6.完成后及时取出反应管,关闭仪器。 7.用0.5×TBE配制琼脂糖胶,100 V,电泳15-25 min,紫外灯下观察条带,必 要时拍照记录。 注意事项: 1.节约试剂,所有试剂使用前都应点动离心;若为探索条件或鉴定试验,推荐 25μl反应体系。 2.含酶试剂应尽量保持低温,从冰箱取出解冻后,应尽量放在冰盒里,每次吸 完后也应放回冰盒。 3.加试剂及样品应按顺序进行,模板应在最后加入;自加引物开始,每次吸样 前都必须更换吸头。 4.注意移液器正确使用,吸取或排出微量液体时,应注意保证吸取或加入量的 准确性。 5.加完所有试剂后去气泡应彻底。 6.及时记录仪器使用及状况。 7.琼脂糖胶浓度可根据目的条带大小做适当调整,具体见琼脂糖凝胶电泳操作 流程附录。

附:PCR常用反应体系 如所用试剂为Takara ExTaq/rTaq试剂,则反应体系如下(50 μl): ddH2O35.5/34.5 μl 10*Buffer 5 μl 2.5mM dNTP S 4 μl 引物1 2 μl 引物2 2 μl Taq酶0.5 μl 模板1/2 μl 如所用试剂为Mix则反应体系如下(50 μl): ddH2O20/19 μl 2*Mix25 μl 引物1 2 μl 引物2 2 μl 模板1/2 μl 注:反应体系可按比例调整;斜杠后的体系为菌液PCR体系;若使用Takara试剂,菌液PCR使用rTaq酶,其余样本使用ExTaq酶,反应中使用的其它试剂相同。

定量PCR加样操作流程

QPS-201加样流程和Step One Plus仪器的仪器操作 要准备的东西: 1.八排管和盖子 2.96孔细胞培养板 3.移液器:10ul,20ul,100ul,200ul。 4.枪头10ul,20ul,100ul,200ul或者300ul。 5.200ul和600ul的PCR管。 6.试剂:QPk-201,上下游引物,cDNA,去RNA酶的PCR水 7.注意事项: A.引物的储存浓度100nm,工作浓度:5-10nmol,引物要过量,上下游引物要先混匀在一起,然后再加。内参actin和目标基因的引物都要混匀。混匀后的引物可用半个月,用时要反复混匀,水样的东西混20下,油状的(酶)东西至少要混30下。 B.试剂配总管用,cDNA和酶mix配一管,引物和水配一管。混匀之后,再分别加到管子里。为什么试剂要配总管呢?cDNA模板量很少,所以加多加少对实验影响很大,酶加10ul,样多,少量的东西要想混匀,必须放在大量的东西里这样再去混匀,就可以使每个管子里的样品都能保证是一致的。 C.内参和目标基因都要跑3个复孔,取平均值,差异CT值要在0.5之内,如果Ct值>0.5,结果就不可信,要重新再做。 (一)QPk-201加样流程: 用QPk-201做样品体系是20ul的。 cDNA :2ul PCR水:6ul 上下游引物共:2ul 酶MIX:10ul 一共是20ul体系。 把cDNA :2ul和酶mix:10ul共12ul配一管。 把引物:2ul和水6ul共8ul配一管。 以下以样品为例,加样流程如下: 目标基因STOB1,样品六个,编号:1,2,3,C5,C6,C7 内参基因actin

PCR中相关溶液的配制

一.常用贮液与溶液 1mol/L亚精胺(Spermidine): 溶解2.55g亚精胺于足量的水中,使终体积为10ml。分装成小份贮存于-20℃。 1mol/L精胺(Spermine):溶解3.48g精胺于足量的水中,使终体积为10ml。分装成小份贮存于-20℃。 10mol/L乙酸胺(ammonium acetate):将77.1g乙酸胺溶解于水中,加水定容至1L后,用0.22um孔径的滤膜过滤除菌。 10mg/ml牛血清蛋白(BSA):加100mg的牛血清蛋白(组分V或分子生物学试剂级,无DNA酶)于9.5ml水中(为减少变性, 须将蛋白加入水中,而不是将水加入蛋白),盖好盖后,轻轻摇动,直至牛血清蛋白完全溶解为止。不要涡旋混合。加水定容到10ml,然后分装成小份贮存于-20℃。 1mol/L二硫苏糖醇(DTT):在二硫苏糖醇5g的原装瓶中加32.4ml水,分成小份贮存于-20℃。或转移100mg的二硫苏糖醇 至微量离心管,加0.65ml的水配制成1mol/L二硫苏糖醇溶液。 8mol/L乙酸钾(potassium acetate):溶解78.5g乙酸钾于足量的水中,加水定容到100ml。 1mol/L氯化钾(KCl):溶解7.46g氯化钾于足量的水中,加水定容到100ml。 3mol/L乙酸钠(sodium acetate):溶解40.8g的三水乙酸钠于约90ml水中,用冰乙酸调溶液的pH至5.2,再加水定容到100ml。 0.5mol/L EDTA:配制等摩尔的Na2EDTA和NaOH溶液(0.5mol/L),混合后形成EDTA的三钠盐。或称取186.1g的Na2EDTA·2H2O和20g的NaOH,并溶于水中,定容至1L。 1mol/L HEPES:将23.8gHEPES溶于约90ml的水中,用NaOH调pH(6.8-8.2),然后用水定容至100ml。 1mol/L HCl:加8.6ml的浓盐酸至91.4ml的水中。 25mg/ml IPGT:溶解250mg的IPGT(异丙基硫代-β-D-半乳糖苷)于10ml水中,分成小份贮存于-20℃。 1mol/LMgCl2:溶解20.3g MgCl2·6H2O于足量的水中,定容到100ml。 100mmol/L PMSF:溶解174mg的PMSF(苯甲基磺酰氟)于足量的异丙醇中,定容到10ml。分成小份并用铝箔将装液管包裹 或贮存于-20℃。

荧光定量PCR操作流程总结

荧光定量PCR操作流程 一、RNA提取 准备物品:无RNA酶大中小枪头;一套枪;trizol试剂;无RNA酶EP管(1.5mL、200uL); DEPC水;氯仿;75%DEPC乙醇;异丙醇等 1、1mLTrizol样品加200uL氯仿,用力晃动15s 2、冰上静置5min 3、4℃12000rpm 离心15min 4、小心吸取上清水相400-500uL至新的无酶EP管 5、按照体积1:1加异丙醇,颠倒混匀 6、置于冰上30min 7、4℃12000rpm 离心10min 8、倒掉上清,加入500uL75%DEPC乙醇,轻弹管底使RNA沉淀漂起 9、4℃12000rpm 离心5min 10、吸上清弃掉,尽量吸干净 11、12000rpm 离心5min 12、吸上清弃掉,尽量吸干净,开盖超净台内凉置5min 13、每管加20uLDEPC水溶解,弹管底使溶解混匀 14、56℃助溶10min 15、置于冰上测RNA浓度(Gen5 核酸检测执行) 16、擦手纸蘸蒸馏水擦RNA浓度检测板加样孔,再用擦镜纸擦干 17、1234孔各加2uLDEPC水,检测,本底为绿色即可继续测样本(2uL) 18、依次按编号加入2uL样本,软件关闭后重新打开,选择样本检测 19、批准出结果260/280=1.8-2则样品合格 二、反转录qPCR 准备物品:无RNA酶大中小枪头;无RNA酶EP管(1.5mL、200uL);RTmix;DEPC水 1、计算1000ng(反转录RNA上样量1000ng)的RNA体积,必要时稀释 2、反转录体系20uL(RTmix 4uL ;RNA样品约2uL ;DEPC水补齐20uL ) 3、弹管底混匀瞬时离心 4、Bio-rad 中间选项takaraRT run 16min 5、dd水稀释cDNA,使cDNA浓度约为10ng/uL,100uL分装后-20℃保存 三、荧光定量PCR 准备物品:8联管;引物;cDNA;200uLEP管;无菌枪头 1、引物稀释 dd水溶解稀释引物,旋涡混匀,引物储存浓度10nM/uL 2、定量PCR10uL体系 引物F 0.4uL 引物R 0.4uL cDNA 1uL(终浓度为1ng/uL) SYBR 5uL(含染料、DNA扩增酶、DNTP、Mg2+、扩增缓冲液等) dd水3.2uL 3、布板一个指标三个重复 4、取10个200uL无酶EP管,按顺序编号12345678910 5、按照一个指标:六个孔+2个孔(防止枪误差导致各孔不均)=8孔的剂量配制混合:

PCR实验室标准操作规程

v1.0 可编辑可修改PCR实验室作业指导书 文件编号: 第1版 编制: 审核: 批准: 生效日期:2015年*月*日 质管部

PCR实验室公正性声明 1、坚持公正立场认真对待每一例检测,不受任何对检测工作质量有不良影响的、来自实验 室内部或外部的不正当的商业、财务和其他方面的压力和影响。避免卷入任何可能会降低技术能力、公正性、判断或运作诚实性的信任的活动。 2、严格遵循实验室认可依据的国际标准,严格按标准的管理要素和技术要素的要求建立自 我完善的管理体系和控制检测全过程各环节的机制,所有与检测有关的人员熟悉与之相关的质量文件,并在工作中执行这些政策和程序,真正把标准作为科学管理检测实验室的先进管理模式,尽可能把差错降到最低限度,确保检测数据准确可靠,检测结果和技术判断正确有效。 3、坚持以“客户为中心、质量第一”的服务宗旨,严格保护客户的机密和所有权,热忱提 供优质服务,努力实现让上级放心、客户满意的服务标准。 4、主动开展实验室的比对实验和其他有效地检测质量监控方案,并通过日常检测的监督机 制,持续改进、不断完善管理体系,从而保证其充分性和有效性。

修订页

目录 前言 (1) 质量方针 (2) 质量管理体系组织结构图 (4) 一、工作制度 (5) PCR实验室的设置及管理规程 (5) PCR实验室内务管理规程 (6) PCR实验室人员的配置及管理规程 (7) PCR实验室管理规程 (10) PCR实验室生物安全防护措施 (14) PCR实验室废弃物的处理管理规程 (16) PCR实验室清洁消毒管理规程 (17) PCR实验室仪器设备的管理规程 (18) 试剂管理规程 (20) 清洁剂、消毒剂管理规程 (21) 异常情况应急处理管理规程 (22) 采购管理规程 (25) 仓库管理制度 (28) 临床标本的管理规程 (31) PCR实验室记录管理规程 (32) 检验报告单发放、保密管理规程 (33) PCR实验室岗位责任制 (34) 二、操作指导书 (36) PCR实验室的清洁消毒操作规程 (36) 冰箱、冷藏柜的使用操作程序 (37) 冰箱、冷藏柜的维护保养操作程序 (38) 洁净工作台使用操作规程 (40) 洁净工作台维护、清洁操作规程 (41) ABI 7500实时跟踪荧光PCR仪使用操作规程 (43) ABI 7500实时跟踪荧光PCR仪维护保养操作规程 (44) 高速冷冻离心机使用标准操作规程 (45) 高速冷冻离心机维护保养操作规程 (46) 生物安全柜使用操作规程 (47) 生物安全柜的维护保养操作规程 (49) 加样器的使用操作规程 (50) 加样器的维护保养操作规程 (51) 干式恒温箱的使用操作规程 (52) 干式恒温箱的维护保养操作规程 (53)

pcr试剂配置操作规程

pcr试剂配置操作规程 PCR(聚合酶链反应)试剂配置操作规程 一、实验条件准备: 1. 实验室必须具备PCR实验所需的通风良好和无尘环境。 2. 实验室台面、设备和试剂必须经过去污处理,避免污染PCR试剂。 3. 所有操作必须佩戴一次性手套和口罩,避免异物污染。 二、试剂准备: 1. 根据实验需求,按照PCR试剂配方准确称量试剂,以避免浓度误差。 2. 高度纯化的ddH2O用于试剂配置,并通过过滤器过滤以去除任何可能存在的污染物。 3. 所有试剂采用无菌技术进行操作和保存,避免任何微生物污染。 4. 根据实验需求,将试剂配置成适当的浓度,以确保PCR反应的准确性和可靠性。 三、PCR反应管的配置: 1. 使用高质量的PCR反应管,避免对PCR反应器造成污染。

2. 在干净的台面上,根据实验需求,将PCR反应管按照所需的样本数量排列整齐。 3. 分别将所需试剂按照实验配方加入每个PCR反应管中。 四、试剂加入顺序: 1. 首先,加入无菌ddH2O到每个PCR反应管中,填满至所需体积的80%。 2. 然后,将DNA 模板加入到PCR反应管中,确保加入的体积准确。 3. 接着,将引物添加到PCR反应管中,确保引物的浓度适当。 4. 最后,加入PCR酶,确保每个PCR反应管中酶的浓度一致。 五、试剂混合: 1. 使用专用移液器混合PCR反应管中的试剂,确保混合均匀透彻。 2. 在混合试剂的过程中要避免遮挡试剂视线,以确保每个PCR反应管中试剂的完全混合。 六、PCR反应管密封: 1. 使用高质量的PCR反应管盖密封每个PCR反应管,以避免试剂的蒸发和外部的污染。 2. 轻轻旋紧PCR反应管盖,确保密封紧密。 七、PCR实验设置:

菌液pcr的具体操作方法

菌液PCR的具体操作方法 一、前言 菌液PCR是一种重要的分子生物学技术,用于扩增目标DNA片段。本文将介绍菌液PCR的具体操作步骤及注意事项。 二、实验准备 在进行菌液PCR之前,需要准备以下实验材料和设备: 1. PCR试剂盒:包括PCR 引物、Taq DNA聚合酶、dNTPs等。 2. 菌液样品:含有目标DNA片段的菌株培养物。 3. PCR扩增仪:用于控制PCR反应的温度。 4. 离心机:用于离心试剂和样品。 5. PCR管:用于混合反应体系。 6. 电源:用于供电。 三、菌液PCR的具体操作步骤 3.1 DNA提取 1.取一定量的菌液样品,将其转移到离心管中。 2.使用离心机将菌液离心10分钟,以沉淀菌细胞。 3.弃去上清液,加入适量的细胞裂解缓冲液。根据不同的菌株和实验要求,可 选择不同的细胞裂解方法,如热裂解、酶裂解等。 4.在细胞裂解液中加入蛋白酶K,并在37℃下孵育一段时间,以使细胞蛋白被 降解。 5.加入等体积的酒精,使DNA沉淀。 6.使用离心机将混合液离心10分钟,以沉淀DNA。 7.弃去上清液,用70%乙醇洗涤沉淀的DNA。 8.干燥DNA沉淀,最后加入适量的去离子水溶解DNA。 3.2 PCR反应体系的配置 1.准备一份PCR反应液的配方表,根据实验需要计算出所需试剂的用量。 2.在PCR管中按照配方表的要求依次加入PCR引物、Taq DNA聚合酶、dNTPs 等试剂,最后加入DNA模板。 3.使用微量移液器或自动化液体处理系统将各试剂充分混合。

3.3 PCR反应的设置 1.将装有PCR反应液的PCR管放入PCR仪中。 2.根据目标DNA片段的长度和引物的特性,设定PCR反应的温度程序,包括变 性、退火和延伸阶段的温度和时间。 3.开始PCR反应。 3.4 PCR反应后的处理 1.取出PCR管,将反应液转移到离心管中。 2.使用离心机将反应液离心,以沉淀PCR产物。 3.弃去上清液,加入适量的缓冲液溶解PCR产物。 4.进行PCR产物的分析,可以使用凝胶电泳等方法。 四、注意事项 1.实验过程中应严格遵守无菌操作规范,以避免污染。 2.PCR反应液的配制过程中,应注意试剂的质量和浓度。 3.PCR反应的温度程序应根据实验需要和引物的特性进行优化。 4.PCR反应后的产物应妥善保存,避免降解和污染。 以上就是菌液PCR的具体操作方法及注意事项。希望本文对初学者能提供一些帮助,并能顺利进行菌液PCR实验。

pcr反应液配制

pcr反应液配制 PCR(聚合酶链式反应)是一种常用的分子生物学技术,用于扩增DNA片段。在进行PCR实验前,我们需要配制PCR反应液,确保实 验的准确性和成功率。本文将介绍PCR反应液的配制方法,包括PCR 反应液的组成成分、浓度及配制步骤等。 一、PCR反应液的组成成分 PCR反应液通常由以下组分组成: 1. 模板DNA:PCR反应的目标DNA,可以是基因组DNA、cDNA 或其他DNA片段。 2. 引物(primer):短链的寡核苷酸序列,用于DNA的扩增。PCR 反应一般需要两个引物,一个称为前向引物(forward primer),另一 个称为反向引物(reverse primer)。 3. dNTPs(脱氧核苷三磷酸):包括dATP、dCTP、dGTP和dTTP,用于DNA合成。 4. 缓冲液:提供有效的pH缓冲体系,维持PCR反应溶液的酸碱平衡。常用的缓冲液有Tris-HCl缓冲液。 5. MgCl2:镁离子,作为DNA聚合酶的辅因子,调控反应的酶活性。在PCR反应中,一般需要根据反应条件和模板的需求来确定 Mg2+ 的浓度。 6. DNA聚合酶:如Taq DNA聚合酶,用于合成新的DNA链。

7. 水:用于稀释PCR反应液和其他试剂。 二、PCR反应液的配制步骤 1. 计算反应液的体积:根据所需的PCR反应体系中各组分的浓度和数量,计算出所需的总体积。一般每个PCR反应的总体积为20-50微升。 2. 配制缓冲液:根据PCR反应的要求,配制缓冲液,使其达到所需体积的80-90%。将缓冲液加入PCR反应管。 3. 加入dNTPs:根据所需浓度,向PCR反应管中加入每种dNTPs 的适量。一般浓度为200-500 μM。 4. 加入引物:将前向引物和反向引物按照所需浓度加入PCR反应管中。一般浓度为0.1-1 μM。 5. 加入模板DNA:将所需的模板DNA按照所需浓度加入PCR反应管中。浓度可以根据所需扩增片段的长度和反应条件来确定。 6. 加入MgCl2:根据所需Mg2+浓度加入适量的MgCl2溶液。 7. 加入DNA聚合酶:将DNA聚合酶按照所需浓度加入PCR反应管中。 8. 加入水:最后加入足够的水,使得PCR反应液的总体积达到所需体积。注意不要加入过多的水,以免稀释反应液中的其他组分。 三、PCR反应液的注意事项

PCR技术操作流程及注意事项

PCR技术操作流程及注意事项 ⼀、PCR 的基本原理 类似于DNA 的体内复制。⼀先待扩增DNA 模板加热变性解链,随之将反应混合物冷却⼀某⼀温度,这⼀温度可使引物与它的靶序列发⼀退⼀,再将温度升⼀使退⼀引物在DNA 聚合酶作⼀下得以延伸。这种热变性- 复性- 延伸的过程就是⼀个PCR 循环,PCR 就是在合适条件下的这种循环的不断重复。 ⼀、PCR 反应体系 1. 缓冲液 标准的缓冲液含1pmol/ml Tris ·HCl,其pH 为8.3-9.0(室温),⼀在延伸温度(72 ℃)下,pH 值接近7.2 。缓冲液中含有⼀种⼀价阳离⼀,⼀于激活DNA 聚合酶的活性中⼀,⼀般使⼀Mg 2+ 。 2.dNTP 脱氧核糖核苷三磷酸的缩写,是包括dATP, dGTP, dTTP, dCTP 等在内的统称,即合成新的DNA 链的材料。4 种dNTP 的浓度相等,总浓度⼀般为200pmol/ml (即饱和浓度)。dNTP 可与Mg 2+ 结合,使游离的Mg 2+ 浓度下降, 影响DNA 聚合酶的活性。 3. 引物 引物是⼀段短的单链DNA ⼀段,可结合在核酸链上与之互补的区域,其功能是作为核苷酸聚合作⼀的起始点,DNA 聚合酶可由其3′端开始合成新的核酸链。引物长度⼀般以18~30bp 为宜,过短则降低特异性,过长则会引起引物间的退⼀⼀影响有效扩增,同时也增加引物合成的成本。引物的碱基顺序不能与⼀扩增区有同源性。 4. 模板 模板是⼀段单链或者双链DNA,提供⼀于进⼀PCR 扩增的原始信息。对模板的纯度要求低,但不能混有蛋⼀酶、核酸酶、DNA 聚合酶抑制剂、DNA 结合蛋⼀等。模板DNA 应该尽量保持低温保存。 5.Taq DNA 聚合酶 Taq DNA 聚合酶以DNA 为复制模板,从将DNA 由5' 端点开始复制到3' 端的酶。DNA 聚合酶的主要活性是催化DNA 的合成(在具备模板、引物、dNTP 等的情况下)及其相辅的活性。必须⼀直保存于-20℃,内含⼀油保存。最适反应温度72 ℃,即延伸温度。通常在配制PCR 体系的最后加⼀。

PCR操作流程

PCR操作流程 一、实验目的 1.掌握聚合酶链式反应的原理。 2。掌握移液枪和PCR仪的基本操作技术. 二、实验原理 PCR技术,即聚合酶链反应(polymerase chain reaction,PCR)是由美国PE Cetus 公司的Kary Mullis在1983年(1993年获诺贝尔化学奖)建立的。这项技术可在试管内的经数小时反应就将特定的DNA片段扩增数百万倍,这种迅速获取大量单一核酸片段的技术在分子生物学研究中具有举足轻重的意义,极大地推动了生命科学的研究进展。它不仅是DNA分析最常用的技术,而且在DNA重组与表达、基因结构分析和功能检测中具有重要的应用价值。 PCR可以被认为是与发生在细胞内的DNA复制过程相似的技术,其结果都是以原来的DNA为模板产生新的互补DNA片段。细胞中DNA的复制是一个非常复杂的过程。参与复制的有多种因素。PCR是在试管中进行的DNA复制反应,基本原理与细胞内DNA复制相似,但反应体系相对较简单。 PCR由变性--退火-—延伸三个基本反应步骤构成:①模板DNA的变性:模板DNA 经加热至94℃左右一定时间后,使模板DNA双链或经PCR扩增形成的双链DNA解离,使之成为单链,以便它与引物结合,为下轮反应做准备; ②模板DNA与引物的退火(复性):模板DNA经加热变性成单链后,温度降至55℃左右,引物与模板DNA单链的互补序列配对结合; ③引物的延伸:DNA模板--引物结合物在Taq酶的作用下,以dNTP为反应原料,靶序列为模板,按碱基配对与半保留复制原理,合成一条新的与模板DNA 链互补的半保留复制链. 重复循环变性——退火—-延伸三过程,就可获得更多的“半保留复制链",而且这种新链又可成为下次循环的模板。每完成一个循环需2~4分钟, 2~3小时就能将待扩目的基因扩增放大几百万倍。 三、实验试剂与器材 模板DNA、2。5mmol/L dNTP Taq DNA聚合酶(5U/μL)、SSR引物

RNA提取,PCR以及rt-PCR的实验试剂配制及操作流程

RT-PCR所需 1、0.1% DEPC水:1000ml的蒸馏水中加入1ml的DEPC粉剂,磁力搅拌器搅 拌过夜,第二天,高压蒸汽灭菌备用 2、5×TBE琼脂糖凝胶电泳缓冲液:54gTris,3.72gNa2EDTA,27.5g硼酸,蒸馏 水溶解,调PH为8.3,充分搅拌,定容止1000ml. 3、溴化乙啶(10mg/ml):称取1g溴化乙啶至于100ml烧杯中,加入80ml去离 子水后充分搅拌,将溶液定容至100ml,转移到棕色瓶中保存。 RNA提取 1向10cmdish中加入1mlTrizol,用移液枪反复吹吸至裂解液中无明显沉淀 2.冰上放置5min,加入氯仿200ml,猛烈震荡15s 3.冰上静置2-3min,4℃离心,1200g,15min 4.取上层水相至新的EP管中,加入500ul异丙醇混匀,冰上静置10min 5. 4℃离心, 1200g,10min,弃上清,加入75%乙醇(用低温DEPC水配制),轻轻混匀 6. 4℃离心, 7500g,5min,后弃上清,室温干燥5min 7.用适量DEPC水溶解沉淀,混匀后,测浓度,进行琼脂糖凝胶电泳验证,可于-80℃保存 十七、PCR 1.cDNA制备 (1)在EP管中配下列混合液 Total RNA的模板使用量一般为5ug以下,mRNA的使用量一般为1ug以下 (2).65℃保温5min后迅速在冰上急冷2min以上 (3).离心数秒钟使模板RNA/引物等混合物集中于EP管底部 (4).在上述EP管中配制下列反转录反应液

(5).42℃ 30-60min (6)70℃保温15分钟后冰上冷却,得到的cDNA 溶液可保存于-80℃ 2.PCR (1).引物设计 用Primer5软件设计并在NCBI 中进行比对 (2).PCR 反应体系(一般30的反应体系) PCR 反应条件 98℃ 10s 55℃ 5/15 72℃ 1min/kb 轻轻混匀,离心,置入PCR 仪进行反应 (3).琼脂糖凝胶电泳检测 十八、Real time –PCR 1. 梯度稀释的标准品及待测样品的管家基因(β-actin )实时定量PCR (1)Actin 标准梯度制备 阳性模板的浓度为1011,反应前取3μl 按10倍稀释(加水27μl 并充分混匀)为1010,依次稀释至109、108、107、106、105、104,以备用 (2)反应体系 标准品反应体系 30循环

PCR生产操作规程

PCR生产操作规程 PCR(聚合酶链反应)是一种分子生物学技术,用于扩增特定的DNA序列。PCR的操作过程需要严格控制条件,以保证反应的准确性和稳定性。以下是PCR生产的操作规程: 1. 实验室准备: - 确保实验室整洁干净,操作台面清洁无尘。 - 确保实验室内温度适宜,保持恒温状态。 - 准备PCR试剂盒,包括DNA模板、引物、逆转录酶、聚合酶、dNTPs等。 2. 样品处理: - 提取DNA样品时,要避免污染、降解和损伤。 - 使用无菌管、无菌试剂和消毒仪器,避免样品交叉污染。 3. PCR试剂配置: - 根据实验样品的数量和浓度,计算所需的试剂量。 - 试剂配置过程中要注意无菌操作和准确的配比,避免试剂误差。 4. 反应体系: - 根据实验需求进行不同的PCR反应设置,包括温控系统、反应管、引物和试剂的加入顺序等。

- 准备阳性和阴性对照样本,以检验PCR反应的准确性。 5. 反应条件: - 根据PCR扩增的要求,设置反应体系的温度、时间和循环次数等。 - 设置好PCR反应的温度曲线,包括变性、退火和延伸阶段,以保证扩增效果。 6. 仪器操作: - 启动PCR仪器前,确保设备完好、无异常情况。 - 设置好PCR仪器的程序和参数,包括温度梯度、循环次数、温度保持时间等。 - 监控PCR反应的过程,及时调整温度和时间等参数。 7. 结果分析: - PCR反应结束后,分析PCR产物的扩增结果。 - 使用电泳技术对PCR产物进行分析,观察扩增片段的大小和条带的强度。 - 对PCR结果进行解读,确认是否成功扩增目标DNA序列。 8. 结果记录和保存: - 将PCR结果记录在实验日志中,包括样品编号、反应条件、扩增结果等信息。 - 将PCR产物进行保存,可以冷冻保存或进行二次扩增和测序等后续实验。

圣湘核酸pcr操作规程

圣湘核酸pcr操作规程 圣湘核酸PCR操作规程 一、实验目的 本实验旨在通过聚合酶链式反应(PCR)技术,对圣湘病毒进行检测和分析。 二、实验材料 1. PCR试剂盒:包括聚合酶、引物、双链DNA模板、dNTPs等; 2. 相关实验器具:PCR仪、微量移液器、离心机、电泳仪; 3. 实验环境:PCR实验室,保持环境无污染; 4. 生物安全柜:用于分离患者标本和PCR试剂,避免交叉污染。 三、实验步骤 1. 实验前准备: a. 将PCR试剂从冰箱中取出,放置室温下约15分钟后,彻底离心以确保试剂液在管底,充分混匀。 b. 按照实验要求,准备好相应的工作标本和阴性对照。 c. 按照PCR试剂盒说明书,计算总的批量。 2. PCR体系配置:

a. 首先,将每个PCR反应管标记清楚,并按照批量简介编号。 b. 按照试剂配制表准备好所需的试剂。 c. 依次向每个PCR反应管中加入:dNTPs、模板DNA、引物、聚合酶和ddH2O。 3. PCR反应设置: a. 将反应管放入PCR仪中,按照实验要求设定温度和时间。 b. 注意PCR仪的温度设定、梯度等参数需要根据实验要求进行调整。 4. PCR反应: a. 将反应管盖子扣紧,将PCR管放入PCR仪中进行反应。 b. 反应结束后,取出PCR反应管。 5. 反应产物分析: a. 将PCR反应产物取出,进行电泳分析。 b. 将样本和DNA分子量标准品一同加载到琼脂糖凝胶中,进行电泳。 6. 结果分析: a. 根据分离出来的条带数量和大小,判断PCR是否成功。 b. 结合阴性对照结果,判断样品是否存在圣湘病毒。 四、实验注意事项 1. 实验过程中要做到操作规范,避免交叉污染。

常见猪病PCR检测操作步骤及试剂配制(精)

常见猪病PCR检测操作步骤及试剂配制 一、RNA病毒(蓝耳病、猪瘟、乙脑、猪传染性胃肠炎病毒、猪流行性腹泻病毒、轮状病毒等 包括病料的处理、RNA的提取、反转录、和PCR扩增、凝胶电泳四个步骤。 1、病料的处理 取组织病料约2克,加入4-5毫升灭菌的PBS或者生理盐水,置研磨器(灭菌中研磨或者用剪刀细心剪碎,置-20℃中反复冻融三次,即可用于检测。 2、RNA的提取 1取上述冻融三次的病料约200微升置1.5毫升的离心管中,加入500-600微升TRIzol剧烈振摇30秒后,静置5分钟后,再次剧烈振摇30秒后,静置5分钟。 2在加入200微升的氯仿,上下颠倒混匀30s,静置5分钟,4℃ 12000g 离心15 min。 离心完毕后,取上清约400-500微升(注意不要吸到中间层白色物质置新的灭菌好的离心管中,加入等体积的异丙醇,颠倒数次后(不可剧烈震动静置10分 钟,4℃12000g离心10 min.可见管底部有少量白色沉淀,倒掉异丙醇,加入1毫升75%的乙醇(DEPC水配制,振摇,将白色沉淀悬浮,4℃7500g离心5 min。弃去上清,干燥沉淀物(将离心管倒置于卫生纸或者其它吸水纸上,室温约5 min即可加入20μLDEPC 水溶解用于RT-PCR,或于-20℃保存备用。 两步法: 1、反转录 在10μL的反转录体系中加入:上述步骤中提取的RNA7μL、5×Buffer 2μL、 0.5μL或者下游引物0.5μL;65℃10分钟, 10 mM dNTP 0.25μL、Oligo (dT

18 迅速放置-20摄氏度冰箱中2分钟,加入M-MLV 100U/μL 0.25μL(反转录酶37℃水浴1h,即可做为PCR扩增的模板,立即用于PCR扩增或置于- 20 ℃保存备用。 2、PCR扩增 设立阳性和阴性对照,阳性对照一般为病毒液,阴性对照用灭菌的双蒸水做为PCR反应模板。 反应总体系为25μL cDNA 2μL,(模板 25mmol/L Mg2+ 1.5μL, 2.5mmol/L dNTPs 2.0μL, 10× Mg2+ free PCR Buffer 2.5μL, 20mmol/ L上下游引物各1μL, Taq DNA聚合酶(5U/μL0.2μL 无菌双蒸水补至25.0μL。 PCR反应条件为:94℃预变性3 min;94℃ 45s,56℃ 45s,72℃ 45s,共进行36个循环;最后72℃延伸10min。(根据不同的病毒设定时间和温度 一步法:采用的是TaKaRa 的PrimeScript One Step RT-PCR Kit Ver.2试剂盒在25uL反应总体系: <1> PrimeScript 1 Step Enzyme Mix , 1uL

荧光定量PCR仪标准操作规程

荧光定量PCR仪标准操作指导书 1、适用范围: AGS AGS4800型实时荧光定量PCR仪。 1、双击桌面“AGS4800”快捷方式,运行程序。打开AGS4800程序进入用户选择界面。选择用户后,进入软件操作界面。 2、新建一个检测程序文件 单击新建按钮,新建一个检测程序文件。 2.1设置热盖温度 调节热盖温度(30-105℃),默认105℃。 2.2设置试管加液量 根据实际试管加液量调节加液量参数(5-100μl),默认25μl。 2.3设置扩增程序 单击“添加”创建一个程序段 2.4添加程序名称,设置各程序段循环数。 2.5温度设置功能按钮 添加--------------------在当前温度节结尾,新建一个温度节 插入--------------------在当前温度节前添加一个温度节 删除--------------------将当前温度节删除 2.6 样本信息录入 2.6.1打开样本参数设置界面 2.6.2在当前程序染料设置里,选择试剂所对应的染料。 2.6.3样本信息设置

选择扩增的染料,选中要设置孔位 依次输入“样本序号、样本名称、样本ID”,在荧光信息选择框中选择样本类型,若为标准品可以输入样本浓度信息。 样本浓度信息可以手工输入数值或者使用下拉选择框选取标准样品浓度信息。 最大样本浓度输入值1.00e+10。 2.6.4孔位选择 单孔选择-----------------通过鼠标单击选中单个孔位。 相邻孔位选择--------------通过单击鼠标并拖动选择矩形框内相邻孔位或者先选中一个孔位,按住“Shift”功能键单击另一孔位进行选择。 不连续孔位选择---------通过按住“Ctrl”功能键进行依次追加选择孔位。 A(B)行全选----------在A(B)行开始位置单击鼠标则选中A(B)行所有孔位。 孔位全选-----------------在图示位置单击鼠标左键则全选所有孔位。 选择孔位增减-------------按住“Ctrl”键,使用鼠标单击需增加或减少的孔位。 2.6.5样本类型设置 孔位选择后,可以直接点选右侧样本类型快速设置按钮,进行样本类型设置,也可以选择样本参数项目中的样本类型设置下拉选择框进行选择设置。 样本类型若选择标准品,需输入样本浓度。 2.7程序运行参数保存 点选“文件→保存”或“文件→另存为”,输入文件名称,点选确认按钮进行保存操作。

核酸检验试剂配制方案

核酸检验试剂配制方案 核酸检验是一项非常重要的实验室技术,用于检测和分析DNA和RNA的序列和结构。核酸检验试剂的配制是核酸检验工作中的关键环节,下面是一个700字的核酸检验试剂配制方案。 一、试剂准备 1. Tris-HCl缓冲液: 将121.14g Tris-HCl溶解在800ml去离子水中,调pH至7.5,加去离子水至1L。 2. EDTA溶液: 将186.1g EDTA二钠溶解在800ml去离子水中,加去离子水至1L。 3. NaCl溶液: 将58.44g NaCl溶解在800ml去离子水中,加去离子水至1L。 4. Lyse Buffer溶液: 将10ml Tris-HCl缓冲液、1ml EDTA溶液、8ml NaCl溶液混合,加去离子水至50ml。 5. 2×载脂体缓冲液: 将40ml Tris-HCl缓冲液、8ml EDTA溶液、70ml NaCl溶液混合,加去离子水至200ml。 6. 蛋白酶K溶液:

将1mg的蛋白酶K溶解在1ml去离子水中。 7. 合成引物: 按需要合成引物序列,并与合成公司确认纯度和浓度。 二、试剂配制 1. DNA提取试剂配制: 将1ml Lyse Buffer溶液和10μl蛋白酶K溶液混合,制成DNA 提取试剂。 2. PCR反应液配制: 将50μl 2×载脂体缓冲液、5μl DNA模板、1μl合成引物、3μl MgCl2、1μl dNTP混合,加去离子水至100μl,制成PCR反应液。 3. 电泳缓冲液配制: 将242g Tris和36g boric acid溶解在800ml去离子水中,加去离子水至1L,pH调至8.0,加入20ml 0.5M EDTA混合,最终体积调至1L。 4. DNA标记液配制: 将1μl DNA样品和9μl DNA加载缓冲液混合,制成DNA标记液。 5. 试剂保存温度: 将所有试剂保存在适宜的温度下,避免阳光直射和高温。 三、注意事项

pcr 操作规程

pcr 操作规程 PCR(聚合酶链反应)是一种重要的分子生物学技术,被广泛应用于基础研究、医学诊断和法医学等领域。它可以在体外迅速扩增目标DNA序列,并且可以在少量DNA 样本中检测到极低浓度的目标DNA。为了确保PCR实验的准确性和重复性,制定一份操作规程是非常重要的。下面是一份PCR操作规程: 一、实验准备 1. 检查PCR试剂盒的有效期,确保试剂的质量和纯度。如果试剂过期或出现异常,应及时替换。 2. 温度设置:将实验室温度提前设定在室温(25℃),PCR仪预热至需要的温度。 3. 化学物品准备:准备好的试剂和物品包括PCR试剂盒、试剂所需的缩微管、用于装载PCR试剂的微量移液器和相应的移液器尖等。 4. 试剂检查:确认PCR试剂盒中的主要成分完好无损,并检查是否有任何已经发生的异常。 5. 设计引物:根据研究的目的和样本的特性,设计合适的引物序列。确保引物能够与目标序列特异性结合,避免二次结构和自身互补性。 二、实验操作步骤

1. DNA提取:根据需要选择合适的DNA提取方法,从样本中提取出所需的DNA。 2. DNA浓度测定:利用分光光度计检测DNA的浓度,确保DNA的浓度适合PCR扩增反应。如果浓度过高或过低,可以进行适当的稀释或浓缩。 3. 反转录:如果是从RNA提取DNA,则首先需要进行反转录反应,将RNA转化为cDNA。反转录反应的条件和步骤根据所用的反转录酶和试剂盒而有所不同,需按照相应的操作手册进行。 4. PCR试剂配置:按照PCR试剂盒说明书中所提供的配方准确称取PCR试剂,配置PCR反应体系。确保试剂的质量和纯度,并且避免交叉污染。 5. PCR反应体系的装载:将PCR反应体系按照试剂盒说明书中的要求装入PCR管或反应板中。确保每个反应管或反应孔中的体积均匀且准确。 6. PCR反应条件设定:根据所扩增的目标序列和引物的特性,设定合适的PCR反应条件,包括温度、时间和循环次数等。一般情况下,PCR反应包括初始变性、循环变性、退火和延伸等步骤。 7. PCR反应:将PCR反应体系放入预热好的PCR仪中进行扩增。确保PCR仪设置正确,并且注意反应管或反应孔的密封,避免反应液挥发和污染。

pcr实验室流程

pcr实验室流程 PCR实验室流程 一、引言 PCR(聚合酶链式反应)是一种在实验室中常用的分子生物学技术,用于扩增DNA片段。PCR实验室流程是指在进行PCR实验时所需的步骤和操作。本文将详细介绍PCR实验室流程的各个环节。 二、实验前的准备工作 1. 提取DNA样本:从待检测的生物体中提取DNA,可以通过使用DNA提取试剂盒进行提取。 2. 设计引物:根据需要扩增的目标DNA片段的序列,设计合适的引物。引物应具有高度特异性,避免与其他非目标序列结合。 3. 制备PCR反应体系:根据所需扩增的目标DNA片段的大小和扩增效率,精确计算反应液中的各个组分的浓度。 三、PCR反应体系的配制 1. 选择合适的PCR反应管:PCR反应管应具有良好的热传导性能,以保证反应的均一性。 2. 加入引物:根据所设计的引物,向反应管中加入合适浓度的引物。引物的浓度应根据实验需要进行优化。 3. 加入模板DNA:向反应管中加入所提取的DNA模板。模板DNA的浓度应在合适范围内,过高或过低的浓度都会影响PCR反应的效果。 4. 加入PCR反应缓冲液:PCR反应缓冲液中含有适当的离子浓度和

pH值,以保证PCR反应的进行。 5. 加入dNTPs:向反应管中加入dNTPs,提供PCR反应所需的四种核苷酸单体。 6. 加入聚合酶:向反应管中加入高保真聚合酶,以保证PCR反应的准确性和高效性。 7. 加入辅助物质(如Mg2+):根据实验需要,向反应管中加入辅助物质,如Mg2+,以优化PCR反应的条件。 四、PCR反应的进行 1. 放入热循环仪:将配制好的PCR反应管放入热循环仪中,进行PCR反应。 2. 程序设定:根据实验需要,设定PCR反应的温度和时间参数。常见的PCR反应程序包括:变性步骤、退火步骤和延伸步骤。 3. 变性步骤:将PCR反应管加热至94-98℃,使DNA解旋成单链。 4. 退火步骤:将PCR反应管降温至引物的退火温度,使引物与目标DNA序列结合。 5. 延伸步骤:将PCR反应管升温至聚合酶的最适工作温度,使聚合酶沿模板DNA链合成新的DNA链。 6. PCR循环:重复2-5步骤,进行多轮PCR循环,以扩增目标DNA 片段。 五、PCR产物的分析 1. 凝胶电泳:将PCR反应体系中的产物进行凝胶电泳分析,以确定

PCR实验室标准操作规程SOP

目录 申报文件 一、临床基因扩增检验实验室技术验收申请表 二、《医疗机构执业许可证复印件》 三、拟设置基因扩增检验实验室医院的医疗卫生资源状况对临床基因扩增检验的需求情况以及实验室 运行的预测分析 四、拟设基因扩增检验实验室的设置平面图 五、实验室主要负责人简历表 六、实验室工作人员一览表 七、主要仪器设备表 八、拟开展的临床基因诊断项目 九、几点说明 质量手册 一、管理性程序: 程序文件的管理和维护 (1) PCR实验室管理制度 (2) 生物安全准则 (4) 实验室生物防护措施 (7) 实验室传染性废弃物管理制度 (9) PCR实验室的人员配置及管理制度 (12) PCR实验室的人员培训计划及措施 (14) PCR实验记录管理制度 (15) 惠安县医院PCR检验报告单保密制度 (17) 检验结果的传送管理制度 (19) 实验室的清洁制度 (20) 化学试剂的管理程序 (22) 实验室消耗品购买、验收和贮存程序 (23) 新项目审批程序 (25) 仪器设备的管理制度 (26) 仪器设备的使用制度 (28) 仪器设备的标准操作制度 (29) 仪器设备的维护保养程序和制度 (31) 仪器设备的校准制度 (34) 仪器设备发生故障的应急处理制度 (35) PCR检测的标本管理制度 (36) 二、检测项目操作程序: 标本、样本编号唯一性程序 (38) 临床标本的采集、运送和接收程序 (39) 临床标本的保存程序 (41) 临床标本的处理(核酸纯化)程序 (42) 核酸扩增及产物分析检测的标准操作程序 (43) I

消毒液的配制程序 (45) 室内质量控制操作程序 (46) 实验室室间质量评价的操作程序 (49) 试剂的质检操作程序 (50) 带滤塞吸头的质检操作程序 (52) 人员流动程序 (53) 抱怨处理程序 (54) 应急处理程序 (55) 生物污染废弃物处理标准操作程序 (57) 乙型肝炎病毒DNA-荧光定量PCR测定 (59) 沙眼衣原体DNA-荧光PCR测定 (61) 结核菌DNA-荧光定量PCR测定 (63) 三、仪器设备标准操作程序: GeneLight 9800实时跟踪荧光PCR仪操作程序 (66) Reactor4800加热仪标准操作程序 (67) FX 1200-Ⅱ- B2型生物安全柜操作程序 (68) SpanStar2418台式高速离心机标准操作程序 (70) 加样器的操作程序 (71) 医用低温冷冻冰箱标准操作程序 (73) 移动紫外灯操作程序 (74) 四、仪器设备维护保养程序 GeneLight 9800实时跟踪荧光PCR仪维护保养程序 (75) Reactor4800器加热仪维护保养程序 (76) FX 1200-Ⅱ- B2型生物安全柜维护保养程序 (77) SpanStar2418台式高速离心机的维护保养程序 (78) 医用低温冷冻冰箱保养程序 (79) XW-80A型旋涡混合器的保养程序 (80) 移动紫外灯维护保养程序 (81) 五、仪器设备校准程序: GeneLight 9800实时跟踪荧光PCR仪校准程序 (82) Reactor4800器加热仪校准程序 (83) FX 1200-Ⅱ- B2型生物安全柜校准操作程序 (84) 加样器的校准程序 (85) SpanStar2418台式高速离心机的校准程序 (87) 温湿度表的校准程序 (88) 六、附相关图表 附表001 送检标本接收记录表 附表002 送检标本拒收记录表 附表003 标本超低温保存及处置记录表 附表004 室内质量控制登记表 附表005 试剂验收记录表 附表006 试剂质检记录表 附表007 紫外灯强度监测表 附表008 消耗品验收记录表 附表009 消耗品质检记录表 II

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