检验标本采集运输指南
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前言
医学检验的目的就是对临床标本进行检测分析，为临床疾病诊断、治疗及疗效观察提供实验室依据。为确保实验结果的及时、准确、可靠，就必须保证分析前标本的质量，这就要求广大医护工作者及就诊患者了解各类标本采集、运输等方面的知识和要求。为此，医学检验科、护理部、感染管理科共同制订《检验标本采集运输指南》手册，供全院医务人员使用，以确保实验室分析前的标本质量，并真诚希望广大医务人员在使用本手册的过程中多提宝贵意见，以利于进一步的提高和完善。
宾阳县人民医院
检验科、护理部、感染管理科
2016年8月4日
目录
第一部分检验科各检测项目标本采集要求 (4)
第二部分检验标本采集运输要求 (5)
第三部分患者采血前的准备 (6)
第四部分检验标本采集运输作业指导书 (6)
一、静脉血液采集运输作业指导书 (6)
二、末梢血采集运输作业指导书 (8)
三、动脉血液采集运输作业指导书 (9)
四、尿液标本采集运输作业指导书 (10)
五、粪便标本采集运输作业指导书 (11)
六、前列腺液采集运输作业指导书 (11)
七、精液采集运输作业指导书 (12)
八、脑脊液标本采集运输作业指导书 (13)
九、浆膜腔积液（胸水）采集运输作业指导书 (14)
十、浆膜腔积液（腹水）采集运输作业指导书 (15)
十一、骨髓采集运输作业指导书 (16)
十二、临床微生物标本采集运输作业指导书 (18)
第五部分标本采集运输流程 (20)
第六部分检验标本的接收、拒收标准及流程 (21)
1 . 检验标本的接收标准: (21)
2 . 不合格标本拒收标准: (21)
3 . 检验标本接收流程: (22)
4 . 不合格标本拒收流程: (23)
第一部分检验科各检测项目标本采集要求
第二部分检验标本采集运输要求
1.标本采集要求
1.1采集标本时所需要的与生物安全防护水平相适应的设备。
执行标本采集的所有步骤都必须戴手套、穿工作服，需要的话，戴防护口罩和
防护眼镜。
1.2采集标本的人员为具有掌握相关专业知识和操作技能的工作人员。
执行采集标本的工作人员应具有国家承认的相应的资格，以保障标本采集的质
量和安全性。
1.3所有标本均应视为具有潜在感染性。使用过的采集工具应按相关规定严格处理，严禁外流。
1.4标本容器：
1.4.1标本容器可以是玻璃制品，或使用塑料制品。标本容器应当坚固，正确地用盖子或塞子盖好后应无泄漏。
1.4.2在容器外部不能有残留物。
1.4.3容器上应当正确地粘贴标签（标本信息条形码）以便于识别。
1.4.4各类标本要按项目选择相应的试管或容器，请参照“检验科各检测项目标本采集要求”表格内容来选择，标本不符合要求的，检验人员有权拒收。
1.5检验标本的采集必须严格按照本指南的操作规程进行，注意输液时不能在输液手臂的同侧抽血。
1.6采集标本所用材料的安全处置：
使用后的采血针、注射器针头等锐器物应当直接放入利器盒内进行安全处置，
禁止对使用后的一次性针头复帽，禁止用手直接接触使用过的针头、刀片等锐器物，
注射器针筒、棉签等其它医疗废物放入黄色医疗废物袋中，医疗废物和生活垃圾分
类收集存放。消毒毁形后的医疗废物必须交给指定的医疗废物处理厂，不得擅自废
弃。
2.标本运输要求
2.1所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。
实验室内所有送检的标本应使用符合安全的容器送检，容器应当符合防水、防
破损、防外泄等要求，容器外层应有可标识的部分。不能将泄漏的标本容器运至实
验室或进行标本处理。如果要继续进行标本处理，要通知医生关于容器泄漏的情况，
告知如继续操作可能对结果带来偏差，并要求重新送检。待接收新标本后，则对泄
漏的标本进行高压灭菌或消毒处理后按感染性废物处理。
2.2标本应置于安全、防漏的容器中运输。
所有标本应视为具有生物危害的物品，运输时标本应置于安全、防漏的容器中
运输，严防标本破损泄漏。运送标本时，应确认标本容器的盖子严密，避免标本外
溢造成污染。除血气分析外，不能将带针头的注射器直接送检，其内容物应移至无
菌管内或用保护性装置移去针头，重新盖上容器盖子后方可送检。全血、血清、血
浆等应使用专用一次性真空采血管采血；尿液、粪便、胸腹水等其它体液应置于专
用容器送检；做微生物学检验的标本应置于无菌管中送检，做厌氧菌检验的标本应
置于无菌厌氧管中送检，并避免污染。
第三部分患者采血前的准备
1.一般要求：病人在采血前24h内应避免运动和饮酒，不宜改变饮食习惯和睡眠习惯。静脉血标本采集最好在起床后1h 内进行。采血时间以上午7～9 时较为适宜。门诊病人提倡静坐15 分钟后再采血。
2.采血时间：有些血液成份日间生理变化较大，因此应相对固定采血时间，尤其是监测为目的时，更要保证标本采集时间的统一。一般以清晨空腹抽血为宜（急症项目除外）。
3.患者体位：有些血液成份存在立位与卧位之间的差异，为减少这种影响，抽血病人的体位应相对固定。一般采用坐位取血，而且抽血前应让病人有10 分钟的时间稳定自己的情绪及体位。
4.剧烈运动的影响：激动的情绪会影响到一些血液成份浓度的变化，抽血的当晨病人不宜做剧烈的运动，避免情绪激动，抽血前应有10分钟的休息。因运动能影响许多项目的测定结果。活动的影响可分暂时性和持续性两类。暂时性影响如使血浆脂肪酸含量减少；丙氨酸、乳酸含量增高。持续性影响，如激烈运动后使CK、LDH、ALT、AST 和GLU 等的测定值升高，有些恢复较慢，如ALT 在停止运动1h 后测定，其值仍可偏高30％～50％。
5.输液的影响：由于边输液边采血影响血液成份的测定，规定输液时应在输液的另一侧手臂抽血，应尽可能避免在输液的同时进行采血。
6.生活方式的影响：烟、酒、咖啡及高脂、高糖饮食，可使血液中某些成份高于正常，需与一般病理情况相区别，抽血前几日应注意避免。多数试验要求在采血前禁食12h，因为饮食中的不同成分可直接影响实验结果。
7.生理差别的影响：不同年龄组的个体及妇女的妊娠期、月经期，血液成份有一定的生理差异，应注意与病理情况区别。
8.葡萄糖耐量测定：试验前三天正常饮食，试验当日清晨空腹抽血2ml。将75克葡萄糖溶于300ml 温水中嘱病人在5分钟内一次服下，立即记录时间；然后分别在服糖后60、120、180分钟，各抽血2ml，注明管号、时间，立即送检。
9.注意药物的影响：很多药物（如咖啡因、冠心平、维生素C、避孕药等）入人体后可使某些检测项目结果增高或降低，故患者在检验前应尽可能停止服用对检
验结果有影响的药物（注意查看说明书）。血样采集应在不服药期间，如在早晨服药前。
第四部分检验标本采集运输作业指导书
一、静脉血液采集运输作业指导书
1.目的：抽取静脉血标本以做各项检验。
2.适用范围：适用于检验科做生化、免疫、血细胞分析、凝血、血液流变学、血沉、
血红蛋白分析、血培养等项目所需血液标本的采集。
3.物品准备：止血带、无菌棉签、复合碘消毒液、一次性采血针、负压真空管或血培养瓶、试管架、手消毒液、利器盒、手套、口罩等。
4.检验申请项目要求：
4.1 检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。
4.2 急诊检验申请需选带有“ST”标志的项目。
5.标本采集步骤：
5.1护士核对医嘱后，打印条形码并贴在采血试管上，采血前应核对患者姓名、床号、采血试管条形码等信息，明确检验项目，标本要求及需血量。
5.2向受检者解释操作目的，以取得合作。选择采血管，常用肘窝静脉、肘正中静脉、前臂内侧静脉，小儿可采用颈外静脉、大隐静脉。
5.3在穿刺部位肢体下放一次性垫巾、止血带。
5.4用茂康碘棉签消毒穿刺部位。
5.5在静脉穿刺部位上方6厘米处扎止血带，嘱受检者握紧拳头，使静脉充盈显露。5.6穿刺:推荐使用真空采血技术。摘掉静脉穿刺针上的保护套，进行静脉穿刺，穿刺成功后，用贴好标签的负压真空管采集静脉血，采血完毕，松开止血带，嘱受检者松拳，用棉签压住进针处，拔出针头，嘱采血对象按压5分钟，直到不再渗血。
5.7采血完毕后，产生的医疗垃圾按规定分类处理。
6.标本运输步骤：
6.1标本采集后应立即送检，住院患者检验标本必须在上午11：30 之前送达检验科，特殊新入院患者酌情延迟送检，急诊标本随抽随送。如受各种条件限制，不能立即送检，应将标本放置于阴凉、稳妥处，避免标本受热、破损，有必要时冷藏放置。
6.2标本运输前进行标本信息登记，以便检验科接收时进行核对。
6.3将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。
6.4标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。
7.注意事项：
7.1采血前应核对好患者姓名和检验项目，明确标本要求。选好采血管，采血管和采血量应参照“医学检验科各检测项目标本采集要求”表格内容。
7.2多项目检验时抽血顺序: ①有血培养时:血培养瓶→抗凝管（凝血项目→血细胞分析→血流变→血沉）→非抗凝管；②无血培养时:非抗凝管→抗凝管（凝血项目→血细胞分析→血流变→血沉）。
7.3抗凝管收集血标本后，立即将试管轻轻颠倒5～8 次，使血液与抗凝剂充分混匀，但不可用力震荡。
7.4一般生化、免疫检验用普通管（红色头盖）收集标本，采样量3～5ml。若检验项目较多，应适当增加采样量。
7.5血细胞分析检验用EDTA-K2（K3）抗凝管（紫色头盖）收集标本，采样量2-3 毫升。凝血四项、D2聚体（可用同一管血）用3.2%柠檬酸钠1:9 抗凝管（蓝色头盖）收集标本，采样量必须准确到刻度。血沉用3.2%柠檬酸钠1:4 抗凝管（黑色头盖）收集标本，抽血1.6ml。血液流变检查用肝素抗凝管（绿色头盖）抽血，必须抽足5ml。
7.6采集血培养标本时尽量减少接触空气时间。血液培养的样品要采用无菌技术，防止污染。
7.7特别注意采血不能在输液的同侧进行，更应杜绝在输液管内采血，因输液成分会影响检测结果(使相应的结果偏高，如输K+、Glu 时，可使所测K+、Glu 明显增高)，或使血液稀释结果偏低。
7.8标本溶血常见原因:采血不熟练；注射器血急速注入试管；试管混匀用力过猛；从已有血肿的静脉采血；采血量不足后二次采血；穿刺处所用消毒液未干；注射器和针头连接不紧采血时空气进入产生气泡；采血用针头过细；静脉穿刺不顺利等原因均会引起溶
血，溶血会影响部分检测项目的准确性。
7.9采静脉血时止血带压迫静脉时间不宜过长，以不超过40秒为宜，否则容易引起淤血、静脉扩张，并且影响某些指标的检查结果，如乳酸升高、pH 值降低、K+、Ca2+、肌酸激酶升高等。
7.10避免食物的影响：用餐后，血糖、血脂结果明显升高，故一般应空腹抽血。有些食物成分如高蛋白、高脂及饮食可引起血中蛋白、血脂、尿酸增高；香蕉、咖啡等可引起尿中儿茶酚胺代谢产物的测定等。
7.11药物影响：如异烟肼、庆大毒素、氨芐青毒素可使谷丙转氨酶活性增高，咖啡因可使胆红素增加。因此，建议检查前几天就停止使用有干扰的药物，血样采集应在不服药期间。
8.附加检验项目申请：标本采集送出后如需附加检验项目的，应在标本送检当天提出申请（可先电话通知），并补送附加的检验项目信息条形码到实验室。
9.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知送检者（或送检科室）重新采样检验。
二、末梢血采集运输作业指导书
1.目的：采集末梢血标本以做血细胞分析检验或血糖（干化学）等。
2.适用范围：用于各种微量法检查或床旁检测。
3.物品准备：一次性采血针、75%酒精、无菌棉球、微量采血吸管、(EDTA-K2
抗凝管)、试管架、手消毒液、利器盒、编号笔、手套、口罩等。
4.检验申请项目要求：
4.1检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。
4.2急诊检验申请需选带有“ST”标志的项目。
5.标本采集步骤：
5.1患者拿就诊指引单到检验科临检室，打印标本信息条形码；采血前应核对患者姓名、标本信息条形码内容，明确检验项目，标本要求及需血量；向受检者解释操作目的，以取得合作。
5.2采血前，采血医务人员彻底清洗和干燥双手，或使用一次性手套。
5.3受检者洗净双手，可反复揉搓准备采血的手指（常选择无名指），直至血运丰富；针刺前，应让手臂下垂10～15 秒，使指尖充血，毛细血管充盈。
5.4用75%的酒精棉球消毒待检手指指腹，待干。
5.5采血者用拇指顶紧要被采血的指间关节,再用采血针紧挨指腹，在指尖一侧刺破皮肤。
5.6刺破皮肤后让血液自然流出，用消毒棉球轻拭去第一滴后，轻轻推压手指两侧血管至指前端三分之一处，让血慢慢溢出，不要过分挤压，以免组织液挤出与血标本相混而造成检测结果偏差。
5.7做血细胞分析时将血液收集在0.5 毫升离心管(EDTA-K2 抗凝管)，盖好离心管，轻弹底部混匀。做血糖（干化学）检测时，按相关检测规程操作。
5.8用干棉签压住穿刺部位，嘱采血对象按压2～3 分钟，到不出血为止。
6.标本运输步骤：
末稍血标本主要用于门诊血细胞分析检验或床旁血糖（干化学）检测，一般不需要运输。如要运输到其他地方检验则应该在标本采集后应立即送检，如受各种条件限制，不能立即送检，应将标本放置于阴凉、稳妥处，避免标本受热、破损，有必要时冷藏放置。
7. 注意事项：
7.1采血前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。
7.2血细胞分析用EDTA-K2（K3）抗凝管收集血标本后，盖好离心管，轻弹底部混匀，使血液与抗凝剂充分混匀。
7.3除特殊情况外，不要在耳垂采血。婴幼儿可自拇指或足跟两侧采血。烧伤患者可根据情况选用皮肤完整的肢体末端。采血部位应无炎症或水肿。末梢采血不可用力挤压。
8.其它：如分析失败，分析原因并告知受检者重新采样检验。
三、动脉血液采集运输作业指导书
1.目的：抽取动脉血标本，主要用做血气分析。
2.适用范围：适用于血气分析所需血液标本的采集。
3.物品准备：止血带、无菌棉签、复合碘消毒液、专用血气分析采样注射器、手消毒液、利器盒、手套、口罩等。
4.检验申请项目要求：
4.1检验申请项目必须按检验系统内可选的项目进行申请。
4.2急诊检验申请需选带有“ST”标志的项目。
5.标本采集步骤：
5.1护士核对医嘱后，打印条形码并贴在专用血气分析采样注射器上，采血前应核对患者姓名、床号、标本信息条形码内容等信息，明确检验项目，标本要求及需血量。向受检者解释操作目的，以取得合作。
5.2选择血管，首先是桡动脉、肱动脉、足背动脉，必要时股动脉。
5.3用茂康碘棉签消毒穿刺部位。
5.4选择动脉搏动最强处45度或90度进针。
5.5穿刺：
5.5.1旋紧持针器上的针头，摘掉穿刺针上的保护套，试穿刺针是否通畅。
5.5.2进行动脉穿刺，穿刺成功后，采集动脉血1～1.5ml，用棉签压住进针处，拔出针头，嘱采血对象按压5～10分钟，直到不再渗血。
5.6抽出后立即用一橡皮头封闭针头，隔绝空气，将注射器置于手中反复旋转搓动即达抗凝。
5.7在注射器上贴好样本信息条形码以做识别，条形码要粘贴正确，打印清楚，能够通过扫描仪扫描接收。
6.标本运输步骤：
6.1标本采集后应立即送检。
6.2标本运输前进行标本信息登记。
6.3将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到ICU。
6.4 标本运送到ICU后，由工作人员对标本进行核对接收。
7.注意事项：
7.1 采血前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。
7.2 采血中注意隔绝空气，否则因空气中的氧分压高于动脉血，二氧化碳分压低于动脉血，从而使血液中pO2 及pCO2 发生都改变而无测定价值。
7.3 立即送检，如暂时不能立即送检，应放入2～8℃冰箱中冷藏，但最迟不能超过半小时必须送检，否则血细胞继续新陈代谢，影响数据准确。
7.4 若必须静脉采血，可将手及前臂浸人45℃温水中20 分钟，使局部静脉血动脉化，穿刺时勿用压脉带，只能缓缓吸引。
8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知送检科室重新采样检验。
四、尿液标本采集运输作业指导书
1.目的：采集尿液标本以做尿液常规、生化检验。
2.适用范围：适用于检验科做尿液常规、尿HCG、生化等项目所需尿液标本的采集。
3.物品准备：一次性尿杯、试管、编号笔。
4.检验申请项目要求：
4.1检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。
4.2急诊检验申请需选带有“ST”标志的项目。
5.标本采集步骤：
5.1护士核对医嘱后，打印条形码；向受检者讲解标本留取方法及注意事项，以取得合作。门诊患者需拿项目指引单到检验科一楼条形码打印处，打印标本信息条形码。
5.2发一次性尿杯给受检者（门诊患者到6号窗领一次性尿杯），嘱受检者留取新鲜尿液标本，以清晨第一次中间段尿为宜。
5.3受检者按要求自己用一次性尿杯留取半杯尿（至少15ml），把标本放在指定存放区域。
6.标本运输步骤：
6.1标本采集后应立即送检，住院患者检验标本必须在上午11：00 之前送达医学检验科，特殊新入院患者酌情延迟送检，急诊标本随留随送。如受各种条件限制，不能立即送检，应将标本放置于阴凉、稳妥处，但从留取至送检时间不宜超过2 小时。
6.2标本运输前进行标本信息登记以便检验科接收人员核对接收。
6.3将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。
6.4标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。
7.注意事项：
根据检测项目不同，尿液标本留取方法可分为晨尿、随机尿、清洁中段尿等。
7.1晨尿：为住院病人留尿的主要方法，早晨起床后收集第一次尿，该标本为浓缩尿，其细胞和管型等形态完整，适合做尿常规检查，但留取至送检时间不宜超过2小时（尽量留取新鲜尿液为宜）。
7.2随机尿：多为门诊和急诊病人的留尿检验方法，结果易受多种因素影响。应留取新鲜尿液置清净、干燥容器中立即送检（静脉滴注大剂量青霉素、VitC 时可影响尿蛋白、尿糖及尿隐血结果，应尽量避免）。
7.3清洁中段尿：用于尿培养检测，使用容器必须为无菌容器（由微生物实验室提供）。尿液留取时，前段尿弃去，留取中段尿于无菌容器（试管）中送检。
7.4采集尿液标本应避免阴道分泌物、精液、粪便等污染，还应注意避免烟灰、纸屑等异物混入。标本留取后应及时送检，以免细菌繁殖、细胞溶解或被污染等。
7.5采集尿标本的容器应为清洁、干燥、有较大开口的一次性容器，患者从家里自留标本的容器必须无干扰化学物质(如表面活性剂、消毒剂)混入，不可使用未经洗涤的装药物或试剂的器皿收集标本。
7.6尿妊娠试验一般应取空腹晨尿送检。
8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原
因并告知送检者（或送检科室）重新采样检验。
五、粪便标本采集运输作业指导书
1.目的：采集粪便标本以做粪便常规和其他检验。
2.适用范围：适用于医学检验科做粪便常规和其他检验项目所需粪便标本的采集。
3.物品准备：专用一次性杯或试管、编号笔。
4.检验申请项目要求：
4.1检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。
4.2急诊检验申请需选带有“ST”标志的项目。
5.标本采集步骤：
5.1护士核对医嘱后，打印条形码；向受检者讲解标本留取方法及注意事项，以取得合作。门诊患者需拿项目指引单到检验科一楼条形码打印处，打印标本信息条形码。
5.2发一次性杯或试管一个给受检者，嘱受检者留取粪便标本一小时内送检。
5.3受检者按要求自己用一次性杯或试管留取粪便标本，把标本放在指定存放区域。
6.标本运输步骤：
6.1标本采集后应立即送检，住院患者检验标本必须在上午11：00 之前送达检验科，特殊新入院患者酌情延迟送检，急诊标本随留随送。如受各种条件限制，不能立即送检，应将标本放置于阴凉、稳妥处，但从留取至送检时间不宜超过2小时。
6.2标本运输前进行标本信息登记，以便实验室工作人员核对接收。
6.3将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。
6.4标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。
7.注意事项：
7.1采集粪便标本的方法因检查目的不同而有差别，粪便常规检验留取新鲜的自然排出的粪便3～5g（指头大小），并注意选取粪便的病理成份，如粘液、血液（红色或黑色部份）；若无病理成分，可各部位取材。
7.2取标本时应注意粪便的颜色与外观，如有异常应向医生叙述。采取标本后及时送检，否则可因PH 及消化酶等影响，而使粪便中细胞成分破坏分解。
7.3不应留取尿壶或便盆中的粪便标本。若标本中混入尿液，可导致某些项目检测结果出现错误。粪便标本中也不可混入植物、泥土、污水等异物，易混淆实验结果。不应该从卫生纸或衣裤、纸尿裤等物品上留取标本，不能用棉签有棉絮端挑取标本。
7.4粪便标本应不污染容器外表，应避免使用能吸收水份的容器。
7.5细菌检查的粪便标本应收集于灭菌封口的容器内，勿混入消毒剂及其它化学药品。
7.6稳血（或称潜血，OB）试验，应嘱患者收集标本前3天禁食动物性食物。服用铁剂、铋剂、动物血液及绿叶蔬菜等可影响隐血测定应注意避免。
7.7隐血实验标本选取外表及内层粪便，连续检查3 天，以免误诊，因为口腔黏膜及牙龈出血都可造成稳血试验阳性。
7.8无粪便而又必须检查时可经肛门指诊获取粪便。灌肠后的粪便常因过稀及混有油滴等而不适于作检查标本。
8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知送检者（或送检科室）重新采样检验。
六、前列腺液采集运输作业指导书
1.目的：留取前列腺液标本以做各项检验。
2.适用范围：适用于检验科做前列腺液分析各项目所需标本的采集。
3.物品准备：洁净玻片或试管。
4.检验申请项目要求：
检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。
5.标本采集步骤：
5.1采样者查对检验申请项目、姓名，向受检者解释操作目的、注意事项，以取得合作。
5.2由临床医生采用前列腺按摩术，采集前列腺液于清洁玻片上（或容器内），第一滴弃去，立即送检。
5.3门诊患者需拿项目指引单到检验科一楼条形码打印处，打印标本信息条形码；
住院患者在送检标本时需附带标本信息条形码，条形码要打印清楚，能够通过扫描仪扫描接收。
6.标本运输步骤：
6.1标本应立即送检，涂片标本避免干燥。
6.2标本运输前进行标本信息登记以便检验科工作人员核对接收。
6.3将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。
6.4标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。
7.注意事项：
7.1前列腺液标本应由临床医师进行前列腺按摩术采集，可直接滴在玻片上；若按摩不出前列腺液，可检查按摩后的尿液。做培养用的标本应用无菌管采集。
7.2疑为前列腺结核、脓肿或肿瘤的患者禁忌前列腺按摩。
7.3一次按摩失败或检查结果阴性，而明确有临床指征者，可隔3～5 天后重新复查。
8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知送检者，必要时重新采样检验。
七、精液采集运输作业指导书
1.目的：留取精液标本以做各项检验。
2.适用范围：适用于检验科做精液分析各项目所需精液标本的采集。
3.物品准备：专用洁净一次性尿杯。
4.检验申请项目要求：检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。
5.采集操作步骤：
5.1查对检验申请项目、姓名，向受检者解释操作目的、注意事项，以取得合作。
5.2发一次性尿杯一个给受检者，自己采用手淫法取精液盛于尿杯内，送交检验室待检，样本送检时需附带样本信息条形码，条形码要打印清楚，能够通过扫描仪扫描接收；门诊患者需拿项目指引单到检验科一楼条形码打印处，打印标本信息条形码。
6.标本运输步骤：
6.1留取标本后应立即送检，最迟存放不能超过半小时。如天气寒冷，应使标本保存于接近体温条件下送检。
6.2标本运输前进行标本信息登记，以便检验科工作人员核对接收。
6.3将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。
6.4标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。
7.注意事项
7.1精液采集最好在实验室附近，室温应控制在20～35℃，30分钟内送检，采集标本前禁欲3～7 天，采集精液前排净尿液。
7.2可用手淫法或其它方法，将一次射出的全部精液直接排入洁净、干燥的容器内。不能使用避孕套采集精液标本，避免避孕套中含有的某些杀死或抑精子活性的物质会影响检验结果。
7.3不能采用中断性交的方式采集精液标本，避免阴道分泌物影响检验结果。
7.4取出的精液必须全部盛于干净的容器内送检，以便准确报告精液量。
7.5因精子生成日间变动较大，不能仅凭一次检查结果做诊断。一般应间隔1～2周检查一次，连续检查2～3 次。
8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知送检者，必要时重新采样检验。
八、脑脊液标本采集运输作业指导书
1.目的：抽取脑脊液标本以做常规、生化、微生物学等项目检验。
2.适用范围：适用于本科做常规、生化、微生物检验的脑脊液标本采集。
3.物品准备：一次性垫巾、复合碘消毒液、2﹪利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱布、无菌棉签、骨髓穿刺针、手消毒液、利器盒、手套、口罩、载玻片，试管及无菌管等。
4.检验申请项目要求：
4.1检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。
4.2急诊检验申请需选带有“ST”标志的项目。
5.标本采集步骤：
5.1部位：
5.1.1以髂后上棘连线与后正中线的交点为穿刺点，相当于第3～4 腰椎棘突间隙，有时也可在上一或下一腰椎间隙进行。
5.2方法：
5.2.1患者侧卧于硬板床，背部与床面垂直，两手抱膝紧贴腹部，头向前胸屈曲，使躯干呈弓形，脊柱尽量后凸以增宽脊椎间隙。
5.2.2常规消毒，戴无菌手套，覆盖无菌洞巾，用2％利多卡因自皮肤到椎间韧带作局部麻醉。
5.2.3术者用左手固定穿刺皮肤，右手持穿刺针以垂直背部方向缓缓刺入，针尖稍斜向头部，成人进针深度约4～6 厘米，儿童约2～4 厘米。当针头穿过韧带与硬脑膜时，有阻力突然消失落空感，此时可将针芯慢慢抽出，即可见脑脊液流出。
5.2.4放液前先接上测压管测量压力，正常侧卧位脑脊液压力为70～180mmH2O 或40～50滴每分钟。可作Queckenstedt 试验，了解蛛网膜下腔有无阻塞。即在测初压后，由助手先压迫一侧颈静脉约10 秒，再压另一侧，最后同时压双侧颈静脉。正常压迫静脉后，脑脊液压力立即迅速升高一倍左右，解除压迫后10～20 秒，迅速降至原来水平，称为梗阻试验阴性，示蛛网膜下腔通畅。若压迫颈静脉后，不能使脑脊液压力升高，则为梗阻试验阳性，示蛛网膜下腔完全阻塞。若施压后压力缓慢上升，放松后又缓慢下降，示有不完全阻塞。颅内压增高者，禁作此试验。
5.2.5 撤去测压管，收集脑脊液2～5ml 送检；脑脊液应采集三管，第一管用于细菌培养
检查（无菌操作），第二管用于常规检查，第三管用于生化检查。
5.2.6术毕，将针芯插入后一起拔出穿刺针，覆盖消毒纱布，胶布固定。
5.2.7去枕平卧4～6 小时，以免引起术后低颅压头痛。
6.标本运输步骤：
6.1脑脊液标本采集后应立即送检，在标本管（瓶）上贴好标本信息条形码，条形码标本类型和实际送检标本类型必须一致；条形码要粘贴正确，打印清楚，能够通过扫描仪扫描接收。
6.2标本运输前进行标本信息登记，以便检验科工作人员核对接收。
6.3将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。
6.4标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。
7.注意事项
7.1脑脊液标本由临床医师行无菌穿刺术采集，标本采集前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。
7.2严格掌握禁忌症，凡疑有颅内压升高者必须先作眼底检查，如有明显视神经乳头水肿或有脑疝先兆者，禁忌穿刺。凡患者处于休克、衰竭或濒危状态以及局部皮肤有炎症，颅后窝有占位性病变者均列为禁忌。
7.3穿刺时患者如出现呼吸、脉搏、面色异常时，应立即停止操作，并作出相应处理。
7.4鞘内给药时，应先放出等量脑脊液，然后再等量置换性药液注入。
7.5采集标本时应注意避免混入血液，采集后立即送检(否则可出现细胞变性，标本凝集，细菌溶解)，化学检查标本宜用肝素抗凝。第二份作常规检查应避免凝固，必要时可用含有EDTA-K2 抗凝剂的试管收集。如做细菌培养，应在用药前采集无菌标本。
7.6收集标本后，必须立即送检。久置可致细胞破坏，葡萄糖分解，病原菌破坏或溶解。细胞计数标本应注意防止凝集。
7.7用于微生物检验的标本应注意保温，不可置冰箱保存。
8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知送检科室，必要时重新采样检验。
九、浆膜腔积液（胸水）采集运输作业指导书
1.目的：抽取浆膜腔积液（胸水）标本以做各项检验。
2.适用范围：适用于本科做常规、生化、免疫、微生物等项目所需的浆膜腔积液（胸水）采集。
3.物品准备：一次性垫巾、复合碘消毒液、2﹪利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱布、无菌棉签、胸腔穿刺针、一次性注射器、手消毒液、利器盒、样本瓶、无菌试管、编号笔、手套、口罩。
4.检验申请项目要求：
检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。
5.标本采集步骤：
5.1部位：
在胸部叩诊实音最明显的部位，一般取肩胛线或腋后线第7～8 肋间，有时也可取腋
中线第6～7 肋间或腋前线第5 肋间。
5.2方法：
5.2.1取坐位，两前臂置于椅背上，前额伏于前臂上；不能起床者可取半卧位，前臂上
举抱于枕部。
5.2.2常规消毒，拿无菌手套，覆盖无菌洞巾。
5.2.3用2﹪利多卡因在下一肋骨上缘的穿刺点自皮肤至胸膜壁层进行局部浸润麻醉。
5.2.4术者以左手食指和中指固定穿刺部位皮肤，右手将穿刺针的三通活栓转到与胸腔关闭处，再将穿刺针在麻醉处缓缓刺入，当针锋抵挡感突然消失时，将三通活栓转至与胸腔相通，进行抽液。注射器抽满后，转动三通活栓使其与外界相通，排出液体。如用较粗的长穿刺针代替胸腔穿刺针时，先将针座后连续的橡皮管用血管钳夹住，然后进行穿刺，进入胸腔后再接上注射器，松开止血钳，抽吸液体，抽满后再次夹住橡皮管，取下注射器，将液体注入弯盘，计量及送检, 作培养时应用无菌操作法留标本。
5.2.5 抽液结束后拔出穿刺针，覆盖无菌纱布，稍用力压迫片刻，用胶布固定后嘱患者静卧。
6.标本运输步骤：
6.1标本应立即送检，有条件的可低温条件2～8℃运输，微生物检验标本不应置于冰箱内，以免细菌死亡而使培养阴性。
6.2送检标本应在标本管上贴好标本信息条形码，条形码标本类型和实际送检标本类型必须一致；条形码要粘贴正确，打印清楚，能够通过扫描仪扫描接收。
6.3标本运输前进行标本信息登记，以便检验科工作人员核对接收。
6.4将扫描过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。
6.5标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。
7.注意事项：
7.1浆膜腔积液（胸水）标本由临床医师行无菌穿刺术采集，标本采集前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。
7.2手术前向患者说明穿刺目的，消除顾虑，精神紧张者，可于术前半小时给地西洋10mg，或可待因30mg以镇静止痛。
7.3术中密切观察患者反应，如有头晕、面色苍白、出汗、心悸、胸部压迫感等反应，或出现连续性咳嗽、气促等现象，应立即停止抽液，并皮下注射0.1％肾上腺素0.3～0.5ml或进行其他对症处理。
7.4一次抽液不应过多，诊断抽液50～100ml 即可；减压抽液，首次不超过600ml，以后每次不超过1000ml；如为脓胸，每次尽量抽尽。
7.5严格无菌操作，操作中防止空气进入胸腔。
7.6收集标本后，为防止细胞变性出现凝固或细菌破坏溶解等，必须立即送检。
8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知送检科室，必要时重新采样检验。
十、浆膜腔积液（腹水）采集运输作业指导书
1.目的：抽取浆膜腔积液（腹水）标本以做各项检验。
2.适用范围：适用于本科做常规、生化、免疫、微生物等项目所需的浆膜腔积液（腹水）采集。
3.物品准备：一次性垫巾、复合碘消毒液、2﹪利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱布、无菌棉签、胸腔穿刺针、一次性注射器、手消毒液、利器盒、样本瓶、无菌试管、编号笔、手套、口罩。
4.检验申请项目要求：检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。
5.标本采集步骤：
5.1 部位：
5.1.1左下腹脐与骼前上棘连线的中、外1/3 交点。
5.1.2脐与耻骨联合连线中点上方1.0 厘米，偏左或偏右1.5 厘米处。
5.1.3侧卧位，在脐水平与腋中线之延长线相交处。此处常用于诊断性穿刺。
5.1.4少量积液，尤其有包裹性分隔时，须在B 超指导下定位穿刺。
5.2方法：
5.2.1术前须排尿以防穿刺损伤膀胱。
5.2.2取坐位靠背椅上，衰弱者可取半卧位、平卧位或侧卧位。
5.2.3常规消毒，戴无菌手套，覆盖消毒洞巾，自皮肤至壁层腹膜以2％利多卡因作局部麻醉。
5.2.4术者左手固定穿刺皮肤，右手持穿刺针经麻醉处垂直刺入腹壁，待针尖抵挡感突然消失时，示针尖已穿过壁层腹膜，即可抽取腹水，计量并留样送检。诊断性穿刺，可直接用20ml或50ml注射器及适当针头进行；大量放液时，可用8号或9号针，并于针座接一橡皮管接容器。并留取标本送检,做培养时应用无菌操作法留标本。
5.2.5放液后拔出穿刺针，覆盖消毒纱布，以手指压迫数分钟，再用胶布固定。大量放液后，需束以多头腹带，以防腹压骤降。内脏血管扩张引起血压下降或休克。
6.标本运输步骤：
6.1标本应立即送检，有条件的可低温条件2～8℃运输，微生物检验标本不应置于冰箱内，以免细菌死亡而使培养阴性。
6.2送检标本应在标本瓶上贴好标本信息条形码，条形码标本类型和实际送检标本类型必须一致；条形码要粘贴正确，打印清楚，能够通过扫描仪扫描接收。
6.3标本运输前进行标本信息登记，以便检验科工作人员核对接收。
6.4将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。
6.5标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。
7.注意事项：
7.1浆膜腔积液（腹水）标本由临床医师行无菌穿刺术采集，标本采集前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。
7.2术中严密观察患者，如有头晕、心悸、脉搏增快及面色苍白等，应立即停止操作，并做适当处理。
7.3放液不易过快、过多，肝硬化患者一次放液一般不超过3000ml，过多放液可诱发肝性脑病和电解质紊乱。
7.4放腹水时若流出不畅，可将穿刺针稍作移动或稍变换体位。
7.5术后嘱患者平卧、并使穿刺针孔位于上方以免腹水漏出。
7.6放液前、后均应测量腹围、脉搏、血压、检查腹部体征，以观病情变化。
7.7有肝性脑病先兆，结核性腹膜炎粘连包块、包虫病及卵巢囊肿者禁忌穿刺。
7.8收集标本后，为防止细胞服变性出现凝固或细菌破坏溶解等，必须立即送检。
8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知送检科室，必要时重新采样检验。
十一、骨髓采集运输作业指导书
1.目的：抽取骨髓标本以做骨髓细胞学检查。
2.适用范围：适用于本科做骨髓细胞学检查的骨髓标本采集。
3.物品准备：一次性垫巾、复合碘消毒液、2﹪利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱布、无菌棉签、骨髓穿刺针、手消毒液、利器盒、手套、口罩、载玻片等。
4.检验申请单填写要求：
4.1检验申请单必须用钢笔或签字笔进行填写，使用正楷字，字迹清楚，不得涂改，如需改动，只能在改动处进行划改，不能在原字上涂改使原字迹模糊或消失。
4.2填写内容包括：
4.2.1一般信息: 受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、申请医生或采样者签名等。
4.2.2其他检查结果：血常规检查结果（必填）；影像学检查结果；B 超检查结果等。
5.标本采集步骤：
5.1 部位：
5.1.1骼前上棘穿刺点，在骼前上棘后1～2 厘米。
5.1.2髂后上棘穿刺点，位于骶椎两侧，臀部上方突出的部位。
5.1.3胸骨穿刺点，位于胸骨柄或胸骨体相当于第1、2 肋间隙位置。
5.1.4腰椎棘突穿刺点，位于腰椎棘突突出处。
5.2方法：
5.2.1常规消毒，戴无菌手套，覆盖无菌洞巾，用2％利多卡因作局部皮肤，皮下及骨膜麻醉。
5.2.2将穿刺针固定器固定在适当的长度(胸骨穿刺约1.0 厘米处，髂骨穿刺约1.5 厘米处)。用左手食指和中指固定在穿刺部位，以右手持针向骨面垂直刺入(胸骨穿刺则应保持针体与骨面成30°～40°角)，当针尖接触骨质后则将穿刺针围绕针体长轴左右旋转，缓缓钻刺骨质，当感到阻力消失，且穿刺针已固定在骨内时，表示已进入骨髓腔。
5.2.3拔出针芯，放于无菌盘内，接上干燥的10ml 或20ml 注射器，用适当力量抽取，即有少量红色骨髓液进入注射器中，骨髓吸取量以0.1～0.2ml 为宜。
5.2.4将抽取的骨髓液滴于一载玻片上，再均匀推6～8 张涂片，送检细胞学检查。
5.2.5抽吸完毕，将针芯重新插入；左手取无菌纱布置于针孔处，右手将穿刺针连同针芯一起拔出，随即将纱布盖于针孔上，并按压1～2 分钟，再用胶布固定纱布。
6.标本运输步骤：
6.1标本应立即送检，涂片标本如需暂时保存，须用95%酒精固定。送检时需附带填写详细的申请单，骨髓涂片及标本盒应标注有标本信息。
6.2标本运输前进行标本信息登记，以便检验科工作人员核对接收。
6.3将扫描过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。
6.4标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。
7.注意事项：
7.1骨髓标本由临床医师行无菌穿刺术采集，标本采集前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。
7.2术前应作出凝血检查，有出血倾向者操作进应特别注意，血友病者禁忌。
7.3注射器及穿刺针必须干燥，以免发生溶血。
7.4穿刺针头进入骨质后，避免摆动过大，以免折断；胸骨穿刺不可用力过猛，以防穿透内侧骨板。抽取液量如作细胞形态学检查不宜过多；如怀疑有败血症，则于涂片后，再接上注射器抽取骨髓液1.0ml 送骨髓培养。骨髓液抽取后应立即涂片，否则会很快凝固，使涂片失败。
8.其它：如果采取骨髓时不顺，骨髓涂片混入过多外周血无法诊断时应告知送检科室，必要时重新采样检验。
十二、临床微生物标本采集运输作业指导书
1.目的：采集标本以做临床微生物检验。
2.适用范围：适用于本科做临床微生物项目所需标本的采集。
3.物品准备：无菌试管、血培养瓶等。
4.检验申请项目要求：
检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。
5.各类微生物培养标本的采集：
5.1血液培养标本的采集：
首先打开瓶上的小塑料盖，再用75%酒精消毒瓶顶部，严格以无菌操作抽取血液，精确而迅速地将标本注入血培养瓶内，并轻轻摇匀，以防凝固，血液量应相当于培养液的十分之一，一般成人以5～10ml 为宜；儿童以2～5ml 为宜；为提高检出率，应在病人用药前或发热高峰时采取标本。
5.2尿液培养标本采集：
一般采集中段尿，嘱患者睡前少喝水或不喝水，清晨起床后用肥皂水及温开水洗外阴部及尿道口，女性应分开大阴唇，男性应上翻包皮，仔细清洗，用无菌纱布拭干，令其排尿，开始排出之尿弃去，而后采集中段尿约10ml 于无菌杯内立即送检。
5.3粪便培养标本采集：
一般细菌培养，挑取粪便粘液、脓血部分，液态便应挑取絮状物。难以获得粪便或排便困难患者及幼儿可采取直肠拭子，将棉棒用生理盐水或甘油缓冲盐水湿润，之后插入肛门内4～5cm(幼儿2～3cm)，轻轻转动一圈取出。标本留取后，应及时送检；防止尿液混入，以防降低检出阳性率。特殊培养应与实验室联系，按有关规定留取标本。
5.4痰液标本的采集：
5.4.1采集痰液标本以清晨为好，嘱患者先用温开水漱口数次，以除去口腔内大部分杂菌，然后用力咳出气管深部的痰液一口，吐入无菌痰杯内，立即送检。痰咳出困难时可先雾化吸入NaCL 溶液(100g／L，加温到45℃)使痰容易咳出。
5.4.2小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将拭子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起
咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在拭子上即可送检。
5.5脓液及创面分泌物标本的采集：
5.5.1采取病灶处标本时，应尽量揩去病灶表面的污染菌，以免影响检验结果。用无
菌棉拭采取脓液及病灶分泌物于无菌培养管内送检，亦可用无菌手术采取组织碎片送检。
5.5.2脓样标本，最好用无菌注射器抽取脓液，打入无菌培养管内送检，如行切开排
脓亦可以用无菌棉拭采取标本送检。
5.6咽喉、鼻、耳、眼分泌物标本的采集：
以无菌棉拭采取患者喉部或鼻、耳、眼部分分泌物，立即送检。采集标本时应尽量
勿使棉拭接触唾液及口腔其他部位的粘膜，以防唾液的抑菌作用和杂菌污染。
5.7泌尿生殖道标本的采集：
5.7.1尿道分泌物：清洗尿道、采取尿道、溢出的脓性等分泌物，或用无菌拭子插入
尿道2～4cm 处轻轻转动后取出，置无菌试管中送检。
5.7.2阴道、宫颈分泌物：由妇产科医师通过阴道扩张器，用灭菌拭子采取阴道口或
宫颈管1～2cm 处分泌物，置无菌试管中送检。
5.7.3前列腺液：清洗尿道后用前列腺按摩法采取前列腺液于无菌容器内送检。
5.7.4溃疡分泌物：灭菌生理盐水溶液清洗患处，用无菌拭子取其边缘或基底部的分
泌物，置无菌试管中送检。
6.标本运输：
6.1所有标本采集后应立即送检，标本不应置于冰箱内存放，以免细菌死亡而使培养阴性。
6.2所有要送检的标本必须贴有样本信息条形码，条形码标本类型和实际送检标本类型必须一致；条形码要粘贴正确，打印清楚，能够通过扫描仪扫描接收。
6.3标本运输前进行标本信息登记，以便检验科工作人员核对接收。
6.4将扫描过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。
6.5 标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。
7.注意事项：
7.1微生物检验样本必须按要求采集转运，否则将影响检查结果。
7.2严格遵守标本采集的无菌操作流程，防止污染菌污染标本，造成结果的误差，误导临床的诊断。
7.3某些标本离体极易死亡，采集后应立即保温送至实验室检验。室温放置或延迟送检，可使检出的阳性率降低；不能使用冷藏的标本检验。
7.4厌氧菌标本采取必须隔绝空气，混入空气的样本影响检验结果，不能使用。
7.5尽量在抗生素应用前采集标本，以提高阳性检出率和避免漏检。如已用药，则应选血液药物浓度最低水平时采样。
7.6痰标本应尽量留取清晨第一口痰，不可吐入唾液（仅是唾液，无送检意义）。注意在留痰之前不要打开和接触容器内层以免污染，标本留取后立即将容器盖好并及时送检。
7.7阴道、宫颈分泌物标本采样应在非月经期进行，采样前3 天内不使用阴道内药物，不冲洗阴道，24小时内不应有性行为。
7.8采集标本的容器必须经灭菌处理，但不可用消毒剂。
8.其它：如分析失败，分析原因并告知受检者重新采样检验。
第五部分标本采集运输流程
检验标本采集运输指南
封面
前言 医学检验的目的就是对临床标本进行检测分析，为临床疾病诊断、治疗及疗效观察提供实验室依据。为确保实验结果的及时、准确、可靠，就必须保证分析前标本的质量，这就要求广大医护工作者及就诊患者了解各类标本采集、运输等方面的知识和要求。为此，医学检验科、护理部、感染管理科共同制订《检验标本采集运输指南》手册，供全院医务人员使用，以确保实验室分析前的标本质量，并真诚希望广大医务人员在使用本手册的过程中多提宝贵意见，以利于进一步的提高和完善。 宾阳县人民医院 检验科、护理部、感染管理科 2016年8月4日
目录 第一部分检验科各检测项目标本采集要求 (4) 第二部分检验标本采集运输要求 (5) 第三部分患者采血前的准备 (6) 第四部分检验标本采集运输作业指导书 (6) 一、静脉血液采集运输作业指导书 (6) 二、末梢血采集运输作业指导书 (8) 三、动脉血液采集运输作业指导书 (9) 四、尿液标本采集运输作业指导书 (10) 五、粪便标本采集运输作业指导书 (11) 六、前列腺液采集运输作业指导书 (11) 七、精液采集运输作业指导书 (12) 八、脑脊液标本采集运输作业指导书 (13) 九、浆膜腔积液（胸水）采集运输作业指导书 (14) 十、浆膜腔积液（腹水）采集运输作业指导书 (15) 十一、骨髓采集运输作业指导书 (16) 十二、临床微生物标本采集运输作业指导书 (18) 第五部分标本采集运输流程 (20) 第六部分检验标本的接收、拒收标准及流程 (21) 1 . 检验标本的接收标准: (21) 2 . 不合格标本拒收标准: (21) 3 . 检验标本接收流程: (22) 4 . 不合格标本拒收流程: (23)
临床检验标本采集手册
临床检验标本采集手册 芜湖县中医院检验科 临床检验标本采集指南及注意事项临床检验标本采集与处理问题已普遍引起了人们得重视、芜湖县中医院检验科每年参加省临床检验中心得室间质评活动,并取得较好成绩。为做到临床检验质量保证,必须做到对实验检查得全过程进行全面得质量控制与质量管理。这里包括:实验前(分析前)、实验中(分析中)与实验后(分析后)三个阶段得质量控制,其中实验前质量控制尤其重要、分析前质量管理就是一个最薄弱得环节,试验误差中60～70%来自实验前,而且实验前误差就是仪器、试剂、质控品与标准品等再好也无法解决得。实验前质量控制主要包括:⑴病人准备⑵标本采集⑶标本保存与运送⑷标本处理等。 一、病人准备 １.患者得状态: 一般需在安静状态下采集标本,如患者处于激动、兴奋、恐惧状态时,可使血红蛋白、白细胞增高。运动后,由于能量消耗、体液丢失、剧烈呼吸,可造成许多检验结果得变化,如谷丙转氨酶、谷草转氨酶、乳酸脱氢酶、肌酸激酶等一时升高,还可引起血中钾、钠、钙、白蛋白、血糖等成分得变化。 2. 患者得饮食: 2.１多数试验要求空腹采血(空腹12小时左右),最好就是早晨空腹采血。研究表明,餐后血液中GLU、TG、ＡLT、ＡＬP、BUN、Nａ等均可升高。进食高蛋白或高核酸食物,可引起血中尿素(Ｕreａ)及尿酸(UA)得增高;进食高脂肪食物,可引起ＴＧ得大幅度增高。餐后采集得血液样本,其血清常出现乳糜状,影响到许多检验测定得正确性、一些饮料如咖啡,也可使淀粉酶(AＭＹ)、促甲状腺素(ＴSＨ)等升高。 2、2 禁食过久也会影响检测结果、通常血糖浓度呈下降趋势;胆红素清除速率降低,引起血清胆红素浓度上升。绝食状态下脂肪酸与酮酸成为肌肉能量来源,因此血清中酮体、脂肪酸与甘油得浓度会显著增加、禁食4８小时后,血清甘油三酯增加２0%,此后又会下降。绝食使血清尿酸盐浓度显著上升。身体饥饿时醛固酮分泌增加,尿排钾增加引起血清钾降低。
检验科标本采集运送手册
检验标本的采集运输指南 一、医生申请 ?遵循有效性、时效性、经济性的原则正确填写相应的检验申请单?申请单内容包括：姓名、性别、年龄、住院号、科别、床号、临床诊断、标本种类、申请医师姓名、日期、检验项目 ?临床医生正确填写申请单，字迹清晰 二、患者采集前准备 ?患者状态：一般要求处于安静、休息状态，晨起是大部分标本采集的最佳时间。 ?饮食：多数试验要求采血前禁食8-12h ，饮食中的不同成分可直接影响检验结果。餐后血液中ALT、GLU、BUN、Na+等均可升高 ?药物：化学影响和物理影响 三、标本采集 1血液标本的采集注意事项 ?尽量采集早晨7-9时的空腹血。 ?采血管上正确标明患者的姓名、住院号、科别等信息，切勿混淆。?采静脉血避免止血带结扎过久，结扎时间过久可导致某些指标产生变化，如血浆总蛋白、胆固醇、胆红素等
?避免溶血，溶血影响多项检测项目的结果，会使血清中钾、ALT、AST、LDH等升高，钠、氯、钙等降低。 ?要特别注意不能在输液的同侧采血，更应杜绝在输液管内采血。?输注脂肪乳，6小时内影响检验结果。 ?采血后立即颠倒混匀，避免剧烈震荡。 2、常规尿液标本的采集 ?晨尿：即清晨第一次尿，适合住院病人，较浓缩、条件恒定，能真实地反映肾脏病情况。 ?随机尿：适于门诊、急诊病人，但受多种因素的影响，有形成分的浓度较低。 ?24h尿：适于代谢产物24h定量测定，如尿蛋白、钠、钾、等。应准确的收集24h尿液送检，根据检验目的加入适当防腐剂。 尿液标本的采集、送检注意事项 ?在容器上标明患者姓名、住院号等信息 ?收集尿标本的容器必须清洁、干燥，防止混入异物 ?尿常规与一般定性检查留取量至少要在尿标本收集管的中间刻度线以上。 ?尿常规标本应尽量在1小时内送检；尿液红细胞形态标本尽量在2小时内送检；其它项目标本应在留取后尽快送检，不能超过4小时。 3、粪便标本的采集 ?在容器上标明患者姓名、住院号等信息
临床检验标本采集、运输、保存操作规程
临床检验标本采集、运输、保存操作规程 目录 第一章、体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 二、阴道分泌物标本采集、运输 三、精液标本采集、运输、保存 四、粪便采集、运输、保存 第二章、血液一般检验的标本采集、运输、保存操作规程 一、未梢血标本采集 二、静脉血采集、运输、保存 第三章、生化检验标本采集、运输、保存操作规程 前言 在临床工作中，检验标本的分析结果是临床医生诊断疾病、制订治疗方案的重要依据，而标本采集及送检工作的合格与否直接影响检验结果的真实性，进而影响疾病的诊治工作。为了进一步提高检验结果的准确性和可靠性，除了要求检验科提高检验质量水平外，还要求临床医护人员正确采集标本。为确保标本的正确采集、运输和保存，检验科特编写了临床检验标本采集、运输、保存操作规程，要求医护人员严格按操作规程采集、运输和保存标本。 第一章体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 （一）检查项目 1．尿液干化学测定：尿液比重、pH 值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、亚硝酸盐、葡萄糖、抗坏血酸。 2．尿液有形成份检测：包括红细胞及白细胞形态等。
3．其它：尿HCG、尿液红细胞显微镜形态分析。 （二）标本采集 【容器及采样量】 门诊病人由检验科提供专用塑料尿杯，采样量20-30ml。住院病人使用清洁容器取尿，再将尿液倒入专用的试管内，量约5-10ml。24小时尿液收集于清洁容器中，如小的带盖的塑料桶。 【标本种类及适用人群或项目】 （1）晨尿 即清晨起床后的第一次尿标本，为较浓缩和酸化的标本，血细胞、上皮细胞及管型等有形成分相对集中且保存得较好。门诊患者可采集清晨第二次尿标本。适用：住院病人、可疑或已知泌尿系统疾病的动态观察及早期妊娠试验等。 （2）随机尿（随意一次尿） 即留取任何时间的尿液。本法留取方便，但易受饮食、运动、用药等影响，可使低浓度或病理临界浓度的物质和有形成分漏检，也可能出现饮食性糖尿或药物如维生素C等的干扰。适用：门诊和急诊病人。 （3）其他 包括留取中段尿（女病人易受阴道分泌物污染，应采集中段尿）、导尿、耻骨上膀胱穿刺尿等。 【注意事项】 （1）避免阴道分泌物、月经血、粪便等污染，女性病人应采集中段尿，尽量避免经期做尿常规检查； （2）避免干扰化学物质（如表面活性剂、消毒剂）混入； （3）住院病人送检的标本要标上病人姓名，门诊病人的标本和检验申请单放在指定的标本收集盘上。
临床检验标本采集手册精编WORD版
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临床检验标本采集手册 芜湖县中医院检验科 临床检验标本采集指南及注意事项 临床检验标本采集和处理问题已普遍引起了人们的重视。芜湖县中医院检验科每年参加省临床检验中心的室间质评活动，并取得较好成绩。为做到临床检验质量保证，必须做到对实验检查的全过程进行全面的质量控制和质量管理。这里包括：实验前（分析前）、实验中（分析中）和实验后（分析后）三个阶段的质量控制，其中实验前质量控制尤其重要。分析前质量管理是一个最薄弱的环节，试验误差中60～70%来自实验前，而且实验前误差是仪器、试剂、质控品和标准品等再好也无法解决的。实验前质量控制主要包括：⑴病人准备⑵标本采集⑶标本保存和运送⑷标本处理等。 一、病人准备 1．患者的状态： 一般需在安静状态下采集标本，如患者处于激动、兴奋、恐惧状态时，可使血红蛋白、白细胞增高。运动后，由于能量消耗、体液丢失、剧烈呼吸，可造成许多检验结果的变化，如谷丙转氨酶、谷草转氨酶、乳酸脱氢酶、肌酸激酶等一时升高，还可引起血中钾、钠、钙、白蛋白、血糖等成分的变化。 2. 患者的饮食： 2.1 多数试验要求空腹采血(空腹12小时左右)，最好是早晨空腹采血。研究表明，餐后血液中GLU、TG、ALT、ALP、BUN、Na等均可升高。进食高蛋白或高核酸食物，可引起血中尿素(Urea)及尿酸(UA)的增高；进食高脂肪食物，可引起TG的大幅度增高。餐后
采集的血液样本，其血清常出现乳糜状，影响到许多检验测定的正确性。一些饮料如咖啡，也可使淀粉酶(AMY)、促甲状腺素(TSH)等升高。 2.2 禁食过久也会影响检测结果。通常血糖浓度呈下降趋势；胆红素清除速率降低，引起血清胆红素浓度上升。绝食状态下脂肪酸和酮酸成为肌肉能量来源，因此血清中酮体、脂肪酸和甘油的浓度会显着增加。禁食48小时后，血清甘油三酯增加20％，此后又会下降。绝食使血清尿酸盐浓度显着上升。身体饥饿时醛固酮分泌增加，尿排钾增加引起血清钾降低。 2.3 素食者：长期素食者低密度脂蛋白(LDL)和极低密度脂蛋白(VLDL)浓度都会偏低，总脂质和磷脂浓度也会减少，胆固醇和三酸甘油脂浓度可能只有杂食个体的三分之二。 2.4 咖啡因：咖啡、可乐、茶、以及多种药物都含有咖啡因，它是一种温和的刺激物和微弱的利尿剂。能刺激肾上腺髓质，促使儿茶酚胺分泌增加，使血糖浓度轻微上升、甘油三脂上升；但是血清胆固醇浓度会下降。 2.5 乙醇：长期饮酒者高密度脂蛋白胆固醇偏高、平均血细胞体积增加、谷氨酰转肽酶（GGT）活性会上升，甚至可以将这三项作为嗜酒者的筛选检查。中度酒精量会伤害骨骼肌细微结构，因此会使血清肌酸激酶(CK)活性上升。有报道喝酒会使ALT和AST测定值上升，不过少量饮酒的影响效应很低。 2.6 吸烟：吸烟者会引起白细胞数增加、嗜酸粒细胞减少、中性粒细胞及单核细胞增多、红细胞数和血红蛋白增加、平均红细胞体积偏高。抽烟者血浆β脂蛋白、胆固醇、甘油三脂等浓度高于未抽烟者，而高密度脂蛋白胆固醇低于未抽烟者。 3．药物的影响：
检验标本采集核对 制度
检验标本采集核对、运送、交接制度 临床检验的任务就是对临床标本进行检测分析，为临床疾病诊断、治疗及疗效观察提供实验室结果，并为临床提供咨询服务。因此，检验标本的正确采集、运输、交接处理是确保临床检验顺利进行的重要条件。为此，制订检验标本采集核对、运送和签收制度。 标本采集核对制度 1、护士应掌握各种标本的正确留取方法。 2、护士为患者采集标本时要实施正确的双人核对。双人核对医嘱、标本容器及标识、患者身份等，必要时病人参与确认。 3、正确选择标本采集时机。晨起患者处于安静状态，为大部分标本采集的最佳时间。静脉采血前至少要禁食8h；血脂测定需禁食12-14h；做微生物培养检查，最好在使用抗生素之前采集标本；大便隐血检查前要素食3天；尿液检查应按不同项目分别留置取晨尿、随机尿、计时尿等。 4、正确选择标本采集体位。如住院患者建议采用卧位采血，非住院患者可采用坐位；醛固酮检测要在起床前卧位取血，起床后活动4h 立位取血。 5、正确选择标本容器。护士根据采集血液、尿液及粪便等不同标本种类及容量，准备合适的采集容器。在容器外整齐规范地贴上条形码。 6、正确使用止血带。采集血液标本时应尽量缩短使用止血带的压迫时间，一般不超过1min。见到血液进入采血容器后立即松开止血带。当需要重新采集标本时，应换另一手臂。
7、尽可能避免在输液过程中采集血液标本。因为血液被稀释、输入药物可能干扰检验结果。静脉输入葡萄糖、氨基酸、蛋白质或电解质的患者，应在输液结束1h后采集标本；输入脂肪乳剂的患者，应在输液8h后采集标本。如必须在输液时采集标本，要避免在输液同侧的静脉采集标本。 8、采集血液标本时，要避免导致标本溶血的因素。包括：标本管壁粗糙、容器不干燥和不清洁、穿刺处消毒液未干即开始采血、从血肿处采血、抽血速度过快、血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫、震荡过于激烈、止血带捆扎时间过长或让患者反复拽拳、运送标本震荡及放置时间过长等因素。 9、对于有特殊要求的如：患者体位、采集时间、患者体温等需要特别说明的标本，请在条形码空白处用文字备注，字迹清晰。 10、不得随意涂改标本条码上的信息，包括：患者信息、检验项目等。 标本运送和签收制度 1、各病区、科室标本采集后，由责任护士与运送工人双方做好交接清点、并做好交接记录（项目、数目、时间、签名），再由运送工人送检验科。 2、安全、及时地运送标本。标本应统一安排后勤服务公司专职人员送检。标本运送应遵循唯一标识、生物安全和及时运送三大原则：（1）唯一标识原则：应用可扫描自动识别的条形码是解决唯一标识最好的方式。 （2）生物安全原则：要求使用可以反复消毒的专用容器运送标本。
标本采集运输指南
标本采集运输指南 1目的 对检验申请、患者的准备、临床标本的采集与运输以 及样品在实验室内的传输过程进行控制，以保证检验前样 品的质量。 2 范围 适用于检验科受理的标本。 3 职责 3.1临床医师负责检验的申请。 3.2检验科主任负责组织人员编写检验标本采集手册。 3.3医护人员和检验人员均负责指导患者如何正确留 取标本。 3.4门诊抽血人员和病房护理人员负责临床标本的采集，特殊标本由临床医生采集。 3.5医院指定的标本收集人员负责定时到临床各科室 收集标本和运输。 3.6相关检验人员负责样品在实验室内的传输。 4 工作程序 4.1检验申请 4.1.1 检验项目选择
临床医师根据病人病情需要和检验项目的敏感度、特 异性来正确选择检验项目。检验科人员可为其提供检验项 目的咨询，监督实验室服务对象选择的检验项目是否明确，实验室检验项目能否满足实验室服务对象的要求。 4.1.2检验申请表 本实验室的检验申请表包括以下内容： a)患者的唯一性标识，如门诊病人的诊疗卡号、住院 病人的住院号； b)患者的姓名、性别、年龄； c)患者就诊或住院的科别、床号； d)样品的类型和原始解剖部位，如静脉抗凝血等； e)申请的检验项目或项目的组合； f)临床标本采集日期和时间； g)实验室收到样品的日期和时间； h)申请者姓名； i)申请日期。 4.2病人的准备 为了使检验结果有效地用于临床，临床医护人员和检 验人员应了解标本收集前影响结果的非病理性因素，如饮食、标本采集时间、体位和体力活动、病人用药等对标本 采集的影响。提出要求病人予以配合和服从的内容，采取 切实措施，保证采集的标本符合疾病的实际情况。
检验科样本采集手册
检验标本采集手册 检验结果是临床医师在诊疗过程中所需要的重要信息，临床医师可以根据这些检验结果及病人的临床情况来区分疾病的不同阶段，观察疾病的变化，判断预后或观察疗效。所以分析前阶段样本的质量保证是直接关系到检验结果能否真实客观地反应患者当前病情的一个重要环节。 一、病人准备 1．病人状态 一般需在安静状态下采集标本，如患者处于高度紧张的状态时，可使血红蛋白、白细胞增高。由于劳累或受冷等刺激、也可见白细胞的增高。运动能影响许多项目的测定结果。运动的影响可分暂时和持续性两类。暂时性影响如使血浆脂肪酸含量减少；丙氨酸、乳酸含量增高。持续性影响，如激烈运动后使CK、LDH、ALT、AST和GLU等的测定值升高，有些恢复较慢，如ALT在停止运动1h后测定，其值仍可偏高30％～50％。 2．饮食 多数试验要求在采血前禁食12h，因为饮食中的不同成分可直接影响实验结果。 (1) 餐后血液中TG、ALT、GLU、BUN、Na等均可升高，进食高蛋白或高核酸食物，可以引起血中的尿素氮(BUN)和尿酸(UA)的增高。进食高脂肪食物后采集的血液样本，其血清会出现浑浊，可影响许多检验测定的正确性。甚至喝代咖啡的饮料，可引起淀粉酶(AMY)、AST谷丙转氨酶(ALT)、碱性磷酸酶(ALP)等升高。但空腹时间过长，会使GLU，蛋白质降
低，而胆红素升高。 (2) 高脂餐后2～4h采血，多数人ALP含量增高，主要来自肠源性同工酶，且与血型有密切关系，O型或B型兼为Le+分泌型者增高更为明显。 (3) 高蛋白质餐使血浆尿素、血氨增加，但不影响肌酐含量。 (4) 高比例不饱脂肪酸食物，可减低胆固醇含量；香蕉、菠萝、番茄可使尿液5-羟色胺增加数倍。 (5) 含咖啡因饮料，可使血浆游离脂肪酸增加，并使肾上腺和脑组织释放儿茶酚胺。 (6) 饮酒后使血浆乳酸、尿酸盐、乙醛、乙酸等增加，长期饮酒者高密度脂蛋白胆固醇偏高、平均血细胞体积增加、谷氨酰转肽酶亦较不饮酒的病人为高，甚至可以将这三项作为嗜酒者的筛选检查。 吸烟：儿茶酚胺、血清可的松亦较不吸烟者为高，血液学方面亦有变化，白细胞数增加、嗜酸粒细胞减少、中性粒细胞及单核细胞增多、血红蛋白偏高、平均红细胞体积偏高。 3．药物 药物对检验的影响非常复杂，在采样检查之前，以暂停各种药物为宜，如某种药物不可停用，则应了解可能对检验结果产生的影响。庆大毒素、氨苄青毒素可使谷丙转氨酶活性增高、咖啡因可使胆红素增加、维生素C 可使血糖、胆固醇、甘油三脂、尿酸严重降低。 4．体位 体位影响血液循环，由于血液和组织间液因体位不同而平衡改变，则细胞成分和大分子物质的改变较为明显，例如由卧位改为站位，血浆ALB、
检验科标本采集SOP
检验科标本采集SOP 来源：检验医学专题网加入日期：2008-09-23 1.目的： 为保障送检标本质量，使送检标本具有代表性，保证检验结果的可信度和有效性 2.适用范围： 标本采集的准备 3.责任人： 检验科全体工作人员，临床医护人员及患者 4.程序：标本采集，这是分析前阶段质量保证关键的一步。要重视下列环节的控制： 4.1采样时间的控制，选择最佳采样时间的原则是： 4.1.1最具“代表性”的时间：原则上晨起空腹时采集标本。其主要原因有： 4.1.1.1尽可能减少昼夜节律带来的影响。许多血液成分昼夜间变换很大，如血钾数值，在高峰值期比低值期增加5％～10％，血红蛋白增加8％～15％，促甲状腺素增加5％～15％血管紧张素可增加120％～140％。为减少昼夜节律带来的影响，使不同患者间，或同一患者不同时期之间检测结果的可比性，除特殊情况外，一般早晨空腹时采集标本； 4.1.1.2病人处于平静状态，减少病人由于运动带来的影响；并减少饮食的影响； 4.1.1.3易于与正常参考范围作比较；
4.1.1.4便于组织日常工作。 4.1.2检出阳性最高的时间：如细菌培养应尽可能在抗生素使用前采集标本；尿常规检查应采集早晨第一次尿；早孕试验应在孕后35天后送检，此时阳性率达高峰。 4.1.3对诊断最有价值的时间：如急性心肌梗死时，cTnL或cTcT的测定在发病后4～6小时采样较好：病毒性感染抗体检查，在急性期及恢复期，采取双份血清检察对诊断意义较大；药物监测应根据药物峰值效应，在药物分布结束后监测（通常在药物输液结束后2～4小时进行，而地高辛、毛地黄毒甙在输液后6～8小时进行）。 4.2采取具代表性的标本如大便检查应取脓、血部分：脊髓穿刺、脑脊液穿刺应防止外伤性血液的进入；留取痰标本应防止唾液的混入，静脉采血时，患者的姿势（卧位、坐位或立位）及止血带的松紧都可影响某些监测结果，通常规定患者卧位或是坐位采血，止血带使用后1分钟内采血，见回血后立即松开，通过这些措施来保证血标本的质量。 4.3采取最合乎要求的标本主要控制下列三点： 4.3.1抗凝剂的正确应用：血标本如需抗凝，究竟用何种抗凝剂（EDTA）、草酸钠、拘橼酸钠、肝素等），根据监测要求而选定。抗凝剂的用量与血标本的比例必须准确无误； 4.3.2防溶血、防污染要防止由于容器不洁、化学物质引起的污染；细菌培养时，非病原菌的污染。有时还需防止标本接触空气（如血气分析、厌氧菌培养等）在生化测定中溶血、乳靡及黄疸是影响准确性三个常见的主要因素。其中尤以溶血最为常见，许多物质在红细胞内和血浆中的含量不一样，某些物质，如钾
检验科[全套]SOP文件
检验科全套ＳＯＰ文件 124.236.7.* 质量手册目录 01质量手册说明 02质量手册版本控制 03科室简介 04授权书 05批准令 06公正性申明 07修改记录 08质量方针与质量目标 09组织和管理 10投诉地解决 11不符合项地识别和控制 12纠正措施 13预防措施 14内部审核 15管理评审 16人员 17设施和环境 18检验前程序 19检验程序 程序文件目录 001 程序文件目录 002 批准令 003修改爷 01 文件控制程序 02计算机管理程序 03 合同评审程序 04 医疗咨询控制程序
05 客户投诉控制程序 06 不合格项控制程序 07 纠正措施控制程序 08 预防措施控制程序 09 内部质量审核控制程序 10 人员任用资质评定程序 11 仪器管理程序 12 仪器校准程序 13 样本管理程序 14 生物参考范围建立程序 15 实验不确定度评定程序 16、检测结果溯源程序 17、内部质量审核控制程序 18、室间质量评价程序 19、生物安全管理程序 20、需求地确定及实验室能力评审控制程序 21 新检测项目建立程序 22、满意度监测程序 23、标识控制程序 24、仪器标识控制程序 25、质量保证程序 26、检测申请单格式确定程序 27、检测结果报告控制程序 28、检测结果修改与变更程序 29、试剂管理程序 30、结果报告程序 作业指导书 临床检验作业指导书 01静脉血常规样品采集手册 02末梢血常规样品采集手册 03静脉血血沉样品采集手册 04血型鉴定血液标本的采集 05尿液常规标本采集手册 06一般尿液标本的采集手册 07特殊尿液标本的采集手册
标本采集、送检、运送、接收、处理、保存和销毁规程
标本采集、送检、运送、接收、处理、保存和销毁 规程 1、目的 保证标本采集到贮存过程符合本实验室检测及法律法规的要求,保证标本质量。 2、适用范围 本站血液检测标本、检测留样标本及临床送检标本。 3、职责 采血人员或相关工作人员负责标本的采集、送检、运送和交接;血库工作人员负责血液检测样本的临时接收和暂存;检验人员负责标本的接收、处理、保存和销毁;办公室负责组织检验科业务人员对标本采集人员进行相关培训。 4、作业步骤 4.1样本采集要求: 4.1.1:知情同意:标本采集应征得献血者知情同意,内容包括:告知采集(留取)标本量,以及用途(仅用于本站血液检测)。 4.1.2:采集: a.初筛检测样本:采集前严格核对献血者和登记表,抽取1-2ml 的献血者血液于含饱和EDTA-Na2 /K2抗凝剂50ul的普通塑料试管中或含有抗凝剂的真空管中。贴好与献血者登记表一致的献血序列码。 b.献血后血液检测样本:
(1)留取要求:献血者献血后采集人员从血袋/留样袋中留取双份 血样用于实验室的一检和二检,两支血样试管,一支为含分离胶的促 凝真空管(黄盖),应先留取(不能混入血袋中保养液),另一支为EDTAK2抗凝真空管(紫盖),每支试管留取3-5ml血液,留取后立即轻轻上下颠倒至少3次与抗凝剂/促凝剂充分混匀,贴上与献血登记表、血袋标识条码一致校验码为07的献血序列码。 (2)序列码粘贴要求:序列码粘贴不歪斜、无褶皱,沿负压管盖下竖直粘贴,血型标识向上,条码清晰; (3)校对要求:一次只对一袋血液和同源样本进行贴签留样;所留 标本必须按规程进行操作,并经过Spring采血管理模块对采血袋、登记表和标本管三个序列号一致后方可进入下一流程。 (4)临时储存:血液标本留取结束后及时放在2-10℃环境中保存。 c.临床送检标本要求: (1)疑难血型鉴定及交叉配血:使用一次性真空采血管采集受检者血样6-10ml,一支EDTA-K2抗凝,另一支未抗凝,每支3-5ml。标识清楚,贴有与申请单一致的序列码,申请单注明被检者姓名、性别、年龄、临床诊断,病史及检测项目等信息,48h内采集。 (2)新生儿溶血病检查样本:使用一次性真空采血管采集母亲和新生儿血样各1-2ml,EDTA-K2抗凝(紫盖)。标识清楚,贴有与申请单一致的序列码,申请单注明被检者姓名、性别、年龄、临床印象及住院号床号等信息。于4℃保存72小时内检测。 4.2运输要求:
标本采集与运输培训答案
1、将每一份标本都看作是无法重新获得、唯一的标本，必须小心地： 采集、保存、转运。 2、空腹标本一般指进食8h后采集的血和尿标本（但不能超过12h,禁食时间过长可引起部分指标异常；如补体 C3、转铁蛋白等。）因为标本是在空腹和安静时采集的，干扰因素较少，对病人来讲，若多次检查同一项目，也便于比较、对照。 3、临床实验室标准化协会推荐多种血液标本时，采血次序为： 血培养管、普通血清管、枸橼酸钠管、凝胶分离管、肝素管/肝素凝胶分离管、EDTA管。 4、抗凝血必须及时、充分、轻轻颠倒混匀血液和抗凝剂，至少3次以上。避免采血损伤和用力旋转容器。 5、血液标准化委员会建议： 在室温（18～25℃）下，4h完成检测分离血浆和血清；血细胞与血清或血浆接触＞2h，血浆或血清将浓缩、分析物被破坏。冷凝集试验、血氨、凝血项目检测立即送检。泡沫可使蛋白质变性，血小板激活。 6、血液中脂蛋白成分的增加常会导致血清、血浆浑浊或奶酪状，通常称之为脂血。 7、痰液采集方法： 自然咳痰法： 清晨起床后，清水反复漱口后用力吐第一口痰于无菌容器中立即送检。上呼吸道标本： 采用无菌棉拭子。标本采集后立即送检，如不能立即送检，放冰箱保存
8、粪便标本采集具有病理意义的便（如浓血、血粘液、水样等选取）5g在半小时内送检，2小时内检测完毕，否则因PH变化及消化酶的影响可使便的细胞成分破坏分解。嘱患者在收集标本前三天禁食动物性食物，并禁服铁剂和维生素 C.且连续检查三天，收集后须迅速送检。 二、简答题 1、血液标本基本要求 保持标本完整性： 控制各种干扰因素 保持标本xx： 最好的尺度是时间 拒绝不合格血标本： 脂血、溶血、凝固等 2、标本溶血常见原因？ 标本溶血常见原因： 采血不熟练、劣质采血器和试管、注射器血急速注入试管、试管混匀用力过猛、从已有血肿的静脉采血、采血量不足、穿刺处所用消毒液未干、注射器和针头连接不紧采血时空气进入产生泡。 肉眼未见溶血，但乳酸脱氢酶、血红素、转氨酶或钾等值异常增高时，应警惕是否发生了非显性溶血。 3、采血容器的颜色、用途和采血量？ 头盖颜色添加剂用途采血量（ml）紫色EDTA-K2血常规、HLA- B27、2.0
临床血液标本采集指南 (一医院资料)
临床血液标本采集指南 一、检验申请 规范填写检验申请单 项目填写齐全，用词规范、字迹清楚、避免涂改。不同标本类型最好分开申请对于被检者的特殊情况，应当在申请单上注明，供检验人员判断结果参考。 检验科要求检验人员加强与临床医护人员沟通，及时解决检验项目申请和送检标本存在的问题和疑问；对于不合格检验申请单和不合格送检标本按照“医学检验工作制度”进行登记、处理。对于漏填或错填申请科室的检验申请单，检验科一律禁止发送检验报告，必要时送交医务科处理。 二、病人准备 医护、检验人员指导病人做好准备 考虑饮食、运动、生理周期、疾病及药物等对检验结果可能产生的影响，指导病人正确采集标本。 (一) 控制饮食 （1）大多数检验项目都要求在早晨空腹采血，咖啡、浓茶、高糖及可乐类饮料也应禁食。 （2）肝功、血脂、凝血等项目要求禁食12-16小时，且提前一天的晚餐应当避免饮酒、禁止高脂肪、高蛋白饮食。 （3）饮食对血脂检验影响重大，至少应当在抽血前的三天内注意保持正常饮食。
（4）在做内生肌酐清除率测定之前，待检者应禁食肉类3天，不饮咖啡和茶，停用利尿剂，实验前避免剧烈运动，饮足量的水。（二）避免药物影响 许多药物（如VitC、雌激素、降血脂药等）对检验结果尤其是血、尿、便的生化检验结果产生影响，抗生素应用将对微生物培养检验结果产生直接的影响。申请检验前医生应该了解待检者近期及当前相关药物使用情况并给予适当指导，在对检验结果可能产生明显影响时，应当在检验申请单上注明，或以电话或其他方式告知相关检验人员。 举例：降血脂、避孕药、噻嗪类利尿剂、§-受体阻滞剂、免疫抑制剂、某些降压药、降糖药、胰岛素及其它激素制剂等可影响血脂检验结果；应根据药物特性，在作血脂检验前停药数天至数周。如不能停药，应记录用药情况，恰当评估药物及检验结果的影响。（三）避免运动影响 （1）剧烈运动可以使许多血液成分发生变化，甚至持续24小时以上，因此剧烈运动之后不能立即抽血；快步行走之后至少应休息10-15分钟后再抽血。 （2）应在平静状态抽血，避免情绪激动。 （四）注意生理差异 临床医生申请检验项目及评估检验报告时，应考虑性别、年龄、昼夜节律、季节变动、生理周期（如怀孕、月经）等因素对检验结果的影响，并给与必要指导。
标本采集手册
*****医院 *******附属医院 检验科 标本采集手册 编制人：*** 审核人：*** 发布日期：2015年06月01日实施日期：2015年06月1日
【重要提示】 检验结果，至关重要的是必须依赖于检测标本的高质量。 所以我们要将每一份标本视为无法重新获得的唯一标本，必须小心细致地采集、保存、转运、检测。 依据医学实验室（ISO15189：2007）认可文件分析前程序定义：按照时间顺序，从临床医生开出医嘱申请单开始，到分析检验程序开始前的全过程：包括检验申请、患者准备、原始样品的采集、运送到实验室并在实验室进行传输。从定义的过程中不难看出，大部分工作都是患者、医生、护士、运输人员在实验室外完成的，对于分析前质量控制工作至关重要，过程中极易出现的问题，就是标本质量不符合要求，为此实验室工作人员很难控制。 获得高质量标本： 临床医生：主动明确告知患者如何进行配合。 护理人员：严格按照标准规范采集标本。 运输人员：及时安全转运、送达标本。
前言 随着检验医学快速发展、检验方法的不断改进，检测项目和检测结果的针对性、可靠性、有效性的不断提高，从而极大的丰富和满足了临床诊断与治疗评估对检验的需要。同时检验分析前的各种影响或干扰因素相对增多，对检测标本的留取与收集也提出了更高的要求。为此向医护人员提供以下标本采集规范。而患者也必需了解留取标本的基本知识，遵照医嘱，配合医护人员，使检验结果更加准确可靠，有效地服务临床工作。我们真诚的希望医护人员在临床诊疗工作中发现问题，及时联系共同解决。同时我们也希望以此《手册》与临床交流沟通，不断地改进检验科各实验室质量控制工作，使标本的采集标准化、规范化，实现检验分析前各类影响因素的最小化，为临床医护人员、患者提供高质量的服务。 ****医院 （*****附属**医院）检验科 2015年6月
检验标本的采集与运送规范
检验标本的采集与运送规范（护理） 一、血液常规采集与运送规范 （一）、常用真空采血管的种类 1、促凝管／分离胶促凝管（橙色／黄色）：用于医学检验中生化学、免疫学、 血清学、各种病毒检测及血库检查血液标本的采集与盛装。管壁经特殊处理，防止挂壁及溶血现象。 2、枸橼酸钠１:９（蓝色）管：用于凝血机制等检查，按抗凝剂与血样体积比为 1：9设定的真空采血管，具有准确的血液量与抗凝剂总量，配比精度较高。 3、肝素钠／锂（绿色／墨绿色）管：用于急诊生化、血液流变学、全血铅测定 的血液标本采集。对血液成份干扰少，不影响红细胞体积，不引起溶血。具有血浆分离速度快，与血清标本指标兼容性强等优点。 4、EDTA（紫色）管：抗凝剂为乙二胺四乙酸（EDTA，分子量292）及其盐， 适用于一般血液学检验，不适用于凝血试验及血小板功能检查，亦不适用于钙离子，钾离子，钠离子，铁离子，碱性磷酸酶，肌酸激酶和亮氨酸氨基肽酶的测定及PCR试验。 （二）多管采样时采集次序 多管采血时一般按下列顺序：凝血试验→血沉→血常规→其它。以防止凝血因子活化，或者血小板聚集而影响检验结果。 多项检测同时采血时应按下列顺序采血：①血培养；②无添加剂管或促凝管；③凝血管；④有添加剂管的顺序为：a．橼酸盐管；b．肝素管；c．EDTA管；d．草酸盐/氟化钠管。 （三）各种血标本的采集及注意事项 1、血常规检验标本 一般用EDTA-2K(EDTA-K2?2H2O) 1.5～2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管,紫色帽）采血。 采血注意事项： 1)应按抗凝管刻度准确采静脉血至2ml。 2)采血后立即上下颠倒混匀（5～10次，不可用强力震荡,以免造成溶血。）；
检验科标本采集、运送及管理制度
检验科标本采集、运送及管理制度 1、制定《标本采集手册》，对检验、医护、运送等相关人员 进行教育和培训，避免由于标本采集、运送、管理等因素而影响检 测质量及生物安全。 2、标本采集前应告知患者注意事项，以减少因运动、过度空腹、饮食、饮酒、吸烟等因素对检验结果的影响。 3、采集时核对患者基本信息、检验项目、标本类型、容器、抗凝剂选择、采集量等，按照正确的标本采集途径，规范的操作方法， 采集合格的标本。 4、标本采集后应在规定的时限内及时送检，避免因暂存环 境和时间延缓等因素，而影响标本检测结果的准确性。不能及时送 检的标本，要按规定的贮存条件及方式妥善保管。 5、建立标本验收、登记、处理的工作程序。接收标本时须 认真核对患者基本信息、标本类型、标本量、容器、标识、检验目 的等，对不符合采集规范的标本应及时通报送检医师或其它相关人员，明确处理意见，做好记录。不合格标本不得上机检测，更不能 将明知是“失真的”检验结果签发报送临床，危及救治质量和患者 安全。 6、标本接收后应及时处理，防止标本中被测成分降解或破坏。缓检标本应核对后妥善保存。 7、向外单位送检或接收外单位送检的标本应专人负责并有
记录，医院其他科室使用检验标本从事科研时，必须征得专业主管、科主任同意，并作详细记录备案。 8、检验后的标本应按规定根据不同要求和条件限时保留备查，特殊标本特殊保存。 9、标本采集、运送及检验人员须严格执行生物安全防护要求，使用合格的标本输送箱，加盖封闭运送，检验申请单不得与标本容器卷裹混放。接触标本时须佩带防护手套，工作完毕后，按要求彻底清洗双手，防止感染。 10、废弃标本应严格按照实验室感染性材料和废弃物管理相关规定处理。 保持门窗干净、无尘土、玻璃清洁、透明。
检验科标本核收、登记和保存程序
检验科标本核收、登记和保存程序 1目的 规范临床标本的验收、登记和保存程序，及时发现标本采集、处理和送收过程中的不符合项，保证标本符合检测项目的要求。 2范围 适用于检验科受理的标本。 3职责 3.1检验科标本接收人员负责标本的接收、验收和登记。 3.2各专业组负责本专业组标本的处理和保存。 4工作程序 4.1标本的核收 4.1.1检验科标本接收人员必须明确本科室接收标本的范围，非本科室接收范围内的标本不予受理。 4.1.2标本接收人员将标本收集人员收集来的标本进行检查和验收，并仔细检查标本的标识、容器、抗凝剂、标本量、标本状态(如凝块、溶血等)是否符合有关检测要求，以及标本是否与检验申请相符。 4.1.3对标本信息不详，或标记错误，或使用抗凝剂和采血管不当，严重溶血或脂血，或与检验申请单不符的标本视为不合格标本。对不合格的标本，标本接收人员应填写《不合格标本记录表》，并录入l．IS系统中即可立即将此信息传给护士站，以便及时做出快速处理，必要时电话通知相关采样人员。必要时发回检验申请单，标本保留检验科，标本做好醒目的不符合标记。 4.1.4如果接收了不合格临床标本，应在检验报告中说明问题的性质，如果必要，在解释结果时也应说明。 4.1.5标本的核收登记 送到检验科的标本交给检验科标本接收人员，接收人员进入l。IS系统标本接收模块，通过扫描送检清单上批次条码，l。IS系统列出本批次所有标本。接收人员再扫描每一个标本的条码，l。IS系统会自动与清单上的标本进行核对，当不一致时会给出提示。然后，点击确认，l。IS系统自动记录接收人和接收时间。如果是来自住院患者的标本同时传送记账信息给医院信息系统(HIS)。临床护工需要将送来的急诊标本在《急诊标本核收登记表》上登记，
病原微生物标本采集 运送
病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。 一、标本采集的一般原则 1.早期采集 采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌的检出。 2.无菌操作 采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。采集的标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌的检出。 3.适量的标本 标本量过少可能导致假阴性结果。 4.适当的采集方法 对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻。 5.盛放标本的容器 采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容器内。 二、标本的运送 1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4度冰箱保存，且不能超过24小时。 2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。 三、不同标本的采集，运送
（一）血液标本采集，运送 1.血培养指针征 当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。 2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时或间隔短时间内采集２套以上血培养标本。成年患者：推荐同时采集２－３套（不同部位）血培养标本（即双瓶双臂同时采集血培养标本），采血量每瓶不少于5ml;婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同部位）血培养标本,采血量每瓶不少于2ml。（少于病人总血容量的1%）.在采取血培养后的2—5天内，无需重复采取血培养。两个例外：细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。 3.血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。 检出率与采血量成比例增长，每增加1ml的血液，病原菌的检出率就会相应增加。儿童患者血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人。采用一对（需氧瓶+厌氧瓶）组合，比采用二个需氧瓶的组合可检出更多的葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌。采血量不能满足推荐的量时，应首先满足需氧瓶的需要。 推荐从外周静脉采集血液标本,不推荐静脉留置导管，因其常伴有高污染率。如果必须从留置导管内采血，也应同时从外周静脉采集另外一个血培养标本以帮助阳性结果的判读。 4.血标本采集的注意事项 在采血之前，血培养瓶的橡皮塞需使用75%酒精消毒并干燥。然后再进行穿刺部位的皮肤消毒。严格按照“酒精、含碘消毒剂、酒精”的消毒步骤操作，并等待足够的消毒时间。严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手接触静脉，除非带有无菌手套.不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头;采集后的血培养瓶应在1小时之内送往实验室,血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏或冷冻。 (二)痰培养标本采集，运送 1.痰培养指征
检验科2016年质控计划
质控计划 本年度为了加强检验科的质量管理，坚持以“患者为中心”，牢固树立为人民服务的宗旨，把持续改进医疗质量和保障医疗安全作为检验科管理的核心内容，为人民群众提供优质、高效、安全、便捷和经济的医疗服务，不断满足人民群众日益增长的医疗卫生要求。近年来，随着我科先进医疗设备的应用和技术人员素质的提高，为了“管理年”检验科管理工作的进一步实施，本检验科将根据ISO15189质量管理体系的经验，从体系文件的编写、人员积极性的调动、人员素质的提高、检验全过程（检验前、中、后）的质量控制、室间质评及管理评审等方面，结合自身实际，求真务实，不断探索，持续改进，在检验科中建立行之有效的质量管理体系。 一. 严格执行标准操作规程 各实验室严格执行已编写的质量手册、程序文件和作业指导书。质量小组和各实验室组长要定期督导检查，发现问题，及时提出持续整改措施。 二. 管理层要高度重视 质量管理体系的建立绝不是短时间就能完成的工作，有效的运作必须是全体人员的积极参与和通力合作。因此，科内质量监督员，生物安全小组和质量控制小组，充分调动全体人员的积极性。 三. 提高人员素质 人员素质和能力是影响到实验室检验质量的关键环节之一。加强人员培训是有效的手段。各实验室要根据发展的需要、工作的复杂性、转岗
等不同情况进行生物安全培训和三基三严训练，提升检验人员的技术水平。培训形式灵活多变，可采取科内业务学习、科外培训、请专家授课的形式。为保证培训质量，建立完善的培训－考核－授权制度，变“要我培训”为“我要培训”的主动局面。 四. 对检验全过程进行有效控制 检验工作自检验申请单的开出、患者的准备、标本的采集和送检、标本的接收、标本的检测直至检验报告单送抵申请者（或患者）手中是一条相互关联的多环节的工作链，其中任何一个环节出现差错，均直接影响到检测结果的可靠性。因此，必须对其全程控制。为保证有效性，将检验全过程划分为检验前、检验中、检验后三个独立环节进行管理，使其独立性得到强化、突出。 1 检验前的质量控制 检验前过程指从申请单的开出至标本送到检验科的过程。研究表明，检验前阶段所用时间占全部时间的57.3％。实际上许多关于检验结果不准确的抱怨和投诉与标本的质量有关，并不是检测过程的原因。因此，对检验前过程的控制是一个不容忽视的重要环节。但由于检验前过程大多发生在检验科外，容易被忽视且不易控制，这造成了该阶段成为三个过程中最薄弱的环节。检验科可利用全院的业务学习、邀请医护人员参加科内学习、检验通讯、印制发放原始标本采集手册等方式，对临床医护人员讲解宣传检验前过程的重要性和方法，使其了解不同检测项目对标本采集的不同要求、注意事项及检测结果的受影响因素等知识，严格按规定正确规范地采集标本或监督病人正确留取标本。此外，还应对标