精子畸形率太高怎么办,精子畸形太多怎么办

精子畸形率太高怎么办,精子畸形太多怎么办
精子畸形率太高怎么办,精子畸形太多怎么办

精子畸形率太高怎么办?精子畸形怎么治疗

精子畸形率太高怎么办?精子畸形怎么治疗?这个问题应该是当下很多男性都有的一个困扰。精子畸形率高这在现代男性中普遍发生,已经不足为奇,但这并不表示大家可以对此视而不见,精子畸形率高,造成的直接危害就是对男性生育的影响,既有可能导致男性不育,也有可能导致胎儿畸形,总之危害性十足。那么,精子畸形率太高怎么办呢?

男性精子畸形率高的不是无缘无故发生的,要想有效治疗,首先要明确患病的原因。引起精子畸形的常见原因有内分泌功能下降;生殖系统与泌尿的某些感染;酗酒引起的精子畸形;吸烟会使畸形精子发生率明显增高。解除疾病给男性朋友可能造成的危害,针对病因对症治疗是关键。

一、精子畸形率太高影响大,治疗要慎重不能盲目。高畸形率精子症的治疗应该根据引起畸形精子的起因,并且消除不良因素,针对病因进行针对性治疗,从而尽早的摆脱疾病困扰,畸形精子如超过一定比例,应进行染色体检查,如有染色体病,则治疗困难。

二、目前用于精子畸形率太高的治疗方法不只一种,要有重点的选择。如果由生殖道感染引起者,可进行抗炎治疗;由内分泌异常所

致者,则给予内分泌功能调整,对比较严重的患者应考虑手术治疗。

三、避免男子内分泌功能低下和体内某些相关激素分泌的不平衡现象,提倡健康的饮食,积极的运动,有规律的生活等,从根本上避免由此而造成的精子畸形率增高,能够很好的起到预防作用。同时,应积极预防和治疗慢性前列腺炎、精囊炎、尿道炎等生殖器炎症,以消除各种可能的致畸因素。

以上就是我们关于“精子畸形率太高怎么办”的相关介绍,希望对有此困扰的患者朋友们有一定帮助。精子畸形率太高不仅危害患者身心健康,而且对患者的家庭也是一个不小的打击,因此,大家对此一定引起高度的重视,早发现早诊断早治疗,才能早日恢复健康。

精子畸形怎么治?精子畸形的治疗与很多因素都有直接的关系。其实患者们首先还是不要担心,最好先调整好自己的心理,然后去正规医院进行一个全面的诊断,只有通过诊断才能判断出病情的严重性,然后依照病情采取合适的治疗方式,这样病情才会有所好转。临床发现,精子畸形患者在服用育之缘片2个月之后有明显改善,因此患者也可自行服用育之缘调理。

另外,治疗精子头部畸形,还要注意进行精子头部畸形的预防。例如注意个人卫生,特别是外生殖器的卫生,避免不良因素的接触,

如不洁性交等;要饮食有节,戒烟酒、忌辛辣;避免在高温、有毒、有放射性污染的环境中工作生活,内裤要宽松,不宜穿紧身裤,不宜进行桑拿浴,蒸气浴;节制房事不恣情纵欲;重视泌尿生殖系统疾病的防治。

正确看待精子畸形率.

正确看待精子畸形率. 来源:邓天勤 黄永汉 日期:2009-1-14 在泌尿、男科门诊,经常遇到病人拿着精子畸形率检查的报告单,问医生:从报告单上看,我的精子畸形率80%左右,那么高,会不会以后生的孩子可能是畸形的?跟患者解释这个跟孩子的畸形是无关的,是与生育及体外受精相关的,但是对这个解释患者还是半信半疑的。 那让我们先了解下,精子畸形率是如何来的?泌尿男科研究室是根据WHO第四版人类精液及精子-宫颈粘液相互作用实验室检验手册,对精液常规推片,采用改良巴氏染色法进行染色,在光镜下计数200条精子,分析精子形态。WHO将经染色后畸形精子分为:头部缺陷、颈部和中段缺陷、尾部缺陷和胞浆小滴异常4类。我们检查报告通常分为:头部缺陷、中段缺陷、尾部缺陷。其计算例如以下过程: 计数的精子数:200 正常精子数:78 正常精子百分比:(78/200×100%)39% 缺陷精子数:(200-78) 122(61%) 头部缺陷精子数:110(55%) 中段缺陷精子数:18 (9%) 尾部缺陷精子数:16 (8%) 缺陷总数:(122+18+16) 144 畸形精子指数(TZI)(缺陷总数/缺陷精子数)=144/122 1.18 精子畸形指数(SDI)(缺陷总数/所数精子总数)=144/200 0.72

畸形精子指数(teratozoospermia index, TZI)的数值介于1.00(每个异常精子只有一种缺陷)和3.00(每个异常精子都有头、中段及尾部缺陷),有报道提示,TZI >1.6与未经治疗不育夫妇的低生育率有关,而且精子畸形指数(sperm deformity index,SDI )1.6是体外受精失败的阈值。TZI和 SDI预示精子在体内和体外的功能情况。 因为WHO第4版手册中未给出正常参考值,仅说明当正常形态精子率<15%时体外受精率显著降低,所以我们的报告的正常参考值为:正常精子形态>15%, TZI0~1.5, SDI 0~1.5。其临床意义:正常形态精子率>15%;精子畸形率越高,生育机会越低,而流产、死胎的可能性就越大,当精子畸形率>85%或TZI>1.6时,可引起生育障碍,导致不育症。如果正常形态<15%或SDI>1.6时体外受精降低。 通过上述分析,应该知道精子畸形率跟婴儿畸形是不相关,婴儿的畸形应该是与遗传相关。对于一份精子畸形率报告,我们所要看的是:精子正常形态、TZI、SDI,通过这几项指标及综合精液分析报告来说明精子在体内和体外的功能情况,对男性不育症的诊断及治疗具有辅助意义。

须正确看待精子畸形率的态度

须正确看待精子畸形率的态度 精子畸形率检查的报告单显示精子畸形率80%左右,会不会以后生的孩子可能是畸形的?其实这个跟孩子的畸形是无关的,是与生育及体外受精相关的。 精子畸形率是如何来的?根据WHO第四版人类精液及精子-宫颈粘液相互作用实验室检验手册,对精液常规推片,采用改良巴氏染色法进行染色,在光镜下计数200条精子,分析精子形态。WHO将经染色后畸形精子分为:头部缺陷、颈部和中段缺陷、尾部缺陷和胞浆小滴异常4类。检查报告通常分为:头部缺陷、中段缺陷、尾部缺陷。其计算例如以下过程: 计数的精子数:200 正常精子数:78 正常精子百分比:(78/200×100%)39% 缺陷精子数:(200-78) 122(61%) 头部缺陷精子数:110(55%) 中段缺陷精子数:18 (9%) 尾部缺陷精子数:16 (8%) 缺陷总数:(122+18+16) 144 畸形精子指数(TZI)(缺陷总数/缺陷精子数)=144/122 1.18 精子畸形指数(SDI)(缺陷总数/所数精子总数)=144/200 0.72 畸形精子指数(teratozoospermia index,TZI)的数值介于1.00(每个异常精子只有一种缺陷)和3.00(每个异常精子都有头、中段及尾部缺陷),有报道提示,TZI>1.6与未经治疗不育夫妇的低生育率有关,而且精子畸形指数(sperm deformity index,SDI )1.6是体外受精失败的阈值。TZI和SDI预示精子在体内和体外的功能情况。 因为WHO第4版手册中未给出正常参考值,仅说明当正常形态精子率<15%时体外受精率显著降低,所以报告的正常参考值为:正常精子形态>15%,TZI0~1.5,SDI 0~1.5。其临床意义:正常形态精子率>15%;精子畸形率越高,生育机会越低,而流产、死胎的可能性就越大,当精子畸形率>85%或TZI>1.6时,可引起生育障碍,导致不育症。如果正常形态<15%或SDI>1.6时体外受精降低。 通过上述分析,应该知道精子畸形率跟婴儿畸形是不相关,婴儿的畸形应该是与遗传相关。对于一份精子畸形率报告,我们所要看的是:精子正常形态、TZI、SDI,通过这几项指标及综合精液分析报告来说明精子在体内和体外的功能情况,对男性不育症的诊断及治疗具有辅助意义。

精子畸形指数sdi

精子畸形指数sdi 【导读】正常的精液的质量是:正凡人精液中也存在异常精子,一般所占百分率低于30%,活力优+良的精子占有比率是>50%,假如畸形精子百分率高于50%,那么就称为精子畸形指数高。精子畸形率标准是检验精子是否健康的指标。精子畸形是临床比较常见的现象。精子畸形过多,常常是不孕不育中的某种疾病。 正常的精液的质量是:正凡人精液中也存在异常精子,一般所占百分率低于30%,活力优+良的精子占有比率是50%,假如畸形精子百分率高于50%,那么就称为精子畸形指数高。受精卵就像一颗种子,要经历精子和卵子相结合以及一系列复杂而奇妙的过程,才会最终成长为一个健康的宝贝。如果,在最初精子和卵子结合的时候,受精卵没有成长好,那么它很可能就会停止继续生长,我们把这种发生在孕早期的胚胎发育异常现象称为“胎停育”,出现这种现象其实就和流产差不多。 而精子畸形是临床比较常见的现象。精子畸形过多,常常是不孕不育中的某种疾病。精子畸形率高,胎停育出现的几率也会比较高。从优生优育的角度,精子畸形率过高,是需要治疗的,应该改善之后再生育,否则往往出现更多的麻烦。 精子畸形指数sdi正常指标 假如畸形精子百分率高于50%,那么就称为精子畸形率高。精子畸形率标准是检验精子是否健康的指标。精子畸形率标准,精子高畸形率出现的一般症状是正常形态的精子数明显少于50%,畸形精子超过了70%的时候,应进行染色体检查,一旦发现问题,就要及时治疗。精液中有支原体、衣原体感染时,精子活力就会降低,精子密度也会减少,畸形精子就会增多。畸形精子检查是对男性精子进行染色涂片然后根据它的形态,所做的诊断。男性精子头部、中部与尾部等,出现形态变异情况,其中,头部畸形主要表现有无定形、巨大头、双头等;中部畸形有体部粗大、折裂、不完整等;尾部畸形有双尾、卷尾、缺尾等。 精子畸形指数sdi高的原因 精子畸形指数高可能是有两种情况。如果形态异常的精子超过70%,特别是妻子有习惯性流产时,就应该考虑进行染色体核型检查,男方很可能具有染色体异常,需要通过检查排除这种可能性。如果异常精子少于70%,那么,也许是精索静脉曲张、职业或环境接触毒物、放射线、微波、服用药物、感染及应激等因素影响了睾丸生精过程。无论是哪种情况,都应该去检查并且分析原因,排除可能性,及时治疗。 而引起畸形精子症的原因主要是: 1、因为穿着的裤子、内裤导致阴囊局部长期高热,长期酗酒(特别是高浓度的烈性酒),均可使精子发生畸变; 2、泌尿生殖道感染、腮腺炎并发的睾丸炎、附睾结核、精索静脉曲张等; 3、使用激素或某些化学药物,如抗癌药、利血平、马利兰、呋喃类等,可使精子发育不成熟; 4、生殖腺受到放射线照射,可引起精子的突变。 精子畸形指数sdi高怎么办 精子畸形指数高会导致不育,如果消除可不利因素(药物、放射线、高温、酒等),就应该针对病因进行治疗。由生殖道感染引起的患者,要进行抗炎治疗;如果是内分泌异常所致的患者,就要作出内分泌功能调整;对精索静脉曲张的患者,应考虑手术治疗,并且越早越好。 当精子畸形率超过70%的时候,就应进行染色体检查,如有染色体病,治疗会相对困难。

实验五

毒理学实验五 小鼠精子畸形实验 一、实验目的 1、学习观察小鼠精子畸形的实验方法。 2、检测受试物对雄性生殖细胞的遗传毒性。 二、实验原理 小鼠精子畸形受基因控制,具有高度遗传性,许多常染色体及X、Y性染色体基因直接或间接地决定精子形态。 在正常情况下,人与其它哺乳动物的精液中也有少量畸形精子,毒物影响下,数量大大提高。 三、试剂材料 1、健康成年雄性小鼠,体重25 g ~30g 2、器材 剪子、镊子、玻璃小平皿、滴管、载玻片、擦镜纸、染色缸、显微镜 3、试剂 生理盐水、甲醇、2%伊红水溶液、受试物及阳性对照物环磷酰胺 四、实验内容 1、解剖小鼠、摘取附睾、涂片、固定。 2、镜下观察精子形态,记录畸形精子。 3、计算精子畸形率。 4、结果分析与评价。 五、操作步骤 1、染毒:染毒5天,途径(一般经口) 2、处死:35天后颈椎脱臼处死 3、取材:附睾 4、涂片:将附睾所有内容物直接涂片(一滴生理盐水) 5、晾干: 6、固定:甲醇固定5分钟 7、冲洗和干燥

8、镜检:低倍镜----油镜,镜检1000个精子,记录座标。阴性对照组精子畸变率一般为1-3% 精子畸形主要表现: (1)头部:无钩、香蕉形、胖头、无定形、双头 (2)尾部:卷尾、双尾 六、实验设计 剂量和分组方法: 受试物至少设3个剂量组,同时设阳性和阴性对照组。 最高剂量组应能使部分动物死亡,然后以高剂量组的1/2~1/4递减作为中、低剂量组。 阳性对照组给予环磷酰胺(20mg/kgBW~40mg/kgBW),腹腔注射,连续5d,每天一次。阴性对照组给予等体积的溶剂。 七、实验结果及分析 1、正常小鼠精子涂片:由于是正常小鼠的精子涂片,因其畸形精子比例较低,没有观察到畸形精子,观察到一些正常精子,但由于没有进行固定染色,所以不是非常清晰。 在观察图片过程中,看到了一些条纹状的结构,阻碍了精子的观察,考虑可能是浓度太浓或者除精子外的其他组织被涂在载玻片上所致。 2、通过小鼠染毒的畸形精子样片,在镜下观察到了正常精子及畸形精子。畸形精子包括香蕉型,以及双头双尾等。(在附件图1中可以见到正常小鼠精子及香蕉型畸形的小鼠精子) 八、注意事项 1、涂片时生理盐水不要多,精子密度太稀不易观察。 2、涂片时需将附睾剪碎将所有内容物(精子)都点到整个片子上,然后再推片。 3、阅片时,注意区分人为剪碎的精子与精子畸形。

精子畸形试验

十三、精子畸形试验 Sperm Malformation Test 1 范围 本规范规定了动物精子畸形试验的基本原则、要求和方法。 本规范适用于化妆品原料的遗传毒性检测。 2 引用标准 GB 14924 试验动物与饲料标准 GB 15193·94 食品安全性毒理学评价程序 3 定义 精子畸形(sperm malformation) 指精子形态的异常改变。 4 原理 已知精子畸形是决定精子形成的基因发生突变的结果。常染色体和Y-性连锁基因突变及某些染色体重排,如性-常染色体易位,也可使精子发生畸形。 小鼠精子畸形试验能评价受试物对精子生成、发育的影响,可检测受试物在体内对生殖细胞的遗传毒性作用。 5 试验的基本原则 通过适当的途径使动物接触受试物,经过一定时间后处死动物,取其附睾,制备涂片,经固定、染色,在显微镜下计数畸形精子。 6 仪器和器械 生物显微镜、解剖剪、镊子、表面皿、离心管、小漏斗、吸管、滴管、载玻片、擦镜纸等。 7试剂 7.1 1%伊红染色液 称取伊红1g溶于100mL蒸馏水中。 7.2 生理盐水、甲醇(A.R) 8 实验动物和饲养环境 常规使用动物是雄性小鼠。6周~8周龄,体重为30g ~35g。 实验动物及实验动物房应符合国家相应规定。 9 剂量分组 受试物至少设三个剂量组。分别取1/2、1/5、1/10或1/20LD50剂量。当受试物的LD50大于5g/kg体重时,可取5g/kg体重为最高剂量。另外设阴性(溶剂)对照组和阳性物对照组。常用溶剂为水、生理盐水、植物油(玉米油、花生油)等。阳性物对照组可采用环磷酰胺40mg/kg/

日。每组至少有5只存活动物。 10 染毒途径和方式 染毒途径视实验目的而定。常用途径为经口灌胃方式。受试物各剂量组、阴性对照组和阳性物对照组的动物,均连续染毒5d,每日一次。一般于首次染毒后的第35d处死动物。 11 试验方法 11.1 制片 用颈椎脱臼法处死小鼠,剖开腹腔,暴露睾丸,分离两侧附睾,用眼科剪剖开附睾组织,与适量生理盐水混匀,涂片。 11.2 固定 待涂片干燥后,放入甲醇(A.R)液中固定5min。取出晾干。 11.3 染色 将涂片于1%伊红染液中染色1h,然后用蒸馏水轻轻冲洗,晾干。 11.4 观察与计数 首先,在低倍镜下选择背景清晰、精子分布均匀、重叠较少的区域,然后,在高倍镜下观察结构完整的1000个精子,计数其中畸形的精子。精子畸形主要表现在头部。按Wyrobeks 的分类标准,主要类型有:无钩、香蕉形、无定形、胖头、尾折叠、双头及双尾。无尾精子、头部重叠的或整个与另一个重叠的精子均不计数。判断双头、双尾精子时,要注意与两条精子的部分重叠相区别。 12 数据处理和结果判断 每只动物应按精子畸形类型分别记录,以便计算各实验组的精子畸形发生率和精子畸形类型的构成比。 利用Wilcoxon秩和检验法和其他适当的统计学方法。将受试物各剂量组精子畸形发生率分别与阴性对照组进行比较。 精子畸形试验阳性的判断标准是畸形发生率至少为阴性对照组的倍量或经统计学处理有显著性差异,并存在剂量-反应关系者。 一般正常小鼠的精子畸形率为0.8%~3.4%,但每个实验室应有自己稳定的精子自发畸形率。 13 试验报告 试验报告应包括以下内容: (1)受试物名称、理化性状、配制方法、所用溶剂; (2)动物种属和品系、体重、数量、来源(注明合格证号和动物级别); (3)实验动物饲养环境,包括饲料来源、室温、相对湿度、实验动物室合格证号; (4)剂量分组,染毒途径和方式; (5)试验方法:简述操作步骤,所用统计学方法; (6)结果:以列表方式报告受试物对动物精子畸形发生率和精子畸形类型分析的结果(表1和表2); (7)结论。

小鼠精子畸形试验

小鼠精子畸形试验 一、目的与要求 1、熟悉精子畸形的概念及类型、精子畸形试验的实验设计、试验检测的遗传学终点。 2、学习与掌握小鼠精子畸形试验的基本方法步骤,正常精子及畸形精子的镜下观察。 3、了解精子畸形试验数据整理、分析方法及结果的评价。 二、实验原理 精子的畸形主要就是指精子形态的异常改变,大、小鼠精子畸形受基因控制,具有高度遗传性,许多常染色体及X、Y性染色体基因直接或间接地决定精子形态。因此精子形态的改变提示有关基因及其蛋白质产物的改变。大、小鼠精子畸形试验可检测受试物对于精子生成、发育的影响,而且对已知的生殖细胞致突变物有高度敏感性,故精子畸形试验可用作检测受试物在体内对生殖细胞的致突变 作用。 三、实验设计 1、动物选择:一般采用小鼠,因为小鼠比较经济,且有大量的实验结果证实小鼠在该实验系统中对受试物最为敏感。6~8周龄(体重25~35g),雄性。每组应保证至少有5只存活小鼠。 2、染毒途径:多用腹腔注射,也可采用与人体实际接触化学毒物相同的途径,如经口、吸入及皮肤接触等。 3、染毒次数及取样时间:可采用1次或每天1次连续5天的方法进行染毒。 各种化学毒物作用于精子的不同发育阶段,可在接触某种化学毒物后不同时间出 现精子畸形,故有条件时,可于给受试物后第1、4、10周处死动物,检查精子形态。因为大部分化学毒物对精原细胞后期或初级精母细胞早期的生殖细胞较为敏感,故一般均就是于首次给受试物后的第35天处死。 4、剂量选择:至少设置3个剂量组。最高剂量组5天总剂量应能使部分动物死亡,一般可取1/2 LD50为高剂量组,然后以1/2~1/4递减作为中、低剂量组。另设溶剂对照组(阴性对照组)与阳性对照组。阳性对照组可用环磷酰胺(20 mg/kg)或甲基磺酸甲酯(75 mg/kg)或甲基磺酸乙酯(60 mg/kg)进行腹腔注射,每天1次,连续5

精子畸形指数_1

精子畸形指数 导致男性不孕不育的情况有很多,其中精子畸形就是一种。畸形精子,顾名思义,就是指精子发育出现异常,发育不好。而精子畸形指数就是判断精子是否正常的标准之一啦!下面我们一起来了解一下精子畸形指数是什么吧! 畸形精子是什么 一般畸形精子表现为头、体、尾的形态变异,头部畸形有巨大头、无定形、双头等;体部畸形有体部粗大、折裂、不完整等;尾部畸形有卷尾、双尾、缺尾等。畸形精子过多症是指在生育年龄的男性畸形精子症使男性不育的常见原因之一。 精子形态大小的正常范围 1、头部 头长3.5-5.0微米,宽2.0-3.0微米;精子头呈规则椭圆形。当精子头的长宽分别超过5和3微米时,称为大头;分别小于3和2微米时,称为小头。具有临床意义的精子头部异常,包括圆椎形(长宽分别小于5和2微米)、不规则形、双头、和梨形头。朽迈型精子头部则出现空泡。 2、体部(中段) 体部长5-7.0微米,宽1.0微米。宽超过2微米多反映胞桨小滴末完全退化,其对不育的影响尚待探讨。假如泡桨小滴大于精子头的一半,意味着精子不成熟,属于异常。 3、尾部 精子尾长45微米。尾部卷曲常与支原体感染有关。也有人报告,精子尾部出现卷曲与锌元素有关。双尾、尾断裂等畸形可能与无症状生殖系统感染有关。因此,出现这一现象可作精液微生物学检查。 畸形精子指数 畸形精子指数(teratozoospermia index,TZI)和精子畸形指数(spenn deformity index,SDI)与不育症男性患者精子密度、活动率、精子形态的关系。畸形精子指数(teratozoospermia index,TZI)的数值介于1.00(每个异常精子只有一种缺陷)和3.00(每个异常精子都有头、中段和尾部缺陷)。有报道提示,TZI 1.6与未经治疗不育夫妻的低生育率有关,而精子畸形指数(spenn deformity index,SDI)1.6是体外受精失败的阈值。因此,畸形精子指数TZI或精子畸形指数SDI小于1.6就属于正常,它代表的是精子在体内积体外受精的能力。 当然,男性朋友们如果发现自己出现了精子畸形的情况,也不用羞于见人,要及时到医院治疗,才能得到尽早有效的帮助。

精子畸形率高吃什么

精子畸形率高吃什么 【导读】畸形精子症是指异常形态的精子数比例过多的一种病症。畸形精子不具备正常的活动能力和受孕能力,是引起男性不育的主要原因之一.一般有如下病因可引起:(1)生殖道感染;(2)精道部分梗阻;(3)先天性畸形;(4)原发性睾丸功能衰竭;(5)免疫因素,如:自身抗精子抗体等;(6)长期接触有毒化学物质,电离辐射;(7)空气、水质、环境污染及吸烟、酗酒等;(8)长期穿紧身裤及热水坐浴等因素有关。那么男人精子畸形率高吃什么好呢,吃什么可以最好最快补精子?精子是衡量健康好坏的重要标准,一旦出问题,可能发展成男性不育。所以补精子行动志在必行。所以吃什么补精子并且可有效提高精子质量进而有效的防治男性不育是至关重要的。 男人吃什么可以改善精子畸形率过高呢?其实在需要补充维生素,平时多吃水果之外还有以下方法哦。 一、富含优质蛋白质的食物 蛋白质是构成抗体、激素、酶和各种组织器官的基本成分,男人体内缺乏蛋白质将对生殖健康产生重要影响。蛋白质是雄性激素的营养来源,蛋白质摄入不足会导致雄性激素分泌受阻,此外,蛋白质也是构成精液的基本原料,它的匮乏将使体内的氨基酸浓度无法得到均衡,影响精液的生成。 二、含硒高的食物 男性体内的硒有20%——40%集中在生殖系统,硒也因此被称为“男人的体内黄金”。它参与了男性睾丸酮的合成和运载活动,帮助提高精子活力以及受精等生殖活动,硒还是影响精子生产和代谢的一系列酶的重要组成,男人缺硒可致精子生成不足、精子活性变低、精子出现畸形等。 三、含锌高的食物 锌对男人的作用想必很多人都知道,睾丸、前列腺、精液都含有很高浓度的锌,它被誉为男性的“生命之花”,是合成人体抗氧化酶的必要营养素,对维系男性健康、加快新陈代谢、增强免疫能力有很大的作用。补锌可改善少精、弱精、精子不液化,还能有效防治前列腺炎等男科疾病。 另外提醒处于正在备孕男性应戒烟戒酒,规律生活,按时作息,而适当运动有利于精子的代谢和生成,帮助提高精子质量。 精子畸形率高的原因 通常情况下,男性精子畸形率高常常会导致一些婴儿出现畸形,那么是什么原因导致精子畸形率高呢。专家介绍,在我们的日常生活中,精子畸形率高的原因有很多,而男性的生殖器感染疾病是导致此现象的主要原因之一。 精子畸形率高的原因有很多,一般多见于泌尿生殖道感染(如:支原体、衣原体、淋菌、G+球菌、G-杆菌等)、先天性睾丸发育不全、腮腺炎并发的睾丸炎、附睾结核、慢性中毒、营养不良、精神过度紧张、性交过频、精索静脉曲张等;以上疾病均可影响精子的发生过程。据有关专家介绍,男性精子的畸形率高具体是指正常形态的精子少于50%,即精液中畸形精子超过50%。畸形精子是指头、体、尾的形态变异,头部畸形有巨大头、无定形、双头等;体部畸形有体部粗大、折裂、不完整等; 尾部畸形有卷尾、双尾、缺尾等。然而引起男性精子的畸形率比较高的原因有泌尿生殖道感染、腮腺炎并发的睾丸炎、附睾结核、精索静脉曲张等,它们均可影响男性精子的质量;使用激素或某些化学药物,如抗癌药、利血平、马利兰、呋喃类等,可使精子发育不成熟;生殖腺受到放射线照射,可引起精子的突变;阴囊局部长期高热、长期酗酒(特别是高浓度的烈性酒),均可使精子发生畸变。

男性生殖学精子功能检测的实验进展

[6] von Schoultz E,Hanss on LO,D jureen E,et al.Pr ognostic value of serum analyses of S2100beta p r otein in malignant melanoma[J]. Melanoma Res,1996,6(2):1332137. [7] K rnell R,von Schoultz E,Hanss on LO,et al.S100B p r otein,52S2 cysteinyldopa and62hydr oxy252methoxyindole222carboxylic acid as bi oche m ical markers for survival p r ognosis in patients with malig2 nant melanoma[J].Melanoma Res,1997,7(5):3932399. [8] Bonfrer J M,Korse C M,N ie weg OE,et al.The lum inescence i m mu2 noassay S2100:a sensitive test t o measure circulating S2100B:its p r ognostic value in malignant melanoma[J].B r J Cancer,1998,77 (12):221022214. [9] Hauschild A,M ichaelsen J,B renner W,et al.Pr ognostic signifi2 cance of serum S100B detecti on compared with r outine bl ood pa2 ra meters in advanced metastatic melanoma patients[J].Melanoma Res,1999,9(2):1552161. [10] Hauschild A,Engel G,B renner W,et al.S100B p r otein detecti on in serum is a significant p r ognostic fact or in metastatic melanoma [J].Oncol ogy,1999,56(4):3382344. [11] Kr hn G,Kaskel P,Sander S,et al.S100beta is a more reliable tumor marker in peri pheral bl ood f or patients with ne wly occurred melanoma metastases compared with M I A,album in and lactate2de2 hydr ogenase[J].Anticancer Res,2001,21(2B):131121316.[12] Ha mberg AP,Korse C M,Bonfrer J M,et al.Serum S100B is suit2 able f or p redicti on and monit oring of res ponse t o che moi m muno2 therapy in metastatic malignant melanoma[J].Melanoma Res, 2003,13(1):45249. [13] Hauschild A,Engel G,B rennerW,et al.Predictive value of serum S100B for monit oring patients with metastatic melanoma during chemotherapy and/or i m munotherapy[J].B r J Der mat ol,1999, 140(6):106521071. [14] Jury CS,Mc A llister EJ,MacKie R M.R ising levels of serum S100 p r otein p recede other evidence of disease p r ogressi on in patients with malignant melanoma[J].B r J Der mat ol,2000,143(2): 2692274. [15] Zissi m opoul os A,Kar pouzis A,Karaitianos I,et al.Serum levels of S2100b p r otein after f our years f oll ow2up of patients with melanoma [J].Hell J NuclMed,2006,9(3):2042207. [16] Henze G,Dummer R,Joller2Je melka H I,et al.Serum S1002a mark2 er f or disease monit oring in metastatic melanoma[J].Der mat ol ogy, 1997,194(3):2082212. [17] Bánfalvi T,Udvarhelyi N,O r osz Z,et al.Heter ogenous S2100B p r o2 tein exp ressi on patterns in malignant melanoma and ass ociati on with serum p r otein levels[J].Oncol ogy,2003,64(4):3742379. 收稿日期:2007209206 修回日期:2008204216 男性生殖学精子功能检测的实验进展 庞伟鸿,刘红杏,陈 忠 (广东湛江中心人民医院检验科,广东湛江524037) 中图分类号:R698.2 文献标识码:A 文章编码:100622084(2008)1021558203 摘要:人精子功能检测对男性不育症的病因诊断具有重要意义。有关精子功能的检测越来越受到人们的重视,如对精子运动特征检测、形态学分析、体外存活试验、精子膜完整性试验、顶体状态测定、精子2宫颈黏液相互作用试验等。这些试验均为男性不育症的诊断提供帮助,但要全面评价精子功能必须进行综合的检测。 关键词:男性生殖;精子功能;不育症 Exper im en t a l D evelpom en t of Sper m Functi on Tests i n M a le Genesi ology PANG W ei2hong,L I U Hong2xing,CHEN Zhong.(D epart m ent of D oci m ology,Zhanjiang Central People′s Hospital,Zhanjiang 524037,China) Abstract:Human s per m functi on test has such an essential r ole on the eti ol ogic diagnosis of male infer2 tility that it attracts more and more attenti on.Many tests have offered indis pensable app r oaches t o diagnose the male infertility such as s per m move ment character,mor phol ogical analysis,survival test in vitr o,integrity of s per m me mbrane,acr os om ic status,interacti on bet w een s per m and cervical mucus and s o on.To evaluate the s per m functi on,comp rehensive test is critical. Key words:Male rep r oducti on;Sper m functi on;I nfertility 男性不育的发病率呈逐渐增加的趋势,约占男女不育不 孕的一半。男性生殖过程包括精子的生成、成熟、转运、精卵 结合及受精卵的发育等一系列复杂的环节,男性不育与生育 的临床评估和基础研究的一项重要试验是精子功能检测。精 液常规检查了解精液、精子和精浆的一般性状,精子功能评价 则是检测精子执行某个特定功能的状态。因此,在常规精液 检查的基础上,还需借助一组精子功能试验来了解男性不育 的可能病因和综合评价男性生育潜力。现就当前有关精子功 能的检测方法予以综述。 1 精子运动特征的检测 运动是精子的特征。精子必须做生理性运动,才能在女 性生殖道迁移到达受精部位和完成受精过程。精子运动是一 个复杂的过程,检测精子运动的传统方法是肉眼在显微镜下 对精子活动率和活力等级进行估计,这种方法简便易行,但对精子运动的定性和定量存在一定程度的主观误差。计算机辅助精子分析系统可快速地给出精子运动轨迹参数,直观地观察精子的运动图像,较人工法具有两个优点:①高精确度;②提供精子动力学的量化数据。研究表明,不育组的精子直线速率、曲线速率、平均路径速率、精子头侧摆动幅度、精子尾鞭打幅度等参数明显低于正常生理组[1]。部分文献报道,精子运动的速度对预测精子在体 外的受精能力有显著统计意义[2]。实际应用计算机辅助精子分析时,精液标本性状(如非精子成分、液化状态、精子密度高低等),系统灰度、阈值的确定,标本取样,检验人员对仪器原理及操作熟练程度等,都会影响测定的准确性。 2 精子形态学分析 精子形态是精子的重要特征,近年来国际上非常重视人类精子的形态学分析。体外受精研究表明,正常形态精子数量与受精率呈正相关,畸形精子很少能结合到卵透明带上。常见的精子功能缺陷是精子的形态异常,而大部分畸形的精子都是顶体异常,圆形无顶体的精子可以确定为完全不育[3]。很多头畸、颈畸或尾畸的精子可运动,但在正常情况下不能受精或受精潜力低下。 精子形态学分析以精子涂片染色为基础。世界卫生组织(WHO)从精液分析手册的第1版(1980)至第4版(1999),一

精子畸形率太高怎么办,精子畸形太多怎么办

精子畸形率太高怎么办?精子畸形怎么治疗 精子畸形率太高怎么办?精子畸形怎么治疗?这个问题应该是当下很多男性都有的一个困扰。精子畸形率高这在现代男性中普遍发生,已经不足为奇,但这并不表示大家可以对此视而不见,精子畸形率高,造成的直接危害就是对男性生育的影响,既有可能导致男性不育,也有可能导致胎儿畸形,总之危害性十足。那么,精子畸形率太高怎么办呢? 男性精子畸形率高的不是无缘无故发生的,要想有效治疗,首先要明确患病的原因。引起精子畸形的常见原因有内分泌功能下降;生殖系统与泌尿的某些感染;酗酒引起的精子畸形;吸烟会使畸形精子发生率明显增高。解除疾病给男性朋友可能造成的危害,针对病因对症治疗是关键。 一、精子畸形率太高影响大,治疗要慎重不能盲目。高畸形率精子症的治疗应该根据引起畸形精子的起因,并且消除不良因素,针对病因进行针对性治疗,从而尽早的摆脱疾病困扰,畸形精子如超过一定比例,应进行染色体检查,如有染色体病,则治疗困难。 二、目前用于精子畸形率太高的治疗方法不只一种,要有重点的选择。如果由生殖道感染引起者,可进行抗炎治疗;由内分泌异常所

致者,则给予内分泌功能调整,对比较严重的患者应考虑手术治疗。 三、避免男子内分泌功能低下和体内某些相关激素分泌的不平衡现象,提倡健康的饮食,积极的运动,有规律的生活等,从根本上避免由此而造成的精子畸形率增高,能够很好的起到预防作用。同时,应积极预防和治疗慢性前列腺炎、精囊炎、尿道炎等生殖器炎症,以消除各种可能的致畸因素。 以上就是我们关于“精子畸形率太高怎么办”的相关介绍,希望对有此困扰的患者朋友们有一定帮助。精子畸形率太高不仅危害患者身心健康,而且对患者的家庭也是一个不小的打击,因此,大家对此一定引起高度的重视,早发现早诊断早治疗,才能早日恢复健康。 精子畸形怎么治?精子畸形的治疗与很多因素都有直接的关系。其实患者们首先还是不要担心,最好先调整好自己的心理,然后去正规医院进行一个全面的诊断,只有通过诊断才能判断出病情的严重性,然后依照病情采取合适的治疗方式,这样病情才会有所好转。临床发现,精子畸形患者在服用育之缘片2个月之后有明显改善,因此患者也可自行服用育之缘调理。 另外,治疗精子头部畸形,还要注意进行精子头部畸形的预防。例如注意个人卫生,特别是外生殖器的卫生,避免不良因素的接触,

精子畸形率高的原因,精子畸形率高吃什么

精子畸形率高的原因,精子畸形率高吃什么 最近有不少的男性去医院看病的时候都发现他们存在着精子畸形率高的现象,精子畸形率高怎么办?专家表示,而精子畸形症是指精液中含有畸形精子大于70%,正常的精子形态标准达不到30%的病症,那么,精子畸形率高怎么办呢? 精子畸形率高怎么办? 1、不良的生活习惯,长期的洗桑拿,手机电脑辐射,已经在巨大压力下长久加班。开车多。还有身边适用的化学性化妆品多,这些不良的生活习惯加大了精致畸形率。

2、泌尿生殖道感染、腮腺炎并发的睾丸炎、附睾结核、精索静脉曲张等等疾病,均可影响精子的质量,导致精子畸形。 3、阴囊局部长期高热、长期酗酒,均可使精子发生畸变,以及使用激素或某些化学药物,如抗癌药、利血平、马利兰、呋喃类等,可使精子发育不成熟。 精子畸形率高吃什么,精子畸形率高的原因: 1、多见于泌尿生殖道感染疾病,先天性睾丸发育不全、腮腺炎并发的睾丸炎、附睾结核、慢性中毒、营养不良、精神过度紧张、性交过频、精索静脉曲张等;以上疾病均可影响精子的发生过程。 2、阴囊局部长期高热、长期酗酒。均可使精子发生畸变。酗酒和长期饮用酒精含量较高的烈性酒,可以损害睾丸生精细胞功能、干扰精子生长成熟,使精子畸形。 3、中医则认为导致精子畸形是因为肾阴肾阳失去平衡,气虚无力化生真精,就会引起精子异常,使精子改变面目。同时肾阳受耗,相火偏炽,也会使精子灼伤,精子会出现异常形态发生。 4、生殖器官病变,如:睾丸、附睾、精囊腺受到放射线照射,

可引起精子发生突变。精细胞突变与照射强度、照射时间有关。 5、染色体异常引起畸形精子。畸形精子超过70%,应进行染色体检查,看是否因染色体异常引起畸形精子数量过多。 以上为大家介绍的是精子畸形率高的原因,精子畸形率高吃什么呢,可直接服用育之缘片改善精子畸形,临床效果不错,希望能为大家带来帮助。

精子头部畸形的原因,精子头部畸形怎么办

精子头部畸形的原因,精子头部畸形怎么办 生育健康快乐的宝宝是婚后每对夫妻所向往的,因为宝宝既是夫妻生命的延续,更会给整个家庭增添无尽的乐趣,但是随着社会竞争力的不断加大等因素影响,男性不育的发病率一直呈上升趋势,引起精子头部畸形的因素有很多种,那么有精子头部畸形会影响怀孕吗,要怎么办才好?下面我们给大家介绍一下。 先来了解一下什么是精子头部畸形,因为了解这些对于疾病的预防和治疗帮助是很大的,精子畸形是指头、体、尾的形态变异,精子的头部畸形有巨大头、双头、无定形等,体部畸形有体部粗大、折裂、不完整等,尾部畸形有卷尾、双尾、缺尾等。畸形精子症是指正常形态的精子少于半数,即精液中畸形精子超过半数。畸形精子都是活力很差的精子,它不一定能受孕,这也是造成不育症的重要原因之一。造成畸形精子的原因的种类很多,这可能是因为遗传缺陷、睾丸未降、

睾丸物理损伤、青春期腮腺炎引起的睾丸功能不全。通常致病因素不明。患有原发性睾丸功能不全的病人,通常睾丸都比较小、柔软,血浆总FSH升高。在临床上,服用育之缘片对改善后天因素形成的精子畸形具有良好效果。 导致精子头部畸形率高的原因有以下几点: 泌尿生殖道感染、腮腺炎并发的睾丸炎、附睾结核、精索静脉曲张等等疾病,均可影响精子的质量,导致精子畸形。 不良的生活习惯,长期的洗桑拿,手机电脑辐射,已经在巨大压力下长久加班。开车多,还有身边适用的化学性化妆品多,这些不良的生活习惯加大了精致畸形率。建议日常生活中吃一些育之缘口嚼片来提高精子质量。 精子头部畸形怎么办?专家表示,按照常理来说畸形精子受孕是相对比较困难的,所以患者要对这样的情况有一个心理准备。我们知道,精子要穿透宫颈粘液,通过女性生殖道达到授精部位,穿透卵丘与透明带,必须具有一定的活力,缺乏活力的精子数量再多也是没有用处的。影响精子穿透宫颈粘液的常见因素为宫颈粘液的理化状态、精浆酶的活性、精子的运动质量等。

精索静脉曲张会导致精子畸形吗

精索静脉曲张会导致精子畸形吗 在进行孕前检查的时候,有很多男性朋友发现自己的精子畸形率比较高,这个时候一般医生都会建议您先不要让妻子怀孕,等到您的精子畸形率下降之后再进行生育,这样的话可以避免妻子出现早期流产的情况。而想要治疗精子畸形,首先您要找到是什么原因引起的才可以,那么精索静脉曲张会导致精子畸形吗? 男性精索静脉曲张之所以会导致男性生育困难,其中很大程度上是由于影响到了男性的精子质量,所以导致生育功能下降。精子的畸形分为了三种情况,一种是头部畸形,一种是尾部畸形,还有一种不太常见是中部畸形,但是这三个部位不管哪个部位出现畸形,都不能够让女性正常受孕,即便是受孕成功,胚胎也很难存活,所以畸形精子率如果比较高的话,很容易会导致女性出现早期流产现象。而据男科专家介绍说,临床上有很多精索静脉曲张患者都伴随有精子畸形的情况出现,所以可以认为精索静脉曲张是引起精子畸形的因素之一。 精索静脉曲张之所以会导致精子畸形,是因为一般该病会引起睾丸在产生精子的时候有一定的功能障碍,而且患有精索静脉曲张的话,还很容易会导致睾丸部位的温度升高,而在过高的温度下精子是没有办法正常发育的,所以也就会导致畸形精子的出现。 另外即便是正常的精子,如果说长时间在高温状态下的话,也很容易会出现死亡,所以精索静脉曲张不但会导致精子畸形,还会导致死精症。由此可见该病对于男性生育的影响之大。 既然知道了精索静脉曲张会导致精子畸形吗,为了避免这种情况的发生,建议患者一定要及早对自己的精索静脉曲张进行治疗,并且在平时的是注意穿着紧身的内裤或者托脉林阴囊托带裤,这样才可以减轻疾病带来的伤害。 男性患有了精索静脉曲张后,不仅仅会对于男性的精子活力、数量造成影响,还会影响精子的形态。通过专家的解释,男性朋友对于这个问题应该有了正确的认识。如果您患有了精索静脉曲张后,最好及早到正规医院进行专业、有效的治疗。

精子畸形率检测实验

精子畸形率检测 一、实验目的: 精子畸形试验是检测受试化学毒物能否破坏哺乳动物精子正常形态的实验方法。通过该实验,学习和掌握小鼠精子畸形试验的原理和步骤。 1. 熟悉精子畸形的概念及类型、精子畸形试验的实验设计、试验检测的遗传学终点。 2. 学习和掌握小鼠精子畸形试验的基本方法步骤,正常精子及畸形精子的镜下观察。 3. 了解精子畸形试验数据整理、分析方法及结果的评价。 二、实验原理: 1.小鼠精子畸形受基因控制,具有高度遗传性,许多常染色体及X、Y性染色体基因直接或间接地决定精子形态。 2.精子的畸形主要是指形态的异常,是决定精子形成的基因发生突变的结果。因此形态的改变提示有关基因及其蛋白质产物的改变。 三、实验器材及试剂: 眼科剪、眼科镊、小平皿、显微镜、擦镜纸、带橡皮头吸管、载玻片、玻璃染缸 1%伊红染液、9%生理盐水 四、实验步骤: 1. 制片 颈椎脱臼处死小鼠,取出双侧附睾,将附睾放入1 ml磷酸盐缓冲液或生理盐水中。用眼科剪将附睾纵向剪1~2下,静止3~5 min,轻轻摇动。吸取此精子悬液滴于清洁载玻片一端,均匀推片,待玻片晾干后用甲/乙醇固定5min以上,自然晾干。用1 %~2 %伊红染色15min,用水轻冲,干燥。 2. 阅片 在低倍镜下找到背景清晰、精子重叠较少的区域,然后用油镜计数。每只小鼠为一观察单位,计数1000条完整的精子中畸形精子数,计算各组小鼠精子畸变率。其中有头无尾(轮廓不清)、头部与其他精子或碎片重叠及人为剪碎的精子均不计算。 精子畸形主要表现在头部,其次为尾部,可分为无钩、香蕉形、胖头、无定形、尾折叠、双头、双尾等。异常精子均应记录显微镜的坐标数,以备复查。并分别记录异常类型,以便统计精子畸形率及精子类型的构成比。判断双头、双尾畸形时,要注意与两条精子的部分重叠相鉴别,判断无定形时要与人为剪碎及折叠相鉴别。 五、注意事项: 判断双头、双尾畸形时,要注意与两条精子的部分重叠相鉴别,判断无定形时要与人为剪碎及折叠相鉴别。使用的小鼠要健康,以免感染、体温增高等可能导致精子畸形率增高,造成假阳性结果。

锰对小鼠精子数量、畸形率和活动度影响

【关键词】小鼠精子近年来,随着对锰的生殖毒理、生殖流行病学和生殖生化领域的研究进展,锰对男性生殖系统的损害已渐渐受到重视,并提出以精子数量、精子形态结构和精子运动能力等作为衡量环境有害因素对雄性生殖机能影响的重要观察指标〔1〕。为此,本文对小鼠精子数量、畸形率和活动度进行了研究。 1 材料与方法11 实验动物 6~8周雄性昆明种小鼠100只,体重23~28g(贵阳医学院实验动物中心),合格证号为SCXK 2002-0001。随机分为4组,即3个不同剂量MnCl2组(75,15,30mg/kg)和对照组,分别给予腹腔注射MnCl2和等量生理盐水,1次/d,每周5d, 每组25只,每周测小鼠体重,调整用锰量。12 主要试剂 MnCl2・4H2O(中国医药集团上海化学试剂公司)。13 标本收集分别于染锰3,7,14,28,56d随机每组取5只小鼠,脱臼处死,立即分离附睾。14 精子计数参照文献〔2〕。15 精子活动度参照文献〔2〕。精子活动度分级参照WHO推荐的方法,按精子游泳状态将精子活动度分为4级〔3〕。精子活动度=(Ⅰ+Ⅱ+Ⅲ)/(Ⅰ+Ⅱ+Ⅲ+Ⅳ) ×100%。16 精子畸形率取上述精子悬液500μl,加入2%伊红溶液50μl,染色1min,涂片,甲醇固定。油镜下观察1000个精子/只,用‰表示精子畸形率〔4〕。精子畸形分类参照文献〔5〕的方法。17 统计分析采用SPSS 110统计软件进行分析。所得计量资料用±s表示,用F分析进行检验;精子活动度采用χ2检验;精子畸形率用Poisson分布进行检验。 2 结果21 氯化锰对小鼠精子数量的影响(表1) 各组在染锰第3,7d精子计数与对照组比较,差异无统计学意义(P>005);染锰14d,30mg/kg组精子计数开始降低,与对照组比较,差异有统计学意义(P<005);染锰28d,3个染锰组精子计数与对照组比较,差异有统计学意义(P<005,P<001,P<001);至染锰56d,3个染锰组精子计数均显著降低,与对照组比较,差异有统计学意义(P<001),精子数量随染锰剂量增加和时间延长逐渐减少。表 1 染锰剂量和时间对小鼠精子数量的影响(略)注:与对照组比较,a P<005,b P<001;与相同剂量组染锰3d比较,c P<005,d P<001;与相同剂量组染锰28d比较,e P<005,f P<001 22 氯化锰对小鼠精子畸形率的影响(表2) 畸形精子的类型以无钩、香蕉头和不定形为主,在15与30mg/kg组中偶见双头和双尾的精子,染锰至28d,15,30mg/kg组精子畸形率明显增加,与对照组比较差异均有统计学意义(P<001)。染锰至56d,各染锰组精子畸形率与对照组比较差异有统计学意义(P<001)。且随染锰剂量的增加,精子畸形率升高,呈明显正相关(r=0430,P<001)。结果显示精子畸形率随染锰时间的延长而逐渐增高,亦呈明显正相关(r=0592,P<001)。23 染锰剂量及时间对小鼠精子活动度的影响(表3) 随染锰剂量的增加和染锰时间的延长,活动精子数明显降低,与剂量和时间呈明显负相关(r=-0571,P<001;r=-0381,P<001)。[!--empirenews.page--] 表 2 染锰剂量和时间对小鼠睾丸精子畸形率的影响(略)注:与对照组比较,a P<005,b P<001;与相同剂量组染锰3d比较,c P<005,d P<001;与相同剂量组染锰28d比较,e P<005,f P<001 表3 染锰剂量与时间对小鼠精子活动度的影响(略)注:与对照组比较,a P<005,b P<001;与相同剂量组染锰3d比较,c P<005,d P<001;与相同剂量组染锰28d比较,e P<005,f P<001 3 讨论本实验发现,随染锰剂量的增加和时间的延长,各剂量组小鼠精子数量逐渐减少。提示锰可以通过血睾屏障,干扰生精细胞分裂、分化的过程。研究发现,锰能使多巴胺(DA)和5-羟色胺(5-HT)含量减少,从而降低了DA和5-HT对垂体促性腺激素(LH、FSH)的抑制,导致FSH和LH水平升高〔6〕。下丘脑受循环中性激素水平的负反馈调节作用而使睾酮浓度下降。已知精子的生成是一个极其复杂的过程,有多种因素共同参与调节,其中睾酮是人们所熟知的一个重要因素〔7〕。睾酮的主要生理作用之一是促进精子发生,锰可间接导致睾酮浓度下降,从而使精子数量减少。锰可抑制乳酸脱氢酶(LDH),阻碍精子能量来源,干扰粗线期初级精母细胞的减数分裂及分化为精子的过程,从而影响精子的数量和活动力〔8〕。染锰14d,30mg/kg组即出现精子数量的减少,提示锰可通过血睾屏障,直接杀伤精子。本实

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