中国转基因棉花研发应用二十年

中国农业科学 2015,48(17):3372-3387

Scientia Agricultura Sinica doi: 10.3864/j.issn.0578-1752.2015.17.005

中国转基因棉花研发应用二十年

郭三堆1,王 远1,孙国清1,金石桥2,周 焘1,孟志刚1,张 锐1

(1中国农业科学院生物技术研究所/国家农作物基因资源与遗传改良重大科学工程,北京100081;2全国农业技术推广服务中心,北京 100125)

摘要:转基因技术是指利用重组DNA原理,将优良目的基因整合到靶标生物基因组中,并使靶标生物得以表达目的性状的技术。这一技术克服了生物有性杂交的限制,使物种间基因交流的范围无限扩大,既可以从原核生

物到真核生物,也可以从单细胞生物到多细胞生物,还可以从低等生物到高等生物,反之亦然。因此,这项技术

自发明以来,即广泛应用于农业、林业、医学等领域,为其研究开辟了一个全新的时代。转基因植物是以农杆菌

等为媒介,将来源于动物、植物或微生物等其他生物甚至人工合成的外源基因转入基因组中,使之稳定遗传并赋

予其靶标性状,如抗病、抗虫、抗逆、高产、优质等的植物。以1972年构建第一个重组DNA分子为契机,1983

年首次获得转基因烟草为起点,植物转基因技术在近30年的时间内发展迅猛,至今已有200多种植物已成功获得

转基因株系,40多种数千例转基因植株进入田间试验。根据国际农业生物技术应用咨询服务中心(ISAAA)统计,

全球转基因植物的种植面积由1996年的260万hm2已经迅速增到2014年的1.815亿hm2,累计种植面积大约比中

国国土总面积还多80%。在全球转基因植物研发和应用迅猛发展的同时,中国也先后批准了7种转基因植物的生

产应用,其中,抗虫棉是唯一大规模应用的转基因农作物。从1994年中国研制成功国产单价抗虫棉(GK),以及

1995年美国保铃棉进入中国至今,抗虫棉已经在中国推广应用了近20年的时间。文章介绍了这20多年来,中国

科学家在抗虫、抗旱耐盐碱、抗除草剂、抗病以及纤维品质改良等性状方面所取得的转基因棉花研究进展;在农

杆菌介导、基因枪轰击、花粉管通道介导、茎尖或芽尖转化、农杆菌液浸染和纳米载体花粉介导等不同转化技术

上所进行的探索;同时,介绍了中国转基因植物的安全性评价状况,并从抗虫棉品种审定、发展趋势和产业化状

况几个方面,介绍了转基因抗虫棉在中国的应用,最后对未来转基因棉花研究方向进行展望。

关键词:抗虫棉;转基因;安全评价;品种;产业化

Twenty Years of Research and Application of

Transgenic Cotton in China

GUO San-dui1, WANG Yuan1, SUN Guo-qing1, JIN Shi-qiao2, ZHOU Tao1, MENG Zhi-gang1, ZHANG Rui1

(1Biotechnology Research Institute, Chinese Academy of Agricultural Sciences/National Key Facility for Crop Gene Resources and Genetic Improvement, Beijing 100081; 2The National Agro-Tech Extension and Service Center, Beijing 100125)

Abstract: Genetic engineering mainly deals with the transfer and expression of functional genes into the targeted genome of an

organism to have desired phenotype. This technique has stunned the limitations of sexual hybridization by allowing the transfer of

genes among species from prokaryotes to eukaryotes, unicellular to multicellular, lower organisms to higher organisms and Vice

versa. This technology has opened the avenues of research, and since its invention scientists are readily using it in the field of agriculture, forestry and medicine. The use of different techniques like agrobacterium mediated transformation has made it possible

to transfer different genes to the targeted genomes for deploying the resistance against biotic and abiotic stresses like diseases,

insect/pests, drought and salinity as well as for the improvement of yield and quality of plants. Since the birth of first transgenic

收稿日期:2015-01-19;接受日期:2015-06-15

基金项目:国家“863”计划(863-Z17-01-01)、农业部“发展棉花专项资金”(99044)、科技部“转基因植物产业化”专项(J99B-002)、中华农业科教基金(99-01-04)、国家计委高科技产业化示范工程(计高技-20010482)、转基因生物新品种培育重大专项(ZX08005-004)

联系方式:郭三堆,Tel:010-********;E-mail:guosandui@https://www.360docs.net/doc/c19253486.html,

17期郭三堆等:中国转基因棉花研发应用二十年 3373

tobacco in 1983, more than 200 plant species have been used by the researchers for genetic transformation and some thousands of

transgenic plants of 40 species are under field trials. International Service for the Acquisition of Agri-Biotech Applications (ISAAA)

has reported the dramatic increase in area under transgenic plant, i.e. 2.6 million hectares in 1996 to 181.5 million hectares in 2014

around the whole globe. The accumulated area of transgenic crops in the world is 80% more than the total land of China. With the

global large scale adoption and application of transgenic plants development technology, seven transgenic plants also have been

approved by Chinese government for general cultivation. Among these, insect resistant transgenic cotton including series of GK and

SGK cotton cultivars developed by the Chinese scientists in 1994 and 1998 respectively, as well as the Boll guard imported from

USA in 1995 was the only crop occupying the large cultivated area of China. This paper discussed the course of development of

transgenic cotton for resistance against diseases, insects and herbicides as well as for the improvement of fiber yield and quality in

China and improved methods of genetic transformation like Agrobacterium mediated, tissue culture, gene gun bombardment, pollen

tube pathway, shoot tip, floral-dip and nano-carrier pollen mediated transformations. Finally this paper also discussed the biosafety

system regarding the transgenic plants development, Bt cotton seed industry and future prospects of transgenic cotton in China.

Key words: insect resistant cotton; transgene; biosafety evaluation; variety; industrialization

0 引言

从1994年中国研制成功单价抗虫棉(GK),以及1995年美国保铃棉进入中国以来,抗虫棉在中国推广应用了近20年的时间。在这期间,虽然中国先后批准了7种转基因植物生产应用,但在中国转基因农作物产业化应用方面,抗虫棉仍然是一枝独秀[1]。

本文介绍了20多年来,中国科学家在抗虫、抗除草剂、抗旱耐盐碱、抗病、纤维品质改良等转基因棉花研究方面所取得的进展,以及在农杆菌介导、花粉管通道、茎尖转化等不同转化技术上所进行的探索。同时,以国产抗虫棉为例,介绍了中国转基因生物安全性评价体系,概述了抗虫棉在中国的产业化历程,并对转基因棉花的研究方向作出进一步展望。

1 不同类型转基因棉花研究进展

利用基因工程技术对棉花进行遗传改良是棉花分子设计育种的主要途径,有效地弥补了传统育种方法不能解决的问题,快速地培育出多种新型棉花育种材料。棉花遗传改良主要涉及抗逆、抗除草剂、纤维品质和早衰等重要农艺性状改良。其中,抗逆基因工程培育的抗虫转基因棉花和抗除草剂转基因棉花得到了广泛的生产应用,并取得了巨大的经济和生态效益。同时,为解决粮食增产与耕地面积不断缩小的矛盾,使棉花能够在粮食作物不能种植的干旱地和盐碱地进行栽培生产,培育具有优质、高产、耐旱耐盐碱、抗病、抗早衰等重要农艺性状的新型转基因棉花材料成为当前棉花遗传改良的研究热点。此外,适宜于南方多雨高湿地区栽培的耐涝转基因棉花等特殊用途的新材料培育也取得了一定的进展。1.1 抗虫转基因棉花

中国抗虫基因的研制起始于20世纪90年代初期,通过遗传转化方法使棉花获得抗虫功能的基因主要包括三类:来源于苏云金芽孢杆菌的杀虫蛋白基因(Bt)、从植物中分离的昆虫蛋白酶抑制剂基因(PI)和植物凝集素基因(1ectin)。当前,大规模生产应用的国产转基因抗虫棉主要为单价抗虫棉和双价抗虫棉,其遗传转化的抗虫基因为Bt杀虫基因GFM Cry1A和豇豆胰蛋白酶抑制剂基因Cpti。

1992年,郭三堆等[2]利用分子设计技术人工合成了具有高杀虫活性的Bt杀虫基因GFM Cry1A并于1994年将该基因导入棉花,在此基础上与育种单位合作,成功选育出GK1、GK12、GK19、GKZ1和晋棉26国产单价转基因抗虫棉品种,并大面积推广应用,使中国成为继美国之后世界上第二个研制成功转基因抗虫棉的国家。之后,为了提高抗虫棉的杀虫效率、延缓棉铃虫等害虫对杀虫蛋白产生抗性,郭三堆等[3]将2个不同杀虫机理的抗虫基因GFM Cry1A和Cpti 同时导入棉花,创制了双价转基因棉花新种质。通过与国内多家育种单位合作,成功选育出sGK321(1998年)、中棉所41(2001年)和中棉所45(2003年)等双价转基因抗虫棉新品种。田间抗虫性试验结果表明,2、3、4代棉铃虫平均双价抗虫棉百株幼虫数量分别比常规棉田减少81.4%、87.1%和87.0%,分别比单价抗虫棉田减少11.1%、33.3%和57.1%[4]。双价转基因抗虫棉的研制成功,不仅在抗虫性上比单价抗虫棉优越,更重要的是丰富了抗虫棉种质资源,加速了抗虫棉新品种的培育和推广应用[3]。

此外,转GFM Cry1A和Cpti双价转基因抗虫棉的大面积推广应用,为高效广谱抗虫棉的研制奠定了

3374 中国农业科学48卷

理论基础,推动了新抗虫基因的研制和应用,尤其是在抗棉铃虫和蚜虫等棉花主要害虫的防治方面取得了突破性的进展。王伟等[5]利用根癌农杆菌介导遗传转化方法获得含有豌豆外源凝集素基因P-Lec和大豆Kunitz型胰蛋白酶抑制剂基因SKTI的双基因转基因棉花,对蚜虫表现出高效的抗虫性。刘志等[6]将Cry1A 和雪花莲凝集素基因GNA导入棉花,选育获得转Cry1A+GNA双基因抗虫棉花纯合株系TBG,在苗期、蕾期、开花期和结铃期主茎叶都对棉铃虫幼虫具有很高杀虫活性。同时,TBG植株在不同生育时期对棉蚜群体也表现出明显的抑制效果,其苗期和蕾期抑蚜率分别达到了50.31%和46.61%。吴家和等[7]将入工设计合成的Cry1Ac、Bt29K和慈菇蛋白酶抑制剂基因API-B导入棉花,培育出9个抗虫性好、农艺性状优良的转基因棉品系,对棉铃虫抗性均达到90%以上。肖松华等[8]将野生荠菜凝集素基因(WSA)导入常规陆地棉品种,对9个高品质转WSA棉花株系进行抗蚜鉴定,结果表明,转基因棉花株系对棉蚜均表现出较高的抗性。张林水等[9]将Cry1Ac3与Cpti的融合基因和GNA共转化棉花,获得了同时含有3个抗虫基因的转基因棉花新材料,该材料对棉铃虫具有较高的抗性。雒瑶瑜等[10]将Cry1Ac与Cry2Ab导入棉花,获得了双基因抗虫棉育种材料2009002。该转基因棉花除了抗棉铃虫外,对小地老虎、刺吸类害虫、蛀食类害虫和食叶类害虫有一定的抗虫性。

多基因共转化抗虫棉花的研制为中国后续抗虫基因的研制和应用研究开拓了新思路。通过构建多基因植物表达载体共转化不同杀虫机制的抗虫基因,或者通过基因聚合技术将多个抗虫基因聚合于一个转基因棉花材料内,培育获得含有多个基因的转基因抗虫棉。不仅可以使棉花受体获得多种机制的抗虫性,利用基因互补的方式加强转基因棉花的抗虫能力延缓害虫产生抗(耐)性,而且可以拓宽棉花抗虫谱,使其获得能够高效杀死主要害虫的广谱抗虫性[11]。

1.2 抗旱耐盐碱转基因棉花

中国水资源的短缺,土壤盐渍化和频繁的极端天气严重影响作物的生产,此外,在有限耕地的前提条件下,粮棉征地的矛盾日益凸显,通过研究抗逆基因提高棉花的抗逆能力,将有效地提高土地利用率,拓展可利用土地资源。近年来,中国在抗旱耐盐碱基因的研究方面取得了一些重要进展。

1.2.1 抗旱转基因棉花 水资源的日益缺乏,全球温室效应的不断加剧,对棉花生产带来了极大挑战,因此,抗旱基因的相关研究对于提高棉花产量和加强盐碱地及干旱地的开发利用具有极其重要的意义[12]。吕素莲[13]将来自大肠杆菌的编码胆碱脱氢酶(CDH)基因betA导入棉花,发现该基因能够显著提高转基因棉花的抗旱和耐盐性,通过棉花苗期和蕾期的渗透(干旱)及盐胁迫试验发现来自于盐芥的TsVP 可以提高转基因棉花的抗渗透(干旱)和盐能力,该工作一方面为培育抗旱、耐盐棉花新品种创造了优异材料,为中国棉花生产和大面积的盐碱地开发利用作出了力所能及的贡献;另一方面为深入了解棉花抗旱、耐盐的分子机制提供了重要资料,开辟了新的途径。

曹燕燕等[14]通过对rolB的功能研究,发现该基因不仅使转基因棉的茎粗明显提高,而且还使其生根能力明显增强,根/冠比显著大于对照,表现为根系更为强大,抗旱性更强。王娟[15]对转ZmPIS棉花植株在苗期、蕾期和开花期的干旱胁迫研究表明转基因棉花的一些株系具有较强的渗透调节能力,其抗旱能力显著提高,转基因棉花植株具有较强的渗透调节能力,此外,王娟[15]通过杂交,将来自大肠杆菌的编码胆碱脱氢酶(CDH)基因betA和来自于盐芥的TsVP聚合在一起,结果表明,转基因聚合植株与转单基因植株相比具有较高的耐旱性。吴伟[16]在前人研究的基础上,对聚合ZmPLC1和betA的转基因聚合棉花进行耐旱性研究,结果表明,与野生型对照和转单基因对照株系相比,转基因聚合株系具有更高的干旱耐性,而且相比于野生型对照株系和转单基因对照株系,转基因聚合株系具有更高的籽棉和皮棉产量,这表明通过基因聚合手段提高植物抗逆性是可行的。杨云尧[17]将MvP5CS和MvNHX1整合到棉花中,通过研究发现转基因株系能够提高棉花的抗旱能力。蔡永智[18]在转基因棉花中对来源于葛兰菜的CBF1和来源于大肠杆菌的KatG进行功能研究,发现在干旱胁迫下,转CBF1和KatG棉花在光合作用、叶绿素荧光参数、生理生化以及农艺性状方面均表现出优良的生长和生理优势。说明这两个基因能通过提高抗逆能力来提高转基因棉花的产量。钱进等[19]通过分析转MvNHX1的10个T5棉花株系在干旱胁迫后的生理指标和农艺性状,发现经干旱胁迫后转基因植株光合作用更强,根系更发达,吸收水的能力更强,农艺性状方面,转基因株系的有效铃数、有效果枝数、单铃重、皮棉、子棉和衣分等指标明显高于对照,这些株系可以作为后续遗传育种材料[20]。

17期郭三堆等:中国转基因棉花研发应用二十年 3375

1.2.2 耐盐碱转基因棉花 棉花是公认的耐盐、抗旱作物,克隆优良耐盐碱基因,导入棉花选育耐盐棉花品种,提高棉花对盐渍环境的适应能力,利用围垦改造的滩涂地,种植转基因耐盐碱棉花,是减轻土壤盐渍化危害以及开发利用沿海滩涂等盐渍化土地资源的重要途径之一,是缓解粮棉争地矛盾的重要策略。张慧军等[21]将克隆自山菠菜(Atriplex hortensis)的AhCMO导入泗棉3号棉花,盐胁迫试验结果表明,转AhCMO的棉花耐盐性显著优于对照组棉株,说明AhCMO提高了转基因棉花对盐胁迫的耐受性。大肠杆菌的betA编码的胆碱脱氢酶(choline dehydrogenase,CDH)兼具有胆碱单氧化物酶和甜菜碱醛脱氢酶的功能。连丽君[22]对转betA鲁棉研19的耐盐研究表明,betA的表达提高了转基因棉花叶片中甘氨酸甜菜碱(glycinebetaioe,GB)的累积量,转基因棉花的耐盐能力明显提高。樊文菊[23]对转ZmPLC1棉花和聚合ZmPLC1/betA棉花的耐盐性进行初步研究,通过水培、沙培和东营盐碱地种植,发现转ZmPLC1棉花的耐盐性高于野生型对照,转betA和ZmPLC1的聚合转基因植株,籽棉产量显著高于转ZmPLC1棉花、转betA棉花和野生型对照,以上工作表明,转ZmPLC1单个基因可以在一定程度上提高棉花的耐盐性,且聚合betA 和ZmPLC1 2个基因后,棉花的耐盐性又进一步提高。因此,可以通过基因聚合的方法提高植物的耐盐性,为培育耐盐棉花新品种提供新的种质资源,也为研究多个耐盐基因相互作用及其调控机制提供新的试验材料。陈翠霞等[24]利用花粉管通道技术将耐盐碱的罗布麻(Apocynum venetum)DNA导入鲁棉6号,从后代中筛选出棉花耐盐变异体山农011,对山农011及其杂种后代进行了抗盐遗传和基因效应分析,结果表明,变异体的耐盐性是由核基因控制的,其遗传基因效应以加性效应为主,并存在较大的加性互作效应。该耐盐变异体可作为一良好的抗盐种质材料利用。李雪林[25]通过过表达对逆境起调控作用的转录因子基因SNAC1,系统地对转基因棉花植株进行抗逆性分析和鉴定,验证了SNAC1是具有耐旱及耐盐的转录因子基因。中国农业科学院生物技术研究所郭三堆课题组将具有自主知识产权的耐盐碱关键基因GhABF2(专利号:ZL200910158311.X)导入中国棉花主栽品种苏棉12号,创制出耐盐碱转基因棉花新品系8个,进入中间试验阶段。经过连续3年分别在山东、新疆两地进行的耐盐碱试验鉴定,获得4个综合农艺性状优良、耐盐碱性能突出的转基因棉花新品系[26]。在0.40%— 0.45%的盐碱条件下,受体棉花品种苏棉12出苗率只有32%,转GhABF2棉花新品系出苗率高达65%,单株结铃比受体增加3—4个,最终两者产量分别比其受体对照增加33%以上,具有较大的盐碱地生产应用潜力,该课题组还通过农杆菌介导棉花下胚轴遗传转化方法,将溶菌酶hel(抗病)、CP4-EPSPS(抗除草剂)和Na+/H+逆向转运蛋白基因(NhaD k3)同时导入棉花模式受体R15中,再生植物经过连续3代自交后,经抗草甘膦、抗棉花黄萎病及耐盐碱能力筛选,得到高抗棉花黄萎病、抗除草剂草甘膦及具一定耐盐碱能力的转基因棉花新品系T58-22。

1.3 抗除草剂转基因棉花

草害是影响棉花生产的主要因素之一,棉田杂草种类严重影响棉花的生长。除草剂和抗除草剂棉花的协同使用是棉田杂草防除的重要对策。目前,抗除草剂主要有2种策略:一是引入降解除草剂的酶或酶系统,在除草剂发生作用前将其分解。二是修饰除草剂作用的靶蛋白,使其对除草剂不敏感或促使其过量表达以使作物吸收除草剂后仍能正常代谢。中国科学家针对这两种策略均做了大量研究[27]。

1.3.1 抗草甘膦 草甘膦(glyphosate)是世界上使用最广泛的一种非选择性内吸传导有机膦类除草剂。其机理是竞争性抑制植株中5-烯醇丙酮莽草酸-3-磷酸合成酶(EPSPs)的活性,阻断芳香族氨基酸的合成,造成芳香族氨基酸缺乏,导致植株死亡。国内对抗草甘膦的基因进行了大量研究,取得了很多可喜的进展。

雷凯健等[28]2006年从土壤总DNA中克隆到草甘膦N-乙酸转移酶基因,并对其表达蛋白的酶学特性进行了分析,为其在抗草甘膦转基因作物中的应用积累了理论依据。何鸣等[29]通过对鼠伤寒沙门氏杆菌和大肠杆菌的EPSP合成酶基因多位点突变,克隆了突变的aroA,并使之在大肠杆菌中得到表达。赵特[30]从严重草甘膦污染的土壤中分离出一株高抗草甘膦的假单胞杆菌菌株,克隆到与EPSPS同源的G6基因,将其转化水稻进行功能验证,发现该基因具有一定的抗草甘膦活性。朱玉[31]从长期污染草甘膦的土壤中分离到一株草甘膦高耐受性荧光假单胞菌G2菌株,从中克隆到的epsps不含国外公司专利保护的保守序列和突变位点,显示了良好的开发应用潜力。沙纪莹[32]从斯氏假单胞菌基因组文库中克隆到一个完整的基因,能在草甘膦浓度为150 mmol·L-1的M9液体培养基中良好生长,该基因有望成为培育高抗草甘膦转基因作物

3376 中国农业科学48卷

的基因材料。刘柱[33]从被草甘膦极度污染的土壤中分离到一株极端抗草甘膦菌HTG7,该菌株能在草甘膦浓度为900 mmol·L-1的Mops限制性培养基上生长。从中克隆到全长1 350 bp、编码EPSP合酶的基因。该EPSP合酶基因与之前报道的aroA在核苷酸水平几乎没有任何同源性,蛋白序列与22种已报道的微生物来源的EPSP合酶的同源性也在46%以下。并通过错误倾向PCR方法,找到了该EPSP合酶的关键活性位点,为培育具有中国自主产权的转基因抗草甘膦作物提供的基因资源。童旭宏等[34]从陆地棉中克隆到EPSPS,对该基因进行了组织特异性表达分析,为抗草甘膦棉花种质资源的创制提供了理论基础。程海刚等[35]从棉田间的杂草青麻中克隆到epsps,通过转化酵母证明所获得的epsps具有生物学功能。之后,中国农业科学院生物技术研究所郭三堆课题组将该基因转化棉花,筛选出具有良好草甘膦抗性的棉花植株。此外郭三堆课题组还和中国农业科学院生物技术研究所林敏课题组合作,将林敏课题组从极端抗草甘膦微生物中克隆到的抗草甘膦新型EPSP合酶GR79及N-乙酰转移酶GAT进行了密码子改造和基因结构优化,通过转化烟草和棉花,初步验证了抗草甘膦基因的抗性,并获得了对草甘膦有较强抗性的双价抗草甘膦转基因棉花材料[36-37]。

1.3.2 抗其他除草剂 除草剂2,4-D类似植物生长素,前人从土壤细菌Alcaligene eutrophus分离到tfda,该基因编码的2,4-D单氧化酶能将2,4-D降解为2,4-二氧苯酚,其降解产物对植物的毒性比2,4-D小100倍,山西省棉花研究所陈志贤等与澳大利亚CSIRO及中国农业科学院生物技术中心合作,将tfda导入晋棉7号、冀合321等棉花品种,对其后代进行田间抗药性鉴定表明转基因系对2,4-D的耐受性超过了大田使用浓度[38]。中国农业科学院棉花研究所与中国科学院上海植物生理研究所合作,将除草剂草丁膦的bar导入棉花主栽品种,取得了阶段性成果[39]。张磊[40]通过精细定位,从水稻中克隆到bel,该基因可对苯达松和磺酰脲类除草剂产生抗性。溴苯腈(bromoxyril)是除草剂buctril的活性成分,其作用机理是抑制光合作用的电子传递。张金文等[41]2006年从克雷伯氏臭鼻杆菌中克隆到编码腈水解酶基因bxn,通过在大肠杆菌中表达,证明其可将溴苯腈降解为无毒物质。乙酰乳酸合成酶(ALS,EC

2.2.1.6)在细菌、酵母和植物中催化支链氨基酸的生物合成,它是磺酰脲类除草剂的作用靶标。宋贵生等[42]2007年从水稻中克隆了als,转化烟草后发现转基因植株和对照烟草相比其除草剂抗性高达50 mg·L-1。卢宗志等[43]2009年从杂草雨久花中克隆到als,研究表明抗药性雨久花对除草剂苄嘧磺的抗性可能与其第197位的突变相关。

1.4 抗病转基因棉花

棉花病害是影响棉花生产的主要因素之一,目前困扰中国棉花产业的主要病害是黄萎病,棉花黄萎病是黄萎病菌经土壤传播、侵染到棉花植株最终引发维管束疾病的一种真菌性病害,具有危害严重、分布范围大、寄主种类多及存活时间长等特点,可造成棉花大量减产甚至绝收,被形象地称为棉花的“癌症”。针对以黄萎病为代表的主要病害,采用传统的防治手段,如通过传统育种的方法培育抗病品种、农药防治等方法收效甚微,而且存在培育周期长,严重污染环境等问题,因此,近年来中国研究人员从生物技术的角度,对抗棉花黄萎病基因开展了大量的研究,并取得了重要进展。

高巍[44]以海岛棉品种海7124作为研究材料,通过比较蛋白质组学的方法,一共得到188个在海7124根系中受黄萎病菌侵染后与水处理的平行对照相比表达量出现差异的蛋白,这些蛋白共同参与了棉花对黄萎病菌入侵的响应。徐理[45]分别构建了抗黄萎病的海岛棉海7124接种黄萎病菌后的抑制差减杂交cDNA 文库以及通过大规模测序的RNA-Seq技术研究棉花抗黄萎病机制,通过基因表达分析,获得了大批棉花抗黄萎病相关基因,并对其中的一个WRKY类转录因子进行了较为详细的功能。孟宪鹏[46]克隆得到2个海岛棉ERF转录因子基因,将其转化植物后对其抗病相关功能进行研究,结果表明,在转基因烟草中,海岛棉ERF转录因子可以增强烟草PR基因的表达;在转基因棉花中,可以增强几丁质酶基因、β-1,3-葡聚糖酶基因和PR基因等棉花抗病相关基因的表达。由此推测,将海岛棉ERF基因转入棉花超表达后能够高效激活下游抗病相关基因的表达。通过对已得到的转基因棉花部分幼苗进行黄萎病菌侵染后发现:T0转EREB1棉花幼苗的耐病能力高于对照。通过上述研究可知:海岛棉ERF族基因的新成员EREB1/2在调控抗病相关基因表达方面具有重要作用,EREB1/2在转基因烟草和棉花中超表达后可有效增强植株体内抗病相关基因的表达,从而提高了转基因植株的抗病能力。张文蔚[47]以陆地棉高抗黄萎病新品系中植棉KV1为材料,接种大丽轮枝菌强致病力落叶型菌株V991后

17期郭三堆等:中国转基因棉花研发应用二十年 3377

0—96 h棉株幼根总RNA,构建正、反向抑制差减杂交文库,筛选到147个信号强度差异明显的克隆,建立了黄萎病菌侵染初期陆地棉的抗病相关基因表达谱,并证明了GhUbI1、GhEG和GhSCF在陆地棉抗黄萎病的过程中起重要作用。赵付安[48]采用SSH技术从转录组水平探讨了陆地棉基因的差异表达,采用2-DE技术从蛋白质组水平探讨了栽培棉近缘野生种瑟伯氏棉的蛋白差异表达,并以此为基础克隆了2个陆地棉结构抗性基因GhDIR和GhSUMO,克隆了瑟伯氏棉根的GPIP,克隆了瑟伯氏棉根的4个TIR-NBS- LRR类抗病基因类似物,这七个基因的克隆为进一步研究其抗病功能奠定了基础。倪萌等[49]采用叶片针刺接种法从细胞学方面分析转hpa1xoo棉花与棉花黄萎病菌互作产生的微过敏抗病反应,通过细胞显微观察表明,转hpa1xoo棉花T-34与非转基因棉花在抗病性表型方面存在明显差异,转hpa1xoo棉花较非转基因棉花有较强的抗病性。

1.5 纤维品质改良转基因棉花

棉纤维是棉花产量形成的主要部分,其品质决定经济价值。在生产实践中,高产棉花不优质、优质棉花不高产是限制棉花种植业发展的主要因素之一。随着纺织工业的不断发展,对棉花纤维品质不断提出新的要求,传统的遗传育种技术已经不能解决生产实践中关于棉花产量和品质之间存在的矛盾。利用基因工程技术将棉花纤维发育相关基因导入棉花,提高棉花纤维产量和品质,成为当前棉花增产和品质改良的主要途径。同时,随着高通量基因克隆和表达分析技术的不断发展,大量与棉花纤维产量和品质相关基因和表达调控元件得到了验证,并初步应用于棉花。

据报道,棉花纤维增产基因主要与棉花种子发育和IAA等激素代谢相关。李德谋等[50]将GhASN-Like 导入棉花,提高了转基因植株的单株成铃数和单铃种子数,增加了籽棉和皮棉的产量。裴炎等[51]利用棉花纤维细胞特异启动子FBP7,驱动IAA合成基因iaaM 在棉花中表达。使在棉纤维发育起始阶段,胚珠表面的IAA含量迅速增高,增加了能够发育成纤维的细胞数量。经过连续4年测产,转基因棉花纤维产量比对照提高了15%以上[52]。

棉花纤维品质与纺织工业的应用密切相关,主要涉及了棉纤维长度、细度、强度、色泽等指标。目前,利用基因工程技术将调控棉花纤维发育的相关基因导入棉花来提高棉花纤维品质,已经取得了初步的进展。李文彬等[53]利用棉花纤维特异启动子驱动吲哚双加氧酶(bec)基因在棉花中表达,使转基因棉花纤维获得了特殊的颜色。左开井等[54]将GbAnn9导入棉花,转基因棉花纤维长度比对照材料增加2—3.5 mm,纤维强度增加0.3—3.3CN/tex。夏桂先等[55]将棉花苯丙烷类化合物木质素合成基因GhLIN2导入棉花,增加转基因棉花纤维内木质素含量,使棉花纤维长度、细度和强度均得到显著提高。李晓荣等[56]利用35S启动子驱动棉花尿甘二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因GhUGP1在棉花中表达,获得的转基因棉花材料纤维长度比对照增加18.5%,断裂比强度增加31.85%。

此外,通过对棉花纤维细胞发育机理的简析,分离获得了多个与棉花纤维品质相关的候选基因。刘进元等[57]克隆获得棉花纤维可逆糖基化蛋白酶基因,该基因可以通过控制棉纤维中多糖物质的积累,进一步提高棉纤维的品质。李学宝等[58]克隆获得棉花纤维特异表达的水孔蛋白家族基因GhPIP2;6,其转录产物主要在伸长期的棉花纤维中高表达,通过在酵母中表达研究发现可以使细胞长度增加1.3—1.47倍。朱玉贤等[59]克隆获得与棉花纤维伸长密切相关的β微管蛋白基因,该基因在棉花纤维伸长期高表达与棉纤维长度发育密切相关。

为了能够实现棉花纤维发育相关基因的精确定位表达,在棉纤维特异表达启动子方面的研究也取得了重要的进展。郭三堆等[60]分离获得了一个在棉花生殖器官优势表达的启动子Arf1,该启动子为棉花腺苷酸核糖基化作用因子基因的启动子。与报告基因GUS 融合后,利用花粉管通道法转化棉花,报告基因在转基因棉花的生殖器官高表达。张献龙等[61]克隆获得了棉花纤维特高效表达的类成束蛋白样阿拉伯半乳聚糖蛋白基因(GhFLA1)启动子,该启动子能够驱动GUS 报告基因在棉花纤维发育0—20 d高表达。

1.6 其他性状如早衰、耐涝以及特殊用途等转基因棉

目前,生产应用的高产、优质棉花品种均具有早衰的特征,限制了高产、优质棉花品种的推广应用。利用基因工程技术延缓棉花的生长发育过程中的早衰现象,对具有早衰特性的棉花高产品种的培育和推广应用具有重要意义。李静等[62]克隆获得了异戊烯基转移酶基因ipt,该基因编码的蛋白是细胞分裂素生物合成途径中的关键酶。将该基因导入早衰型陆地棉品种中棉所10号中,通过对转基因棉花进行叶绿素和细胞分裂素含量的测定及形态观察,发现转基因棉花的早衰性状得到延迟。

3378 中国农业科学48卷

在中国南方湿度大或者雨水多的地方,由于棉花不耐湿和涝的特性,雨季来临时会引起棉花大量落铃导致减产,限制了棉花种植业的发展。利用基因工程技术将耐涝基因导入棉花,培育耐涝棉花新材料,不仅可以保证棉花稳产高产,而且可以通过将其他地区不耐涝的棉花培育为耐涝材料,为遗传育种提供更加丰富的资源材料。中国农业科学院生物技术研究所作物分子育种课题组将来源于透明颤菌血红蛋白基因(vgb)经过密码子优化设计后导入棉花,培育出高耐涝的转基因棉花新材料,该材料在地下部分封闭的涝池内表现良好,比对照材料增产20%以上[63]。

上述不同类型转基因棉花的获得,极大地丰富了中国的棉花种质资源,促进了中国棉花的育种研究。

2 棉花的遗传转化方法

遗传转化方法是进行基因功能分析和改良作物性状的必要手段。主要的植物遗传转化技术可分为两大类:第一类是直接基因转移技术,包括基因枪法、原生质体法、脂质体法、花粉管通道法、电激转化法、PEG介导转化方法等,以基因枪转化法和花粉管通道法为代表。第二类是生物介导的转化方法,主要有农杆菌介导和病毒介导等转化方法,其中农杆菌介导的转化方法操作简便、成本低、转化率高,广泛应用于单、双子叶植物的遗传转化。随着科学技术的不断发展,近年来,逐渐发展了一些新的转化技术,如茎尖或芽尖转化法,农杆菌菌液浸染法以及纳米载体花粉介导法等。这些转化方法的兴起及广泛应用对转基因育种具有重要意义,极大地加快了农作物改良以及新品种选育的步伐。

2.1 农杆菌介导转化法

农杆菌介导法是最早应用、最实用有效并且具有很多成功实例的一种植物转基因方法。农杆菌是一类存在于土壤中的革兰氏阴性细菌。目前,用于植物转基因介导的农杆菌为根癌农杆菌。根癌农杆菌含有一种Ti质粒,Ti质粒上有一DNA片段,称为转移DNA。农杆菌侵染植物时,细菌通过植物伤口进入寄主组织,但细菌本身不进入寄主植物细胞,只是把Ti质粒的T-DNA片段导入植物的基因组中,并得以表达,从而导致冠瘿瘤的发生,并且导入的T-DNA在转化植株后代中通常表现出典型的孟德尔遗传规律。由于Ti 质粒本身能插入大约50 kb的DNA外源基因,因此,利用这种转化载体,将Ti质粒上致瘤的有害基因切除,代之以有益的外源基因,使得向植物细胞引入外源基因已成为植物基因工程研究的一项常规技术。棉花农杆菌介导转化一般是采用叶盘法。国外最早利用此法的是Agracetus公司,将NPTII 和CAT导入柯字棉312中获得转基因再生棉株。国内最早的是山西省农业科学院棉花研究所生物技术研究室陈志贤等,将除草剂基因Tfda导入晋棉7号获得转基因再生棉株。目前,中国农业科学院生物研究所、中国科学院遗传与发育生物学研究所、中国科学院微生物研究所与各地方农业科学院合作,利用农杆菌介导法将抗棉铃虫和抗蚜虫的单价、双价及三价等目的基因导入棉花,获得单价、双价和三价转基因抗虫棉花新品种。

2.2 基因枪轰击转化法

基因枪是20世纪80年代初由Sanford等发明。该技术原理是:利用基因枪产生的高压动力冲击波将包裹外源DNA的重金属颗粒(如钨粉、金粉等)射穿植物细胞壁和细胞膜,射入植物细胞,是外源DNA 随机整合到植物细胞染色体中,达到外源DNA在受体植物中正常表达和稳定遗传的目的。经过10多年的改进和提高,基因枪技术已成功应用在烟草、水稻、小麦、棉花、大豆等许多农作物的品种改良上,并且该技术被用于瞬时表达研究和培育稳定的转基因植物等研究领域[64-67]。

2.3 花粉管通道介导转化法

20世纪70年代末期,在DNA片段杂交假设理论和对植物开花受精过程的解剖学及细胞学特征研究的基础上,中国科学家周光宇等推测外源DNA可以通过花粉管经过的珠心通道进入受精胚囊,转化进入精卵融合细胞、早期合子及早期胚细胞。随后,建立花粉管通道技术并通过该技术将外源DNA导入陆地棉,成功培育出抗枯萎病的新品种。1993年,中国农业科学院生物技术研究所与江苏农业科学院经济作物研究所合作,利用花粉管通道法在国内首次将GFM Cry1A 杀虫蛋白基因导入棉花,培育出转基因抗虫棉花植株。花粉管通道法具有操作简单、对受体植物以及外源DNA无特别要求、无组织培养过程、转化速度较快、育种周期较短等特点,目前,该方法已成功应用于棉花、水稻、小麦、大豆等农作物的改良和育种工作[68-71]。

2.4 茎尖或芽尖转化法

传统的农杆菌介导法受体主要是幼胚和胚性愈伤组织,受体的基因型决定着遗传转化的成功与否;而愈伤组织形成的再生植株具有无性系变异大、周期长等不利因素。因此,选择合适的外植体作为农杆菌转化的受体、建立不受基因型限制、快速而又高效的遗

17期郭三堆等:中国转基因棉花研发应用二十年 3379

传转化体系是转基因生物技术研究者的目标。茎尖培养是植物组织的常规技术,已被广泛应用。目前,幼胚仍然是转化受体系统中最重要的外植体。而由成熟胚茎尖分生组织诱导而来的丛生芽与传统的幼胚相比,具有不受季节限制,诱导率高,再生植株变异少等优势。通过改善茎尖的遗传转化,利用农杆菌介导法转化棉花、玉米等农作物的茎尖,缩短转化周期,从而获得阳性转基因植物的方法称为茎尖/芽尖转化法。与传统的幼胚及其胚性愈伤组织为受体的遗传转化体系相比,此种方法具有简单、快速、工作效率高和试验周期短等优点;与基因枪法相比更加经济适用;与合子转化相比,取材不受季节限制。但该方法的缺点是获得的转基因后代嵌合体较多,得到纯合稳定的转基因品系困难较大[72]。

2.5 农杆菌液浸染法

大多数的转化方法都需要组织培养技术,通过组织培养技术进行单细胞的选择并再生出整个植株虽然减少了嵌合体的出现,但是由于后生影响和染色体重排就会出现体细胞无性系变异。利用农杆菌液浸染植物组织(多数研究都采用花器官)的方法进行转基因,其特点是避免了组织培养和再生过程。前人的研究表明,浸花得到的T0种子是典型的杂合子,在同一插入位点只有2个等位基因中的一个[73-74]。大量的结果表明转化发生在花发育的后期[75]。尽管浸花的方法有较高的转化率,但对于转化的细胞和转化的时间仍然不太清楚。

2.6 纳米载体花粉介导转化法

随着20世纪末纳米科技的兴起,纳米材料以其特殊的表面效应、小尺寸效应、量子尺寸效应、宏观量子隧道效应及良好的生物学特性,在生物学领域得到了成功地应用,尤其为制备高效、靶向的基因载体系统提供了良好的介质。自从20世纪60年代末发现二乙基氨乙基葡聚糖/DNA复合物能介导基因传递后[76],纳米材料作为基因载体的研究不断深入。

纳米基因载体在动物和人的细胞转染试验中已经取得了成功[77-78]。并显示出巨大的应用前景。纳米载体在植物的遗传转化方面与裸DNA分子相比,具有更高的转导率和基因表达率。日本大阪大学的Takefumi等[79]以钙盐粒子微球为基因载体,将质粒DNA囊括在微球内部,对BY-2烟草细胞原生质体进行转染,试验结果显示其转染率是裸DNA分子转染效率的10倍。美国爱荷华州立大学的Torney等[76]利用蜂窝状介孔二氧化硅纳米粒子为载体,装载基因及刺激该基因表达的化学物质,使用金纳米粒子覆盖介空表面,穿过植物细胞壁,同时将两者置入植物细胞中,并控制在适当的时间和地点释放,成功获得转基因植株。采用纳米载体基因技术改良花粉管通道法,有可能大幅度地提高外源基因在花粉管通道法中的传输、保护外源基因在传输和转导过程中免受DNA酶的降低,提高遗传转化效率,为棉花等转基因作物新品种培育提供了更为简便、高效的分子育种新技术。

目前,虽然纳米载体在植物遗传转化上的应用时间还较短,仍存在许多尚待解决的问题,但与其他植物基因转化载体相比,纳米载体技术具备生物相容性好、稳定性高、具有浓缩及保护DNA的作用、装载容量较大、优良的表面性质、无遗传毒性和免疫原性、制备简单等方面的优势,并且通过不同材料和工艺,能制备出各种各样具有“特异功能”的载体。这种材料并不昂贵,能使纳米载体更具市场竞争力,因此,纳米载体转基因技术必将成为今后植物转基因技术的有效途径之一。

3 转基因植物安全性评价

一系列具有优良性状(如抗虫、抗除草剂等)的转基因作物新品种的大面积推广种植在带来直接经济与生态效益的同时,也为解决未来世界粮食、能源危机提供了新的途径。但同时,转基因技术也存在一定的风险。近年来,转基因生物安全问题在全世界范围内引起了广泛关注。目前对转基因植物的安全性评价主要集中在2个方面,一是环境安全性,另一是食品安全性。

3.1 转基因植物的环境安全性

转基因植物的环境安全性主要涉及3个方面:(1)转基因植物本身可能演变为农田杂草。植物在获得某种特定基因(如抗病、抗虫、抗除草剂和抗逆等),可能会增强其生存竞争性,在生长势、越冬性、耐受性、种子产量等方面强于非转基因植物。若被推广种植,释放到自然环境中的机会特别大。因其具有野生植物没有的各种抗性,将会迅速地成为新的优势种群,进而演变成农田杂草[80]。(2)基因漂流影响其他物种。在自然条件下,栽培作物和栽培作物之间、栽培作物与其近缘野生种之间、栽培作物和杂草之间都可能存在种间基因漂流能力。因此,转基因植物中的一些抗除草剂、杀虫剂和病毒的抗性基因就有可能通过花粉杂交等途径向其同种或近缘野生种转移,

3380 中 国 农 业 科 学 48卷

从而产生出一些可抗除草剂、杀虫剂和病毒的“超级杂草”[81],造成不可估量的农业损失和生态灾难。(3)影响生物的多样性。植物在引入抗虫或抗病基因后,往往具有较强的“选择优势”,大量的转基因植物进入自然生态系统中,可能会淘汰原来栖息地上的物种及其他遗传资源,加剧品种的单一化,造成生物数量剧减,甚至会使原有物种灭绝。如转入BT 杀虫基因的抗虫棉,其目标昆虫是棉铃虫和红铃虫等植物害虫,如大面积和长期种植抗虫棉,昆虫有可能对抗虫棉产生适应性或抗性,这会影响抗虫棉的应用和BT 农药制剂的防虫效果。因此,在抗虫棉推广时一般要求种植一定比例的非抗虫棉,以延缓昆虫产生抗性。(4)可能对非目标生物造成危害,在植物基因工程中所用的许多基因是与抗虫或抗病有关的,其直接作用的对象是生物。其插入的抗虫或抗真菌的基因可能对其他非目标生物起作用,从而杀死了环境中有益的昆虫和真菌。美国康奈尔大学Losey 等[82]发现,转基因Bt 玉米花粉能导致非目标害虫黑麦金斑蝶(Danaus plexippus L.)幼虫死亡。 3.2 转基因植物的食品安全性

转基因食品又称基因修饰食品(genetically modified food ,GMF ),即用转基因生物制造或产生的食品。进行转基因食品安全评价时,应从宿主、载体、插入基因、重组DNA 、基因表达产物及其对食品营养成分的影响等方面来考虑。评价内容主要包括4个部分,第一部分是基本情况:包括供体与受体生物的食用安全情况、基因操作、引入或修饰性状和特性的叙述、实际插入或删除序列的资料、目的基因与载体构建的图谱及其安全性、载体中插入区域各片段的资料、转基因方法、插入序列表达的资料等;第二部分是营养学评价:包括主要营养成分和抗营养因子的分析;第三部分是毒理学评价:包括急性毒性试验、亚慢性毒性试验等;第四部分是过敏性评价,主要依据联合国粮农组织与世界卫生组织提出的过敏源评价决策树依次评价,禁止转 入已知过敏源。

中国农业科学院生物技术研究所与江苏省农业科学院经济作物研究所、山西省运城棉花研究所、石家庄市农业科学院、中国农业科学院棉花研究所等多家育种单位合作,将构建成功的含有自主知识产权的抗虫基因植物表达载体采用花粉管通道技术和农杆菌介导法进行遗传转化,经过后代分子鉴定、室内生测后,育成了一批转基因抗虫棉品种,为以后国内转基因抗虫棉品种的培育提供了特异的种质资源,也为国内抗虫棉的迅猛发展提供了动力。

为了加强农业转基因生物安全管理,保障人类健康和动植物、微生物安全,保护生态环境,促进农业转基因生物技术研究,农业部陆续出台了多个条例、办法和公告,来规范转基因抗虫棉的田间释放和产业化。

自1996年开始转基因抗虫棉安全性评价申报以来,至2013年共计申报并通过生产应用的安全性评价2 016份,从图1中可以看出,随着安全性评价内容的完善、管理规范化,从2004年农业部简化了转基因抗虫棉安全评价的申报程序以后,获得的安全证书的数量急剧上升,基本上每年审批的证书数量都在150份以上(图1)。

拥有中国基因知识产权的转基因抗虫棉安全性评价共计1 955份,其中,转Cry1Ab/cry1Ac 棉花1 391

数量 N u m b e r

图1 2002—2013年转基因抗虫棉获得生产应用的安全证书

Fig. 1 The safety certificate of transgenic insect-resistant cotton with the production in 2002-2013

17期郭三堆等:中国转基因棉花研发应用二十年 3381

份,占总安全性评价2 016份的69.00%,转Cry1Ab/ cry1Ac+CpTI棉花553份,占27.40%,转Cry1Ac+API 棉花11份,占0.55%;美国孟山都公司申请并通过转cry1Ac抗虫棉安全评价61份,占3.05%。

总之,自1996年国产抗虫棉进入田间试验,各省棉花育种相关单位利用抗虫棉种质资源开始大规模以来,中国抗虫棉的研究及产业化取得了迅速的发展,国产抗虫棉的种植面积逐渐增加。国产转基因抗虫棉的应用经历了近20年的风风雨雨,为中国棉花产业的发展和改善生态环境作出了巨大贡献。而中国转基因抗虫棉安全性评价为转基因抗虫棉的生产应用起到了保驾护航的作用。

目前,转基因作物的安全性评价技术与政策保障体系已经建立,今后还应该加大转基因棉花安全生产应用保驾护航作用的力度,大力发展中国转基因植物分子育种高新技术,为迅速占领高新技术制高点、提高中国转基因植物分子育种的国际竞争力再作新贡献。

4 转基因抗虫棉的品种培育及推广

4.1 抗虫棉品种审定情况

中国审定的第一个转基因抗虫棉品种是美国岱字棉公司的新棉33B,该品种于1997年由河北省审定,审定编号为冀审棉97001号,1997—2006年美国岱字棉公司与孟山都公司先后在河北省、河南省、山东省、安徽省、湖北省和湖南省审定了7个转基因抗虫棉品种,在2003年以前无论从品种数量还是种植面积都占抗虫棉的统治地位。中国从1998年开始审定了第一批转单价抗虫基因国产转基因抗虫棉品种,如:GK12、晋棉26和GKZ1(国抗杂一号),1999年审定了第一个国审抗虫棉品种中棉所38,从此迈开了中国转基因棉花品种培育和生产推广的步伐[83]。截至到2013年,中国共通过了134个国审转基因抗虫棉品种,黄河流域审定96个,长江流域审定36个,西北内陆棉区审定了2个,其中以生产需求量最大的中熟品种为主,有生育期少于110 d的早熟品种7个,彩色棉品种1个[84]。目前,中国抗虫棉已经形成了覆盖所有棉区、不同熟期不同类型搭配合理、常规棉与杂交棉并重的品种体系。

4.2 抗虫棉品种发展的趋势及存在的问题

4.2.1 杂交品种比例越来越大 1999—2013年,134个国审品种中有88个杂交品种,2006年以前只有23个杂交品种,2007—2013年共审定了65个杂交品种。其中,长江流域36个品种中只有1个常规品种,杂交品种有35个,从以上的数据可以看出,黄河流域棉区以常规种和杂交种并重,长江流域棉区以杂交种为主[85]。

4.2.2 品种存在多、乱、杂现象 1996—2012年,转基因抗虫棉的品种数量在逐年增加,截至到2012年,内陆棉区种植面积超过0.33万公顷的棉花品种品系一共有245个,其中黄河流域有166个,长江流域品种有79个[86],这里面有国审、省审品种,还有些没有审定的品系。品种的多样性满足了不同中国气候类型耕作制度的需求,但同时也存在品种同质化品种多,突破性品种少的问题。因此造成了有些抗虫棉品种审定后没有推广几年就被淘汰的现象,品种更替过于频繁,造成人力物力的浪费。

4.2.3 品种的产量性状不断提升,但纤维品质性状改进不大 随着抗虫棉品种的发展,棉花单产不断提高,在中国棉花面积没有增加的情况下,产量有了大幅度提高[87]。但是与纤维品质相关的性状改进不明显,特别是棉纤维的长度和比强满足不了今后棉花机采作业和纺织行业技术更新的需求。有待今后抗虫棉育种单位进行选育方向的调整[88]。

4.3 转基因抗虫棉的产业化

4.3.1 抗虫棉的推广面积 从1997年转基因抗虫棉开始大面积种植,主要是以美国的品种为主,当时占国内抗虫棉市场份额的95%以上,国产抗虫棉份额不到5%。随着中国自主研发的转基因抗虫棉逐渐成熟,国产抗虫棉的品种数量和种植面积逐年提高,2001年转基因抗虫棉的面积首次超过了非转基因棉面积。之后国产抗虫棉的数量和推广面积都迅猛增长,2002年国产抗虫棉占国内抗虫棉市场份额的43.3%,2003年国产抗虫棉的面积超过了美国抗虫棉面积,占国内抗虫棉市场份额的53.9%,到2007年,国产抗虫棉面积已占96.1%,1998—2013年国产抗虫棉累计推广面积超过3 000万公顷,打破了美国抗虫棉的垄断,成功地保护了中国棉花产业及相关产业和民族利益[89]。4.3.2 抗虫棉产业化对中国棉种行业产生了深远的影响 抗虫棉在中国市场零售价为37.2元/kg,改变了非抗虫棉种8.2元/kg的低价局面,为提升棉种质量,改进棉种生产和销售方式提供了可能。由于棉种利润的增加,催生了一批专业从事棉种或以棉种为主营业务育繁推一体化的公司。在抗虫棉的品种选育方面也逐渐由科研单位、大专院校为主向育繁推一体化的种业公司和民营研究所转变。使得抗虫棉品种的选育更贴近市场的需求,加快了品种选育和推广的步伐,使中国棉种行业走上了一条良性循环的道路[90]。

3382 中国农业科学48卷

随着国产抗虫棉研制技术的成熟,中国抗虫棉优良的抗虫性和突出的综合性状引起了世界上各产棉国的关注。中国先后与印度、澳大利亚和巴基斯坦签订了抗虫棉的合作项目,目前,项目正在进行中。国产抗虫棉已经走出国门,迈向世界,参与了国际竞争[91]。

5 中国转基因棉花研究方向的展望

如上所述,随着转基因抗虫棉的品种类型日渐丰富、允许安全应用的区域逐步放开,近年来,转基因抗虫棉的产业化有了长足的发展,取得了良好的经济和社会效益。但是,在研究方面,仍然存在一些亟待解决的问题,也是中国转基因棉花的未来研究方向。

5.1 运用多个抗虫基因提高棉花的综合抗虫能力

抗虫棉从开始应用到现在已经近20年的时间。长期种植转基因单价、双价抗虫棉,虽有效防治了棉铃虫的发生,但由于农药施用量大大减少,一些次要害虫,如盲蝽象、蚜虫等的危害日益突出,上升成为棉花主要害虫;同时,抗虫棉本身也存在生长发育后期抗虫性下降、可能发生抗性棉铃虫等综合问题,所以需要加大力度寻找新型有效的抗虫基因资源,研发转新型双基因、多基因的抗虫棉,以提高转基因抗虫棉的综合抗虫能力。

5.2 培育自主产权的抗除草剂棉花

随着农村劳动力向城市转移以及农业可持续发展的需要,全生育期利用除草剂防除杂草成为机械化植棉的重要需求。针对不同棉区的杂草种群类型和除草剂使用偏好,尤其针对高效、低毒、低残留的除草剂类型,积极筛选新的有利用价值的抗除草剂基因,研发具有中国自主知识产权的抗除草剂棉花。

5.3 培育耐旱耐盐碱转基因棉花

中国人多地少是无法解决的刚性难题,要满足棉花原料的供应问题,利用中国现有的2 000多万公顷的干旱、盐碱地,将其转变成棉田,扩大植棉面积、增加原棉总量是解决棉花原料供应问题的重要途径。伴随着植物耐逆分子通路的解析和对极端生境微生物(如盐湖微生物等耐逆机理)的研究,耐旱、耐盐碱的基因资源正在逐步被挖掘和应用于转基因棉花育种。

5.4 培育抗病转基因棉花

枯、黄萎病一直是影响中国棉花生产的主要病害。随着对枯、黄萎病遗传规律和抗性机理的进一步揭示,以及抗性相关基因QTL定位和基因克隆,为转基因抗病棉花育种提供了抗性基因资源。同时,由于致病生理小种的复杂性,还需广泛搜集和挖掘利用野生棉及棉属近缘物种中高抗枯、黄萎病的基因,并将分子标记育种、转基因育种与常规育种相结合,利用综合育种技术聚合多种抗性基因,加快棉花抗病育种的进程,培育出高抗病的转基因棉花新品种。

5.5 培育优质转基因棉花

受国际市场的影响,棉纺工业正处在一个由低端产品向中高端产品过渡的转型期。而要提高中国棉纺企业的国际竞争力,首当其冲的就是要解决优质棉原料的供应问题。因此,满足纺织企业需求的优质棉生产必将成为中国棉花生产发展的主要方向。随着棉花功能基因组学研究的发展,棉纤维的发生、发育机制正在逐步明晰,一批对棉纤维的品质起决定作用的基因正在被挖掘和应用于转基因优质棉花的培育。

现代棉花种植方式对棉花品种的要求更加多样,运用转基因生物育种技术,改善棉花的抗虫、抗除草剂、耐逆、抗病和优质等性状,并让这些有利于棉花生产的性状在较短的时间内聚合,才能满足今后棉花生产的需要。因此,综合利用转基因植物生物育种技术,培育高产、优质、抗逆的突破性新品种,是中国转基因棉花育种发展的根本。

总之,中国转基因棉花20多年来取得了骄人的成绩。特别是国产转基因抗虫棉的研发和产业化的成功,不仅促进了中国棉花及相关产业的发展,打破了美国的垄断,提升了国际竞争力,它推广应用的速度之快,影响力之广,所产生的经济社会效益和生态效益之大,创造了中国近代农业科学发展史上的奇迹。

References

[1] 转基因权威关注: https://www.360docs.net/doc/c19253486.html,/ztzl/zjyqwgz/spxx/.

GM authority concerned: https://www.360docs.net/doc/c19253486.html,/ztzl/zjyqwgz/spxx/.

(in Chinese)

[2] 郭三堆, 倪万潮, 徐琼芳. 编码杀虫蛋白融合基因和表达载体及其

应用: 中国, ZL95119563.8.

Guo S D, Ni W C, Xu Q F. Encoding insecticidal protein fusion gene and expression vectors and its application: China, ZL95119563.8. (in Chinese)

[3] 郭三堆, 崔洪志, 倪万潮. 两种编码杀虫蛋白质基因和双价融合表

达载体及其应用:中国, ZL98102885.3.

Guo S D, Cui H Z, Ni W C. Two genes encoding insecticidal proteins and double fusion expression vector and itsapplication: China, ZL98102885.3. (in Chinese)

[4] 崔金杰, 雒瑶瑜, 王春义, 马艳, 李春花. 转双价基因棉田主要害

虫及其天敌的种群动态. 棉花学报, 2004, 16(2): 94-101.

17期郭三堆等:中国转基因棉花研发应用二十年 3383

Cui J J, Luo J Y, Wang C Y, Ma Y, Li C H. Population dynamics of main pests and enemies in the transgenic Cry1Ac+ CpTI cotton field.

Acta Gossypii Sinica, 2004, 16(2): 94-101. (in Chinese)

[5] 王伟, 朱祯, 高越峰, 石春林, 陈宛新, 郭仲琛, 李向辉. 双价抗虫

基因陆地棉转化植株的获得. 植物学报, 1999, 41(4): 384-388.

Wang W, Zhu Z, Gao Y F, Shi C L, Chen W X, Guo Z C, Li X H.

Obtaining a transgenic upland cotton harboring two insecticidal genes.

Acta Botanica Sinica, 1999, 41(4): 384-388. (in Chinese)

[6] 刘志, 郭旺珍, 朱协飞, 朱祯, 张天真. 转Bt+GNA双价基因抗虫

棉花的抗虫性表现特征. 高技术通讯, 2003(1): 37-41.

Liu Z, Guo W Z, Zhu X F, Zhu Z, Zhang T Z. Go Bt+GNA of bivalent insect-resistant gene zoophobous cotton features. High Technology Letters, 2003(1): 37-41. (in Chinese)

[7] 吴家和, 田颖川, 罗晓丽, 郭洪年, 石跃进, 陈晓英, 贾燕涛, 肖娟

丽, 张献龙. 转两类抗虫基因棉花优良纯合品系的选育. 中国农业科学, 2003, 36(6): 651-656.

Wu J H, Tian Y C, Luo X L, Guo H N, Shi Y J, Chen X Y, Jia Y T, Xiao J L, Zhang X L. Selection of homozygous cotton lines transformed with two types of insect-resistant genes. Scientia Agricultura Sinica, 2003, 36(6): 651-656. (in Chinese)

[8] 肖松华, 吴巧娟, 刘剑光, 柏立新, 束春娥, 肖留斌. 转野生荠菜

凝集素基因棉花对棉蚜的抗性鉴定. 江西农业学报, 2006, 18(5): 46-50.

Xiao S H, Wu Q J, Liu J G, Bai L X, Shu C E, Xiao L B. Identification on resistance of trans- wild shepherd’s purse agglutinin gene cotton (Gossypium hirsutum) to Aphis (Aphis gossypii). Acta Agriculturae Jiangxi, 2006, 18(5): 46-50. (in Chinese)

[9] 张林水, 朱祯, 吴霞, 姜艳丽, 徐鸿林, 上官小霞, 李波, 李燕娥.

转三价抗虫基因彩色棉的获得. 西北植物学报, 2005, 25(6): 1126-1131.

Zhang L S, Zhu Z, Wu X, Jiang Y L, Xu H L, Shangguan X X, Li B, Li Y E. Acquisition of transgenic colour cotton with a trivalent insect-resistant gene. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2005, 25(6): 1126-1131. (in Chinese)

[10] 雒瑶瑜, 崔金杰, 王春义, 辛惠江. 转Cry1Ac+Cry2ab基因棉花对

小地老虎生长发育的影响. 棉花学报, 2014, 26(5): 179-183.

Luo J Y, Cui J J, Wang C Y, Xin H J. Effects of transgenic Cry1Ac plus Cry2Ab cotton on blank cutworm (Agrotis ypsilon Rottemberg) growth and development. Cotton Science, 2014, 26(5): 179-183. (in Chinese)

[11] McGaughey W H, Whalon M E. Managing insect resistance to

Bacillus thuringiensis toxins. Science, 1992, 258: 1451-1455.

[12] 刘超, 朱彦卓, 代文俊, 任燕萍. 转基因棉花抗逆性研究进展. 湖

南农业科学, 2014(15): 32-35.

Liu C, Zhu Y Z, Dai W J, Ren Y P. Advances in stress resistance research on transgenic cotton. Hunan Agricultural Sciences, 2014(15): 32-35. (in Chinese)

[13] 吕素莲. 转betA和TsVP基因提高棉花耐盐、抗旱性的研究[D]. 济

南: 山东大学, 2007.

Lü S L. Go beta and TsVP gene cotton resistant to salt and drought resistance research [D]. Jinan: Shandong University, 2007. (in Chinese) [14] 曹燕燕, 廖平安, 葛昌斌, 沈向磊, 杨业华. 转rolB基因棉花抗旱

性研究. 湖南农业科学, 2012(15): 1-2, 5.

Cao Y Y, Liao P A, Ge C B, Shen X L, Yang Y H. Drought resistance of rolB transgenic cotton. Hunan Agricultural Sciences, 2012(15): 1-2,

5. (in Chinese)

[15] 王娟. 转ZmPIS基因及聚合betA/TsVP基因提高棉花耐旱性的研

究[D]. 济南: 山东大学, 2010.

Wang J. Go ZmPIS betA/TsVP gene and polymerization to improve drought tolerance of cotton research [D]. Jinan: Shandong University, 2010. (in Chinese)

[16] 吴伟. 转ZmPLCI-betA 基因棉花的耐旱性研究[D]. 济南: 山东大

学, 2012.

Wu W.Study on drought tolerance of transgenic cotton with ZmPLCI- betA gene[D]. Jinan: Shandong University, 2012. (in Chinese)

[17] 杨云尧. 转MVP5CS和MvNHX1基因提髙棉花抗旱性的研究[D].

乌鲁木齐: 新疆农业大学, 2012.

Yang Y Y. Go MVP5CS and MvNHX1 genes of higher drought resistance of cotton research [D]. Urumqi: Xinjiang Agricultural University, 2012. (in Chinese)

[18] 蔡永智. 转CBF1和KatG基因棉花抗旱性分析[D]. 石河子: 石河

子大学, 2013.

Cai Y Z. CBF1 KatG gene and analysis of drought resistance of cotton

[D]. Shihezi: Shihezi University, 2013. (in Chinese)

[19] 钱进, 杨云尧, 任燕萍, 朱超, 陈全家, 张桦. 转MvNHX1基因棉

花抗旱性研究和株系变异分析. 分子植物育种, 2014, 12(1): 80-86.

Qian J, Yang Y Y, Ren Y P, Zhu C, Chen Q J, Zhang H. The study on drought resistance and variation analysis in transgenic MvNHX1

cotton. Molecular Plant Breeding, 2014, 12(1): 80-86. (in Chinese) [20] Gu L, Zhang H, Guo H, Cheng H. Cloning of Ammopiptanthus

mongolicus C-repeat-binding factor gene and its cold-induced tolerance in transgenic tobacco. Brazilian Archives of Biology and Technology, 2013, 56(6): 895-903.

[21] 张慧军, 董合忠, 石跃进, 陈受宜, 朱永红. 山菠菜胆碱单加氧酶

基因对棉花的遗传转化和耐盐性表达. 作物学报, 2007, 33(7): 1073-1078.

3384 中国农业科学48卷

Zhang H J, Dong H Z, Shi Y J, Chen S Y, Zhu Y. Hong transformation of cotton (Gossypium hirsutum L.) with AhCMO gene and the expression of salinity tolerance. Acta Agronomica Sinica, 2007, 33(7): 1073-1078. (in Chinese)

[22] 连丽君. betA基因的异源表达提高了棉花耐盐和耐低温能力[D].

济南: 山东大学, 2008.

Lian L J. Heterologous expression of beta gene improves salt tolerance in cotton and low temperature-resistant ability [D]. Jinan: Shandong University, 2008. (in Chinese)

[23] 樊文菊. 转ZmPLC1基因及聚合ZmPLC1/betA基因棉花耐盐性的

研究[D]. 济南: 山东大学, 2013.

Fan W J. ZmPLC1 gene and the ZmPLC1/beta study on salt-tolerance of transgenic cotton [D]. Jinan: Shandong University, 2013. (in Chinese)

[24] 陈翠霞, 于元杰, 刘风珍, 沈法富, 王洪刚. 棉花耐盐变异体的遗

传分析. 西北植物学报, 2000, 20(2): 234-237.

Chen C X, Yu Y J, Liu F Z, Shen F F, Wang H G. Genetic analysis of salt-tolerance variant in cotton. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2000, 20(2): 234-237. (in Chinese)

[25] 李雪林. SNAC1基因在棉花上的应用及盐胁迫下棉花基因组DNA

甲基化分析[D]. 武汉: 华中农业大学, 2009.

Li X L. Application of SNAC1 in cotton and cotton under salt stress genome-wide DNA methylation analysis [D]. Wuhan: Huazhong Agricultural University, 2009. (in Chinese)

[26] 张锐, 郭三堆, 梁成真. 三个棉花ABF/AREB/ABI5/DPBF类转录

因子及其编码基因与应用: 中国, ZL200910158311.X.

Zhang R, Guo S D, Liang C Z. Coding genes of three cotton transcription factors ABF/AREB/ABI5/DPBF and its applications: China, ZL200910158311.X. (in Chinese)

[27] 王宗文. 国内外抗除草剂棉花研究应用现状. 山东农业科学,

2011(1): 81-85.

Wang Z W. Research and application status of herbicide- resistant cotton at home and abroad. Shandong Agricultural Sciences, 2011(1): 81-85. (in Chinese)

[28] 雷凯健, 卢维维, 洪玉枝, 刘子铎. 土壤总DNA中草甘膦N-乙酸

转移酶基因的克隆及酶学特性分析. 农业生物技术学报, 2007, 15(1): 153-156.

Lei K J, Lu W W, Hong Y Z, Liu Z D. Cloning of the glyphosate N-acetyltransferase gene from soil total DNA and its characterization of enzyme activity. Journal of Agricultural Biotechnology, 2007, 15(1): 153-156. (in Chinese)

[29] 何鸣, 曾海燕, 徐培林, 叶长明. aroA基因的克隆和优化. 中山大

学学报: 自然科学版, 2002, 41(2): 76-79.

He M, Zeng H Y, Xu P L, Ye C M. Cloning and mutagenesis of the aroA gene. Acta Scientiarum Naturalium Universitatis Sunyatseni, 2002, 41(2): 76-79. (in Chinese)

[30] 赵特. 一种抗草甘麟基因的发现和抗草甘麟转基因水稻的培育[D].

杭州: 浙江大学, 2008.

Zhao T. An resistant glyphosate gene discovery and the cultivation of transgenic rice [D]. Hangzhou: Zhejiang University, 2008. (in Chinese) [31] 朱玉. 极端污染环境下草甘膦耐受菌株荧光假单胞菌G2的鉴定及

其EPSP合成酶墓因的克隆[D]. 北京: 中国农业科学院, 2002.

Zhu Y. Under extreme environmental pollution by glyphosate-tolerant strains offluorescent Pseudomonas G2, identification and cloning of EPSP synthase [D]. Beijing: Chinese Academy of Agricultural Sciences, 2002. (in Chinese)

[32] 沙纪莹. 斯氏假单胞菌A1501 EPSP合酶基因的克隆及表达[D].

成都: 四川师范大学, 2008.

Sha J Y. Pseudomonas Stradivari A1501 EPSP synthase gene cloning and expression [D]. Chengdu: Sichuan Normal University, 2008. (in Chinese)

[33] 刘柱. 可变盐单胞菌中草甘膦抗性EPSP合酶新基因克隆、大肠杆

菌表达及其抗性机制的研究[D]. 成都: 四川大学, 2004.

Liu Z. Cloning a novel 5-enolpyruvylshikimate-3-phosphate synthase gene conferring increased glyphosate tolerance from Halomonas variabilis and its expression in Escherichia coli and its glyphosate- tolerant mechanism [D]. Chengdu: Sichuan University, 2004. (in Chinese)

[34] 童旭宏, 吴玉香, 祝水金. 陆地棉epsps基因的克隆及其组织特异

性表达分析. 棉花学报, 2009, 4: 259-264.

Tong X H, Wu Y X, Zhu S J. Cloning of 5-enolpyruvylshikimate 3-phosphate synthase genes EPSPS from the upland cotton and its expression in different cotton tissues. Cotton Science, 2009, 4: 259-264. (in Chinese)

[35] 程海刚, 张锐, 罗淑萍, 代培红, 郭三堆. 青麻ePsPs基因在酵母

中表达. 新疆农业大学学报, 2007, 30(4): 52-56.

Cheng H G, Zhang R, Luo S P, Dai P H, Guo S D. Expression of ePsPs gene from Abutilon theophrasti medic in the pichia pastoris.

Journal of Xinjiang Agricultural University, 2007, 30(4): 52-56. (in Chinese)

[36] 郭三堆, 孙豹, 张锐, 孟志刚, 孙国清, 林敏, 陆伟. 一种含有草甘

膦抗性基因的表达载体及其应用: 中国, 201410204703.6.

Guo S D, Sun B, Zhang R, Meng Z G, Sun G Q, Lin M, Lu W. A glyphosate resistance gene expression vector and its application: China, 201410204703.6. (in Chinese)

[37] Guo S D, Sun B, Zhang R, Meng Z G, Sun G Q, Lin M, Lu W. A

17期郭三堆等:中国转基因棉花研发应用二十年 3385

glyphosate resistance gene expression vector and its application: China, PCT/CN2014000620.

[38] 陈志贤, Danny J Liewellyn, 范云六, 李淑君, 郭三堆, 焦改丽, 赵

俊侠. 利用农杆菌介导法转移tfdA基因获得可遗传的抗2, 4 -D棉株. 中国农业科学, 1994, 27(2): 31-37.

Chen Z X, Liewllyn D J, Fan Y L, Li S J, Guo S D, Jiao G L, Zhao J X. 2,4-D resistant transgenic cotton plants produces by Agrobacterium- mediated gene transfer. Scientia Agricutura Sinica, 1994, 27(2): 31-37.

(in Chinese)

[39] 刘方, 王坤波, 宋国立. 中国棉花转基因研究与应用. 棉花学报,

2002, 14(4): 249-253.

Liu F, Wang K B, Song G L. Application and advances in study on the improvement of cotton transgene in China. Acta Gossypii Sinica, 2002, 14(4): 249-253. (in Chinese)

[40] 张磊. 水稻苯达松抗性基因Bel的精细定位与克隆[D]. 武汉: 华中

农业大学, 2006.

Zhang L. Rice bentazone fine mapping and cloning of resistance gene Bel [D]. Wuhan: Huazhong Agricultural University, 2006. (in Chinese) [41] 张金文, 熊春蓉, 李静雯, 王旺田, 孟亚雄, 陈正华. 臭鼻杆菌腈

水解酶基因(bxn)的克隆及其在原核生物中的表达. 草业学报, 2006, 15(6): 87-92.

Zhang J W, Xiong C R, Li J W, Wang W T, Meng Y X, Chen Z H.

Cloning of bromoxyni-l specific nitrilase gene (bxn) from Klebsiella ozaenae and expression in prokaryotic cells. Acta Prataculturae Sinica, 2006, 15(6): 87-92. (in Chinese)

[42] 宋贵生, 冯德江, 魏晓丽, 唐家斌, 朱祯. 水稻乙酰乳酸合成酶基

因的克隆和功能分析. 中国农业科技导报, 2007, 9(3): 66-72.

Song G S, Feng D J, Wei X L, Tang J B, Zhu Z. Isolation and functional analysis of rice acetolactate-synthase (ALS). Journal of Agricultural Science and Technology, 2007, 9(3): 66-72. (in Chinese) [43] 卢宗志, 张朝贤, 傅俊范, 李茂海, 李贵军. 抗苄嘧磺隆雨久花

ALs基因突变研究. 中国农业科学, 2009, 42(10): 3516-3521.

Lu Z Z, Zhang C X, Fu J F, Li M H, Li G J. Molecular basis of resistance to bensulfuron-methyl in Monochoria korsakowii. Scientia Agricultura Sinica, 2009, 42(10): 3516-3521. (in Chinese)

[44] 高巍. 棉花响应黄萎病菌分子机制的蛋白质组学研究及HDTF1基

因的功能鉴定[D]. 武汉: 华中农业大学, 2014.

Gao W. Molecular mechanisms of response of cotton verticillium wilt research onproteomics and functional identification of HDTF1 genes

[D]. Wuhan: Huazhong Agricultural University, 2014. (in Chinese)

[45] 徐理. 棉花与黄萎病菌的分子互作机制研究及GbWRKY1基因的

功能鉴定[D]. 武汉: 华中农业大学, 2011.

Xu L. Study on molecular interaction mechanism of verticillium

dahliae of cotton and the functional identification of GbWRKY1 genes [D]. Wuhan: Huazhong Agricultural University, 2011. (in Chinese)

[46] 孟宪鹏. 海岛棉抗病相关ERF转录因子的克隆与鉴定[D]. 安阳:

中国农业科学院, 2009.

Meng X P. Cloning and identification of relevant ERF transcription factors of Gossypium barbadense [D]. Anyang: Chinese Academy of Agricultural Sciences, 2009. (in Chinese)

[47] 张文蔚. 陆地棉抗黄萎病相关基因筛选及功能验证[D]. 北京: 中

国农业科学院, 2013.

Zhang W W. Screening and functional verification of genes related to resistance to Verticillium wilt in Gossypium hirsutum [D]. Beijing: Chinese Academy of Agricultural Sciences, 2013. (in Chinese) [48] 赵付安. 棉花黄萎病菌诱导陆地棉和野生棉差异表达分析及抗病

相关基因克隆[D]. 郑州: 河南大学, 2012.

Zhao F A. Differential expression analysis and cloning of disease resistance-related gene among Wild cotton induced by verticillium dahlia in cotton [D]. Zhengzhou: Henan University, 2012. (in Chinese) [49] 倪萌, 缪卫国, 刘海洋, 邵家丽, 努尔孜亚, 乔子辰, 尚衍强, 王金

生. 棉花黄萎病菌诱导转hpa1xoo基因棉花产生微过敏防御反应.

新疆农业科学, 2009, 46(1): 46-49.

Ni M, Miao W G, Liu H Y, Shao J L, Nuerziya, Qiao Z C, Shang Y Q, Wang J S. Micro- HR elicited by Verticillium dahliae kleb. in transgenic hpa1xoo cotton. Xinjiang Agricultural Sciences, 2009, 46(1): 46-49. (in Chinese)

[50] 李德谋, 裴炎, 罗小英, 侯磊, 李先碧, 肖月华, 罗明, 白文钦, 张

觅, 李忠旺, 梁俊俊. GhASN-Like基因、表达载体及其在提高棉花产量中的应用: 中国, 201110104141.4.

Li D M, Pei Y, Luo X Y, Hou L, Li X B, Xiao Y H, Luo M, Bai W Q, Zhang M, Li Z W, Liang J J. GhASN-Like gene, expression vectors and its application on cotton yield: China, 201110104141.4. (in Chinese) [51] 裴炎, 侯磊, 李德谋, 宋水清, 李先碧, 罗明, 肖月华, 郑雪莲, 曾

其伟, 张觅, 邱坤, 罗凤涛. 表达生长素合成相关基因的植物表达载体及其在棉花纤维性状改良的应用: 中国, CN200810142518.3.

Pei Y, Hou L, Li D M, Song S Q, Li X B, Luo M, Xiao Y H, Zheng X L, Zeng Q W, Zhang M, Qiu K, Luo F T. Auxin biosynthesis related genes expression in plant expression vector and itsapplication in cotton fiber properties improvement: China, CN200810142518.3. (in Chinese)

[52] Zhang M, Zheng X L, Song S Q, Zeng Q W, Hou L, Li D M, Zhao J,

Wei Y, Li X B, Luo M, Xiao Y H, Luo X Y, Zhang J F, Xiang C B, Pei Y. Spatiotemporal manipulation of auxin biosynthesis in cotton ovule epidermal cells enhances fiber yield and quality. Nature Biotechnology,

3386 中国农业科学48卷

2011, 29(5): 453-459.

[53] 李文彬, 宋晶, 孙勇如, 张利明, 王义琴, 牛恒尧. bec基因棉花特

异表达载体: 中国, 02103787.6.

Li W B, Song J, Sun Y R, Zhang L M, Wang Y Q, Niu H Y. BEC cotton-specific expression vector: China, 02103787.6. (in Chinese) [54] 左开井, 王劲, 陈继军. 提高棉花纤维品质的GbAnn9基因及其应

用: 中国, ZL201110253458.4.

Zuo K J, Wang J, Chen J J. GbAnn9 and application of cotton fiber quality: China, ZL201110253458.4. (in Chinese)

[55] 夏桂先, 韩立波, 焦改丽, 李元宝, 王海云. GhLIN2蛋白及其基因

在改良棉花纤维品质中的应用: 中国, 201210505575.X.

Xia G X, Han L B, Jiao G L, Li Y B, Wang H Y. GhLIN2 protein and its gene in the modified application of cotton fiber quality: China, 201210505575.X. (in Chinese)

[56] 李晓荣, 秦咏梅, 李晓东, 范玲, 李波, 胡文冉, 柳皋隽, 杨洋.

GhUGP1基因在改良棉花纤维品质中的应用方法: 中国, 201310613879.2.

Li X R, Qin Y M, Li X D, Fan L, Li B, Hu W R, Liu G J, Yang Y.

Application of GhUGP1 in improving cotton fibre quality: China, 201310613879.2. (in Chinese)

[57] 刘进元, 赵广荣, 徐振彪. 棉花纤维可逆糖基化蛋白酶基因及其编

码的蛋白质: 中国, CN01142164.9.

Liu J Y, Zhao G R, Xu Z B. Cotton fiber reversible effect of protease gene and its encoded protein: China, CN01142164.9. (in Chinese) [58] 李学宝, 李登弟, 王秀兰, 阮想梅, 吴雅洁. 棉花纤维特异表达的

水孔蛋白家族基因GhPIP2;6: 中国, ZL 200910273363.1.

Li X B, Li D D, Wang X L, Ruan X M, Wu Y J. Specific expression of Aquaporin family of cotton fiber gene GhPIP2;6: China, ZL 200910273363.1. (in Chinese)

[59] 朱玉贤, 姬生健, 卢迎春, 冯建勋. 棉花纤维的类β微管蛋白及其

编码基因与应用: 中国, CN02128986.7.

Zhu Y X, Ji S J, Lu Y C, Feng J X. Coding gene and its application of β-tubulin protein in cotton fiber: China, CN02128986.7. (in Chinese) [60] 郭三堆, 任茂智, 张锐. 棉花Nodulin-like基因及其启动子: 中国,

CN 2003101137982.

Guo S D, Ren M Z, Zhang R. Nodulin-like gene and its promoter in cotton: China, CN 2003101137982. (in Chinese)

[61] 张献龙, 胡海燕, 刘迪秋, 涂礼利. 一种棉花纤维伸长期表达的启

动子及制备方法和应用: 中国, CN201210280595.1.

Zhang X L, Hu H Y, Liu D Q, Tu L L. A cotton fibers elongation expression of promoter and its preparation methodand application: China, CN201210280595.1. (in Chinese)

[62] 李静, 沈法富, 于海东, 韩秀兰. 转基因抗早衰棉的获得. 西北植

物学报, 2004, 24(8): 1419-1423.

Li J, Shen F F, Yu D H, Han X L. The obtaining of transgenic cottons resistant to premature senescence. Acta Botanica Boreali-occidentalia Sinica, 2004, 24(8): 1419-1423. (in Chinese)

[63] 傅荣昭, 孙勇如, 贾士荣. 植物遗传转化手册. 北京: 科学技术出

版社, 1995: 9-11.

Fu R Z, Sun Y R, Jia S R. Plant Genetic Transformation. Beijing: Science and Technology Press, 1995: 9-11. (in Chinese)

[64] Vasil V, Castillo A M, Fromm M E, Vasil I K. Herbicide resistant

fertile transgenic wheat plants obtained by microprojectile bombardment of regenerable embryogenic callus. Nature Biotechnology, 1992, 10: 667-674.

[65] Ming X T, Yuan H Y, Wang L J, Chen Z L. Agrobacterium-mediated

transformation of rice with help of bombardment. Acta Botanica Sinica, 2001, 43(1): 72-73.

[66] Kleint T M, Wlofe E D, Wu R, SANFORD J C. High-velocity

microprojectiles for delievering nucleic acid into living cells. Nature, 1987, 327: 70-73.

[67] Philippe V, Horth Y, Pascal F. Enhancement of production and

regeneration of embryo genictypeII callus in ZeamPaysl by AgNO3.

Plant Cell Tissue and Organ Culture, 1989, 18: 143-151.

[68] 刘娜. vgb基因在抗虫棉中的功能研究[D]. 乌鲁木齐: 新疆农业大

学, 2007.

Liu N. vgb study of gene function in insect-resistant cotton[D].

Urumqi: Xinjiang Agricultural University, 2007. (in Chinese)

[69] 牟红梅, 刘树俊, 周文娟, 文玉香, 张文俊, 魏荣瑄. 慈菇蛋白酶

抑制剂通过花粉管途径对小麦的导入及转基因植株分析. 遗传学报, 1999, 26(6): 634-642.

Mu H M, Liu S J, Zhou W J, Wen Y X, Zhang W J, Wei R X.

transformation of wheat with insectide gene arrowhead proteinase inhibitor by pollen tube pathway and analysis of transgenic plants.

Acta Genetica Sinica, 1999, 26(6): 634-642. (in Chinese)

[70] 曾君祉, 王东江, 吴有强, 张健, 周文娟, 朱小平, 徐乃正. 用花粉

管途径获得小麦转基因植株. 中国科学, 1993, 23(3): 256-262.

Zeng J Z, Wang D J, Wu Y Q, Zhang J, Zhou W J, Zhu X P, Xu N Z.

Obtained by pollen tube pathway transgenic wheat plants. Science in China: Ser.B, 1993, 23(3): 256-262. (in Chinese)

[71] Langridge P, Brettschneider R, Lazzeri P, L?rz H. Transformation of

cereals via Agrobacterium and the pollen pathway: A critical assessment. The Plant Journal, 1992, 2(4): 631-638.

[72] 李君, 李岩, 刘德虎. 植物遗传转化的替代方法及研究进展. 生物

技术通报, 2011(7): 31-36.

Li J, Li Y, Liu D H. Alternative methods of plant genetic transformation and recent advances. Biotechnology Bulletin, 2011(7):

17期郭三堆等:中国转基因棉花研发应用二十年 3387

31-36. (in Chinese)

[73] Bechtold N, Ellis J, Pelletier G. In planta Agrobacterium mediated

gene transfer by infiltration of adult Arabidopsis thaliana plants.

Comptes Rendus de l'Académie des Sciences Pairs Life Sciences,1993, 316: 1194-1199.

[74] Feldmann K. T-DNA insertion mutagenesis in Arabidopsis:

Mutational spectrum. The Plant Journal, 1991, 1: 71-82.

[75] Azpiroz-Leehan R, Feldmann K A. T-DNA insertion mutagenesis in

Arabidopsis: Going back and forth. Trends in Genetics, 1997, 13(4): 152-156.

[76] Torney F, Trewyn B G, Lin V S Y, Wang K. Mesoporous silica

nanoparticles deliver DNA and chemicals into plants. Nature Nanotechnology, 2007, 2: 295-300.

[77] Yi B, Liu F Y, Zhang H, Liu H, Peng Y M, Liu Y H. Gene therapy of

mice peritoneal fibrosis by nano-carrier pamam mediated pCTGF- shRNA. Cell Biology International, 2008, 32(3): S7.

[78] Chemin I, Moradpour D, Wieland S, Offensperger W B, Walter E,

Behr J P, Blum H E. Liver-directed gene transfer: A linear polyethylenimine denvative mediates highly efficient DNA delivery to primary hepatocytes in vitro and in vivo. Journal of Viral Hepatitis, 1998, 56: 369.

[79] Takefumi S, Eiji N, Tomohiko I, Mizukami A, Takakura Y, Kajiyama

S, Fukusaki E, Harashima S, Kobayashi A, Fukui K. A novel gene delivery system in plants with calcium alginate micro-beads. Journal of Bioscience and Bioengineering, 2002, 94(1): 87-91.

[80] 王国英. 转基因植物的安全性评价. 农业生物技术学报, 2001,

9(3): 205-207.

Wang G Y. The safety evaluation of teansgenic plants. Journal of Agricultural Biotechnology, 2001, 9(3): 205-207. (in Chinese)

[81] 吴志平, 徐步进. 转基因植物释放后在环境中成为杂草的风险性.

生物工程进展, 1999, 19(1): 9-13.

Wu Z P, Xu B J. The risk of transgenic plants changing into wild weeds after environmental release. Progress in Biotechnology, 1999, 19(1): 9-13. (in Chinese)

[82] Losey J E, Rayor L S, Carter M. Transgenic pollen harms rmnarch

larvae. Nature, 1999(399): 214-419.

[83] 国家农作物品种审定委员会办公室. 中国转抗虫基因棉花品种

(1997~2007). 北京: 中国农业出版社, 2008.

Office of the national crop varieties Committee. Transgenic Cotton Varieties in China (1997-2007). Beijing: China Agriculture Press, 2008. (in Chinese)

[84] 中华人民共和国农业部公告: 国家审定棉花品种1997年-2013年.

Announcement of the Ministry of agriculture of the people's Republic

of China: National approved cotton varieties from 1997 to 2003. (in Chinese)

[85] 汪若海, 李秀兰, 杨付新, 付小琼. 从国家棉花品种区试看杂交棉

//中国棉花学会2005年年会暨青年棉花学术研讨会论文汇编. 2005: 117.

Wang R H, Li X L, Yang F X, Fu X Q. The development of hybrid cotton from the perspective of the national trials for cotton varieties.

//Proceedings of Chinese Cotton Society 2005 Annual Conference & Youth Symposium. 2005: 117. (in Chinese)

[86] 全国农业技术推广服务中心. 全国农作物主要品种推广情况统计

1996年-2012年.

The National Agro-Tech Extension and Service Center. Extension statistics of main varieties of crops in China from 1996 to 2012. (in Chinese)

[87] 金石桥, 刘逢举, 刘媛, 杨付新. 黄河流域常规棉品种近几年育种

趋势分析. 中国棉花, 2014, 41(1): 8-11.

Jin S Q, Liu F J, Liu Y, Yang F X. Discussion on the conventional cotton breeding direction in the yellow river region in recent years.

China Cotton, 2014, 41(1): 8-11. (in Chinese)

[88] 付小琼, 杨付新, 王秀玲. 黄河流域春棉区试纤维品质近16年的

变化趋势//中国棉花学会年年会论文汇编. 2008: 99-102.

Fu X Q, Yang F X, Wang X L. Yellow spring trend of cotton fiber quality test nearly 16 years// China Cotton Association Annual Proceedings. 2008: 99-102. (in Chinese)

[89] 黄季焜, 米建伟, 林海, 王子军, 陈瑞剑, 胡瑞法, Rozeelle Scott,

Pray Carl. 中国10年抗虫棉大田生产:Bt抗虫棉技术采用的直接效益和间接外部效应评估. 中国科学: 生命科学, 2010, 40(3): 260-272.

Huang J K, Mi J W, Lin H, Wang Z J, Chen R J, Hu R F, Scott R, Carl P. A decade of Bt cotton in farmer fields in China: Assessing the direct effects and indirect externalities of Bt cotton adoption in China.

Scientia Sinica Vitae, 2010, 40(3): 260-272. (in Chinese)

[90] 苏岳静, 胡瑞发, 黄季焜, 范存会. 农民抗虫棉技术选择行为及其

影响因素分析. 棉花学报, 2004, 16(5): 259-264.

Su Y J, Hu R F, Huang J K, Fan C H. The determinants of farmer Bt cotton technology adoption behavior in China. Acta Gossypii Sinica, 2004, 16(5): 259-264. (in Chinese)

[91] 张锐, 王远, 孟志刚孙国清, 郭三堆. 国产转基因抗虫棉研究回

顾与展望. 中国农业科技导报, 2007, 9(4): 32-42.

Zhang R, Wang Y, Meng Z G, Sun G Q, Guo S D. Retrospect and prospect of research on Chinese transgenic insecticidal cotton. Journal of Agricultural Science and Technology, 2007, 9(4): 32-42. (in Chinese)

(责任编辑李莉)

相关文档
最新文档