钛种植体表面早期成骨效应观察(摘要)
种植体发展与表面处理对骨结合的效果研究
种植体发展与表面处理对骨结合的效果研究选用合金种植体，利用机械加工的螺旋柱状植体为实验样本，分为不同的处理组，利用不同的处理方法，然后用电镜确定形态，再用扫描电镜，EDS-X 射线能谱仪分析测试其表面成分，以XPS-X 射线光电子能谱分析，测量其表面附着离子。
得出最适宜骨结合条件，证实了植体处理过程种植体表面与骨结合能力的重要性，提出种植时对金属表面处理方式及条件。
标签：种植体；最佳骨结合；表面处理；方法研究口腔种植体是高科技义齿的发展，称为牙种植体，按照传统的叫法称为人工牙根。
这种牙根是利用外科手术的方法，将种植体植入到人体缺牙部位的上下颌骨内，通过人体的愈合能力恢复，待手术伤口愈合后，种植体就和颌骨结合成一体，然后再在其上部安装义齿，显然义齿功能的关键是必需牢固，这需要种植体需经机械加工，颌骨的内部表面经过要经过喷砂、酸蚀处理，使颌骨内粗糙度和表面积增加，以加强临床种植体初期的稳固及长期的骨结合的稳定性[1]这已被广大医务人员认同并得到普遍的应用。
本研究通过对种植体材料的分析，利用对种植体表面喷砂、酸蚀及清洁过程的实验室处理，再检测其结果，就可以选择可获得最佳骨结合效果的条件。
1种植体材料的介绍在高科技发展中，新型种植体材料的出现，才促进了种植体医疗技术的发展，这一类材料的种类较多，可以分为四类。
1.1陶瓷材料种植体陶瓷材料的种类较多，能作为种植体的主要是生物惰性陶瓷、生物活性陶瓷、生物降解性陶瓷材料等。
生物降解性陶瓷材料具有机械强度高，耐腐蚀，无刺激性和毒性，容易和与人体颌骨组织结合，既相容性强等特点。
目前是义齿临床使用的材料之一[2]。
1.2碳素材料种植体碳素材料种植体，有玻璃碳、低温各向同性碳等。
这种材料的优点是，在生物体内有较高的稳定性，在人体中不易发生生物降解作用。
1.3金属与合金种植体这一类种植体，包括金、316L不锈钢(铁一铬一镍合金)、铸造钴铬合金、钛及合金等。
它们的优点是强度高、刚性好，但生物机械适应性和组织、骨适应性均较差，虽然是传统的种植体，但目前已不常用。
钛种植体-骨间隙愈合界面成骨方式的激光共聚焦显微镜观察
钛骨”TIXOS----现代种植体革命性的发明
“钛骨” TIXOS ----现代种植体革命性的发明经过数年的研究和试验，意大利“引导者”公司（Leader Italia）开始运用“钛金属熔结”生产工艺，生产新型“钛骨”（Tixos）种植体系列产品。
众所周知，传统的种植体以钛金属棒为原料，用电脑程控车床进行机械加工，然后通过喷砂和酸处理等方法完成种植体的表面处理。
有些种植体系统还采用了羟基磷灰石涂层等方法，增加种植体表面的粗糙度。
“钛金属熔结“工艺是一项革命性创造发明，“引导者”公司（Leader Italia）享有专利。
通过电脑完成虚拟三维设计，按照工艺流程，控制激光束聚焦强度，以微米级钛金属粉末为原料，逐层熔结叠加，精密制造出符合设计要求的种植体以及表面结构。
“钛骨”（Tixos）种植体表面特点是仿造牙槽骨的天然结构，表面密布内部交错互通的窝沟，引诱成骨细胞在窝洞中再生。
窝洞凹陷深入种植体表面200微米，形成无数坑洼微隙，为新生骨生长提供了空间。
新生骨和种植体连锁相扣，从而将种植体牢固地稳定在它的埋植位置上。
这是传统的生产工艺不可能完成的。
传统的种植体的骨—种植体接触面，好象攀岩者攀附在粗糙的岩石表面。
观察“钛骨”（Tixos）种植体，成骨细胞渗入200微米厚的种植体表层。
种植体表面内部交错互通的窝洞和微孔填满了新生骨，两者相互渗透锁结，保证了种植体的稳固。
临床结果证明，”钛骨”种植体在3D和4D骨中的初期稳定性是当今市场上所有其他品牌种植体的2.5倍，骨—种植体接触率超过6—9倍。
“钛骨”种植体表面结构“钛骨”（Tixos）种植体另外一个显著特点是它的表面弹性模量。
英国伯明翰大学R. Sammons教授的研究结果证明，“钛骨”（Tixos）种植体表面的弹性模量和牙槽骨非常接近，种植体核心部位的弹性模量和钛金属一致，符合ASTM标准。
种植体的弹性模量逐渐变化，犹如在自然状态下，应力从种植体向牙槽骨传递。
避免了不良负荷造成的对骨改建的不利因素。
钛种植体表面改性的研究进展
综述һ基金项目:国家自然科学基金(８１５７０９９９)作者简介:马子洋(１９９５~)ꎬ男ꎬ在读硕士研究生ꎬ研究方向:口腔修复与口腔种植ꎮ通信作者:陈溯(１９６８~)ꎬ男ꎬ博士ꎬ主任医师ꎬ研究方向:种植修复㊁种植体表面改性㊁修复数字化技术ꎬ电子邮箱:１３９１０１６４７７６＠１６３.ｃｏｍ.钛种植体表面改性的研究进展һ马子洋１㊀陈㊀溯２(１首都医科大学口腔医学院ꎬ北京市㊀１０００５０ꎬｍｚｙｕｓｕａｌ＠１２６.ｃｏｍꎻ２首都医科大学口腔医学院特诊特需科ꎬ北京市㊀１０００５０)ʌ提要ɔ㊀钛种植体表面改性可以促进骨整合ꎬ提高临床种植成功率ꎬ已逐渐成为临床及基础研究的重点ꎮ本文针对国内外几种钛种植体表面改性方法的研究进展进行综述ꎮʌ关键词ɔ㊀钛种植体ꎻ表面改性ꎻ综述ʌ中图分类号ɔ㊀Ｒ７８㊀㊀ʌ文献标识码ɔ㊀Ａ㊀㊀ʌ文章编号ɔ㊀０２５３￣４３０４(２０１９)２０￣２６２６￣０５ＤＯＩ:１０.１１６７５/ｊ.ｉｓｓｎ.０２５３￣４３０４.２０１９.２０.２０㊀㊀种植义齿是目前牙列缺损㊁牙列缺失的重要修复方式ꎬ而良好的骨整合是种植体长期稳定于口腔的关键ꎮ种植体表面改性是指在不改变种植体材料及原有性能的基础上ꎬ赋予种植体表面新的性能ꎮ种植体表面改性可以有效促进骨整合ꎬ提高种植修复的成功率[１]ꎮ钛种植体是常用于种植修复的种植体ꎬ具有良好的生物相容性㊁可加工性㊁耐腐蚀性㊁耐磨性和较低的弹性模量[２]ꎮ钛种植体的表面改性是目前的研究热点ꎬ多数研究从改善种植体表面粗糙度ꎬ在种植体表面掺入生物活性物质ꎬ以及在种植体表面制备纳米管阵列等方面ꎬ对种植体表面进行处理ꎬ以达到促进骨整合的目的ꎮ本文将对以上３种钛种植体表面改性方法的研究进展进行综述ꎮ１㊀改善表面粗糙度喷砂㊁酸蚀㊁等离子喷涂㊁激光处理可以改善种植体表面的粗糙度ꎮ增加种植体表面粗糙度有利于成骨细胞在种植体表面黏附㊁增殖㊁分化ꎬ促进骨组织在种植体表面的嵌合ꎬ利于骨整合ꎬ可以增加种植体初期稳定性[３]ꎮ１.１㊀喷砂与酸蚀㊀喷砂是将一定粒度的硬质颗粒加压喷射到种植体表面ꎬ以达到增加种植体表面粗糙度的目的ꎮ常用于喷砂的材料包括石英砂㊁羟基磷灰石(ｈｙｄｒｏｘｙａｐａｔｉｔｅꎬＨＡ)㊁氧化铝㊁氧化钛㊁氧化铁颗粒ꎮ将喷砂表面粗糙度算术平均高度值控制在１~２μｍꎬ有利于种植体表面骨整合ꎬ是增加种植体初期稳定性的传统方法[４]ꎮ除有利于骨整合外ꎬ喷砂可在钛种植体表面产生压缩残余应力层ꎬ增加种植体疲劳试验的寿命[５]ꎮ此外ꎬ使用特定尺寸㊁形状㊁速度的喷砂颗粒可以增加种植体表面的粗糙度[６]ꎮ酸蚀是利用强酸ꎬ如氢氟酸㊁硝酸㊁硫酸等ꎬ或多种酸的混合物ꎬ对种植体表面进行处理的方法ꎮ酸蚀可以清洁种植体表面ꎬ处理种植体表面的氧化膜ꎬ使其具有更高的表面自由能ꎬ增强其表面粗糙度和扭矩[７]ꎮ酸蚀可以获得均匀粗糙的种植体表面ꎬ对基体的形状及尺寸要求较小ꎮ酸蚀种植体表面有利于成骨细胞的黏附和骨的形成ꎬ促进骨整合[２]ꎮ调整酸的种类㊁浓度可以改变酸蚀速率[８]ꎮ调整酸蚀时间可以改变钛表面的粗糙度与润湿性ꎬ从而改变成骨细胞的黏附能力[９]ꎮ浓硫酸已被证明可用于处理钛表面ꎬ增加其粗糙度[１０]ꎮ氢氟酸可被用于制备钛种植体表面纳米㊁微米级结构ꎬ以促进钛种植体表面的骨整合ꎬ增加种植体的扭矩[１１]ꎮ双酸蚀是指先后或混合使用两种酸ꎬ对种植体表面进行处理的方法ꎮ与使用单一酸进行酸蚀相比ꎬ双酸蚀可以获得种植体微粗糙表面ꎬ以实现快速的骨整合[１２]ꎮ亦有学者着眼于多重酸蚀处理ꎬ发现三酸蚀对钛种植体表面的骨整合有促进作用[１３]ꎮ单一的钛种植体表面粗糙化方法常常难以达到理想的表面性能改善ꎮ例如ꎬ仅对种植体表面进行喷砂处理ꎬ通常得到的种植体表面粗糙程度不均匀ꎬ且有喷砂所用的颗粒残留ꎬ同时喷砂会将污染物引入种植体表面ꎬ与光滑表面相比ꎬ喷砂粗糙化处理后ꎬ细菌黏附性更大ꎬ且积累量更多[１４]ꎮ未加以控制的喷砂ꎬ如速度过快㊁性状尺寸不当ꎬ会使种植体表面形成裂纹ꎬ材料易疲劳而降低种植体寿命[１５]ꎮ为形成均匀洁净的喷砂后种植体表面ꎬ近年来喷砂处理多与其他表面改性方法共同使用ꎬ如将喷砂后种植体进行酸蚀处理ꎬ即喷砂酸蚀处理(ｓａｎｄ￣ｂｌａｓｔꎬｌａｒｇｅ￣ｇｒｉｔꎬａｃｉｄ￣ｅｔｃｈｉｎｇꎬＳＬＡ)ꎮＳＬＡ是指用强酸酸蚀已经喷砂处理过的种植体表面ꎬ增加其粗糙度ꎬ促进骨整合的方法ꎮ与双酸蚀相比ꎬＳＬＡ可以促进种植体表面更好地骨整合ꎬ使种植体表面的生物活性更强ꎻ与单一喷砂处理相比ꎬ经ＳＬＡ的种植体表面粗糙程度更加均匀[１６]ꎮ１.２㊀等离子喷涂㊀等离子喷涂指将熔融状态下的生物活性材料ꎬ如ＨＡ㊁生物活性玻璃㊁惰性材料(钛㊁氧化钛㊁碳化物等)喷射到种植体表面形成涂层ꎬ该涂层可以增加种植体表面粗糙度ꎬ使其具有良好的机械性能和生物相容性ꎮ其中ꎬ惰性材料由于不具有生物活性ꎬ与骨组织结合强度低ꎬ但与合金基体结合强度高ꎻ生物活性材料与骨组织结合强度高ꎬ但与合金基体结合强度低ꎮＨＡ及以ＨＡ为基础的复合材料是目前常用的钛种植体等离子喷涂材料ꎮ研究表明ꎬ钛种植体表面经等离子喷涂处理后ꎬ骨整合速度加快ꎬ骨接触率㊁骨结合界面结合强度提高ꎬ并在植入种植体早期促进骨愈合[１７]ꎮ等离子喷涂技术已成功应用在商业种植体上ꎬ能够使ＨＡ黏附在钛种植体上ꎬ并取得了较好的临床效果ꎮＦｏｕｄａ等[１８]发现ꎬ与未进行等离子喷涂的种植体相比ꎬ具有ＨＡ涂层的钛种植体加快了骨愈合ꎮＸｉｅ等[１９]发现ꎬＨＡ涂层更好地促进了钛种植体表面细胞的增殖ꎮＸｕｅ等[２０]发现ꎬ碱改良的等离子喷涂可使种植体表面的微孔中形成更多新骨ꎬ并更快生长ꎬ促进骨愈合ꎬ提高种植成功率ꎮ等离子喷涂可以提供多孔的种植体表面ꎬ增加骨接触面积ꎬ是理想的种植体表面粗糙化方法ꎬ但由于该技术所需设备成本高ꎬ工艺要求复杂ꎬ容易形成不均匀的涂层ꎬ造成剥脱㊁降解等问题ꎬ应用于种植体改性仍有一定局限性ꎮ其中ꎬＨＡ涂层虽易与骨组织结合ꎬ但其与合金基体结合强度较低ꎮ研究表明ꎬ经模拟体液浸泡后ꎬＨＡ在钛合金上的粘接强度降低ꎬ且粘接强度随着在模拟体液中的浸泡时间增加而降低[２１－２２]ꎮ以涂层方式ꎬ如等离子喷涂涂层㊁生物改性涂层㊁抗菌涂层进行钛种植体表面改性后ꎬ在植入过程中涂层易因摩擦而磨损消耗ꎮ１.３㊀激光处理㊀激光可以用于种植体表面粗糙化ꎮ掺钕钇铝石榴石激光是钛种植体表面改性的常用激光ꎬ常用于种植体表面改性的其他激光包括掺铒钇铝石榴石激光㊁二氧化碳激光等[２３]ꎮ激光不直接接触种植体表面ꎬ热效应低ꎬ对种植体表面影响小㊁处理精度高㊁不引入外来杂质ꎬ并可以去除种植体表面细菌ꎮＷａｎｇ等[２４]使用掺钕钇铝石榴石激光处理钛－铝－钒(Ｔｉ￣６Ａｌ￣４Ｖ)试件ꎬ与传统的ＳＬＡ相比ꎬ前者处理后的种植体表面更有利于成骨细胞的增殖和分化ꎮ２㊀掺入生物活性物质特定的生物活性物质可以改善种植体表面性能ꎬ可将不同的生物活性物质掺入种植体表面的涂层㊁添加到种植体表面ꎬ或者形成抗菌涂层后ꎬ涂覆于种植体表面ꎬ增强种植体表面的成骨能力ꎮ２.１㊀掺入种植体表面的涂层㊀生物活性物质可以掺入种植体表面的ＨＡ涂层后ꎬ可改善其表面性能ꎮ掺入氧化锆可增强ＨＡ涂层在钛种植体上的粘接强度和溶解行为ꎬ提高种植体表面的粗糙度和生物活性[２５]ꎮ与单纯ＨＡ涂层相比ꎬＨＡ/氧化钇稳定的氧化锆/Ｔｉ￣６Ａｌ￣４Ｖ复合涂层在模拟体液浸泡后ꎬ拉伸强度降低的更少ꎬ亚稳态磷酸钙溶液可以为复合涂层提供优异的生物活性ꎬ诱导骨样磷灰石在种植体表面成核生长[２６]ꎮ研究表明ꎬ掺入锶的ＨＡ涂层可以促进成骨㊁抑制破骨ꎬ加速骨在种植体表面的形成[２７]ꎮ２.２㊀添加到种植体表面㊀生物活性物质可以添加到种植体表面形成生物改性涂层ꎮ这些物质包括细胞黏附因子㊁生长因子两类ꎮＲａｐｕａｎｏ等[２８]将纤连蛋白预吸附在Ｔｉ￣６Ａｌ￣４Ｖ种植体材料表面ꎬ发现在体外纤连蛋白可刺激成骨细胞分化ꎮＭａ等[２９]将骨形成蛋白的功能性多肽ꎬ结合在阳极氧化法形成的种植体表面聚多巴胺二氧化钛纳米管上ꎬ植入家兔胫骨ꎬ与二氧化钛纳米管及聚多巴胺二氧化钛纳米管相比ꎬ其具有更好的骨整合ꎮ２.３㊀形成抗菌涂层涂覆于种植体表面㊀抗菌涂层是将抗菌物质掺入种植体表面涂层ꎬ减少细菌污染对种植体表面骨整合的不利影响ꎬ达到控制种植体周围感染ꎬ提高种植成功率的表面改性方法[３０]ꎮ抗菌涂层应用的抗菌物质主要包括无机抗菌材料(如银离子)㊁有机抗菌材料(如抗菌肽㊁溶菌酶㊁生物活性因子)等ꎮＺｈａｎｇ等[３１]将万古霉素负载于阳极氧化法形成的钛种植体表面二氧化钛纳米管上ꎬ发现在体内外钛种植体表面细菌黏附均减少ꎬ但在体内试验中其未能阻止感染的发展ꎮＷａｌｔｅｒ等[３２]将多西环素结合在钛高合金种植体表面ꎬ在体内外试验中均观察到了骨整合的改善ꎮＦｕｎａｏ等[３３]通过低热浸渍法使用肌醇六磷酸盐螯合银离子ꎬ将其固定在钛种植体表面ＨＡ涂层中形成抗菌涂层ꎬ在体内外试验中均观察到急性感染期血清学指标降低ꎬ表明该抗菌涂层可以减少种植体相关感染ꎮ２.４㊀掺入生物活性物质的手段２.４.１㊀电化学沉积法:生物活性物质可以通过电化学沉积掺入种植体表面ꎮ电化学沉积是以种植体基体为阴极ꎬ以惰性电极为阳极ꎬ共同浸于电解液中ꎬ外加电压ꎬ使种植体表面发生还原反应ꎬ电解液中的生物活性组分沉积于种植体表面的表面改性方法ꎮＤａｕｇａａｒｄ等[３４]将电化学沉积处理形成的覆有ＨＡ涂层的钛种植体植入犬的肱骨近端ꎬ与等离子喷涂处理的钛种植体相比ꎬ其在增强机械性能和骨整合方面无明显差异ꎮ２.４.２㊀离子注入法:生物活性物质也可以通过离子注入的方法掺入种植体表面ꎮ离子注入是指在电场中将离子加速ꎬ冲击种植体表面ꎬ并停留于种植体表面下的表面改性方法ꎮＢｒａｃｅｒａｓ等[３５]将钴离子注入钛种植体表面ꎬ与未进行离子注入的钛种植体相比ꎬ前者具有更好的骨整合ꎮＤｅＭａｅｚｔｕ等[３６]将注入钴离子注入的钛微型植入体植入人的上颌结节或下颌三角ꎬ３个月后将植入体与周围骨组织一并取出进行组织学检验ꎬ发现前者具有更良好的骨整合ꎬ且在３年的随访中未观察到不良反应ꎮ等离子体浸没离子注入是指在电场中将等离子中的粒子加速ꎬ掺入种植体表面的表面改性方法ꎮＣｈｅｎｇ等[３７]将钙等离子体注入喷砂酸蚀后的钛种植体表面ꎬ发现该处理能有效促进新骨形成ꎮＭｅｉｒｅｌｌｅｓ等[３８]将氧等离子注入钛种植体表面ꎬ获得了金红石型二氧化钛纳米结构ꎬ植入家兔模型后获得了更高的去除扭矩ꎬ提示该处理促进了种植体表面的骨形成ꎮ３㊀制备纳米管阵列在钛种植体表面制备二氧化钛纳米管ꎬ能够获得纳米级的微粗糙表面ꎬ可以负载生物活性物质ꎬ并且在一定处理下可获得抗菌能力ꎬ是目前钛种植体表面处理方法的研究热点ꎮ通过阳极氧化法ꎬ钛种植体表面可以形成均匀㊁整齐排列的氧化钛纳米管阵列ꎮ阳极氧化是以种植体基体为阳极㊁惰性电极为阴极ꎬ两极浸于电解液中ꎬ外加电压ꎬ使种植体表面发生氧化反应ꎬ形成一层致密㊁厚度均匀的氧化膜ꎮ通过阳极氧化ꎬ种植体表面会有一定的粗糙度㊁孔隙率ꎬ并可以附着特定的氧化物ꎮ阳极氧化法形成的氧化钛纳米管阵列ꎬ可以提高种植体金属的抗腐蚀性能㊁稳定性㊁骨整合率等ꎬ且调节电压㊁电流㊁溶液离子及浓度ꎬ还可获得不同粗糙度的种植体表面ꎮ钛种植体表面覆以二氧化钛纳米管后ꎬ表面细菌黏附能力降低ꎬ成骨细胞黏附能力增加[３９]ꎮ体内试验表明ꎬ与酸蚀㊁喷砂等传统方法相比ꎬ纳米管结构可以更好地改善种植体表面的骨整合[４０]ꎮＹｏｒｉｙａ等[４１]将钛箔电极置于含有０.５％~２％氢氟酸的二甘醇电解液中ꎬ利用阳极氧化法制备出３５０ｎｍ的氧化钛纳米管阵列ꎮ此外ꎬ延长氧化时间㊁增大电压可以增大纳米管的长度和直径ꎬ增加钛种植体表面润湿性ꎬ有利于钛种植体表面成骨细胞的早期黏附㊁生长㊁增殖ꎬ从而更快地进行骨整合[４１－４２]ꎮ阳极氧化处理钛种植体表面所获得的二氧化钛纳米管ꎬ可以作为药物及生物制剂的储存仓ꎬ在一定条件下释放储存物质ꎬ加速钛种植体表面的新骨形成ꎬ控制种植体周围感染ꎮ抗骨质疏松药物如雷洛昔芬㊁辛伐他丁㊁唑来膦酸等ꎬ可以被储存入二氧化钛纳米管阵列中ꎬ在骨质疏松动物模型中受控释放ꎬ可以促进种植体表面的骨整合[４３－４５]ꎮ抗微生物药物如银纳米离子㊁羟丙基三甲基氯化铵壳聚糖等ꎬ也可以被储存入纳米管中ꎬ在一定条件下可以在种植体表面释放ꎬ并表现出较强的抗微生物性[４６－４７]ꎮＬｉｕ等[４８]将光诱导的二氧化钛纳米颗粒掺入到二氧化钛纳米管中ꎬ与纯钛和二氧化钛纳米管相比ꎬ其在体外具有更低的细菌数量和更高的细胞成骨水平ꎮ在阳极氧化的基础上ꎬ利用弧光放电激活㊁增强阳极氧化反应ꎬ被称为微弧氧化法或微等离子体氧化法ꎮ使用该法时ꎬ在电解液中增加胶体颗粒ꎬ可以达到改良种植体表面氧化膜微观结构的目的ꎮＲａｎ等[４９]将微弧氧化法处理的钛种植体植入猎犬下颌骨ꎬ与未经微弧氧化法处理的钛种植体相比ꎬ微弧氧化法处理的钛种植体具有更高的剪切强度ꎬ并能更快㊁更广泛地进行骨整合ꎮ使用阳极氧化法在钛种植体表面制备二氧化钛纳米管时ꎬ辅以紫外光的照射ꎬ可以改善二氧化钛纳米管的形貌ꎬ使其表面的亲水性有所提高ꎬ有利于骨整合[５０]ꎮ紫外光同时可以减少钛种植体表面的污染物碳氢化合物ꎬ有效提高钛种植体表面的抗菌能力[５１]ꎮ但紫外光对钛种植体表面的亲水性改善持续时间短ꎬ如何实现持续性地提升亲水性ꎬ仍需进一步研究ꎮ４㊀小㊀结多种表面改性方法可用于钛种植体ꎬ以提高钛种植体表面性能ꎬ促进骨整合ꎮ目前ꎬ不同表面处理方法各有其优缺点ꎮ传统的喷砂表面改性方法难以获得均匀的钛种植体粗糙表面ꎬ并容易引入杂质ꎬ通常需与酸蚀共同处理钛种植体表面ꎮ等离子喷涂可以使钛种植体获得多孔的表面结构ꎬ但获得良好的结构需要较高的技术工艺ꎬ涂层质量与选用的喷涂材料密切相关ꎮ以涂层方式对钛种植体表面改性后ꎬ在植入过程中涂层易因摩擦而磨损消耗ꎮ离子注入会导致钛种植体表面硬化ꎬ应用于口腔临床种植仍需进一步研究ꎮ激光处理种植体表面成本较高ꎬ目前难以应用于临床ꎮ通过阳极氧化法获得二氧化钛纳米管结构处理种植体表面后ꎬ有良好的亲水性ꎬ可用于储存药物ꎬ清除部分表面污染物ꎬ是近年来的研究热点ꎮ为实现优势互补ꎬ综合应用多种表面处理方法ꎬ而不是选用单一方法处理钛种植体表面ꎬ是钛种植体表面改性研究的发展趋势ꎮ随着新型材料以及新工艺的发明发展ꎬ更多的钛种植体表面改性方法将应用于基础及临床研究ꎬ更好地促进种植体表面骨整合ꎬ提高临床种植成功率ꎮ参㊀考㊀文㊀献[１]㊀ＡｎｎｕｎｚｉａｔａＭꎬＧｕｉｄａＬ.Ｔｈｅｅｆｆｅｃｔｏｆｔｉｔａｎｉｕｍｓｕｒｆａｃｅｍｏｄ￣ｉｆｉｃａｔｉｏｎｓｏｎｄｅｎｔａｌｉｍｐｌａｎｔｏｓｓｅｏｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎ[Ｊ].ＦｒｏｎｔＯｒａｌＢｉｏｌꎬ２０１５ꎬ１７:６２－７７.[２]㊀ＪｅｍａｔＡꎬＧｈａｚａｌｉＭＪꎬＲａｚａｌｉＭꎬｅｔａｌ.Ｓｕｒｆａｃｅｍｏｄｉｆｉｃａ￣ｔｉｏｎｓａｎｄｔｈｅｉｒｅｆｆｅｃｔｓｏｎｔｉｔａｎｉｕｍｄｅｎｔａｌｉｍｐｌａｎｔｓ[Ｊ].Ｂｉ￣ｏｍｅｄＲｅｓＩｎｔꎬ２０１５:７９１７２５.[３]㊀ＦｅｌｌｅｒＬꎬＣｈａｎｄｒａｎＲꎬＫｈａｍｍｉｓｓａＲＡꎬｅｔａｌ.Ｏｓｓｅｏｉｎｔｅｇｒａ￣ｔｉｏｎ:ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｅｖｅｎｔｓｉｎｒｅｌａｔｉｏｎｔｏｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓｏｆｔｈｅｉｍｐｌａｎｔｓｕｒｆａｃｅ[Ｊ].ＳＡＤＪꎬ２０１４ꎬ６９(３):１１２ꎬ１１４－１１７. [４]㊀ＷｅｎｎｅｒｂｅｒｇＡꎬＡｌｂｒｅｋｔｓｓｏｎＴ.Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｔｉｔａｎｉｕｍｓｕｒｆａｃｅｔｏｐｏｇｒａｐｈｙｏｎｂｏｎｅｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎ:ａｓｙｓｔｅｍａｔｉｃｒｅｖｉｅｗ[Ｊ].ＣｌｉｎＯｒａｌＩｍｐｌａｎｔｓＲｅｓꎬ２００９ꎬ２０(Ｓｕｐｐｌ４):１７２－１８４. [５]㊀ＶｅｌａｓｃｏＥꎬＭｏｎｓａｌｖｅ￣ＧｕｉｌＬꎬＪｉｍｅｎｅｚＡꎬｅｔａｌ.Ｉｍｐｏｒｔａｎｃｅｏｆｔｈｅｓｕｒｆａｃｅｒｏｕｇｈｎｅｓｓａｎｄｒｅｓｉｄｕａｌｓｔｒｅｓｓｏｆｄｅｎｔａｌｉｍｐｌａｎｔｓｏｎｆａｔｉｇｕｅａｎｄｏｓｓｅｏｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎｂｅｈａｖｉｏｒ.Ｉｎｖｉｖｏｓｔｕｄｙｉｎｒａｂｂｉｔｓ[Ｊ].ＪＯｒａｌＩｍｐｌａｎｔｏｌꎬ２０１６ꎬ４２(６):４６９－４７６. [６]㊀ＢａｂｕｓｋａＶꎬＭｏｚｔａｒｚａｄｅｈＯꎬＫｕｂｉｋｏｖａＴꎬｅｔａｌ.Ｅｖａｌｕａｔｉｎｇｔｈｅｏｓｓｅｏｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎｏｆｎａｎｏｓｔｒｕｃｔｕｒｅｄｔｉｔａｎｉｕｍｉｍｐｌａｎｔｓｉｎａｎｉｍａｌｍｏｄｅｌｓ:Ｃｕｒｒｅｎｔｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌｍｅｔｈｏｄｓａｎｄｐｅｒｓｐｅｃ￣ｔｉｖｅｓ(Ｒｅｖｉｅｗ)[Ｊ].Ｂｉｏｉｎｔｅｒｐｈａｓｅｓꎬ２０１６ꎬ１１(３):０３０８０１. [７]㊀Ｈｅｒｒｅｒｏ￣ＣｌｉｍｅｎｔＭꎬＬáｚａｒｏＰꎬＶｉｃｅｎｔｅＲｉｏｓＪꎬｅｔａｌ.Ｉｎｆｌｕ￣ｅｎｃｅｏｆａｃｉｄ￣ｅｔｃｈｉｎｇａｆｔｅｒｇｒｉｔ￣ｂｌａｓｔｅｄｏｎｏｓｓｅｏｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎｏｆｔｉｔａｎｉｕｍｄｅｎｔａｌｉｍｐｌａｎｔｓ:ｉｎｖｉｔｒｏａｎｄｉｎｖｉｖｏｓｔｕｄｉｅｓ[Ｊ].ＪＭａｔｅｒＳｃｉＭａｔｅｒＭｅｄꎬ２０１３ꎬ２４(８):２０４７－２０５５. [８]㊀ＢａｎＳꎬＩｗａｙａＹꎬＫｏｎｏＨꎬｅｔａｌ.Ｓｕｒｆａｃｅｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆｔｉｔａ￣ｎｉｕｍｂｙｅｔｃｈｉｎｇｉｎｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｅｄｓｕｌｆｕｒｉｃａｃｉｄ[Ｊ].ＤｅｎｔＭａ￣ｔｅｒꎬ２００６ꎬ２２(１２):１１１５－１１２０.[９]㊀ＺａｈｒａｎＲꎬＲｏｓａｌｅｓＬｅａｌＪＩꎬＲｏｄｒíｇｕｅｚＶａｌｖｅｒｄｅＭＡꎬｅｔａｌ.Ｅｆｆｅｃｔｏｆｈｙｄｒｏｆｌｕｏｒｉｃａｃｉｄｅｔｃｈｉｎｇｔｉｍｅｏｎｔｉｔａｎｉｕｍｔｏｐｏｇｒａ￣ｐｈｙꎬｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬｗｅｔｔａｂｉｌｉｔｙꎬａｎｄｃｅｌｌａｄｈｅｓｉｏｎ[Ｊ].ＰＬｏＳＯｎｅꎬ２０１６ꎬ１１(１１):ｅ０１６５２９６.[１０]ＩｗａｙａＹꎬＭａｃｈｉｇａｓｈｉｒａＭꎬＫａｎｂａｒａＫꎬｅｔａｌ.Ｓｕｒｆａｃｅｐｒｏｐｅｒ￣ｔｉｅｓａｎｄｂｉｏｃｏｍｐａｔｉｂｉｌｉｔｙｏｆａｃｉｄ￣ｅｔｃｈｅｄｔｉｔａｎｉｕｍ[Ｊ].ＤｅｎｔＭａｔｅｒＪꎬ２００８ꎬ２７(３):４１５－４２１.[１１]ＬｉａｎｇＪꎬＸｕＳꎬＳｈｅｎＭꎬｅｔａｌ.Ｏｓｔｅｏｇｅｎｉｃａｃｔｉｖｉｔｙｏｆｔｉｔａｎｉｕｍｓｕｒｆａｃｅｓｗｉｔｈｈｉｅｒａｒｃｈｉｃａｌｍｉｃｒｏ￣/ｎａｎｏ￣ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓｏｂｔａｉｎｅｄｂｙｈｙｄｒｏｆｌｕｏｒｉｃａｃｉｄｔｒｅａｔｍｅｎｔ[Ｊ].ＩｎｔＪＮａｎｏｍｅｄｉｃｉｎｅꎬ２０１７ꎬ１２:１３１７－１３２８.[１２]ＧｉｎｅｒＬꎬＭｅｒｃａｄéＭꎬＴｏｒｒｅｎｔＳꎬｅｔａｌ.Ｄｏｕｂｌｅａｃｉｄｅｔｃｈｉｎｇｔｒｅａｔｍｅｎｔｏｆｄｅｎｔａｌｉｍｐｌａｎｔｓｆｏｒｅｎｈａｎｃｅｄｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ[Ｊ].ＪＡｐｐｌＢｉｏｍａｔｅｒＦｕｎｃｔＭａｔｅｒꎬ２０１８ꎬ１６(２):８３－８９. [１３]ＰｏｎｔｅｓＡＥꎬｄｅＴｏｌｅｄｏＣＴꎬＧａｒｃｉａＶＧꎬｅｔａｌ.Ｔｏｒｑｕｅａｎａｌｙｓｉｓｏｆａｔｒｉｐｌｅａｃｉｄ￣ｅｔｃｈｅｄｔｉｔａｎｉｕｍｉｍｐｌａｎｔｓｕｒｆａｃｅ[Ｊ].Ｓｃｉｅｎｔｉ￣ｆｉｃＷｏｒｌｄＪｏｕｒｎａｌꎬ２０１５:８１９８７９.[１４]ＫａｔｏｎａＢꎬＤａｒóｃｚｉＬꎬＪｅｎｅｉＡꎬｅｔａｌ.Ｃｏｍｐｅｒａｔｉｖｅｓｔｕｄｙｏｆｉｍｐｌａｎｔｓｕｒｆａｃｅｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ[Ｊ].ＦｏｇｏｒｖＳｚꎬ２０１３ꎬ１０６(４):１３５－１４３.[１５]Ｓｈｅｍｔｏｖ￣ＹｏｎａＫꎬＲｉｔｔｅｌＤꎬＤｏｒｏｇｏｙＡ.Ｍｅｃｈａｎｉｃａｌａｓｓｅｓｓｍｅｎｔｏｆｇｒｉｔｂｌａｓｔｉｎｇｓｕｒｆａｃｅｔｒｅａｔｍｅｎｔｓｏｆｄｅｎｔａｌｉｍｐｌａｎｔｓ[Ｊ].ＪＭｅｃｈＢｅｈａｖＢｉｏｍｅｄＭａｔｅｒꎬ２０１４ꎬ３９:３７５－３９０. [１６]ＪｕｏｄｚｂａｌｙｓＧꎬＳａｐｒａｇｏｎｉｅｎｅＭꎬＷｅｎｎｅｒｂｅｒｇＡꎬｅｔａｌ.Ｔｉｔａｎｉｕｍｄｅｎｔａｌｉｍｐｌａｎｔｓｕｒｆａｃｅｍｉｃｒｏｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙｏｐｔｉｍｉｚａｔｉｏｎ[Ｊ].ＪＯｒａｌＩｍｐｌａｎｔｏｌꎬ２００７ꎬ３３(４):１７７－１８５.[１７]ＩｖａｎｏｆｆＣＪꎬＨａｌｌｇｒｅｎＣꎬＷｉｄｍａｒｋＧꎬｅｔａｌ.Ｈｉｓｔｏｌｏｇｉｃｅｖａｌｕａ￣ｔｉｏｎｏｆｔｈｅｂｏｎｅｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎｏｆＴｉＯ２ｂｌａｓｔｅｄａｎｄｔｕｒｎｅｄｔｉｔａ￣ｎｉｕｍｍｉｃｒｏｉｍｐｌａｎｔｓｉｎｈｕｍａｎｓ[Ｊ].ＣｌｉｎＯｒａｌＩｍｐｌａｎｔｓＲｅｓꎬ２００１ꎬ１２(２):１２８－１３４.[１８]ＦｏｕｄａＭＡꎬＮｅｍａｔＡꎬＧａｗｉｓｈＡꎬｅｔａｌ.Ｄｏｅｓｔｈｅｃｏａｔｉｎｇｏｆｔｉｔａｎｉｕｍｉｍｐｌａｎｔｓｂｙｈｙｄｒｏｘｙａｐａｔｉｔｅａｆｆｅｃｔｔｈｅｅｌａｂｏｒａｔｉｏｎｏｆｆｒｅｅｒａｄｉｃａｌｓ.Ａｎｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌｓｔｕｄｙ[Ｊ].ＡｕｓｔｒＪＢａｓｉｃＡｐｐｌＳｃｉꎬ２００９(３):１１２２－１１２９.[１９]ＸｉｅＹꎬＬｉｕＸꎬＺｈｅｎｇＸꎬｅｔａｌ.Ｉｍｐｒｏｖｅｄｓｔａｂｉｌｉｔｙｏｆｐｌａｓｍａ￣ｓｐｒａｙｅｄｄｉｃａｌｃｉｕｍｓｉｌｉｃａｔｅ/ｚｉｒｃｏｎｉａｃｏｍｐｏｓｉｔｅｃｏａｔｉｎｇ[Ｊ].ＴｈｉｎＳｏｌｉｄＦｉｌｍｓꎬ２００６ꎬ５１５(３):１２１４－１２１８. [２０]ＸｕｅＷꎬＬｉｕＸꎬＺｈｅｎｇＸꎬｅｔａｌ.Ｉｎｖｉｖｏｅｖａｌｕａｔｉｏｎｏｆｐｌａｓｍａ￣ｓｐｒａｙｅｄｔｉｔａｎｉｕｍｃｏａｔｉｎｇａｆｔｅｒａｌｋａｌｉｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ[Ｊ].Ｂｉｏ￣ｍａｔｅｒｉａｌｓꎬ２００５ꎬ２６(１６):３０２９－３０３７.[２１]ＬｉｕＸＹꎬＰｏｏｎＲＷꎬＫｗｏｋＳＣꎬｅｔａｌ.Ｐｌａｓｍａｓｕｒｆａｃｅｍｏｄｉｆｉ￣ｃａｔｉｏｎｏｆｔｉｔａｎｉｕｍｆｏｒｈａｒｄｔｉｓｓｕｅｒｅｐｌａｃｅｍｅｎｔｓ[Ｊ].ＳｕｒｆＣｏａｔＴｅｃｈｎｏｌꎬ２００４ꎬ１８６(１/２):２２７－２３３.[２２]ＹａｎｇＧＬꎬＨｅＦＭꎬＹａｎｇＸＦꎬｅｔａｌ.Ｂｏｎｅｒｅｓｐｏｎｓｅｓｔｏｔｉｔａｎｉｕｍｉｍｐｌａｎｔｓｓｕｒｆａｃｅ￣ｒｏｕｇｈｅｎｅｄｂｙｓａｎｄｂｌａｓｔｅｄａｎｄｄｏｕｂｌｅｅｔｃｈｅｄｔｒｅａｔｍｅｎｔｓｉｎａｒａｂｂｉｔｍｏｄｅｌ[Ｊ].ＯｒａｌＳｕｒｇＯｒａｌＭｅｄＯｒａｌＰａｔｈｏｌＯｒａｌＲａｄｉｏｌＥｎｄｏｄꎬ２００８ꎬ１０６(４):５１６－５２４. [２３]ＨｉｎｄｙＡꎬＦａｒａｈｍａｎｄＦꎬＴａｂａｔａｂａｅｉＦＳ.Ｉｎｖｉｔｒｏｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｏｕｔｃｏｍｅｏｆｌａｓｅｒａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｆｏｒｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｒｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇｏｆｔｉｔａｎｉｕｍｄｅｎｔａｌｉｍｐｌａｎｔｓ[Ｊ].ＬａｓｅｒｓＭｅｄＳｃｉꎬ２０１７ꎬ３２(５):１１９７－１２０６.[２４]ＷａｎｇＭꎬＮｉｎｇＹＹꎬＺｏｕＨＸꎬｅｔａｌ.ＥｆｆｅｃｔｏｆＮｄ:ＹＡＧｌａｓｅｒ￣ｎｉｔｒｉｄｉｎｇ￣ｔｒｅａｔｅｄｔｉｔａｎｉｕｍｎｉｔｒｉｄｅｓｕｒｆａｃｅｏｖｅｒＴｉ６Ａｌ４Ｖｓｕｂ￣ｓｔｒａｔｅｏｎｔｈｅａｃｔｉｖｉｔｙｏｆＭＣ３Ｔ３￣Ｅ１ｃｅｌｌｓ[Ｊ].ＢｉｏｍｅｄＭａｔｅｒＥｎｇꎬ２０１４ꎬ２４(１):６４３－６４９.[２５]ＫａｒａｍｉａｎＥꎬＫｈａｎｄａｎＡꎬＭｏｔａｍｅｄｉＭＲꎬｅｔａｌ.Ｓｕｒｆａｃｅｃｈａｒ￣ａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓａｎｄｂｉｏａｃｔｉｖｉｔｙｏｆａｎｏｖｅｌｎａｔｕｒａｌＨＡ/ｚｉｒｃｏｎｎａｎｏｃｏｍｐｏｓｉｔｅｃｏａｔｅｄｏｎｄｅｎｔａｌｉｍｐｌａｎｔｓ[Ｊ].ＢｉｏｍｅｄＲｅｓＩｎｔꎬ２０１４ꎬ２０１４:４１０６２７.[２６]ＧｕＹＷꎬＫｈｏｒＫＡꎬＰａｎＤꎬｅｔａｌ.Ａｃｔｉｖｉｔｙｏｆｐｌａｓｍａｓｐｒａｙｅｄｙｔｔｒｉａｓｔａｂｉｌｉｚｅｄｚｉｒｃｏｎｉａｒｅｉｎｆｏｒｃｅｄｈｙｄｒｏｘｙａｐａｔｉｔｅ/Ｔｉ￣６Ａｌ￣４Ｖｃｏｍｐｏｓｉｔｅｃｏａｔｉｎｇｓｉｎｓｉｍｕｌａｔｅｄｂｏｄｙｆｌｕｉｄ[Ｊ].Ｂｉｏｍａ￣ｔｅｒｉａｌｓꎬ２００４ꎬ２５(１６):３１７７－３１８５.[２７]ＶａｈａｂｚａｄｅｈＳꎬＲｏｙＭꎬＢａｎｄｙｏｐａｄｈｙａｙＡꎬｅｔａｌ.Ｐｈａｓｅｓｔａ￣ｂｉｌｉｔｙａｎｄｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｐｒｏｐｅｒｔｙｅｖａｌｕａｔｉｏｎｏｆｐｌａｓｍａｓｐｒａｙｅｄｈｙｄｒｏｘｙａｐａｔｉｔｅｃｏａｔｉｎｇｓｆｏｒｏｒｔｈｏｐｅｄｉｃａｎｄｄｅｎｔａｌａｐｐｌｉｃａ￣ｔｉｏｎｓ[Ｊ].ＡｃｔａＢｉｏｍａｔｅｒꎬ２０１５ꎬ１７:４７－５５.[２８]ＲａｐｕａｎｏＢＥꎬＨａｃｋｓｈａｗＫＭꎬＳｃｈｎｉｅｐｐＨＣ.Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｃｏａｔ￣ｉｎｇａｔｉｔａｎｉｕｍａｌｌｏｙｗｉｔｈｆｉｂｒｏｎｅｃｔｉｎｏｎｔｈｅｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆｏｓ￣ｔｅｏｂｌａｓｔｇｅｎｅｍａｒｋｅｒｓｉｎｔｈｅＭＣ３Ｔ３ｏｓｔｅｏｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒｃｅｌｌｌｉｎｅ[Ｊ].ＩｎｔＪＯｒａｌＭａｘｉｌｌｏｆａｃＩｍｐｌａｎｔｓꎬ２０１２ꎬ２７(５):１０８１－１０９０.[２９]ＭａＹꎬＺｈａｎｇＺꎬＬｉｕＹꎬｅｔａｌ.ＮａｎｏｔｕｂｅｓｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｉｚｅｄｗｉｔｈＢＭＰ２ｋｎｕｃｋｌｅｐｅｐｔｉｄｅｉｍｐｒｏｖｅｔｈｅｏｓｓｅｏｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎｏｆｔｉｔａ￣ｎｉｕｍｉｍｐｌａｎｔｓｉｎｒａｂｂｉｔｓ[Ｊ].ＪＢｉｏｍｅｄＮａｎｏｔｅｃｈｎｏｌꎬ２０１５ꎬ１１(２):２３６－２４４.[３０]ＹｕａｎＫꎬＣｈａｎＹＪꎬＫｕｎｇＫＣꎬｅｔａｌ.Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｏｆｏｓｓｅｏｉｎｔｅ￣ｇｒａｔｉｏｎｏｎｖａｒｉｏｕｓｉｍｐｌａｎｔｓｕｒｆａｃｅｓａｆｔｅｒｂａｃｔｅｒｉａｌｃｏｎｔａｍｉ￣ｎａｔｉｏｎａｎｄｃｌｅａｎｉｎｇ:ａｒａｂｂｉｔｓｔｕｄｙ[Ｊ].ＩｎｔＪＯｒａｌＭａｘｉｌｌｏ￣ｆａｃＩｍｐｌａｎｔｓꎬ２０１４ꎬ２９(１):３２－４０.[３１]ＺｈａｎｇＨꎬＳｕｎＹꎬＴｉａｎＡꎬｅｔａｌ.Ｉｍｐｒｏｖｅｄａｎｔｉｂａｃｔｅｒｉａｌａｃｔｉｖ￣ｉｔｙａｎｄｂｉｏｃｏｍｐａｔｉｂｉｌｉｔｙｏｎｖａｎｃｏｍｙｃｉｎ￣ｌｏａｄｅｄＴｉＯ２ｎａｎｏ￣ｔｕｂｅｓ:ｉｎｖｉｖｏａｎｄｉｎｖｉｔｒｏｓｔｕｄｉｅｓ[Ｊ].ＩｎｔＪＮａｎｏｍｅｄｉｃｉｎｅꎬ２０１３ꎬ８:４３７９－４３８９.[３２]ＷａｌｔｅｒＭＳꎬＦｒａｎｋＭＪꎬＳａｔｕéＭꎬｅｔａｌ.Ｂｉｏａｃｔｉｖｅｉｍｐｌａｎｔｓｕｒ￣ｆａｃｅｗｉｔｈｅｌｅｃｔｒｏｃｈｅｍｉｃａｌｌｙｂｏｕｎｄｄｏｘｙｃｙｃｌｉｎｅｐｒｏｍｏｔｅｓｂｏｎｅｆｏｒｍａｔｉｏｎｍａｒｋｅｒｓｉｎｖｉｔｒｏａｎｄｉｎｖｉｖｏ[Ｊ].ＤｅｎｔＭａ￣ｔｅｒꎬ２０１４ꎬ３０(２):２００－２１４.[３３]ＦｕｎａｏＨꎬＮａｇａｉＳꎬＳａｓａｋｉＡꎬｅｔａｌ.Ａｎｏｖｅｌｈｙｄｒｏｘｙａｐａｔｉｔｅｆｉｌｍｃｏａｔｅｄｗｉｔｈｉｏｎｉｃｓｉｌｖｅｒｖｉａｉｎｏｓｉｔｏｌｈｅｘａｐｈｏｓｐｈａｔｅｃｈｅ￣ｌａｔｉｏｎｐｒｅｖｅｎｔｓｉｍｐｌａｎｔ￣ａｓｓｏｃｉａｔｅｄｉｎｆｅｃｔｉｏｎ[Ｊ].ＳｃｉＲｅｐꎬ２０１６ꎬ６:２３２３８.[３４]ＤａｕｇａａｒｄＨꎬＥｌｍｅｎｇａａｒｄＢꎬＢｅｃｈｔｏｌｄＪＥꎬｅｔａｌ.Ｔｈｅｅｆｆｅｃｔｏｎｂｏｎｅｇｒｏｗｔｈｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔｏｆｉｍｐｌａｎｔｃｏａｔｉｎｇｓｗｉｔｈｈｙｄｒｏｘｙａｐａｔｉｔｅａｎｄｃｏｌｌａｇｅｎｄｅｐｏｓｉｔｅｄｅｌｅｃｔｒｏｃｈｅｍｉｃａｌｌｙａｎｄｂｙｐｌａｓｍａｓｐｒａｙ[Ｊ].ＪＢｉｏｍｅｄＭａｔｅｒＲｅｓＡꎬ２０１０ꎬ９２(３):９１３－９２１.[３５]ＢｒａｃｅｒａｓＩꎬＡｌａｖａＪＩꎬＯñａｔｅＪＩꎬｅｔａｌ.Ｉｍｐｒｏｖｅｄｏｓｓｅｏｉｎｔｅｇｒａ￣ｔｉｏｎｉｎｉｏｎｉｍｐｌａｎｔａｔｉｏｎ￣ｔｒｅａｔｅｄｄｅｎｔａｌｉｍｐｌａｎｔｓ[Ｊ].ＳｕｒｆＣｏａｔＴｅｃｈｎｏｌꎬ２００２ꎬ１５８－１５９(３):２８－３２.[３６]ＤｅＭａｅｚｔｕＭＡꎬＢｒａｃｅｒａｓＩꎬÁｌａｖａＪＩꎬｅｔａｌ.Ｈｕｍａｎｓｔｕｄｙｏｆｉｏｎｉｍｐｌａｎｔａｔｉｏｎａｓａｓｕｒｆａｃｅｔｒｅａｔｍｅｎｔｆｏｒｄｅｎｔａｌｉｍｐｌａｎｔｓ[Ｊ].ＩｎｔＪＯｒａｌＭａｘｉｌｌｏｆａｃＳｕｒｇꎬ２０１３ꎬ４２(７):８９１－８９６.[３７]ＣｈｅｎｇＭꎬＱｉａｏＹꎬＷａｎｇＱꎬｅｔａｌ.Ｃａｌｃｉｕｍｐｌａｓｍａｉｍｐｌａｎｔｅｄｔｉｔａｎｉｕｍｓｕｒｆａｃｅｗｉｔｈｈｉｅｒａｒｃｈｉｃａｌｍｉｃｒｏｓｔｒｕｃｔｕｒｅｆｏｒｉｍｐｒｏ￣ｖｉｎｇｔｈｅｂｏｎｅｆｏｒｍａｔｉｏｎ[Ｊ].ＡＣＳＡｐｐｌＭａｔｅｒＩｎｔｅｒｆａｃｅｓꎬ２０１５ꎬ７(２３):１３０５３－１３０６１.[３８]ＭｅｉｒｅｌｌｅｓＬꎬＵｚｕｍａｋｉＥＴꎬＬｉｍａＪＨꎬｅｔａｌ.Ａｎｏｖｅｌｔｅｃｈｎｉｑｕｅｆｏｒｔａｉｌｏｒｅｄｓｕｒｆａｃｅｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆｄｅｎｔａｌｉｍｐｌａｎｔｓａｓｔｅｐｗｉｓｅａｐｐｒｏａｃｈｂａｓｅｄｏｎｐｌａｓｍａｉｍｍｅｒｓｉｏｎｉｏｎｉｍｐｌａｎｔａｔｉｏｎ[Ｊ].ＣｌｉｎＯｒａｌＩｍｐｌａｎｔｓＲｅｓꎬ２０１３ꎬ２４(４):４６１－４６７. [３９]ＰｅｎｇＺꎬＮｉＪꎬＺｈｅｎｇＫꎬｅｔａｌ.ＤｕａｌｅｆｆｅｃｔｓａｎｄｍｅｃｈａｎｉｓｍｏｆＴｉＯ２ｎａｎｏｔｕｂｅａｒｒａｙｓｉｎｒｅｄｕｃｉｎｇｂａｃｔｅｒｉａｌｃｏｌｏｎｉｚａｔｉｏｎａｎｄｅｎｈａｎｃｉｎｇＣ３Ｈ１０Ｔ１/２ｃｅｌｌａｄｈｅｓｉｏｎ[Ｊ].ＩｎｔＪＮａｎｏｍｅｄｉ￣ｃｉｎｅꎬ２０１３ꎬ８:３０９３－３１０５.[４０]ＷａｎｇＮꎬＬｉＨꎬＷａｎｇＪꎬｅｔａｌ.Ｓｔｕｄｙｏｎｔｈｅａｎｔｉｃｏｒｒｏｓｉｏｎꎬｂｉｏｃｏｍｐａｔｉｂｉｌｉｔｙꎬａｎｄｏｓｔｅｏｉｎｄｕｃｔｉｖｉｔｙｏｆｔａｎｔａｌｕｍｄｅｃｏｒａｔｅｄｗｉｔｈｔａｎｔａｌｕｍｏｘｉｄｅｎａｎｏｔｕｂｅａｒｒａｙｆｉｌｍｓ[Ｊ].ＡＣＳＡｐｐｌＭａｔｅｒＩｎｔｅｒｆａｃｅｓꎬ２０１２ꎬ４(９):４５１６－４５２３.[４１]ＹｏｒｉｙａＳꎬＧｒｉｍｅｓＣＡ.Ｓｅｌｆ￣ＡｓｓｅｍｂｌｅｄＴｉＯ２ｎａｎｏｔｕｂｅａｒｒａｙｓｂｙａｎｏｄｉｚａｔｉｏｎｏｆｔｉｔａｎｉｕｍｉｎｄｉｅｔｈｙｌｅｎｅｇｌｙｃｏｌ:ａｐｐｒｏａｃｈｔｏｅｘ￣ｔｅｎｄｅｄｐｏｒｅｗｉｄｅｎｉｎｇ[Ｊ].Ｌａｎｇｍｕｉｒꎬ２０１０ꎬ２６(１):４１７－４２０. [４２]ＡｉｅｍｐａｎａｋｉｔＫꎬＪｅｓｓａｄａｌｕｋＳꎬＴｏｎｇｍａｈａＳꎬｅｔａｌ.ＶｅｒｔｉｃａｌａｌｉｇｎｍｅｎｔＴｉＯ２ｎａｎｏｔｕｂｅｂａｓｅｄｏｎＴｉｆｉｌｍｐｒｅｐａｒｅｄｖｉａａｎ￣ｏｄｉｚａｔｉｏｎｔｅｃｈｎｉｑｕｅ[Ｊ].ＫｅｙＥｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇＭａｔｅｒｉａｌｓꎬ２０１６ꎬ６７５－６７６:１６７－１７０.[４３]ＭｕＣꎬＨｕＹꎬＨｕａｎｇＬꎬｅｔａｌ.Ｓｕｓｔａｉｎｅｄｒａｌｏｘｉｆｅｎｅｒｅｌｅａｓｅｆｒｏｍｈｙａｌｕｒｏｎａｎ￣ａｌｅｎｄｒｏｎａｔｅ￣ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｉｚｅｄｔｉｔａｎｉｕｍｎａｎｏ￣ｔｕｂｅａｒｒａｙｓｃａｐａｂｌｅｏｆｅｎｈａｎｃｉｎｇｏｓｓｅｏｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎｉｎｏｓｔｅｏ￣ｐｏｒｏｔｉｃｒａｂｂｉｔｓ[Ｊ].ＭａｔｅｒＳｃｉＥｎｇＣＭａｔｅｒＢｉｏｌＡｐｐｌꎬ２０１８ꎬ８２:３４５－３５３.[４４]ＬｉｕＸꎬＺｈａｎｇＹꎬＬｉＳꎬｅｔａｌ.Ｓｔｕｄｙｏｆａｎｅｗｂｏｎｅ￣ｔａｒｇｅｔｉｎｇｔｉｔａｎｉｕｍｉｍｐｌａｎｔ￣ｂｏｎｅｉｎｔｅｒｆａｃｅ[Ｊ].ＩｎｔＪＮａｎｏｍｅｄｉｃｉｎｅꎬ２０１６ꎬ１１:６３０７－６３２４.[４５]ＬｉｕＪꎬＰａｔｈａｋＪＬꎬＨｕＸꎬｅｔａｌ.Ｓｕｓｔａｉｎｅｄｒｅｌｅａｓｅｏｆｚｏｌｅｄｒｏｎ￣ｉｃａｃｉｄｆｒｏｍｍｅｓｏｐｏｒｏｕｓＴｉＯ２￣Ｌａｙｅｒｅｄｉｍｐｌａｎｔｅｎｈａｎｃｅｓｉｍｐｌａｎｔｏｓｓｅｏｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎｉｎｏｓｔｅｏｐｏｒｏｔｉｃｃｏｎｄｉｔｉｏｎ[Ｊ].ＪＢｉ￣ｏｍｅｄＮａｎｏｔｅｃｈｎｏｌꎬ２０１８ꎬ１４(１１):１９６５－１９７８. [４６]ＤｏｎｇＹꎬＹｅＨꎬＬｉｕＹꎬｅｔａｌ.ｐＨｄｅｐｅｎｄｅｎｔＳｉｌｖｅｒｎａｎｏｐａｒｔｉ￣ｃｌｅｓｒｅｌｅａｓｉｎｇｔｉｔａｎｉｕｍｉｍｐｌａｎｔ:ａｎｏｖｅｌｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃａｐ￣ｐｒｏａｃｈｔｏｃｏｎｔｒｏｌｐｅｒｉ￣ｉｍｐｌａｎｔｉｎｆｅｃｔｉｏｎ[Ｊ].ＣｏｌｌｏｉｄｓＳｕｒｆＢＢｉｏｉｎｔｅｒｆａｃｅｓꎬ２０１７ꎬ１５８:１２７－１３６.[４７]ＹａｎｇＹꎬＡｏＨꎬＷａｎｇＹꎬｅｔａｌ.Ｃｙｔｏｃｏｍｐａｔｉｂｉｌｉｔｙｗｉｔｈｏｓｔｅｏ￣ｇｅｎｉｃｃｅｌｌｓａｎｄｅｎｈａｎｃｅｄｉｎｖｉｖｏａｎｔｉ￣ｉｎｆｅｃｔｉｏｎｐｏｔｅｎｔｉａｌｏｆｑｕａｔｅｒｎｉｚｅｄｃｈｉｔｏｓａｎ￣ｌｏａｄｅｄｔｉｔａｎｉａｎａｎｏｔｕｂｅｓ[Ｊ].ＢｏｎｅＲｅｓꎬ２０１６ꎬ４(３):１６０２７.[４８]ＬｉｕＷꎬＳｕＰꎬＣｈｅｎＳꎬｅｔａｌ.ＡｎｔｉｂａｃｔｅｒｉａｌａｎｄｏｓｔｅｏｇｅｎｉｃｓｔｅｍｃｅｌｌｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓｏｆｐｈｏｔｏｉｎｄｕｃｅｄＴｉＯ２ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅ￣ｄｅｃｏｒａｔｅｄＴｉＯ２ｎａｎｏｔｕｂｅｓ[Ｊ].Ｎａｎｏｍｅｄｉｃｉｎｅꎬ２０１５ꎬ１０(５):７１３－７２３.[４９]ＲａｎＷꎬＴｉａｎＺＨꎬＧｕｏＢꎬｅｔａｌ.Ｓｕｐｅｒｉｏｒｂｉｏｃｏｍｐａｔｉｂｉｌｉｔｙａｎｄｏｓｔｅｏｇｅｎｉｃｅｆｆｉｃａｃｙｏｆｍｉｃｒｏ￣ａｒｃｏｘｉｄａｔｉｏｎ￣ｔｒｅａｔｅｄｔｉｔａｎｉ￣ｕｍｉｍｐｌａｎｔｓｉｎｔｈｅｃａｎｉｎｅｍａｎｄｉｂｌｅ[Ｊ].ＢｉｏｍｅｄＭａｔｅｒꎬ２００９ꎬ４(５):０５５００３.[５０]ＡｌｉＧꎬＫｉｍＨＪꎬＫｉｍＪＪꎬｅｔａｌ.Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄｆａｂｒｉｃａｔｉｏｎｏｆｐｏｒ￣ｏｕｓｄｏｕｂｌｅ￣ｗａｌｌｅｄＴｉＯ２ｎａｎｏｔｕｂｅｓｖｉａｕｌｔｒａｖｉｏｌｅｔ￣ａｓｓｉｓｔｅｄａｎｏｄｉｚａｔｉｏｎ[Ｊ].Ｎａｎｏｓｃａｌｅꎬ２０１４ꎬ６(７):３６３２－３６３７. [５１]杨惠铃ꎬ梅盛林ꎬ黄㊀萍ꎬ等.紫外线照射对钛种植体不同管径ＴｉＯ２纳米管涂层抗菌性能的影响[Ｊ].中华口腔医学杂志ꎬ２０１２ꎬ４７(１２):７４８－７５２.(收稿日期:２０１９－０５－１２㊀修回日期:２０１９－０８－２５)。
钛基种植体表面纳米管改性的研究进展
【 关键词】 种植体
二氧化钛纳米管
表面改性
骨种植 体表 面处 理是 影 Ⅱ骨结 合 的一 个重 要 因 向
・
１ ６・ ４
口腔 材 料 器 械 ２ １ ０ ２年 第 ２ １卷 第 ３期
测 量发 现 ， 径 ３ ｎ 的 ＴＯ 纳米 管 阵 列 的接 触 角 管 ０ｍ ｉ：
为 １ 。 ｌＯ ｍ 的 纳米 管 阵列 的接 触 角 为 ４ 。刘 达 １ ，Ｏ ｎ 。
能够 使 吸附 的活性 羟基 自由基 的反 应 活性 增 强 ， 从
顾迎新 综述 赖红 昌 张志勇 审校
（ 海 交通 大学 医学 院 附属 第九人 民 医院 口腔 颅颌 面种植 科 ， 海 上 上
【 摘
２０ １） ０ ０ １
要】 良好的骨结合是种植成功的保证 ， 而种植体表面处理是影响骨结合 的一个重要因素。随着
纳米技术的发展 ， 表面纳米化改性 已成为钛种植体表面研究的重要 内容， 采用阳极氧化法制备的二氧化钛纳
理 等 的研 究也证 实 ， 基 ＴＯ 纳 米管 经 过 热处 理 钛 ｉ
后 接触 角 明显变小 ， 面能增 大 ， 表 亲水性 增强 ； 同时 ，
单一管径 的 ＴＯ 表面 ， ｉ： 其纳米管管径越大 ， 面的 表
接触 角 越 小 ， 面 能 越 大 。Ｄ ｓ等 。的实 验 证 实 ， 表 ａ 。 管径 ５ ｎ ０ ｍ管 长 ６０ ｍ 的纳米管 阵列 的表 面 能高 达 ０ｎ
解 液 、Ｈ 值 、 化 时 间 等 诸 多 电 解 条 件 的 影 响 。 ｐ 氧 Ｂ ｕｒ ａｅ 等 通 过控 制 电压 （ １—２Ｖ） 在 １Ｍ Ｈ Ｐ ５ ， Ｏ ＋ ． ｔ Ｈ ０３ｗ％ Ｆ电解 液 中 ， 以实现 制备 １ ２ ｎ 可 ５～１０ ｍ
热处理提高钛种植体表面成骨细胞活性的实验研究
热处理提高钛种植体表面成骨细胞活性的实验研究孙鑫;徐金标;魏军水【摘要】目的探讨热处理对提高钛金属种植体表面成骨细胞活性的影响.方法实验组将钛金属在700℃下退火1小时,从而在其表面形成一层TiO2生物活性层,对照组钛金属未经任何处理,采用扫描电镜和X射线衍射观察表面形貌及表面成分分析,并在钛金属种植体表面培养MG63成骨样细胞,观察热处理对钛金属植入体表面形貌、成分及MG63细胞增殖生长的影响.结果经700℃退火处理后,钛金属种植体的表面形貌未改变;实验组表面形成的金红石晶相二氧化钛薄膜的厚度较对照组薄,种植体表面MG63成骨细胞的增殖数量多于对照组,差异均有统计学意义(P＜0.05).结论利用简单的热处理可以有效提高钛种植体的生物活性,提高其与基体骨组织的整合效率.【期刊名称】《健康研究》【年(卷),期】2017(037)004【总页数】4页(P393-395,399)【关键词】热处理;钛种植体;成骨细胞;骨整合效率【作者】孙鑫;徐金标;魏军水【作者单位】台州市第一人民医院口腔科,浙江台州318020;台州市第一人民医院口腔科,浙江台州318020;台州市第一人民医院口腔科,浙江台州318020【正文语种】中文【中图分类】R783.1自从现代口腔种植学之父-瑞典生理学家Branemark教授在1952年发现钛金属与兔子胚骨能够牢固结合后，因钛金属具有良好的力学性能、生物相容性及耐腐蚀性能，已被广泛应用于骨科及口腔外科[1]。
随着临床应用的日益广泛，如何通过对钛金属表面进行合适的改性，有利于细胞组织，尤其是成骨样细胞在其表面的附着生长，促进骨整合效率，是当前提高钛种植体临床应用效率的研究热点[2]。
目前，使用较多的钛种植体表面改性方法是等离子喷涂和微弧氧化等方法[3]。
等离子喷涂技术采用设备成本较高，且制备的涂层均匀性较差，易导致涂层脱落；微弧氧化法虽结合强度较高，紧密性较好，但工艺复杂，且机理尚不清楚[4]。
种植体表面形貌作用对骨再生影响的探究途径
种植体表面形貌作用对骨再生影响的探究
途径
随着人们对健康的重视，种植牙已经成为一种常见的牙齿修复方式。
然而，种植体的表面形貌对于骨再生的影响却备受关注。
本文将探究种植体表面形貌对骨再生的影响，并介绍一些相关的研究方法。
种植体表面形貌是指种植体表面的形状、纹理和粗糙度等特征。
这些特征对于骨细胞的附着、增殖和分化等过程都有着重要的影响。
因此，种植体表面形貌的设计和优化对于种植体的生物学性能至关重要。
研究表明，种植体表面形貌对于骨再生有着显著的影响。
一些研究表明，表面粗糙度越大的种植体能够促进骨细胞的附着和增殖，从而提高骨再生的效果。
另外一些研究则发现，表面形貌的纹理和形状也会影响骨细胞的行为，从而影响骨再生的效果。
为了探究种植体表面形貌对骨再生的影响，研究人员采用了多种方法。
其中，扫描电子显微镜（SEM）是一种常用的方法。
通过SEM 观察种植体表面的形貌，可以获得表面粗糙度、纹理和形状等信息。
此外，细胞培养实验也是一种常用的方法。
通过将骨细胞培养在不同形貌的种植体表面上，可以研究表面形貌对骨细胞的影响。
最后，动物实验也是一种重要的方法。
通过将不同形貌的种植体植入动物体内，可以研究表面形貌对骨再生的影响。
种植体表面形貌对于骨再生有着重要的影响。
研究人员可以通过SEM观察表面形貌，通过细胞培养实验和动物实验研究表面形貌对骨细胞和骨再生的影响。
这些研究结果可以为种植体的设计和优化提供重要的参考。
医用钛及钛合金种植体材料的研究进展-推荐下载
医用钛及钛合金种植体材料的研究进展 【摘要】从钛及其合金的成分、组织与性能、钛表面的腐蚀与离子释放、钛及其合金的组织反应和钛的表面活性化处理等四个方面综述了近几年有关钛及其合金种植体材料的研究进展,提出具有合适粗糙度、表面离子释放少的活性表面设计和制作将是今后的重要研究方向之一。
现代科学技术的进步已使得人类能够进行改造和创建新的生命形态，器官的人工化成为当今医学科学的尖端技术之一。
其潜在的核心是医用生物材料的开发，医用生物材料的发展将使人们把处理人体失去功能组织的方法由组织去除、组织替代最终实现组织重建[1]。
目前，生物材料的世界市场份额已超过120亿美元，而且由于社会的进步、技术的发展和人口老龄化的加剧，它正以7％的速度增长[2]。
由于其广阔的应用前景，日本、意大利、美国等发达国家投巨资支持生物材料的研究和开发，我国亦加大了对生物材料领域的资助力度，以对抗激烈的国际竞争。
人工牙、人工关节和人工骨等硬组织替代材料在医用生物材料的应用中占有较大比例,并以较快速度增长[3]。
在人工种植体的研究和应用中，钛、钛合金及其磷灰石涂层复合材料一直倍受关注。
磷灰石生物陶瓷由于具有良好的生物活性和生物相容性,作为涂层材料，它能促进种植体与骨形成骨性结合，降低种植体金属离子向人体的释放和保护金属表面不受环境因素的影响。
对于多孔金属种植体，能够促进骨长入[4]。
因此，钛与钛合金表面热喷涂磷灰石涂层种植体材料因其优异的早期临床效应而在研究和应用中日益得到重视[5～10]。
但由于金属―陶瓷界面的存在以及喷涂所引起的结晶度的降低，羟基磷灰石的分解与表面粗糙度的提高会导致涂层的剥离[11～13]和植入后涂层表面的溶解[14]，从而影响种植体的长期效果。
因此不少学者近年来积极开展了新型钛合金及钛表面活性的研究。
与传统的不锈钢和钴基合金相比，钛及其合金由于具有低密度、低模量、高强度、优异的生物相容性和耐腐蚀性等特点而在生物材料领域获得越来越广泛的应用，而且钛在地壳中储量丰富（0.6％,在所有元素中排第9位，在常用金属元素中仅次于铁、镁、铝排第4位），具有进一步开发的潜在优势，是理想的、应用前景广阔的生物医学工程材料。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
切相关 ， 皮质骨区域较骨髓腔区有更快的成骨速度 。结论 ： 优 良的种植体表面有明显 的引导成骨作用 ， 可促 进植 入 早期 的接 触成 骨 ； 皮 质骨 区域 较骨 髓腔 区有 更快 的成 骨速度 。 【 关键词 】 钛种植体 ； 骨引导性 ； 接触成骨
降 钙 素 基 因 相 关 肽 对 钛 片 表 面 成 骨 细 胞 影 响初 探
中国 口腔种植学杂志 ２ ０ １ ３年第 １ ８卷第 ２期
・
７５ ・
钛 种 植体 表 面 早 期成 骨效 应 观 察
赖春 花 周 磊 （ 广 东省 口腔 医院）
【 摘 要】 目的： 观察钛种植体表面早期成骨 的特点及效果 。方法 ： ４只 ｂ ｅ ａ ｇ ｌ ｅ 犬， 随机选择左或右侧拔 除 下颌 第 ２ 、 ３ 、 ４前磨 牙 和第 １磨牙 ， 拔牙 ３个 月 骨 创愈 合 后 ， 于 下 颌 骨拔 牙 区植 入 ５颗 ３ ． ８ ｍｍ×９ ｍ ｍ 的威 高
Ｃ Ｇ Ｒ Ｐ对 于 Ｏ Ｂ ｓ 增殖 的影 响 ，ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ通过荧 光定 量 Ｒ Ｔ—Ｐ Ｃ Ｒ检测 钛 片表面 Ｏ Ｂ ｓ的 Ａ Ｌ Ｐ 、 Ｒ ｕ ｎ ｘ ２ 、 Ｏ Ｃ Ｎ成 骨相 关 蛋 白 ｍＲ Ｎ Ａ的表 达 。结果 ： 接种 细胞 １ 、 ４ 、 ８ ｈ后 ， Ｃ Ｇ Ｒ Ｐ促 进钛 片表 面 Ｏ Ｂ ｓ 粘附 ， 细胞 在 、 ｓ Ｌ Ａ两 种表 面 的粘 附
马 丽 向 琳 伍 颖 颖 宫 苹
（ 四川大学华西口腔 医学院种植 中心）
【 摘 要】 目的 ： 探讨降钙素基因相关肽（ ｃ ａ ｌ ｃ ｉ ｔ ｏ ｎ ｉ ｎ ｇ ｅ ｎ ｅ — ｒ ｅ ｌ ａ ｔ ｅ ｄ ｐ ｅ ｐ ｔ ｉ ｄ ｅ ， Ｃ Ｇ Ｒ Ｐ ） 对钛片表面成骨细胞（ ０ ｓ － ｔ ｅ ｏ ｂ ｌ ａ ｓ ｔ ｓ ， Ｏ Ｂ ｓ ） 多种生 物学 行为 的影 响及 相 关 机制 。 方 法 ： 将 Ｃ Ｇ Ｒ Ｐ复 合 于钛 片表 面 （ Ｐ Ｔ 、 Ｓ Ｌ Ａ表 面 ） ， 采用 扫描电镜及免疫荧光染 色 ， 观察原代 培养小 鼠 Ｏ Ｂ ｓ 在 不 同钛 片表 面 的粘 附及形态特征 ， 用Ｍ Ｔ ｒ法 比较
作 用 一直 不甚 明确 。Ｃ Ｇ Ｒ Ｐ是一 种 重 要 的感 觉 神 经 肽 ， 其对钛片表面 Ｏ Ｂ ｓ的影 响 能够 反 映 这一 调 控 过 程 。
结论 ： 降钙素基 因相关肽促进钛片表面 Ｏ Ｂ ｓ 的粘附、 增殖及成骨向分化 ， 证 明了感觉神经在钛种植体骨结合
中发 挥重要 作 用 。
种植体 （ Ｓ Ｌ Ａ表面处理 ） ， 共植入 ２ ０ 枚种植体 。于术后 ２ 周， ４周分别处死 ２只 ｂ ｅ ａ ｇ ｌ ｅ 犬取样 ， 在处死前做 四 环素及钙黄绿素双次标记 ， 标本常规处理后进行大体观察 ， 显微 Ｃ Ｔ检测和硬组织切片观察 。结果： 经喷砂 酸蚀处理的钛种植体表面在种植 窝内显示 出明显的骨引导作用 ， 有利于骨结合早期的成骨 ； 成骨速度与颌骨
【 关键词】 降钙素基 因相关肽 ； 钛种植体 ； 成骨细胞
无 明显差 异 ； Ｍ Ｔ Ｙ结 果 表 明 ， 接种 细胞 ３ 、 ５ ｄ后 ， Ｃ Ｇ Ｒ Ｐ利 于 Ｏ Ｂ ｓ 在钛片表面的增殖 ； Ｒ Ｔ—Ｐ Ｃ Ｒ结 果 证 实 ，
Ｃ Ｇ Ｒ Ｐ显著提高钛片表面成骨细胞 Ａ Ｌ Ｐ 、 Ｒ ｕ ｎ ｘ ２ 、 Ｏ Ｃ Ｎ ｍ Ｒ Ｎ Ａ的表达量 。讨论： 感觉神经在种植体骨结合中的
解 剖结 构密 切相 关 ， 靠 近皮 质骨 端 的种植 体表 面成 骨速 度优 于靠 近骨 髓腔端 ， 种植 体表 面成 骨速度 与其 与皮
质骨之间的距离成反 比。讨论 ： 以往观察钛种植体表面早期成骨的特点主要是研究种植体表面骨结合率 ， 缺
乏关 于皮质 骨与 骨髓 腔 的成骨差 异 的相关 研究 。本 实验 结果 显示 了种 植体 表面成 骨速 度与颌 骨解 剖结构 密