凝胶层析法分离蛋白质 HUI

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凝胶层析法分离纯化蛋白质

凝胶层析法分离纯化蛋白质

了解凝胶层析分基本原理,学会用凝胶层析分离纯化蛋白质。
三、试剂和材料
1)载体:葡聚糖凝胶G-50 2)样品液:
含蓝色葡聚糖2000[相对分子质量在200万以上,蓝色], 红色水溶性百里香酚蓝[分子质量488.60,红色]
3)洗脱液: 50mmol/L pH3.0 磷酸缓冲液。
(每组200ml。溶液配方:磷酸氢二钠:1.754g;磷酸二氢钠: 0.796g;NaCl:1.752g,用水定容至200ml。配制完成后用盐酸调pH 值为3.0)
凝胶过滤层析原理示意图
一、目的 二、原理
1)凝胶层析是基于分子大小不同而进行分离的一种分离方 法。 2)将一定量的含有不同大小分子的混合原料加在柱上并用 流动相洗脱,则无法进入多孔凝胶颗粒内部的大分子会直接随 流动相由凝胶颗粒之间的空隙被洗脱下来; 3)小分子因可深入凝胶颗粒内部而受到很大的阻滞,最晚 洗脱下来; 4)中等大小的分子虽可进入凝胶颗粒内部但并不深入,受 到凝胶颗粒的阻滞作用不强,因而在两者之间被洗脱下来。
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实验步骤
五、收集: 1、用试管进行样品的收集,每管1ml。
2、注意观察层析柱内分离现象,并观察收集管内颜色深浅, 以—、+、++等记号记录两种物质洗脱液的颜色。或者用400nm, 550nm测其OD值
六、凝胶柱的处理: 1、凝胶柱用过后,反复用蒸馏水(2~3倍床体积)通过柱即可。
2、如果凝胶有颜色或比较脏,需用0.5 mol/L 的NaOH-0.5 mol/L NaБайду номын сангаасl洗涤,再用蒸馏水洗。
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实验步骤
三、平衡: 1、将洗脱液与恒流泵相连,用2倍床体积的洗脱液平衡,平衡 完成后,检测流出液的pH值是否为3.0。 四、加样和洗脱: 1、将柱中多余的液体放出,使液面刚好盖过凝胶,关闭出口。 2、将400ul的样品沿层析柱管壁小心加入,加完后,在打开底 端出口。 3、用少量洗脱液清洗柱内壁2次,加洗脱液至液层4cm左右, 按上恒流泵,开始洗脱。

凝胶过滤法分离蛋白质实验报告

凝胶过滤法分离蛋白质实验报告

凝胶过滤法分离蛋白质实验报告
凝胶过滤法是一种分离蛋白质的方法。

本实验使用交联葡聚凝胶,其具有一定孔径的网络结构,能够根据分子大小的不同进行分离。

大分子物质只能沿着胶粒之间的间隙向下流动,所经路短,最先流出;而小分子物质要经过层层扩散向下流动,所经路程长,最后流出,通透性居中的分子则后于大分子而先于小分子流出。

从而实现分离的目的。

实验步骤包括凝胶溶胀、装柱、样品处理、上样和过滤、部分收集和凝胶回收。

在收集洗脱液的过程中,开始时为无色透明,但时间过去,试管中收集的红褐色开始变深,到最后,试管的颜色为深褐色,接着溶液的颜色开始变浅,红褐色几乎要消失。

接着又开始出现浅黄色,再到黄色,再黄色开始慢慢变浅,最后又变成无色透明。

这是因为分子的扩散有快有慢,少量的高铁血红蛋白与缓冲液一起滴出,使得溶液慢慢加深。

3.经过过滤后,溶液变成深褐色,这是高铁血红蛋白的本色。

颜色越深,表示过滤后蛋白质越纯。

4.随着洗脱的进行,红褐色开始变浅。

这是因为大部分高铁蛋白已经被洗脱,只剩下一小部分洗脱较慢的高铁蛋白。

5.开始呈现浅黄色,并逐渐变成无色,这是由于高铁氰化钾的扩散速度不同。

一部分高铁氰化钾扩散得很快,接着大部分K3Fe(CN)6被洗脱出来,最后全血几乎被洗脱完毕。

试管中接收的是缓冲液。

6.红褐色先释放出来,然后才是黄色。

这是因为血红蛋白与高铁氰化钾反应生成高铁血红蛋白,因为高铁血红蛋白的分子较大,洗脱速度较快。

而小分子的高铁氰化钾(黄色)洗脱较慢,因此红褐色先被洗脱出来,黄色则稍后。

10、凝胶层析(分子筛层析)分离蛋白质

10、凝胶层析(分子筛层析)分离蛋白质

实验十一凝胶层析法测定蛋白质分子量实验目的:了解凝胶层析的原理及其操作,分离血红蛋白和胰蛋白酶(或蓝葡聚糖2000)。

实验原理:凝胶层析也成凝胶过滤法,排阻层析、分子筛层析或渗透层析等是20世纪60年代发展起来的一种简便有效的生物化学分离分析方法。

这种方法的基本原理是用一般的柱层析方法使相对分子质量不同的溶质通过具有分子筛性质的固定相(凝胶),从而使物质分离。

用作凝胶的材料有多种,如交联葡聚糖、琼脂糖、聚丙烯酰胺凝胶、聚苯乙烯和多孔玻璃珠等。

以交联葡聚糖分离物质和测定相对分子量为例说明凝胶层析法的基本原理和应用。

交联葡聚糖(Sephadex)是由细菌葡聚糖(以右旋葡萄糖为残基的多糖)用交联剂环氧氯丙烷交联形成的有三维空间的网状结构物。

控制葡聚糖和交联剂的配比及反应条件就可决定其交联度的大小(交联度大,“网眼”就小),从而得到各种规格的交联葡聚糖,即不同型号的凝胶。

“G”表示交联度,G越小,交联度越大,吸水量也就越小,见表3-3(P.41.)。

G值越小,颗粒比较硬,G值越大,颗粒相比较软些(可以以手感触)。

G值也对应凝胶的工作范围。

凝胶层析广泛地应用于分离、提纯、浓缩生物大分子及脱盐、去热源等,而测定蛋白质的分子量也是它的重要应用之一。

凝胶是一种具有立体网状结构且呈多孔的不溶性珠状颗粒物质。

用它来分离物质,主要是根据多孔凝胶对不同半径的蛋白质分子(近于球形)具有不同的排阻效应实现的。

亦即它是根据分子大小这一物理性质进行分离纯化的。

对于某种型号的凝胶,一些大分子不能进入凝胶颗粒内部而完全被排阻在外,洗脱时,此类物质沿着颗粒间隙下移,最先流出层析柱(板书:图3-14,3-15A)。

而一些小分子不被排阻,可自由扩散,渗透进入凝胶内部的筛孔,尔后又被流出的洗脱液带走。

分子越小,进入凝胶内部越深,在凝胶颗粒的网孔内滞留的时间越长,结果是小分子的蛋白质洗脱速度较慢,即洗脱体积较大,最后流出柱外。

不同一些中等大小的分子介于大分子与小分子之间,只能进入一部分凝胶较大的孔隙,亦即部分排阻,因此这些分子从柱中流出的顺序也介于大、小分子之间。

凝胶过滤法分离蛋白质

凝胶过滤法分离蛋白质

• 3.样品处理
¾ 血红蛋白溶液的制备 取草酸盐抗凝全血3ml离心,吸去上 层血浆,加入5倍体积的冷生理盐水,混匀后3 000r/min 离心5min,弃去上清液,重复3次。最后一次吸去上清液 后,在红细胞层上面加等体积蒸馏水,振摇。再加1/2体 积CCl4,用力振摇3min,3 000r/min离心5min。吸取上层 澄清的血红蛋白液备用。此溶液中Hb浓度约为10%(置4℃ 暂存,一周用完)。
¾ 样品 血红蛋白液3滴加K3Fe(CN)6 8滴和蒸馏水2滴混合, 制成MetHb混合样品。
• 4.上样、洗脱
¾ 打开平衡好的层析柱出口,使柱内溶液流出至 刚露出柱床面时即关闭出口。
¾ 吸混合物样品0.5ml左右,在距离床面1mm处沿 管内壁轻轻转动加进样品,切勿搅动床面。然 后打开出口,使样品进入床内,直至床面重新 露出。
¾ 加入1~2倍样品量体积的洗脱液(这样可以使样 品定容至最小,而样品又完全进入床内),当少 量洗脱液将流入床面时,加入多量的洗脱液, 但注意切勿搅动床面凝胶,连接蠕动泵进行洗 脱。
• 5.分部收集 用自动部分收集器,以5滴/min, 5min/管的速度进行收集。并且观察柱上的色带,待 黄色的K3Fe(CN)6色带完全洗脱下来后,再继续收 集两管透明的洗脱液作为空白,关闭出口。
• 6.测定: 两种方法
– 接紫外检测仪及记录仪,绘制280nm洗脱图谱。 – 将每管收集液加入缓冲液至4ml,混匀,在425nm处测其
吸光度,以吸光度为纵坐标,管数为横坐标,绘出洗脱图 谱。
实 验 装 置 连接示意图
【注意事项】
1.装柱后要检查柱床是否均匀,若有气 泡或分层的界面时,需要重新装柱。 2.流速不可太快,否则分子小的物质来 不及扩散,随分子大的物质一起被洗脱下 来,达不到分离目的。

凝胶层析法分离蛋白质 HUI

凝胶层析法分离蛋白质 HUI
凝胶层析法分离血红蛋白 和溴酚蓝
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【 目的 】
掌握凝胶层析的基本原理 学习利用凝胶层析法分离生物大分子和小分子 的实验技能
2
【 原理 】 凝胶层析也称凝胶过滤、分子筛层析、 凝胶层析也称凝胶过滤、分子筛层析、 也称凝胶过滤 排阻层析, 排阻层析,是利用具有网状结构的凝胶的分 子筛作用,根据被分离物质的分子大小的不 子筛作用,根据被分离物质的分子大小的不 来进行分离的技术。 同来进行分离的技术。
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【 操作方法 】
一、凝胶的处理
Sephadex G-25干粉置于蒸馏水中室 干粉置于蒸馏水中室 干粉 温下溶胀3h,沸水浴加热1h, 温下溶胀 ,沸水浴加热 ,再用蒸馏水 洗涤几次, 洗涤几次,将不易沉降的细小颗粒随水倾 以免在装柱后产生阻塞现象, 倒(以免在装柱后产生阻塞现象,降低流 )。洗涤后将凝胶浸泡在洗脱液中待用 洗涤后将凝胶浸泡在洗脱液中待用。 速)。洗涤后将凝胶浸泡在洗脱液中待用。

单个凝胶珠本身象 “筛子”。不同类型凝 筛子” 胶的筛孔的大小不同。 胶的筛孔的大小不同。
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带网孔的 葡聚糖珠 小分子进入 葡聚糖珠内
大分子不 能进入珠 内,经珠 之间缝隙 流出
凝胶层析过程示意图
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凝胶 珠
凝胶基质
小分子 大分子
凝胶层析过程示意图
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总结: 总结:
相对分子质量较大的物质由于直径大于凝胶网孔被完全排 相对分子质量较大的物质由于直径大于凝胶网孔被完全排 的物质由于直径大于凝胶网孔 阻在孔外,只能在凝胶颗粒外的空间向下流动,因此流程 在孔外,只能在凝胶颗粒外的空间向下流动, 较短,移动速度快;所以首先流出。 较短,移动速度快;所以首先流出。 首先流出 相对分子质量较小的物质由于直径小于凝胶网孔, 相对分子质量较小的物质由于直径小于凝胶网孔,可完全 的物质由于直径小于凝胶网孔 渗透进入凝胶颗粒的网孔,在向下移动过程中,因为流程 渗透进入凝胶颗粒的网孔,在向下移动过程中, 进入凝胶颗粒的网孔 较长,移动速率慢;所以最后流出。 较长,移动速率慢;所以最后流出。 最后流出 中等大小的分子,它们在凝胶颗粒内外部分渗透, 中等大小的分子,它们在凝胶颗粒内外部分渗透,渗透的 部分渗透 程度取决于它们分子的大小, 程度取决于它们分子的大小,所以它们流出的时间介于二 者之间,这样分子大的组分先流出,分子小的组分后流出。 者之间,这样分子大的组分先流出,分子小的组分后流出。 分子大的组分先流出 这样样品经过凝胶层析后, 这样样品经过凝胶层析后,各个组分便按分子从大到小的 顺序依次流出,从而达到了分离的目的。 顺序依次流出,从而达到了分离的目的。

凝胶层析法分离纯化蛋白质

凝胶层析法分离纯化蛋白质
凝胶层析法分离纯化蛋白质
【实验器材】
层析柱 恒流泵 紫外检测仪 部分收集器 试管等普通玻璃器皿
凝胶层析法分离纯化蛋白质
凝胶层析法分离纯化蛋白质
凝胶层析法分离纯化蛋白质
凝胶层析法分离纯化蛋白质
凝胶层析法分离纯化蛋白质
【实验试剂】
待分离样品 葡聚糖凝胶 Sephadex G-100 洗脱液:0.1mol/L pH6.8磷酸缓冲液
凝胶层析法分离纯化蛋白质
【原理】 凝胶层析也称分子筛层析、排阻层析。
是利用具有网状结构的凝胶的分子筛作用, 根据被分离物质的分子大小不同来进行分 离的技术。
凝胶层析法分离纯化蛋白质
凝胶过滤层析
凝胶层析是按照蛋 白质分子量大小进行分 离的技术,又称之凝胶 过滤、分子筛层析或排 阻层析。
单个凝胶珠本身象 “筛子”。不同类型凝 胶的筛孔的大小不同。
相对分子质量较小的物质由于直径小于凝胶网孔,可完全 渗透进入凝胶颗粒的网孔,在向下移动过程中,因此流程 较长,移动速率慢;所以最后流出。
中等大小的分子,它们在凝胶颗粒内外部分渗透,渗透的 程度取决于它们分子的大小,所以它们流出的时间介于二 者之间,这样分子大的组分先流出,分子小的组分后流出。 这样样品经过凝胶层析后,各个组分便按分子从大到小的 顺序依次流出,从而达到了分离的目的。
凝胶层析法分离纯化蛋白质
带网入珠 内,经珠 之间缝隙 流出
凝胶过凝滤胶层层析法分析离纯过化蛋程白质 示意图
凝胶 凝胶基质 珠
小分子 大分子
凝胶过滤凝胶层层析法析分离过纯化程蛋白质示意图
总结:
相对分子质量较大的物质由于直径大于凝胶网孔被完全排 阻在孔外,只能在凝胶颗粒外的空间向下流动,因此流程 较短,移动速度快;所以首先流出。

凝胶过滤层析进行蛋白纯化的流程

凝胶过滤层析进行蛋白纯化的流程

凝胶过滤层析进行蛋白纯化的流程引言:蛋白纯化是研究蛋白质结构和功能的关键步骤之一。

凝胶过滤层析是一种常用的蛋白纯化方法,通过分子大小的差异来分离和纯化目标蛋白。

本文将介绍凝胶过滤层析的流程及其应用。

一、凝胶过滤层析的原理凝胶过滤层析是基于分子大小的差异来分离蛋白的一种方法。

该方法利用特定的凝胶材料,通过将待纯化的蛋白溶液加入凝胶柱中,较大分子的蛋白无法渗透进入凝胶内部,而较小分子的蛋白则可以通过凝胶孔道进入凝胶内部。

通过这种方式,可以实现对蛋白的分离和纯化。

二、凝胶过滤层析的步骤1. 准备凝胶柱:选择适当的凝胶材料和柱子,根据待纯化蛋白的分子大小选择合适的孔径。

2. 杂质去除:使用缓冲液预先洗脱凝胶,去除其中的杂质和阻塞物。

3. 样品加载:将待纯化的蛋白溶液加载到凝胶柱中,注意保持柱子的垂直姿势,防止样品泄漏。

4. 洗脱:使用缓冲液进行洗脱,以去除非目标蛋白和杂质。

5. 收集纯化蛋白:将目标蛋白收集,可以使用分级洗脱或直接洗脱的方法。

三、凝胶过滤层析的优势和应用凝胶过滤层析具有以下优势:1. 无需特殊设备:相较于其他蛋白纯化方法,凝胶过滤层析不需要昂贵的设备,操作简单方便。

2. 高分辨率:凝胶过滤层析可以实现对不同分子大小的蛋白进行高效分离,得到高纯度的目标蛋白。

3. 适用范围广:凝胶过滤层析适用于各种类型的蛋白,包括酶、抗体、细胞因子等。

凝胶过滤层析在生物学研究中有广泛的应用,主要包括以下方面:1. 蛋白纯化:凝胶过滤层析是常用的蛋白纯化方法之一,可以用于从复杂的混合物中纯化目标蛋白。

2. 质量控制:凝胶过滤层析可以用于检测蛋白样品的分子大小和纯度,对蛋白质的质量进行评估。

3. 蛋白互作研究:凝胶过滤层析可以用于研究蛋白与其他分子(如核酸或小分子化合物)的相互作用。

4. 蛋白结构分析:凝胶过滤层析可以为蛋白的结构分析提供高纯度的样品。

结论:凝胶过滤层析是一种简单、快速且高效的蛋白纯化方法,通过分子大小的差异实现对目标蛋白的分离和纯化。

实验十一 凝胶层析法分离蛋白质

实验十一 凝胶层析法分离蛋白质

实验十一凝胶层析法分离蛋白质一、实验目的:了解凝胶层析法的原理和常用的凝胶层析填料。

掌握蛋白质的分离和纯化方法。

二、实验原理:1、凝胶层析法的原理:凝胶层析法是一种以分子量和化学性质差异为基础的分离方法。

凝胶层析是一种分子筛柱色谱技术,其原理是将分子分离利用不同孔径大小和相互作用力略有不同的凝胶颗粒。

筛选出目标蛋白质,可以使蛋白质的体积和形态不变,在不同的凝胶孔道中,根据差别的大小和化学性质,保留下相应的物质。

2、凝胶层析填料:凝胶层析填料主要有两种,一种是大小相近的聚合物(凝胶)颗粒,另一种是大小不等的树脂颗粒。

无论凝胶或树脂供自层析列,其孔径大小和化学性质的选择,决定了它们对蛋白分离的"筛选作用”。

三、实验步骤:1、样品制备取少量分子量相近的蛋白质,制成约0.1%浓度。

样品过滤后,加入适量蛋白酶切割,切割后的肽段易于在小孔径的凝胶层析柱中分离。

根据孔径大小的区别,把每种试剂都制备成相应的缓冲液。

先将凝胶层析柱制备至一定的高度,再用缓冲液升高凝胶中的溶液封闭层,制成“蛋白质层”和“缓冲液层”。

先在样品和缓冲液层上出发液滴,然后同时加入样品和缓冲溶液。

维持稳定的流量,使各种蛋白质按照大小、形态和化学成分从上到下、逐渐通过凝胶层析柱。

要确保各种蛋白质低级沉积,必须将它们分离出来,破坏凝胶层析柱内的层次结构是一种常见的方法。

四、实验结果:通过实验,学生能够了解凝胶层析法的原理和常用凝胶层析填料,学习蛋白质的分离和纯化方法。

经过纯化后的蛋白质可以用于以下的实验,比如电泳,Western blot和质谱分析等。

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装柱注意事项: (1)装柱前加入1cm洗脱液,检查柱子 (2)凝胶装柱要一次完成。 (3)柱中的凝胶一定要浸没在洗脱液中。 (4)装凝胶的烧杯不能清洗。(看似脏的 东西都是凝胶)。
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三、加样与洗脱
先打开下口开关, 先打开下口开关,放出凝胶柱面上的溶 或吸取, 液(或吸取,但溶液面一定不能低于凝胶表 ),然后加样 本实验样品为: 然后加样。 面),然后加样。本实验样品为:血红蛋白 (2ml)和溴酚蓝 和溴酚蓝(1ml) 混匀,用移液管取 混匀, 和溴酚蓝 0.75ml滴加在液面下(不能冲起凝胶柱,也 滴加在液面下( 滴加在液面下 不能冲起凝胶柱, 不能沿管壁流下),控制流速, ),控制流速 不能沿管壁流下),控制流速,使样品慢慢 渗入凝胶内,当样品液面接近柱面时, 渗入凝胶内,当样品液面接近柱面时,关闭 下口,完成上样。再加一层洗脱液( ~ 下口,完成上样。再加一层洗脱液(3~ 5cm),连上洗脱装置,即可进行洗脱。 ),连上洗脱装置 ),连上洗脱装置,即可进行洗脱。 (注意调整洗脱装置使滴入洗脱液滴速率与 流出液滴速率一致。) 流出液滴速率一致。)
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二、装柱
A, 将层析柱垂直固定在铁架台上,关闭出口,向 将层析柱垂直固定在铁架台上,关闭出口, 柱内加入洗脱液约1cm 1cm高 若不漏则证明柱完好。 柱内加入洗脱液约1cm高,若不漏则证明柱完好。 B,将溶胀好的凝胶放在烧杯中,使凝胶表面的水 将溶胀好的凝胶放在烧杯中, 将溶胀好的凝胶放在烧杯中 层与凝胶体积相等;用玻璃棒搅匀凝胶液, 层与凝胶体积相等;用玻璃棒搅匀凝胶液,顺玻 璃棒灌入柱内,此时柱下口一边排水, 璃棒灌入柱内,此时柱下口一边排水,上口一边 加入搅匀的凝胶,可见凝胶连续均匀地沉降, 加入搅匀的凝胶,可见凝胶连续均匀地沉降,逐 步形成凝胶柱; 步形成凝胶柱; C,当到达所需凝胶高度时,立即关闭下口,使凝 当到达所需凝胶高度时, 当到达所需凝胶高度时 立即关闭下口, 胶完全沉降; 胶完全沉降; D,凝胶柱上始终覆盖一层溶液,凝胶柱用洗脱液 凝胶柱上始终覆盖一层溶液, 凝胶柱上始终覆盖一层溶液 流过
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四、收集
用试管收集洗脱液。 用试管收集洗脱液。
五、凝胶柱的
回收 处理
凝胶用过后,反复用蒸馏水通过柱 凝胶用过后, 倍床体积) (2~3倍床体积)即可。 倍床体积 即可。 注意:需回收!!! 注意:需回收!!!
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注意事项
始终保持柱内液面高于凝胶表面, 始终保持柱内液面高于凝胶表面,否则 水分挥发,凝胶变干。也要防止液体流干, 水分挥发,凝胶变干。也要防止液体流干, 使凝胶混入大量气泡, 使凝胶混入大量气泡,影响液体在柱内的流 导致分离效果变差。 凝胶的处理
Sephadex G-25干粉置于蒸馏水中室 干粉置于蒸馏水中室 干粉 温下溶胀3h,沸水浴加热1h, 温下溶胀 ,沸水浴加热 ,再用蒸馏水 洗涤几次, 洗涤几次,将不易沉降的细小颗粒随水倾 以免在装柱后产生阻塞现象, 倒(以免在装柱后产生阻塞现象,降低流 )。洗涤后将凝胶浸泡在洗脱液中待用 洗涤后将凝胶浸泡在洗脱液中待用。 速)。洗涤后将凝胶浸泡在洗脱液中待用。
凝胶层析法分离血红蛋白 和溴酚蓝
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【 目的 】
掌握凝胶层析的基本原理 学习利用凝胶层析法分离生物大分子和小分子 的实验技能
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【 原理 】 凝胶层析也称凝胶过滤、分子筛层析、 凝胶层析也称凝胶过滤、分子筛层析、 也称凝胶过滤 排阻层析, 排阻层析,是利用具有网状结构的凝胶的分 子筛作用,根据被分离物质的分子大小的不 子筛作用,根据被分离物质的分子大小的不 来进行分离的技术。 同来进行分离的技术。
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思考题
一、为什么溴酚蓝能与血红蛋白在层析柱中能 够很好的分开? 二、生化实验中常用的凝胶有哪些?各有何特 征?
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单个凝胶珠本身象 “筛子”。不同类型凝 筛子” 胶的筛孔的大小不同。 胶的筛孔的大小不同。
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带网孔的 葡聚糖珠 小分子进入 葡聚糖珠内
大分子不 能进入珠 内,经珠 之间缝隙 流出
凝胶层析过程示意图
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凝胶 珠
凝胶基质
小分子 大分子
凝胶层析过程示意图
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总结: 总结:
相对分子质量较大的物质由于直径大于凝胶网孔被完全排 相对分子质量较大的物质由于直径大于凝胶网孔被完全排 的物质由于直径大于凝胶网孔 阻在孔外,只能在凝胶颗粒外的空间向下流动,因此流程 在孔外,只能在凝胶颗粒外的空间向下流动, 较短,移动速度快;所以首先流出。 较短,移动速度快;所以首先流出。 首先流出 相对分子质量较小的物质由于直径小于凝胶网孔, 相对分子质量较小的物质由于直径小于凝胶网孔,可完全 的物质由于直径小于凝胶网孔 渗透进入凝胶颗粒的网孔,在向下移动过程中,因为流程 渗透进入凝胶颗粒的网孔,在向下移动过程中, 进入凝胶颗粒的网孔 较长,移动速率慢;所以最后流出。 较长,移动速率慢;所以最后流出。 最后流出 中等大小的分子,它们在凝胶颗粒内外部分渗透, 中等大小的分子,它们在凝胶颗粒内外部分渗透,渗透的 部分渗透 程度取决于它们分子的大小, 程度取决于它们分子的大小,所以它们流出的时间介于二 者之间,这样分子大的组分先流出,分子小的组分后流出。 者之间,这样分子大的组分先流出,分子小的组分后流出。 分子大的组分先流出 这样样品经过凝胶层析后, 这样样品经过凝胶层析后,各个组分便按分子从大到小的 顺序依次流出,从而达到了分离的目的。 顺序依次流出,从而达到了分离的目的。
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【 实验器材 】 层析柱 洗脱装置 试管等普通玻璃器皿
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【 实验试剂 】
待分离样品: 。鸡血红蛋白:取新鲜抗凝全血5ml, 待分离样品:1。鸡血红蛋白:取新鲜抗凝全血 , 离心10min,弃血浆,用三倍于血球体积的 于2000r/min离心 离心 ,弃血浆, 0.9﹪Nacl溶液洗血球(颠倒混匀)。离心弃去上清液, ﹪ 溶液洗血球( )。离心弃去上清液 溶液洗血球 颠倒混匀)。离心弃去上清液, 重复1~ 次 至上清液清亮为止。于血球中加入10倍体 重复 ~2次,至上清液清亮为止。于血球中加入 倍体 积的蒸馏水,混匀,使血球破碎,过滤, 积的蒸馏水,混匀,使血球破碎,过滤,即得血红蛋白 溶液。 。 溶液。2。 1mg/ml溴酚蓝溶液 溴酚蓝溶液 葡聚糖凝胶 Sephadex G-25 洗脱液: 洗脱液:0.2mol/L NaCl缓冲液 缓冲液
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