MTT
MTT法又称MTT比色法是一种检测细胞存活和生长的方法其检测原理
MTT法又称MTT比色法是一种检测细胞存活和生长的方法其检测原理MTT法，即3-(4,5-二甲基噻唑-2-基)-2,5-二苯基四唑（MTT）比色法，是一种常用的检测细胞存活和生长的方法。
MTT法的基本原理是通过检测细胞内的线粒体活性来评估细胞的存活状况和生长情况。
线粒体是细胞内能量产生中心和细胞呼吸的主要场所，其功能完整与否直接影响细胞的生活能力和活动状态。
MTT法利用MTT试剂与细胞内的线粒体还原酶作用产生可溶性的蓝紫色产物，通过比色测定可间接反映细胞数量和细胞代谢活性。
MTT法的操作步骤如下：1.培养细胞：将需要检测的细胞在细胞培养板中培养至合适的生长期，使细胞处于活跃生长状态。
2.处理试样：根据实验的需要，对细胞进行不同处理，例如添加药物，感染病毒等。
3.加入MTT试剂：将MTT试剂以适当的浓度加入细胞培养板的培养液中，并保持细胞在适宜的温度和环境条件下培养一段时间，通常为2-4小时。
4.溶解MTT产物：将培养液完全移除，加入溶解剂如二甲基亚砜(DMSO)，使产生的蓝紫色MTT产物完全溶解。
5. 比色测定：将溶解后的MTT产物转移至96孔板或比色皿中，利用分光光度计在570 nm波长下测定吸光度值。
吸光度值的高低代表了细胞的存活状况和生长活性。
MTT法的优点在于操作简单、结果读取方便、对细胞破坏小等。
同时，MTT法可以应用于不同类型的细胞，包括哺乳动物细胞、微生物细胞等。
然而，MTT法也存在一定的局限性，比如不能直接反映细胞的精细结构和功能等。
总之，MTT法是一种常用的检测细胞存活和生长的方法，利用线粒体活性作为指标，通过MTT试剂的比色测定来间接评估细胞的数量和代谢活性。
在细胞研究、肿瘤学和药物筛选等领域具有广泛的应用前景。
MTT原理方法及操作步骤
MTT原理方法及操作步骤MTT（3-(4,5-二甲基噻唑-2-基)-2,5-二苯基四唑溴化物）是一种常用的细胞增殖测定试剂，用于定量测定细胞的存活情况。
MTT的工作原理：MTT原理是基于还原型特种金属试剂Florida Cyanide。
MTT可进入细胞内部，被活细胞内的膜连蛋白酶还原为水溶性紫色化合物，甲基化噻唑胺盐（formazan）。
甲基化噻唑胺盐可溶于有机溶剂如DMSO或乙醇。
MTT的量越多，被还原为甲基化噻唑胺盐越多，即细胞活性越高。
MTT的操作步骤：1.预处理细胞将需要检测细胞的培养基倒入培养皿中，将获得的细胞悬液加入培养基中，根据实验要求进行设定浓度和培养时间。
2.处理试剂根据常规的MTT工作浓度（通常为0.5 mg/ml），将MTT试剂精确称取并溶解在无菌的溶剂（例如PBS）中。
3.细胞处理将培养中的细胞培养液抽取约100μl至新的96孔板孔中，并注意控制每个孔中细胞数相同时的培养基体积。
4.加入MTT试剂将所制备的MTT溶液以100μl的体积的溶液加入到培养细胞上，并尽量在操作中迅速搅拌均匀，以使MTT均匀分布。
5.细胞孔板孔的处理将MTT试剂添加到孔中后，覆盖板密封（如用保鲜膜密封）。
然后将培养皿放入暗处，37°C培养孔中的细胞进行inculbation与MTT碳酸酯酶的反应。
通常培养12至24小时，可以根据具体实验情况延长培养时间。
6.细胞孔中溶解甲基化噻唑胺盐将培养平皿中的培养液取出约50μl，悬浮溶解掉的甲基化噻唑胺盐，再加入200μlDMSO混合均匀。
7.测定吸光度将孔中的溶液分别转移到透明壁的96孔板，并使用微孔板阅读装置（Multiskan Spectrum）在570 nm波长下测定吸光度。
DMSO溶液作为空白参照，用作光强的基准。
8.数据分析根据检测吸光度得到的数据，计算出每个孔的平均值，并根据实验要求，进行数据图表分析。
总结：MTT法是一种可靠、灵敏、简单、可重复性好的细胞增殖测定方法。
MTT及细胞计数
一、MTT是什么MTT是一种粉末状化学试剂，全称为3-(4,5)-dimethylthiahiazo(-z-y1)-3,5-di-phenytetrazoliumromide，汉语化学名为 3-(4，5-二甲基噻唑-2)-2，5-二苯基四氮唑溴盐，商品名：噻唑蓝。
是一种黄颜色的染料。
二、MTT法用来做什么简单地说：是一种检测细胞存活和生长的方法。
MTT主要有两个用途1．药物（也包括其他处理方式如放射线照射）对体外培养的细胞毒性的测定；2．细胞增殖及细胞活性测定。
三、为何MTT可以用来做上述工作检测原理为活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性MTT还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒（Formazan）并沉积在细胞中，而死细胞无此功能。
二甲基亚砜（DMSO）能溶解细胞中的甲瓒，用酶标仪在490nm波长处测定其光吸收值，在一定细胞数范围内，MTT结晶形成的量与细胞数成正比。
根据测得的吸光度值（OD 值），来判断活细胞数量，OD值越大，细胞活性越强（如果是测药物毒性，则表示药物毒性越小）。
四、实验所需材料1．MTT 溶液的配制通常MTT 配成的终浓度为5mg/ml,须用PBS或生理盐水做溶剂。
市面上一般MTT的包装为100mg,250mg或1g1.1对于100mg这样的小包装，厂家都是将MTT放入小管中的，个人建议不要再用天平称量分装，而应该一次性将其全配制成溶液，如100mg用20mlPBS来溶解。
具体做法：预先在50ml离心管（没有的话，可用培养瓶替代）加入20ml PBS，从中先吸取500-1000ul PBS装入含MTT的小管中，吹打若干次后将其移入50ml 离心管，然后再混匀。
可以重复几次，以使小管中的MTT不残留于管内。
将MTT 完全混匀后，用0.22μm滤膜过滤以除去溶液里的细菌，分装避光(避光袋或是黑纸、锡箔纸包住)可长期保存于-20度。
按细胞培养板每孔需加10ul计算，一般每96孔板约需1ml，所以分装时可考虑每管分装1ml。
MTT法又称MTT比色法,是一种检测细胞存活和生长的方法,其检测原理
MTT法又称MTT比色法，是一种检测细胞存活和生长的方法，其检测原理MTT法又称MTT比色法，是一种检测细胞存活和生长的方法，其检测原理为活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性MTT还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒并沉积在细胞中，而死细胞无此功能。
二甲基亚砜能溶解细胞中的甲瓒，用酶联免疫检测仪在490 nm波长处测定其光吸收值，可间接反映活细胞数量。
在一定细胞数范围内，MTT结晶形成的量与细胞数成正比。
该方法已被广泛用于一些生物活性因子的活性检测、大规模的抗肿瘤药物筛选、细胞毒性试验以及肿瘤放射敏感性测定等，它的特点是灵敏度高、经济。
学术术语来源---Bio-gide胶原膜体外复合培养犬骨髓间充质干细胞的软骨分化文章亮点：1 实验先采用全骨髓血培养法培养犬骨髓间充质干细胞，继而采用贴壁筛选纯化，方法简便，所获细胞数量及纯度满意，并在体外成功诱导分化出软骨细胞。
2 实验所采用的细胞支架材料为瑞士Geistlich公司生产Bio-gide胶原膜，这是一种由Ⅰ型和Ⅲ型胶原组成复合材料，分为致密层和疏松层，种子细胞接种在胶原膜的较为粗糙的疏松层，而光滑的致密层在体内实验中朝向关节腔，有利于骨髓间充质干细胞的黏附、生长及向软骨细胞的分化，三维立体培养有助于诱导生成的软骨细胞维持表型。
3 实验显示Bio-gide胶原膜与骨髓间充质干细胞复合培养有良好的生物相容性，但能否体内构建组织工程软骨组织，促进软骨细胞的生长，缺损的软骨组织得到完整的修复，尚待进一步研究。
关键词：生物材料；组织工程软骨材料；膜生物材料；骨髓间充质干细胞；Bio-gide胶原膜；组织工程；股骨头坏死；软骨缺损；种子细胞；国家科学自然基金摘要背景：应用组织工程方法修复股骨头坏死后的软骨损伤应解决的2个关键因素是种子细胞和支架材料。
目的：探讨Bio-gide胶原膜体外与犬骨髓间充质干细胞复合成软骨的可行性。
方法：采用全骨髓血离心法结合贴壁筛选法体外分离培养比格犬骨髓间充质干细胞，观察细胞形态学变化，以细胞表面抗原进行鉴定。
mtt法检测细胞增殖
MTT法检测细胞增殖前言细胞增殖是生物体生长和发育的基本过程之一，也是许多疾病的病理基础。
因此，准确测定细胞增殖的能力对于生物医学研究具有重要意义。
MTT(Methylthiazolyl tetrazolium)法是目前常用的细胞增殖分析方法之一，能够可靠地简单测定细胞增殖的活性。
本文将介绍MTT法的原理和操作步骤，并对其优缺点进行分析。
MTT法原理MTT法是一种基于细胞代谢活动的间接检测方法。
其基本原理是利用细胞对MTT的还原作用，通过测定产生的紫色产物的吸光度来间接反映细胞增殖的活性。
MTT是一种黄色的可溶性化合物，能够通过细胞内氧化还原酶系统还原为紫色的结晶体—formazan。
被还原的formazan会在细胞内积累，并且随着细胞数量的增加而增加。
在MTT法中，细胞被处理后，MTT溶液被加入到培养基中，经过一段时间的孵育后，细胞会将MTT还原为formazan，形成紫色的晶体。
随后，使用溶解剂溶解晶体，使其可溶于溶液中，最后通过光谱仪测定溶液的吸光度。
在MTT法中，吸光度的值与细胞数量成正比，因此可以通过比较不同处理组细胞的吸光度值来评估细胞增殖能力的差异。
操作步骤以下是使用MTT法检测细胞增殖的基本操作步骤：1.准备细胞培养物：将需要进行细胞增殖检测的细胞培养在含有适当培养基的培养皿中。
确保培养皿的表面充分涂覆了细胞，并且培养皿中的细胞密度适中。
2.处理组织/药物/生物活性物质：根据实验设计的需求，将细胞培养在含有需要测试的药物或生物活性物质的培养基中。
如果是对不同处理组进行比较，需要设置对照组。
3.孵育细胞：将培养皿放入恒温培养箱或细胞培养箱中，以维持适当的温度、湿度和气体环境，使细胞进行增殖。
孵育时间根据实验需要而定，通常为24-72小时。
4.添加MTT溶液：取出培养皿，将预先配好的MTT 溶液均匀地加入到培养基中，确保与细胞充分接触。
MTT 溶液的浓度和加入量可以根据实验要求进行调整。
MTT溶液的配制
MTT溶液的配制
1、通常，此法中的MTT 浓度为5mg/ml。
2、因此，可以称取MTT 0.5克，溶于100 ml的磷酸缓冲液(PBS)或无酚红的培养基中
3、用0.22μm滤膜过滤以除去溶液里的细菌
4、放4℃ 避光保存即可。
需要注意的是
1、在配制和保存的过程中，容器最好用铝箔纸包住。
2、溶解不好，可反复吹打护着超声
3、调节PBS的pH在7.4附近，可以促溶
4、MTT法只能用来检测细胞相对数和相对活力，但不能测定细胞绝对数。
在用酶标仪检测结果的时候，为了保证实验结果的线性，MTT 吸光度最好在0-0.7 范围内。
5、MTT一般最好现用现配，过滤后4℃避光保存两周内有效，
6、或配制成5mg/ml保存在-20度长期保存，避免反复冻融，最好小剂量分装，用避光袋或是黑纸、锡箔纸包住避光以免分解。
7、我一般都把MTT粉分装在EP管里，用的时候现配，直接往培养板中加，没必要一下子配那么多,尤其当MTT变为灰绿色时就绝对不能再用了。
8、MTT有致癌性，用的时候小心,有条件最好带那种透明的簿膜手套.
9、配成的MTT需要无菌，MTT对菌很敏感;
10、往96孔板加时不避光也没有关系，毕竟时间较短，或者你不放心的时候可以把操作台上的照明灯关掉. ……。
MTT法检测细胞活力讲解
评估细胞因子对免疫细胞活性的影响
实验中遇到的问题与解决方案
问题一
细胞培养污染导致实验结果异常
解决方案
严格控制细胞培养环境，定期进 行细胞污染检测
问题二
不同批次细胞生长状态不一致
解决方案
加强实验操作培训，提高实验员 操作水平
问题三
MTT法操作过程中出现误差
解决方案
标准化细胞培养条件，确保细胞 生长状态一致
可见光下稳定
MTT结晶在可见光下稳定，不易分解，因此可以长 时间保存和测量。
细胞代谢与颜色变化
细胞代谢
活细胞通过代谢将MTT染料还原成蓝紫色结晶，结晶的数量与细 胞活性成正比。
颜色变化
随着结晶的形成，培养液的颜色逐渐由黄色变为蓝紫色，颜色的 深浅与细胞活力成正比。
细胞活力的判定标准
80%
细胞存活率
荧光染色法
利用荧光染料对活细胞进行染色，通 过荧光显微镜观察荧光信号判断细胞 活力。
mtt法与其他方法的优缺点比较
染色法
操作简单，但主观性强，误差 较大。
代谢活性检测
客观准确，但试剂成本较高。
荧光染色法
灵敏度高，但操作复杂，需要 荧光显微镜。
MTT法
操作简便，成本低，结果准确 可靠。
选择合适的细胞活力检测方法的原则
经验总结与未来展望
经验总结
MTT法是一种简单、可靠的检测细胞 活力的方法，但在实验过程中需要注 意避免污染、误差等问题。
未来展望
随着细胞生物学研究的深入，MTT法 将会有更多的应用场景，如药物筛选、 免疫疗法评估等。同时，需要不断优 化实验条件和方法，提高实验结果的 准确性和可靠性。
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MTT配制、操作步骤、结果分析、注意事项等全面指南(配图片)
一、MTT是什么MTT是一种粉末状化学试剂，全称为3-(4,5)-dimethylthiahiazo (-z-y1)-3,5-di- phenytetrazoliumromide，汉语化学名为3-(4，5-二甲基噻唑-2)-2，5-二苯基四氮唑溴盐，商品名：噻唑蓝。
是一种黄颜色的染料。
（可参考Sigma，货号M5655，Thiazolyl Blue Tetrazolium Bromide）二、MTT法用来做什么简单地说：是一种检测细胞存活和生长的方法。
MTT主要有两个用途1．药物（也包括其他处理方式如放射线照射）对体外培养的细胞毒性的测定；2．细胞增殖及细胞活性测定。
三、为何MTT可以用来做上述工作检测原理为活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性MTT还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒（Formazan）并沉积在细胞中，而死细胞无此功能。
二甲基亚砜（DMSO）能溶解细胞中的甲瓒，用酶标仪在490nm波长处测定其光吸收值，在一定细胞数范围内，MTT结晶形成的量与细胞数成正比。
根据测得的吸光度值（OD值），来判断活细胞数量，OD值越大，细胞活性越强（如果是测药物毒性，则表示药物毒性越小）。
四、实验所需材料1．MTT 溶液的配制通常MTT配成的终浓度为5mg/ml，须用PBS或生理盐水做溶剂。
市面上一般MTT的包装为100mg，250mg或1g。
1.1 对于100mg这样的小包装，厂家都是将MTT放入小管中的，个人建议不要再用天平称量分装，而应该一次性将其全配制成溶液，如100mg用20mlPBS来溶解。
具休做法：预先在50ml离心管（没有的话，可用培养瓶替代）加入20ml PBS，从中先吸取500-1000ul PBS装入含MTT的小管中，吹打若干次后将其移入50ml离心管，然后再混匀。
可以重复几次，以使小管中的MTT不残留于管内。
将MTT完全混匀后，用0.22μm滤膜过滤以除去溶液里的细菌，分装避光(避光袋或是黑纸、锡箔纸包住)可长期保存于-20度。
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ODM：空白组，只加培养基，用来使机器吸光值调0的被试组。
(避光)每孔加入150ul DMSO，振荡10min，使结晶物充分融解。(通常加入DMSO后在台子上铺张卫生纸十字振荡几次等一会儿拿到楼下的酶联免疫检测仪处在检测前机器会自动低速振荡2min)
4.
选择490nm波长，在酶联免疫检测仪上测定各孔的吸光值OD，记录结果，以时间为横坐标，吸光值为纵坐标绘制细胞生长曲线。
吸的时候要在悬液底部，然后提起来一点，但是吹下去的时候不要离开液面，否则容易吹打出气泡。
4.吹打次数100次左右，就可以吹打均匀了。铺板时，每接种一排复孔后反复吹打3~4次，每吹打3次后枪头垂悬与细胞悬液中5秒钟，然后再以一定的速度吸取悬液。
5.向每孔中用枪头加入细胞时不要太快，否则你会发现细胞在加入的瞬间会由于枪头的冲力在孔底聚集一堆，一般都在孔的底部中央，而周边很少，这种不均匀的分散会产生接触抑制，影响细胞的生长。所以速度不能太快也不能太慢。我习惯每块板加完后在台子上铺张纸，将板向左3下，向右3下，在往返回复3下移动，目的是使得细胞能分散的均匀些
3.
培养16~48h后，(避光)每孔加入MTT溶液20ul(5mg/ml，用ph4.7的PBS配)，继续孵育4小时，终止培养，小心吸弃孔内培养上清液，对于悬浮细胞需要离心后再吸弃孔内培养上清液。(若药物与MTT能够反应，则先弃去培养液，用PBS冲2~3遍后，再加入含MTT的培养液)
终止培养，小心吸去孔内培养液。
实验步骤
1.
用含10%的胎小牛血清的培养基配成单个细胞悬液，以每孔103-104个细胞接种到96孔板，每孔体积100ul，用无菌的PBS填充边缘孔。
注意：
1.选择适当的细胞接种浓度，细胞数太多敏感性降低，细胞数太少观察不到差异。细胞接种密度不能过大，一般每孔1000个左右，所以96孔≈100孔，100ul每孔，100ul*100=10ml细胞悬液，细胞浓度为104个/ml。
2.
置于37。C，5%CO2的培养箱中孵育，直至细胞生长呈单层，铺满96孔培养板，加入浓度梯度的药物，原则上，细胞贴壁后即可加药，通常前一天下午铺板，次日上午加药。一般5~7个梯度，每孔3~4个复孔，每孔100ul。培养16~48h(可根据实验目的和要求决定培养时间)。
注意：
根据细胞生长速度以及药物的特性(有时间依赖性和浓度依赖性的药物)来确定培养时间是48小时还是72小时
通过琥珀酸脱氢酶活性进
实验目的
用MTT法测定细胞相对数和相对活力的原理和方法
实验原理
活细胞的线粒体中含有琥珀酸脱氢酶，能是外源性的MTT(噻唑蓝)还原为不溶性的甲臜(formazan)，呈蓝紫色结晶，沉淀在细胞中，而死细胞无此功能。MTT为黄色化合物，是一种接受氢离子的染料，可用作活细胞线粒体中的呼吸链，在琥珀酸脱氢酶和细胞色素C的作用下tetrazolium环开裂，生成蓝色的formazan结晶，formazan结晶的生成量仅与活细胞数目成正比(死细胞中琥珀酸脱氢酶消失，不能将MTT还原)。还原生成的formazan结晶可在50%的N,N-二甲基甲酰胺(DMF,有毒)和20%、pH4.7的十二烷基磺酸钠(SDS)的MTT溶解液中溶解，通常我们用DMSO(二甲基亚砜，避光保存)来溶解。用酶标仪测定490nm处吸光值(OD)，来判断活细胞数量，OD值越大，细胞活性越强(如果是测试药物毒性,则表示药物毒性越小)。MTT主要可用作药物(也包括其他处理方式如放射线照射)对体外培养的细胞毒性的测定和细胞增殖及细胞活性测定。
注意事项
(1)选择适当的细胞接种浓度，接种细胞的数量要准确。
(2)避免血清干扰:一般选小于10%的胎牛血清的培养液进行试验。在呈色后尽量吸尽孔内残余培养液。
(3)设置凋零孔、对照孔及加药孔，其中细胞、培养基、MTT、DMSO，即对照加溶解药物的介质，而加药组加入不同浓度的药物。
(4)MTT实验吸光值最后要在0~0.7之间，超出这个范围就不是直线关系。
(5)配成的MTT需要无菌，现用现配，过滤后避光4。C保存2周内有效，也可配制成5mg/ml保存在-20。C长期保存，最好小剂量分装，用锡箔纸包住避光以免分解，避免反复冻融。
关于如何计算
IC50是半抑制剂，意思是抑制率50%的时候药物的浓度。把药品稀释成不同的浓度，然后计算各自的抑制率，以药品的浓度为横坐标，抑制率为纵坐标作图，然后得到50%抑制率时候的药品浓度，就是IC50。
寇式改良法:
Xm:lg最大剂量I:lg(最大剂量/相邻剂量) P:阳性反应率之和
Pm:最大阳性反应率(即最大抑制率) Pn:最小阳性反应率(即最小抑制率)
抑制率计算公式:
存活率计算公式:
存活率=1-抑制率
ODcontrol:控制组(Control Group)又称对照组，指不接受实验处理的被试组。
ODcontrol是指对照组的吸光值。
细胞悬液一定要混匀，已避免细胞沉淀下来，导致每孔中的细胞数量不等，可以每接一排复孔就再混匀一下。
2.吹打细胞时，细胞悬液总量不能太多，达到吸管吸液量的3到4倍，可能比较容易混匀。10ml的离心管中最好装3~4ml的悬液，悬液太少容易吹起很多气泡，悬液太多不容易吹成单细胞悬液。
3.吸管的吸液量最好在1ml左右，吸液量过多的话，一下吸气很多液体，管中所剩的就少，这样吹打容易起泡，吸液量过少，吹打力度就不够，吹打就不会均匀。