芒果SSR_PCR反应体系的优化
梁山慈竹SSR-PCR体系的优化

梁山慈竹SSR-PCR体系的优化梁山慈竹(SSR-PCR)是一种分子生物学技术,用于鉴定和分析梁山慈竹(SSR)基因座的多态性。
SSR位点是一种高度变异的遗传标记,能够在不同个体之间产生不同的DNA序列重复单元。
通过优化SSR-PCR体系,可以提高PCR反应的灵敏性和特异性,从而提高SSR位点的分型效果。
优化SSR-PCR体系的关键是选择合适的引物和PCR条件,以提高PCR反应的效率和特异性。
需要选择合适的引物对SSR位点进行扩增。
引物设计应基于梁山慈竹的基因组序列,确保引物与目标位点的配对是特异性的。
引物的长度应在18-25个碱基对之间,GC含量应在40-60%之间。
还应对引物的Tm值进行优化,以提高引物与模板DNA的特异性结合。
需要优化PCR反应的条件。
PCR反应体系通常包括DNA模板、引物、dNTPs、酶和缓冲液等组分。
PCR反应的温度梯度是优化PCR的关键步骤之一。
温度梯度应选择在50-70℃之间,以找到最合适的退火温度。
还应对PCR反应的延伸时间和循环次数进行优化,以保证产物的特异性和产量的充分扩增。
还可以采取其他策略进一步优化SSR-PCR体系的效果。
可以引入增效剂,如DMSO和Bovine Serum Albumin (BSA),以提高PCR反应的效率和特异性。
还可以采用nested PCR 或semi-nested PCR的方法,以增加PCR产物的特异性和灵敏性。
在优化SSR-PCR体系时,还需要考虑一些潜在的问题和解决方案。
可能会出现非特异扩增的问题,产生了多个非目标的PCR产物。
这时,可以尝试调整PCR反应的温度梯度,增加引物的特异性,或设计新的引物对进行扩增。
PCR反应的污染问题也需要注意,可以采取一些严格的实验措施,如隔离试验和反应区和非反应区的物理隔离,以防止PCR反应的污染。
通过合理选择引物和优化PCR反应条件,梁山慈竹SSR-PCR体系的效果可以得到显著提高。
这将有助于深入研究梁山慈竹的遗传多样性和种质资源利用,为遗传改良和保护提供科学依据。
正交设计优化芒果 SRAP -PCR 反应体系及引物筛选

正交设计优化芒果 SRAP -PCR 反应体系及引物筛选赵英;付海天;周俊岸;李日旺;莫永龙;张宇;黄国弟【期刊名称】《江苏农业科学》【年(卷),期】2014(000)012【摘要】以芒果基因组DNA为模板,采用正交试验对模板DNA含量、引物浓度、2×Taq PCR Master Mix含量进行3因素5水平正交试验优化。
结果表明,相关序列扩增多态性PCR ( sequence related amplified polymorphism , SRAP-PCR)最佳反应体系为:30 ng 模板DNA、0.3μmol/L 引物、10μL 2×Taq PCR Master Mix,总体积为25μL。
运用该体系对10份芒果种质材料进行验证,证明该体系稳定可靠,并从100对引物组合中筛选出扩增条带清晰、多态性丰富的36对引物组合。
【总页数】3页(P41-43)【作者】赵英;付海天;周俊岸;李日旺;莫永龙;张宇;黄国弟【作者单位】广西亚热带作物研究所,广西南宁530001;广西亚热带作物研究所,广西南宁 530001;广西亚热带作物研究所,广西南宁 530001;广西亚热带作物研究所,广西南宁 530001;广西亚热带作物研究所,广西南宁 530001;广西亚热带作物研究所,广西南宁 530001;广西亚热带作物研究所,广西南宁 530001【正文语种】中文【中图分类】Q943.2;S667.703【相关文献】1.正交设计优化辣椒SRAP-PCR反应体系及引物筛选 [J], 周坤华;方荣;陈学军;缪南生;王悟亮2.正交设计优化秋海棠属植物SRAP-PCR反应体系及引物筛选 [J], 宣继萍;郭忠仁;徐菲;郑玉红3.正交设计优化草地早熟禾SRAP-PCR反应体系及引物筛选 [J], 任小巍;王瑜;袁庆华4.正交设计优化山野豌豆SRAP-PCR反应体系与引物筛选 [J], 刘颖;王显国;张巨明;刘芳5.正交设计优化辣椒SRAP-PCR反应体系及引物筛选 [J],因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
槟榔SSR反应体系的建立

0. 1 mmo/L l dNTPs,1. Ta 5 U q
D A plm r e 0 8t o Lpie, . g D A t pa .r1 P R a pictnadPg e e cr hr i dt tno N oy e s , . m l r r 20n / a L / m N m lt Ie C m li i n aegl l t p oe s e co n e e 1 I fao e o s e i
江西农业学报ຫໍສະໝຸດ 2 1 ,4 9 : 6 02 2 ( )6 0~ 2
Aca Ag lu u a in x t rc h r e Ja g i ’
槟 榔 S R反 应体 系的建 立 S
战睛晴, 周亚奎, 云, 杨 甘炳春 , 卢丽兰
( 国医学 科 学 院 、 中 北京 协 和 医学 院 药 用 植 物研 究 所 海 南分 所 海南 省 南药 资 源保 护 与 开 发重 点 实验 室 , 海南 万 宁 5 13 ) 75 3
S R tc n lg o een t n te a l c t n r s l e ee p oe .T e r s l h we a h e t n a ig tmp r tr sf r h S e h oo y f rb t lu h mpi a i e ut w r x lr d h e u t s o d t t e b s a e l o i f o s s h t n n e eau e e o t p i r C 5 9 wa 6 o rme 7 4 s5 C,a d te o t m 0 L P R e c in s s m n l d d 3 0 m l 2 n h pi mu 2 C ra t y t i cu e . mo o e /L Mg
杧果SC-SSR分子标记反应体系的建立与优化

杧果SC-SSR分子标记反应体系的建立与优化作者:覃昱茗张宇黄国弟莫永龙罗世杏荣涛来源:《农业研究与应用》2021年第03期摘要:采用正交设计方法,对影响PCR反应体系的5个因素(Mg2+、Taq DNA聚合酶、dNTPs、引物和模板DNA)进行了优化,建立了适用于杧果的SC-SSR-PCR反应体系。
结果表明,总反应体系25 μL中,包含模板DNA用量100 ng·mL-1、Mg2+浓度2.00 mmol·L-1、引物浓度0.40 μmol·L-1、Taq DNA 聚合酶浓度1.00 U、dNTPs浓度0.15 mmol·L-1。
利用优化的杧果SC-SSR-PCR反应体系对10对SC-SSR引物进行验证,均能扩增出清晰、明亮、特异的电泳条带。
因此,优化的杧果SC-SSR-PCR反应体系适用于杧果种质鉴定和亲缘关系分析。
关键词:杧果 SC-SSR 正交设计体系优化中图分类号:S667.7 文献标识码:A杧果(Mangifera indica L.)为漆树科重要常绿经济果树,原产印度,其果实风味极佳[1]。
国内海南、广东、广西、福建、云南、贵州、四川均有栽培[2-3]。
起始密码子-微卫星扩增多态性(start codon simple sequence repeat,SC-SSR)标记是郭大龙等结合SCoT和ISSR分子标记技术开发出来的一种既能将标记位点与表达序列紧密联系,又具有相对较高多态性的新型分子标记[4]。
目前,SC-SSR标记已应用于猕猴桃遗传多态性分析及其指纹图谱构建,但在其他物种中的应用研究在国内并不多[5]。
由于杧果高度异花授粉,种子高度杂合,且生产交易中往往存在同物异名和异物同名等问题,给杧果育种工作带来了诸多阻碍[6-8]。
SC-SSR分子标记在种质鉴定方面具有独特的优势,但在杧果中尚未有报道。
基于这些问題,本研究较全面地建立并优化杧果的SC-SSR反应体系,为其在杧果种质资源评价、遗传多样性分析等领域的应用提供技术参考。
梁山慈竹SSR-PCR体系的优化

梁山慈竹SSR-PCR体系的优化SSR-PCR是一种基于DNA多态性的分析方法,可以用于遗传多样性研究、基因定位和遗传标记辅助选择等方面。
在梁山慈竹中,SSR-PCR也被广泛应用于种质资源鉴定和遗传多样性分析等研究中。
优化SSR-PCR体系的关键是选择合适的引物。
引物是在扩增过程中与目标DNA序列互补结合的核酸片段,能够定向扩增目标DNA序列。
在梁山慈竹中,选择合适的引物对于获取准确的PCR产物非常重要。
引物的选择应基于梁山慈竹的基因组序列和已知的SSR序列信息。
还需要考虑引物的长度、GC含量和3'端的碱基组成等因素,以提高扩增效率和特异性。
优化SSR-PCR反应条件也是非常重要的。
反应条件包括反应体系的组成、扩增温度和周期等。
在梁山慈竹的SSR-PCR反应中,一般采用20μL的反应体系,包括模板DNA、引物、Taq DNA聚合酶、缓冲液、dNTPs和MgCl2等。
反应体系的设计要考虑到最佳浓度和最佳质量比例。
还需要根据引物的特性和扩增目标的大小,优化扩增温度和周期,以保证扩增反应的效果。
优化SSR-PCR体系的最重要的一步是电泳分析。
电泳分析能够将PCR产物按照大小分离,从而获取准确的分析结果。
在梁山慈竹的SSR-PCR反应中,通常采用聚丙烯酰胺凝胶电泳。
选择适当的电泳电压和运行时间,可以保证PCR产物能够充分分离,以便进行后续的测序和分析。
优化梁山慈竹的SSR-PCR体系是分子生物学研究中的重要步骤。
通过合理选择引物、优化反应条件和电泳分析,可以获得高效、特异且准确的PCR扩增产物,为梁山慈竹的遗传多样性研究和种质资源鉴定提供可靠的数据支持。
观赏桃ISSR_PCR反应体系的优化

研究报告生物技术通报BI OTEC HNOLOG Y BULLETI N2009年第12期观赏桃ISS R PCR 反应体系的优化林玲汤浩茹 刘燕候艳霞(四川农业大学园艺学院,雅安625014)摘 要: 采用改良CTA B 法从观赏桃满天红叶片中提取基因组DNA,通过单因素实验探讨了模板DNA 、M g 2+、dNTP s 和T aq DNA 酶等条件对观赏桃ISS R PCR 扩增结果的影响,建立了ISSR PCR 扩增的最佳体系:25 l 反应体系中包含10 Buffe r 2 5 ,l 模板DNA 40ng ,M g 2+浓度2 5mm o l/L,引物浓度0 4 mo l/L,dNTP s 浓度0 4mm o l/L,T aq DNA 酶0 5U 。
利用所建立的体系对红叶桃、菊花桃和春艳等13份材料进行检验,其结果表明优化后的体系适合观赏桃的ISSR PCR 反应。
关键词: 观赏桃DNA 提取ISSR体系优化Opti m izati on for ISSR PCR Reaction Conditions ofOrna m ental PeachL i n L i ngT ang H aor uL iu Y anHou Y anxia(H or tic ult uralCo lle ge ,S ic huan Agric ultural Universit y,Ya !an 625014)Abstrac:t T he i m proved m ethod CTAB w as used to extrac t DNA from leaves of ornam enta l peach m anti anhong .The research discussed different co m ponen ts effect to the DNA a m plifi cation ,i nc l udi ng prog ram te m plate ,pri m er ,d NTP s ,Taq poly m erase and M g 2+,through l adder exper i m ents .T he reac ti on cond iti ons we re opti m i zed and then the opti m a l PCR system for ISS R analysis was establi shed as fo ll ows ,tota l vo l um e 25 ,l 2 5 l 10Bu ffer ,40ng te m plate DNA,2 5mm o l/L M g 2+,0 4mo l/L Pr i m er ,0 4mm o l/L d NTP s ,and 0 5U Taq DNA po l yme rase .The opti m al PCR syste m was tested by 13sa m ples ,show i ng tha t it pe rf o r m ed satisfacto ril y on ornamenta l peach .K ey words : O rnam enta l peach DNA extraction ISSRO pti m a l PCR system收稿日期:2009 09 07基金项目:国家大学生创新性实验资助项目(081062613)作者简介:林玲(1986 ),女,在读硕士研究生,主要从事园艺植物种质资源与生物技术的研究;E ma i :l hdnea @yahoo .co 通讯作者:汤浩茹,男,教授,博士生导师;E m ai:l h t ang @s icau 观赏桃(P runus persica Batsh)是原产我国的古老观赏植物之一,其花、叶、果都有很高的观赏价值[1]。
锁阳ISSR-PCR反应体系的优化研究

锁阳ISSR-PCR反应体系的优化研究李伟;刘广达;陈青;呼思勒;陈贵林【期刊名称】《生物技术通报》【年(卷),期】2012(000)008【摘要】通过单因素试验、正交试验的方法,对影响锁阳ISSR-PCR反应体系的7种主要因素在3个水平上进行优化筛选,得到锁阳ISSR-PCR反应的最佳体系:25 μL反应体系中含有0.2 mmol/L dNTP、1.5 mmol/L Mg2+、10μmol/L引物、50 ng模板DNA、2.0 U Taq酶、1%去离子甲酰胺和2.5 μg/μL牛血清白蛋白.相应引物的最佳退火温度为48.9℃.这一体系的建立为今后利用ISSR-PCR标记技术研究锁阳的遗传多样性奠定了基础.同时对ISSR-PCR体系中添加剂的作用进行了探讨,为添加剂在其他植物ISSR-PCR反应中的应用提供借鉴.【总页数】6页(P135-140)【作者】李伟;刘广达;陈青;呼思勒;陈贵林【作者单位】内蒙古大学生命科学学院,呼和浩特010021;内蒙古大学生命科学学院,呼和浩特010021;内蒙古大学生命科学学院,呼和浩特010021;暨南大学生命科学技术学院,广州510632;内蒙古大学生命科学学院,呼和浩特010021【正文语种】中文【相关文献】1.黔产苦参ISSR-PCR反应体系正交优化研究 [J], 金燕;龙庆德;常楚瑞;陆平祝;王晓丽2.西藏嵩草ISSR-PCR反应体系优化研究 [J], 胡延萍;包蕊;王莉;石琳;李毅3.长蛸ISSR-PCR优化反应体系的建立及优化研究 [J], 汤永磊;周超;祁鹏志;吴常文;郭宝英4.梨ISSR-PCR反应体系的正交优化研究 [J], 桂腾琴;孙敏;陆春连;刘群;代婷;柏和燕5.金槐ISSR-PCR反应体系的优化研究 [J], 傅鹏;陈恒宇;谢锋;笪舫芳;王孝勋;高洁;曾锦燕因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
假丝酵母SSR-PCR反应体系的优化

2 2 正 交实验 优化 S R-C . S P R反应 体 系
冰浴 2mn ④ 1 0 m、 ℃离 心 1 i, 60 i; 20 0r 4 p 0m n 取 0 l
通 过 4因素 3 平 的正 交实 验 , 9 组 合 , 水 共 种 对 SRP R反 应 体系进 行 了优 化 。每 一组 合 的结 果 存 S —C 在 显著 差异 , 道 1 有扩 增 出条 带 ; 道 2扩增 条 泳 没 泳
-
Ke o d : a dd ; S P R; r o o a s y w r s C n a S R; C O t g n l i h De i n g
( hn. a 脚 Ci , b L
,0 1 1 : 6 ) 2 1 ,50 6 o
微 卫 星 ( coa lt) 称 为 简 单 序 列 重 复 Mi stle 又 r ei
第 1 期
一
6 7 一
13 基 因组 D A提 取 . N
同 : 道 123扩 增 的 非 特 异 条 带 多 , 景 弥 散 ; 泳 、, 背 泳 道 4扩增 的条 带 清晰 , 态性好 ; 道 5 增 的条 带 多 泳 扩 明亮 , 多 态性 低 ; 道 6几乎 没有 扩增 出条 带 。所 但 泳
P R e ci y tm e fu cos icu i a A p lme ae D A mpae d T d P i r Re ut T e o t lal C ra t n s s o e i t o rf tr n l dn T q DN oy rs , N t lt , N P a r nh a g e n me . s l s h pi l ma —
n aig tmp r tr s 1 . h pi z t n o 5 e l e au eWa 5 ℃ T e o t a o f S R- C ra t n s s m n l dn a NA p l rs . D m— n e mi i 2 S P R e ci y t i c ig T q D oy a e 1 0 U, NA t o e u me e
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基 金 项 目 : 国 家 自 然 科 学 基 金 项 目 (No. 30760147) , 广 东 省 农 业 攻 关 计 划 项 目 (No. 2005B20901026) , 农 业 科 技 成 果 转 化 资 金 项 目 (No. 2008GB48B06) , 林业科技支撑计划项目 (No. 2006BAD01A1705) , 公益性行业科研专项经费项目 “ 芒果规范栽培及冷藏贮藏技术研究 ” 资助 。 第一作者简介 : 黄丽芳 , 女 , 1985 年生 , 在读硕士研究生 。 研究方向 : 果树分子生物学 。 E-mail : hlf032@ 。 * 通讯作者 , 雷新涛 , E-mail : xtlei@ 。 收稿日期 : 2010-01-13 修回日期 : 2010-02-08
2.2.2
不 同 浓 度 的 dNTPs 对 PCR 反 应 体 系 的 影 响
结果平均值
模板 DNA/ng
由方差分析 可 知 , dNTPs 的 浓 度 是 影 响 芒 果 SSR-PCR 的另一重要因素 。 由图 3 可知 , 在 0.1~0.4 mmol/L 时随
AY942825
(CGG/CCT)
R:CGAATACCATCCAGCAAAA TAC
Taq 酶、 模板 DNA、 引物)进行 5 水平正交实验设计 (表2)。
Taq /U
表 2 SSR 反应体系 L25(56) 正交实验设计
Mg /(mmol/ L) 1.8
dNTPs /(mmol/L) 0.1
Taq /U
31 卷
图 1 金煌 SSR-PCR8%非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳
2 5 14 22 20 12 21 22 23 24 25 4 15 9 10 17
1 3 16 10 10 18
2
表 4 PCR 反应各因素间方差分析
SS MS
DF
F 2.81 5.92 1.98 9.24 2.93
Pr>F
4
224.526 6
表 1 2 对芒果 SSR 引物
,,,,,,,,,,,,,,,,,, ,, ,
,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,
,,,,,,,,,,,,
F: AGA TTTAAAGCTCAAGAAAAA R: AAAGACTAATGTGTTTCCTTC
AY628376
(GA)
F:CGAGGAAGAGGAAGATTATGAC
dNTPs , 影 响 最
小 的 为 Taq 酶 , 见表 4 。
Mg
dNTPs
2.2.1
不同浓度
Taq
的 模 板 DNA 对
DNA
PCR 反 应 体 系 的
影响 模 板 DNA 的浓度变化对实 验结果影响最大 。 由图 1 可知, 模
Error
Corrected Total
板 DNA 在 20 ng (1 、 9 、 12 、 20 、 23 号 处 理 ) 和 40 ng 从 图 2 可 见 , 模 板 DNA 在 20 ~40 ng 时 , 结 果 均 值 递 减 ; 在 40 ~100 ng 时 , 结果 均值是递增 的 。 对 DNA 各 水 平 进 行 因 素 内 多 重 比 较 , 结 果 表 明 , 20 ng 和 40 ng 与其他水平差异极显著 , 60 、 80 ng 与 100 ng 差异不显 著 。 因此 , 选定模板 DNA 的最佳浓度为 80 ng 。
2
结果与分析
按表 2 设计的 25 个处理进行 PCR 反应后 , 获得的产物通过 8% 非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 , 结果见
2.1 PCR 正交实验设计
412
图1。 依照评分标 准, 图 1 各处理 的记分 见 表 3。 2 次重复计分结果 较一致 。
bp 600 500 400 300 200
2.2
正交实验结 将以上处理
果分析 和评分结果 用
SAS V8 进 行 分
析 。 由 F 值可知 , 各因素水平变化 对 PCR 反 应 影 响 的显著性依次为 : 模 板 DNA>dNTPs
1 2 3 4 5
> 引 物 >Mg2 +>Taq
酶 , 即 模 板 DNA 对反应的影响最 大, 其次就是
3期
1.1.2 1.2 1.2.1
主要试剂与仪器 方法
购于大连宝生物工程公司 。 PCR 反应在 Eppendorf TP650 型扩增仪上进行 。 基因组 DNA 的提取
琼 脂 糖 凝 胶 电 泳 检 测 DNA 的 浓 度 和 纯 度 , -20 ℃ 保存备用 。
1.2.2
PCR 的扩增和正交实验设计
关键词 芒果 ; SSR ; 正交设计 ; 体系优化
doi
10.3969/j.issn.1000-2561.2010.03.014 S667.7
中图分类号
芒果 (Mangifera indica Linn. ) 是典型热带水果 , 属于漆树科芒果属 , 原产于亚洲南部热带的印度 , 缅 甸等国家 , 全世界大约有 1 000 多个品种 。 中国已有国内外种质资源 200 份左右 [1], 分布在海南 、 广东 、 广西 、 云南 、 台湾等地 。 芒果果实外观美丽 , 果肉细嫩 、 香甜 , 具有特殊风味和较高的营养价值 , 对于 热带及亚热带地区 , 具有较高的经济效益 [2]。 分子标记是一种快速高效的遗传分析方法 , 已得到广泛的应用 。 RAPD 、 AFLP 、 锚定 SSR 、 ISSR 等 在芒果的分类及遗传多样性分析上均有研究报道 [3-6], Viruel 等 [7]人用 16 对 SSR 引物区别了 28 个芒果品种 的胚性及其地理学上的差异 。 简单重复序列 (Simple sequence repeats , SSR ), 又称微卫星 DNA , 该标记 呈共显性 , 数目多且在基因组中均匀分布 , 多数位点呈选择中性 , 符合孟德尔遗传学理论 , 甚至部分降 解的 DNA 样品也可用 , 结果稳定性好 [8]。 SSR 标记检测的位点多态性水平明显高于 AFLP 标记 , 重复性优 于 RAPD[9], 且 SSR 比 AFLP 操作简便 , 花费较少 , 现已广泛应用于水稻 、 小麦 、 热带牧草 、 玉米等作物 的研究中 [10-13], 然而在果树上的研究相对较少 , 尚未见芒果 SSR-PCR 优化体系的研究报道 , 为此本文利 用正交实验设计方法 , 对影响芒果 SSR-PCR 反应体系中的因素进行了优化 , 建立较为完整可靠的芒果 SS
40
0.5
1.25 1.5
80
0.4
17
2.4
0.2
60
0.1
100 60
0.5
182Leabharlann 40.30.580
0.2
0.75 1
0.4
19
2.4
0.4
0.75 1
100 20
0.3
80
0.5
20
2.4
0.5
0.4
1.25 1.5
100 20
0.1
21
3.0
0.1
1.5
80
0.3
0.2
22
3.0
0.2
0.5
R 反应体系 , 以期为芒果种质资源的进一步研究奠定基础 。
1
1.1
材料与方法
材料 植物材料 小菲芒 、 海豹芒 、 粤西一号芒 、 zill 、 串芒 、 台农一号芒 、 白象牙芒 、 林生芒 、 大龙
1.1.1
芒 、 泰国野生芒 、 矮芒 、 夏茅芒 、 三年芒 、 Keitt 、 Neelum 、 Spooner 、 Mallika 、 紫花芒 、 Banbaroo 、 Irwin 、 热农 2 号芒 、 Kent , 正交实验为金煌芒 。 2008 年定植于中国热带农业科学院南亚热带作物研究所芒果种 质资源圃 , 大田常规管理 。 2009 年 6 月采集芒果的幼嫩叶片 , -20 ℃ 保存备用 。
Á Á Â Ã Ä Á Â ÃÁ Â Ã
黄 丽 芳 等 : 芒 果 SSR-PCR 反 应 体 系 的 优 化
411
β- 巯基乙醇 、 Tris-base 等均购自北京鼎国生物公司 。 TaqDNA 聚合酶 、 dNTPs
利用改良 CTAB 法 , 提取芒果基因组 DNA [14]。 运用核酸蛋白测定仪和 1%
[15]
正交实验所用引物为 AY628376[7], 体系 验 证 引 物 为 AY942825 , 上 海 生 工 生 物工程技术服务有限公司合成, 见表 1。
PCR 扩 增 反 应 初 步 确 定 为 : 94 ℃ 2.5 min ; 94 ℃ 30 s , 50 ℃ 45 s , 72 ℃
恒压 120 V, 电泳 2 h。
DNA/ng 20
/( µmol/L) 0.1
dNTPs / (mmol/L) 0.4
DNA/ng 60
/ (µmol/L) 0.5
0.5
14
0.5
0.2 0.3 0.4 0.5 0.1 0.2 0.3 0.4
0.75 1
40
0.2
15
1.8
0.5
0.75
80
0.1
60
0.3
16
2.4
0.1
1.25 1.5
100 20 60 40
0.4
1.2 1.8 1.8 1.8
0.5 0.1 0.2 0.3
0.5 1 1.25 1.5
40 100 20 40
0.3 0.2 0.3 0.4
23 24 25
3.0 3.0 3.0
0.3 0.4 0.5
0.75 1 1.25