家兔呼吸运动的调节与呼吸机能不全教学内容
最新家兔呼吸运动的调节课件-药学医学精品资料
图5 气管插管术示意图-示固定插管
3/12/2019
（四）分离神经
• 由里向外翻出气管一侧组织——颈动脉鞘：
粗 — 迷走神经 中 — 交感神经
细 — 减压神经
3/12/2019
图6 神经分离示意图
3/12/2019
图7 神经分离示意图-示迷走神经
3/12/2019
（五）连接实验装置
（三）气管插管术 • 手术刀割开皮肤
一手绷紧皮肤， 另一手用力一次性割开皮肤
• 分离气管
用剪刀、镊子分离出气管 除净气管外表的结缔组织等 棉花条清除气管内的淤血、粘液等
3/12/2019
图3 气管插管术示意图
3/12/2019
图4 气管插管术示意图-示气管切口
3/12/2019
3/12/2019
（一）麻醉
• • • 兔耳缘静脉注射：3%戊巴比妥钠 1ml/kg体重； 抽吸麻醉液时先取下针头，多吸一部分；
（1）注射液剂量
（2）进针—注射姿势调整 • • • • 选择耳缘静脉 从远心端开始；左右耳 针头扎进1/3至1/2，并用拇指固定住 注射时推动液体慢一点 — 呼吸急促时可稍停 — 急救。
液，保持气管插管通畅。
• 实验观察中，在刺激开始、撤除时，应做好标记。
3/12/2019
六、结果和目标
• 观察、记录正常呼吸的曲线，了解其特性和规律； • 观察、记录各种影响因素所造成的呼吸曲线的变化。
3/12/2019
七、思考题
• • 分析增加吸入气中CO2浓度对呼吸运动的调节。 分析增加呼吸无效腔，呼吸运动改变的原因。
• BL—420生物机能实验系统、张力换能器。
• 哺乳动物手术器械：兔体手术台、圆头手术镊、手术 剪、手术刀、止血钳、弯剪、气管插管、橡皮管、玻
家兔呼吸运动的调节
[实验对象]
家兔,2~2.5kg,雌雄不拘
[实验器材和药品]
1.器材：兔手术台、哺乳动物手术器械一 套、Y型气管插管。 CO2球胆、盛有钠石 灰的气囊、张力换能器、BL-410实验系统、 水检压计。
2.试剂和药品：25％乌拉坦溶液（氨基甲 酸乙酯溶液） (1g／kg )
[ 实验方法 ]
1.称重
[观察项目]
表1 不同因素对呼吸功能的影响
观察项目
处 理 前 处 理 后 呼吸频率 幅度 胸内负压 呼吸频率 幅度 米水柱
次/分钟
克
毫米水柱
吸入气中CO2浓度增加
吸入气中O2浓度降低 增大无效腔 切断一侧迷走神经 切断双侧迷走神经
刺激一侧迷走神经中枢端
[ 注意事项 ]
1. 张力换能器上的连线松紧要适中，要与 胸廓皮肤垂直。 2. 每次给予一项处理前均要使呼吸运动恢 复平稳。 3. 胸膜腔穿刺时不要插得过深,以免刺破 肺组织.
正确捉拿家兔
2.麻醉并固定
３．颈部正中手术
(1)分离气管,做一“ ”形切口，气管插 管 (2)分离左右两侧迷走神经（穿线备用）
4. 呼吸描记
5.胸内负压的测量(直接法）
在右侧第5肋骨 上缘进针，插入至 有落空感，水检压 计液面有波动。
6.连接电脑
张力换能器 实验项目 BL－410机能实验系统的 第一通道 呼吸实验 呼吸运动调节
[ 实验目的 ]
1.掌握哺乳动物呼吸运动的描记方法。
2.初步分析呼吸运动的调节及其影响因素。
3.学习胸内负压的测量方法。
4.观察胸内负压的存在及其变化对呼吸功能 的影响。
[ 实验原理 ]
1. 呼吸运动(respiratory movement)是呼 吸中枢节律性活动的反映。 2. 呼吸(respiration)的反射性调节：化 学感受性呼吸反射，肺牵张反射 3. 胸膜腔内压(intrapleural pressure) 即胸内负压
机能学实验家兔呼吸运动的调节及其影响因素ppt课件
外周化学感受器
颈动脉体和自动脉体〔调理呼吸和循环〕 PaO2↓、PaCO2 ↑ 或 [H+] ↑：激动经窦神经和迷 走神经传入延髓，反射性地引起呼吸加深加快； 反之 ，呼吸浅慢。
中枢化学感受器
• 延髓腹外侧浅表部位，左右对称，可以分为头、 中、尾三个区，仅头端和尾端区有化学感受性反 射
• 中枢化学感受器不感受缺O2的刺激，但对CO2的 敏感性比外周的强
④ 先结扎一侧迷走N并将其切断 ⑤ 再结扎另一侧迷走N并将其切断 ⑥ 电刺激一侧迷走N中枢端
本卷须知
• 每一项察看要素完成后，都应等动物呼吸 根本恢复正常后再做后续察看要素
结果预测及分析
(1)吸入N2: PaO2↓ 呼吸加深、加快，肺通气添加
(2)吸入CO2 : PaCO2↑ 呼吸加深加快，肺通气量添加
家兔呼吸运动的调理及其影响要素
实验报告
• 实验标题 • 实验目的 • 实验对象 • 实验步骤与察看工程 • 实验结果 • 实验讨论 • 实验结论
呼吸
呼吸：机体与外界环境之间的气体交换过程
机体经过肺通气实现外界空气与肺之间的气 体交换，完成这一交换的原动力是呼吸运 动。
呼吸运动的调理主要是经过化学感受性呼吸 反射、肺牵张反射等来调理
气管旁血管〕，在其下穿一线备用。 9. 两侧迷走N分别：穿2根线备用
⑥插管
⑦衔接BL-420生物信息采集与处置系统，翻开“呼吸 实验〞内模块，监测正常呼吸曲线。
察看工程
① 吸入N2: PiO2↓, PaO2 ↓ ② 吸入CO2 : PaCO2↑ ③ 添加无效腔：长约0.5m橡皮管连于气管
插管的一个侧管上，用止血钳夹闭另一侧 管， 使无效腔添加
(3)增大无效腔
PaCO2↑+ PaO2↓ 呼吸加深、加快，肺通气添加
实验26 呼吸运动的调节以及呼吸功能不全和实验性肺水肿
实验26 呼吸运动的调节以及呼吸功能不全
和实验性肺水肿
一、实验目的
1.观察体内外有关因素的改变对呼吸运动的影响。
复制不同病因引起的呼吸功能不全模型，分析其发生机制。
复制实验性肺水肿模型，观察急性肺水肿的表现并探讨其发生机制和治疗方案。
二、实验原理
机体内外的各种刺激，包括神经因素或理化因素通过直接作用于呼吸中枢和（或）外周感受器，反射性影响呼吸运动，肺牵张反射以及血液中的O2使分压、CO2分压、H+浓度改变，均可以通过不同途径是呼吸运动产生反射性调节。
从而保证血液中气体分压的相对稳定。
呼吸功能不全的失代偿期也称呼吸衰竭，是由于肺通气或换气功能严重受损，致使动脉血氧分压低于60mmHg，同时伴有或不伴有PaCO2大于50mmHg的临床综合征。
根据血气分析分别称为Ⅰ型呼衰和Ⅱ型呼衰。
三、实验材料
1.实验动物家兔（体重2kg以上）。
四、实验步骤
五、实验结果
六、讨论
七、思考题。
家兔呼吸功能不全及治疗
实验三家兔呼吸功能不全及治疗一、实验目的1．观察血液中化学因素（PCO2、PO2、H+）的改变对家兔呼吸运动（频率、节律、幅度）的影响，探讨其作用机制。
2.通过造成动物窒息、气胸和肺水肿，以复制通气功能障碍、气体弥散障碍及肺泡通气与血流比例失调所引起的Ⅰ型或Ⅱ型呼吸功能不全模型。
3.借助于血气指标分析判断窒息、气胸及肺水肿所引起的呼吸功能不全的类型，分析不同的情况下的治疗方法。
二、实验动物药品及器材家兔，体重2.0-2.5kg，性别不拘。
三、实验药品及器材药品：20%乌拉坦，1%普鲁卡因，125U/ml肝素溶液，0.5%肝素，油酸器材：手术器械，注射器（1ml、5ml、10ml、20ml），动脉导管，压力换能器，Y型玻璃气管插管，HX200型呼吸流量换能器，RM6240多道生物信号采集处理系统，头皮针，动脉夹，兔手术台，听诊器，血气分析仪四、实验方法1.抓取成年家兔一只，称重（2.009kg），于耳缘静脉缓慢注入20%乌拉坦10ml （0.5ml/100g*2.009kg=10.045ml)，作全身麻醉。
家兔未完全麻醉，后补注4ml 乌拉坦，2min后家兔耳朵下垂，角膜反射明显消失，四肢瘫软，止血钳夹紧无疼痛反射,视为麻醉完全。
用棉绳将家兔仰卧位固定在手术台上。
2.将呼吸换能器固定在铁支架上，输出线连接生物信号采集系统的通道。
将压力换能器固定于铁架上，其位置应与仰卧家兔心脏在同一平面，输出线连接生物信号采集系统。
在电脑的软件系统中找到呼吸运动及心电图记录，调节仪器参数。
3.经耳缘静脉注射125U/ml肝素3ml进行全身肝素化。
4．剪去颈前部兔毛，喉头部正中切开皮肤，逐层钝性分离家兔颈前组织，暴露气管及颈总动脉。
用止血钳分离气管，在气管下穿两根结扎线备用。
皮下注射局麻药0.8ml。
动脉插管用细线结扎远心端，做颈动脉插管，结扎固定导管，推注少许肝素以防凝血，接上三通管记录血压。
气管插管剥离气管表面毛细血管，在环状软骨下1cm处做倒T型剪口，用棉签将气管切口及气管里的血液和分泌物擦净，气管插管由剪口处向肺部插入。
机能实验家兔呼吸运动的调节实验报告
机能实验家兔呼吸运动的调节实验报告一、实验目的1、学习和掌握哺乳动物呼吸运动的记录方法。
2、观察并分析各种因素对呼吸运动的影响。
二、实验原理呼吸运动是呼吸肌节律性收缩和舒张的结果，呼吸肌的活动受神经和体液因素的调节。
肺牵张反射、化学感受性反射等在呼吸运动的调节中起着重要作用。
通过改变外界条件，如增加或减少二氧化碳浓度、缺氧、增大无效腔、注射药物等，可以观察到呼吸运动的相应变化。
三、实验材料1、实验动物：健康家兔 1 只，体重 20 25kg。
2、实验器材：BL-420 生物机能实验系统、呼吸换能器、哺乳动物手术器械一套、气管插管、50cm 长橡皮管、20ml 和 5ml 注射器、5%CO₂气囊、钠石灰瓶、装有空气的气囊、20%乌拉坦溶液。
四、实验步骤1、麻醉与固定称取家兔体重，按 5ml/kg 的剂量于耳缘静脉缓慢注射 20%乌拉坦溶液进行麻醉。
将麻醉后的家兔仰卧位固定于手术台上。
2、手术操作剪去颈部手术部位的被毛，作颈部正中切口，分离气管并插入气管插管。
分离出两侧迷走神经，穿线备用。
3、仪器连接将呼吸换能器与 BL-420 生物机能实验系统相连，通过气管插管与家兔相连，记录呼吸运动曲线。
4、观察项目正常呼吸曲线：观察并记录家兔在正常状态下的呼吸运动曲线。
增加吸入气中二氧化碳浓度：将 5%CO₂气囊与气管插管的侧管相连，使家兔吸入含较高浓度二氧化碳的气体，观察呼吸运动的变化。
缺氧：将装有空气的气囊换成装有氮气的气囊，使家兔吸入氮气造成缺氧，观察呼吸运动的变化。
增大无效腔：将 50cm 长橡皮管连接在气管插管的侧管上，增加无效腔，观察呼吸运动的变化。
切断一侧迷走神经：在保持呼吸平稳后，结扎并切断一侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
切断双侧迷走神经：在切断一侧迷走神经呼吸平稳后，结扎并切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
五、实验结果1、正常呼吸曲线家兔在正常状态下，呼吸运动平稳，呈现一定的节律性。
2、增加吸入气中二氧化碳浓度当家兔吸入含较高浓度二氧化碳的气体后，呼吸运动明显加深加快。
家兔呼吸运动调节解读
家兔呼吸运动调节解读家兔呼吸运动的调节实验目的：1.用气管插管描记呼吸流量间接反映家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的方法，研究吸入二氧化碳、静脉注射乳酸溶液、增大解剖无效腔以改变血液中二氧化碳浓度、氧气浓度、[H+]和气道阻力、切断颈部迷走神经、电刺激迷走神经中枢端对呼吸运动的影响并初步探讨其作用部位，并分析机制。
2.掌握气管插管术和神经血管分离术。
实验材料：对象：家兔；试剂：20g/L 乳酸溶液，氨基甲酸乙酯；仪器：RM6240生物信号采集系统，手术器械一套，兔手术台，T 型气管插管，注射器，50cm长橡皮管一条，CO2气袋，丝线，铁架台，婴儿秤，呼吸换能器，电刺激连线。
实验方法：1.麻醉固定：家兔称重后，将氨基甲酸乙酯以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入，注意观察家兔的反应。
待麻醉后，将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头。
2．手术：剪去家兔颈部的被毛，沿颈部正中线作一长6～7cm的切口，用止血钳钝性分离皮下组织，暴露并游离气管，并于气管下穿线备用。
在气管两侧肌肉深面颈动脉鞘内分离迷走神经，并在其下穿线备用。
在甲状软骨下第4～5个气管软骨处作一“⊥”形切口。
将T 型气管插管向肺的方向插入气管内，用预留备用线线结扎固定。
手术完毕后用纸巾擦拭手术伤口部位。
3．观察准备：用皮管连接气管插管和呼吸换能器。
打开呼吸换能器，启动计算机RM6240生物信号采集系统，点击“实验”菜单，选择“呼吸运动调节”，双击一通道，调节增益、采样参数，使基线归零，令图形位于屏幕中央，便于观察。
4．观察项目（1）记录正常呼吸曲线作为对照，辨认曲线上呼气、吸气的波形方向。
（2）在气管插管一个侧管上接一根长50cm胶管（流量法：接通气口），观察和记录呼吸运动的变化。
（3）增加吸入气中CO2浓度：待呼吸曲线恢复正常，将装有CO2气袋的皮管口移近气管插管的侧管，打开皮管夹子，使吸入气中含有较多的CO2。
记录并观察吸入高浓度的CO2对呼吸运动的影响。
兔呼吸运动的调节讲稿
兔呼吸运动的调节讲稿兔呼吸运动的调节观看本次实验内容模拟实验，示范操作过程。
介绍和强调注意事项，特别是麻醉和静脉注射时的注意事项。
介绍MedLab生物信号采集处理系统的使用。
实验目的观察各种因素对呼吸运动的影响,结合理论,分析其作运用途径,了解呼吸运动的调节机制。
实验原理呼吸运动是一种节律性活动,其深度和频率能随机体活动水平而改变.正常情况下的节律性活动是呼吸中枢节律性活动的反映,肺牵张反射是保证呼吸节律的机制之一。
随生理状态的不同,其呼吸所发生的适应性变化,是由于各种剌激直接作用于呼吸中枢,或间接地通过各种化学感受器而引起.最终由呼吸中枢通过支配呼吸肌的传出神经,引起呼吸肌产生不同水平的收缩,使呼吸运动随之而改变,以维持血液中正常的O2和CO2的含量。
实验对象家兔,雌雄不拘。
实验器材和药品见《机能实验学》114页。
实验步骤1、动物麻醉与固定:以3%戍巴比妥钠(剂量为每公斤体重1m1)为麻醉剂.由兔耳缘静脉缓慢注入，待兔麻醉后,腹部朝上固定于手术台上。
2、手术沿兔颈部正中切4-5cm长的切口，用止血钳向下钝性分离,暴露气管,把甲状软骨以下的气管与周围组织分离。
在气管上做一倒“T“形切口,然后插入"Y"形气管套管,并用棉线将气管套管结扎固定。
分离出两侧迷走神经,在神经下穿一细丝备用.手术完毕后,用温热的生理盐水纱布盖于伤口。
3、固定呼吸换能器。
4、启动MedLab生物信号采集处理系统,点击菜单“实验/常用生理学实验”，选择“呼吸运动的调节”，调用己设置好仪器参数的文件，开始采样观察。
5.观察项目首先观察正常呼吸曲线。
(l)增加吸入气中的C02浓度:将装有C02的球胆通过一细塑料管插入气管套管一侧管中.打开球胆的夹子.使一部分C02随着吸气进入气管注意，一旦呼吸有所变化应迅速停止CO2的吸入,吸入过量的CO2会造成兔的死亡。
观察吸入高浓度的C02对呼吸运动的影响,及去掉CO2球胆后呼吸运动的恢复过程.(2)缺02对呼吸运动的影响:将气管插管一侧管通过钠石灰瓶与盛在一定容量空气的气囊相连，另一侧管夹闭;使兔在-段时间内只能吸入气囊中的空气.此时,动物呼出CO2可被瓶内的钠石灰吸收.随着呼吸的进行,气囊中的02越来越少,使兔处于缺02的状况后,再观察呼吸运动的变化.(3)血液酸碱度对呼吸运动的影响:用5m1注射器,由耳缘静脉注入3%的乳酸溶液2m1,使血液的pH值降低后,观察呼吸运动的变化.(4)增大无效腔后对呼吸运动的影响:将气管套管开口端连接一长约50cm的橡皮管,使无效腔增大后,观察对呼吸运动的影响。
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实验目的
通过本实验过程，学习和掌握用微机化生物信 号采集处理系统记录家兔呼吸运动的方法。观察健 康家兔的呼吸运动及各种刺激因素对呼吸运动的影 响。掌握机体正常呼吸运动的规律和调节机制。
实验步骤
1 固定与麻醉
：保持家兔颈部舒展、端正，沿中线剪去颈
实验步骤
3 连接呼吸和血压记录装置，设置并运行操作系统软件；
气管插管一分 叉连接呼吸换 能器
动脉插管连接 血压换能器
实验步骤
4 呼吸运动的影响因素观察： （1）记录正常a呼吸曲线、b循环曲线，观察c全身 状况，e做窦反射；
（2）经气管插管开放的分支给家兔吸入少量二氧 化碳气体，观察呼吸运动的变化；
呼吸 频率 幅度
心率 血压
窦反射
血气分析 PaO2 PaCO2 pH
全身情况
讨论
1 结合实验结果的描述和列表比较，分析实验现象 的机制；
2 分析实验成功失败的经验教训。
此课件下载可自行编辑修改，仅供参考！ 感谢您的支持，我们努力做得更好！谢谢
U形水检压计
穿刺针
T形玻璃三通管
兔气胸实验主要器材
实验结果
1 先保存微机中记录的全部实验数据，再对图形数据 进行编辑、重构，输出重构的曲线、保存并打印。
2 将上述实验结果合并填入下表1。
表1 家兔通气功能障碍实验结果
处理因素
正常 夹闭 1/3 夹闭 2/3
恢复 注入少量空气
注更多空气 抽气 全夹闭
实验步骤
5 阻塞性通气不足项目观察：
（1）夹闭通气胶管出口的１／３； （2）记录呼吸曲线、循环曲线，观察全身状况，
做窦反射； （3）夹闭通气胶管出口的２／３；
（4）重复上面的（2）操作
（5）恢复气道通畅，待家兔正常；
实验步骤
6 限制性通气不足项目观察： （1）于兔右侧锁骨中线第４、５肋间的肋骨上缘 进行胸腔穿刺,侧胸内压（穿刺成功的标志见下图）； （2）向胸腔注射５０ml空气,侧胸内压；
实验中，对家兔每进行一次处理，都要注意在显
2
示屏的通道中同步将处理因素的名称标记在运行 中的曲线上，以便于实验效应的观察、比较及数 据处理等；
注意事项
3 在胸腔穿刺和测定胸内压时，别忘记先将T形玻 璃三通管与大气相通分支开口处的橡皮管夹闭， 以免提前造成家兔气胸；而在由该开口处向胸腔 内注气前则应先夹闭三通管与水检压计间的连接管， 以免将检压计管中的水驱出管外（见下图）。
部腹面正中皮肤上的毛，以3～5mL的1%普鲁卡因 在颈部腹面沿中线皮下进行局部麻醉，麻醉药用 量按切口长度1mL/cm；
实验步骤
2 手术 （1）分离气管，在气管下方留置一根扎底线。
（2）暴露和分离两侧颈总动脉，一侧做动脉插管（详 见后面示意图），另侧下方放置一根丝线备用；
（3） 进行气管插管术：
动脉插管手法示意
（3）记录呼吸曲线、循环曲线，观察全身状况， 做窦反射；
（4）向胸腔注射１００～１５０ml空气侧胸内压；
（5）重复上面的操作(3) ；
（6）抽气抢救，侧胸内压、待家兔正常重复4-(1) ；
穿刺成功的标志
可见水检压计胸腔侧 玻管中液平面抬高并 随家兔呼吸上下波动
注意事项
1 胸腔穿刺术前注意先检查胸腔穿刺针确保针 头和管路通畅、不漏气；
（3）停止释放二氧化碳气体，待家兔呼吸恢复正常
实验步骤
4 呼吸运动的影响因素观察：
（4）经气管插管开放的分支给家兔吸入低氧分压的 气体，观察其呼吸运动的变化；
（5）停止吸低氧分压气体，待家兔呼吸恢复正常；
（6）延长气管插管分支的长度、增加无效腔，观察 其呼吸运动的变化；恢复
（7）恢复气管插管分支正常长度，等待其呼吸运动 的恢复；