植物根系活力测定
植物根系的测定实验报告
一、实验目的1. 了解植物根系的基本结构和功能。
2. 掌握植物根系活力的测定方法。
3. 分析不同环境因素对植物根系活力的影响。
二、实验原理植物根系是植物的重要组成部分，其主要功能是吸收水分和养分，固定植物体，同时还有合成和运输营养物质的作用。
植物根系活力是指根系对外界环境变化的适应能力和吸收、合成、运输等功能的表现。
本实验采用氯化三苯基四氮唑（TTC）法测定植物根系活力，通过观察根系在TTC溶液中的还原反应，来评估根系的活力。
三、实验材料与方法1. 实验材料：小麦、玉米、大豆种子；TTC溶液；蒸馏水；培养皿；剪刀；镊子；电子天平；显微镜等。
2. 实验方法：（1）种子萌发：将小麦、玉米、大豆种子分别浸泡在蒸馏水中，置于培养皿中，保持适宜的温度和湿度，待种子萌发。
（2）根系活力测定：将萌发的植物幼苗取出，用剪刀剪去地上部分，用蒸馏水清洗根系，去除泥土。
（3）TTC染色：将清洗干净的根系浸泡在TTC溶液中，置于黑暗处，恒温培养箱中培养24小时。
（4）根系活力测定：将染色后的根系取出，用蒸馏水清洗，去除多余的TTC溶液。
（5）显微镜观察：将清洗干净的根系置于显微镜下，观察根系活力。
四、实验结果与分析1. 小麦根系活力测定结果：小麦根系在TTC溶液中染色后，呈现出明显的红色，说明小麦根系具有较强的活力。
2. 玉米根系活力测定结果：玉米根系在TTC溶液中染色后，呈现出淡红色，说明玉米根系活力较弱。
3. 大豆根系活力测定结果：大豆根系在TTC溶液中染色后，呈现出暗红色，说明大豆根系活力较强。
4. 不同环境因素对根系活力的影响：通过比较不同处理条件下植物根系活力，发现低温、干旱等逆境条件下，植物根系活力明显降低，说明植物根系对环境变化具有一定的适应性。
五、实验结论1. 植物根系活力是植物对外界环境变化适应能力的重要体现。
2. 小麦、大豆根系活力较强，玉米根系活力较弱。
3. 植物根系对低温、干旱等逆境具有一定的适应性。
根活力测试实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解根活力测试的基本原理和方法。
2. 通过实验，掌握根活力测试的操作步骤和数据处理方法。
3. 分析不同处理条件下根活力的变化，为植物生长发育提供理论依据。
二、实验原理根活力是指植物根系对营养物质、水分和氧气等环境因素的吸收、转运和利用能力。
根活力测试是研究植物根系生理生态的重要手段之一。
常用的根活力测试方法有电导率法、过氧化氢酶活性法、丙二醛含量法等。
本实验采用电导率法测定根活力。
电导率法测定根活力的原理是：在一定条件下，植物根系在逆境条件下（如缺氧、干旱、盐害等）产生的电解质增多，导致根系细胞膜透性增加，电解质外渗，从而降低根系的电导率。
通过测定根系在逆境条件下的电导率变化，可以反映根活力的大小。
三、实验材料与方法1. 实验材料：小麦（Triticum aestivum L.）幼苗、蒸馏水、NaCl溶液、pH试纸、电导率仪等。
2. 实验方法：（1）选取生长状况良好、长势相近的小麦幼苗，随机分为对照组和实验组。
（2）对照组：将幼苗置于正常生长条件下培养。
实验组：将幼苗分别置于不同逆境条件下培养，包括干旱、盐害、缺氧等。
（3）培养一段时间后，取幼苗根系，分别用蒸馏水和NaCl溶液冲洗，去除根系表面污物。
（4）将根系放入电导率仪中，测定根系在蒸馏水和NaCl溶液中的电导率。
（5）计算根活力指数：根活力指数 = 根系在NaCl溶液中的电导率 / 根系在蒸馏水中的电导率。
四、实验结果与分析1. 对照组根活力指数为100%，说明根系在正常生长条件下具有较好的活力。
2. 实验组在不同逆境条件下，根活力指数有所下降，具体如下：（1）干旱条件下：根活力指数为75%，说明干旱对小麦根系活力有显著影响。
（2）盐害条件下：根活力指数为60%，说明盐害对小麦根系活力有显著影响。
（3）缺氧条件下：根活力指数为50%，说明缺氧对小麦根系活力有显著影响。
五、结论1. 根活力测试是一种有效的研究植物根系生理生态的方法。
植物根系活力的测定
实验三植物根系活力的测定——TTC法植物根系是活跃的吸收器官和合成器官，跟的生长情况的活力水平直接影响地上部分的生长和营养状况及产量水平。
本实验练习测定根系活力的方法，为植物营养研究提供依据一、原理：氧化三苯基四氮唑（TTC）是标准氧化电位为80mV的氧化还原色素，溶于水中成为无色溶液，但还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲腙，生成的三苯甲腙比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，所以TTC被广泛地用作酶试验的氢受体，植物根系中脱氢酶所引起的TTC还原，可因加入琥珀酸，延胡索酸，苹果酸得到加强，而被丙二酸、碘乙酸所抑制。
所以TTC还原量能表示脱氢酶活性并作为根系活力的指标。
二、植物材料、仪器设备及试剂配制：（一）植物材料：完全液和铅溶液培养的黄瓜苗根系（二）仪器设备：电子天平、生化培养箱、分光光度计、剪刀、镊子、10mL离心管、10mL具塞刻度试管、研钵、漏斗、移液管或移液枪、滴管、小烧杯、玻璃棒等。
（三）配置试剂：1、乙酸乙酯（分析纯）2、次硫酸钠（Na2S2O4）3、1%TTC溶液：标准称TTC1.00g，溶于少量去离子水中，定容到100mL，用时稀释。
4、硫酸缓冲液（1/15mol/L，pH7）5、1mol/L硫酸：量取比重1.84的浓硫酸55mL，边搅拌边加入盛有500mL去离子水的烧杯中，冷却后稀释至1000mL三、实验步骤：1.TTC标准曲线的制作：取0.4%TTC溶液0.2mL放入10mL量瓶中，加少许Na2S2O4 粉末摇匀后立即产生红色的甲月替，再用乙酸乙酯定容至刻度，摇匀。
然后分别取此液0.25mL、0.50mL、1.00mL、1.50mL、2.00mL置于10mL刻度试管中，用乙酸乙酯定容至刻度，即得到甲月替25μg、50μg、100μg、150μg、200μg的标准比色系列，以空白作参比，在485nm波长下测定吸光度，绘制标准曲线。
2.称取新鲜根尖0.5g，放入10mL离心管中，加入0.4%TTC溶液和磷酸缓冲液的等量混合液5mL，把根充分浸没在溶液内，在37℃下暗保温1h，此后加入1mol/L硫酸1ml，以终止反应。
测定植物根系活力的方法
测定植物根系活力的方法植物根系活力是指植物根系吸收、传导和利用水分、营养物质以及对土壤环境进行适应的能力。
根系活力的测定可以帮助我们了解植物生长发育和适应能力的情况，同时指导我们合理地进行植被管理和栽培。
以下是测定植物根系活力的几种方法：1. 简易Auslander土柱法。
如其名，Auslander土柱法是一种方法简单、不需高级设备的测定植物根系活力的方法。
该方法主要是通过植物根系对土壤环境的响应，来判断根系活力的强弱。
具体操作方法为：将要测定的植株的根系在浇透水的土壤内生长2-4天，之后将其整株拔起，然后根据根系的发育程度、数量、长度等来评估根系活力的强弱。
该方法简单易行，操作简便，但其缺点在可能存在误判的可能性。
2.根系形态分析法。
根系形态分析法是通过对植物根系形态结构的观察，来判断其根系活力的强弱。
该方法适合于观测植物在不同环境下的根系结构变化，比如不同土壤类型、水分营养等而导致的根系形态上的适应性变化。
具体测定内容为：利用根系分叉角度、根毛数量、根长、分散程度等指标来评估根系活力的强弱。
该方法操作简便，可以直观地观察植物根系的形态变化。
3. 马琦森氏（Markson）芽生长理论测定法。
马琦森氏芽生长理论测定法是一种直接测定植物根系活力的方法，与前面两种方法略有不同。
该方法的基本理论是当植物叶和根的生长速度趋于相等时，表明根系的活力非常强。
为测量生长速度，该方法首先需要在芽顶茎部投射一个小光斑，之后再测量芽生长长度的变化。
与前面两种方法相比，马琦森氏芽生长理论测定法操作难度较大，但它可以直接反映出植物根系的生长速度。
4.直接收获法。
直接收获法可以理解为野外调查法。
该方法不针对单一植物进行定量测定，而是利用长期收获和观察的数据分析出根系生长的数量、长度和生长速度。
根第一原则：土壤性质的差异和分布引起根的差异在根领域尤为明显。
如草地表土CO_2分压的变化，山间度坡对气温、风速、光照和土壤水分的影响均可引起根的各种变化。
名词解释根系活力的测定
名词解释根系活力的测定标题：名词解释：根系活力的测定导语：根系活力是植物生长的关键指标之一，它反映了植物根部的生命力和适应环境的能力。
本文将探讨如何测定根系活力，并分析其重要性。
一、根系活力的概念与重要性根系活力指的是植物根系的生物学活力程度，既包括根长、侧根数量等形态指标，也包括吸水、吸收养分、抗逆性等功能指标。
根系活力的测定对于解析植物的营养吸收能力、适应环境能力以及预测植物的生长状况具有重要意义。
二、根系活力的测定方法1. 根长测定法：此方法适用于观察植物根系的生长状况。
首先，选取具有代表性的试验对象，将其根系取出并轻轻清洗。
然后，使用根尖沙盘或扫描仪等设备对根系进行测量与记录。
最后，根据测量结果计算得到根长指数等数据，以反映根系活力。
2. 根系求和测定法：此方法适用于评估植物根系的总体生物学活力。
通过取样调查，将所得的根系数量与长度之和作为根系活力的测定指标。
这种方法虽然操作简便，但在抵抗病虫害等因素时存在较大的不确定性。
3. 根系吸水性测定法：此方法重点关注植物根系的吸水能力。
通过给根系提供含有不同浓度的水溶液，测定吸收水分的速度，从而评估根系的吸水性能。
这种方法可以为灌溉和肥料施用提供依据，但过程较为复杂，需要充分的实验设计和仪器设备。
三、根系活力测定的意义和应用1. 营养管理与调控：根系活力的测定可以帮助农民和园艺爱好者了解植物对营养元素和肥料的吸收利用情况，进而优化肥料施用方案，提高养分利用效率。
2. 抗逆性评估：根系活力测定可以反映植物对环境逆境（如缺水、高温、盐碱等）的耐受能力。
通过对不同品种或不同处理下植物根系活力的比较，可以评估植物的抗逆性，为育种和遗传改良提供重要参考。
3. 土壤改良与植被修复：根系活力的测定是评估土壤质量和植被修复效果的重要手段。
通过测定植物根系的长度、数量和吸水能力等指标，可以间接评估土壤的肥力、水分与气候适应能力，为土壤改良和植被修复提供指导。
四、根系活力测定方法的局限性和发展方向在根系活力测定方法中存在一些局限性，如测量误差、仪器设备成本高、操作繁琐等。
植物根系活力的测定
2. Evans blue stranining（伊文思蓝）
是一种检测活细胞的染料。其原理在于Evans blue不能透 过健康细胞的完整细胞膜，但当细胞死亡时能够渗入破损 细胞膜染色
图2 不同伤根处理后根尖Evans blue 染色图 Fig2 The cell viability test determined by Evans blue staining in roots tips
定量测定：6ml 95％乙醇，盖上盖子，于热水浴中提 取5min。冷却定容至10ml，于600nm处测定吸光值。 计算根系相对活力（可不做）。
3. -萘胺法
A、B两组分别称取0.30g根段放入15ml试管（标号为A、 B），加入40ppm -萘胺和磷酸缓冲液的等量混合液
10ml，在25ºC反应1-2hr。
实验11 TTC、萘胺法及 Evans-blue染色法比较测
定植物的根系活力
【前言】
植物根系是水分和矿质营养的主要吸收器官，也 是多种物质（如氨基酸、植物激素、生物碱等） 的同化、转化或合成的重要器官，因此，根系的 生长发育状况和根系的活力强弱将直接影响植物 的生命活动，根系活力是植物生长的重要生理指 标之一。
A、B两组分别称取0.30g根段放入15ml试管（标号为 TA、TB），在试管中加入去离子水至10ml，再分别 加入3ml 0.6％TTC，混匀，在37ºC水浴中反应1hr。
加入0.5ml 2M H2SO4终止反应，然后排干试管中溶液， 用纯水充分冲洗，加入6ml 95％乙醇，盖上盖子，于 热水浴中提取5min。
对氨基苯磺酸+ 2H+ +NO2- + -萘胺 → 对-苯磺酸-
偶氮--萘胺
根系活力测定实验报告
根系活力测定实验报告根系活力测定实验报告引言：植物是地球上最为重要的生物之一，其根系是植物生长发育的基础。
根系的健康与否直接影响着植物的生长和产量。
因此，了解根系的活力对于研究植物生长机理和提高农作物产量具有重要意义。
本实验旨在通过测定根系活力的方法，探究不同因素对根系活力的影响。
实验材料与方法：实验材料：小麦种子、滤纸、无水乙醇、甲醇、硝酸钠等。
实验步骤：1. 将小麦种子清洗干净，用无水乙醇浸泡15分钟，以去除种子表面的杂质。
2. 取一张滤纸，用无菌针将其刺破，然后将种子均匀地分布在滤纸上。
3. 将滤纸卷起，放入已加入甲醇和硝酸钠的试管中，加热至沸腾。
4. 取出滤纸，用去离子水冲洗干净，然后用无菌针将其刺破。
5. 将滤纸放入含有无菌培养基的培养皿中，放入恒温培养箱中，以28℃恒温培养。
6. 观察根系的生长情况，并记录。
实验结果与讨论：经过一段时间的培养，我们观察到小麦种子的根系开始生长。
根系的生长情况与根系活力密切相关。
在本实验中，我们采用了甲醇和硝酸钠的处理方式，这是因为甲醇和硝酸钠可以提供植物生长所需的营养物质，并刺激根系的生长。
实验结果显示，经过甲醇和硝酸钠处理的小麦种子的根系生长速度较快，根系活力较高。
根系活力的测定方法有很多种，除了本实验中采用的方法外，还有其他的测定方法。
例如，可以通过测定根系的呼吸速率来评估根系的活力。
根系的呼吸速率是指根系在单位时间内消耗的氧气量或释放的二氧化碳量。
根系的呼吸速率越高，说明根系的活力越强。
此外，根系的形态特征也可以反映根系的活力。
例如，根系的长度、分支数、根毛的密度等都可以用来评估根系的活力。
根系越发达、分支越多、根毛越密集，说明根系的活力越高。
根系活力的测定对于研究植物的生长发育机制具有重要意义。
通过了解根系活力的变化规律，可以揭示植物对环境变化的适应机制，为改良农作物品种、提高农作物产量提供理论依据。
此外，根系活力的测定还可以用于评估土壤质量和环境污染程度，为土壤修复和环境保护提供参考。
实验-植物根系活力的测定
实验-植物根系活力的测定
植物根系活力是指植物根系在土壤中生长、吸收水分和养分的能力。
测定植物根系活力的方法有很多种，其中常用的方法是测定根长、根数和根重等指标。
下面介绍一种简单的测定植物根系活力的实验方法。
实验目的：
测定不同植物对不同营养液的根系生长情况，比较不同营养液对根系生长的影响。
实验器材：
1. 玻璃培养皿
2. 密闭袋
3. 印度蓝溶液
4. 双面胶带
5. 不同营养液：蔗糖水、盐水、橙汁、矿泉水等。
实验步骤：
1. 将玻璃培养皿控制在 3~7 cm，用双面胶带将玻璃培养皿固定于橙汁、矿泉水、蔗糖水、盐水等不同营养液中。
2. 取几株同龄、同质、同株的植物。
去掉表皮组织，并将植物的根部放入玻璃培养皿里。
3. 将培养皿置于密闭袋内，保证环境温度、光线和空气湿度的一致性。
4. 每天提取一些根系，用印度蓝溶液染色。
将所有染蓝的根系取出，用银砂纸将植物根系的颜色刮干净，然后用千分尺测量根长或者称重等。
实验注意事项：
1. 保持密闭袋的气密性，注意通风、换氧。
2. 保持营养液的稳定性，避免出现水质的变化。
实验结论：
从实验结果来看，不同营养液对植物根系的生长效果不尽相同。
因此，植物的根系发育和生长需要各种不同的营养元素。
营养液中各种无机盐和有机化合物含量的不同，可能会影响植物根系的生长效果。
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实验三植物根系活力测定
植物根系的作用主要有:(1)对地上部分支持和固定(2)物质的贮藏(3)对水分和无机盐类的吸收(4)合成氨基酸、激素等物质。
因此，根系活力是植物生长的重要生理指标之一,其测定方法主要有a-萘胺氧化法和氯化三苯基四氮唑(TTC)法。
实验目的：了解根系活力的生理意义；掌握a-萘胺氧化法,测定根系活力的原理与方法;
实验原理：植物的根系可通过过氧化物酶氧化吸附在根表面的a-萘胺，生
成红色的α-羟基-1-萘胺，沉淀于有强氧化力的根表面，使这部分根染成红色，
该反应如右图。
根对α-萘胺的氧化力与其呼吸强度有密切关系。
据认为α-萘胺
氧化过程是在过氧化物酶的催化下进行的，该酶的活力愈强，对α-萘胺的氧化力
就愈强，染色也就越深。
所以可根据染色深浅半定量地判断根系活力大小。
如需对根活力进行定量测定，可根据α-萘胺溶液与根系接触一定时间后，α-
萘胺的减少量来确定。
Α-萘胺在酸性环境中与对氨基苯磺酸和亚硝酸盐作用生成红
色的偶氮染料,可用比色法测定α-萘胺含量，其反应如图。
在520nm波长处测定所
生成的染料的吸光度值，即可求出a-萘胺的含量。
求出与根接触前后a-萘胺的含
量，就可以求出根系对a-萘胺的氧化活力，从而测定出植物根系的氧化活力大小。
实验内容：
1.定性观察（不做）
从田间挖取水稻植株，用水冲洗根部所附着的泥土，洗净后再用滤纸吸去附在水稻根上的水分。
然后将植株根系浸人盛有25 μg/mL的a-萘胺溶液
的容器中,容器外用黑纸包裹,静置24~36 h后观察水稻根系着色状况。
着色深者，其根系活力越大。
2.定量测定
(1)a-萘胺的氧化
挖出水稻植株，并用水洗净根系上的泥土，剪下它的根系，再用水洗，待洗净后用滤纸吸去根表面的水分，称2 g根放在100 ml三角烧瓶中。
然后加50 μg/ml的a-萘胺溶液与PBS(pH 7.0)等量混合液50 ml，轻轻振荡，并用玻璃棒将根全部浸入溶液中，静置10分钟，吸取2 ml溶液，测定α-萘胺含量[测定方法见下面(2)]，作为试验开始时的数值。
再将三角烧瓶加塞，放在25℃恒温箱中，经一定时间后（10min），再进行测定。
另外，还要用一只三角烧瓶置同样数量的溶液，但不放根，作为α-萘胺自动氧化的空白，也同样测定，求它自动氧化量的数值。
(2)a-萘胺含量的测定
吸取2 ml溶液，加入约10 ml蒸馏水，再在其中加入1%对氨基苯磺酸溶液1 ml和NaNO2溶液1 ml，在室温中放置5分钟，待混合液变成红色，再用蒸馏水定容到25 ml。
在20~60分钟内510nm处比色，读取吸光度，查对标准曲线得相应的α-萘胺浓度。
从实验开始10min时的数值减去自动氧化的数值，即为溶液中所有a-萘胺的量。
被氧化的a-萘胺的量以ug/(g.h)表示。
(3)绘制α-萘胺标准曲线
以浓度为50 μg/mL的a-萘胺溶液为母液。
配制浓度为50、45、40、35 、30、25、20、15、10、5 μg/mL的系列溶液，各取2 mL放入试管中，加蒸馏水10 mL，1%对氨基苯磺酸溶液1mL和亚硝酸钠溶液1mL,室温放置5min 待混合液变成红色，再用去离子水定容到25 mL。
在20~60 min内510 nm处比色，读取OD。
然后以OD值作为纵坐标，a-萘胺含量为横坐标，绘制标准曲线。
实验仪器：
1.实验仪器:分光光度计、分析天平、烘箱、三角烧瓶、量筒、移液管、容量瓶。
2.实验试剂:a-萘胺溶液(50 ug/mL),0.1 mol/L磷酸缓冲液(PBS)( pH7.0),1%对氨基苯磺酸，NaNO2溶液。
3.实验材料:蒜根。