微生物生长曲线测定
微生物生长曲线及其应用研究
微生物生长曲线及其应用研究微生物是指在自然界中广泛存在的一类微小生物体，包括细菌、真菌、病毒等。
微生物的生长繁殖速度非常快，其数量会以指数级增长。
为了了解微生物的生长过程和控制微生物的繁殖，研究微生物的生长曲线具有非常重要的意义。
本文将详细介绍微生物生长曲线及其应用研究。
一、微生物生长曲线概述微生物繁殖速度可以用生长曲线来描述。
生长曲线是指一种图示微生物在特定环境下生长速度的图表。
一般而言，生长曲线通常分为四个阶段，分别是适应期、指数期、平稳期和衰退期。
（一）适应期适应期，又称以慢生长形式的生长期，此阶段微生物依然适应环境，没有开始繁殖，所以生物质生产相对较低。
在适应期内，微生物适应环境的变化，调整生命活动。
（二）指数期指数期，又称对数生长期，此阶段微生物从适应期中恢复过来，进入爆发式繁殖阶段，微生物数量呈现指数级增长。
此时必须提供各种营养成分，否则微生物生长速度会减缓。
（三）平稳期平稳期，又称繁殖期，此阶段微生物进入了生物质增长的稳定期，此时微生物数量已接近最大值，增长速率趋于稳定。
微生物在平稳期期间繁殖能力最高，产生菌体和菌落均达最大值。
（四）衰退期衰退期，又称死亡期，特征是微生物数量逐渐减少且生长速度下降。
此时由于菌体与菌落数量大大减小，产量逐渐变低，生物质的生产最终归于消失，菌体开始死亡。
二、微生物生长曲线的应用研究微生物生长曲线广泛应用于微生物研究和微生物控制领域，下面将详细介绍微生物生长曲线的应用研究方面。
（一）食品工业在食品工业中，为确保食品品质和安全性，微生物的控制非常重要。
通过对微生物生长曲线的研究，有助于控制食品中微生物的繁殖和生长。
例如，我们可以通过调整食品的pH值、温度和水分含量等环境因素，以达到抑制微生物繁殖和延长食品保质期的目的。
（二）制药工业在制药工业中，微生物的生长对于产生有效的药物具有非常重要的作用。
微生物生长曲线可以有效地控制微生物的繁殖，从而增加药物产量。
此外，微生物的生长受到环境因素的影响，通过控制菌落的生长环境，有利于生产出更高质量的药物。
微生物实验报告：测定细菌生长曲线
测定细菌生长曲线一、实验目的1．了解细菌生长曲线特征，测定细菌繁殖的代时；2．学习液体培养基的配制以及接种方法；3．反复练习无菌操作技术；4．了解不同细菌，不同接种方法在同一培养基上生长速度的不同；5．掌握利用细菌悬液混浊度间接测定细菌生长的方法；二、实验原理将一定量的菌种接种在液体培养基内，在一定的条件下培养，可观察到细菌的生长繁殖有一定规律性，如以细菌活菌数的对数做纵坐标，以培养时间做横坐标，可绘成一条曲线，称为生长曲线。
单细胞微生物发酵具有4个阶段，即调整期（迟滞期）、对数期（生长旺盛期）、平衡期（稳定期）、死亡期（衰亡期）。
生长曲线可表示细菌从开始生长到死亡的的全过程动态。
不同微生物有不同的生长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。
因此，测定微生物的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的。
测定微生物生长曲线的方法很多，有血细胞计数法，平板菌落计数法，称重法和比浊法。
本实验才用比浊法，由于细胞悬液的浓度与混浊度成正比，因此，可以利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的菌液的浓度。
将所测得的光密度值（OD600）与对应的培养时间做图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。
注意，由于光密度表示的是培养液中的总菌数，包括活菌和死菌，因此所测生长曲线的衰亡期不明显。
从生长曲线我们可以算出细胞每分裂一次所需要的时间，即代时，以G表示，其计算公式为：G＝（t2-t1）/[(lgW1-lgW2)/lg2]式中t2和t1为所取对数期两点的时间，W1和W2分别为对应时间测得的细胞含量或OD。
三、实验器材大肠杆菌，枯草杆菌菌液及平板；培养基(100mL/250mL三角瓶×10瓶/大组):牛肉膏蛋白胨葡萄糖培养基；取液器(5000ul, 1000ul 各一支)，无菌1000ul吸头若干，无菌5000ul吸头若干，比色皿10个及共用参比杯一个，培养箱3台，722s分光光度计；四、实验步骤1．活化菌种将细菌接种到牛肉膏蛋白胨葡萄糖三角瓶培养基中，37℃振荡培养18h，另外准备单菌落平板各1块；2．接种6人大组分为3个小组，按表1接种。
微生物的典型生长曲线
典型的微生物生长曲线包括四个时期： 调整期、对数期、稳定期、衰亡期。
1、调整期 特点：生长速率常数为零、菌体粗大、RNA含量增加、代 谢活力强、对不良环境的抵抗能力下降。 2、对数期 特点：生长速率最快、代谢旺盛、酶系活跃、活细菌数和 总细菌数大致接近、细胞的化学组成形态理化性质基本一致。 3、稳定期 特点：活细菌数保持相对稳定、总细菌数达到最高水平、 细胞代谢产物积累达到最高峰、是生产的收获期、芽孢杆菌开 始形成芽孢。 4、衰亡期 特点:细菌死亡速度大于新生成的速度、整个群体出现负增 长、细胞开始畸形、细胞死亡出现自溶现象。
典型生长曲线
环科1201 林国俊
微生物生长曲线定量研究液体培养基中 微生物群体生长规律的实验曲线叫做微 生物生长曲线。 典型生长曲线将少量纯种微生物细胞接 种到容积恒定的液体培养基上，在合适 的环境下，细胞就会由小变大，发生有 规律的生长。若以细胞数的对数为纵坐 标，培养时间为横坐标，就可以绘出一 单细胞微生物的典型生
大肠杆菌生长曲线测定
大肠杆菌生长曲线测定一、目的要求了解大肠杆菌生长曲线的基本特征，从而认识微生物在一定条件下生长、繁殖的规律。
二、基本原理一定量的微生物，接种在适合的新鲜液体培养基中，在适宜的温度下培养，以菌数的对数作纵坐标，生长时间作横坐标，做出的曲线叫生长曲线。
一般可分为延迟期、对数期、稳定期和衰亡期四个时期。
不同的微生物有不同的生长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。
因此，测定微生物的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的。
测定微生物生长曲线的方法很多，有血球计数法、平板菌落计数法、称重法、比浊法等。
本实验采用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与混浊度成正比，因此，可利用光电比色计测定菌悬液的光密度来推知菌液的浓度，并将所测得的光密度值（OD值）与其对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。
现已有直接用试管就可以测定OD值的光电比色计（图Ⅶ-10），只要接种一支试管，定期用它测定，便可做出该菌的生长曲线。
三、器材培养18—20小时的大肠杆菌培养液，盛有5ml肉膏蛋白胨液体培养基的大试管12支；72型或72．1型分光光度计，自控水浴振荡器或摇床，无菌吸管等。
四、操作步骤1．编号取11支盛有肉膏蛋白胨液体培养基的大试管，用记号笔标明培养时间，即0、1．5、3、4、6、8、10、12、14、16、20小时。
2．接种用1ml无菌吸管，每次准确地吸取0．2ml大肠杆菌培养液，分别接种到已编号的11支肉膏蛋白胨液体培养基大试管中，接种后振荡，使菌体混匀。
3．培养中心以化工行业技术需求和科技进步为导向，以资源整合、技术共享为基础，分析测试、技术咨询为载体，致力于搭建产研结合的桥梁。
以“专心、专业、专注“为宗旨，致力于实现研究和应用的对接，从而推动化工行业的发展。
将接种后的11支试管置于自控水浴振荡器或摇床上，37℃振荡培养。
分别在0、1．5、3、4、6、8、10、12、14、16、20小时将编号为对应时间的试管取出，立即放冰箱中贮存，最后一同比浊测定光密度值。
实验报告微生物的生长曲线实验
实验报告微生物的生长曲线实验实验报告
实验目的：
本实验旨在通过监测微生物的生长曲线，研究微生物的生长规律，并探讨其对环境因素的响应。
实验材料及方法：
1. 材料：
- 微生物培养基
- 无菌培养瓶或试管
- 微量移液器或移液管
- 无菌平板
- 培养箱或恒温摇床
- 显微镜
2. 方法：
（这里使用编号列表来列出具体的实验步骤）
实验步骤：
1. 实验前准备：
（这里写明实验前的准备工作，如准备培养基、灭菌操作等）
2. 微生物获取：
（这里描述如何获取微生物样品，如从环境中采样、有选择地分离微生物菌落等）
3. 微生物培养：
（这里阐述微生物的培养过程，包括制备培养基、接种微生物样品等步骤）
4. 生长曲线检测：
（这一部分是实验的重点，需要详细记录实验过程和结果。
可以使用表格、图表等方式展示数据）
5. 结果分析：
（根据实验结果，对微生物生长曲线进行分析和解读，可结合图表进行说明）
6. 讨论与结论：
（根据实验结果的分析，进行讨论并得出结论，可以对实验中可能存在的问题进行分析，提出进一步改进的建议）
实验结论：
通过本实验对微生物的生长曲线进行监测，我们得出了如下结论：
（这里简洁地总结实验结果得出的结论，为了增加字数可以进一步展开阐述，如讨论生长曲线的不同阶段、影响微生物生长的环境因素等等）
实验报告结束。
注意：本实验报告以“实验报告”的格式为基础，根据实验内容进行适当的调整。
其中，具体的实验步骤和结果可以根据实际情况进行修改和补充，以确保文章的准确性和完整性。
细菌生长曲线的测定实验报告
竭诚为您提供优质文档/双击可除细菌生长曲线的测定实验报告篇一：细菌生长曲线实验九测定细菌生长曲线[实验目的]1．了解细菌生长曲线特征：2．学习液体培养基的配制以及注意事项。
3．学习液体种子和固体种子的不同接种方法和注意事项。
4．利用细菌悬液浑浊度间接测定细菌生长。
[仪器和材料]1．实验材料(1)大肠杆曲，枯草杆曲培养液及大肠杆菌平板。
(2)牛肉膏蛋门胨葡萄糖培养基(150ml／250ml三角瓶x4瓶／大组)，配方：牛肉膏5g，蛋白胨10g，nacl5g，葡萄糖10g，加水至1000ml，ph7．5。
2．实验仪器取液器(5000μl，1000μl，200tμl各一支)；培养箱．摇床，722s分光光度汁；1000μl无菌吸头100个；5000μl 无菌吸头2(:细菌生长曲线的测定实验报告)个；1ml或4ml 玻璃或塑料比色皿4个，共用参比杯一个。
[实验原理]将一定量的细菌接种在液体培养基内．在一定的条件下培养，可观察到细菌的生长繁殖有一定规律性，如以细菌活菌数的对数作纵坐标，以培养时间作横坐标，可绘成一条曲线，称为生长曲线(图91)。
单细胞微生物发酵具有4个阶段，即调整(迟滞期)、对数期(生长旺盛期)、平衡期(稳定期)、死亡期(衰亡期)。
生长曲线可表示细菌从开始生长到死亡的全过程动态。
不同微生物有不同的生长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。
因此，测定微生物的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的．测定微生物生长曲线的方法很多，有血细胞计数法，平板菌落计数法，称重法和比浊法等。
本实验采用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与浑浊度成正比，因此，可以利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的浓度。
将所测得的光密度值(测oD550或oD620或oD600或oD420，可任选一波长)与对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。
注意，由于光密度表示的是培养液中的总菌数，包括活菌与死菌，因此所测生长曲线的衰亡期不明显。
微生物生长曲线
微生物生长曲线
微生物生长曲线是生物学家用来研究微生物生长行为的一种方法。
微生物在不同温度、饱和度、pH值、营养成分和抗性等参数的影响下，会产生不同的生长率和生长规律。
据此，科学家可以根据实验结果，描述出微生物生长曲线，以此来推断和研究微生物的特性及其适宜生长的环境条件。
一般来说，微生物生长曲线由三个阶段组成，即初始阶段、稳定阶段和衰减阶段。
在初始阶段，微生物的数量会增加，但增长速度较慢，因为细菌种子在营养物质较少的环境中发育比较缓慢，需要较长的时间才能达到一定的数量。
当所需营养物质较多时，微生物的增长速度会加快，进入稳定阶段，细菌数量保持恒定。
而当营养物质衰减，微生物不断死亡，被淘汰，将进入衰减阶段，细菌数量会逐渐减少，趋向于稳定。
微生物的生长曲线也可以由拟合所得的函数来表示，比如指数和Logistic函数。
指数和Logistic函数非常有用，可以用来预测微生物数量随时间取值的变化情况，而且用它们来表示不同温度、饱和度、pH值、营养物质和抗性等参数对微生物增长的影响。
微生物生长曲线不仅可以用于研究微生物的特性，还可以用来监测水质。
微生物可以在水体中繁殖，如果某一地区的水质不佳，微生物的数量会飞快地增长。
反之，如果水质良好，营养物质不足，微生物的数量会相对减少，水质状况也会有所改善。
所以，通过观测微生物生长曲线，可以实时跟踪水体质量，从而调整污染排放量，维持水
质安全。
综上所述，微生物生长曲线是生物学家研究微生物增长行为的主要方法，可以描述和分析微生物的特性，而且还可以用于监测水体质量。
通过跟踪微生物的数量变化，从而调整污染排放量，进而实现水质安全，改善人们的生活环境。
实验6-2酵母菌等单细胞微生物生长曲线的测定
实验酵母菌等单细胞微生物生长曲线的测定1 目的要求（1）了解酵母菌、细菌等单细胞微生物生长曲线的特点及测定原理；（2）学习用血球计数板计数法和比浊法分别测定酵母和细菌的生长曲线。
2 基本原理生长曲线是单细胞微生物在一定环境条件下于液体培养时所表现出的群体生长规律。
测定时一般将一定数量的微生物纯菌种接种到一定体积的已灭菌的适宜的新鲜培养液中，在适温条件下培养，定时取样测定培养液中菌的数量，以菌数的对数为纵坐标，生长时间为横坐标，绘制得到生长曲线。
不同的微生物其生长曲线不同，同一微生物在不同培养条件下其生长曲线亦不同。
但单细胞微生物的生长曲线规律基本相同，生长曲线一般分为延迟期、对数期、稳定期和衰亡期四个时期。
测定一定培养条件下的微生物的生长曲线对科研和实际生产有一定的指导意义。
测定生长曲线时需要对生长的单细胞微生物定时取样计数，对于酵母细胞和比较大的细菌细胞可采用血球计数板计数法计数，亦可采用比浊法计数，但对于小的细菌细胞一般采用比浊法。
比浊法是根据培养液中菌细胞数与混浊度成正比，与透光度成反比的关系，利用光电比色计测定菌悬液的光密度值（OD值），以OD值来代表培养液中的浊度即微生物量，然后以培养时间为横坐标，以菌悬液的OD值为纵坐标绘出生长曲线。
此方法所需设备简单，操作简便、迅速。
血球计数板法是利用一块血球计数板来进行计数的。
血球计数板是一块特制的厚玻璃片，中央平台比两边平台低0.1mm，上有两个被精细刻化为400个小方格的格网，面积为1mm2，加盖盖玻片后即构成0.1 mm3体积的计数室。
血球计数板有两种规格：一种是将1 mm2面积的网格划分为25个大格，每个大格再分成16个小格，既25´16；另一种为16´25。
计数时只需无菌操作将稀释到适宜浓度的菌悬液取一滴从盖玻片一侧渗入到计数室，待静置平衡后于显微镜高倍镜下计数，用下面公式算出菌液中细胞数。
单细胞微生物细胞数/mL=5个中格内细胞数¸5´25（或16）´104´菌液稀释倍数3 实验材料3．1 菌种酵母菌和大肠杆菌。
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实验七 测定细菌生长曲线一、实验目的1. 了解细菌生长曲线特征，测定细菌繁殖的代时；2. 学习液体培养基的配制以及接种方法；3. 反复练习无菌操作技术；4. 了解不同细菌，不同接种方法在同一培养基上生长速度的不同；5. 掌握利用细菌悬液混浊度间接测定细菌生长的方法二、 实验原理将一定量的细菌接种在液体培养基内，在一定条件下培养，可观察到细菌的生长繁殖有一定的规律性，如以细菌的活菌数的对数作纵坐标，以培养时间作横坐标，可绘成一条曲线，成为生长曲线（如图一）。
图一 微生物生长曲线示意图单细胞微生物的发酵具有四个阶段，即Ⅰ调整期（延滞期）、Ⅱ对数期（生长旺盛期）、Ⅲ平衡期（稳定期）、Ⅳ死亡期（衰亡期）。
生长曲线可表示细菌从开始生长到死亡的全过程的动态。
不同的微生物有不同的生长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。
因此，测定微生物的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的。
测定微生物生长曲线的方法很多，有血球计数板法、平板菌落计数法、称重法和比浊法等。
本实验采用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与混浊度成正比，因此，可利用分光光度计测定细菌悬液的光密度来推知菌液的浓度。
将所测得的光密度值（OD600）与其对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。
注意，由于光密度表示的是培养液中的总菌数，包括活菌与死菌，因此所测定的生长曲线的衰亡期不明显。
从生长曲线我们可以算出细胞每分裂一次所需要的时间，即代时，以G 表示。
其计算公式为：2lg /)lg (lg 1212W W t t G --=式中t1和t2为所取对数期两点的时间；W1和W2分别为相应时间测得的细胞含量（g/L ）或OD 。
三、 实验仪器、材料和用具1. 实验材料:大肠杆菌，枯草杆菌菌液及平板；2. 培养基:牛肉膏蛋白胨葡萄糖培养基3.实验仪器:取液器(5000ul, 1000ul 各一支);培养箱, 摇床，722s分光光度计；4.实验用具:无菌1000ul吸头80个;无菌5000ul吸头2个;比色皿9个+共用参比杯一个.四、实验步骤1.准备菌种：将细菌接种到牛肉膏蛋白胨葡萄糖三角瓶培养基中，37℃振荡培养18h，另外准备单菌落平板各1块2.分为三个小组：第（1）小组取1.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基, 37 ℃200rpm取3.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 ℃200rpm取5.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 ℃200rpm第（2）小组取一个大肠杆菌菌落接种到100ml培养基，37 ℃200rpm取1.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 ℃110rpm取1.0ml大肠杆菌接种到100ml培养基，30 ℃200rpm第（3）小组取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基，37 ℃200rpm取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基，30 ℃200rpm取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基，37 ℃110rpm每培养一小时取样一次(2.5h,3.5h加测1次). 对照组测量起始pH,所有瓶子测量发酵9h结束测pH.3.测量：选用600nm波长，以蒸馏水作为参比，开始培养前测定每组培养液的OD值作为起始点。
开始培养后，每小时吸取测定一次OD值。
五、实验结果及分析1.实验数据：表一三个小组时间-OD数据开始取样时间10:55 12:01 12:39 13:17 13:53 结束取样时间9:55 11:01 12:09 12:47 13:23 13:59 发酵时间0 1 2 2.5 3 3.5ODt 大肠杆菌单菌落0.004 0.024 0.027 0.027 0.025 0.036 37℃110rpm -0.010 0.049 0.164 0.255 0.312 0.327 30℃200rpm -0.010 0.043 0.088 0.158 0.242 0.3611.0mL 0.010 0.070 0.158 0.266 0.372 0.4363.0mL 0.039 0.096 0.257 0.373 0.420 0.4515.0mL 0.067 0.134 0.302 0.361 0.334 0.456 枯草杆菌37℃200rpm 0.008 0.023 0.076 0.132 0.184 0.254 30℃200rpm 0.013 0.032 0.052 0.088 0.091 0.125 37℃110rpm 0.007 0.017 0.098 0.130 0.230 0.253OD=ODt-OD0 大肠杆菌单菌落0.004 0.020 0.023 0.023 0.021 0.032 37℃110rpm -0.010 0.059 0.174 0.265 0.322 0.337 30℃200rpm -0.010 0.053 0.098 0.168 0.252 0.3711.0mL 0.010 0.060 0.148 0.256 0.362 0.4263.0mL 0.039 0.057 0.218 0.334 0.381 0.4125.0mL 0.067 0.067 0.235 0.294 0.267 0.389开始取样时间 14:29 15:35 16:43 17:50 18:57 19:07 20:12结束取样时间 14:35 15:43 16:50 17:57 19:09 20:07 21:12 发酵时间 45 6 7 8 9 10 ODt 大肠杆菌 单菌落0.065 0.267 0.395 0.454 0.45737℃110rpm 0.3330.340 0.342 0.360 0.36230℃200rpm 0.4390.566 0.570 0.588 0.5861.0mL0.464 0.446 0.446 0.458 0.4403.0mL0.487 0.470 0.457 0.483 0.4585.0mL0.469 0.457 0.464 0.482 0.478枯草杆菌37℃200rpm 0.3370.428 0.517 0.590 0.686 0.711 0.711 30℃200rpm 0.1710.261 0.370 0.540 0.628 0.606 0.652 37℃110rpm 0.2950.302 0.305 0.305 0.352 0.352 0.378 OD=ODt-OD大肠杆菌 单菌落0.061 0.263 0.391 0.450 0.45337℃110rpm 0.3430.350 0.352 0.370 0.37230℃200rpm 0.4490.576 0.580 0.598 0.5961.0mL0.454 0.436 0.436 0.448 0.4303.0mL0.448 0.431 0.418 0.444 0.4195.0mL0.402 0.390 0.397 0.415 0.411枯草杆菌37℃200rpm 0.3290.420 0.509 0.582 0.678 0.703 0.703 30℃200rpm 0.1580.248 0.357 0.527 0.615 0.593 0.639 37℃110rpm 0.2880.295 0.298 0.298 0.345 0.345 0.3712. 作图、简要分析及代时计算：1） 取一个大肠杆菌菌落接种到100ml 培养基， 37 ℃ 200rpm图一 单菌落大肠杆菌生长曲线这条曲线属于比较标准的“S ”形曲线，很容易看出调整期和对数期，由于单菌落菌较少，而且从固体培养基转移至液体培养基环境变化较大，所以出现了长达4小时的调整期，但可以看出，调整期之后这瓶菌都生长良好。
枯草杆菌37℃200rpm 0.0080.015 0.068 0.124 0.176 0.246 30℃200rpm 0.0130.019 0.039 0.075 0.078 0.112 37℃110rpm 0.0070.0100.0910.1230.2230.246计算代时：取培养4小时到5小时之间的数据（对数生长期）来计算代时。
由代时计算公式，t 2－t 1=1h W 1=0.061 W 2=0.263 代时 2lg /)lg (lg 1212W W t t G --=h h474.02lg /)061.0lg 263.0(lg 1=-=2） 取1.0ml 大肠杆菌菌液接种到100ml 培养基，37 ℃ 110rpm图二 大肠杆菌菌生长曲线（取1.0ml 大肠杆菌接种到100ml 培养基，37 ℃ 110rpm ）接种后几乎没有调整期出现，大肠杆菌很快适应了新的环境并开始呈指数增长，估计是新的培养环境和原有环境较一致，而且在培养最初的时候溶氧和酸碱度都较为适宜，但是这瓶菌是稳定期OD 最小的，估计是培养基最初分装不均产生的。
计算代时：取培养2小时到2.5小时之间的数据（对数生长期）来计算代时。
由代时计算公式，t 2－t 1=0.5h W 1=0.174 W 2=0.265 代时 2lg /)lg (lg 1212W W t t G --=h h824.02lg /)174.0lg 265.0(lg 5.0=-=3） 取1.0ml 大肠杆菌菌液接种到100ml 培养基，30 ℃ 200rpm图三 大肠杆菌生长曲线（取1.0ml 大肠杆菌接种到100ml 培养基，30 ℃ 200rpm ） 可以看出温度对大肠杆菌适应环境产生了一定的影响，使它在调整期滞留了较长的时间，且在对数期增长较慢，应该是酶活性对细胞复制的影响所致。
计算代时：取培养2.5小时到3.5小时之间的数据（对数生长期）来计算代时。
由代时计算公式，t 2－t 1=1h W 1=0.168 W 2=0.371 代时 2lg /)lg (lg 1212W W t t G --=h h875.02lg /)168.0lg 371.0(lg 1=-=4） 取1.0ml 大肠杆菌菌液接种到100ml 培养基, 37 ℃ 200rpm图四 大肠杆菌生长曲线（取1.0ml 大肠杆菌接种到100ml 培养基, 37 ℃ 200rpm ） 这是大肠杆菌培养的最适调节，可以看出其生长良好，调整期较短，对数期较长。
计算代时：取培养2小时到3小时之间的数据（对数生长期）来计算代时。
由代时计算公式，t 2－t 1=1h W 1=0.148 W 2=0.362代时 2lg /)lg (lg 1212W W t t G --=h h775.02lg /)148.0lg 362.0(lg 1=-=5） 取3.0ml 大肠杆菌菌液接种到100ml 培养基，37 ℃ 200rpm图五 大肠杆菌生长曲线（取3.0ml 大肠杆菌接种到100ml 培养基，37 ℃ 200rpm ） 接种量的增加没有产生太大的影响，生长曲线没有太大变化。