百合组培实验报告
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百合组培实验报告
篇一：植物组织培养实验报告
实验一植物组织培养实验报告
一实验目的
让植物组织经过脱分化作用，形成愈伤组织，经过再分化作用，愈伤组织又能重新分化为有结构的组织和器官，最终形成完整的植株。
二实验原理
植物组织培养是把植物的器官，组织以至单个细胞，应用无菌操作使其在人工条件下，能够继续生长，甚至分化发育成一完整植株的过程。植物的组织在培养条件下，原来已经分化停止生长的细胞，又能重新分裂，形成没有组织结构的细胞团，即愈伤组织。这一过程称为“脱分化作用”，已
经“脱分化”的愈伤组织，在一定条件下，又能重新分化形成输导系统以及根和芽等组织和器官，这一过程称“再分化作用”。植物激素在此过程中起着重要的作用，吲哚乙酸（IAA）和6–苄基氨基腺嘌呤（6–bA）的比例，决定了根和芽的分
化。
三实验器材
（一）试剂
乙醇、IAA或2，4–D、hgcl2（或次氯酸钠）、6-苄基
氨基腺嘌呤（6-bA）ms培养基
（二）仪器设备
培养室，高压灭菌锅，水浴锅，解剖刀，三角烧瓶（100mL），烧杯，量筒，培养皿，超净工作台，分析天平，长镊子，剪刀，橡皮筋等
三实验步骤
1.配制培养基
（1）愈伤组织诱导培养基：ms培养基（蔗糖含量为10g/L，2,4–D含量为2mg/L，琼脂10g/L）。
（2）试验培养基：在ms培养基中按表33–1加入IAA
和6–bA。
吲哚乙酸先用少量0.1mol/Lnaoh溶解，6-苄基氨基腺
嘌呤先用少量0.1mol/Lhcl溶解，然后用蒸馏水稀释，再加入培养基中。
2.培养基灭菌
将配好的培养基加入琼脂加热溶解，调至ph5.8，趁热
分装于100mL三角烧瓶中，每瓶约20mL。待培养基冷却凝固后，用两层称量纸包扎瓶口，并用橡皮筋扎牢，然后
在高压灭菌锅中121℃（1kg/cm2）下灭菌20min。取出三角烧瓶放在台子上，冷却后备用。接种操作所需的一切用具（如长镊子、解剖刀、剪刀等）及灭菌水，需同时灭菌。
3.诱导产生愈伤组织
（1）取健壮的玫瑰、菊花茎数段，每段约5cm长，于烧杯中用0.1%氯化汞（升汞）浸泡20min，取出用无菌水洗3～4次，置于无菌培养皿中，在接种箱中按无菌操作要求剥去外皮（接种箱事先用紫外灯灭菌30min），用解剖刀切成
5mm厚的圆片（弃去开始一片和最后一片），用长镊子将它接种在诱导培养基上，注意圆片的切口朝向培养基，每瓶接种4片，接种后扎好瓶口。
（2）将已接入植物组织（外植体）的三角烧瓶，培养在25℃温室中，每星期检查l～2次，剔除材料已被杂菌污染的三角烧瓶，3～4周后产生愈伤组织。
（3）选取愈伤组织生长良好的三角烧瓶，用解剖刀将愈伤组织切下，转移到含有不同激素的试验培养基中（也可以连同原来的外植体一起转移），每瓶放1～2块，仍培养在25℃温室中，每周1～2次观察不同处理的三角烧瓶中，愈伤组织分化情况，直至长出根和芽。长成的幼小植株即为“试管苗”，可移栽于花盆中。
四实验结果
植物分生组织培养室指对植物体的分生组织进行离体
培养。因为时间有限及实验严密性等问题，大部分都失败了，但是仍然有小部分分化发育了出来。已经证明了植物组织能够经过脱分化作用，形成愈伤组织，经过再分化作用，愈伤组织又能重新分化为有结构的组织和器官，最终形成完整的植株。
实验二三植物叶片与茎尖培养
一实验目的
离体叶培养是指包括幼叶片成熟叶片叶柄子叶叶鞘夜
间组织叶原基等叶组织作为外植体的无菌培养。由于叶片是植物进行光合作用的重要器官，又是某些植物的繁殖器官，因此离体培养在植物器官培养中占有重要地位。
二实验原理
很多植物的叶具有强大的再生能力能从叶片产生不定牙，在离体培养基中，水稻小麦油菜番茄杨树菊花百合猕猴桃等百余种作物的叶组织已经再生并形成完整植株。离体叶培养是指包括幼叶片成熟叶片叶柄子叶叶鞘夜间组织叶原
基等叶组织作为外植体的无菌培养。
三实验材料
要选用易培养成功的叶组织，如幼叶比成熟叶易培养，子叶比叶片易培养，个体发育的早期幼嫩叶片较成熟叶片分化能力较高。例如，烟草成株期叶组织分化和再分化需要的时间较长，而且叶片膨大体积较大，多在刀口处形成大量的
愈伤组织和分生细胞团。
四实验步骤
1外植体的选取及预处理
（1）外植体的选取
选取生长健壮已发芽长势较好无病害的生姜根茎作为外植体。
（2）材料的预处理
取带牙的枝条或鳞茎球茎，洗衣粉适量冲洗，然后用清洁剪刀剪取带牙部分，顶芽和腋芽大芽和小芽分开，继续用洗衣粉清洗10分钟，清洗时旭不停的晃动。再用自来水冲洗干净，置空培养瓶备用。
超干净工作台无菌操作准备
外植体消毒
材料的处理
接入培养基
培养基瓶放入工作台中，将剥夺的材料分别用消毒的镊子放入培养瓶中，盖上瓶盖，置培养蓝内，写上培养时间操作人及培养品名，放入培养室培养。
整理工作
清洁整理超干净工作台和实验室
23456
组织培养与设施栽培试验报告
植物组培实验室配置清单
植物组培实验室建设 目录 1、功能简述 (1) 1)准备室 (1) 2)灭菌室 (1) 3)缓冲间 (2) 4)无菌操作室 (2) 5)培养室 (2) 6)驯化室 (3) 7)温室 (3) 8)辅助实验室（非必要） (3) ①细胞学实验室 (3) ②生理生化分析室 (4) 2、设备及耗材清单 (4) 1)试验设备清单 (4) 2)常备试剂清单 (6) ①MS培养基必备试剂 (7) ②常备激素及辅助试剂 (7)
植物组培实验室建设 1、功能简述 植物组织培养实验室一般应包括准备室、洗涤灭菌室、无菌操作室、培养室、缓冲间，这也是组织培养实验所必须具备的基本条件。要培养成大田苗还要有相应的驯化室、温室。 1)准备室 用途：又叫化学实验室，进行一切与实验有关的准备工作。完成所使用的各种药品的贮备、称量、溶解、器皿洗涤、晾置、培养基配制与分装、培养基和培养器皿的灭菌、培养材料的预处理等。 设备：准备室应具备实验台、药品柜、水池、落水架、仪器、药品、防尘橱（放置培养容器）、冰箱、天平（0.1g、0.0001g分度各一台）、干热消毒柜（可省去）、蒸馏水器（可省去）、酸度计(又称pH计，为节约成本和减少维护可用pH试纸代替)、过滤灭菌器、培养皿、培养瓶、三角瓶、试管、电磁炉、水浴锅、漏斗、量筒、刻度移液管（为操作简便起见可购买移液枪1ml、5ml各一个代替）、玻璃棒、酒精灯、镊子、试管架、琼脂、纱布、棉塞、封口膜、大量元素、微量元素、蔗糖、有机物和植物激素的母液（详细内容见附表）、NaOH、盐酸、滤纸、脱脂棉、橡皮筋、牛皮纸等。 图1 准备室图2 灭菌室 2)灭菌室 用途：完成各种器具的保存、培养基的灭菌等。 1
植物组织培养报告
植物组织培养报告内部编号：（YUUT-TBBY-MMUT-URRUY-UOOY-DBUYI-0128）
大蒜茎尖的组织培养 谢婷婷江宋青万嫣文吕凌宇一、实验目的 掌握植物组织培养的相关理论知识及操作方法； 通过自行设计并完成实验，提高动手能力和思维能力； 利用植物细胞的全能性，使大蒜茎尖经过脱分化作用形成愈伤组织，再分化为有结构的组织和器官，最终增殖培育出大量品质优良的大蒜试管苗。二、实验原理 植物组织培养是利用植物细胞的全能性原理。植物组织培养是在无菌环境下，将离体的植物器官、组织以至单个细胞，在人工配置的培养基上培养，使其能够继续生长，甚至分化发育成一完整植株的过程。植物的组织在培养条件下，原来已经分化停止生长的细胞，又能重新分裂，形成没有组织结构的细胞团，即愈伤组织。这一过程称为“脱分化”。已经脱分化的愈伤组织，在一定条件下，又能重新分化形成输导系统以及根和芽等组织和器官，这一过程称“再分化”。 三、实验材料、试剂和器材 1 供试材料 以购于府前菜场的大蒜为实验材料，实验在丽水学院生态学院组培实验室进行。 2 仪器与设备 超净工作台、培养事、电子天平、烧杯、容量瓶、玻璃棒、量筒、移液
管。 3 试剂 70%酒精、95%酒精、0.1%升汞、蔗糖、琼脂条、6-BA（1.5 mg/L；2.0 mg/L）、2,4-D（2.0 mg/L）、NAA（1.0 mg/L；）、IBA（2.0 mg/L）、10倍的大量元素、100倍的微量元素、100倍的铁盐、100倍的有机物。 四、实验步骤 1.培养基的配制及灭菌 诱导培养基：MS+6-BA 2.0 mg/L+2,4-D 2.0 mg/L 出芽培养基：MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 1.0 mg/L 生根培养基：MS+IBA 2.0 mg/L （1）将MS母液（10倍的大量元素、100倍的微量元素、100倍的铁盐、100倍的有机物）按顺序排列、检查是否失效。 （2）在装有3/4蒸馏水的容器中加入0.7%琼脂和3%蔗糖，加热溶化。（3）依次吸取适量各种母液移到容器中。 （4）用蒸馏水定容到相应体积。 （5）调节pH值(用0.1M的NaOH或HCl调节)至5.8-6.0。 （6）向培养基中加入适量激素。 （7）将配制好的培养基进行分装（20-30ml/瓶）。 （8）用两层称量纸包扎瓶口，并用橡皮筋扎牢，然后在高压灭菌锅中121 ℃下灭菌 20 min 。取出三角烧瓶放在台子上，冷却后备用。接种操作所需的一切用具（烧杯、培养皿、灭菌水等），需同时灭菌。 （9）将灭菌后的培养基于常温下放置一星期，观察有无污染。
百合的组织培养
百合的组织培养 【摘要】将百合鳞片的不同部位接种于加油不同激素和不同浓度BA和NAA 的6种培养基上，一周后接种的百合鳞片开始变绿，2周后，鳞片的受伤部位出现绿色的愈伤组织,，再经2—3周培养，产生愈伤组织的部位逐渐形成小鳞茎，并开始有叶片长出。其中2号培养基MS+6-BA1mg/L+NAA0.1mg/L的分化率最高。实验结果表明，鳞片的不同部位分化能力也有差异，其中下部分化效果最好；激素6-BA和NAA浓度的配比，与鳞片分化小鳞茎的速度、数量和质量有着重要的关系。 【关键词】百合；鳞茎；组织培养 1.百合的简介 百合是百合科百合属（LiliumL.）各个种、杂交种、园艺品种的总称。它是著名的球根花卉，其地下部分为众多肥厚鳞片组成的鳞茎。百合花花姿优美，花大色艳，历来深受世界各国人民的喜爱，为世界名贵切花之一，广泛用于盆栽、花坛、花境及专类园。从考古文物中发现百合花用作观赏已有三千六百五十多年的历史。此外，多种百合的鳞茎、茎、花、种子均可入药，百合的鳞茎及花营养丰富，可制作多种美味佳肴。芳香的百合可提取芳香油制成香料。全世界百合属植物约一百种，起源于我国的就有四十七种和十八个变种，占世界百合属植物的一半以上。 1.1实验目的和意义 传统的花卉繁殖是靠播种、扦插、分株、压条、嫁接这些措施来实现的，然而在花卉业迅猛发展的今天，传统的育种技术已经无法满足生产需要，因而人们对花卉的繁殖技术提出了更高的要求。在世界各国植物生理工作者的努力下，利用组织培养进行花卉繁殖的技术日趋成熟。目前已有很多花卉可以利用组织培养为花卉提供种苗。今天，我们所享用的花卉产品之所以能够如此之高的品质，与花卉组织培养的应用不无关联。 百合植物资源丰富，栽培历史悠久，花色多样，它不仅适用于庭院栽培，布置花境，也可盆栽观赏，并早已成为花卉研究领域的佼佼者。百合虽然观赏性很高，但大多抗性很弱，尤其抗寒性。一般在东北地区种植商品百合时，每年秋季必须起球，窖藏或者冷库存放，这大大增加了百合的生产成本，限制了东北地区花卉业的发展。随着百合在国内外鲜切花市场的走俏，百合花生产和消费逐年增加，但由于百合种球繁殖率底，病毒侵染造成退化，难于满足切花生产需要。目前主要采用组织培养进行百合脱毒和快繁，以促进百合商品种球的生产。但是百合试管苗小鳞茎较小，结鳞茎时间较长，移植成活率低，制约了工厂化商品生产。 目前国内繁殖百合主要通过进口鳞茎进行繁殖。但是市场售价较高，而且有时鳞茎质量难以保证、繁殖率低易造成鳞茎退化。采用组织培养的方法在很短时
组织培养实验报告
植物组织培养实验报告 一、实验目的 1．掌握无菌操作的植物组织培养方法； 2．通过配置ms培养基母液，掌握母液的配置和保存方法； 3．通过诱导豌豆根、茎、 叶形成愈伤组织学习愈伤组织的建立方法； 4．通过诱导豌豆茎、叶形成愈伤组织学习愈伤组织的建立方法； 5．了解植物细胞通 过分裂、增殖、分化、发育, 最终长成完整再生植株的过程, 加深对植物细胞的全能性的理 解。 二、实验原理（一）植物组织培养 植物组织培养是把植物的器官，组织以至单个细胞，应用无菌操作使其在人工条件下， 能够继续生长，甚至分化发育成一完整植株的过程。植物的组织在培养条件下，原来已经分 化停止生长的细胞，又能重新分裂，形成没有组织结构的细胞团，即愈伤组织。这一过程称 为“脱分化作用”，已经“脱分化”的愈伤组织，在一定条件下，又能重新分化形成输导系统 以及根和芽等组织和器官，这一过程称“再分化作用”。（二）植物细胞的全能性 植物细胞的全能性即是每个植物的本细胞或性细胞都具有该植物的全套遗传基因，在一 定培养条件下每个细胞都可发育成一个与母体一样的植株。（三）组织的分化与器官建 成 外植体诱导出愈伤组织后，经过继代培养，可以在愈伤组织内部形成一类分生组织即具 有分生能力的小细胞团，然后，再分化成不同的器官原基。有些情况下，外植体不经愈伤组 织而直接诱导出芽、根。 （四）培养基的组成 培养基中各成分的比例及浓度与细胞或组织的生长或分化所需要的最佳条件相近，似成 功地使用该培养基进行组织培养的主要条件。营养培养基一般由无机营养、碳源和能源、维 生素、植物激素（生长调节剂）和包括有机氮、酸和复杂物质的添加剂组成。 三、实验器材 高压灭菌锅、超净工作台、烘箱、培养室镊子、记号笔、橡皮筋、玻 璃器皿、三角烧瓶、烧杯、量筒、剪刀、棉塞、绳子、牛皮纸、酒精灯、喷雾器等。 四、实验材料 豌豆种子 五、实验药品 药品、70% 酒精、 0.1% 升汞、ms培养基、蒸馏水、naoh、 84消毒液、蔗糖、琼脂 等。 六、实验步骤 （一）培养基母液的配制 表1.ms培养基个成分的含量（单位：mg/l） 表2.ms培养基所需母液以及扩大倍数 名称大量元素微量元素 ca盐 mg盐 fe盐有机肌醇激素 扩大倍数 50 50 50 50 50 100 100 100 定容体积(ml) 500 500 500 500 500 200 200 50 吸取毫升数/l 20 20 20 20 20 10 10 5 （注：吸取毫升数为每升培养基所吸取的母液的体积） 表3.配制母液所需的药品及称取量
兰州百合产业现状分析报告
百合产业现状与电商化分析 百合是的名优特产，以瓣大肉厚、风味甘甜、营养丰富、品质最佳之特色，名列栽培百合之首，素有“百合甲天下”之称。市七里河区作为百合的核心生产区，栽培百合有确切记载的历史可以追溯到明代万历年间，是闻名全国的百合之都。 第一部分：百合产业发展现状 近年来，七里河区狠抓百合产业发展，从百合母籽繁育、基地建设，信息平台搭建，市场培育，龙头企业扶持等环节入手，打造优势产业，成为该地区农产品支柱产业，产业优势产区基本形成 一、种植面积颇具规模 截至2015年全区百合留床面积5.3万亩、产量达2840万公斤。实现百合纯收入6.8亿元，农民百合人均纯收入6197.9元，占全区农民人均纯收入的43.15%。 二、生产技术逐步成熟 建立了省、市级无公害标准化示基地1182亩，标准化示区3.2万亩，无公害认证面积达到3.7万亩；绿色食品企业达到31家，认证产品达到34个。 三、产业格局初步形成 以“布局合理化、生产基地化、经营一体化、管理规化、
服务社会化、产品名牌化、品质无公害化”的发展思路，以市场为导向，进一步完善了“公司+基地+协会+农户”的运营机制，走集团化经营之路。 四、产品储存满足需求 全区现有百合冷藏库39座，库容量达1064万公斤，每年分两季存储，储量可达2128万公斤，完全能够满足百合常年加工贮藏的需要。 五、产品加工形成格局 全区共有百合加工企业近百家，年加工能力在100吨以上的企业27家，50—100吨的企业有14家，95%以上的百合都经过初级加工销往国外市场。同时，百合深加工产品开发取得了进展，科技含量高的无硫百合干、百合粉、百合营养麦片、百合调味品、百合果酥、百合鸡、百合花、百合花蕾等产品都已研发试制成功，基本形成了种植、储藏、加工、销售、研发一条龙的产业格局。 六、市场前景十分广阔 目前已经在北京、、、乌鲁木齐、、、、等国大中城市开展建立了联营或销售代理业务，在市双兴蔬菜批发市场、市皇姑区北行大厅蔬菜批发市场、北京新发地蔬菜批发市场建立了百合直销点，百合的销售网络已遍布东北、华北和东南沿海地区，而且产品远销香港、澳门、、日本、韩国、美国、法国及东南亚等国家和地区。
植物组织培养实验报告
植物组织培养实验报告 学院：生命科学技术学院 班级：11生物技术(制品) 学号：2011192017 姓名：李鹏
植物组织培养实验报告 实验一植物组织培养母液的配制 一、实验目的 1.了解植物组织培养基本培养基的组分及其作用。 2.学习掌握植物组织培养MS培养基的配制方法。 二、实验原理 培养基是植物组织培养中离体组织赖以生存和发育的条件。大多数培养基的成分是有无机盐、有机化合物（碳源、维生素、肌醇、氨基酸等）、生长调节物质、水分和其他附加物等五大类物质组成。 无机盐类由大量元素和微量元素组成。大量元素中，氮类化合物主要以硝酸类和铵类化合物的形式存在，但在培养基中多用硝酸类，也可以将硝酸类和铵类混合使用；磷和硫常用磷酸盐和硫酸盐来提供；钾是培养基中主要的阳离子；钙、钠、镁的需要量较少。微量元素包括碘、锰、铜、锌、钴、铁。培养基中的铁离子，大多数以螯合物的形式存在，即硫酸亚铁与乙二胺四乙酸二钠的混合。 有机化合物包括碳源、维生素、肌醇、氨基酸等。培养中的植物组织和细胞的光合作用较弱，因此，需要在培养基中附加一些碳水化合物物来提供营养需要。培养基中的碳水化合物通常为蔗糖。蔗糖除了作为培养基的碳源和能源外，对维持培养基的渗透压也起着重要的作用。在培养基中加入维生素有助于细胞的分裂和增长。一般包括VB1、B6、烟酸、生物素、叶酸、泛酸钙、VC。肌醇在糖类的相互转化、维生素和激素的利用等方面具有重要的催进作用。 常用的植物生长调节物质包括以下三类：①生长素类：吲哚乙酸（IAA）、萘乙酸（NAA）、二氯苯氧乙酸（2,4-D）②细胞分裂素：玉米素（ZT）6-苄基嘌呤（6-BA）和激动素（KT）。③赤霉素：组织培养中使用的赤霉素只有一种，即赤霉酸（GA3）。 培养基中的其他附加物包括人工合成和天然的有机物附加物。其中最为常见的为酵母提取物。琼脂作为培养基的支持物，也是最常用的邮寄附加物，他可以是培养基呈固体状态，以利于组织和细胞的培养。 植物组织培养是否成功，在很大的程度上取决于培养基的选择之上。目前普遍使用的是MS培养基。MS固体培养基可用于诱导愈伤组织，或用于胚胎、茎段、茎尖及花药的培养等。MS培养基的硝酸盐、钾和铵的含量略高于其他的培养基，也是它被普遍使用的原因之一。 三、实验材料、试剂、配方和仪器设备 1．试剂 NH 4NO 3 ,KNO 3 ,KH 2 PO 4 ,CaCl 2 ·2H 2 O ,MgSO 4 ·7H 2 O,FeSO 4 ·7H 2 O Na 2-EDTA,MnSO 4 ·4H 2 O,ZnSO 4 ·7H 2 O,H 3 BO 3 ,KI,Na 2 MoO 4 ·2H 2 O CuSO 4 ·5H 2 O,CoCl 2 ·6H 2 O,肌醇，甘氨酸，盐酸硫胺素，盐酸吡哆醇，烟酸， 蒸馏水。 2.仪器设备 电子天平，烧杯（50ml、100ml、500ml）量筒（1000ml、100ml、25ml），容量瓶(1000ml、500ml、100ml)，移液管（10ml，5ml，1ml）试剂瓶，玻璃棒数支，药匙，称量纸等。
百合组织培养实验报告
百合组织培养实验报告 一、实验原理 植物细胞全能性理论是植物组织培养的核心理论。立体细胞具有生命的特征属性，在全能性的基础上，提供合适的营养和环境条件，立体细胞经历脱分化（dedifferentiation）和再分化（redifferentiation）过程，可形成再生植物。 二、实验用品 实验材料：百合种球 实验仪器：高压消毒锅、超净工作台、镊子、剪刀、手术刀柄、手术刀片、酒精灯、定 时器、人工气候箱、分析天平、酸度计、电炉、蒸馏水机、培养皿、烧杯、 量筒、移液管、吸球、药匙、玻璃棒、锥形瓶、称量纸、滤纸、枪、枪头、 试剂瓶、打火机、塑料膜、绳子 实验试剂：琼脂、蔗糖、75%，95%乙醇、α-萘乙酸（NAA）、6-苄氨基嘌呤（6-BA）、 0.1%升汞、盐酸、大量元素（磷酸二氢钾、硝酸钾、硝酸铵、七水硫酸镁、 二水合氯化钙）、微量元素（四水合硫酸猛、七水合硫酸锌、五水合硫酸铜、 二水合钼酸钠、碘化钾、六水合氯化钴、硼酸）、铁盐（乙二胺四乙酸二钠、 七水合硫酸亚铁）、有机物（甘氨酸、盐酸吡哆辛、盐酸硫胺素、烟酸、肌 醇） 三、实验操作步骤 1、用分析天平去8.8g琼脂，30g蔗糖，放入烧杯中，加蒸馏水至900ml，把烧杯放 在电炉上煮琼脂，并用玻璃棒搅拌，时间为50-60分钟。 2、将煮好的琼脂加蒸馏水至900ml，按顺序用移液管加50ml大量元素，5ml微量元 素，10ml铁盐，10ml有机物，再用枪加1ml6-BA，0.5mlNAA，并用玻璃棒搅拌。 调ph至5.6-6.0之间。 3、将配好的培养基倒入锥形瓶中（50-60ml），用绳子将塑料膜绑好。准备蒸馏水， 并将培养皿、手术刀柄、镊子用报纸包好，同培养基一起放入高压灭菌锅灭菌， 温度为121℃，时间为23min。 4、灭完菌后将培养基放至室内，冷却。准备好洗净的百合种球，75%的酒精，0.1% 升汞（注：升汞有剧毒，注意操作），定时器，手术刀片，烧杯等，准备进行无 菌操作。 5、开启紫外灯30min，关闭10min后进入，用酒精擦拭无菌操作台，在手上喷洒酒 精，将酒精灯点燃放入无菌操作台中，把酒精倒满烧杯，将镊子与手术刀放入烧
《野生的百合》阅读练习及答案
野生的百合 (1)那天，当我们四个又在那条山道上停下来的时候，原来只是想就近观察那一群黑色的飞鸟的，却没想到，下了车以后，却发现在这高高的清凉的山上，竟然四处盛开着野生的百合花！ (2)山很高，很清凉，是黄昏的时刻，湿润的云雾在我们身边游走，带着一种淡淡的芬芳，这所有的一切竟然完全一样！ (3)所有的一切竟然完全一样，而虽然那么多年已经过去了，为什么连我心里的感觉竟然也完全一样！ (4)我迫不及待地想告诉同行的朋友，这眼前的一切和我十八岁那年的一个黄昏有着多少相似之处。一样的灰绿色的暮霭，一样的湿润和清凉的云雾，一样的满山盛开的洁白花朵。谁说时光不能重回？谁说世间充满着变幻的事物？谁说我不能与曾经错过的美丽再重新相遇？ (5)我几乎有点语无伦次了，朋友们大概也感染到我的兴奋。陈开始攀下山岩，在深草丛里为我一朵一朵地采撷起来，宋也拿起相机一张又一张地拍摄着。我一面担心山岩的陡削，一面又暗暗希望陈能够多摘几朵。 (6)陈果然是深知我心的朋友，他给我采了满满的一大把，笑着递给了我。 (7)当我把百合抱在怀中的时候，真有一种无法形容的快乐和满足。 (8)一生能有几次，在高高的清凉的山上，怀抱着一整束又香又白
的百合花？ (9)多少年前的事了！也不过就是那么一次而已。也是四个人结伴同行，也是同样的暮色，同样的开满了野百合的山巅，同样的微笑着的朋友把一整束花朵向我送了过来。 (10)也不过就是那么一次而已，却从来不会忘记。 (11)令人安慰的就是不会忘记。原来那种感觉仍然一直深藏在心中，对大自然的惊羡与热爱仍然永远伴随着我，这么多年都已经过去了，经历过多少沧桑世事，可喜的是那一颗心却幸好没有改变。 (12)更可喜的是，在二十年后能还再重新来印证这一种心情。因此，在那天，当我接过了那一束芬芳的百合花的时候，真的觉得这几乎是我一生中最奢侈的一刻了。 (13)而这一切都要感激我的朋友们。 (14)所以，你说我爱的是花吗？我爱的其实是伴随着花香而来的珍惜与感激的心情。 (15)就像我今天遇见的这位朋友，在他所说的短短一句话里，包含着多少动人的哲思呢？ (16)我说的“动人”，就如同几位真诚的朋友，总是在注意着你，关怀着你，在你快乐的时候欣赏你，在你悲伤的时候安慰你，甚至，在向你揭露种种人生真相的时候，还特意小心地选择一些温柔如“花香”那样的句子，来避免现实世界里的尖锐棱角会刺伤你；想一想，这样宽阔又细密的心思如何能不令人动容？ (17)我实在爱极了这个世界。一直想不透的是，为什么这个世界
植物组培实验报告
姓名班级学号实验日期 科目植物生理学实验实验名称Effects of Hormones on Morphogenesis in Plant Tissue Culture 合作者指导教师成绩 Effects of Hormones on Morphogenesis in Plant Tissue Culture Introduction The technology of plant tissue culture is based on the principle of totipotency which means the capacity to generate a whole plant from any cells or an explant.During the plant tissue culture,the hormones affect largely on morphogenesis,such as Auxin and Cytokinin.And the content and ratio of these hormones can make different results.NAA is the routine reagent of auxine and6-BA is the reagent of cytokinin.For the tissue culture,we prepare the Murashige and Skoog’s medium(MS medium).The MS medium contains hormones,macronutrients and micronutrients(detailed ingredients are in Table 2-1).The pH in the medium will be adjusted with1M NaOH.We should prepare10MS media with hormones. During the whole operation of tissue culture,six potential source of contamination are air,water, growth media,equipment,explant and people.We use the laminar flow hood to remove most of microbes from air flow.The water and the media have been autoclaved.The tools should be kept sterile in the70%alcohol and flamed by alcohol burner.And we sterilize the explants with Ca(ClO)2and70% ethanol and sterile water. We use the NAA to induce the callus to generate root. Materials Fresh young leaves of tobacco(Nicotiana tabacum) MS medium:NH4NO3,KNO3,CaCl2,MgSO4,KH2PO4,MnSO4?H2O,ZnSO4?7H2O,KI,Na2MoO4?2H2O,CuSO4?5H2O,CoCl2?6H2O,Na2EDTA,FeSO4?7H2O,Nicotinic acid,Pyridoxine HCl(VB6), Thiamine HCl(VB1).Glycine,Mesoinositol. Agar,HgCl2,NAA,6-BA.2%Ca(ClO)2,sterile distilled water,70%ethanol,Beaker,Balance,10 Bottles,pH test strips,Laminar flow hood,Tween-80,Scissor,Forceps,Scalpels,Alcohol lamp. Method Part1:Prepare10bottles of culture. 1.Wash10bottles and dry them for a group. 2.Our group’s task:Weigh50mg6-BA and mix with sterile distilled water to be50mL1mg/ml solution in a bottle and mark the stock solution name,the date,and our group number. 3.Other groups prepare the MS medium culture,agar,NAA and sugar.In Table2-1,MS=100ml A+ 1ml B+10ml C+5ml D+10ml E.Every3group prepare1L medium=MS+1mg/ml6-BA+ 0.2mg/L NAA+3%sugar+0.7%agar.Boil the solution with induction cooker to mix thoroughly. 4.Adjust the pH of medium to 5.8with1M NaOH or HCl. 5.Repackage the1L medium to the bottles of3groups.10bottles of each group,30ml for each bottle. 6.Sterilize the culture bottles by autoclaving at115℃for30min.Store them at room temperature. Part2:Operation of plant tissue culture. 1.The space in the laminar flow hood has been sterilized by UV light for15min.We place all items in well order to start working. 2.Rinse4young leaves as explants in tap water for10-30min.The next operations are all aseptic.
百合的组织培养技术综述
百合的组织培养综述 （辛文龙，200674010152） 摘要对百合的分布和组织培养的进展状况及组织培养在百合育种中的应用作了综述。特别罗列了百合组织培养中所选用的外植体类型和一些组培材料的最佳分化、生根培养基配方；阐述了组织培养中常见的一些问题；并介绍了百合组织培养在其育种中的应用。 关键词百合；组织培养； 百合(Lilium.spp.)是百合科(Iiliaccae)百合属(Lilium)多年生草本植物。我国是百合植物的原产地，早在1400多年以前就有人工栽培，食用、观赏和药用百合的栽培利用历史十分悠久。百合除具有观赏价值外，大多数可以食用、药用，是上等的滋补佳品。传统的白合繁殖方法主要采用常规分球、分珠芽鳞片扦插、鳞片包埋等。但采用这些方法繁殖，繁殖系数较小，特别是经多代分殖以后，常造成种性退化，甚至病毒积累，影响百合的产量和质量。利用组织培养技术，能够迅速去除病毒和更新品种，加快了百合的快速繁殖速度，缩短了百合的生育周期。在百合杂交育种中也存在着基因库贫乏、种间杂交不亲和等局限性，而组织培养中的胚培养、花药培养等技术则可克服这些弊端。现将目前百合组织培养及育种方法做简单总结。 1百合的分布 全世界百合约有90多个种，主要分布在北半球的温带和寒带地区，少数种类分布在热带高海拔地区，南半球没有野生种分布。中国是百合种类分布最多的国家，也是世界百合起源的中心。据调查，中国约有47个种18个变种，占世界百合总数的一半以上，其中有36个种15个变种为中国特有种；日本有15个种，其中9个种为日本特有种；韩国有11个种，其中3个为特有种；亚洲其他国家和欧洲共有约22个种；北美洲约有14个种。 2百合的组织培养外植体类型 2.1外植体的选择 2.1.1鳞片 百合鳞片作为外植体具有容易获得、分化能力强、对培养基要求不严等优点是目前百合组织培养中普遍采用的外植体。主要是通过调节生长素和细分裂素的比例来诱导其组织产生不定芽和再生植株。研究表明，百合鳞片不同部位的分化能力是有差别的,有实验表明,鳞片上部几乎不能形成小鳞芽，中部形成能力较弱，下部与鳞茎盘相连的部位形成小鳞芽的能力最强。 2.1.2叶片 叶片是百合组织培养的另一重要外植体。采用鳞片作为外植体可能会造成百合野生资源的破坏，而采用百合叶片不会影响百合的正常生长，可有效利用百合野生资源。另外，百合叶片比鳞片更易产生愈伤组织。陆春霞[3]等研究不同激素配比对百合叶片诱导与分化的影响，结果表明：2，-4D能诱导愈伤组织的形成。 2.1.3茎段 采用百合茎段进行组织培养。陈小兰等[4]用金百合(L.trompeten)带腋芽的幼嫩茎段诱导产生小鳞茎。 2.1.4珠芽
现成一个百合产业化生产加工项目
百合产业化生产加工项目 所属行业: 农业 项目名称: 中国湘鄂渝黔边区百合产业化生产与深加工 项目性质: 企业招商项目 项目简介: 一、项目名称及承办单位 1、项目名称：中国湘、鄂、渝、黔边区百合产业化生产与深加工 2、承办单位：湖南省龙山县波杰特产有限公司 3、项目负责人：田玉清夏定延 4、试投资地址：湖南龙山县洗洛百合城 5、扩建地址：龙山县华塘工业园区 6、项目性质：农业产业化建设 二、项目单位概况 1、项目单位现状：湖南省龙山县波杰特产有限公司成立于1998年，注册资金40万元，现有固定资产480万元，银行债务220万元，其中银行贷款70万元（中扶贷款），财政扶持150万元，是一个以百合加工为主的民营型企业。公司与中南大学达成多项科技技术合作，由其提供技术支持。由于公司成立之际，银行承若的400万元流动资金未能到位（责任不在公司），以至无法正常生产，从而导致公司80%的设施设备闲置，造成直接经济损失上亿元，公司为了正常生产和扩建规模，现将采取融资措施。
2、公司生产能力：湖南省龙山县波杰特产有限公司占地面积6000平方米，建筑面积3000平方米。现有无硫干片生产线一套，百合精粉 生产设备一套，百合粉丝生产设备一套，目前具有年生产百合无硫干片1000吨、百合精粉500吨、百合粉丝500吨、两薯1000吨的能力，可实现产值1亿元。 3、了解更多请直进公司网站：湖南省龙山县波杰特产有限公 司: https://www.360docs.net/doc/0c2030220.html, 三、项目产品概况 1、百合概况：百合属于百合科百合属，多年生宿根草本植物。百合 鳞茎早为国家指定为药食同源品，作为食品营养极为丰富，是纯天然绿色保健食品。以菜肴、煲汤、煮饭、熬粥等方式走上大众的餐桌；在药用方面其生物碱对抗癌均有特效，如秋水仙碱有延缓衰老、对消除体内自由基的作用均不可小视，对女性有雌激素样作用。所以目前百合正成为药食保健品家族中的一个新成员，正在广泛的被人们日益接受，如上海、成都对龙山县的卷丹百合每年消费量达3000吨以上。 2、产品概况：百合属于药食两用纯天然保健食品，在二十一世纪、 在东、西方人们都注重养身保健的今天，百合系列药食保健品应运而生，食用产品主要有：鲜百合鳞茎、百合无硫干片、百合米、百合精粉、百分粉丝、百合保健酒、百合保健饮料、百合保健钙奶、百合醋、百合果胶等；药用方面主要有：百合生物碱、百合多糖等，还可以制成多种化妆品以及制成多种动物饲料。 3、出口创汇：百合系列产品在国外尚无，而国内的生产能力远远不 够自销，虽然也有销往东南亚部分地区，但销量极小，仅以广州转往香港市场再销往东南亚地区。由于目前国内百合没有实现产业化生产，也不具备出口创汇的条件，因此市场正处在发展初期阶段，须投入更多的人力、物力、财力来实现百合产业化建设，从而达到出口创汇的目的。
植物组织培养实验报告
植物组织培养实验报告 摘要：以大豆子叶为外植体，在MS培养基上附加不同浓度、不同种类的植物激素，以研究不同激素组合和不同浓度对大豆子叶愈伤诱导率的影响，并练习无菌操作。实验结果显示第2组即MS+6-BA（2.0mg/L)+NAA(1.0mg/L)和第 3 组即MS+KT（0.5mg/L)+2,4-D(1.0mg/L) 培养基中愈伤组织诱导率较高，为较佳的愈伤组织诱导组合。 关键词：大豆；植物组织培养；无菌操作；愈伤组织 1.材料与方法 1.1实验材料：大豆子叶 1.2实验试剂与仪器 （1）试剂：75%酒精、MS干粉、蔗糖、琼脂、植物生长调节剂（NAA、2，4-D、KT、6-BA）、无菌水、升汞、NaOH溶液 （2）仪器：超菌净工作台、圆纸片、培养皿、封口膜、称量纸、千分之一天平、不锈钢杯子、移液枪、试管、高压灭菌锅、注射器、酒精灯、镊子、手术刀、搁置架、烧杯、电炉。 1.3实验方法 1.3.1培养基的配制与灭菌 1.3.1.1 配制培养基的准备阶段 （1）准备80个培养试管及封口膜，2个小培养皿、1个大培养皿，用洗衣粉、自来水洗净，再用蒸馏水把每个培养试管、润洗一下。带晾干后将试管编号1-80；（2）在称量纸上用百分之一天平分别称取1.5g 琼脂4份，7.5g 蔗糖4份，在烧杯里用千分之一天平上称取1.185g MS干粉4份（烧杯不要清洗）；
（3）剪小圆纸片40，均分在两个小培养皿小能从中自由取出为宜；剪大圆纸片10，均分在两个大培养皿中。然后分别用报纸包好。 （4）把接种工具手术刀、镊子、剪刀等用报纸包好。 1.3.1.2 配制培养基 （1）在装有MS干粉的烧杯中按下表加入植物生长调节剂 实验所用的所有激素浓度均为0.5mg/mL 激素的加样量(ml) 编号培养基配置 6-BA NAA KT 2,4-D 1 MS+6-BA（1.0mg/L)+NAA(0.5mg/L) 0.5 0.25 2 MS+6-BA（2.0mg/L)+NAA(1.0mg/L) 1.0 0.5 3 MS+KT（0.5mg/L)+2,4-D(1.0mg/L) 0.25 0.5 4 MS+KT（1.0mg/L)+2,4-D(2.0mg/L) 0. 5 1.0 （2）用量筒量取250ml（稍多）蒸馏水，取一个不锈钢杯子加入150ml蒸馏水和称量好的琼脂，在电炉子加热沸腾2min，再加入混合好的MS培养基1号和蔗糖，混合沸腾2min，用剩余的蒸馏水定容至250ml； （3）当温度降到60℃左右时，将溶液pH 调至5.8，一般加4滴NaOH溶液即可；（4）取编号1-20的培养试管，用大量注射器以每瓶12.5ml 左右培养基分装在培养试管中，用封口膜封口，4支一捆捆扎好。 （5）用相同的方法配置2-4号培养基，并分装、捆扎。 1.3.1.3高压湿热灭菌 （1）将包好的接种工具，包好的培养皿，以及分装好的试管一起放到高温灭菌
百合类鲜切花行业标准
百合类鲜切花行业标准 皇族：粉系，花型中等，花苞约11.5-12.9cm，茎杆强健，正常有焦叶现象，瓶插期长，中生品种。 一级：4个花苞以上，枝长70cm以上，花苞、枝叶无病害、破损，茎杆强健。 二级：3个花苞，枝长60-70cm，品质略低于一级。 三级：1-2个花苞，枝长60cm以下，枝杆稍弱，品质不高。 诸侯：粉系，粉红带深粉红点，花型大，花苞约12.9cm或以上，茎杆强健，无焦叶现象，瓶插期长，晚生品种。 一级：4个花苞以上，枝长80cm以上，花苞、枝叶无病害，无破损，茎杆特别强健。 二级：3个花苞，枝长60-80cm，品质略低于一级。 三级：1-2个花苞，枝长60cm以下，枝杆一般。 钦差：粉系，淡粉色，花型大，花苞约12.9cm或以上，茎杆强健，无焦叶现象，早生品种。一级：4个花苞以上，枝长70cm以上，花苞大，枝叶无病害。 二级：3个花苞，枝长60-70cm，花苞较大。 三级：1-2个花苞，枝长60cm以下，品质一般。 风眼：黄系，深黄色，花型大，花苞约8.4cm或以上，茎杆特别强健，稍有焦叶现象。 一级：4个花苞以上，枝长70cm以上，茎杆强健，无病害。 二级：3个花苞，枝长60-70cm，茎杆强健，稍有焦叶现象。 三级：1-2个花苞，枝长60cm以下，茎杆一般，焦叶现象较重。 红火火：粉系，深粉红色，花型大，花苞约12.9cm或以上，茎杆强健，无焦叶现象，瓶插期长。一级：4个花苞以上，枝长70cm以上，茎杆强健，无病害。 二级：3个花苞，枝长60-80cm，茎杆一般。 三级：1-2个花苞，枝长60cm以下。 元帅：粉系，深粉红色，花型大，花苞约12.9cm或以上，茎杆强健，瓶插期长，中生品种。一级：4个花苞以上，枝长80cm以上，花型大，茎杆强健，无病害。 二级：3个花苞，枝长60-80cm，花型较大，茎杆强健。 三级：1-2个花苞，枝长60cm以下。 西伯利亚：白系，纯白色，花型大，花苞约11.5-12.9cm，茎杆强健，无焦叶现象，瓶插期长，中生品种。 一级：4个以上花苞，枝长70cm以上，茎杆强健，无病害，花型特大。 二级：3个花苞，枝长60-70cm，茎杆较强健，花苞较大。 三级：1-2个花苞，枝长60cm以下。 将军：粉系，粉红色带深粉红点，花型大，花苞约11.5-12.9cm，茎杆强健，无焦叶现象，瓶插期长。 一级：4个花苞以上，枝长70cm以上，花苞大，茎杆强健，无病害。 二级：3个花苞，枝长60-70cm，茎杆强健，花苞较大。 三级：1-2个花苞，枝长60cm以下，花苞一般，枝杆一般。 贝尔坎多：粉系，浅粉红带粉红点，花型大，花苞约12.9cm或以上，茎杆强健，无焦叶现象，瓶插期长。
植物组织培养实验室(组培室)规划设计
植物组织培养实验室 (组培室规划设计 2009年 05月 31日星期日 10:18一、实验室要求 理想的组织培养实验室应该建立在安静、清洁、远离污染源的地方, 最好在常年主风向的上风方向, 尽量减少污染。规模化生产的组织培养实验室最好建在交通方便的地方, 便于培养产品的运送。 实验室的建设均需考虑两个方面的问题:一是所从事的实验的性质, 即是生产性的还是研究性的, 是基本层次的还是较高层次的; 二是实验室的规模, 规模主要取决于经费和实验性质。 无论实验室的性质和规模如何,实验室设置的基本原则是:科学、高效、经济和实用。一个组织培养实验室必须满足 3个基本的需要:实验准备 (培养基制备、器皿洗涤、培养基和培养器皿灭菌、无菌操作和控制培养。此外,还可根据从事的实验要求来考虑辅助实验室及其各种附加设施,使实验室更加完善。 在进行植物组织培养工作之前,首先应对工作中需要哪些最基本的设备条件有个全面的了解, 以便因地制宜地利用现有房屋, 或新建、改建实验室。实验室的大小取决于工作的目的和规模。以工厂化生产为目的,实验室规模太小,则会限制生产,影响效率。在设计组织培养实验室时, 应按组织培养程序来没计, 避免某些环节倒排, 引起日后工作混乱。植物组织培养是在严格无菌的条件下进行的。要做到无菌的条件, 需要一定的设备、器材和用具, 同时还需要人工控制温度、光照、湿度等培养条件。 二、实验室组成 (一基本实验室 基本实验室包括准备室、洗涤灭菌室、无菌操作室、培养室、缓冲间,是组织培养实验所必须具备的基本条件。如进行工厂化生产,年产 4万 -20万, 需 3-4间实验用房,总面积 60平方米。
组培实验报告
学号姓名 学院 专业、班级 实验课程名称红豆杉愈伤组织的诱导培养 1. 实验设备及材料 （1）主要实验用具和仪器 冰箱，普通天平，分析天平，各种型号的试剂瓶（棕色和白色）、电炉，三角瓶，移液管，量筒，烧杯，容量瓶，玻璃棒，医用口杯，精密pH试纸（pH5.4~7.0），药勺，称量纸，标签纸，封口膜，橡皮筋，电炉，高压蒸汽灭菌锅、100ml三角瓶、500ml 搪瓷杯、25ml量筒、10ml和5ml吸管、解剖刀、已灭菌培养皿、酒精棉球、小块纱布、已灭菌培养皿和滤纸、枪状镊子、眼科手术剪、手术刀、酒精灯、100ml三角瓶、500或1000ml搪瓷杯、50ml量筒等。 （2）药品和试剂 硝酸铵、硝酸钾、氯化钙、硫酸镁、磷酸二氢钾、碘化钾、硫酸锰、硫酸锌、钼酸钠、硫酸铜、氯化钴、乙二胺四乙酸二钠、硫酸亚铁、甘氨酸、盐酸硫胺素、盐酸吡哆素、烟酸、肌醇、2,4-D(2,4-二氯苯氧乙酸)、NAA（α-萘乙酸）、6-BA （6-苄基腺嘌呤）、浓盐酸、氢氧化钠、95%酒精、蒸馏水等。MS培养基母液、琼脂、蔗糖、生长调节物质、蒸馏水、1mol·L-1HCl、1mol·L-1NaOH、愈伤组织继代培养基、75％酒精。（3）实验材料 红豆杉种子 处于脱分化进程中的外植体 2．实验方法步骤及注意事项 I、MS培养基母液和常用试剂的配制 （1）培养基的成分 目前，不论液体培养还是固体培养，大多数植物组织培养中所用的培养基都是由无机营养物、碳源、维生素、生长调节物质和有机附加物等几大类物质组成。 （2）培养基的配制方法 配制培养基的最简单的方法是用市售培养基干粉溶解在蒸馏水里，加上蔗糖、琼脂和其他必要的补加物，再加入蒸馏水使之达到最终的容积。最后调节pH值，高压灭菌，于是制成所需要的培养基。 如果没有培养基干粉，则可采用以下两种方法来配制： 一个是按照配方规定的数量分别称量出各种成分，分别使它们溶解于水，然后再将它们混合在一起。 另一个是先配制一系列的浓缩贮备液(母液)，贮存在2～4℃冰箱内，待配培养基时取出，按比例稀释配用。此法较为常用。 （3）MS培养基母液的配制 母液的配制有两种方法：
百合的组织培养
百合的组织培养 百合是百合科属多年生草本鳞茎植物，是世界著名的观赏花卉。全世界的本属植物约有94种，主要分布在北半球的温带和寒带地区，少数种类分布在热带高海拔地区。中国是百合属植物分布最多的国家，也是世界百合起源的中心，据调查约有47种18个变种，占世界百合总数的一半以上，其中有36种15个变种为中国特有种。随着我国花卉产业的不断发展20世纪80年代后期大量优良的观赏百合栽培品种陆续从荷兰等国引进我国。现已得到广泛栽培，成为我国花卉市场中的重要高档切花种类。 关于百合的组织培养，国内外不少研究者开展了大量的工作。在优良品种快速繁殖、品种脱毒复壮、新品种培育以及种质资源保存等方面，具有较为成熟的技术。 百合植株的不同部分均采用组织培养的方法，繁殖出新个体并进行快速扩繁。据不完全统计，国内外组织培养成功的百合种及品种已超过几百种。最早是Dobreaux等人（1950）首次用纯白百合（Liliumcandidum）的花蕾成功地诱导出小鳞茎。随后Robb(1957)成功地进行了2个种百合鳞片的培养结果如下。 鳞片腹轴面上、中、下三部分形成小鳞茎的百分率分别为0、3.8%及71.3%。春秋季鳞片形成子球率分别为77%及53%，夏季为2%，冬季为0。 Henser(1976)培养兰州百合（L.davidiivar.unicolor）的花柱和花梗，通过愈伤组织途径得到试管小鳞茎。 黄济明（1979~1984）对25个种或品种进行了组培试验，证明百合的珠芽、鳞片、鳞茎盘、根、茎、叶、茎尖、花梗、花柱和未成熟胚等外植体均能被促进形态发生。新美芳二（1980）对百合鳞片、花被片、花丝、花柄等也组培成功，认为开花时各花器官和茎所形成小鳞茎的能力最高。相增海（1983）用4个种的百合鳞片、茎段进行培养证实。种间分化率存在明显差异。取处于休眠期的外植体进行培养，其分化能力下降。 程治英等人（1991~2001）对30多种或品种的百合进行组培证实的结果如下： （1）用百合根、叶作为外植体，也与鳞片一样，不同部位分化丛芽的能力都是近轴端大于远轴端。 （2）鳞茎鳞片分化能力（分化苗的频率和速度）都是外部大于内部。 杂种品种的分化能力大于野生种，低海拔种大于高海拔种。鳞片组培得到小鳞茎的试管鳞片其分化能力大于原始培养鳞片的分化能力。 王爱勤（1998）比较了9个品种分化小鳞茎的差异，结果表明不同品种的分化能力有明显的不同，显著高的达86%，低的仅13%。赵祥云（2000）等人报道：由花梗或花柱培养的小苗，虽然其鳞茎的培养途径一样，但从移栽到开花的时间可大大缩短，如麝香百合杂种系花柱培养的试管苗从移栽到开花只需半年多时间。李宝平等人（1992）对平陆百合(L.davidiivar.umicolor)组培中发生小鳞茎的条件及人工种皮包埋效果进行了观察和分析。他认为百合鳞茎既是储藏器官又是无性繁殖器官。从植株的整体结构看，它位于中间偏下部位。从遗传势的角度出发，鳞片中偏下部位发生小鳞茎应有的较强遗传势，组培中小鳞茎发生的能力最强，这既符合生物的遗传优势理论，又符合组培实际情况。屈云慧等人近期对从国外引进的100余个百合品种进行了组培研究及快繁生产，在短期内获得了大量的组培种苗。 有效的培养方法 1、培养基配方 诱导培养基：MS+BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L 增殖培养基：MS+BA0.5mg/L+NAA0.5mg/L 生根培养基：1/2MS+NAA0.1mg/L 2、培养程序 取材及灭菌优选生长健壮、开花性状好的种球作为外植体。在取材前，最好将准备接种