色彩混合原理(加色法与减色法)
色彩混合原理（加色法与减色
颜色模型
颜色模型简介
RGB颜色模型
RGB颜色模型是最佳的色彩模式，可以提供全屏幕的24bit的颜色范围，即真彩色显示。但是，如果将RGB模式用于打印就不是最佳的了，会损失一部分亮度，比较鲜艳的色彩肯定会失真的。
CMYK颜色模型
CMYK（cyan,magenta,yellow）颜色空间应用于印刷工业9印刷业通过青（C）、品（M）、黄（Y）三原色油墨的不同网点面积率的叠印来表现丰富多彩的颜色和阶调，这便是三原色的CMY 颜色空间。实际印刷中，一般采用青（C）、品（M）、黄（Y）、黑（BK）四色印刷，在印刷的中间调至暗调增加黑版。当红绿蓝三原色被混合时，会产生白色，但是当混合蓝绿色、紫红色和黄色三原色时会产生黑色。既然实际用的墨水并不会产生纯正的颜色，黑色是包括在分开的颜色，而这模型称之为CMYKo CMYK颜色空间是和设备或者是印刷过程相关的，则工艺方法、油墨的特性、纸张的特性等，不同的条件有不同的印刷结果。所以CMYK颜色空间称为与设备有关的表色空间。而且，CMYK具有多值性，也就是说对同一种具有相同绝对色度的颜色，在相同的印刷过程前提下，可以用分种CMYK数字组合来表示和印刷出来。这种特性给颜色管理带来了很多麻烦，同样也给控制带来了很多的灵活性。在印刷过程中, 必然要经过一个分色的过程，所谓分色就是将计算机中使用的RGB颜色转换成印刷使用的CMYK颜色。在转换过程中存在着两个复杂的问题，其一是这两个颜色空间在表现颜色的范围上不完全一样，RGB的色域较大而CMYK则较小，因此就要进行色域压缩；其二是这两个颜色都是和具体的设备相关的，颜色本身没有绝对性。因此就需要通过一个与设备无关的颜色空间来进行转换，即可以通过以上介绍的XYZ或LAB色空间来进行转换。
Lab颜色模型
Lab颜色模型是有国际照明委员会（CIE）于4976年公布的一种颜色模型，Lab颜色模型弥补了RGB和CMYK两种色彩模式的不足。Lab颜色模型由三个要素组成，一个要素是亮度（L）, a和b是两个颜色通道。a包括的颜色是从深绿色（低亮度值）到灰色（中亮度值）再到亮粉红色（高亮度值）；b是从亮蓝色（底亮度值）到灰色（中亮度值）再到黄色（高亮度值）。因此，这种颜色混合后将产生具有明亮效果的色彩。
HSI颜色模型
HSI （Hue-Saturation-lntensity（Lightness）,HSI 或HSL）颜色模型用H、S、I 三参
数描述颜色特性，其中H定义颜色的波长，称为色调；S表示颜色的深浅程度，称为饱和度；I表示强度或亮度
HSV颜色模型
HSV(hue,saturation,value颜色模型所代表的颜色域是CIE色度图的一个子集，这个模型中饱和度为百分之百的颜色，其纯度一般小于百分之百。画家用改变色浓和色深的方法从
某种纯色获得不同色调的颜色，在一种纯色中加入白色以改变色浓，加入黑色以改变色深，
同时加入不同比例的白色，黑色即可获得各种不同的色调。
HSL颜色模型
HSL(hue,saturation,lightness)?色空间，这个颜色空间都是用户台式机图形程序的颜色表zjso
HSB颜色模型
HSB(hue,saturation,brightness)颜色空间，这个颜色空间都是用户台式机图形程序的颜色表不。
Ycc颜色模型
柯达发明的颜色空间，由于PhotoCd在存储图像的时候要经过一种模式压缩，所以PhotoCd 采用了Ycc颜色空间，Ycc空间将亮度作由它的主要组件，具有两个单独的颜色通道，采用Ycc 颜色空间来保存图像，可以节约存储空间。
XYZ颜色模型
国际照明委员会(CIE)在进行了大量正常人视觉测量和统计,1931年建立了"标准色度观察者”，从而奠定了现代CIE标准色度学的定量基础。由于"标准色度观察者"用来标定光谱色时出现负刺激值，计算不便，也不易理解，因此1931年CIE在RGB系统基础上，改用三个假想的原色X、Y、Z建立了一个新的色度系统。将它匹配等能光谱的三刺激值，定名为"CIE1931 标准色度观察者光谱三刺激值"，简称为"CIE1931标准色度观察者"。这一系统叫做"CIE1931 标准色度系统"或称为"2°视场XYZ色度系统"。CIEXYZ颜色空间稍加变换就可得到Yxy色彩空间，其中Y取三刺激值中Y的值，表示亮度，x、y反映颜色的色度特性。定义如下：在色彩管理中，选择与设备无关的颜色空间是十分重要的，与设备无关的颜色空间由国际照明委员会(CIE)制定，包括CIEXYZ和CIELAB两个标准。它们包含了人眼所能辨别的全部颜色。而且，CIEYxy测色制的建立给定量的确定颜色创造了条件。但是，在这一空间中，两种不同颜色之间的距离值并不能正确地反映人们色彩感觉差别的大小，也就是说在CIEYxy色厦图
中，在不同的位置不同方向上颜色的宽容量是不同的，这就是Yxy 颜色空间的不均匀性。
这一缺陷的存在，使得在Yxy及XYZ空间不能直观地评价颜色。
YUV颜色模型
在现代彩色电视系统中，通常采用三管彩色摄像机或彩色CCD点耦合器件）摄像机，它把摄
得的彩色图像信号，经分色、分别放大校正得到RGB再经过矩阵变换电路得到亮度信号丫和两个色差信号R－Y、B－Y，最后发送端将亮度和色差三个信号分别进行编码，用同一信道发送出去。这就是我们常用的YUV色彩空间。采用YUV色彩空间的重要性是它的亮度信号丫和色度信号U、V是分离的。如果只有丫信号分量而没有U、V分量，那么这样表示的图就是黑白灰度图。彩色电视采用YUV空间正是为了用亮度信号丫解决彩色电视机与黑白电视机的兼容问题，使黑白电视机也能接收彩色信号。根据美国国家电视制式委员会，NTSC 制式的标准，当白光的亮度用丫来表示时，它和红、绿、蓝三色光的关系可用如下式的方程描述：Y=0.3R+0.59G+0.11B这就是常用的亮度公式。色差U、V是由B—Y、R— Y按不同比例压缩而成的。如果要由YUS间转化成RGB空间，只要进行相反的逆运算即可。与YUV 色彩空间类似的还有Lab色彩空间，它也是用亮度和色差来描述色彩分量，其中L为亮度、
a和b分别为各色差分量。
尽管颜色模型有许多许多种类，但我们只讨论常用的三种颜色模型：RGB 颜色模型、
CMYK 颜色模型和Lab 色彩模型。为了能较好的理解各类颜色模型。下面我们将对相关的一些基本概念作一下讨论。
1．什么是颜色的本质？要回答颜色的本质是什么，我们们首先要弄清什么是光的本质。我们不想来详细讨论物理学中光的波粒二象性，只想简单地讨论一下与颜色有关的内容。
光的本质是电磁波。电磁波由于波长的不同可分为通讯波、红外线、可见光、紫外线、X
线、r 线和宇宙线等。其中波长为380—780nm 的电磁波为可见光。可见光透过三棱镜可以呈现出红、橙、黄、绿、青、蓝、紫七种颜色组成的光谱。
红色光波最长，640 —780nm ;紫色光波最短，380 —430nm在真空中：
红光：770?640 nm
橙黄光：640?580 nm
绿光：580?495 nm
蓝靛光：495?440 nm
紫光：440?400 nm
波长是连续变化的，你可以找个光谱来看看波长为380 —780nm的电磁波为可见光。可见光透过三棱镜可以呈现出红、橙、黄、绿、青、蓝、紫七种颜色组成的光谱。
首先，我们之所以能看到各种物体，是因为光的反射。光射到物体上然后发出反射光，反射光再射到人的眼睛里，人就看到物体了。
在一般情况下，入射光都是由光源发出的包含各种颜色的自然光，当这些光射到不同的物体上，物体对光的吸收和反射情况并不都相同，于是出现了颜色的差异。我们看到物体呈现白色，是因为物体将射到它上面的所有光都反射了，这些光叠加在一起是白色的，又射到我们眼睛里，所以我们说，这个物体是白色的。而看到物体呈现黑色也是一样的道理，只是黑色正好相反，物体将射到它上的所有光都吸收了，我们看不到从它上发出的任何反射光，所以认为它是黑色。举个例子说吧：一个红色的西红柿，如果放在蓝光下，会是什么颜色呢？也许有的人会认为是红光和蓝光叠加在一起成的颜色，其实并不是，西红柿这时会呈现黑色。
我们平时看到它是红色，是因为它只反射红光，而其他光则都被吸收了（包括蓝光），那么放在蓝光下，西红柿将会把蓝光吸收，就不再反射出任何光了，所以呈现黑色。其他的，物体
三原色混色原理理论
三原色混色原理理论 三原色，所谓三原色，就是指这三种色中的任意一色都不能由另外两种原色混合产生，而其它色可由这三色按照一定的比例混合出来，色彩学上将这三个独立的色称为三原色。 混色理论 色彩的混合分为加法混合和减法混合，色彩还可以在进入视觉之后才发生混合，称为中性混合。 （一）加法混合 加法混合是指色光的混合，两种以上的光混合在一起，光亮度会提高，混合色的光的总亮度等于相混各色光亮度之和。色光混合中，三原色是朱红、翠绿、蓝紫。这三色光是不能用其它别的色光相混而产生的。而： 朱红光＋翠绿光＝黄色光 翠绿光＋蓝紫光＝蓝色光 蓝紫光＋朱红光＝紫红色光 黄色光、蓝色光、紫色光为间色光。 如果只通过两种色光混合就能产生白色光，那么这两种光就是互为补色。例如：朱红色光与蓝色光；翠绿色光与紫色光；蓝紫色光与黄色光。 （二）减法混合 减法混合主要是指的色料的混合。 白色光线透过有色滤光片之后，一部分光线被反射而吸收其余的光线，减少掉一部分辐射功率，最后透过的光是两次减光的结果，这样的色彩混合称为减法混合。一般说来，透明性强的染料，混合后具有明显的减光作用。 减法混合的三原色是加法混合的三原色的补色，即：翠绿的补色红（品红）、蓝紫的补色黄（淡黄）、朱红的补色蓝（天蓝）。用两种原色相混，产生的颜色为间色： 红色＋蓝色＝紫色 黄色＋红色＝橙色 黄色＋蓝色＝绿色 如果两种颜色能产生灰色或黑色，这两种色就是互补色。三原色按一定的比例相混，所得的色可以是黑色或黑灰色。在减法混合中，混合的色越多，明度越低，纯度也会有所下降。 （三）中性混合 中性混合是基于人的视觉生理特征所产生的视觉色彩混合，而并不变化色光或发光材料本身，混色效果的亮度既不增加也不减低，所以称为中性混合。 有两种视觉混合方式： A:颜色旋转混合：把两种或多种色并置于一个圆盘上，通过动力令其快速旋转，而看到的新的色彩。颜色旋转混合效果在色相方面与加法混合的规律相似，但在明度上却是相混各色的平均值。 B:空间混合：将不同的颜色并置在一起，当它们在视网膜上的投影小到一定程度时，这些不同的颜色刺激就会同时作用到视网膜上非常邻近的部位的感光细胞，以致眼睛很难将它们独立地分辨出来，就会在视觉中产生色彩的混合，这种混合
抗凝血酶Ⅲ测定试剂盒(发色底物法)产品技术要求meichuang
抗凝血酶Ⅲ测定试剂盒（发色底物法） 适用范围：本产品用于体外定量测定人血浆中抗凝血酶III的活性。 1.1产品型号：产品为冻干型和液体型，试剂规格如下： 2.性能指标 2.1外观 .产品外包装应完整，无破损，标识、标签清晰； .冻干型：凝血酶试剂、发色底物为白色冻干品，复溶后为清晰无色液体，缓冲液为无色透明液体。 .液体型：凝血酶试剂、发色底物为无色液体，缓冲液为无色透明液体。 2.2装量(液体) 液体试剂的装量应不低于产品标示量。 2.3残留水分（冻干型） 凝血酶试剂、发色底物的含水量应≤3％。 2.4准确性
用试剂盒测试定值血浆，测量结果与定值血浆标示值相对偏差应≤±10%。 2.5 重复性 用正常值血浆重复测定的结果变异系数（CV%）均应≤6%。 用异常值血浆重复测定的结果变异系数（CV%）均应≤8%。 2.6批间差 用3个不同批号的试剂测试正常值血浆，所得结果的批间差应≤10％。 2.7瓶间差（冻干型） 用正常值血浆测试的瓶间变异系数（CV）应≤8%。 2.8 线性 线性范围为30％～150％，相关系数r≥0.98 2.9稳定性 a）冻干型制剂复溶稳定性：复溶后样品在2-8℃条件下，保存24小时，取该样品检测外观、准确性、重复性应符合2.1、2.4、2.5的要求。 b）液体制剂效期稳定性：在2-8℃条件有效期为12个月。取到效期后的样品检测外观、准确性、重复性，线性应符合2.1、2.4、2.5、2.8的要求。 c）冻干型制剂效期稳定性：在2-8℃条件有效期为12个月。取到效期后的样品检测外观、残留水分、准确性、重复性，瓶间差、线性应符合2.1、2.3、2.4、2.5、2.7、2.8的要求。
混合颜色原理(颜色的相加与相减)
讲到绘画、图像，自然离不开谈颜色，所有的图案都是由基本形状和颜色组成，颜色构成了我们图像处理的一个重要部分，下面我们将要了解颜色的原理,它将是我们美工的基础。 (一) 三基色原理 在中学的物理课中我们可能做过棱镜的试验，白光通过棱镜后被分解成多种颜色逐渐过渡的色谱，颜色依次为红、橙、黄、绿、青、蓝、紫，这就是可见光谱。其中人眼对红、绿、蓝最为敏感，人的眼睛就像一个三色接收器的体系，大多数的颜色可以通过红、绿、蓝三色按照不同的比例合成产生。同样绝大多数单色光也可以分解成红绿蓝三种色光。这是色度学的最基本原理，即三基色原理。三种基色是相互独立的，任何一种基色都不能有其它两种颜色合成。红绿蓝是三基色，这三种颜色合成的颜色范围最为广泛。红绿蓝三基色按照不同的比 例相加合成混色称为相加混色。 红色+绿色=黄色 绿色+蓝色=青色
红色+蓝色=品红 红色+绿色+蓝色=白色 黄色、青色、品红都是由两种及色相混合而成，所以它们又称相加二次色。另外： 红色+青色=白色 绿色+品红=白色 蓝色+黄色=白色 所以青色、黄色、品红分别又是红色、蓝色、绿色的补色。由于每个人的眼睛对于相同的单色的感受有不同，所以，如果我们用相同强度的三基色混合时，假设得到白光的强度为100%，这时候人的主观感受是，绿光最亮，红光次之，蓝光最弱。 除了相加混色法之外还有相减混色法。在白光照射下，青色颜料能吸收红色而反射青色，黄色颜料吸收蓝色而反射黄色，品红颜料吸收绿色而反射品红。也就是：
白色-红色=青色 白色-绿色=品红 白色-蓝色=黄色 另外，如果把青色和黄色两种颜料混合，在白光照射下，由于颜料吸收了红色和蓝色，而反 射了绿色，对于颜料的混合我们表示如下： 颜料(黄色+青色)=白色-红色-蓝色=绿色 颜料(品红+青色)=白色-红色-绿色=蓝色 颜料(黄色+品红)=白色-绿色-蓝色=红色 以上的都是相减混色,相减混色就是以吸收三基色比例不同而形成不同的颜色的。所以有把青色、品红、黄色称为颜料三基色。颜料三基色的混色在绘画、印刷中得到广泛应用。在颜料三基色中，红绿蓝三色被称为相减二次色或颜料二次色。在相减二次色中有：
2021大班优秀美术公开课教案《三原色—加色法原理》
大班优秀美术公开课教案《三原色—加色法原理》 1.引导幼儿认识三原色,感知颜色的变化，产生探索颜色变化的兴趣。 2.能在活动过程中探索颜色的变化，并能说出×颜色和×颜色混合在一起变成×颜色。 多媒体课件，颜料(红、黄、蓝)，一次性杯子，A4纸。 1、故事导入，引起兴趣。 小朋友们，今天老师向你们介绍三位可爱的宝宝，他们分别是红宝宝、黄宝宝、蓝宝宝(师出示课件)，他们是最好的朋友。一天，蓝宝宝和黄宝宝一起到公园玩，她们在公园里跑呀，跳呀，玩的非常开心，并且激动地抱在了一起，(出示课件)她们抱啊转啊，结果……你们猜怎么样? --结果他们都变成了绿宝宝，你们相信吗? 2、让幼儿感知颜色变化。
今天我把黄宝宝和蓝宝宝都带来了，我们一起看看，会不会变成绿色呢?"好了，(教案出自：教案网)小朋友仔细看清楚了，魔术师要开始变魔术咯!"(教师示范操作)学生观察教师操作，感受颜色的变化。(教师实物操作)小结：蓝宝宝和黄宝宝抱在一起变成了绿宝宝。 师：我把红宝宝和黄宝宝也请来了，我请一位小朋友来变变看。(邀请一名幼儿示范操作)引导幼儿说出自己的发现。 小结：红宝宝和黄宝宝抱在一起变成了橙宝宝。 --生活中常见的橙色的物体(展示课件图片)小朋友再想一想，假如红宝宝和蓝宝宝抱到一起，又会变成什么颜色宝宝呢?(幼儿思考，自由猜想。)邀请一名幼儿操作演示，引导幼儿说出自己的发现。 小结：红宝宝和蓝宝宝抱在一起变成了紫宝宝。 --生活中常见的紫色的物体(展示课件图片)
3、总结：引出原色概念(色彩中不能再分解的基本色称之为原色，原色可以合成其他的颜色，(教案出自：教案网)美术色彩三原色：红，黄，蓝)加色法原理：蓝+黄=绿红+黄=橙蓝+红=紫 4、幼儿欣赏图画艺术作品，探索颜色变化。 师：这些颜色宝宝不仅会变颜色，还能印出许多漂亮的图案，(师课件展示范作品，幼儿欣赏),这些图案好不好看啊?我们下一节课也来动手印一印吧! 5、结束：儿歌《彩色的世界真奇妙》 模板,内容仅供参考
三原色混色原理理论
三原色混色原理理论 Document serial number【LGGKGB-LGG98YT-LGGT8CB-LGUT-
三原色混色原理理论 三原色，所谓三原色，就是指这三种色中的任意一色都不能由另外两种原色混合产生，而其它色可由这三色按照一定的比例混合出来，色彩学上将这三个独立的色称为三原色。 混色理论 色彩的混合分为加法混合和减法混合，色彩还可以在进入视觉之后才发生混合，称为中性混合。 （一）加法混合 加法混合是指色光的混合，两种以上的光混合在一起，光亮度会提高，混合色的光的总亮度等于相混各色光亮度之和。色光混合中，三原色是朱红、翠绿、蓝紫。这三色光是不能用其它别的色光相混而产生的。而： 朱红光＋翠绿光＝黄色光 翠绿光＋蓝紫光＝蓝色光 蓝紫光＋朱红光＝紫红色光 黄色光、蓝色光、紫色光为间色光。 如果只通过两种色光混合就能产生白色光，那么这两种光就是互为补色。例如：朱红色光与蓝色光；翠绿色光与紫色光；蓝紫色光与黄色光。 （二）减法混合 减法混合主要是指的色料的混合。 白色光线透过有色滤光片之后，一部分光线被反射而吸收其余的光线，减少掉一部分辐射功率，最后透过的光是两次减光的结果，这样的色彩混合称为减法混合。一般说来，透明性强的染料，混合后具有明显的减光作用。 减法混合的三原色是加法混合的三原色的补色，即：翠绿的补色红（品红）、蓝紫的补色黄（淡黄）、朱红的补色蓝（天蓝）。用两种原色相混，产生的颜色为间色： 红色＋蓝色＝紫色 黄色＋红色＝橙色 黄色＋蓝色＝绿色 如果两种颜色能产生灰色或黑色，这两种色就是互补色。三原色按一定的比例相混，所得的色可以是黑色或黑灰色。在减法混合中，混合的色越多，明度越低，纯度也会有所下降。 （三）中性混合 中性混合是基于人的视觉生理特征所产生的视觉色彩混合，而并不变化色光或发光材料本身，混色效果的亮度既不增加也不减低，所以称为中性混合。 有两种视觉混合方式： A:颜色旋转混合：把两种或多种色并置于一个圆盘上，通过动力令其快速旋转，而看到的新的色彩。颜色旋转混合效果在色相方面与加法混合的规律相似，但在明度上却是相混各色的平均值。
血凝仪器
血液凝固分析仪的选择和使用 血液凝固分析仪的应用为血栓、出血性疾病及血栓前状态的诊疗、预后分析提供了较多的实验室指标，也大大提高了工作效率，测定结果的重复性和准确性也有了不同程度的提高，但各种不同类型血凝仪的应用也给止血、血栓检验标准化工作的开展带来了一些困难。本文主要介绍血凝仪的简况和国内的使用情况，同时就血液仪的选择及使用过程中应注意的问题提出一些看法，供同道们参考。 一、血凝仪的简况介绍： 早期使用的血凝仪多采用凝固法（凝固法据检测原理的不同又分为光学法、磁珠法和电流法）进行测定，仪器的检测项目也比较有限，随着免疫学方法（主要是免疫比浊法）和发色底物法的应用，血凝仪的检测项目大大增加，免疫比浊法主要用于FDP、D-二聚体和AT-Ⅲ的测定，发色底物法可用于AT-Ⅲ、蛋白C和纤溶酶原等项目的测定。凝固法、免疫比浊法和发色底物法的联合应用使血凝仪不仅可用于临床的常规检测，同时也为研究新的实验指标在止血、血栓性疾病中的应用提供了有利条件。 根据自动化程度的高低，血凝仪又分为全自动和半自动仪器。全自动仪器的特点是检测速度快，测定项目多，检测原理较复杂和仪器设计的智能化。使用全自动血凝仪时只要将分离出的血浆样品放置在指定的位置，仪器便可完成加样、预温、检测和报告打印等全过程。多数全自动血凝仪可任意选择不同的项目组合进行检测，样品的检测具有随机性，仪器的数据处理和存储功能也较强。半自动血凝仪需手工加样，检测速度较慢，原理较单一，检测项目少，仪器配备的软件功能也很有限。 近年来血凝仪发展和改进的趋势主要体现在如下几个方面：即检测原理的复杂化、检测速度的增加，试剂分配系统准确性的提高和仪器随机分析功能的增强等。 二、血凝仪在国内的使用情况： 目前国内使用的血凝仪主要为进口仪器。早期引进的血凝仪多是价格偏低、检测速度慢、测定项目较少的半自动仪器，且数量较少。随着国内经济发展水平的提高，近5年来引进的仪器数量大大增加，主要以全自动的中档仪器为主。近两年来在北京、上海和广东等地的一些大医院购进了全自动的高档血凝仪，提高了国内使用血凝仪的档次。 为了了解血凝仪的使用情况，我们对2000年参加全国凝血试验室间质评实验室使用的仪器进行了统计。参加实验室所用仪器的分布状况见表1。 表1. 参加全国质评的实验室使用仪器的分布状况 厂商仪器系列 使用该种仪器实验 室所占的百分比各系列仪器所占比例最多的型号 美国 BECKMAN COULTER IL30.6ACL 200日本Sysmex CA25.7CA 1500
格拉斯曼颜色光混合定律
?太阳光可以分解成红、橙、黄、绿、蓝、靛、紫七种色光这个现象叫做光的色散。 ?英国物理学家牛顿是第一个用实验来研究光的色散现象的人。 ?色光的三原色 ?红、绿、蓝三色光按不同的比例混合，能产生任何一种其他颜色的光，因此我们把 红、绿、蓝叫做光的三原色 ?物体的颜色 ?透明物体的颜色由通过它的色光决定。 ?红色玻璃纸只能通过红光； ?蓝色玻璃纸只能通过蓝光； ?绿色玻璃纸只能通过绿光 ?所以有色的透明物体透过什么色光，它就是什么颜色。 ?红色物体只反射红光而吸收其它颜色的光，蓝色物体只反射蓝光而吸收其它颜色的 光， ?颜色由三个知觉纬度决定：色调、饱和度和亮度。波长决定了第一个知觉维度—— 色调，可见光谱显示的是人类眼睛能够看到的色调范围。 ?光也可以有强度上的变化，与之对应的是第二个知觉维度——亮度。 ?第三个知觉维度——饱和度，光的相对纯度。当所有电磁波的波长都相同时，颜色 最纯，也就是说，饱和度最高。相反，当电磁波中含有全部波长时，我们看不到任何颜色——看到的只是白色。 ?黄和蓝、红和绿都是互补色。互补色按适当比例混合一定能得出白色或灰色， ?几个颜色所组成的混合色的亮度是各颜色的亮度之和。如第一个颜色的亮度L1，第 二个颜色的亮度L2，则其混合色的亮度为L1+ L2 格拉斯曼颜色光混合定律 ?格拉斯曼（H. Grassman)在总结以往颜色混合实验现象的基础上，于1854年归纳总 结出以下几条实验规律，称为格拉斯曼颜色混合定律，它是建立现代色度学的基础。 ?颜色的属性 ?(1)人眼的视觉只能分辨颜色的3种变化：明度、色调、彩度（或饱和度）。这3种 特性可以统称为颜色的三属性。 ?明度是指人眼对物体的明暗感觉。发光物体的亮度越高，则明度越高；非发光物体 反射比越高，明度越高。色调是指彩色彼此相互区分的特性。可见光谱中不同波长的辐射在视觉上表现为各种色调，如红、橙、黄、绿、青、蓝、紫等。彩度表示物体颜色的浓淡程度或颜色的纯洁性。 ?可见光谱的各种单色光的彩度最高，颜色最纯，白光的彩度最低。单色光掺入白光 后，彩度将降低，参入白光越多，彩度就越低，但它们的色调不变。物体色的彩度决定于物体表面反射光谱辐射的选择性程度。若物体对光谱某一较窄波段的反射率很高，而对其他波段的反射率很低，这一波段的颜色的彩度就高。 ?补色律和中间色律 ?(2) 在由两个成分组成的混合色中，如果一个成分连续变化，混合色的外貌也连续 地变化，由此导出两个定律：补色律和中间色律。 ?补色律：每种颜色都有一个相应的补色；某一颜色与其补色以适当的比例混 合，便产生白色或灰色；以其他比例混合，便产生近似比重大的颜色成分的中间色。 ?中间色律：任何两个非补色混合，便产生 ?中间色，其色调决定于两个颜色的相对数量，其彩度主要决定于两者在色调顺序上 的远近。
《诊断学》 第五节 纤溶活性检测
第五节纤溶活性检测纤维蛋白溶酶（纤溶酶）可将已形成的血凝块加以溶解，产生纤维蛋白（原）的降解产物，从而反映纤溶活性。纤溶活性增强可致出血，纤溶活性减低可致血栓。 一、筛检试验 （一）优球蛋白溶解时间 【原理】 血浆优球蛋白（euglobulin）组分中含有纤维蛋白原（Fg）、纤溶酶原（PLG）和组织型纤溶酶原激活剂（t-PA）等，但不含纤溶酶抑制物（plasmin inhibitor）。受检血浆置于醋酸溶液中，使优球蛋白沉淀，经离心除去纤溶抑制物，将沉淀的优球蛋白溶于缓冲液中，再加入适量钙溶液（加钙法）或凝血酶（加酶法），使Fg转变为纤维蛋白凝块，观察凝块完全溶解所需时间。 【参考值】 加钙法：（129．8±41．1）min；加酶法：（157.0±59．1）min。一般认为<70rain为异常。 【临床意义】 本试验敏感性低，特异性高。 1．纤维蛋白凝块在70 min内完全溶解表明纤溶活性增强，见于原发性和继发性纤溶亢进，后者常见手术、应激状态、创伤、休克、变态反应、前置胎盘、胎盘早期剥离、羊
水栓塞、恶性肿瘤广泛转移、急性白血病、晚期肝硬化、DIC 和应用溶血栓药（rt-PA、UK）。 2．纤维蛋白凝块在超过120 min还不溶解表明纤溶活性减低，见于血栓前状态、栓性疾病和应用抗纤溶药等。 （二）D-二聚体定性试验 【原理】 D-二聚体（D-dirner，D-D）是交联纤维蛋白降解产物之一，为继发性纤溶特有的代谢物。抗D-D单克隆抗体包被于胶乳颗粒上，受体血浆中如果存在D-二聚体，将产生抗原-抗体反应，胶乳颗粒发生聚集现象。 【参考值】 胶乳颗粒比阴性对照明显粗大者为阳性，正常人为阴性。 【临床意义】 D-D阴性是排除深静脉血栓（DVT）和肺血栓栓塞（PE）的重要试验，阳性也是诊断DIC和观察溶血栓治疗的有用试验。凡有血块形成的出血，本试验均可阳性，故其特异性低，敏感度高；但在陈旧性血块时，本试验又呈阴性。 （三）血浆纤维蛋白（原）降解产物定性试验 【原理】 于受检血浆中加入血浆纤维蛋白（原）降解产物[fibrin （agen）degradationproduct，FDPs]抗体包被的胶乳颗粒悬液，若血液中FDPs浓度超过或等于5μg／ml，胶乳颗粒发生凝集。
色彩混合原理(加色法与减色法)
色彩混合原理（加色法与减色
颜色模型 颜色模型简介 RGB颜色模型 RGB颜色模型是最佳的色彩模式，可以提供全屏幕的24bit的颜色范围，即真彩色显示。但是，如果将RGB模式用于打印就不是最佳的了，会损失一部分亮度，比较鲜艳的色彩肯定会失真的。 CMYK颜色模型 CMYK（cyan,magenta,yellow）颜色空间应用于印刷工业9印刷业通过青（C）、品（M）、黄（Y）三原色油墨的不同网点面积率的叠印来表现丰富多彩的颜色和阶调，这便是三原色的CMY 颜色空间。实际印刷中，一般采用青（C）、品（M）、黄（Y）、黑（BK）四色印刷，在印刷的中间调至暗调增加黑版。当红绿蓝三原色被混合时，会产生白色，但是当混合蓝绿色、紫红色和黄色三原色时会产生黑色。既然实际用的墨水并不会产生纯正的颜色，黑色是包括在分开的颜色，而这模型称之为CMYKo CMYK颜色空间是和设备或者是印刷过程相关的，则工艺方法、油墨的特性、纸张的特性等，不同的条件有不同的印刷结果。所以CMYK颜色空间称为与设备有关的表色空间。而且，CMYK具有多值性，也就是说对同一种具有相同绝对色度的颜色，在相同的印刷过程前提下，可以用分种CMYK数字组合来表示和印刷出来。这种特性给颜色管理带来了很多麻烦，同样也给控制带来了很多的灵活性。在印刷过程中, 必然要经过一个分色的过程，所谓分色就是将计算机中使用的RGB颜色转换成印刷使用的CMYK颜色。在转换过程中存在着两个复杂的问题，其一是这两个颜色空间在表现颜色的范围上不完全一样，RGB的色域较大而CMYK则较小，因此就要进行色域压缩；其二是这两个颜色都是和具体的设备相关的，颜色本身没有绝对性。因此就需要通过一个与设备无关的颜色空间来进行转换，即可以通过以上介绍的XYZ或LAB色空间来进行转换。 Lab颜色模型 Lab颜色模型是有国际照明委员会（CIE）于4976年公布的一种颜色模型，Lab颜色模型弥补了RGB和CMYK两种色彩模式的不足。Lab颜色模型由三个要素组成，一个要素是亮度（L）, a和b是两个颜色通道。a包括的颜色是从深绿色（低亮度值）到灰色（中亮度值）再到亮粉红色（高亮度值）；b是从亮蓝色（底亮度值）到灰色（中亮度值）再到黄色（高亮度值）。因此，这种颜色混合后将产生具有明亮效果的色彩。 HSI颜色模型 HSI （Hue-Saturation-lntensity（Lightness）,HSI 或HSL）颜色模型用H、S、I 三参
出凝血191蛋白C(PC)活性测定(发色底物法)(第四版)(精)
出凝血19.１蛋白C（PC）活性测定（发色底物法）（第四版） 出凝血19.2 原理： 标本中的PC在特异的激活剂作用下被激活，PCa作用于特异的发色底物释放出产色基团，在405nm波长下比色，其显色深浅与其活性呈线性关系。 出凝血19.3标本处理： 患者处于休息状态下，采空腹静脉血（急诊病人除外）。采血者应技术熟练，“一针见血”，以防止组织损伤，使外源性凝血因子进入标本。最好不与其它实验一起采集而使血液停留在针管的时间延长。采完血后，将血液沿管壁缓缓注入试管，避免产生气泡；然后迅速将血液和抗凝剂轻轻颠倒混匀，避免用力震荡。 全血要在1小时内分离血浆。分离乏血小板血浆时，要在室温下3000rpm离心10分钟，室温下可存放4小时。全部试验不能在4小时内完成，应将乏血小板血浆分装在0.5～1.0ml的小试管中快速冷冻，储存于-20℃冰箱中。-20℃可保存30天。冷冻过的标本不能再次冷冻，否则结果会不准确。冷冻血浆融化时，应将盛冷冻血浆的容器置于37℃水浴中，并轻轻摇动，使其迅速融化。 出凝血19.4 试剂： 蛋白C试剂盒购于天津威士达公司，试剂盒代号OUVV 15。试剂包括3×10ml蛋白C激活剂；3×3ml底物试剂；1×30ml缓冲液。蛋白C激活剂每瓶用10ml缓冲液复溶，37℃平衡30分钟。底物试剂每瓶用3ml蒸馏水复溶，37℃平衡30分钟。
出凝血19.5仪器：使用Sysmex公司的CA-7000型全自动血液凝固仪。出凝血19.6 操作：按仪器操作步骤执行标准操作。 出凝血19.６.1开机：按下机器侧面的POWER 按钮。开机后机器进行自检，当屏幕上边显示“Ready:”时可以进行试验。 出凝血19.６.2检查消耗品： 1、准备反应杯：打开仪器上盖装反应杯的盖子查看反应杯是否够量，不足时，需及时添加。（一次性最多可放1000 个杯子） 2、准备试剂：按照仪器对试剂的要求，把试剂准备好，放到仪器内相应位置，注意查看试剂的量和有效期。如还不熟悉试剂位置时，可在主屏幕上选Reagent Setting，按屏幕显示放置试剂。 3、查看仪器的洗液瓶和废液瓶 出凝血19.６.3准备标本：将样本放入样本架，再将样本架放到仪器进样器上。 出凝血19.６.4输入检测项目：主菜单上按下Work List 键，进入工作菜单，输入PC项目。 出凝血19.６.5输入样本号：按屏幕下菜单的ID No.键，按顺序输入样本的序号。 出凝血19.６.6开始检测：录入完所有测试信息，按下屏幕右上角START 键，开始检测。 出凝血19.7 计算：仪器自动计算出结果。 出凝血19.8 参考值：70～140%（0.7～1.4）
色彩混合原理(加色法与减色法)
色彩混合原理 颜色模型 颜色模型简介 RGB颜色模型 RGB颜色模型是最佳的色彩模式，可以提供全屏幕的24bit的颜色范围，即真彩色显示。但是，如果将RGB模式用于打印就不是最佳的了，会损失一部分亮度，比较鲜艳的色彩肯定会失真的。 CMYK颜色模型 CMYK(cyan,magenta,yellow)颜色空间应用于印刷工业,印刷业通过青(C)、品(M)、黄(Y)三原色油墨的不同网点面积率的叠印来表现丰富多彩的颜色和阶调，这便是三原色的CMY 颜色空间。实际印刷中，一般采用青(C)、品(M)、黄(Y)、黑(BK)四色印刷，在印刷的中间调至暗调增加黑版。当红绿蓝三原色被混合时，会产生白色，但是当混合蓝绿色、紫红色和黄色三原色时会产生黑色。既然实际用的墨水并不会产生纯正的颜色，黑色是包括在分开的颜色，而这模型称之为CMYK。CMYK颜色空间是和设备或者是印刷过程相关的，则工艺方法、油墨的特性、纸张的特性等，不同的条件有不同的印刷结果。所以CMYK颜色空间称为与设备有关的表色空间。而且，CMYK具有多值性，也就是说对同一种具有相同绝对色度的颜色，在相同的印刷过程前提下，可以用分种CMYK数字组合来表示和印刷出来。这种特性给颜色管理带来了很多麻烦，同样也给控制带来了很多的灵活性。在印刷过程中，必然要经过一个分色的过程，所谓分色就是将计算机中使用的RGB颜色转换成印刷使用的CMYK 颜色。在转换过程中存在着两个复杂的问题，其一是这两个颜色空间在表现颜色的范围上不完全一样，RGB的色域较大而CMYK则较小，因此就要进行色域压缩；其二是这两个颜色都是和具体的设备相关的，颜色本身没有绝对性。因此就需要通过一个与设备无关的
酶联免疫反应常用底物
辣根过氧化物酶HRP底物 辣根过氧化物酶（Horseradish Peroxidase, HRP）具有分子量小，标记方法简单，性质稳定等优点，是临床检验试剂中常用的酶。该产品广泛用于各类生化检测项目及免疫类（ELISA）试剂盒。中华试剂网辣根过氧化物酶的底物种类丰富，可满足不同的实验需求。 ■ HRP的发色底物 辣根过氧化物酶发色底物为过氧化物和供氢体（DH2），其真正底物是H2O2，但人们习惯把供氢体称为底物或统称供氢体底物。在ELISA中常用的供氢体有以下几种： 1、OPD是ELISA技术中应用较多的供氢体，酶作用后显黄色（最大吸收波长为492 nm），其灵敏度高，测定方便。 2、TMB是近年来常用的一种供氢底物，经酶作用后显天蓝色，目测对比度鲜明，加酸终止酶反应后变黄色（最大吸收波长为450 nm），易比色定量测定。 3、DBA供氢底物，其反应产物为不能溶解的棕色吩嗪衍生物，可用不同光镜观察。此种多聚物能被还原和
※小贴士：氧化物、硫化物、氟化物及叠氮化物等可抑制HRP的活性，故勿用这类试剂作为防腐剂。■ HRP的发光底物 鲁米诺（3-氨基邻苯二甲酰肼，Luminol）或其衍生物如异鲁米诺（4-氨基邻苯二甲酰肼，Isoluminol），是一类重要的发光试剂。用HRP标记抗体，进行免疫反应后，利用鲁米诺作为发光底物，在HRP和起动发光试剂(NaOH+H2O2)作用下，鲁米诺发光，发光强度依赖于酶免疫反应物中酶的浓度。反应过程如下图所示： ■配套产品
碱性磷酸酶底物 碱性磷酸酶(Alkaline phospharase, AP)是一种能够在碱性情况下将对应底物去磷酸化的酶，广泛分布于人体的各脏器器官中，以肝脏、骨骼、小肠中存在的量最多。其含量的变化能引起肝炎、肝癌等疾病，是目前免疫诊断试剂产品最常用的标记酶之一。 PNPP（p-Nitrophenyl phosphate disodium salt）是常用的碱性磷酸酶底物，当碱性磷酸酶与PNPP反应后，形成黄色水溶性反应产物，其在&lambda＝405 nm有光吸收。其反应灵敏，颜色鲜明，在诊断试剂盒生产中得到广泛应用。 BCIP和NBT是碱性磷酸酶最佳的发色底物组合之一，产物为深蓝色。在碱性磷酸酯酶的催化下，BCIP会被水解产生强反应性的产物，该产物会和NBT发生反应，形成不溶性的深蓝色至蓝紫色的NBT-formazan，从而达到标记作用。
发色底物法
发色底物法检测原理 首先人工合成可以被待测凝血活酶催化裂解的化合物，且化合物连接上产色物质，在检测过程中产色物质可被解离下来，使被检样品中出现颜色变化，根据颜色变化可推算出被检凝血活酶的活性。产色物质一般选用连接对硝基苯胺（PNA）。游离的PNA呈黄色，其测定波长选用405nm。在这一波长下，其它物质对光的吸收小于PNA对光吸收的1％。具体检测方法即可采用动态法、也可采用终点法。动态法即是连续记录样品的吸光度变化，算出单位时间吸光度的变化量，并以每分钟吸光度的变化来报告结果。终点法即是指在活性酶同产色物质作用一段时间后，加入乙酸终止反应，检测此段时间内吸光度的变化，进而推算出待检酶的活性。凝血仪上多数采用动态法，因为它比终点法简单、结果更为准确。其优点主要表现在： 用酶学方法直接定量、测定结果准确、重复性好、便于自动化和标准化、所需样品量小。凝血仪使用产色物质在检测血栓／止血指标时大致可分成三种模式。 ①对酶的检测： 即在含酶的样品中直接加入产色物质，因为酶可裂解产色物质释放PNA，监测由于PNA释放而导致被检样品在405nm处光吸收的变化，就可推算样品中酶的活性。如对凝血酶、纤溶酶等的检测。 ②对酶原的检测： 要对某种酶原进行测定，必须先用激活剂将其激活，使其活化位点暴露，才可将产色物质上的PNA裂解下来。加入的激活剂必须过量，因为只有这样才能使酶原被全部激活，酶原的量才会同样品中酶的活性成一定的数量关系。样品中酶的活性可通过PNA释放，即样品吸光度的变化反应出来，由此则可推算出样品中酶原的含量。 ③对酶抑制物的检测： 首先往待检样品中加入过量对应的酶中和该抑制物，剩余的酶可裂解产色物质释放PNA，监测由于PNA释放而导致光吸收的变化，就可测出酶的活性，进而可推算出样品中抑制物的含量。如对抗凝血酶Ⅲ（AT-Ⅲ）等。
HemosIL Heparin(发色底物法测定肝素)
HemosIL? In-vitro Diagnostikum De uso diagnóstico in vitro Dispositif mèdical de diagnostic in vitro Per uso diagnostico in vitro Dispositivo médico para utiliza??o em diagnóstico in vitro Chargen-Bezeichnung Identificación número de lote Désignation du lot Numero del lotto Número de lote Verwendbar bis Caducidad Utilisable jusqu’à Da utilizzare prima del Data límite de utiliza??o Festgelegte T emperatur T emperatura de Almacenamiento T empératures limites de conservation Limiti di temperatura Límite de temperatura Beilage beachten Consultar la metódica Lire le mode d’emploi Vedere istruzioni per l’uso Consultar as instru??es de utiliza??o Kontrollen Control Contr?le Controllo Controlo Biologisches Risiko Riesgo biológico Risque biologique Rischio biologico Risco biológico Hergestellt von Fabricado por Fabricant Prodotto da Fabricado por Bevollm?chtigter Representante autorizado Mandataire Rappresentanza autorizzata Representante autorizado Aplicación T est Cromogénico automatizado para la determinación cuantitativa de la actividad de Heparina no Fraccionada (UFH) y de Heparina de Bajo Peso Molecular (LMWH) en plasma humano citratado para los Sistemas de Coagulación IL. Principio glicosaminoglicano reside en su habilidad para acelerar (hasta 2000 veces) el efecto inhibidor de la antitrombina sobre las proteasas de la coagulación. En los últimos a?os se ha demostrado que la LMWH, además de ser tan útil terapéuticamente como la UFH, tiene una vida media más larga. El kit Heparina es una técnica basada en un substrato cromogénico sintético y la inactivación del FXa. El nivel de la Heparina en el plasma de los pacientes es medido automáticamente en los sistemas de coagulación IL en dos etapas: 1. La Heparina es analizada como un complejo con la antitrombina presente en la muestra. La concentración de este complejo es dependiente de la disponibilidad de antitrombina. Para obtener una concentración más constante de antitrombina, se a?ade antitrombina humana purificada al plasma del test.1 El Factor Xa se a?ade en exceso y es neutralizado por el complejo antitrombina-heparina. 2. El Factor Xa residual es cuantificado con un sustrato cromogénico sintético. La Paranitroanilina liberada es medida cinéticamente a 405 nm siendo su nivel inversamente proporcional a la actividad de la Heparina de la muestra.2 Dado que las diferentes clases de Heparina (tanto UFH como LMWH) tienen su propia actividad específica anti-factor Xa, la misma clase de heparina usada en el tratamiento del paciente debe usarse en la calibración de la curva estándar.3,4 Composición El kit Heparin consta de: S Chromogenic substrate (N° Cat. 00020009410): 1 x 4 mL vial de substrato cromogénico liofilizado S-2765, N-α-Z-D-Arg-Gly-Arg-pNA.2HCL (3 mg/vial) y estabilizantes. E Factor Xa reagent (N° Cat. 00020009420): 1 x 5 mL vial de una preparación liofilizada que contiene Factor bovino Xa (68 nkat/vial), tampón T ris, EDT A, cloruro sódico y Albúmina de suero bovino. A Antithrombin (N° Cat. 00020009430): 1 x 3 mL vial de una preparación liofilizada que contiene Antitrombina humana (3 IU/vial), tampón T ris, EDT A, cloruro sódico y Albúmina de suero bovino. B Buffer (N° Cat. 00020009440): 1 x 8 mL vial de solución concentrada que contiene tampón T ris, pH 8,4, EDT A, cloruro sódico y detergente. PRECAUCIóN: El material usado en este producto ha sido verificado por los métodos aprobados por la FDA y encontrado no reactivo al Antígeno de Superficie de la Hepatitis B (HBsAg), Anti-HCV y anticuerpos HIV. Manejar con precaución como si fuese potencialmente infeccioso.5 Indicaciones de Peligro: Ninguna Frases de Riesgo: Ninguna Frases de Seguridad: Ninguna T odos los productos derivados de animales deberán manejarse como potencialmente infecciosos. Este reactivo es para diagnóstico in vitro. Preparación Chromogenic substrate: Disolver el contenido de cada vial con 4 mL de agua tipo CLR de CLSI.6 Cerrar el vial y homogeneizar suavemente. Asegurarse de la completa disolución del producto. Mantener el reactivo entre 15 y 25°C durante 30 minutos. Mezclar por inversión del vial antes de su uso. Factor Xa reagent: Disolver el contenido de cada vial con 5 mL de agua tipo CLR de CLSI.6 Cerrar el vial y homogeneizar suavemente. Asegurarse de la completa disolución del producto. Mantener el reactivo entre 15 y 25°C durante 30 minutos. Mezclar por inversión del vial antes de su uso. Antithrombin: Disolver el contenido de cada vial con 3 mL de agua tipo CLR de CLSI.6 Cerrar el vial y homogeneizar suavemente. Asegurarse de la completa disolución del producto. Mantener el reactivo entre 15 y 25°C durante 30 minutos. Mezclar por inversión del vial antes de su uso. Buffer: Diluir la cantidad necesaria de T ampón concentrado 1:10 (1+9) con agua tipo CLR de CLSI.6 Mezclar antes de su uso. Working buffer (Diluyente funcional): A 24 mL de T ampón diluido, a?adir 1 mL de reactivo reconstituido de Antitrombina. Nota: Una opalescencia instantánea ocurrirá temporalmente al reconstituir los reactivos liofilizado, pero desaparecerá en un par de minutos.Conservación y estabilidad de los reactivos Los reactivos que no hayan sido abiertos son estables hasta la fecha de caducidad indicada en el vial si se mantienen a 2-8°C. Chromogenic substrate - Estabilidad después de la reconstitución: 7 días a 15°C, 3 meses a 2-8°C en el vial original ó 48 horas a 15°C en los sistemas ACL Futura/ACL Advance y Familia ACL TOP?. Factor Xa reagent - Estabilidad después de la reconstitución: 7 días a 15°C, 3 meses a 2-8°C en el vial original ó 48 horas a 15°C en los sistemas ACL Futura/ACL Advance y Familia ACL TOP. Antithrombin - Estabilidad después de la reconstitución: 3 meses a 2-8°C en el vial original. Buffer - El reactivo abierto es estable 3 meses a 2-8°C. Working buffer (Diluyente funcional) - Estabilidad después de su preparación: 7 días a 15°C y 2-8°C en un vial cerrado ó 48 horas a 15°C en los sistemas ACL Futura/ACL Advance y Familia ACL TOP. Para obtener una estabilidad óptima del reactivo reconstituido, sugerimos que acabado el trabajo, conserve el reactivo en su vial original almacenado en nevera entre 2 y 8°C. Método de Ensayo Seguir las instrucciones de la técnica de acuerdo al Manual del Operador de los instrumentos IL o bien al Manual de Aplicaciones. Nota: Se recomienda un ciclo de lavado después de cada sesión de ensayos de Heparina en los modelos ACL Clásicos (100-7000). Recolección y Preparación de las muestras trisódico. Para la recolección, manejo y conservación del plasma seguir las recomendaciones del documento H21-A5 de la CLSI.7 Estandarización Para la preparación del estándar de 0.8 U/ml utilice la misma heparina que la empleada para la terapia del paciente. Atención: para preparar el estándar de 0.8 U/mL deberá utilizarse plasma calibrador o un Pool de Plasma Normal (NPP), dependiendo del analizador que se vaya a emplear. Familia ACL TOP: preparar el estándar de 0.8 U/ mL utilizando Pool de Plasma Normal (NPP). ACL Futura/ACL Advance: tal y como indica el Manual del Operador, para preparar el estándar de 0.8 U/ mL deberá utilizarse plasma calibrador. ACL ELITE/ELITE PRO/8/9/10000: tal y como indica el Manual del Operador, para preparar el estándar de 0.8 U/ mL debería utilizarse plasma calibrador. ACL Clásico (100-7000): tal y como indica el Manual del Operador, para preparar el estándar de 0.8 U/ mL debería utilizarse Pool de Plasma Normal (NPP). Reactivos adicionales y plasmas de control Los siguientes reactivos no se suministran con el kit y deberán pedirse por separado. Américas y Pacific Rim Europa N° Cat. N° Cat. Plasma de Calibración 0020003700 0020003700 Agente de Limpieza 0009831700 0009831700 Agente de Limpieza 0009832700 0009832700 Control de Calidad Para realizar un programa completo de control de calidad, se recomienda el uso de dos niveles de control.8 T anto el Control Heparina Bajo*, como el Control Heparina Alto* están dise?ados específicamente para este programa. Cada laboratorio debe establecer su propia media y desviación estándar, asimismo establecer un programa de Control de Calidad para monitorizar los resultados de su laboratorio. Los controles deben ser usados como mínimo una vez dentro del turno de 8 horas, de acuerdo a la normativa de Buenas Prácticas en el Laboratorio. Referirse al Manual del Operador para información adicional. Consultar la publicación de Westgard y col. para una identificación y resolución de situaciones anormales del Control de Calidad.9 Resultados Los resultados de la Heparina se informan en U/mL. Referirse al Manual del Operador para información adicional. Limitaciones/Interferencias Concentraciones de Hemoglobina hasta 200 mg/dL, Bilirrubina hasta 20 mg/dL y T riglicéridos hasta 700 mg/dL no alteran los resultados de la Heparina en los ACL Futura/ACL Advance. Concentraciones de Hemoglobina hasta 375 mg/dL, Bilirrubina hasta 25 mg/dL y T riglicéridos hasta 1630 mg/dL no alteran los resultados de la Heparina en la Familia ACL TOP. Valores esperados actividad de la heparina debe estar en el rango de actividad recomendado por el fabricante del fármaco.10 Características técnicas Precisión: Se evaluó la precisión intraserie y total (serie a serie y dia a dia) a partir de múltiples series utilizando dos niveles de muestras tanto para la Heparina UFH como para la Heparina LMWH. Familia ACL Media (U/mL) CV % (Intraserie) CV % (Total) UFH 0,77 1,84 2,18 UFH 0,23 7,76 8,23 LMWH 0,79 2,68 3,09 LMWH 0,23 7,99 9,69 ACL Futura/ACL Advance Media (U/mL) CV % (Intraserie) CV % (Total) UFH 0,79 3,0 6,6 UFH 0,52 5,7 7,3 UFH 0,26 9,1 10,0 LMWH 0,76 4,1 4,5 LMWH 0,42 6,2 7,9 LMWH 0,22 10,7 11,9 Familia ACL TOP Media (U/mL) CV % (Intraserie) CV % (Total) UFH 0,82 1,8 6,4 UFH 0,53 3,4 4,3 UFH 0,25 4,6 8,5 LMWH 0,86 2,4 4,4 LMWH 0,49 6,1 8,2 LMWH 0,25 5,7 11,3 Correlación: Sistema Pendiente Intersección r Método de Comparación Familia ACL 0,968 0,014 0,988 IL Heparina (Xa) ACL Futura/ 0,944 0,035 0,989 IL Heparina (Xa) ACL Advance Familia ACL TOP 1,012 -0,005 0,992 HemosIL Heparina (Xa) en ACL Advance Estos resultados de precisión y correlación se obtuvieron utilizando lotes específicos de reactivos y controles. Linealidad: Sistema Familia ACL y ACL Futura/ACL Advance 0 - 1,0 U/mL Familia ACL TOP 0 - 1,1 U/mL Verwendung Automatisierter chromogener T est zur quantitativen Bestimmung der Aktivit?t von unfraktionierten oder niedermolekularen Heparinen in menschlichem Plasma auf IL-Analysensystemen. Testprinzip und Zusammenfassung Heparin ist der am h?ufigsten eingesetzte antithrombotische Wirkstoff. Die biologische Aktivit?t der sulfatierten Glykosaminoglykane beruht auf ihrer F?higkeit den inhibitorischen Effekt des Antithrombin auf die Gerinnungsproteasen um das bis zu 2000-fache zu beschleunigen. In den letzten Jahren wurde gezeigt, dass niedermolekulare Heparine ebenso wie unfraktionierte Heparine zur Therapie eingesetzt werden k?nnen und zudem eine l?ngere Halbwertszeit besitzen. Der Heparin T estkit basiert auf einem synthetischen chromogenen Substrat über die Inaktivierung von Faktor Xa. Der Heparin-Spiegel des Patientenplasmas wird mit IL Gerinnungssystemen automatisch gemessen: 1. Heparin bildet mit dem in der Probe vorhanden Antithrombin einen Komplex. Die Konzentration dieses Komplexes ist von der Verfügbarkeit des Antithrombin abh?ngig. Um eine m?glichst konstante Konzentration an Antithrombin zu erhalten, wird gereinigtes menschliches Antithrombin der Probe zugeführt.1 Faktor Xa wird im überschuss zugegeben und durch den Heparin-Antithrombin-Komplex neutralisiert. 2. Die Restaktivit?t von Faktor Xa wird mit einem synthetischen chromogenen Substrat gemessen. Das freigesetzte Paranitroanilin wird kinetisch bei einer Wellenl?nge von 405 nm erfasst und ist umgekehrt proportional zum Heparin Spiegel der Probe.2 Da verschiedene Arten von unfraktionierten und niedermolekularen Heparinen unterschiedliche spezifische Anti-Faktor Xa-Aktivit?ten aufweisen, sollte bei der Kalibration der Standardkurve immer dasselbe Heparin wie in der Patientenprobe eingesetzt werden.3,4 Inhalt Die Heparin Packung enth?lt: S Chromogenic substrate (Art. Nr. 00020009410): 1 Flasche x 4 mL lyophilisiertes chromogenes Substrat [S-2765, N-α-Z-D-Arg-Gly-Arg-pNA.2HCl (3 mg/Flasche)]. E Factor Xa reagent (Art. Nr. 00020009420): 1 Flasche x 5 mL eines lyophilisierten Pr?parates, das Faktor Xa bovinen Ursprungs (68 nkat/Flasche), T ris-Puffer, EDT A, Natriumchlorid und bovines Serum-Albumin enth?lt. A Antithrombin (Art. Nr. 00020009430): 1 Flasche x 3 mL eines lyophilisierten Pr?parates, das Human- Antithrombin (3 IU/Flasche), T ris-Puffer, EDT A, Natriumchlorid und bovines Serum-Albumin enth?lt. B Buffer (Art. Nr. 00020009440): 1 Flasche x 8 mL einer konzentrierten L?sung, die T ris-Puffer, pH 8,4, EDT A, Natriumchlorid und Detergenz enth?lt. WARNUNG: Das verwendete Material wurde mit FDA anerkannten T estmethoden auf HIV 1/2-Antik?rper, Hepatitis-B-Antigen und HCV-Antigen geprüft. Bitte beachten Sie die Bestimmungen zum Umgang mit potentiell infekti?sen Materialien.5 Gefahrenklasse: keine Risikoeinstufung: keine Sicherheitseinstufung: keine Alle Tierprodukte sollten als potentiell infekti?s behandelt werden. Dieses Produkt ist nur für die in vitro Diagnostik geeignet. Herstellung Chromogenic substrate: Zum Inhalt einer Flasche wird 4 mL CLSI Wasser (CLRW) oder vergleichbares (z. B. Aqua bidest.) pipettiert und durch leichtes Schwenken gel?st.6 Nach vollst?ndiger Rekonstitution wird das Reagenz 30 Minuten bei 15-25°C inkubiert und dann unter vorsichtigem Schwenken erneut gemischt. Factor Xa reagent: Zum Inhalt einer Flasche wird 5 mL CLSI Wasser (CLRW) oder vergleichbares (z. B. Aqua bidest.) pipettiert und durch leichtes Schwenken gel?st.6 Nach vollst?ndiger Rekonstitution wird das Reagenz 30 Minuten bei 15-25°C inkubiert und dann unter vorsichtigem Schwenken erneut gemischt. Antithrombin: Zum Inhalt einer Flasche wird 3 mL CLSI Wasser (CLRW) oder vergleichbares (z. B. Aqua bidest.) pipettiert und durch leichtes Schwenken gel?st.6 Nach vollst?ndiger Rekonstitution wird das Reagenz 30 Minuten bei 15-25°C inkubiert und dann unter vorsichtigem Schwenken erneut gemischt. Buffer: Die ben?tigte Menge des konzentrierten Diluents 1:10 (1+9) mit CLSI Wasser (CLRW) oder vergleichbares (z. B. Aqua bidest.) verdünnen.6 Vor dem Gebrauch mischen. Working buffer (Arbeitsl?sung): Zu 24 mL verdünntem Puffer wird 1 mL des rekonstituierten Antithrombin Reagenzes zugegeben. Hinweis: Auftretende T rübungen verschwinden innerhalb kurzer https://www.360docs.net/doc/488383779.html,gerung und Haltbarkeit Die unge?ffneten Reagenzien sind bei Lagerung zwischen 2-8°C bis zu dem auf dem Etikett angegebenen Verfallsdatum haltbar. Chromogenic substrate - Haltbarkeit nach Rekonstitution: - bei 15°C in der Originalflasche: 7 T age - bei 2-8°C in der Originalflasche: 3 Monate - bei 15°C in ACL Futura/ACL Advance und Systemen der ACL TOP? Familie: 48 Stunden Factor Xa reagent - Haltbarkeit nach Rekonstitution: - bei 15°C in der Originalflasche: 7 T age - bei 2-8°C in der Originalflasche: 3 Monate - bei 15°C in ACL Futura/ACL Advance und Systemen der ACL TOP? Familie: 48 Stunden Antithrombin - Haltbarkeit nach Rekonstitution: - bei 2-8°C in der Originalflasche: 3 Monate Buffer - ge?ffnetes Reagenz: - bei 2-8°C in der Originalflasche: 3 Monate Working buffer (Arbeitsl?sung) - Haltbarkeit nach Herstellung: - bei 15°C im geschlossenen Beh?lter: 7 T age - bei 2-8°C im geschlossenen Beh?lter: 7 T age - bei 15°C in ACL Futura/ACL Advance und Systemen der ACL TOP? Familie: 48 Stunden Für eine optimale Haltbarkeit sollten die Reagenzien nach dem Gebrauch aus dem Ger?t entnommen und im Kühlschrank bei 2-8°C in der Originalflasche aufbewahrt werden. Bestimmungsansatz Die ausführliche Beschreibung des Bestimmungsansatzes ist dem Ger?te-Bedienerhandbuch und/oder dem Applikationshandbuch zu entnehmen. Hinweis: Es wird empfohlen im Anschluss an den Heparin T est einen Reinigungszyklus am ACL Classic (ACL 100-7000) durchzuführen. Probenmaterial und -gewinnung 9 T eile frisches ven?ses Blut und 1 T eil T rinatriumcitratl?sung werden sorgf?ltig in einem silikonisierten Glasr?hrchen gemischt. Hinweise zur Aufbereitung des Blutes sind den Empfehlungen des Deutschen Instituts für Normung - DIN 58 905 - oder dem CLSI Document H21-A5 zu entnehmen.7 Standardisierung Zur Herstellung des 0,8 U/mL Standards sollte dasselbe Heparin wie in der Patientenprobe eingesetzt werden. Hinweis: Zur Herstellung des 0,8 U/mL Standards wird in Abh?ngigkeit vom verwendeten Ger?t entweder Kalibrationsplasma oder Normalpoolplasma (NPP) eingesetzt. ACL TOP Familie: Normalpoolplasma (NPP) sollte zur Herstellung des 0,8 U/mL Standards eingesetzt werden. ACL Futura/ACL Advance: Wie dem Bedienerhandbuch zu entnehmen ist, sollte Kalibrationsplasma zur Herstellung des 0,8 U/mL Standards eingesetzt werden. ACL ELITE/ELITE PRO/8/9/10000: Wie dem Bedienerhandbuch zu entnehmen ist, sollte Kalibrationsplasma zur Herstellung des 0,8 U/mL Standards eingesetzt werden. ACL Classic (ACL 100-7000): Wie dem Bedienerhandbuch zu entnehmen ist, sollte Normalpoolplasma (NPP) zur Herstellung des 0,8 U/mL Standards eingesetzt werden. Zus?tzliche Reagenzien und Kontrollplasmen Die folgenden Reagenzien sind nicht in der Packung enthalten und müssen zus?tzlich bestellt werden: Amerikan. und Pazifischer Raum Europa Art. Nr. Art. Nr. Kalibrationsplasma 0020003700 0020003700 Reinigungsl?sung 0009831700 0009831700 Reinigungsl?sung 0009832700 0009832700 Qualit?tskontrolle pathologischen Bereich zu überprüfen.8 Es wird empfohlen, als Kontrollmaterial die oben angegebenen Kontrollen zu verwenden. Die Bereiche sind der jeweiligen Packungsbeilage zu entnehmen. Jedes Labor sollte seinen eigenen Kontrollbereich ermitteln. Sp?testens nach jeweils 8 Stunden sollte eine Qualit?tskontrolle durchgeführt werden. Algorithmen zur Beurteilung der Qualit?tskontrollergebnisse siehe z.B Westgard et al.9 Siehe auch “Richtlinien der Bundes?rztekammer zur Qualit?tssicherung quantitativer laboratoriumsmedizinischer Untersuchungen” in der jeweils gültigen Fassung. Ergebnisse Heparin Ergebnisse werden in U/mL dargestellt. Zus?tzliche Informationen sind dem Bedienerhandbuch zu entnehmen. Einschr?nkungen Heparin Ergebnisse auf ACL- und ACL Futura/ACL Advance-Analysensystemen werden durch Konzentrationen an H?moglobin bis zu 200 mg/dL, Bilirubin bis zu 20 mg/dL und T riglyceriden bis zu 700 mg/dL nicht beeinflusst. Heparin Ergebnisse auf Systemen der ACL TOP? Familie werden durch Konzentrationen an H?moglobin bis zu 375 mg/dL, Bilirubin bis zu 25 mg/dL und T riglyceriden bis zu 1630 mg/dL nicht beeinflusst. Referenzbereiche Um einen optimalen Effekt bei einem minimierten Risiko bezüglich Blutungen oder thrombotischen Komplikationen zu erzielen, sollte die Heparin-Aktivit?t in dem vom Heparin-Hersteller empfohlenen Bereich liegen.10 Testcharakteristik Pr?zision Die Pr?zision im Lauf und von T ag zu T ag wurde in mehreren L?ufen unter Verwendung von je zwei unterschiedlichen Konzentrationen mit unfraktioniertem (UFH) und niedermolekularem Heparin (LMWH) ermittelt. ACL Familie Mittelwert (U/mL) VK % (im Lauf) VK % (Tag zu Tag) unfrakt. Heparin 0,77 1,84 2,18 unfrakt. Heparin 0,23 7,76 8,23 niedermolek. Heparin 0,79 2,68 3,09 niedermolek. Heparin 0,23 7,99 9,69 ACL Futura/ ACL Advance Mittelwert (U/mL) VK % (im Lauf) VK % (Tag zu Tag) unfrakt. Heparin 0,79 3,0 6,6 unfrakt. Heparin 0,52 5,7 7,3 unfrakt. Heparin 0,26 9,1 10,0 niedermolek. Heparin 0,76 4,1 4,5 niedermolek. Heparin 0,42 6,2 7,9 niedermolek. Heparin 0,22 10,7 11,9 ACL TOP Familie Mittelwert (U/mL) VK % (im Lauf) VK % (Tag zu Tag) unfrakt. Heparin 0,82 1,8 6,4 unfrakt. Heparin 0,53 3,4 4,3 unfrakt. Heparin 0,25 4,6 8,5 niedermolek. Heparin 0,86 2,4 4,4 niedermolek. Heparin 0,49 6,1 8,2 niedermolek. Heparin 0,25 5,7 11,3 Korrelation: System Steigung Ordinatenabschnitt r Referenzmethode ACL Familie 0,968 0,014 0,988 IL Heparin (Xa) ACL Futura/ 0,944 0,035 0,989 IL Heparin (Xa) ACL Advance ACL TOP Familie 1,012 -0,005 0,992 HemosIL Heparin (Xa) am ACL Advance D ie Pr?zisions- und Korrelationsergebnisse sind mit spezifischen Reagenzien- und Kontrollchargen ermittelt worden. Linearit?t: System ACL Familie und ACL Futura/ACL Advance 0 - 1,0 U/mL ACL TOP Familie 0 - 1,1 U/mL Intended use Automated chromogenic assay for the quantitative determination of unfractionated heparin (UFH) and low molecular weight heparin (LMWH) activity in human citrated plasma on the IL Coagulation Systems. Summary and principle Heparin is the most frequently used antithrombotic drug. The biological activity of this sulphated glycosaminoglycan resides in its ability to accelerate (up to 2000-fold) the inhibitory effect of antithrombin on coagulation proteases. In recent years, it has been shown that LMWH, besides being as useful therapeutically as UFH, also has a longer half-life. The Heparin kit is an assay based on a synthetic chromogenic substrate and on Factor Xa inactivation. Heparin levels in patient plasma are measured automatically on IL Coagulation Systems in two stages. 1. Heparin is analyzed as a complex with antithrombin present in the sample. The concentration of this complex is dependent on the availability of antithrombin. In order to obtain a more constant concentration of antithrombin, purified human antithrombin is added to the test plasma.1 Factor Xa is added in excess and is neutralized by heparin-antithrombin complex. 2. Residual Factor Xa is quantified with a synthetic chromogenic substrate. The paranitroaniline released is monitored kinetically at 405 nm and is inversely proportional to the heparin level in the sample.2 Since different kinds of UF- and LMW- Heparins have their own specific anti-Factor Xa activity, the same kind of heparin as is used in the patient sample should also be used for calibrating the standard curve.3,4 Composition The Heparin kit consists of: S Chromogenic substrate (Cat. No. 00020009410): 1 x 4 mL vial of the lyophilized chromogenic substrate S-2765, N-α-Z-D-Arg-Gly-Arg-pNA.2HCl (3 mg/vial) and bulking agent. E Factor Xa reagent (Cat. No. 00020009420): 1 x 5 mL vial of a lyophilized preparation containing purified bovine Factor Xa (68 nkat/vial), T ris-buffer, EDT A, sodium chloride and bovine serum albumin. A Antithrombin (Cat. No. 00020009430): 1 x 3 mL vial of a lyophilized preparation containing human antithrombin (3 IU/vial), T ris-buffer, EDT A, sodium chloride and bovine serum albumin. B Buffer (Cat. No. 00020009440): 1 x 8 mL vial of a concentrated solution containing T ris-buffer, pH 8.4, EDT A, sodium chloride and detergent. PRECAUTIONS AND WARNINGS: The material in this product was tested with FDA cleared methods and found nonreactive for Hepatitis B surface Antigen (HBsAg), Anti-HCV and HIV antibodies. Handle as if potentially infectious.5 Hazard class: None Risk phrases: None Safety phrases: None All animal products should be treated as potentially infectious. This product is For in vitro Diagnostic Use. Preparation Chromogenic substrate: Dissolve the vial contents with 4 mL of CLSI T ype CLR water or equivalent.6 Replace the stopper and swirl gently. Make sure of the complete reconstitution of the product. Keep the substrate at 15-25°C for 30 minutes and invert to mix before use. Factor Xa reagent: Dissolve the vial contents with 5 mL of CLSI T ype CLR water or equivalent.6 Replace the stopper and swirl gently. Make sure of the complete reconstitution of product. Keep the reagent at 15-25°C for 30 minutes and invert to mix before use. Antithrombin: Dissolve the vial contents with 3 mL of CLSI T ype CLR water or equivalent.6 Replace the stopper and swirl gently. Make sure of the complete reconstitution of product. Keep the reagent at 15-25°C for 30 minutes and invert to mix before use. Buffer: Dilute the necessary quantity of concentrated buffer 1:10 (1+9) with CLSI T ype CLR water or equivalent.6 Mix before use. Working buffer: T o 24 mL of diluted buffer add 1 mL of reconstituted antithrombin reagent. Note: An instant opalescence will occur in the lyophilized reagents but it will fade away within 2 minutes.Reagent storage and stability Unopened reagents are stable until the expiration date shown on the vial when stored at 2-8°C. Chromogenic substrate - Stability after reconstitution: 7 days at 15°C, 3 months at 2-8°C in the original vial or 48 hours at 15°C on the ACL Futura/ACL Advance Systems and ACL TOP? Family. Factor Xa reagent - Stability after reconstitution: 7 days at 15°C, 3 months at 2-8°C in the original vial or 48 hours at 15°C on the ACL Futura/ACL Advance Systems and ACL TOP Family. Antithrombin - Stability after reconstitution: 3 months at 2-8°C in the original vial. Buffer - Opened reagent is stable 3 months at 2-8°C. Working buffer - Stability after preparation: 7 days at 15°C and 2-8°C in a closed container or 48 hours at 15°C on the ACL Futura/ACL Advance Systems and ACL TOP Family. For optimal stability remove reagents from the system and store them at 2-8°C in the original vial. Instrument/test procedures procedure instructions. Note: A cleaning cycle is recommended after running the Heparin assay on the ACL Classic (100-7000) Systems. Specimen collection and preparation Nine parts of freshly drawn venous blood are collected into one part trisodium citrate. Refer to CLSI Document H21-A5 for further instructions on specimen collection, handling and storage.7 Standardization For preparation of the 0.8 U/mL standard use the same heparin as used for patient therapy. Please Note: When preparing the 0.8 U/mL standard depending on the instrument being used either calibration plasma or Normal Pooled Plasma (NPP) should be used. ACL TOP Family: Normal Pooled Plasma (NPP) should be used in preparation of the 0.8 U/mL standard. ACL Futura/ACL Advance: As indicated in the Operator’s manual, calibration plasma should be used in preparation of the 0.8 U/mL standard. ACL ELITE/ELITE PRO/8/9/10000: As indicated in the Operator’s manual, calibration plasma should be used in preparation of the 0.8 U/mL standard. ACL Classic (100-7000): As indicated in the Operator’s manual, Normal Pooled Plasma (NPP) should be used in preparation of the 0.8 U/mL standard. Additional reagent and control plasmas The following are not supplied with the kit and must be purchased separately. Americas and Pacific Rim Europe Cat. No. Cat No. Calibration plasma 0020003700 0020003700 Cleaning solution 0009831700 0009831700 Cleaning agent 0009832700 0009832700 Quality control 8 establish its own mean and standard deviation and should establish a quality control program to monitor laboratory testing. Controls should be analyzed at least once every 8 hour shift in accordance with good laboratory practice. Refer to the instrument’s Operator’s Manual for additional information. Refer to Westgard et al for identification and resolution for out-of-control situations.9 Results Heparin results are reported in U/mL. Refer to the instrument’s Operator’s Manual for additional information. Limitations/interfering substances Heparin results on the ACL and ACL Futura/ACL Advance Systems are not affected by hemoglobin up to 200 mg/dL, bilirubin up to 20 mg/dL and triglycerides up to 700 mg/dL. Heparin results on the ACL TOP Family are not affected by hemoglobin up to 375 mg/dL, bilirubin up to 25 mg/dL and triglycerides up to 1630 mg/dL. Expected values T o obtain an optimal effect with minimum risk of bleeding or thromboembolic complications the heparin activity should be in the range recommended by the heparin manufacturer.10 Performance characteristics Precision: Within run and total (run to run and day to day) precision was assessed over multiple runs using two levels of sample of both UFH Heparin and LMWH Heparin. ACL? Family Mean (U/mL) CV % (Within run) CV % (Total) UFH 0.77 1.84 2.18 UFH 0.23 7.76 8.23 LMWH 0.79 2.68 3.09 LMWH 0.23 7.99 9.69 ACL Futura/ACL Advance Mean (U/mL) CV % (Within run) CV % (Total) UFH 0.52 5.7 7.3 UFH 0.26 9.1 10.0 LMWH 0.76 4.1 4.5 LMWH 0.42 6.2 7.9 LMWH 0.22 10.7 11.9 ACL TOP Family Mean (U/mL) CV % (Within run) CV % (Total) UFH 0.82 1.8 6.4 UFH 0.53 3.4 4.3 UFH 0.25 4.6 8.5 LMWH 0.86 2.4 4.4 LMWH 0.49 6.1 8.2 LMWH 0.25 5.7 11.3 Correlation: System slope intercept r Reference method ACL Family 0.968 0.014 0.988 IL Heparin (Xa) ACL Futura/ACL Advance 0.944 0.035 0.989 IL Heparin (Xa) ACL TOP Family 1.012 -0.005 0.992 HemosIL Heparin (Xa) on ACL Advance The precision and correlation results were obtained using specific lots of reagent and controls. Linearity: System ACL Family and ACL Futura/ACL Advance 0 - 1.0 U/mL ACL TOP Family 0 - 1.1 U/mL