人肝癌HepG2细胞培养的体会_费洪新

人肝癌HepG2细胞培养的体会_费洪新
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HuH-7 人肝癌细胞

HuH-7 人肝癌细胞 Catalogue No.: C165 Product Format: a T25 flask Culture Properties:贴壁 Complete Growth Medium:89%H-DMEM+10%FBS+1%双抗 Atmosphere: air, 95%; carbon dioxide (CO2), 5% Application:Cells and cancer research NOTE: FOR RESEARCH USE ONLY. Components Operation steps for cell culture 1.吸走用于培养基,加入3-5mL PBS后轻轻晃动培养瓶润洗细胞; 2.吸干净PBS后加入1mL 0.25%胰酶-0.53mM EDTA,轻轻摇晃培养皿使胰酶 浸没细胞表面,培养瓶放37度培养箱消化; (细胞对于消化比较敏感,消化过度会严重影响细胞状态,导致细胞传代死亡漂浮或者传代后不长。细胞消化到细胞间隙变大但未脱落,可以轻轻吹下时即可终止,禁止消化到细胞完全漂浮。混匀细胞时尽量轻柔,不要吹出大量气泡。) 3.加入6-8ml完全培养基终止消化,轻轻吹下细胞混匀; 4.将混匀的细胞1000rpm(约150g)离心3min,弃上清,再用新鲜培养基 重悬37度培养箱继续培养; 传代比例: 不同细胞生长速度不一,具体传代比例视细胞生长速度而定,大部分细胞适用1:3-1:4传代,生长较慢的细胞可以1:2传代。 Cell cryopreservation 1.冻存液:92%完全培养基+8%DMSO(可以根据实验室条件自行选择) 2.降温步骤:4度10min,-20度2h,-80过夜后液氮保存。

实验总结细胞培养方法

实验总结细胞培养方法公司内部档案编码:[OPPTR-OPPT28-OPPTL98-OPPNN08]

一、培养细胞常用配置培养基的配置:基础培养基500ml+胎牛血清50ml+双抗5ml 冻存液的配置:10 % DMSO + 90%胎牛血清 依次比例酌量配置。 超净工作台常规配置 移液器1套(2.5μl、20μl、200μl、1ml),酒精灯1盏,液器1 台,斜架1台,酒精喷壶1个,酒精棉球缸1个,污缸1个, 常规耗材:培养瓶(50㎝2),定量移液管(5ml、10ml),枪头 (1ml、200μl、10μl),培养皿,6/24/48/96孔板,医用脱脂棉球,冻存管 所需试剂:培养基,胎牛血清,双抗,DMSO,胰酶,75%酒精…… 实验前准备:所需的各项高压后的耗材及污物缸放于超净工作台内,用酒精喷壶喷洒实验台面,并关闭工作台打开紫外灯照射30min后开始实验操作。培养基及胰酶恢复常温后使用,可37℃水浴5-10min 二、细胞复苏 步骤:

1. 紫外消毒30min后关闭紫外灯,开启超净台正常工作状态,用酒精消毒操作者的双手。 2. 培养液(DMEM),恒温水浴箱37℃预热20min,备用。超净台内准备一支15ml离心管备用。 3.将所需的培养基确保瓶身干净后酒精消毒放于工作台面内,点燃酒精灯,再将瓶口对准在酒精灯上消毒2-3次,旋开瓶盖后需再次分别消毒瓶口和瓶盖。 4. 从液氮保存罐中取出冻存管,立即放入37℃水浴中,快速摇晃,直至冻存液融化至黄豆粒大小后迅速取出。 5. 将细胞悬液移入15ml离心管,缓慢加入4ml培养液,离心 (1000r/min,5min)。 6. 取出2个培养皿并做好标记(复苏日期等),提前加入5-10ml培养液;离心结束后用1ml培养液悬液混悬沉淀细胞后分别加入培养皿内。 7. 将培养基瓶口和瓶盖消毒2-3次后拧紧,熄灭酒精灯,整理实验台面,取出实验试剂及污缸等,关闭超净工作台。 8. 将培养瓶放入培养箱内培养 注意事项:

细胞培养基本方法.docx

1?操作台基本要求: S ii. ??*SΛl-≤手的工作A通冈禹基也布局α *!!崗左芋£丄fTAβ^WLJt禺整丄fl-??' 上豹品矿播班苗 2?随着传代次数的增加,连续培养细胞系遗传物质不稳定,不得将细胞存放于-20C 或-80C冰柜中,因为细胞存在次低温条件下活力迅速降低。 3.细胞污染: (1)细菌污染 A S 佛3相差&Λ凰示旳螯主长的丄S ??tfΛ?t i li??- 1EfeS??T可见Iii垦壬庭司的区14存査■ ??S?????^ffi?1但是?

(2)酵母污染 阴站.M栢差圉煙昱示J?壁增齐的23」迄無蛍醉母污果?陌集的H*??ffl胞呈髓兀电貶也??!???生屮转Ke e JH* I (3)霉困污染 初期PH值维持稳定,污染严重后PH值迅速升高,导致培养基浑浊。 (4)病毒污染 一般不会对与其宿主物种不同的细胞培养物造成不良影响,通过电子显微镜检查、一组抗体的免疫染色,ELISA实验或者采用适当病毒引物的PCR技术可以检测出细胞为病毒污染。 (5)支原体污染 唯一检测支原体污染的方法是采用荧光染色、ELISE PCR免疫染色、放射自显 影 4.抗生素只能作为对付污染的最后手段而且只能短期使用,并应尽快撤出 5 ?适合贴壁的细胞和悬浮的细胞

6.基础培无血清培养基 7.PH值:大多数正常哺乳动物细胞系PH为7.4; 成纤维细胞系适合轻度偏碱 (pH747?7) Sf9和sf21等昆虫细胞系最适合在PH值为6.2的环境中生长 8.温度:大多数人和哺乳动物细胞系在36C至37C最佳 昆虫细胞在27C为最佳禽类细胞在38.5C最佳冷血动物(15C -26C) 9.动物细胞形态划分: 成纤维细胞,贴附生长上皮样细胞呈多角形,贴附淋巴母细胞样细胞呈球形,不贴附特殊形态: I型有长突触 U型没有轴突 10.细胞增长模式

细胞培养集锦(一个培养300多种细胞人的经验总结)

细胞培养集锦(一个培养300多种细胞人的经验总结) 一、消化与吹打 版上很多朋友讨论细胞培养问题,见到很多很好的经验总结,这里说一些我个人的经验,因为一些比较特殊的原因,我自己培养接触过近300种细胞,常用于做实验的,累积有百余种,可以说遇到过许多各式各样古怪的细胞。这里挑细胞消化开始做我的第一篇专题,并不是因为细胞消化最重要,而是近期看到大家频繁讨论这个话题,我就抛砖引玉,下面几点拙见,可能与其它朋友总结的一些经验有点出入,仅供大家参考。 许多同学对细胞消化做了许多研究,得出了很多有价值的经验,也见到很多人的困惑。其实细胞培养,尤其是细胞系的培养,就消化而言,不是太难,做得多了,善于总结经验,就能把细胞越养越好。一般的程序步骤,细节操作,我这里就不讲了,只讲一些基本操作背后的知识,如果不对之处,欢迎指正,一起讨论: 1,其实绝大部分细胞消化的时候是只要用胰酶润洗一遍即可,吸去胰酶后,残留的那些无法计算体积的附着在细胞表面的微量胰酶在37度一般不到2min足够消化细胞(绝大部分1min不到)。对于这些细胞原则上不要用胰酶孵育细胞,连续这样传代,对细胞伤害很大。简单的程序是PBS润洗吸去,胰酶润洗吸去,然后37度消化。 2,什么算是消化好了呢?不是细胞全部成间隔分布很离散的单个圆形才算消化好了,一般你肉眼观察贴壁细胞层,只要能移动了,多半呈沙壮移动,其实已经可以了,很多人喜欢把细胞消化或者吹打成完全分离细胞,这是没有必要的。一般能移动了,说明细胞与培养基质材料的附着已经消失了,细胞之间的附着也已经消失了,细胞已经独立分布了(虽然没有呈现很广的离散分布)。这个时候应该停止消化,不要等到看到镜下所有细胞都分离得非常好,间隙很大,才停止。细胞就是完全成单个细胞悬液,之后在贴壁的过程中仍然会聚集,这个是贴壁培养

Rab27A和Rab27B在4种不同人肝癌细胞株中的表达

龙源期刊网 https://www.360docs.net/doc/5b12560965.html, Rab27A和Rab27B在4种不同人肝癌细胞株中的表达 作者:刘鼎刘建生 来源:《中国当代医药》2015年第16期 [摘要] 目的检测Rab27A与Rab27B在3种人肝癌细胞系及1种永生化肝细胞系中的表达情况,初步研究Rab27A与Rab27B表达对肝癌细胞生物学特性的影响。方法采用RT-PCR及Western blot技术,检测Rab27A与Rab27B mRNA在3种人肝癌癌细胞HepG2、Huh-7、Li-7及1种永生化肝细胞系HL-7702中的表达。结果 Rab27A与Rab27B在肝癌细胞系及原发性肝癌组织中存在差异性表达。Rab27A mRNA在3种人肝癌细胞系中表达明显强于1种人永生化肝细胞系;Rab27B mRNA在3种人肝癌及1种人永生化肝细胞系中均明显表达但无显著差异。结论 Rab27A与Rab27B与原发性肝癌密切相关,可以为临床采取合理诊断措施提供有效的参考依据。 [关键词] Rab27A;Rab27B;肝细胞癌;RT-PCR;Western blot [中图分类号] R735 [文献标识码] A [文章编号] 1674-4721(2015)06(a)-0004-04 Expression of Rab27A and Rab27B in the four different hepatocellular carcinoma LIU Ding LIU Jian-sheng▲ The First Clinical Medical College of Shanxi Medical University,Taiyuan 030001,China [Abstract] Objective To investigate the expression of Rab27A and Rab27B in 3 human HCC lines and the immortalized hepatic cell line and its effect on biology characteristics of the cells. Methods The mRNA expression of Rab27A and Rab27B was detected by RT-PCR,and Western-blot in 3 human HCC lines of HepG2,Huh-7,Li-7 and the immortalized hepatic cell line of HL-7702. Results Rab27A and Rab27B were differentially expressed in cell lines and primary HCC tumors.The expression of Rab27A in 3 human HCC line was significantly better than that expressed in the immortalized hepatic cell line;the mRNA of Rab27B in 3 human HCC lines and the immortalized hepatic cell line were significantly expression but there was no significantly difference. Conclusion Rab27A and Rab27B expression are closely correlated HCC,it can provide the clinical reasonable diagnostic measures as valuable effective reference basis. [Key words] Rab27A;Rab27B;Hepatocellular carcinoma;RT-PCR;Western blot 肝细胞癌(hepatocellular carcinoma,HCC)是消化系统最常见的恶性肿瘤之一,具有极高的侵袭性和转移性,出现典型症状时,往往已经为晚期。目前与HCC进展相关的因子包括癌

细胞培养技术个人总结

总结---细胞培养 一.基本理论概论 原代培养: 也叫初代培养,指直接从体内取出的细胞、组织和器官进行的第一次的培养。 传代培养:将细胞从一个培养瓶转移到另外一个培养瓶即称为传代或传代培养。 细胞系:原代培养物成功传代后,则称之为细胞系。(如细胞系的生存期有限,则称之为有限细胞系;已获无限繁殖能力能持续生存的细胞系,称连续细胞系或无限细胞系。) 细胞株:通过选择法或克隆形成法从原代培养物或细胞系中获得具有特殊性质或标志物称为细胞株。 培养类型:细胞培养,组织培养,器官培养。 细胞生长的方式:贴附生长,悬浮生长 培养细胞的形态(形态不一定,环境改变形态可能改变):成纤维性型细胞,上皮型细胞(单层膜样生长),游走性细胞(游散生长,常有伪足跟突起) 二.培养过程及要点(切记无菌操作) (一)工作环境的处理 1. 实验进行前,无菌室及无菌操作台以紫外灯照射30-60 分钟灭菌,以70 % 酒精擦拭无菌操作抬面,并开启无菌操作台风扇运转10 分钟后,才开始实验操作。每次操作只处理一株细胞株,且即使培养基相同亦不共享培养基,以避免失误混淆或细胞间污染。实验完毕后,将实验物品带出工作台,以70 % 酒精擦拭无菌操作抬面。操作间隔应让无菌操作台运转10分钟以上后,再进行下一个细胞株之操作。 2. 实验用品以70 %酒精擦拭后才带入无菌操作台内。实验操作应在台面之中央无菌区域,勿在边缘之非无菌区域操作。无菌操作工作区域应保持清洁及宽敞,必要物品,例如试管架、吸管吸取器或吸管盒等可以暂时放置,其它实验用品用完即应移出,以利于气流之流通。 3. 小心取用无菌之实验物品,避免造成污染。勿碰触吸管尖头部或是容器瓶口,亦不要在打开之容器正上方操作实验。容器打开后,以手夹住瓶盖并握住瓶身,倾斜约45°角取用,尽量勿将瓶盖盖口朝上放置桌面。吸管口切勿碰到容器瓶口 4. 工作人员应注意自身之安全,须穿戴实验衣及手套后才进行实验。对于来自人类或是病毒 感染之细胞株应特别小心操作,并选择适当等级之无菌操作台(至少Class II)。操作过程中,应避免引起aerosol 之产生,小心毒性药品,例如DMSO 及TPA 等,并避免尖锐针头之伤害等。 5. 定期检测下列项目: CO2 钢瓶之CO2 压力。CO2 培养箱之CO2 浓度、温度、及水盘是否有污染(水盘的水用无菌水,每周更换)。无菌操作台内之airflow 压力,定期更换紫外线灯管及HEPA 过滤膜,预滤网(300 小时/预滤网,3000 小时/HEPA)。 6. 水槽可添加消毒剂(Zephrin 1:750),定期更换水槽的水。 (二)试验用玻璃塑料用品清洗及其消毒灭菌 清洗: (1)玻璃器皿的清洗(酸液由重铬酸钾,浓硫酸,蒸馏水配置) 浸泡—刷洗—浸酸—冲洗 (2)胶塞的清洗 刚买回的常含滑石粉等杂质,先用自来水冲洗后再按常规方法处理。2%NaoH或洗衣粉煮沸10-20分钟---1%稀Hcl浸泡30分钟或蒸馏水冲洗后再煮沸10-20分钟—晾干备用 (3)塑料制品的清洗 2%NaoH浸泡过夜—自来水冲洗--5%稀Hcl浸泡30分钟—自来水和蒸馏水冲干备用。

细胞培养总结

细胞培养学习总结 --贴壁细胞培养技术 一、细胞培养一般流程: ㈠、复苏: 1、实验前做好相关准备工作(水浴锅37℃;超净工作台的无菌环境;准备 好实验相关仪器和试剂)。 2、把冻存管从液氮灌中取出来,立即投入37℃(≦40℃)水浴锅中,晃动 冻存管,使液体在1min以内全部融解(关键步骤),用酒精棉擦拭其外壁,放到超净工作台里。 3、把上述细胞悬液吸到15ml的离心管中,加入适量培养基,(用培养基把 冻存管洗一遍,把粘在壁上的细胞都洗下来,转移时不要直接倒,以防污染),1000转离心1-3min(可根据所培养细胞调整)。 4、吸弃上清液,加适量培养基把细胞吹散成细胞悬液,转移到培养瓶中, 加适量完全培养基(常为覆盖培养瓶底面即可)。 5、标好细胞种类和日期、培养人名字等,放到CO2培养箱中培养,细胞贴 壁后再换培养基。 6、注意观察细胞生长状态,及时换液或传代。 ㈡、换液: 1、实验前做好相关准备工作(超净工作台的无菌环境;准备好实验相关仪 器和试剂)。 2、取出培养瓶,用75%酒精消毒后放入超净实验台。 3、吸弃旧培养液,用适量(如2ml)PBS(磷酸盐缓冲液)清洗细胞(可根 据细胞状态洗1-2遍,一般从没有细胞的那一侧倒掉)。 4、加入适量新鲜完全培养基,放回培养箱继续培养。 ㈢、传代:

1、实验前做好相关准备工作(超净工作台的无菌环境;准备好实验相关仪 器和试剂)。 2、取出培养瓶,用75%酒精消毒后放入超净实验台。 3、吸弃旧培养液,用适量(如2ml)PBS(磷酸盐缓冲液)清洗细胞(可根 据细胞状态洗1-2遍)。(前面步骤同换液) 4、加适当的胰蛋白酶(0.05%)(能覆盖细胞就行),放入细胞培养箱中消化 1-2min(根据不同类型细胞而定)。 5、细胞都变圆后加如入等体积的完全培养基终止消化。 6、用滴管缓慢吹打细胞,使细胞都悬浮起来成细胞悬液,吸到15ml的离心 管中,1000转离心1-3min。 7、倒掉上清液,加1-2ml完全培养基,将细胞吹散成单个细胞。 8、根据细胞浓度把细胞传到几个培养瓶中,加入适量完全培养基(一般癌 细胞一个培养瓶分2个),放回培养箱中继续培养。 ㈣、冻存: 1、实验前做好相关准备工作(预先配置好冻存液放入4℃保存,常为 10%DMSO+90%血清,配制过程中加入DMSO要缓慢,且边滴边摇;超净工作台的无菌环境;准备好实验相关仪器和试剂)。 2、取出培养瓶,用75%酒精消毒后放入超净实验台。 3、吸弃旧培养液,用适量(如2ml)PBS(磷酸盐缓冲液)清洗细胞(可根 据细胞状态洗1-2遍)。 4、加适当的胰蛋白酶(0.05%)(能覆盖细胞就行),放入细胞培养箱中消化 1-2min(根据不同类型细胞而定)。 5、细胞都变圆后加入等体积的完全培养基终止消化。 6、用滴管缓慢吹打细胞,把细胞都悬浮起来成细胞悬液,吸到15ml的离心 管中,1000转离心1-3min。(同细胞传代中步骤) 7、倒掉上清液,加入预制的冻存液制成细胞悬液,分装到灭菌的冻存管中, (注意不要加满,预留其结冰后的空间,一般1.8ml的冻存管加入≦1.5ml 的细胞悬液)。

人肝癌细胞株中FOXM1及NF_B的表达及意义_王琦1_柴磊2_蒋少青3_马丽4

网络出版时间:2014-02-17 09:02 网络出版地址:https://www.360docs.net/doc/5b12560965.html,/kcms/detail/64.1008.R.20140217.0902.004.html 人肝癌细胞株中FOXM1 及NF-κB的表达及意义 王琦1,柴磊2,蒋少青3,马丽4 ,金栋5 ,殷利军5,张桂香5,谢岩青5 (1.宁夏医科大学总医院肝胆外科,银川 750004;2.宁夏回族自治区第三人民外科,银川750004;3.宁夏医科大学总医院药剂科,银川 750004;4.宁夏医科大学总医院心脑血管疾病医院药剂科,银川 750004;5.宁夏医科大学总医院心脑血管疾病医院血管外/普外科,银川750004)1 [摘要] 目的探讨不同肝癌细胞株中转录因子FOXM1(Forkhead Box M1)及核转录因子NF-κB(nuclear factor kappa B)的表达强度及意义。方法采用Western blot、RT-PCR法,检测不同肝癌细胞株(QGY-7703、BEL-7402、SMMC-7721)中FOXM1及NF-κ B 在蛋白及mRNA 水平的表达情况。结果在3株肝癌细胞中FOXM1及NF-κB的表达无论是mRNA水平还是蛋白水平均存在显著差异,细胞株(QGY-7703、BEL-7402)中FOXM1及NF-κB的表达同时都明显高表达于细胞株SMMC-7721。结论肝癌细胞株中FOXM1蛋白及mRNA表达与NF-κB表达趋势一致,提示FOXM的表达可能与NF-κB的活化有关。 [关键词] FOXM1;NF-κB;肝细胞肝癌 [中图分类号]R735.7 [文献标识码]A Expression and significance of Forkhead Box M1 and nuclear factor kappa B in human liver carcinoma cells WANG Qi1,CHAI Lei2,JIANG Shao-qing 3,MA Li4,JIN Dong5,YIN Li-jun5 ,ZHANG Gui-xiang5,XIE Yan-qing5,(1. Dept.of Hepatobiliarysurgery,the Affiliated Hospital of Ningxia Med. Univ. Yinchuan 750004;2. Dept.of Surgical, the Third People′s Hospital of Ningxia. Yinchuan 750004;3. Dept.of Pharmacy,the Affiliated Hospital of Ningxia Med. Univ. Yinchuan 750004;4. Dept.of Pharmacy,the Cardio-Cerebral Vascular Disease Hospital of Ningxia Med. Univ. Yinchuan 750004;5. Dept.of Vascular/General Surgery, the Cardio-Cerebral Vascular Disease Hospital of Ningxia Med. Univ.Yinchuan 750004) ABSTRACT Objective(1)To investigate the expression and significance of Forkhead Box M1 and nuclear factor kappa B in human liver carcinoma cells. Methods The expression of Forkhead Box M1 and nuclear factor kappa B protein and micro-RNA in hepatocellular carcinoma cell lines(QGY-7703、BEL-7402、SMMC-7721)were detected with the application of Western blot analysis and RT-PCR analysis,respectively. Results The expression 基金项目:宁夏自然科学基金(项目编号:NZ1236) 作者简介:王琦(1983-),硕士,主任医师,肝癌复发相关分子机制的研究。 通作者:谢岩青,Email:xie-yanqing@https://www.360docs.net/doc/5b12560965.html,

HUVEC细胞培养心得

HUVEC 培养交流讨论: 各位仁兄,我查了一下,关于HUVEC 的贴子有几千篇,不知有那位知道的多的能给总结一下?我想应该有以下几 1、讲清HUVEC 与ECV304区别 2、HUVEC 原代与细胞株的关系、区别问题 3、能否总结一下国内有哪些单位可以买到HUVEC ?是原代还是细胞株? 4、培养中到底添加ECGS 还是ECGF ? 5、有些推荐细胞的应该讲清自己的是原代还是细胞株,能养多少代。 希望能抛砖引玉。 票数+收藏2回帖16浏览2686我也要发帖 举报 ? 浙江医院招聘浙江省老年医学研究所(临床医学) ? 请教关于HUVEC 细胞的培养 ? 求购HUVEC ? 【互助小组】正在养或已经养过HUVEC 的请进。 docter_zhao ? 0 2004-08-03 15:14 消息 引用 分享 huvec 必需加ECGS 及肝素,否则很难生长增殖 举报 ? zjqlucky ? 15 ? 5 ? 7 2004-08-03 17:27 消息 引用 分享 docter_zhao wrote: huvec 必需加ECGS 及肝素,否则很难生长增殖 这个好像也未必吧,我养的原代的huvec 只用20%胎牛血清的RPMI1640也长的很好呀,只是传ecgs 能传这么多代吧 票数+收藏1 举报 ? 2004-09-08 00:20 消息 引用 分享 我们曾试过用m199或DMEM 加20%胎牛血清原代培养,感觉效果不佳,后来加了ECGS 及肝素,发现细胞长得能有改变 票数+收藏1 举报 引用 分享 huvec 是脐静脉内皮细胞,不是那么难养,细胞可以从脐带自己提取,卖现成的细胞株也不贵,用内皮细胞的配套培email-sinian19988@https://www.360docs.net/doc/5b12560965.html,

肝癌细胞培养(总结版)

BEL7402/hepG2/HCCLM等肝癌细胞培养过程 器材: 液氮冷冻灌、恒温培养箱、电冰箱、高压灭菌锅、离心机、 倒置显微镜、超净工作台、一次性吸管若干个、带塞培养瓶(不定个)、试管架、酒精灯、G6型号细菌过滤漏斗、无菌冻存管、液 氮瓶。 试剂: RPMI l640培养液,胎牛血清(生长因子), 胰蛋白酶液,70%乙醇(消毒),冻存培养液(培养液7ml,胎牛血清2ml,DMSO 1ml),PBS缓冲液等。 器皿的消毒及准备: 清洗灭菌(浓硫酸、蒸馏水): (1)浸泡(酸浸):新使用或重复使用的玻璃器皿须经浓硫酸 溶液浸泡过夜,水洗。以去除新购进玻璃器皿所带有灰尘、铅、砷 等物质,并消除其弱碱性。操作过程需戴防护用具。 (2)刷洗:浸泡后用软毛刷和优质的洗洁精进行刷洗。刷洗后 经行烘干。 (3)冲洗、烘干备用:浸酸后的玻璃器皿先用自来水充分冲洗,吸管需冲洗10min,器皿需每瓶灌满自来水、倒掉反复10次以上,不留任何酸浸液残迹,然后用蒸馏水漂洗2~3次,将清洗好的玻璃器 皿放入烘干箱中,烘干后的玻璃器皿要求干净透明,无油烟,不能 残留任何有害物质及化学药品等。 (5)包装灭菌:器材经清洗烤干或晾干后,先应严格包装,然后再行消毒灭菌处理,以防止消毒灭菌后再次遭受污染。 实验前准备工作: 操作者的皮肤、培养瓶的盖和外壁常用酒精消毒。用紫外线消 毒实验室空气、工作台面和一些不能使用其他方法消毒的培养器皿。进无菌室前或做完实验后,均应开灯照射30min进行消毒。紫外线 照射60min可以消灭空气中大部分细菌。 细胞复苏: 冻存细胞保存管保存在液氮中(-196℃),取出保存管后必须 快速冷冻,以避免冰晶重新结晶而对细胞造成伤害,致使细胞死亡。在冻存细胞的保存管中含有对细胞有毒害的成分DMSO,故在解冻应 马上将其去除。在冷冻活化前应在无菌台上将细胞培养液配好,然 后将保存管从液氮中取出,放于37℃的温水中快速使细胞解冻。解 冻后悬液快速移入培养液中混匀,离心去掉上清液,再加入细胞培 养液。

BHK细胞培养小结

BHK细胞培养小结 报告人: 1、细胞培养 (1)培养基:DMEM培养基+10%无支原体新生牛血清+100U/ml青/链霉素 (2)细胞传代:细胞长满瓶壁90%-95%时,将上清倒掉,用D-Hanks液洗2-3遍细胞,加1ml0.25%胰酶37℃温箱消化3-5分钟后,加入3ml培养基将细胞吹下来,转移至15ml离心管,1000转离心5分钟,倒掉上清,加入3ml新鲜培养基重悬细胞,将细胞吹打均匀后按1:2或1:3的比例接种于新的培养瓶中,加入5ml新鲜培养基,放入培养箱培养。 2、细胞冻存及复苏 (1)细胞冻存液:90%无支原体新生牛血清+10%DMSO (2)细胞冻存方法:细胞长满瓶壁90%后,细胞消化离心,弃上清,加入配制好的冻存培养液(含10%DMSO),重悬细胞,或者用细胞计数板计数细胞浓度,将细胞浓度调至106个/ml,将细胞转移至冻存管,每管1ml,用棉花包住冻存管放入-80℃冰箱,2天后将冻存管放入液氮冻存。 (3)细胞复苏:先准备一支15ml离心管,加入5-8ml新鲜培养基,再从液氮取出细胞后立刻放入37-40℃水浴,在1min内融化,然后将细胞转移至装有培养基的离心管,1000转离心5分钟,倒掉上清,加入2ml新鲜培养基重悬,再转移到1个新的培养瓶中,加入4ml新鲜培养基放入培养箱培养,1天后细胞贴壁,换液。 3、注意事项 (1)如果细胞生长太慢可选用含20%无支原体血清的DMEM培养基培养,可加快细胞生长; (2)细胞传代时必须先离心后再重悬,如果不离心直接吹打后传代细胞不能吹打成单个细胞悬液,传代细胞成堆生长,影响细胞状态; (3)细胞传代时不能传得太稀,如果传代时细胞浓度太低的细胞生长速度会很慢,而且细胞容易成堆生长; (4)胰酶在使用前最好预热到37度。由于胰酶平时保存在4度,反复预热对胰酶的活性不好,可以将胰酶进行分装,尽可能避免胰酶反复冷却加热; (5)BHK还是比较好消化的,2-3min应该足够了,消化时间太长对细胞不利。可以在显微镜下观察消化情况,必要时可以拍打培养瓶帮助细胞分散,消化结束后直接加入培养基即可,胰酶会被血清灭活; (6)细胞冻存时要选细胞状态好的细胞冻存,否则细胞不容易复苏。

常见肝癌细胞株

实验室用肝癌细胞株 细胞英文名称Hep G2 [HepG2]细胞中文名人肝癌细胞 形态特性上皮样生长特性贴壁生长 特征特性该细胞来源于一名15岁的白人少年的肝癌组织。该细胞表达甲胎蛋白、白蛋白、α-2-巨球蛋白、α-1-抗胰蛋白酶、转铁蛋白、α-1-抗凝乳蛋白酶、结合珠蛋白、铜蓝蛋白、纤溶酶原、补体C4、C3激活物、纤维蛋白原、α-1酸性糖蛋白、α-2-HS-糖蛋白、β-脂蛋白、视黄醇结合蛋白;表达胰岛素受体和胰岛素样生长因子IGFⅡ的受体;该细胞具有3-羟基-3-甲酰辅酶A还原酶和肝甘油三酯脂肪酶的活性。目前尚未证明该细胞中有HBV基因组。 培养基MEM-EBSS: Minimum Essential Medium (MEM Eagles with Earle's Balanced Salts) 血清10%FBS其它因子1%NEAA 传代方法1:4~1:6传代;每周2次。传代情况C5 冻存条件基础培养基+5%DMSO+20%FBS支原体检测阴性 细胞英文名称SMMC-7721 [SMMC7721]细胞中文名人肝癌细胞 形态特性上皮样生长特性贴壁生长 特征特性取人肝癌组织,采用静置和旋转管法培养11天细胞开始生长,首次传代23天。AFP阳性。用Northern blot方法,未能检测到细胞中1.3kb LFIRE-1/HFREP-1 mRNA的表达,免疫缺陷小鼠体内可成瘤。 培养基RPMI 1640 (w/o Hepes) 血清10%FBS其它因子无 传代方法1:3传代;3~4天1次。传代情况C5 冻存条件基础培养基+5%DMSO+20%FBS支原体检测阴性 细胞英文名称Hep3b 细胞中文名人肝癌细胞 形态特性上皮细胞样生长特性贴壁生长。 特征特性该细胞源自一位患有肝癌的7岁黑人男童,HBV阳性。 培养基MEM-EBSS: Minimum Essential Medium (MEM Eagles with Earle's Balanced Salts) 血清10%FBS 其它因子无 传代方法1:4~1:6传代,每周换液2次传代情况C2 冻存条件基础培养基+8%DMSO+20%FBS 支原体检测培养法(-) 国内还有,: 小鼠肝癌细胞Hepa 1-6 [Hepa1-6] 人胆管细胞型肝癌细胞HCCC-9810 小鼠肝癌瘤株H22 人肝癌细胞HHCC 人肝癌细胞PLC/PRF/5 人肝癌细胞HB611 人肝癌细胞BEL-7402 人肝癌细胞QGY-7701 (有疑问细胞待定) 人肝癌细胞QGY-7703 (有疑问细胞待定) 人肝癌细胞BEL-7404 人肝癌细胞BEL-7405

南方医科大学研究生细胞培养技术考试重点总结

一. 细胞培养技术的概念,简史在体外对细胞培养并进行研究的技术, 也叫细胞克隆技术. 细胞培养技术是生物技术中最核心、最基础的技术。细胞培养技术主要包括二大方面内容: 1.微生物细胞培养技术 2.动, 植物细胞培养技术:1) 器官培养技术 2) 组织培养技术 3) 细胞培养技术二. 细胞培养的优点 1.得到的是活细胞:能长时间、直接观察、研究活细胞的形态、结构、生命活动 2.可控制:(1)可控制-选择对象:类型:上皮?间质?性质:正常?肿瘤?(2)可控制-调节条件:各种因素:物理、化学、生物等因素(3)可控制-利用方法。采用各种研究技术、记录方法:研究:倒置生物显微镜、荧光显微镜、电子显微镜、流式细胞术、激光共焦显微镜、免疫组织化学、原位杂交、同位素标记-- 记录:摄影照片、缩时电影、电视-- 3. 应用广(1)学科多:(2)对象广:各种动物:低等动物--高等动物--人类;一种动物:不同年龄;不同组织: 正常或异常(肿瘤)4.较经济:花钱较少但可得到大量、同时、重复性好的生物学性状相似的实验对象 5. 不易污染环境三、细胞培养的缺点 1. 现人工无法完全模拟体内环境: a. 失去彼邻关系b.失去神经体液的调节和细胞相互间的影响 2. 细胞趋向单一化 3.失去原有组织结构和细胞形态 4.分化减弱或不显:要正确认识体外培养细胞是一种特定条件下生长的细胞群体。 5. 某些类型细胞还很难培养 6.大规模培养难度大四. 体外细胞培养的方式 1.粘附型培养: 附着在某一固相支持物表面才能生长的细胞。粘附是大

多数有机体细胞在体内外生存和生长发育的基本存在方式 2.悬浮型培养: 不必附着于固相支持物表面,而在悬浮状态下即可生长的细胞。来源:来自血,脾或骨髓,尤以血中白细胞.癌肿细胞也可以. 特点:在悬浮中生长良好,细胞圆形,单个或小细胞团优点: 生存空间大,提供数量大,传代方便(不需消化),易于收获可获得稳定状态. 缺点:观察不方便, 很多细胞不能悬浮生长(尤以正常细胞) 五.体外培养细胞的生长形态分类根据形态大致的不同,主要2类: 1.上皮样:来源:来源于外胚层,内胚层细胞如:皮肤及其衍生物, 消化道,乳腺,肺泡, 上皮性肿瘤形态:类似体内的上皮细胞,扁平,不规则多角形,中有圆形核易相连成片相靠—紧密相连—成薄层—铺石状 2.成纤维细胞样:培养中形态与成纤维细胞类似。来源:中胚层间充质组织起源的组织如:真正的成纤维细胞:心肌,平滑肌,成骨细胞,血管内皮形态:似体内成纤维细胞的形态,胞体梭形或不规则三角形,胞质向外伸出2—3个长短不等的突起,中有卵圆形核。 3.其它,不定型 六. 常用术语1.细胞系(cell line):原代培养物首次传代后,就可以称细胞系。不能或有限传代下去称有限细胞系。能连续传代的称连续细胞系。 2.细胞株:某类细胞经传代克隆并保持了该类细胞理化特征的细胞群体。 3.原代培养:直接取自生物体的组织细胞并进行培养 4.传代培养:将细胞从一个培养物内分散到另一个培养物的过程。 5.转染(transfection):将某个基

肿瘤相关抗原GCF2高水平表达的肝癌细胞株的筛选

*国家自然科学基金资助项目(编号:8106016),广西科学基金资助项目(编号:2010GXNSFD013048) △通信作者。E -mail :gwongluo@yahoo.com 肿瘤相关抗原GCF2高水平表达的肝癌 细胞株的筛选 * 蒋日婷,晁耐霞,马平,李金平,罗国容△ 广西医科大学组织胚胎学教研室(南宁530021) 【摘要】目的 筛选出肿瘤相关抗原GCF2高表达的人肝癌细胞株,为进一步探讨GCF2对肝癌发生发展的 可能作用奠定基础。方法 选择4种人肝癌细胞株(BEL -7404、 HepG2、SMMC -7721和QGY -7703)及1种成人正常肝细胞株(HL -7702),培养后分别制作细胞爬片及提取蛋白后,采用免疫细胞染色技术和Western blot 的方法筛选出GCF2表达量高的细胞株。结果 免疫细胞染色显示, GCF2在5种细胞中的胞核及胞质中均有表达。GCF2蛋白在肝癌细胞BEL -7404、HepG2、SMMC -7721和QGY -7703的表达要强于正常肝细胞HL -7702,其中以BEL -7404的表达量最高。通过Western blot 检测,BEL -7404的GCF2相对表达量为0.875?0.134,较其他细胞株高,差异有统计学意义(P <0.05)。结论 BEL -7404细胞中GCF2蛋白水平的相对表达量最高,可以作为下 一步探讨GCF2在肝癌发生发展的可能作用的实验材料。 【关键词】肿瘤相关抗原;GCF2;肝癌;蛋白表达 GCF2(GC binding factor 2)是一个转录抑制因子,能 够抑制多个下游基因,比如EGFR 、TNF -α、PDGF -A 链和Igf2等的转录,参与细胞增殖、周期和凋亡等进 程 [1-6] 。本课题组前期用SEREX 技术筛选人肝癌组织构建的cDNA 文库,发现2个克隆与GCF2的片段同 源,提示GCF2可能是肝癌相关抗原[7] 。目前,尚未见文献报道GCF2基因在肝癌中的作用的研究,因此,2010年11月至2011年3月,本实验将采用免疫细胞化学技术检测4种人肝癌细胞和1种成人正常肝细胞中GCF2的表达情况,并且通过Western blot 筛选出GCF2高水平表达的人肝癌细胞株,为进一步探讨GCF2在肝癌发生发展的可能作用奠定基础。1材料与方法 1.1 材料人肝癌细胞株BEL -7404、 HepG2、SMMC -7721、QGY -7703和成人肝细胞株HL -7702,均购于上海细胞生物学研究所。实验仪器均由广西医科大学基础实验中心提供:CO 2恒温培养箱(Thermo )、倒置显微镜(OLYMPUS )、台式高速冷冻离心机(SIGMA )、紫外分光光度计(UV2000I Tanon )、电泳仪(北京六一仪器厂)、半干式转膜仪(BIO -RAD )。细胞培养基高糖DMEM 及RPMI 1640均购于HyClnoe 公司。磷酸缓冲液(PBS )、 DAB 显色试剂购于福州迈新生物技术开发有限公司。蛋白提取试剂盒购于南京凯基生物技术有限公司。GCF2抗体购自美国Santa 公司。辣根过氧化物酶(HRP )标记的山羊抗鼠IgG 购自上海长岛生物试 剂有限公司。GAPDH 抗体、ECL 发光试剂购于碧云天生物技术研究所。 1.2 细胞培养 将4种肝癌细胞分别培养在含10% 胎牛血清的高糖DMEM 培养液中,将成人正常肝细胞 株HL -7702培养在含10%胎牛血清的RPMI 1640培 养液中,并置于37?、 5%CO 2及饱和湿度的恒温培养箱中培养, 隔天更换培养液。1.3细胞爬片的制作及免疫组织化学检测 将生长 状态良好的人肝癌细胞株BEL -7404、 HepG2、SMMC -7721、QGY -7703和成人正常肝细胞株HL -7702接 种于置有圆形盖玻片的12孔培养板内,接种密度为1?104个细胞/孔,用含10%胎牛血清的高糖DMEM 及RPMI 1640培养液在37?、5%CO 2条件下培养。待细胞长到60% 70%融合时,用0.01mol /L PBS 洗涤1次,加入4%多聚甲醛室温固定15min 。将盖玻片取出,粘贴在载玻片上,按照常规免疫组织化学方法,加 入1?100稀释的GCF2抗体, 4?湿盒内温育过夜。PBS 洗片后滴加辣根过氧化物酶标记的山羊抗鼠IgG ,室温 下孵育30min , PBS 洗片后进行DAB 显色2 3min 。常规50% 100%梯度酒精脱水,二甲苯透明,香柏油 封片,显微镜下观察并拍照记录结果。以PBS 替代一抗作为阴性对照。采用Image -Pro Plus version 6.0软件分析阳性着色光密度。1.4 总蛋白的提取及Western blot 的检测常规细胞培养,当细胞贴壁生长达90%时,按蛋白提取试剂盒 操作方法提取细胞总蛋白, 分装后置于-80?保存。取4个细胞株的蛋白20μg 与1/4体积的5?SDS 上样缓冲液混合,100?沸水浴5min ,冷却后点样进行 SDS -PAGE 电泳分离。电泳完毕,按照半干转移仪公司提供的说明进行印迹操作,将电泳分离蛋白转移到PVDF 膜上。转移膜用含50g /L 脱脂牛奶的PBST (0.01mol /L PBS +0.5%Tween -20)室温封闭5h 。GCF2抗体1?200稀释液4?孵育过夜;按1?5000稀 · 1551·广东医学2012年6月第33卷第11期Guangdong Medical Journal June.2012,Vol.33,No.11

常规细胞培养方法

常规细胞培养方法(原代培养和传代培养)初代培养 原理 将动物机体的各种组织从机体中取出,经各种酶(常用胰蛋白酶)、螯合剂(常用EDTA)或机械方法处理,分散成单细胞,置合适的培养基中培养,使细胞得以生存、生长和繁殖,这一过程称原代培养。 仪器、材料及试剂 仪器:培养箱(调整至37℃),培养瓶、青霉素瓶、小玻璃漏斗、平皿、吸管、移液管、纱布、手术器械、血球计数板、离心机、水浴箱(37℃) 材料:动物组织块 试剂:1640培养基(含20%小牛血清),0.25%胰酶,Hank′s 液,碘酒 初代消化培养法

1.准备:取各种已消毒的培养用品置于净化台面,紫外线消毒20分钟。开始工作前先洗手、75%酒精擦拭手至肘部。 2.布局:点燃酒精灯,安装吸管帽。 3.处理组织:把组织块置于烧杯中,用Hanks液漂洗2~3次,去除血污;如怀疑组织可能污染,可先置于含有青链霉素的混合液中3 0~60分钟。 4.剪切:用眼科剪把组织切成2~3毫米大小的块,以便于消化。加入比组织块总量多30~50倍的胰蛋白酶液,然后一并倒入三角烧瓶中,结扎瓶口或塞以胶塞。 5.消化:或用恒温水浴,或置于37℃温箱消化均可,消化中每隔20分钟应摇动一次,如用电磁恒温搅拌器消化更好。消化时间依组织块的大小和组织的硬度而定。 6.分离:在消化过程中见消化液发混浊时,可用吸管吸出少许消化液在镜下观察,如组织已分散成细胞团或单个细胞,立即终止消化,随即通过适宜不锈钢筛,滤掉尚未充分消化开的组织块。低速(500 ~1000转/分)离心消化液5分钟,吸出上清,加入适量含有血清的培养液。

7.计数:用计数板计数,如细胞悬液细胞密度过大,再补加培养液调整后,分装入培养瓶中。对大多数细胞来说,pH要求在7.2~7. 4范围,培养液呈微红色,如颜色偏黄,说明液体变酸,可用NaHC O3调整。 8.培养:置于36.5℃温箱培养,如用CO2温箱培养,瓶口需用纱布棉塞或螺旋帽堵塞,纱布塞易生霉菌,每次换液时需要换新塞。 初代组织块培养法 1.剪切:把组织小块置于小烧杯或青霉素小瓶中,用Hanks液漂洗二三次以去掉表面血污,吸静Hanks液,用眼科剪反复剪切1mm 3块为止。 2.摆布:用弯头吸管吸取若干小块,置于培养瓶中,用吸管弯头把组织小块摆布在培养瓶底部,小块相互距离以0.5cm为宜,每一2 5ml培养瓶底可摆布20~30块。 3.轻轻翻转培养瓶,另瓶底向上,注意翻瓶时勿另组织小块流动,塞好瓶塞,置36.5℃温箱培养2小时左右(勿超过4小时),使小块微干涸。 4.培养:从微箱中取出培养瓶,开塞,46度斜持培养瓶,箱瓶底脚部轻轻注入培养液少许,然后缓缓再把培养瓶翻转过来,让培养液

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